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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización molecular de un begomovirus del tomate en el Valle del Cauca, Colombia, y búsqueda de fuentes de resistencia para el mejoramiento de la variedad Unapal Maravilla]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A virus transmitted by the whitefly Bemisia tabaci to tomato was characterized in the Cauca Valley like a variant of Tomato yellow mosaic virus (ToYMV). Artificial whitefly-mediated inoculation in the greenhouse was done with 20 days-old tomato plants (FLA 496-11-6-1-0, FLA 478-6-3-1-11, FLA 456-4 y FLA 653-3-1-0) exposed to 10 viruliferous individuals of B. tabaci (biotype B) per plant in individual insect-proof cages. The presence of the begomovirus was evaluated by symptoms development and was confirmed using dot blot hybridization and PCR. Agronomical characteristics were evaluated in the field in a completely randomized blocks design with 3 replications. The lines FLA 653-3-1-0, FLA 496-11-6-1-0 and FLA 478-6-3-1-11 developed mild symptoms, viral DNA was barely detectable in some individuals, and they showed characteristics of the fruit and desirable yield.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="4">Caracterizaci&oacute;n molecular de un begomovirus del tomate en el Valle del Cauca, Colombia, y b&uacute;squeda de fuentes de resistencia para el mejoramiento de la variedad Unapal Maravilla</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Molecular characterization of a begomovirus affecting tomato in the Cauca Valle - Colombia and identification of sources of resistance to improve the variety Unapal Maravilla</font></center></b></p>     <p><b>    <center>Ana Karine Mart&iacute;nez A.;<sup>1</sup> Francisco Jos&eacute; Morales G.;<sup>1</sup> Franco Alirio Vallejo Cabrera<sup>2</sup></center></b></p>     <p>    <center><sup>1</sup>Unidad de Virolog&iacute;a. Centro Internacional de Agricultura Tropical. A. A. 6713. Palmira, Valle del Cauca, Colombia. <sup>2</sup>Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia. A.A. 237, Palmira, Valle del Cauca, Colombia. Autor para correspondencia: <a href="mailto:f.morales@cgiar.org">f.morales@cgiar.org</a></center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>REC.: 16-11-07. ACEPT.: 31-07-08</center></p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>Se caracteriz&oacute; un virus transmitido por la mosca blanca <i>Bemisia tabaci</i> al tomate en el Valle del Cauca como una variante del <i>Virus del mosaico amarillo del tomate (Tomato yellow mosaic virus</i> = ToYMV). Plantas de tomate (FLA 496-11-6-1-0, FLA 478-6-3-1-11, FLA 456-4 y FLA 653-3-1-0) de 20 d&iacute;as de edad se confinaron en jaulas individuales con 10 individuos virul&iacute;feros de <i>B. tabaci</i> (biotipo B) por planta, en condiciones de invernadero. La infecci&oacute;n por el virus se confirm&oacute; por el desarrollo de los s&iacute;ntomas y las pruebas moleculares de PCR e hibridaci&oacute;n <i>dot blot</i>. Las caracter&iacute;sticas agromorfol&oacute;gicas se evaluaron en campo en un dise&ntilde;o de bloques completos al azar con tres repeticiones. Las l&iacute;neas FLA 653-3-1-0, FLA 496-11-6-1-0 y FLA 478-6-3-1-11 desarrollaron s&iacute;ntomas muy leves; el ADN viral fue apenas detectable para algunos individuos y presentaron caracter&iacute;sticas del fruto y rendimientos deseables.</b></p>     <p><b>Palabras claves</b>: <i>Solanum lycopersicum</i>; <i>Bemisia tabaci</i>; ToYMV.