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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de la asociación bacterias fijadoras de nitrógeno - líneas interespecíficas de arroz-nitrógeno, en Typic haplustalf. Ibagué, Colombia]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia Sede Palmira Facultad de Ciencias Agropecuarias ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The study was carried out at the Cauchitos farm, Ibague municipality department of Tolima, with bounds: North 4°23'51" and west 75°9'7", 979 ansm, the average temperature is 24,3°C, tropical dry forest (bs-t) in the Holdridge classification. The purpose of this study was to evaluate the association between the nitrogen fixation bacteries with and without inoculo in 10 interespecific rice lines with three nitrogen dosis (0, 50 and 100% de 250 kg/ ha-1) and three repetitions. The inoculation was realized with 10(8) former units of colonies per millimeter. 2.260 bacteries of the generums Azotobacter spp y Azospirrillum spp., and identification the species: Azospirillum brasilense, Azospirillum lipoferum, Azospirillum amazonense, were identified and from the genus Azotobacter were identified the species: A. choroococcum, A. vinelandii, A. paspali and A. veijerinckii. Weren't found none significative differences after the inoculation. Azotobacter spp and Azospirillum spp. were typical generums of the bacterian flora in the rice plantation and in field conditions were effect of the treatment effects in the bacterian . The Azotobacter spp was the predominant in generum in each one of the treatments.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="4">Evaluaci&oacute;n de la asociaci&oacute;n bacterias fijadoras de nitr&oacute;geno - l&iacute;neas interespec&iacute;ficas de arroz-nitr&oacute;geno, en Typic haplustalf. Ibagu&eacute;, Colombia</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Evaluation of the association nitrogen fixing bacterias interspecific - rice lines – nitrogen, in typic haplustalf. Ibagu&eacute;, Colombia</font></center></b></p>     <p><b>    <center>Margarita M. Vallejo,<sup>1</sup> Carmen R. Bonilla C.,<sup>2</sup> Luis A. Castilla<sup>3</sup></center></b></p>     <p>    <center><sup>1</sup>Ingenio Manuelita, v&iacute;a Palmira – Buga, km 7. <a href="mailto:asurnima@manuelita.com">asurnima@manuelita.com</a> <sup>2</sup>Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Colombia. AA 237. Palmira, Valle del Cauca. Autor para correspondencia: <a href="mailto:crbonillac@unal.edu.co">crbonillac@unal.edu.co</a> <sup>3</sup>Fedearroz, Ibagu&eacute;.</center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>REC: 17-07-07. ACEPT.: 14-12-07</center></p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>El estudio se llev&oacute; a cabo en la hacienda Cauchitos, municipio de Ibagu&eacute;, departamento del Tolima (Norte 4&deg; 23&#39; 51&quot; y Oeste 75&deg; 9&#39; 7&quot;, 979 msnm, 24.3&deg;C, bosque seco tropical (bs-T), con el objetivo de evaluar las asociaciones entre bacterias fijadoras de nitr&oacute;geno con in&oacute;culo y sin &eacute;l en diez l&iacute;neas interespec&iacute;ficas de arroz, con tres dosis de nitr&oacute;geno (0%, 50% y 100% de 250 kg/ha<sup>-1</sup>) y tres repeticiones por tratamiento. La inoculaci&oacute;n se realiz&oacute; con 1 cm<sup>3</sup> de unidades formadoras de colonias por 250 g de semilla de cada cultivar. Se aislaron 2.260 bacterias de los g&eacute;neros <i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirillum</i> spp, se identificaron las especies <i>A. brasilense</i>, <i>A. lipoferum</i>, <i>A. amazonense</i> y del g&eacute;nero <i>Azotobacter</i> las especies <i>A. chroococcum</i>, <i>A. vinelandii</i>, <i>A. paspali</i> y <i>A. beijerinckii</i>. Respecto al in&oacute;culo no se encontraron diferencias significativas al realizar su aplicaci&oacute;n, se determin&oacute; que <i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirillum</i> spp fueron g&eacute;neros t&iacute;picos de la flora bacteriana en el cultivo del arroz y en condiciones de campo hubo efecto de los tratamientos en la flora bacteriana, y <i>Azotobacter</i> spp fue el predominante en cada uno de los tratamientos.</b></p>     <p><b>Palabras claves:</b> <i>Oryza sativa</i>, <i>O. rufipogon</i>, <i>O. glaberrima</i>, <i>Azotobacter</i>, <i>Azospirillum</i>.