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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In this study, 180 genotypes of cultivated Phaseolus vulgaris from the Caribbean were evaluated with the phaseolin marker. All the accessions belonged to the germplasm collection of the International Center for Tropical Agriculture (CIAT). Beans from Cuba were mostly S phaseolin (68.0 %) type, with small seed size, red and black seed color and type II or type III growth habit. These were followed by beans with T phaseolin (20.0 %) and finally by those with B, CH and Sd phaseolin. In Haiti , the most common phaseolin was T (48.1%), the majority of which were large seeded bush beans, mostly of the red mottled seed color class. Many of the remaining accessions were S phaseolin (42.6%) and had small black seed, although a few had B, Sb and Sd phaseolin (4.6, 2.8 and 1.9% of genotypes, respectively). In Puerto Rico, T phaseolin was in the majority with 57.1%, most of these with large red or red mottled seed. S phaseolin was represented by 42.9 % of landraces some of which had small yellow, black or white seed. In the Dominican Republic , the T phaseolin was very abundant (85.7%) the majority of which were medium to large seeded bush beans all of which were red mottled. A smaller proportion of Dominican landraces had S and B phaseolin (9.5% and 4.8% respectively). Finally, in Jamaica , T phaseolin was found for 40.0 % of the landraces, B phaseolin was equally common and 20% of the landraces had S phaseolin although this was based on a small sample of genotypes. The phaseolin patterns indicated the prevalence of both Andean and Mesoamerican beans in the Caribbean.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="4">Diversidad de faseolinas en frijol com&uacute;n cultivado del Caribe</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Phaseolin diversity in cultivated common bean from the Caribbean</font></center></b></p>     <p><b>    <center>Matthew W. Blair,<sup>1</sup> Wilfredo Pantoja D.,<sup>2</sup> Rigoberto Hidalgo<sup>3</sup></center></b></p>     <p>    <center><sup>1</sup>Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). <a href="mailto:m.blair@cgiar.org">m.blair@cgiar.org</a> <sup>2,3</sup>Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia. AA 237, Palmira, Valle del Cauca, Colombia. <a href="mailto:rhidalgoh@palmira.unal.edu.co">rhidalgoh@palmira.unal.edu.co</a></center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>REC.: 23-06-07. ACEPT.: 19-10-07</center></p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>Se evalu&oacute; el tipo de faseolina en 180 accesiones cultivadas de <i>Phaseolus vulgaris</i> del Caribe de la colecci&oacute;n del Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). En fr&iacute;joles de Cuba (25 accesiones) predomin&oacute; el tipo S (68%, semilla pequeña, roja o negra y h&aacute;bito de crecimiento de tipos II y III), seguidos por fr&iacute;joles con faseolina T (20 %) y con un bajo porcentaje los tipos B, CH y Sd. En Hait&iacute; (108 accesiones) las faseolinas m&aacute;s comunes fueron T (48.1%, semilla grande, rojo moteado y h&aacute;bito arbustivo) y S (42.6%, semilla pequeña, negra), y unas pocas mostraron faseolinas B, Sb y Sd. En los fr&iacute;joles de Puerto Rico (21 accesiones) las faseolinas m&aacute;s comunes fueron T (57.14%, semilla grande, rojo moteada) y S (42.86%, semilla pequeña amarilla, negra o blanca). En los de Rep&uacute;blica Dominicana (21 accesiones) abund&oacute; el tipo T (85.7%, semilla grande o mediana rojomoteada). En los fr&iacute;joles de Jamaica (5) predominaron las faseolinas T y B (40% de cada una). Los patrones de faseolina indicaron la prevalencia tanto de fr&iacute;joles Mesoamericanos como Andinos.</b></p>     <p><b>Palabras claves:</b> <i>Phaseolus vulgaris</i> L.; acervos; razas; recursos gen&eacute;ticos; faseolinas.