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p><b>A virus transmitted by the whitefly <i>Bemisia tabaci</i> to tomato was characterized in the Cauca Valley like a variant of <i>Tomato yellow mosaic virus</i> (ToYMV). Artificial whitefly-mediated inoculation in the greenhouse was done with 20 days-old tomato plants (FLA 496-11-6-1-0, FLA 478-6-3-1-11, FLA 456-4 y FLA 653-3-1-0) exposed to 10 viruliferous individuals of <i>B. tabaci</i> (biotype B) per plant in individual insect-proof cages. The presence of the begomovirus was evaluated by symptoms development and was confirmed using dot blot hybridization and PCR. Agronomical characteristics were evaluated in the field in a completely randomized blocks design with 3 replications. The lines FLA 653-3-1-0, FLA 496-11-6-1-0 and FLA 478-6-3-1-11 developed mild symptoms, viral DNA was barely detectable in some individuals, and they showed characteristics of the fruit and desirable yield.</b></p>     <p><b>Key words</b>: <i>Solanum lycopersicum</i>; <i>Bemisia tabaci</i>; ToYMV.</p> <hr size="1">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p>El tomate es una hortaliza de importancia econ&oacute;mica. La producci&oacute;n mundial de 4.599.000 ha se increment&oacute; en 3.5 % entre 2000 y 2005. En Colombia, mientras en 2000 se cosecharon 17.264 ha, en el 2006 se sembraron 8.688 ha para una reducci&oacute;n estimada entre 241.987 y 375.082 toneladas (Corporaci&oacute;n Colombia Internacional, 2006). Una de las causas principales de la disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n es la aparici&oacute;n de nuevas enfermedades virales (Morales <i>et al</i>., 2002), en especial las causadas por virus del g&eacute;nero <i>Begomovirus</i> (familia <i>Geminiviridae</i>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La mayor&iacute;a de los begomovirus tienen genomas bipartitos (ADN-A y B) empaquetados en part&iacute;culas geminadas (Fauquet <i>et al</i>, 2003). Son transmitidos por la mosca blanca <i>Bemisia tabaci</i> Genn y causan p&eacute;rdidas significativas en cosecha (Morales y Anderson, 2001).</p>     <p>En Colombia se han registrado brotes de begomovirus en cultivos de importancia econ&oacute;mica en varios departamentos (Morales <i>et al</i>. 2000, 2002). En los &uacute;ltimos a&ntilde;os el Valle del Cauca ha sufrido la incidencia de estos virus en plantaciones de tomate y habichuela. Estas epidemias tambi&eacute;n est&aacute;n asociadas con la aparici&oacute;n del biotipo B de <i>B. tabaco</i>, m&aacute;s agresivo que el biotipo A. La invasi&oacute;n tambi&eacute;n ha sido favorecida por periodos de sequ&iacute;a prolongada que favorecieron la reproducci&oacute;n de esta mosca blanca y el desplazamiento de <i>Trialeurodes vaporariorum</i> Westwood (Morales <i>et al</i>., 2002).</p>     <p>El control de virus est&aacute; orientado a disminuir las poblaciones del vector mediante el uso de insecticidas, pero la mosca blanca ha desarrollado resistencia a los insecticidas tradicionales y los nuevos productos son costosos y no logran controlar las altas poblaciones de <i>B. tabaci</i>. Igualmente el control biol&oacute;gico y las pr&aacute;cticas culturales no logran disminuir las altas poblaciones.</p>     <p>Por estas razones el desarrollo y uso de variedades resistentes a los begomovirus son la mejor alternativa de control. Sin embargo, a pesar de que el tomate es una especie originaria del neotr&oacute;pico, el mejoramiento gen&eacute;tico se ha llevado a cabo en la zona templada (Morales, 2001) y las variedades comerciales no est&aacute;n adaptadas a las condiciones y plagas del tr&oacute;pico.