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT </b></p>     <p><b>The study was carried out at the Cauchitos farm, Ibague municipality department of Tolima, with bounds: North 4&deg;23&#39;51&quot; and west 75&deg;9&#39;7&quot;, 979 ansm, the average temperature is 24,3&deg;C, tropical dry forest (bs-t) in the Holdridge classification. The purpose of this study was to evaluate the association between the nitrogen fixation bacteries with and without inoculo in 10 interespecific rice lines with three nitrogen dosis (0, 50 and 100% de 250 kg/ ha<sup>-1</sup>) and three repetitions. The inoculation was realized with 10<sup>8</sup> former units of colonies per millimeter. 2.260 bacteries of the generums <i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirrillum</i> spp., and identification the species: <i>Azospirillum brasilense</i>, <i>Azospirillum lipoferum</i>, <i>Azospirillum amazonense</i>, were identified and from the genus <i>Azotobacter</i> were identified the species: <i>A. choroococcum</i>, <i>A. vinelandii</i>, <i>A. paspali</i> and <i>A. veijerinckii</i>. Weren&#39;t found none significative differences after the inoculation. <i>Azotobacter</i> spp and <i>Azospirillum</i> spp. were typical generums of the bacterian flora in the rice plantation and in field conditions were effect of the treatment effects in the bacterian . The <i>Azotobacter</i> spp was the predominant in generum in each one of the treatments.</b></p>     <p><b>Key words:</b> <i>Oryza sativa</i>, <i>O. rufipogon</i>, <i>O. glaberrima</i> , <i>Azotobacter</i>, <i>Azospirillum</i>.</p> <hr size="1">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p>A nivel mundial el consumo de fertilizantes nitrogenados aument&oacute; de 8 a 17 kg ha<sup>-1</sup> en suelos agr&iacute;colas en un periodo de 15 años (1973-1988) y se predice que los requerimientos de fertilizantes nitrogenados aumentar&aacute;n en el futuro; sin embargo, con la tecnolog&iacute;a actual de producci&oacute;n de fertilizantes y los m&eacute;todos de aplicaci&oacute;n empleados que resultan poco eficientes, as&iacute; como el costo y la contaminaci&oacute;n ecol&oacute;gica que producen, su uso se hace m&aacute;s prohibitivo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En las dos &uacute;ltimas d&eacute;cadas se ha relevado la existencia de asociaciones de bacterias fijadoras de nitr&oacute;geno, con gram&iacute;neas forrajeras tropicales y cereales. Dentro de las caracter&iacute;sticas m&aacute;s importantes est&aacute; la interacci&oacute;n entre la disimilaci&oacute;n y asimilaci&oacute;n de nitratos y la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;genos cuya manipulaci&oacute;n debe representar la clave para complementar la fijaci&oacute;n con abonos minerales</p>     <p>El nitr&oacute;geno es el nutrimento que m&aacute;s influye en los rendimientos; se le considera un factor limitante en la producci&oacute;n del cultivo del arroz (Le&oacute;n <i>et al</i>., 1981). En las plantaciones de arroz la demanda de fertilizantes nitrogenados est&aacute; ubicada entre los rubros m&aacute;s altos de la producci&oacute;n.</p>     <p>El arroz constituye el alimento primordial para un tercio de la poblaci&oacute;n mundial. Tomando en consideraci&oacute;n el desarrollo demogr&aacute;fico actual, se estima que su producci&oacute;n mundial deber&aacute; aumentar en un 40% para el año 2020. El cultivo de arroz utiliza cantidades sustanciales de nitr&oacute;geno, de la cantidad total de nitr&oacute;geno molecular fijada cada año el 69.5% corresponde a la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica y el 15% es fijado por el hombre para convertirlo en abonos. Para fijar los 40 millones de toneladas de fertilizantes que cada año son arrojados a los campos se requiere un empleo masivo de combustibles f&oacute;siles. El encarecimiento de estos combustibles, as&iacute; como la contaminaci&oacute;n ambiental que produce la aplicaci&oacute;n masiva de los fertilizantes nitrogenados hace su uso cada d&iacute;a m&aacute;s restringido</p>     <p>El nitr&oacute;geno es el nutrimento que m&aacute;s limita la producci&oacute;n del cultivo de arroz (Le&oacute;n <i>et al</i>., 1981), por tal raz&oacute;n la demanda de fertilizantes nitrogenados corresponde al 20% de los costos en la producci&oacute;n. La tecnolog&iacute;a actual de producci&oacute;n de fertilizantes y los m&eacute;todos de aplicaci&oacute;n se califican como poco eficientes, adem&aacute;s, si se considera el costo y la contaminaci&oacute;n que producen, el uso se hace m&aacute;s restringido.