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT </b></p>     <p><b>In this study, 180 genotypes of cultivated <i>Phaseolus vulgaris</i> from the Caribbean were evaluated with the phaseolin marker. All the accessions belonged to the germplasm collection of the International Center for Tropical Agriculture (CIAT). Beans from Cuba were mostly S phaseolin (68.0 %) type, with small seed size, red and black seed color and type II or type III growth habit. These were followed by beans with T phaseolin (20.0 %) and finally by those with B, CH and Sd phaseolin. In Haiti, the most common phaseolin was T (48.1%), the majority of which were large seeded bush beans, mostly of the red mottled seed color class. Many of the remaining accessions were S phaseolin (42.6%) and had small black seed, although a few had B, Sb and Sd phaseolin (4.6, 2.8 and 1.9% of genotypes, respectively). In Puerto Rico, T phaseolin was in the majority with 57.1%, most of these with large red or red mottled seed. S phaseolin was represented by 42.9 % of landraces some of which had small yellow, black or white seed. In the Dominican Republic, the T phaseolin was very abundant (85.7%) the majority of which were medium to large seeded bush beans all of which were red mottled. A smaller proportion of Dominican landraces had S and B phaseolin (9.5% and 4.8% respectively). Finally, in Jamaica, T phaseolin was found for 40.0 % of the landraces, B phaseolin was equally common and 20% of the landraces had S phaseolin although this was based on a small sample of genotypes. The phaseolin patterns indicated the prevalence of both Andean and Mesoamerican beans in the Caribbean.</b></p>     <p><b>Key words:</b> <i>Phaseolus vulgaris</i> L.; gene pools; races; genetic resources; phaseolin; common bean.</p> <hr size="1">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p>El fr&iacute;jol com&uacute;n <i>Phaseolus vulgaris</i> L (2n = 2X = 22), la leguminosa alimenticia m&aacute;s importante del mundo para el consumo humano, tiene dos centros de origen, el mesoamericano y el andino, distinguibles a nivel morfol&oacute;gico, fisiol&oacute;gico y molecular (incluyendo faseolinas, isozimas, polimorfismos de ADN) (Gepts <i>et al.</i>, 1986; Koening y Gepts 1989; Singh <i>et al.</i>, 1991; Tohme <i>et al.</i>, 1996). El acervo Mesoamericano incluye las razas Durango, Jalisco y Mesoam&eacute;rica, mientras que el Andino incluye las razas Chile, Per&uacute; y Nueva Granada (Singh <i>et al.</i> 1991; Beebe <i>et al.</i>, 2000).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El fr&iacute;jol cultivado en el Caribe incluye representantes de los centros de origen. Probablemente los primeros fr&iacute;joles introducidos a Cuba, alrededor de 950 a.de C., fueron cultivares de semilla grande (faseolina T), llevados por los Ta&iacute;nos, tribus Arawak, desde las vertientes orientales de los Andes, pasando por las islas Leeward y las Antillas Mayores (Rouse, 1992).</p>     <p>Los cultivares de semilla pequeña (faseolina S) podr&iacute;an haber llegado desde M&eacute;xico desde las costas en el Caribe de Colombia, Venezuela y Brasil (Gepts, 1988) a trav&eacute;s de las Antillas Mayores y Antillas Menores. Es posible que ambos tipos de fr&iacute;jol fueran m&aacute;s tarde reintroducidos desde M&eacute;xico y desde Per&uacute; v&iacute;a Panam&aacute; a lo que hoy es Cuba, Rep&uacute;blica Dominicana y Hait&iacute; (Castiñeiras <i>et al.</i>, 1991). Otra posible ruta de introducci&oacute;n de los fr&iacute;joles pequeños negros y rojos es el paso de Guatemala al istmo de Tehuantepec y pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n, desde donde los Caribes los transportar&iacute;an a Cuba y de all&iacute; a las islas de las Indias Occidentales, luego a Venezuela y Brasil (Voysest, 2000).</p>     <p>La faseolina, que representa m&aacute;s del 49% de la concentraci&oacute;n de prote&iacute;na de la semilla (Ma y Bliss, 1978), es un marcador altamente polim&oacute;rfico. En los fr&iacute;joles cultivados los tipos de faseolinas mayores son S y T y los menores A, B, C y H (Brown <i>et al.