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<publisher-name><![CDATA[Universidad Nacional de Colombia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Acción de la 5'azacitidina en cromosomas de células linfocitarias de bovinos]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Zaragoza - España Facultad de Veterinaria Laboratorio de Citogenética y Genética Molecular]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0120-28122008000100009&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0120-28122008000100009&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0120-28122008000100009&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[La azacitidina (5-azaC) es una sustancia que actúa inhibiendo la metilación del ADN, es utilizada en experiencias de clonación, transgénesis por transferencia nuclear y estudios de fragilidad cromosómica. Se ha observado la manifestación de diversas patologías en animales domésticos nacidos de experiencias de clonación. Ellas estarían asociadas a una inexacta reprogramación nuclear relacionada con fenómenos epigenéticos de metilación del ADN. En el presente trabajo se realizó una curva de inducción con diferentes concentraciones finales de 5-azaC (0 uM, 5 uM, 10 uM, 20 uM, 50 uM y 70 uM) con el objetivo de estudiar los efectos sobre la estructura cromosómica en cultivos linfocitarios bovinos. Se utilizó la técnica de macrocultivo para análisis cromosómico a partir de sangre de un bovino macho (Bos taurus, Holstein Friesian). Se analizó un total de 50 placas metafásicas por tubo de cultivo y se encontraron diferencias significativas (p<0.01) en cuanto a las fracturas del cromosoma X en el cultivo control frente al cultivo con mayor concentración de 5-azaC. El cromosoma Y no presentó fracturas. En los cultivos con concentraciones de 50 uM y 70 uM se observó descondensación cromosómica (12% y 16%) y fracturas centroméricas en autosomas (2% y 4%).]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Azacytidine (5-azaC) is a substance that inhibits the metilation of DNA, being used in cloning experiments, nuclear transference transgenesis and in chromosomal fragility studies. The manifestation of diverse pathologies has been observed in domestic animals born from cloning experiments. These would be associated to an incorrect nuclear reprogramation related to epigenetic metilation phenomena of the DNA. In the present work an induction curve with different final concentrations of 5-azaC (0 uM, 5 uM, 10 uM, 20 uM, 50 uM and 70 uM) were carried out, with the objective of studying the effects on chromosome structure in bovine lymphocyte cultures. The macroculture technique was used for chromosomic analysis, from a blood sample of a male bovine (Bos taurus, Holstein Friesian). A total of 50 metaphases were analyzed from each culture. Significative differences (p<0.01) were found regarding the break points of chromosome X in the control culture with respect to the culture with higher concentration of 5-azaC. Chromosome Y did not show break points. The cultures with higher concentration of 5-azaC (50 uM and 70 uM) presented chromosomic decondensation (12% and 16%) and autosomic centromeric break points (2% and 4%).]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="4">Acci&oacute;n de la 5&#39;azacitidina en cromosomas de c&eacute;lulas linfocitarias de bovinos</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">5&#39;azacytidine effect in bovine lymphocytes chromosomes</font></center></b></p>     <p><b>    <center>Silvia Llamb&iacute;,<sup>1</sup> Betina Coppola,<sup>2</sup> Rosa Gagliardi,<sup>3</sup> Teresa Tejedor,<sup>4</sup> Mar&iacute;a V. Arruga<sup>5</sup></center></b></p>     <p>    <center><sup>1-3</sup>&aacute;rea Gen&eacute;tica. Facultad de Veterinaria. Universidad de la R&eacute;publica Oriental del Uruguay. Montevideo. A. Lasplaces 1550, CP 11600. <a href="mailto:silvia.llambi@gmail.com">silvia.llambi@gmail.com</a> <sup>4-5</sup>Laboratorio de Citogen&eacute;tica y Gen&eacute;tica Molecular. Facultad de Veterinaria. Universidad de Zaragoza - España. Miguel Servet 177, CP 50013</center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>REC: 25-06-07. ACEPT.: 29-07-07</center></p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>La