</p>     <p>Al ser relevante el desconocimiento de la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno, el estudio es un reto biotecnol&oacute;gico como sustituto parcial de fertilizantes nitrogenados. Los objetivos de la investigaci&oacute;n fueron evaluar las asociaciones entre bacterias fijadoras de nitr&oacute;geno con in&oacute;culo y sin &eacute;l en l&iacute;neas &iacute;nterespec&iacute;ficas de arroz con tres dosis de nitr&oacute;geno, en un <i>Typic haplustalf</i>, y como objetivos espec&iacute;ficos se plante&oacute; cuantificar las poblaciones bacterianas <i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirillum</i> spp, y aislar y purificar las poblaciones reportadas en la cuantificaci&oacute;n.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></center></b></p>     <p>El trabajo de campo se realiz&oacute; en la hacienda Cauchitos, municipio de Ibagu&eacute;, departamento del Tolima (4&deg; 23&#39; 51&quot; Norte; 75&deg; 9&#39; 7&quot; Oeste, 979 msnm, con una humedad relativa de 64 - 86.1%, precipitaci&oacute;n de 1.450 mm año, correspondiente a bosque seco tropical - bs-t). El suelo se caracteriza f&iacute;sicamente por presentar un horizonte ap de 18 cm con textura franco arenosa, estructuras migajosas y estabilidad de agregados baja; y un segundo horizonte Bt arg&iacute;lico con concentraci&oacute;n alta de arcilla, con profundidad entre 18 cm y 54 cm, estructura prism&aacute;tica y estabilidad de agregados alta; el drenaje es lento y la retenci&oacute;n de humedad alta; qu&iacute;micamente son neutros a alcalinos, con concentraciones altas de calcio, carbonatos, potasio, magnesio y elementos menores; el contenido de azufre y materia org&aacute;nica es bajo (Castilla, 2005).</p>     <p>Se sembraron en surco (10 kg ha<sup>-1</sup>) 10 cultivares de arroz representantes de buena parte de la base gen&eacute;tica de <i>Oryza</i>, se tomaron las muestras en los siguientes tiempos: muestra inicial de suelo testigo (sin cultivo, sin in&oacute;culo y sin fertilizaci&oacute;n nitrogenada), suelo despu&eacute;s de los 60 d&iacute;as de la siembra de arroz (periodo de emergencia) y en periodo de cosecha; cada material se evalu&oacute; con inoculaci&oacute;n y sin ella, con un biofertilizante que tuvo una concentraci&oacute;n de 1 x 10<sup>10</sup> UFC/ml (Unidades Formadoras de Colonias Bacterianas) de la cepa IBUNB01 de <i>Azotobacter chroococcum</i> (registro interno del cepario del Instituto de Bioctenolog&iacute;a de la Universidad Nacional de Colombia Sede Bogot&aacute;: IBUN No.142111) y de la cepa IBUN-B02 de <i>Azospirillum amazonense</i> (registro interno IBUN No. 121111), las cuales fueron aisladas en el laboratorio de microbiolog&iacute;a del suelo del Departamento de Biolog&iacute;a de la Universidad Nacional - Bogot&aacute;. La inoculaci&oacute;n se realiz&oacute; con una concentraci&oacute;n de 1 cm<sup>3</sup> por 250 g de semilla de cada cultivar y la siembra fue inmediata.</p>     <p>Se estudiaron tres dosis de nitr&oacute;geno: 0%, 50% y 100% de 250 kg de nitr&oacute;geno/ha, la fuente utilizada fue urea granular con 46% de N. Los dem&aacute;s nutrimentos se aplicaron de acuerdo con el an&aacute;lisis del suelo con 23 kg ha<sup>-1</sup> de P<sub>2</sub>O<sub>5</sub> como fosfato diam&oacute;nico (18-46-0) y 60 kg ha<sup>-1</sup> de K<sub>2</sub>O en forma de cloruro de potasio (60% de K<sub>2</sub>O). Al suelo en cada parcela se le adicion&oacute; agua hasta saturarlo, manteni&eacute;ndolo en ese estado hasta cosecha. Se realiz&oacute; an&aacute;lisis de varianza (ANAVA) para comparar las medias de los tratamientos de acuerdo con el diseño de parcelas subdivididas donde las dosis de nitr&oacute;geno corresponden a la parcela principal, el in&oacute;culo (sin &eacute;l y con &eacute;l) a la subparcela, y los genotipos (10) a las subparcelas, con tres repeticiones. Donde hubo significanc&iacute;a se realiz&oacute; una prueba de comparaci&oacute;n de medias por DMRT (Duncan M&uacute;ltiple Range Test) y se complement&oacute; el an&aacute;lisis mediante la t&eacute;cnica de estad&iacute;stica multivariada de la correlaci&oacute;n parcial de Pearson. La disposici&oacute;n de los tratamientos se presenta en la <a href="#1a06t01">Tabla 1</a>.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="1a06t01"></a><img src="img/revistas/acag/v57n1/1a06t01.jpg"></center></p>     <p>Los an&aacute;lisis microbiol&oacute;gicos incluyeron la cuantificaci&oacute;n de poblaciones bacterianas, aislamiento, pruebas bioqu&iacute;micas. Para el recuento de las poblaciones bacterianas se utilizaron los medios de cultivo Ashby y LG y se realiz&oacute; el m&eacute;todo de conteo de diluciones Winograsdki, las estimaciones se hicieron a partir de las 24h de incubaci&oacute;n. Para identificar los g&eacute;neros se realizaron pruebas bioqu&iacute;micas y de tinci&oacute;n.