</p>     <p>En este trabajo se eval&uacute;an l&iacute;neas -desarrolladas en Florida, Estados Unidos, contra un begomovirus de origen neo-tropical (Tomato mottle virus) e incluidas dentro de un grupo de fuentes de resistencia a diversos begomovirus por el Centro Asi&aacute;tico para el Mejoramiento y Desarrollo de la Horticultura (AVRDC)- como posibles fuentes de resistencia para el mejoramiento de la variedad Unapal Maravilla, con caracter&iacute;sticas agron&oacute;micas deseables, pero altamente susceptible a begomovirus.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></center></b></p>     <p>El trabajo se realiz&oacute; en el laboratorio y los invernaderos de la Unidad de Virolog&iacute;a del Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), Palmira, Colombia. La evaluaci&oacute;n de campo se realiz&oacute; en el Centro Experimental de la Universidad Nacional de Colombia, sede Palmira (CEUNP).</p>     <p>Las semillas de la variedad Unapal Maravilla se obtuvieron del CEUNP. Las semillas de las l&iacute;neas resistentes FLA 496-11-6-1-0, FLA 478-6-3-1-11, FLA 456-4, FLA 653-3-1-0, y de la susceptible CLN 206 D fueron proporcionadas por el AVRDC. Las semillas de la variedad Kyndio fueron adquiridas a Semillas Arroyave. La germinaci&oacute;n se realiz&oacute; en bandejas en condiciones de casa de malla y se trabaj&oacute; con pl&aacute;ntulas en la etapa de dos hojas verdaderas.</p>     <p>El virus se obtuvo de plantas sintom&aacute;ticas provenientes de Rozo (Valle del Cauca). El aislamiento se mantuvo en el invernadero para transmisi&oacute;n con mosca blanca (<i>B. tabaci</i>, biotipo B) a la variedad Kyndio. Las plantas se renovaban peri&oacute;dicamente de acuerdo con el ciclo de vida de la mosca blanca.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se extrajo ADN de hojas j&oacute;venes (Giltberson <i>et al</i>., 1991). La caracterizaci&oacute;n del componente A del begomovirus se realiz&oacute; mediante PCR utilizando las parejas de cebadores PAR1c715 y PAL1v1978, PAR1C496/PAL1v1978 y PAL1c1960/PAR1v722 (Zhou <i>et al</i>., 1997). Para la caracterizaci&oacute;n parcial del ADN-B se utiliz&oacute; la pareja de cebadores PCRc2 y PBL1v2040, que amplifican un fragmento de aproximadamente 600 pb (Rojas <i>et al</i>., 1993). La concentraci&oacute;n final fue Buffer 1X, 1.5 mM de MgCl2, 0.2 mM de dNTPs y 0.2 </font>&mu;<font face="verdana" size="2">M de cebadores y una U de Taq polimerasa (Promega, Madison, WI). Las condiciones de amplificaci&oacute;n incluyeron un primer ciclo de denaturaci&oacute;n a 94 &deg;C durante un minuto, alineamiento de los cebadores a 52 &deg;C por 90 s y extensi&oacute;n a 72 &deg;C por 90 s, seguido de 30 ciclos de 94 &deg;C por 30 s, 52 &deg;C por un minuto y 72 &deg;C por un minuto con una extensi&oacute;n final de cinco minutos a 72 &deg;C. Se utilizaron como control positivo muestras de ADN en las que se hab&iacute;a detectado begomovirus, y como control de reacci&oacute;n la mezcla sin ADN. Los productos amplificados se observaron en geles de agarosa al 1.2 %, se ti&ntilde;eron en soluci&oacute;n de bromuro de etidio y se visualizaron en luz ultravioleta.</p>        <p>Los productos de tama&ntilde;o esperado se clonaron en el vector pGEM-T Easy (Promega, Madison, WI), utilizado para transformar c&eacute;lulas competentes DH5</font>&alpha;<font face="verdana" size="2">. Los pl&aacute;smidos se purificaron con el Kit QIAprep (QIAGEN GmbH, Hilden, Germany) utilizando los cebadores M13 y T7 y el Kit Big-Dye Terminator v1.1 Cycle Sequencing (Applied Biosystems, Foster City, CA) en un secuenciador autom&aacute;tico ABI Prism -377 (Applied Biosystems, Foster City, CA).