azacitidina (5-azaC) es una sustancia que act&uacute;a inhibiendo la metilaci&oacute;n del ADN, es utilizada en experiencias de clonaci&oacute;n, transg&eacute;nesis por transferencia nuclear y estudios de fragilidad cromos&oacute;mica. Se ha observado la manifestaci&oacute;n de diversas patolog&iacute;as en animales dom&eacute;sticos nacidos de experiencias de clonaci&oacute;n. Ellas estar&iacute;an asociadas a una inexacta reprogramaci&oacute;n nuclear relacionada con fen&oacute;menos epigen&eacute;ticos de metilaci&oacute;n del ADN. En el presente trabajo se realiz&oacute; una curva de inducci&oacute;n con diferentes concentraciones finales de 5-azaC (0 uM, 5 uM, 10 uM, 20 uM, 50 uM y 70 uM) con el objetivo de estudiar los efectos sobre la estructura cromos&oacute;mica en cultivos linfocitarios bovinos. Se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de macrocultivo para an&aacute;lisis cromos&oacute;mico a partir de sangre de un bovino macho (<i>Bos taurus</i>, Holstein Friesian). Se analiz&oacute; un total de 50 placas metaf&aacute;sicas por tubo de cultivo y se encontraron diferencias significativas (p&lt;0.01) en cuanto a las fracturas del cromosoma X en el cultivo control frente al cultivo con mayor concentraci&oacute;n de 5-azaC. El cromosoma Y no present&oacute; fracturas. En los cultivos con concentraciones de 50 uM y 70 uM se observ&oacute; descondensaci&oacute;n cromos&oacute;mica (12% y 16%) y fracturas centrom&eacute;ricas en autosomas (2% y 4%).</b></p>     <p><b>Palabras claves:</b> 5&#39;-azacitidina C, cromosomas, bovino.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p><b>Azacytidine (5-azaC) is a substance that inhibits the metilation of DNA, being used in cloning experiments, nuclear transference transgenesis and in chromosomal fragility studies. The manifestation of diverse pathologies has been observed in domestic animals born from cloning experiments. These would be associated to an incorrect nuclear reprogramation related to epigenetic metilation phenomena of the DNA. In the present work an induction curve with different final concentrations of 5-azaC (0 uM, 5 uM, 10 uM, 20 uM, 50 uM and 70 uM) were carried out, with the objective of studying the effects on chromosome structure in bovine lymphocyte cultures. The macroculture technique was used for chromosomic analysis, from a blood sample of a male bovine (<i>Bos taurus</i>, Holstein Friesian). A total of 50 metaphases were analyzed from each culture. Significative differences (p&lt;0.01) were found regarding the break points of chromosome X in the control culture with respect to the culture with higher concentration of 5-azaC. Chromosome Y did not show break points. The cultures with higher concentration of 5-azaC (50 uM and 70 uM) presented chromosomic decondensation (12% and 16%) and autosomic centromeric break points (2% and 4%).</b></p>     <p><b>Key words:</b> 5&#39;-azacytidine C, chromosomes, cattle.</p> <hr size="1">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p>La azacitidina (5-azaC) es un an&aacute;logo de la pirimidina que act&uacute;a inhibiendo la enzima ADN metiltransferasa y afecta la metilaci&oacute;n del ADN. En humanos es utilizada como f&aacute;rmaco antineopl&aacute;sico en el tratamiento de leucemias (Niessa y Guerrero, 2004).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En medicina veterinaria la 5-azaC se ha utilizado para estudiar los efectos de la hipometilaci&oacute;n sobre la tasa de implantaci&oacute;n de blastocistos bovinos producto de trasplante nuclear (Jones <i>et al</i>., 2001). Como resultado de experiencias de clonaci&oacute;n y transg&eacute;nesis por transferencia nuclear se ha observado la manifestaci&oacute;n de diversas patolog&iacute;as en animales dom&eacute;sticos (diabetes, cardiomiopat&iacute;as, distocia, malformaciones, etc.) (Piedrahita <i>et al</i>., 2004). Ellas estar&iacute;an asociadas a una inexacta reprogramaci&oacute;n nuclear. Esta reprogramaci&oacute;n consiste en una serie de modificaciones del ADN de tipo epigen&eacute;tico donde uno de los fen&oacute;menos m&aacute;s destacables es la metilaci&oacute;n. Dicha reprogramaci&oacute;n nuclear requiere cambios dr&aacute;sticos en la