</p>     <p>Se utiliz&oacute; Ashby para aislar <i>Azotobacter</i> spp y LG para <i>Azospirillum</i> spp. aplicando el m&eacute;todo de siembra de gr&aacute;nulos de suelo. Se escogieron 50 cajas de petri con bacterias de apariencia morfol&oacute;gica diferente, con el fin de realizarles las pruebas bioqu&iacute;micas, se determin&oacute; la producci&oacute;n de catalasa, H<sub>2</sub>S, licuaci&oacute;n de gelatina, hidr&oacute;lisis de almid&oacute;n. Se analizaron tres cajas por muestra, colocando 10 g de suelo en cada una. Cada bacteria se sembr&oacute; e incub&oacute; en los medios apropiados para cada actividad, al cabo de siete d&iacute;as se observaron los cambios. Se adopt&oacute; la metodolog&iacute;a descrita por Llanos y S&aacute;nchez de P. (1982) y se clasific&oacute; de acuerdo con las caracter&iacute;sticas reportadas en el manual de Bergey y Holt, 1974, y se complement&oacute; la morfolog&iacute;a con tinciones de Gram. Las pruebas bioqu&iacute;micas se realizaron a tres muestras de bacterias por cada grupo de color; se seleccionaron al azar las cajas petri con la l&iacute;nea interespecifica aislada.</p>     <p>Los datos se analizaron empleando el programa S.A.S. (Statistical An&aacute;lisis System), adem&aacute;s del an&aacute;lisis de varianza con arreglo en bloques y prueba de Duncans.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p><b>Efecto de la fertilizaci&oacute;n nitrogenada sobre las poblaciones de <i>Azotobacter</i> y <i>Azospirillum</i></b></p>     <p>En el suelo testigo la poblaci&oacute;n microbiana del g&eacute;nero <i>Azotobacter</i> fue baja (<a href="img/revistas/acag/v57n1/1a06t02.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>), pues el rango promedio de UFCB oscil&oacute; entre 10<sup>6</sup> y 10<sup>9</sup>. <i>Azospirillum</i> registr&oacute; un n&uacute;mero significativamente mayor de UFCB (1.11<sup>7</sup>). En los suelos sembrados con Cirad y <i>O. glaberrima</i> se presentaron diferencias significativas entre las UFCB de <i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirillum</i> spp, con relaci&oacute;n a los dem&aacute;s cultivares.</i></p>     <p>El n&uacute;mero de UFCB de <i>Azotobacter</i> aument&oacute; cuando se fertiliz&oacute; con 50% y 100% de N, respecto al suelo sin fertilizaci&oacute;n; <i>Azospirillum</i> spp aument&oacute; al fertilizar con 50% y disminuy&oacute; al aplicar 100% de N. Al fertilizar con 50%N las UFC de <i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirillum</i> spp en suelos sembrados con el cultivar <i>O. glaberrima</i> presentaron diferencias significativas con las dem&aacute;s l&iacute;neas interespec&iacute;ficas y cultivares. El g&eacute;nero <i>Azotobacter</i> spp predomin&oacute; sobre <i>Azospirillum</i> spp (<a href="#1a06t03">Tabla 3</a>). Al aplicar 100%N (<a href="#1a06t04">Tabla 4</a>), las UFC/gss fueron menores que en las aplicaciones de 50%N, al igual que cuando no se efectu&oacute; la fertilizaci&oacute;n; Cirad y <i>O. glaberrima</i> reportaron diferencias significativas en el n&uacute;mero de UFCB frente a los restantes cultivares, probablemente por la disminuci&oacute;n de la competencia de las bacterias por nitr&oacute;geno al haber mayor disponibilidad del nutriente en el suelo. En este caso, las bacterias no dependen de una planta hospedera para establecer la simbiosis sino que pueden adquirir el nitr&oacute;geno directamente del suelo y el carbono de las reservas de materia org&aacute;nica del suelo (Burbano, 1987).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="1a06t03"></a><img src="img/revistas/acag/v57n1/1a06t03.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="1a06t04"></a><img src="img/revistas/acag/v57n1/1a06t04.jpg"></center></p>     <p>En general, sin fertilizaci&oacute;n nitrogenada la actividad bacteriana se encontr&oacute; estable. Al aplicar la primera dosis de nitr&oacute;geno (50%N), la actividad se increment&oacute;, fue mayor la competencia y otras bacterias se desplazaron en b&uacute;squeda del nutriente, contrario a lo que sucedi&oacute; cuando existe suficiente nutriente, donde la actividad microbiana vuelve a disminuir. La variaci&oacute;n de la presencia de las bacterias nitrificantes radica en la diferencia en sensibilidad y respuesta a las pr&aacute;cticas de manejo conservacionista como la labranza m&iacute;nima, altos contenidos de materia org&aacute;nica, entre otros (Haydes,1986, citado por Rivera, 2003). La poblaci&oacute;n bacteriana tiende a dominar especialmente en capas superficiales; si se incorporan residuos al suelo se crean condiciones favorables para las bacterias. La mayor parte del reservorio de nitr&oacute;geno mineral que no est&aacute; inmovilizado en los microorganismos del suelo las plantas lo absorben y asimilan durante la etapa de crecimiento, el tiempo de persistencia del nitr&oacute;geno en el suelo es muy variable dado que la longevidad de las mol&eacute;culas que contienen nitr&oacute;geno en el suelo est&aacute; en funci&oacute;n de la solubilidad, del grado de ligamiento de los coloides del suelo y de la facilidad con que las uniones sean rotas por los microorganismos (Haydes,1986, citado por Rivera, 2003).