</i>, 1981; Gepts, 1984: Gepts <i>et al.</i>, 1986; Gepts y Bliss, 1986). La faseolina tambi&eacute;n se caracteriza por la estabilidad medioambiental y la complejidad molecular (Talbot <i>et al.</i>, 1984), lo cual sugiere que cada tipo es &uacute;nico y surgi&oacute; solamente una vez en la historia evolutiva del fr&iacute;jol com&uacute;n (Gepts, 1988).</p>     <p>En las &uacute;ltimas d&eacute;cadas en los pa&iacute;ses del Caribe se ha intensificado la presi&oacute;n por la tierra, limitando la agricultura a pequeñas fincas, aumentando la degradaci&oacute;n del medioambiente y la emigraci&oacute;n desde las &aacute;reas rurales. Frente a esta situaci&oacute;n se vuelve importante documentar y preservar la diversidad gen&eacute;tica de los fr&iacute;joles que todav&iacute;a quedan en el Caribe. Como a 25 genotipos de la colecci&oacute;n del Centro Internacional de Agricultura Tropical ya se les determin&oacute; el patr&oacute;n de faseolina (CIAT, 1993), el objetivo del estudio fue evaluar la diversidad de faseolinas de otros 155 genotipos de fr&iacute;jol com&uacute;n colectados en las Antillas Mayores del Caribe.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </font></center></b></p>     <p>En el estudio se evaluaron 155 accesiones de fr&iacute;jol com&uacute;n cultivado de la zona Caribe y conservado en la Unidad de Recursos Gen&eacute;ticos del Centro Internacional de Agricultura Tropical (designada por la FAO). La colecci&oacute;n incluye 25 accesiones de Cuba (23 variedades cultivadas y 2 comerciales), 21 de Rep&uacute;blica Dominicana (20 cultivadas y una l&iacute;nea mejorada), 108 de Hait&iacute; (38 variedades cultivadas y 70 l&iacute;neas mejoradas), 21 de Puerto Rico (15 cultivadas, 4 variedades comerciales y 2 l&iacute;neas mejoradas) y 5 variedades cultivadas de Jamaica. Como testigos se utilizaron dos variedades de Colombia, una del acervo Mesoamericano (ICA Pijao) y otra del acervo Andino (ICA Calima).</p>     <p>El patr&oacute;n de faseolina se evalu&oacute; utilizando el método descrito por Lareo <i>et al.</i> (1993), el cual es ampliamente usado por ser rápido y confiable para identificaci&oacute;n de los diferentes tipos de faseolinas. También se registraron tres características morfol&oacute;gicas claves en la determinaci&oacute;n de razas: el h&aacute;bito de crecimiento en escala de I (determinado arbustivo) a IV (indeterminado trepador) (CIAT, 1987), color y tamaño de semilla (peso de 100 semillas: pequeño hasta 25 g, mediano de 25 g a 40 g y grande mayor de 40 g).</p>     <p>Mediante matrices en Excel se analizaron los tipos de faseolinas, el h&aacute;bito de crecimiento o tamaño y el color de la semilla. Para cada pa&iacute;s se agruparon las accesiones de acuerdo con los tipos de faseolina identificados con las correspondientes caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas.</p>     <p><b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="verdana" size="3">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p><b>Diversidad de faseolinas, caracter&iacute;sticas de semilla y morfolog&iacute;a en Cuba</b></p>     <p>En las 25 accesiones de Cuba predomin&oacute; la faseolina S (68.0%); semilla pequeña de color negro (56.0 %) o rojo (36.0%) y h&aacute;bitos de crecimiento tipo II (64.0 %) y III (24.0%). Las faseolinas inusuales B, CH y Sd ocurrieron en las accesiones de semilla pequeña y negra G18252, G1364 y G50943 respectivamente (<a href="#4a03t01">Tabla 1</a>). Castiñeiras <i>et al.</i> (1991) tambi&eacute;n hab&iacute;an reportado 87.0% de faseolina S y 13.0% de faseolina T en materiales cubanos. En el estudio de Lioi <i>et al.</i> (1990) 62.0% de 119 accesiones cubanas de fr&iacute;jol presentaron faseolina S y eran negras o rojas pequeñas, 38.0% tuvieron faseolina T, la mayor&iacute;a de semilla grande con colores rosado, rojo o rojo moteado con un peso de 100 semillas promedio de 37.5 g.