</p>     <p>Las secuencias se editaron en el programa SEQUENCHER 4.6 y se formaron grupos, <i>contigo</i>. La totalidad de la secuencia ADN-A y las secuencias parciales de los genes se compararon mediante el algoritmo <i>blast</i> con la base de datos del Nacional Center for Biotechnology Information (<a href=http://www.ncbi.nlm.nih.gov target="_blank">http://www.ncbi.nlm.nih.gov</a>).</p>     <p>Para estandarizar el m&eacute;todo de inoculaci&oacute;n del virus para la evaluaci&oacute;n de las l&iacute;neas se hizo un ensayo preliminar en invernadero. Plantas de la variedad susceptible Unapal Maravilla fueron expuestas a 5, 10, 15 y 20 moscas blancas infectadas con el biotipo B del virus en jaulas individuales (cilindros de acetato de 8 cm de di&aacute;metro y 11 cm de alto tapados en uno de los extremos con tul pintado de negro) durante 48 horas. El ensayo se mont&oacute; en un dise&ntilde;o completamente al azar con 10 repeticiones de una planta. A las 48 horas se retiraron por succi&oacute;n las moscas. En las evaluaciones posteriores se utilizaron diez moscas por planta (incidencia del 80%) y diez plantas por genotipo (28 &deg;C durante el d&iacute;a y 23 &deg;C en la noche, 80% de humedad).</p>     <p>La incidencia de la enfermedad (porcentaje de plantas infectadas por genotipo) y la severidad se midieron semanalmente por tres veces y despu&eacute;s de quince d&iacute;as de la inoculaci&oacute;n. La severidad se calific&oacute; como ausencia de s&iacute;ntomas (0), leves visibles despu&eacute;s de b&uacute;squeda cuidadosa (1), leves m&aacute;s visibles (2), moderados sobre la mayor&iacute;a de la planta (3) y s&iacute;ntomas severos (4) (Piven <i>et. al</i>., 1995). La infecci&oacute;n por begomovirus se confirm&oacute; mediante hibridaci&oacute;n <i>dot blot</i> y PCR.</p>     <p>El ADN viral se detect&oacute; en hojas j&oacute;venes de plantas inoculadas por las t&eacute;cnicas de <i>dot blot</i> y PCR. La PCR se hizo con la pareja de cebadores PAR1c715/PAL1v1978. Para el <i>dot blot</i> se homogenizaron 5 mg de tejido fresco macerado con nitr&oacute;geno l&iacute;quido con 50 </font> &mu;<font face="verdana" size="2">l NaOH 0.4M. Cinco microlitros de cada muestra se puntearon en una membrana de nylon (Hybond N+- Amersham), incluyendo plantas sanas e infectadas como control positivo. La membrana se sumergi&oacute; durante cinco minutos en soluci&oacute;n de Tris 1M (pH 7.4)/ NaCl 0.5 N y por 5 minutos en etanol al 95% para eliminar el color verde de los puntos y se fij&oacute; el ADN utilizando luz ultravioleta. La sonda para la detecci&oacute;n se produjo a partir de un clon generado en la caracterizaci&oacute;n molecular parcial del virus con el Dig High Prime DNA Labeling and Detection Kit II (Roche, Penzberg, Germany). La prehibridaci&oacute;n e hibridaci&oacute;n se hicieron a 42 &deg;C y los lavados a temperatura ambiente. Las membranas se expusieron a pel&iacute;culas fotogr&aacute;ficas para detectar la reacci&oacute;n de quimioluminiscencia.