expresi&oacute;n g&eacute;nica con reorganizaci&oacute;n de la cromatina. La 5-azaC citol&oacute;gica es capaz de remodelar la cromatina y se constituye en un inductor qu&iacute;mico utilizado para estudiar la presencia de sitios fr&aacute;giles en cromosomas metaf&aacute;sicos. Estos sitios fr&aacute;giles representar&iacute;an secuencias de ADN de replicaci&oacute;n tard&iacute;a en donde se producir&iacute;a una incompleta condensaci&oacute;n de la cromatina y se manifiesta citol&oacute;gicamente como fracturas y discontinuidades (Zlotorynski <i>et al</i>., 2003). En humanos se ha observado una inhibici&oacute;n de la condensaci&oacute;n de la heterocromatina constitutiva en los cromosomas 1, 9, 15, 16, X e Y, as&iacute; como la presencia de cromosomas “pulverizados” cuando la 5-azaC es incorporada en diferentes dosis durante las &uacute;ltimas horas del cultivo de c&eacute;lulas linfocitarias (Haaf y Schmid, 2000). En c&eacute;lulas de rat&oacute;n la utilizaci&oacute;n de distintas concentraciones de 5-azaC (4 a 6 uM) produjo alteraciones en la separaci&oacute;n centrom&eacute;rica y descondensaci&oacute;n de la heterocromatina pericentrom&eacute;rica (Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 2001).</p>     <p>Smeets <i>et al</i>. (1994) observaron que al incubar l&iacute;neas de c&eacute;lulas pro-B humanas normales con 5-azaC se incrementaba la frecuencia de rearreglos cromos&oacute;micos en la heterocromatina pericentrom&eacute;rica. En distintas especies de mam&iacute;feros, incluido el bovino, la 5-azaC produjo la descondensaci&oacute;n del cromosoma X inactivo salvo en la regi&oacute;n media del brazo q del X y en la regi&oacute;n pericentrom&eacute;rica (Haff y Schmid, 2000).</p>     <p>La utilizaci&oacute;n de drogas que act&uacute;an sobre la estructura de la cromatina nos permite comenzar a dilucidar aspectos poco conocidos sobre c&oacute;mo el ADN es condensado en c&eacute;lulas en estadio de metafase. En el presente trabajo se realiz&oacute; una curva de inducci&oacute;n con diferentes concentraciones de la droga 5-azaC con el objetivo de estudiar efectos de fragilidad y descondensaci&oacute;n cromos&oacute;mica en placas metaf&aacute;sicas de cultivos linfocitarios en bovinos.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></center></b></p>     <p>Se realiz&oacute; extracci&oacute;n de 10 cm<sup>3</sup> de sangre perif&eacute;rica (vena yugular) con jeringa est&eacute;ril heparinizada a un bovino macho de la raza Holstein Friesian (ternero) proveniente del campo experimental de la Facultad de Veterinaria de la Universidad de Uruguay.</p>     <p>Se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de macrocultivo para an&aacute;lisis cromos&oacute;mico linfocitario a partir de 0.2 cm<sup>3</sup> de sangre entera en seis tubos est&eacute;riles que conten&iacute;a cada uno 5ml de medio de cultivo est&aacute;ndar completo, RPMI 1640 suplementado con 20% de suero fetal bovino y fitohemaglutinina M como estimulante mit&oacute;tico de los linfocitos T (Llamb&iacute;, 2002). Las c&eacute;lulas se cultivaron durante 72 horas a 38&deg;C en estufa de cultivo. A las 65 horas de cultivo se adicion&oacute; el inductor 5-azaC a concentraciones finales de 5 uM, 10 uM, 20 uM, 50 uM y 70 uM. Se mantuvo un tubo de cultivo control (0 uM). Dos horas antes del sacrificio celular se adicion&oacute; 0.8 cm<sup>3</sup> de colchicina (4ug/ml), posteriormente las c&eacute;lulas se sometieron a un choque hipot&oacute;nico de KCl (0,075 M) durante 20 minutos para luego pasar a la etapa de fijaci&oacute;n en metanol: &aacute;cido ac&eacute;tico (3:1).</p>     <p>Las preparaciones se realizaron mediante la t&eacute;cnica de goteo a la llama (metanol 70&deg;) y se utiliz&oacute; el colorante Giemsa para la tinci&oacute;n de las placas metaf&aacute;sicas. Las observaciones de los cromosomas se llevaron a cabo en un microscopio &oacute;ptico binocular (Olympus BHA).</p>     <p>Para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico de los datos se utiliz&oacute; el test de chi-cuadrado en tablas de contingencia de 2 x 2 para un grado de libertad (Beiguelman, 1991).