</p>     <p>    <center><a name="4a03t01"></a><img src="img/revistas/acag/v56n4/4a03t01.gif"></center></p>     <p>Los fr&iacute;joles de semilla negra presentan mayor aceptaci&oacute;n y necesitan pocos condimentos para complementar la mayor&iacute;a de los platos cubanos. En la agricultura tradicional cubana las variedades nativas se cultivan sin riego y sin protecci&oacute;n fitosanitaria, la mayor&iacute;a de variedades nativas negras y rojas se adaptan a tales condiciones (Castiñeiras <i>et al.</i> 1991).</p>     <p><b>Diversidad de faseolinas, caracter&iacute;sticas de semilla y morfolog&iacute;a en Hait&iacute;</b></p>     <p>De las 109 accesiones de fr&iacute;joles de Hait&iacute; (<a href="#4a03t02">Tabla 2</a>) el 48.1% present&oacute; faseolina T, la mayor&iacute;a de estos fr&iacute;joles fueron arbustivos, de semilla grande o mediana y con predominio de color rojo-moteado, caracter&iacute;sticas t&iacute;picas de los fr&iacute;joles Andinos. El 42.6% presentaron el patr&oacute;n de faseolina S, de semilla pequeña con predominio del color rojo o negro, caracter&iacute;sticas propias de los frijoles Mesoamericanos. De las cinco accesiones con faseolina B (4.6%) cuatro fueron de semilla pequeña (G18147, G18154, G18157, G19204) y una mediana (G18134), dos presentaron h&aacute;bito III (G18134 y G18157) de color rojo y rojo moteado, respectivamente. Las accesiones G18147 y G18154 tuvieron h&aacute;bito II y colores rojo moteado y rojo respectivamente. La faseolina Sb se encontr&oacute; en tres accesiones: G18149 de h&aacute;bito III con tamaño de grano mediano y de color crema-rayado, G18150 que tiene semilla pequeña de color blanco y h&aacute;bito III y G18163 que es pequeña y de h&aacute;bito II. La faseolina Sd (1.9 %) se encontr&oacute; en dos accesiones: G18141 de semilla pequeña, morada-jaspeada, de h&aacute;bito II, y G18168 de semilla grande, roja y h&aacute;bito I, lo que estar&iacute;a demostrando la introgresi&oacute;n de la faseolina Sd en una accesi&oacute;n con caracter&iacute;sticas andinas. La mayor&iacute;a de las accesiones con faseolinas B, Sb y Sd presentaron las caracter&iacute;sticas de color y tamaño de semilla y tipo de h&aacute;bito distintivo de los Mesoamericanos.</p>     <p>    <center><a name="4a03t02"></a><img src="img/revistas/acag/v56n4/4a03t02.gif"></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Diversidad de faseolinas, caracter&iacute;sticas de semilla y morfolog&iacute;a en Puerto Rico</b></p>     <p>En los fr&iacute;joles de Puerto Rico predomin&oacute; la faseolina T (57.1%), la mayor&iacute;a de las accesiones fueron de h&aacute;bito I, semilla mediana y grande mayoritariamente roja-moteada tipo Calima y rojo. El otro 42.9% de los fr&iacute;joles present&oacute; faseolina S, con h&aacute;bitos de crecimiento tipos II y III, todos con semilla pequeña blanca, negra o amarilla (<a href="#4a03t03">Tabla 3</a>).</p>     <p>    <center><a name="4a03t03"></a><img src="img/revistas/acag/v56n4/4a03t03.gif"></center></p>     <p><b>Diversidad de faseolinas, caracter&iacute;sticas de semilla y morfolog&iacute;a en Rep&uacute;blica Dominicana</b></p>     <p>En los fr&iacute;joles procedentes de Rep&uacute;blica Dominicana (21 accesiones) la faseolina T fue la m&aacute;s abundante (85.7%), la mayor&iacute;a de este grupo fueron de h&aacute;bito I, de semilla entre mediana y grande y roja-moteada tipo Calima, caracter&iacute;sticas t&iacute;picas de los fr&iacute;joles Andinos (<a href="#4a03t04">Tabla 4</a>). El siguiente grupo, correspondiente al 9.5% de las accesiones present&oacute; faseolina S, tamaño de semilla pequeña, h&aacute;bito tipo II, de color blanco (G50186) y negro (G13176) propios de los frijoles Mesoamericanos; el restante 4.8% present&oacute; faseolina B de semilla pequeña y de color blanco.