</p>     <p>El mayor o menor n&uacute;mero de unidades formadoras de colonias bacterianas fijadoras de nitr&oacute;geno implica un incremento en la disponibilidad del nutriente en el suelo, por lo tanto esta propiedad se va a reflejar en otros par&aacute;metros como el crecimiento y la producci&oacute;n en el caso del cultivo de arroz. Uno de los mayores rubros en el cultivo de arroz es la fertilizaci&oacute;n nitrogenada. Primavesi (1982) señala que el efecto de la ra&iacute;z sobre los microorganismos es tanto mayor cuanto m&aacute;s deficiencias de nitr&oacute;geno tiene el suelo, debido a la presencia de exudados radicales, que sirven como fuente de alimento para las bacterias; as&iacute; mismo sugiere que en suelos ricos en materia org&aacute;nica el efecto desaparece, mientras que en suelos con deficiencias nutricionales es m&aacute;s fuerte.</p>     <p><b>Efecto de la inoculaci&oacute;n en los tratamientos</b></p>     <p>En cuanto a la inoculaci&oacute;n no se presentaron diferencias significativas entre tratamientos, es decir, inocular no ocasiona ning&uacute;n efecto en el n&uacute;mero de UFCB, pero cuando se inocul&oacute; y se fertiliz&oacute; la combinaci&oacute;n de los tratamientos increment&oacute; el n&uacute;mero de UFCB/gss. El n&uacute;mero de UFCB/gss de <i>Azospirillum</i> aument&oacute; en <i>O. glaberrima</i> y Cirad. Mart&iacute;nez (2001) afirma que la respuesta a la inoculaci&oacute;n en combinaci&oacute;n o por separado con <i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirillum</i> spp depende del genotipo utilizado.</p>     <p>Castilla (2005) al realizar la evaluaci&oacute;n de l&iacute;neas interespec&iacute;ficas de arroz (<i>Oryza</i> spp) a la inoculaci&oacute;n con las bacterias fijadoras de nitr&oacute;geno <i>Azotobacter chroococcum</i> y <i>Azospirillum amazonense</i> en el mismo suelo, concluye que la inoculaci&oacute;n con <i>A. chroococcum</i> y <i>A. amazonense</i> y 50% de la fertilizaci&oacute;n nitrogenada produjeron plantas de arroz m&aacute;s vigorosas, con mayor biomasa a&eacute;rea y radical; especialmente en las l&iacute;neas interespec&iacute;ficas Cirad y Cirad CT13941 logr&oacute; la mayor altura a los 60 d&iacute;as de siembra; sin embargo, a la cosecha este efecto no apareci&oacute;.</p>     <p>Durante los tres periodos de muestreo: muestra inicial de suelo testigo, muestra con suelo despu&eacute;s de los 60 d&iacute;as de la siembra de arroz y periodo de cosecha, se detect&oacute; la presencia de los dos g&eacute;neros bacterianos; sesenta d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra fue mayor el aporte del tejido muerto de la siembra anterior y de los exudados del sistema radical, debido a la mayor actividad fisiol&oacute;gica por la primera floraci&oacute;n. Como el tipo de nutrici&oacute;n de los dos g&eacute;neros bacterianos requieren materia org&aacute;nica preformada como fuente de energ&iacute;a y carbono (Burbano, 1989), estos dos aspectos y las propiedades f&iacute;sicas y qu&iacute;micas de los suelos podr&iacute;an explicar la abundancia de los dos g&eacute;neros. (<a href="#1a06f01">Figura 1</a>)</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="1a06f01"></a><img src="img/revistas/acag/v57n1/1a06f01.jpg"></center></p>     <p>Los datos obtenidos a partir del muestreo realizado 60 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra no presentaron variaciones significativas entre tratamientos; los cultivares que mejor respondieron a los tratamientos respecto a las UFCB fueron Fedearroz 50, <i>O. glaberrima</i> y <i>O. rufipogon</i>, con valores que oscilaron entre 1.42x10<sup>8</sup> y 1.97x10<sup>8</sup> respectivamente. La poblaci&oacute;n de <i>Azotobacter</i> spp fue similar durante los dos per&iacute;odos de muestreo, en todos los tratamientos; <i>Azospirillum</i> spp report&oacute; variaciones poblacionales. Los cultivares <i>O. rufipogon</i>, <i>O. glaberrima</i> y Cirad continuaron manteniendo los mejores est&aacute;ndares poblacionales de los dos g&eacute;neros. Las mayores poblaciones de UFCB se presentaron en la aplicaci&oacute;n 50%N. Mart&iacute;nez (2001) dice que existe positiva y marcada influencia del nitr&oacute;geno sobre los rendimientos de arroz y que este efecto es mayor cuando se fracciona en dos aplicaciones; la mitad a los 45 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra, igualmente en la siembra, el mejor rendimiento se obtuvo con niveles de 120, 80 y 40 kg/ha de N, P<sub>2</sub>O<sub>5</sub> y K<sub>2</sub>O respectivamente incorporado al suelo, obteniendo una producci&oacute;n de 7.832 kg/ha, contra el testigo 3.558 kg /ha.