</p>     <p><b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="verdana" size="3">RESULTADOS</font></center></b></p>     <p>Del an&aacute;lisis citogen&eacute;tico realizado a los seis tubos de cultivo se estudi&oacute; un total de 300 placas metaf&aacute;sicas (50 placas metaf&aacute;sicas por tubo de cultivo) que corresponden al n&uacute;mero normal cromos&oacute;mico de un <i>Bos taurus</i> macho (2n=60,XY) (<a href="#1a09t01">Tabla 1</a>). En los cultivos sometidos a la acci&oacute;n de la 5-azaC se contabiliz&oacute; un total de 15 fracturas en el cromosoma sexual X (93.3% en el brazo q y 6.7% en el brazo p), mientras que en el cultivo control se observ&oacute; una sola fractura en el brazo q del cromosoma sexual X (2%). Se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas (p&lt;0.01) en cuanto a las fracturas del cromosoma X en el cultivo control frente al cultivo con mayor concentraci&oacute;n de 5- azaC (70 uM). El cromosoma Y no present&oacute; fracturas en los cultivos estudiados. En los cultivos sometidos a las concentraciones de 50 uM y 70 uM se registraron placas metaf&aacute;sicas con grados de descondensaci&oacute;n cromos&oacute;mica y fracturas centrom&eacute;ricas en autosomas (<a href="#1a09t01">Tabla 1</a>, <a href="#1a09f01">Figura 1</a>).</p>     <p>    <center><a name="1a09t01"></a><img src="img/revistas/acag/v57n1/1a09t01.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="1a09f01"></a><img src="img/revistas/acag/v57n1/1a09f01.jpg"></center></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p>La metilaci&oacute;n del ADN es un fen&oacute;meno epigen&eacute;tico esencial para el control de la actividad g&eacute;nica en c&eacute;lulas normales y tumorales. Este proceso incluye la inactivaci&oacute;n de uno de los cromosomas sexuales X de la hembra de los mam&iacute;feros, el imprinting gen&oacute;mico, estabilidad cromos&oacute;mica, silenciamiento de retrotransposones, inactivaci&oacute;n de genes en c&aacute;ncer (Dean <i>et al</i>., 2001). En los &uacute;ltimos años en tecnolog&iacute;a de la reproducci&oacute;n se ha introducido el uso de la 5-azaC como sustancia inductora de desprogramaci&oacute;n nuclear en experimentos de clonaci&oacute;n embrionaria a partir de trasplantes nucleares. Enrigth <i>et al</i>. (2003) en clonaci&oacute;n de embriones bovinos expuestos a concentraciones de 0.08 a 0.3 uM de 5-azaC observaron que se produc&iacute;a una disminuci&oacute;n del desarrollo embrionario.</p>     <p>Llamb&iacute; y Nuñez (2007) con la utilizaci&oacute;n de una concentraci&oacute;n de 4.92 uM de 5-azaC identificaron un efecto significativo de inducci&oacute;n de fragilidad en el cromosoma sexual X y autosomas en cultivos linfocitarios de una hembra bovina normal. Danielak-Czech y Slota (2004) emplearon concentraciones de 50 ug/ml (205 uM) en cultivos linfocitarios de bovinos normales y bovinos con problemas reproductivos y observaron una diferencia estad&iacute;sticamente significativa de expresi&oacute;n de fragilidad en el cromosoma sexual X (regi&oacute;n Xq2.4 y Xq3.1) en estos &uacute;ltimos. Estos autores sugieren la existencia de una regi&oacute;n inestable del cromosoma X donde se estar&iacute;an expresando inadecuadamente genes asociados a caracter&iacute;sticas reproductivas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En el presente trabajo con concentraciones menores encontramos que el 93.3% de las fracturas inducidas se localizaron en el brazo Xq apoyando la existencia de regiones de inestabilidad en dicho brazo cromos&oacute;mico. Concentraciones superiores del f&aacute;rmaco (rango de 5uM a 70uM) en c&eacute;lulas linfocitarias no mostraron inhibici&oacute;n de la divisi&oacute;n celular, aunque con las concentraciones de 50 y 70 uM se observ&oacute; un n&uacute;mero significativo de c&eacute;lulas con cromatina decondensada.</p>     <p>Zlotorynski <i>et al</i>. (2003) dicen que si bien el mecanismo de expresi&oacute;n de fragilidad cromos&oacute;mica inducida por 5-azaC no est&aacute; bien entendido, se puede atribuir a secuencias de ADN ricas en bases C (citosinas).