</p>     <p>    <center><a name="4a03t04"></a><img src="img/revistas/acag/v56n4/4a03t04.gif"></center></p>     <p><b>Diversidad de faseolinas, caracter&iacute;sticas de semilla y morfolog&iacute;a en Jamaica</b></p>     <p>En las cinco accesiones de Jamaica dos tuvieron faseolina T (40 %) y semilla roja. G5742 tuvo semilla mediana y h&aacute;bito arbustivo con gu&iacute;as; G11901 semilla pequeña y h&aacute;bito I. Las accesiones G5733 (Miss Kelly) y G5731 contuvieron faseolina B, la semilla fue pequeña y el h&aacute;bito III; el color vari&oacute; entre rosado rayado (G5733) y rojo (G5731). La accesi&oacute;n G9240 (Miss Kelly) tuvo patr&oacute;n S, semilla pequeña y rosada rayada y h&aacute;bito III (<a href="#4a03t05">Tabla 5</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="4a03t05"></a><img src="img/revistas/acag/v56n4/4a03t05.gif"></center></p>     <p><b>Diversidad de faseolinas, caracter&iacute;sticas de semilla y morfolog&iacute;a de accesiones caribeñas</b></p>     <p>En general en las accesiones de fr&iacute;jol del Caribe (<a href="#4a03t06">Tabla 6</a>) predomin&oacute; la faseolina T (49.4%), semilla mediana y grande, roja moteada y h&aacute;bito de crecimiento tipo I, caracter&iacute;sticas distintivas de los fr&iacute;joles Andinos. Siguieron las de faseolina S (41.7%), la mayor&iacute;a de estas accesiones fueron de semilla pequeña, de h&aacute;bitos de crecimiento II y III, de color rojo o negro principalmente caracter&iacute;sticas propias del acervo Mesoamericano, tambi&eacute;n hubo unas pocas accesiones blancas y amarillas.</p>     <p>    <center><a name="4a03t06"></a><img src="img/revistas/acag/v56n4/4a03t06.gif"></center></p>     <p>La faseolina B se present&oacute; en 5.0%, estas accesiones fueron de semilla pequeña, predomin&oacute; el color rojo y negro y h&aacute;bito de crecimiento II y III. La faseolina tipo Sd (1.7%) apareci&oacute; en una accesi&oacute;n de Cuba (G50943) y otras dos de Hait&iacute; (G18141, G18168). La faseolina CH (0.56%) estuvo representada por la accesi&oacute;n G1364 de Cuba, de semilla pequeña negra y h&aacute;bito III.</p>     <p>El predominio no esperado de la faseolina T en el Caribe se puede explicar por la cercan&iacute;a y mayor adaptaci&oacute;n de los fr&iacute;joles Mesoamericanos a las tierras bajas y c&aacute;lidas de la regi&oacute;n. Esto se debi&oacute; a la contribuci&oacute;n en gran parte de las 70 l&iacute;neas mejoradas que se introdujeron en Hait&iacute; como ayuda humanitaria. Esta intervenci&oacute;n cambi&oacute; dr&aacute;sticamente las proporciones esperadas si s&oacute;lo se tiene en cuenta la intervenci&oacute;n humana, las barreras geogr&aacute;ficas y las distancias que son los factores que rigen la distribuci&oacute;n de las variedades tradicionales. Por otra parte, en Puerto Rico el Departamento de Agricultura de Estados Unidos ha introducido muchos materiales cultivados Mesoamericanos y Andinos.</p>     <p>En el Caribe predominaron las faseolinas T, S y B; las faseolinas Sb, Sd y CH se introdujeron en el Caribe hace relativamente poco tiempo, con las l&iacute;neas mejoradas o comerciales como en el caso de la accesi&oacute;n G1364 de faseolina CH. La ausencia de faseolinas C y H t&iacute;pica en las razas Per&uacute; y Chile parece ser una constante en las islas del Caribe (Gepts <i>et al.</i> 1986).</p>     <p>Se encontr&oacute; correlaci&oacute;n entre faseolina T (Andina) y tamaño de semilla mediana y grande con predominio de color rojo moteado y un peso promedio de 37.5 g (<a href="#4a03t07">Tabla 7</a>). Tambi&eacute;n existi&oacute; correlaci&oacute;n entre los tipos de faseolina S, Sb, Sd y B (Mesoamericanas), en su mayor&iacute;a de color negro o rojo, y tamaño de semilla pequeña con 20.7 g de peso promedio. La correlaci&oacute;n entre el tipo de faseolina y el tamaño de semilla tambi&eacute;n fue encontrada por otros investigadores (Gepts and Bliss, 1986; Castiñeiras <i>et al.</i>, 1991).