</p>     <p>La presencia del virus se confirm&oacute; por PCR en 100 individuos. El ADN se extrajo seg&uacute;n el m&eacute;todo de De Barro y Driver (1997) con algunas modificaciones. Cada mosca, colocada en un <i>eppendorf</i> de 1.5 ml, se macer&oacute; con un pistilo de vidrio humedecido con el buffer de lisis (KCl 50 mM, Tris-HCl pH 8.4 10 mM, Tween 20 0.45%, NP-40 0.45%, proteinasa K 500 </font>    &mu;<font face="verdana" size="2">g/ml) y se agregaron 20 </font>&mu;<font face="verdana" size="2">l del mismo buffer. Se incub&oacute; a 65 &deg;C por 20 minutos con una denaturaci&oacute;n final por 10 minutos a 94 &deg;C. Finalmente se agregaron 25</font>&mu;<font face="verdana" size="2">l de agua bidestilada est&eacute;ril, utilizando 5</font>&mu;<font face="verdana" size="2">l por reacci&oacute;n de PCR.</p>     <p>Se realiz&oacute; an&aacute;lisis de varianza utilizando el paquete SAS versi&oacute;n 7 para Windows (SAS Institute Inc., Cary, NC, USA).</p>     <p>La evaluaci&oacute;n agromorfol&oacute;gica de las l&iacute;neas (entre abril y julio de 2007, precipitaci&oacute;n promedio diaria de 2.8 mm y acumulado de 338.9 mm y 23 &deg;C) se hizo en un dise&ntilde;o de bloques completos al azar con 3 repeticiones, cada repetici&oacute;n con 5 plantas. Las pl&aacute;ntulas se sembraron en campo a los 20 d&iacute;as. Se tomaron datos de rendimiento, longitud, ancho, peso y n&uacute;mero de l&oacute;culos del fruto (5 frutos por planta). Los an&aacute;lisis se realizaron utilizando el paquete SAS versi&oacute;n 7 para Windows.</p>     <p><b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="verdana" size="3">RESULTADOS</font></center></b></p>     <p><b>Caracterizaci&oacute;n molecular del virus</b></p>     <p>Se obtuvo un <i>contig</i> de 2.596 nucle&oacute;tidos del ADN-A del begomovirus. El aislamiento mostr&oacute; identidad de 91% con el virus del mosaico amarillo del tomate, aislamiento de Guadalupe (Tomato yellow mosaic virus¬- ToYMV). La identidad de la secuencia de amino&aacute;cidos con el gen de la replicasa fue del 90% y para la prote&iacute;na de la c&aacute;pside fue mayor de 98%, compartida con los aislamientos de ToYMV de Panam&aacute;, Guadalupe y Venezuela. Con el clon 600 pb., obtenido de la amplificaci&oacute;n del ADN-B, se alcanz&oacute; 98% de identidad de amino&aacute;cidos con la prote&iacute;na de movimiento viral.</p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n de los genotipos para la resistencia al ToYMV</b></p>     <p>Los valores de incidencia fueron altos. Desde los 14 d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n (DDI) las variedades Kyndio y Unapal Maravilla ya hab&iacute;an alcanzado 100% de incidencia. Este mismo porcentaje se present&oacute; a los 28 DDI en las l&iacute;neas FLA 653-3-1-0 y CLN2026D, reportadas como susceptibles. La l&iacute;nea FLA 478-6-3-1-11 tuvo el valor m&aacute;s bajo seguida por FLA 496-11-6-1-0, y FLA 456-4 (<a href="img/revistas/acag/v57n3/v57n3a03t1.gif" target="_blank">Tabla 1</a>).</p>     <p>Los &iacute;ndices de severidad mostraron diferencias en la respuesta de los genotipos. En la l&iacute;nea FLA 653-1-0, que al final de la evaluaci&oacute;n present&oacute; s&iacute;ntomas en todas las plantas, el &iacute;ndice de severidad promedio fue uno. Las variedades Unapal Maravilla y Kyndio, en las que la incidencia fue del 100%, los &iacute;ndices de severidad fueron 3.4 y 3.5, respectivamente.</p>     <p>Los an&aacute;lisis de varianza, con confiabilidad de 95%, mostraron diferencias significativas entre los genotipos evaluados. Las pruebas de Duncan, a partir de los 21 DDI, formaron el grupo de las variedades Unapal Maravilla y Kyndio (severidad promedio 3.0), un segundo grupo conformado por la l&iacute;nea CLN 2026D (1.7) y el tercer grupo que reuni&oacute; las l&iacute;neas FLA (severidad inferior a 1.0).