</p>     <p>Monteagudo <i>et al</i>. (1999), mediante la utilizaci&oacute;n de sondas del trinucle&oacute;tido CGG, determinaron señales de hibridizaci&oacute;n en la regi&oacute;n medial del brazo q, regi&oacute;n pericentrom&eacute;rica y telom&eacute;rica del BTAX. Dichas regiones coinciden con las regiones de fragilidad cromos&oacute;mica identificadas mediante la utilizaci&oacute;n de otros inductores como la afidicolina (Llamb&iacute;, 2002, Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 2002). El hecho de encontrar regiones de fragilidad comunes al utilizar distintos inductores, afidicolina (inhibidor de la replicaci&oacute;n del ADN) (Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 2002) y con 5-azaC (Llamb&iacute; y Nuñez, 2007) reafirma la idea de revisar la clasificaci&oacute;n de los sitios fr&aacute;giles en funci&oacute;n solo al tipo de inductor y su frecuencia en las poblaciones. Seg&uacute;n Zlotorynski <i>et al</i>. (2003) deber&iacute;amos tener en cuenta la naturaleza molecular de los mismos (contenido de repetidos CG, secuencias ricas en bases AT) debido a la formaci&oacute;n de estructuras secundarias con predisposici&oacute;n a una inadecuada organizaci&oacute;n de la cromatina. Este aspecto ha sido observado en el presente trabajo al obtener figuras de descondensaci&oacute;n cromos&oacute;mica bajo los efectos del inductor utilizado.</p>     <p>En humanos Haff y Schmid (2000) utilizaron sustancias que se ligan a secuencias de ADN ricas en bases A-T y observaron fuerte descondensaci&oacute;n a lo largo del cromosoma sexual Y. En el presente trabajo al encontrar estabilidad de dicho cromosoma se apoyar&iacute;a la naturaleza molecular de secuencias ricas en A-T en el mismo y por ende una no afectaci&oacute;n de la cromatina por un inductor como la 5-aza C que act&uacute;a durante la replicaci&oacute;n del ADN reemplazando citocinas.</p>     <p>Rodr&iacute;guez <i>et al</i>. (2001) emplearon 5-azaC en cultivos linfocitarios de rat&oacute;n y observaron descondensaci&oacute;n de cromatina pericentrom&eacute;rica con alteraci&oacute;n en la separaci&oacute;n centrom&eacute;rica durante la meta-anafase. Estos autores proponen las alteraciones epigen&eacute;ticas como un factor m&aacute;s en la g&eacute;nesis de aneuploidias. En este trabajo hemos observado que las regiones cromos&oacute;micas m&aacute;s sensibles en los autosomas han sido las pericentrom&eacute;ricas, lo que podr&iacute;a aportar informaci&oacute;n al hecho de que en bovinos el tipo de rearreglo cromos&oacute;mico sean las fusiones c&eacute;ntricas.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">CONCLUSIONES</font></center></b></p>     <p>Si bien se conoce la funci&oacute;n de la 5-azaC, poco se han investigado los efectos en cromatina en mam&iacute;feros. Debemos tener en cuenta la posible relaci&oacute;n con la generaci&oacute;n de alteraciones cromos&oacute;micas cuando se utiliza como droga desprogramadora de la impronta gen&eacute;tica y la generaci&oacute;n de patolog&iacute;as en individuos producto de estas nuevas tecnolog&iacute;as reproductivas.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">AGRADECIMIENTOS</font></center></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A Iris Hern&aacute;ndez por su asistencia en la preparaci&oacute;n t&eacute;cnica de materiales de laboratorio. Este trabajo fue financiado por CIDEC, CSIC-Universidad de la Rep&uacute;blica Oriental de Uruguay. Al Grupo de Investigaci&oacute;n en Recursos Fitogen&eacute;ticos Neo-tropicales de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Palmira,organizador del II Simposio Latinoamericano de Citogen&eacute;tica y Evoluci&oacute;n (Palmira, Valle del Cauca, Colombia, 15-18 agosto de 2007).</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></center></b></p>     <!-- ref --><p>1. Beiguelman, B. 1991. Curso pr&aacute;tico de bioestad&iacute;stica. <I>Rev Bras Genet</i>. 224: 1-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-2812200800010000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Danielak-Czech, B.; Slota, E. 2004. Mutagen induced chromosome instability in farm animals. <i>J. Anim Feed Sci</i>. 13: 257-267.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-2812200800010000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Enright, B.; Kubota, C.; Yang, X.; Tian, X. 2003. Epigenetic characteristics and development of embryos cloned from donor cells treated by trichostatin A or 5-aza-2&#39;-deoxycytidine. <i>Biol Reprod</i>. 