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="4a03t07"></a><img src="img/revistas/acag/v56n4/4a03t07.gif"></center></p>     <p>De acuerdo con las caracter&iacute;sticas de los fr&iacute;joles del grupo Mesoamericano que se encuentran en el Caribe (semilla pequeña, roja o negra, h&aacute;bitos de crecimiento II y III, de faseolinas S, Sb, o B) se puede afirmar que la mayor&iacute;a pertenecen a la raza Mesoam&eacute;rica que evolucion&oacute; en sitios bajos y c&aacute;lidos. Mientras tanto la faseolina Sd, t&iacute;pica de la raza Durangom, es poco frecuente en el Caribe.</p>     <p>Por otra parte, la mayor&iacute;a de los fr&iacute;joles Andinos del Caribe se pueden asociar con la raza Nueva Granada (semillas de medianas o grandes, faseolina T, h&aacute;bito de crecimiento I, adaptables a zonas de altura media). Adem&aacute;s, esta raza incluye la mayor&iacute;a de cultivares comerciales de semilla grande que est&aacute;n actualmente en uso.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">CONCLUSIONES</font></center></b></p> <ol>     <p>    <li>En el Caribe se observaron los dos acervos principales del fr&iacute;jol com&uacute;n, el Mesoamericano (semilla pequeña, roja o negra, h&aacute;bito de crecimiento II o III, y tipo de faseolina S, Sb o Sd principalmente) y el Andino (semilla grande o mediana, rojo moteada, h&aacute;bito de crecimiento I y todos tienen faseolina T).</li></p>     <p>    <li>Los fr&iacute;joles Andinos del Caribe fueron menos diversos en faseolinas (solo T) que los Mesoamericanos (S, Sb, Sd y B).</li></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <li>En los dos acervos de fr&iacute;jol com&uacute;n, Mesoamericano y Andino, se observaron introgresiones, es decir, accesiones que comparten la mayor&iacute;a de caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas y genot&iacute;picas de un acervo pero la faseolina T t&iacute;pica del otro.</li></p>     <p>    <li>Se encontr&oacute; correlaci&oacute;n entre el tipo de faseolina y el tamaño de semilla. Los fr&iacute;joles con faseolina T t&iacute;pica Andina fueron en promedio m&aacute;s grandes y pesados que los fr&iacute;joles Mesoamericanos con faseolina S, Sb, Sd y B.</li></p>     </ol>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">AGRADECIMIENTOS</font></center></b></p>     <p>Los autores desean agradecer a Lucy Milena D&iacute;az por la revisi&oacute;n del manuscrito, al personal del laboratorio de caracterizaci&oacute;n de germoplasma de fr&iacute;jol y a la Unidad de Recursos Gen&eacute;ticos del CIAT, as&iacute; como tambi&eacute;n a la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira por ayudar a la realizaci&oacute;n de la tesis de Maestr&iacute;a de Wilfredo Pantoja y a &quot;Generation Challenge Program&quot; por la financiaci&oacute;n del proyecto.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A </font></center></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1. Beebe, S.; Skroch, P.; Tohme, J.; Duque, M.C.; Pedraza, F.; Nienhuis, J. 2000. Structure of genetic diversity among common bean landraces of Middle American origin based on correspondence analysis of RAPD. <i>Crop Sci</i> 40: 264-273.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-2812200700040000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Brown, J.W.S.; Ma, V.S.; Bliss, F.A.; Hall, T.C. 1981. Genetic variation in the subunits of globulin-1 storage protein of French bean. <i>Theor Appl Gene.</i> 59: 83-88.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-2812200700040000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Castiñeiras, L.; Esquivel, M.; Lioi, L.; Hammer, K. 1991. Origin, diversity and utilization of the Cuban germplasm of common bean (<i>Phaselous vulgaris</i> L.). <i>Euphytica</i> 57:1-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-2812200700040000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. CIAT, Centro Internacional de Agricultura Tropical. 1993. Bean Program Annual Report. Cali, Colombia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-2812200700040000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. CIAT. Centro Internacional de Agricultura Tropical. 