</p>     <p>En la &eacute;poca de cosecha <i>Azotobacter</i> registr&oacute; entre 1.34x10<sup>7</sup> UFCB/gss y 1.44x10<sup>8</sup>UFCB/gss. <i>O. glaberrima</i> fue el cultivar que mejor respondi&oacute; a los tratamientos. Esto se debe probablemente a las caracter&iacute;sticas genot&iacute;picas de la l&iacute;nea y al efecto positivo de los tratamientos sobre ella. <i>Azospirillum</i> spp report&oacute; valores desde 1.33x10<sup>7</sup>UFCB/gss hasta 1.79x10<sup>8</sup> UFCB/gss. El cultivar Cirad respondi&oacute; mejor a los tratamientos.</p>     <p><b>G&eacute;nero bacteriano predominante</b></p>     <p><i>Azotobacter</i> predomin&oacute; sobre <i>Azospirillum</i>; en <i>Azotobacter</i> spp no se observ&oacute; la presencia de quistes, los cuales se forman cuando las condiciones de vida se tornan desfavorables para el desarrollo continuo de las bacterias (Correa, 2001). Las especies del g&eacute;nero <i>Azospirillum</i> son menos competitivas en la ocupaci&oacute;n de sustratos ya colonizados por <i>Azotobacter</i> spp (Dobereiner, 1975).</p>     <p>En general en los suelos arroceros de la meseta de Ibagu&eacute; la mayor proporci&oacute;n de porosidad est&aacute; constituida por microporos en la rizosfera, la constante liberaci&oacute;n de carbono y las bajas tensiones de ox&iacute;geno conforman un ambiente favorable para los fijadores de nitr&oacute;geno (D&iacute;az, 2002). Burbano (1989) dice que los exudados producidos por las gram&iacute;neas estimulan el crecimiento de las bacterias, especialmente las fijadoras de nitr&oacute;geno. Los sistemas de asociaciones m&aacute;s comunes son <i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirillum</i> spp.</p>     <p><b>Aislamientos</b></p>     <p>Se realizaron 2.260 aislamientos de <i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirillum</i> spp, se registraron 55 cepas y 20 se identificaron hasta especie. El 78% present&oacute; forma de coco y 22% de bacilo. Se identificaron las formas caracter&iacute;sticas de <i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirillum</i> spp, tales como c&eacute;lulas con forma de bast&oacute;n y redonda unas veces alargadas, cortas y agrupadas en estreptobacilos. De 39 cepas, 20 fueron Gram negativas y 18 Gram positivas, incluyendo los bacilos. En la rizosfera predominan las Gram (-) porque presentan elevadas tasas de crecimiento, en respuesta a la adici&oacute;n de amino&aacute;cidos y az&uacute;cares solubles (Siquiera y Franco, 1988; Cardoso, 1992).</p>     <p>De 60 muestras bacterianas, repartidas en 15 de acuerdo con el grupo de color, y realizando tres repeticiones por muestra, 90% fueron catalasa positiva y 60% degradaban almidones. Respecto a la producci&oacute;n de &aacute;cido sulfh&iacute;drico a partir de peptona 76% reaccionaron positivamente y 30% produjeron ureas 93% fueron aer&oacute;bicas, lo cual est&aacute; muy ligado a organismos que tiene habilidad para producir catalasa (<a href="#1a06f02">Figura 2</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="1a06f02"></a><img src="img/revistas/acag/v57n1/1a06f02.jpg"></center></p>     <p>La respiraci&oacute;n de la poblaci&oacute;n aer&oacute;bica se incrementa con el contenido de agua del suelo y logra el m&aacute;ximo cuando el porcentaje del espacio poroso lleno de agua alcanza 60%, la actividad de los microorganismos aer&oacute;bicos declina por encima de este 60% toda vez que el agua adicional aparentemente limita la difusi&oacute;n del ox&iacute;geno a trav&eacute;s del suelo; el estado de agua en los suelos superficiales sometidos a no labranza resulta mejor para la actividad microbial que el de suelos sometidos a la labranza convencional (Burbano, 1989). Respecto a la flora bacteriana, predominan cocos, gram (-), aer&oacute;bicos con alta actividad de catalasa, amilasa y proteasa y muy baja actividad de ureasa, lo cual lleva a pensar que en el suelo estudiado puedan existir disturbios en el ciclo del nitr&oacute;geno, que pueden conducir a incrementar los gastos en este elemento o a ineficiencia en el suministro a la planta; especialmente a partir de fertilizaci&oacute;n qu&iacute;mica (D&iacute;az, 2002).