69(3): 896-901.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-2812200800010000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Haaf, T.; Schmid, M. 2000. Experimental condensation inhibition in constitutive and facultative heterochromatin of mammalian chromosomes. <i>Cytogenet Cell Genet</i>. 91:113-123.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-2812200800010000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Jones, K.L.; Hill, J.; Shin, T.Y.; Lui, L.; Westhusin, M. 2001. DNA hypomethylation of karyoplasts for bovine nuclear transplantation. <i>Mol Reprod Dev</i>. 60(2):208-13.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-2812200800010000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Llamb&iacute;, S.; N&uacute;ñez, R. 2007. Identificaci&oacute;n de fragilidad cromos&oacute;mica mediante 5&#39;azacitidina en linfocitos de bovinos. <i>Arch Med Vet</i>. 39 (1): 63-66.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-2812200800010000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Llamb&iacute;, S. 2002. Estudios citogen&eacute;ticos-moleculares de la fragilidad del cromosoma sexual X y enfermedades hereditarias monog&eacute;nicas en bovinos de la raza Holando-Uruguayo (<i>Bos taurus</i>). Tesis Doctor. Facultad de Veterinaria. Universidad de Zaragoza-España.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-2812200800010000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Monteagudo, L.; Postiglioni, A.; Llamb&iacute;, S.; Arruga, M.V. 1999. Detection of chromosome breaks and genetics pathology by molecular genetics. <i>Hung J Anim Produc</i>. 48 (1): 150-152.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-2812200800010000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Neissa, J.; Guerrero, C. 2004. Del c&oacute;digo gen&eacute;tico al c&oacute;digo epigen&eacute;tico: Nuevas estrategias terap&eacute;uticas. <i>Rev Fac Med Univ Nac Colomb</i>. 52 (4): 287-303.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-2812200800010000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Piedrah&iacute;ta, J.A.; Mir, B.; Dindot, S.; Walter, S. 2004. Somatic Cell Cloning: The Ultimate Form of Nuclear Reprogramming? <i>J Am Soc Nephrol</i> 15: 1140-1144.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-2812200800010000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Rodr&iacute;guez, M.J.; L&oacute;pez M.A.; Garc&iacute;a-Orad, A.; Vig, B.K. 2001. Sequence of centromere separation: effect of 5-azacytidineinduced epigenetic alteration. <i>Mutagenesis</i> 16(2):109-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-2812200800010000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Rodr&iacute;guez, V.; Llamb&iacute;, S.; Postiglioni, A.; Guevara, K.; Rinc&oacute;n, G.; Fern&aacute;ndez, G.; Mernies, B.; Arruga M.V. 2002. Localization of aphidicolin-induced break points in Holstein-Friesian catlle (<i>Bos taurus</i>) using RBG-banding. <i>Genet Sel Evol</i> 34: 649- 656.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-2812200800010000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Smeets, D.; Moog, U.; Weemaes, C.; Vaes-Peeters, G.; Merkx, G.; Niehof, J.; Hamers, G. 1994. ICF syndrome: a new case and review of the literature. <i>Hum Genet</i> 94: 240 246.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-2812200800010000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Wendy Dean, W.; Santos, F.; Stojkovic, M.; Zakhartchenko, V.; Walter, J.; Wolf, E.; Reik, W. 2001. Conservation of methylation reprogramming in mammalian development: Aberrant reprogramming in cloned embryos. <i>Proc Natl Acad Sci USA</i>. 98 (24): 13734-13738.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-2812200800010000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Zlotorynski, E.; Rahat, A.; Skaug,J.; Ben-Porat, N.; Ozeri, O.; Hershberg, R.; Levi, A.; Scherer, W.; Margalit, H.; Kerem.; E. 2003. Molecular Basis for Expression of Common and Rare Fragile Sites. <i>Mol Cell Biol</i>. 23(20): 7143 - 7151.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-2812200800010000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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