</p>     <p>En detecci&oacute;n del virus la t&eacute;cnica <i>dot blot</i> fue m&aacute;s sensible y reproducible en el tiempo; se observ&oacute; correlaci&oacute;n general de 73% entre plantas con s&iacute;ntomas y plantas con ADN viral, mientras que para la PCR la correlaci&oacute;n fue de 68%. Para las l&iacute;neas FLA 653-3-1-0 y FLA 496-11-6-1-0 la detecci&oacute;n del virus se hizo solo despu&eacute;s de los 21 DDI y en porcentaje bajo. En la l&iacute;nea FLA 478-6-3-1-11, que tuvo la menor incidencia y el menor valor de severidad, no se detect&oacute; el virus. En la l&iacute;nea FLA456-4 las plantas con virus (100%) fueron mayores que la incidencia (70%). En los genotipos susceptibles Unapal Maravilla y Kyndio la incidencia fue de 100% desde los 14 DDI, pero no se registraron los mismos valores de detecci&oacute;n del virus aunque en Kyndio alcanz&oacute; el 80% de las plantas. La l&iacute;nea CLN2026D tambi&eacute;n alcanz&oacute; el 100% de las plantas infectadas a los 28 DDI y se detect&oacute; el virus por <i>dot blot</i> en 70% (<a href="#Figura 1">Figura 1</a>). La presencia del virus se confirm&oacute; en 60% de las moscas blancas evaluadas.</p>     <p>    <center><a name="Figura 1"><img src="img/revistas/acag/v57n3/v57n3a03f1.jpg"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Evaluaci&oacute;n agromorfol&oacute;gica</b></p>     <p>Los resultados se vieron fuertemente afectados por el barrenador del fruto (<i>Neoleucinodes elegantalis</i>).</p>     <p>El an&aacute;lisis de varianza mostr&oacute; que, con significancia de 95%, el bloqueo no era necesario en las condiciones en las que se desarroll&oacute; el ensayo. Sin embargo, se lograron observar diferencias significativas entre los tratamientos (genotipos evaluados) para las variables evaluadas (<a href="#Tabla 2">Tabla 2</a>).</p>     <p>    <center><a name="Tabla 2"><img src="img/revistas/acag/v57n3/v57n3a03t2.gif"></a></center></p>     <p>La l&iacute;nea con mayor peso de fruto fue FLA 478-6-3-1-11, pero tuvo una de las producciones m&aacute;s bajas. La l&iacute;nea FLA 456-4 tuvo los frutos de menor tama&ntilde;o, pero la producci&oacute;n fue de 1.8 kg planta<sup>-1</sup>. La variedad Kyndio fue la de mayor producci&oacute;n.</p>     <p>Las variedades comerciales utilizadas como control tienen formato de fruto tipo redondo-alargado (chonto), al igual que la l&iacute;nea CLN2026D (IPGRI, 1996); las l&iacute;neas FLA 478-6-3-1-11, FLA 496-11-6-1-0 y FLA 653-3-1-0 tienen formato ligeramente achatado; y la l&iacute;nea FLA 456-4, redondeado. Esta l&iacute;nea se caracteriz&oacute;, adem&aacute;s, por tener frutos de color naranja.</p>     <p>A pesar de la alta precipitaci&oacute;n a lo largo del ensayo se observaron poblaciones de mosca blanca hacia el final del ciclo del cultivo y algunos s&iacute;ntomas virales. La incidencia de la enfermedad fue bastante clara en Unapal Maravilla y Kyndio, con s&iacute;ntomas de mosaico generalizado pero moderado. La l&iacute;nea CLN2026D fue la m&aacute;s afectada y present&oacute; amarillamiento intenso, deformaci&oacute;n de las hojas hacia arriba (concavidad), necrosis foliar y muerte. En las otras l&iacute;neas (FLA 478-6-3-1-11, FLA 496-11-6-1-0, FLA 653-3-1-0 y FLA 456-4) no se observaron s&iacute;ntomas de tipo viral.