</p>     <p><b>Cuantificaci&oacute;n bacteriana total</b></p>     <p>En este trabajo la poblaci&oacute;n total fluctu&oacute; entre 1.33 *10<sup>7</sup> y 1.87 *10<sup>8</sup> UFCB/gss, registr&aacute;ndose los mayores valores en las l&iacute;neas <i>O. rufipogun</i>, <i>O. glaberrima</i> y CIRAD. La comunidad microbiana se estim&oacute; en aproximadamente 10<sup>6</sup> a 10<sup>9</sup> UFC/gss, variando de acuerdo con el m&eacute;todo de conteo o el tipo de manejo del suelo. Las bacterias pueden llegar a presentar entre 25-30% de la biomasa microbiana total (D&iacute;az, 2002).</p>     <p>Las colonias de <i>Azospirillum brasilense</i> y <i>A. lipoferum</i> usualmente aparecieron en forma de un papelillo sobre la superficie entre los 3 y 5 d&iacute;as, despu&eacute;s de 2 semanas fueron pequeñas de aspecto blanco y seco; al secarse las colonias se tornaron rosa. <i>A. brasilense</i> son bacterias motiles y se desplazan en espiral. La forma de <i>A. lipoferum</i> inicialmente fue indistinguible y se tornaron de un color azul por estar en un medio alcalino, el cual ocasiona cambios y hace que la bacteria adopte una forma pleom&oacute;rfica. Las colonias de <i>A. amazonense</i> se formaron despu&eacute;s de cinco d&iacute;as en un medio de N<sub>2</sub>, las colonias fueron blancas y de 5 mm de largo. Las colonias de <i>A. chroococcum</i> aparecieron despu&eacute;s de 24 horas de incubaci&oacute;n a 30&deg;C, inicialmente fueron blancas, pero despu&eacute;s de 3 a 5 d&iacute;as se tornaban caf&eacute; oscuro. Las colonias de <i>A. vinelandii</i> fueron similares pero no se tornaron oscuras; las de <i>A. paspali</i> presentaron motilidad por flagelos, las cuales pueden alcanzar 10-15 µum de longitud (Dobereiner, 1975).</p>     <p>Las colonias de <i>A. vinelandii</i> inicialmente fueron blancas y pequeñas, para luego alargarse y tornarse de color caf&eacute;; seg&uacute;n Dobereiner (1975), las colonias inicialmente son blancas por la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> y pueblan r&aacute;pidamente, posiblemente por los polisac&aacute;ridos capsulares de la bacteria; estas colonias se extienden para proteger el O<sub>2</sub>. El aislamiento de <i>A. paspali</i> se incub&oacute; f&aacute;cilmente a 35&deg;C por siete d&iacute;as. Las colonias que fijaron nitr&oacute;geno fueron de color beige luminoso, las que no lo hicieron fueron de color caf&eacute;. Despu&eacute;s de 4 a 10 d&iacute;as de incubaci&oacute;n a 30&deg;C, <i>A. beijerinckii</i> form&oacute; pequeñas colonias blancas que se extendieron r&aacute;pida y fijamente.</p>     <p>Las colonias de <i>Azotobacter chroococcum</i>, en el medio de cultivo Ashby manitol, presentaron a los tres d&iacute;as las siguientes caracter&iacute;sticas: pardo amarillentas, trasl&uacute;cidas, circulares, con bordes irregulares y consistencia elevada; a los tres d&iacute;as se tornaron de color caf&eacute; a negro, brillantes, circulares, con bordes irregulares, consistencia viscosa y sin elevaci&oacute;n. La presencia de <i>Azotobacter</i> spp se verific&oacute; por el crecimiento de la bacteria en el medio espec&iacute;fico y se observaron crecimientos con mucosidad alrededor de los gr&aacute;nulos (Novo, 1988).</p>     <p>Las colonias de <i>A. vinelandii</i> se diferenciaron de <i>A. chroococcum</i> porque producen un pigmento verde fluorescente y c&eacute;lulas pequeñas.</p>     <p><b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="verdana" size="3">CONCLUSIONES</font></center></b></p>     <p>Los mayores valores de unidades formadoras de colonias de <i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirillum</i> spp se presentaron en suelos sembrados con las l&iacute;neas <i>O. rufipogon</i>, <i>O. glaberrima</i> y Cirad.</p>     <p><i>Azotobacter</i> spp y <i>Azospirillum</i> spp son g&eacute;neros presentes de la flora bacteriana en suelos cultivados con arroz. <i>Azotobacter</i> spp predomin&oacute; en todos los tratamientos.</p>     <p>Se identificaron las siguientes especies: <i>Azospirillum brasilence</i>, <i>A. lipoferum</i>, <i>A. amazonense</i> y del g&eacute;nero <i>Azotobacter</i> se identificaron las especies <i>A. chroococcum</i>, <i>A. vinelandii</i> y <i>A. paspali</i>.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">AGRADECIMIENTOS</font></center></b></p>     <p>El art&iacute;culo se deriv&oacute; del Trabajo de Maestr&iacute;a de la primera autora, financiado por la Federaci&oacute;n Nacional de Arroceros, Fedearroz; dentro del marco del Macroproyecto Evaluaci&oacute;n de l&iacute;neas interespec&iacute;ficas de arroz (<i>Oryza Spp</i>) a la inoculacion con las bacterias fijadoras de nitr&oacute;geno <i>Azotobacter chroococcum</i> y <>Azospirillum amazonense</i> en un <i>Typic haplustalf</i> de la meseta de Ibagu&eacute;, Colombia.