1987. Standard system for the evaluation of bean germoplasm. Van Schoonhoven, A.; Pastor-Corrales, M. A. (eds.). CIAT. Cali, Colombia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-2812200700040000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Gepts, P. 1984. Nutritional and evolutionary implications of phaseolin seed protein variability in common bean (<i>Phaseolus vulgaris</i> L.). Ph.D. thesis. University of Wisconsin, Madison, USA. 228 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-2812200700040000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Gepts, P.; Osborn, T.; Rashka, K.; Bliss, F. 1986. Phaseolinprotein variability in wild forms and landraces of the common bean (<i>Phaseolus vulgaris</i> L.): evidence for multiple centers of domestication. <i>Econ. Bot.</i> 40(4): 451-468.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-2812200700040000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Gepts, P.; Bliss, F. A. 1986. Phaseolin variability among wild and cultivated common Beans (<i>Phaseolus vulgaris</i>) from Colombia. <i>Econ. Bot.</i> 40: 469-478.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-2812200700040000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Gepts, P. 1988. Phaseolin as and evolutionary marker. <i>In:</i> Gepts, P. (ed.) Resources of Phaseolus beans. Kluwer Academic publishers. p. 215-241.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-2812200700040000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Koening, R.; Gepts, P. 1989. Allozyme diversity in wild <i>Phaseolus vulgaris</i> further for two major centres of genetic diversity. <i>Theor Appl Genet.</i> 78: 809-817.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-2812200700040000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Lareo, L.R.; Gonz&aacute;lez A.V.; Barona E.; Beebe S.E. 1993. Fast and reliable one and two-dimensional electrophoretic parameters for phaseolin type identification. <i>Annu. Rept. Bean Improv. Coop.</i> 36:8–9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-2812200700040000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Lioi, L.; Esquivel, M., Castiñieras, L.; Hammer, M. 1990. Phaseolin variation among common bean landraces from Cuba. <i>Biologisches Zentralblatt</i> 109: 231- 233.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-2812200700040000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Ma, Y.; Bliss, F. A. 1978. Seed proteins of common bean. <i>Crop Sci.</i> 17: 431- 437.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-2812200700040000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Rouse, I. 1992. The Tainos: Rise and decline of the people who greeted Columbus. Yale University Press. New Haven, CT. USA.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-2812200700040000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Singh, S.; Nodari, R.; Gepts, P. 1991. Genetic diversity in cultivated common bean: I. Allozymes. <i>Crop Sci.</i> 31: 19-23.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-2812200700040000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Talbot, D. R.; Adang, M. J.; Slightom, J. L.; Hall, T. C. 1984. Size and organisation of a multigene family encoding phaseolin, the major seed storage protein of <i>Phaseolus vulgaris</i> L. <i>Molecular General Genet.</i> 198: 42-49.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-2812200700040000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Tohme, J.; Gonz&aacute;lez, D.O.; Beebe, S.; Duque, M. C. 1996. AFLP analysis of gene pools of a wild bean core collection. <i>Crop Sci.</i> 36: 1375-1384.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-2812200700040000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Voysest, O. 2000. Mejoramiento Gen&eacute;tico del Fr&iacute;jol (<i>Phaseolus vulgaris</i> L.). CIAT, Cali, Colombia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-2812200700040000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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