</p>     <p>Extendidos agradecimientos para el equipo del laboratorio de microbiolog&iacute;a de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Palmira (Valle del Cauca) y el laboratorio de microbiolog&iacute;a del suelo de Corpoica Tibaitat&aacute; (Cundinamarca). Colombia.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></center></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1. Bergey y Holt., 1974. Manual Bergey's of determinative bacteriology. 8<sup>th</sup> ed:  Baltimore, 967p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-2812200800010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Burbano, H. 1989. El suelo: una visi&oacute;n sobre sus componentes bioorg&aacute;nicos. Pasto: Universidad de Nariño, 447p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-2812200800010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Cardoso, F. 1999. Rizosfera. <i><u>In</u></i>: Sociedad Brasilera de La Ciencia del Suelo(ed). Microbiologia do solo. Campinas, p 499&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-2812200800010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Castilla, L. A. 2005. Evaluaci&oacute;n de l&iacute;neas interespec&iacute;ficas de arroz (<i>Oryza</i> spp) a la inoculaci&oacute;n con las bacterias fijadoras de nitr&oacute;geno <i>Azotobacter chroococcum</i> y <i>Azospirillum amazonense</i> en un <i>Typic haplustalf</i> de la meseta de Ibagu&eacute;. Colombia. Tesis (Ph.D. suelos y aguas). Universidad Nacional de Colombia. Palmira, 156p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-2812200800010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Correa, L. 2001. Evaluaci&oacute;n preliminar de la actividad microbial en suelos con alta saturaci&oacute;n de magnesio y residualidad de plaguicidas en el valle del r&iacute;o Cauca. Universidad Nacional de Colombia - Sede Palmira. Tesis de grado, 54 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-2812200800010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. D&iacute;az, A. C. 2002. Estimaci&oacute;n de la flora fungosa y bacteriana en suelo del norte del valle cultivados con maracuy&aacute; <i>Passiflora edulis</i> var. <i>flavicarpa</i> con diferente manejo agron&oacute;mico, edad y estado sanitario. Universidad Nacional de Colombia - Sede Palmira. Tesis de grado, 47 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-2812200800010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Dobereiner, J. 1975. Nonsymbiotic nitrogen fixing bacteria in tropical soils. <i>Plant Soil</i>. Special volumen p. 457-470.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-2812200800010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Mart&iacute;nez, C. 2001. Evaluaciones al cultivo del arroz. Ciat, 20 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-2812200800010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Novo, R. 1988. Vida Microbiana en el Suelo. Cuba: Editorial Puebla y Educaci&oacute;n. 523 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-2812200800010000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Le&oacute;n, <i>et al</i>., 1981. Factores que afectan la respuesta a la fertilizaci&oacute;n nitrogenada del arroz. Ciat. 25p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-2812200800010000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Llanos, C.; S&aacute;nchez M. 1982. Experimentos con microorganismos. Palmira: Universidad Nacional de Colombia. 35 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-2812200800010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Primavesi, A. 1982. Manejo ecol&oacute;gico del suelo. La agricultura en regiones tropicales. Buenos Aires: El Ateneo. 499 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-2812200800010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Rivera, M. 2003. Caracterizaci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de la respuesta al nitr&oacute;geno en sistemas de monocultivo de rotaci&oacute;n, utilizando los modelos CERES-RICE y CERES – MAIZE en oxisoles de los Llanos Orientales, Universidad Nacional de Colombia-Sede Palmira.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-2812200800010000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Siqueira, J.; Franco, A.1988. Biotecnolog&iacute;a do solo: Fundamentos e perspectivas. Sao Paulo: Gr&aacute;fica Nagy. 235 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-2812200800010000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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