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></center></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La caracterizaci&oacute;n del aislamiento del ToYMV concuerda con lo reportado en Colombia en los departamentos de Cundinamarca y Tolima (Morales <i>et al</i>., 2002; Corrales <i>et al</i>., en prensa) y confirma la diseminaci&oacute;n del virus (Morales <i>et al</i>., 2002), asociada con la capacidad de adaptaci&oacute;n del biotipo B de <i>B. tabaci</i>.</p>     <p>Para evaluar la resistencia de los genotipos al ToYMV se hicieron inoculaciones artificiales, ya que las naturales en campo llevan a una infecci&oacute;n m&aacute;s suave probablemente por lo tard&iacute;o y por la falta de sincronizaci&oacute;n. La inoculaci&oacute;n en jaula individual es un buen m&eacute;todo para diferenciar la resistencia de los cultivares y tambi&eacute;n permite distribuci&oacute;n m&aacute;s uniforme del vector, previniendo los mecanismos de no preferencia (Pic&oacute; <i>et al</i>., 1998).</p>     <p>Con 10 moscas por planta se logr&oacute; buena expresi&oacute;n de s&iacute;ntomas e incidencia de 80%. El resultado concord&oacute; con estudios de evaluaci&oacute;n que han utilizado de 10 a 20 moscas por planta (Zakay <i>et al</i>., 1991, Santana <i>et al</i>., 2001, Giordano <i>et al</i>., 2005). La menor incidencia de la enfermedad al aumentar el n&uacute;mero de individuos de <i>B. tabaci</i> se debi&oacute; a interferencia y estr&eacute;s en un espacio limitado.</p>     <p>El tiempo de inicio y el nivel de acumulaci&oacute;n del virus son indicadores fiables de resistencia. El procedimiento de hibridaci&oacute;n (<i>dot blot</i>) fue m&aacute;s efectivo que la t&eacute;cnica del PCR para detectar la presencia del begomovirus en plantas sintom&aacute;ticas o asintom&aacute;ticas sist&eacute;micamente infectadas. La t&eacute;cnica <i>dot blot</i> permiti&oacute; detectar ADN viral en hojas j&oacute;venes, desde 14 DDI, incluso en plantas asintom&aacute;ticas. La desventaja de la t&eacute;cnica PCR es la dificultad de purificar el ADN, y la efectividad decrece en estados avanzados de infecci&oacute;n, alrededor de 30 DDI, cuando las plantas exhiben s&iacute;ntom&aacute;s severos y el nivel de contaminantes incrementan los resultados err&aacute;ticos (Pic&oacute; <i>et al</i>., 1999). En el trabajo, la correlaci&oacute;n entre el porcentaje de plantas con s&iacute;ntomas y el porcentaje de plantas detectadas con el virus vari&oacute; de 71% (14 DDI) a 46%(28 DDI).</p>     <p>Los genotipos evaluados incluyeron l&iacute;neas seleccionadas en Florida (FLA) como fuentes de resistencia a begomovirus del Nuevo Mundo (<i>Tomato mottle virus</i>) y del Viejo Mundo (<i>Tomato yellow leaf curld virus</i> = TYLCV), el control susceptible CLN2026D y variedades comerciales utilizadas en Colombia susceptibles al ToYMV. Para las variedades comerciales Unapal Maravilla y Kyndio se obtuvo una incidencia del 100% desde los 14 DDI. Sin embargo, la detecci&oacute;n del ADN viral no se logr&oacute; en la totalidad de las plantas afectadas. En el desarrollo de los s&iacute;ntomas se observaron diferencias entre las plantas en las que se detect&oacute; el virus y aquellas en las que no. Para las primeras, el &iacute;ndice de severidad estuvo m&aacute;s cerca de 4 (s&iacute;ntomas severos distribuidos en la totalidad de la planta), mientras que en las otras estuvo en un rango de 2-3 (conspicuos, pero leves a moderados), principalmente en hojas viejas. La respuesta diferencial podr&iacute;a sugerir que las dos variedades poseen alg&uacute;n mecanismo de resistencia, como la habilidad de escapar a la infecci&oacute;n, lo cual se manifiesta en baja incidencia de la enfermedad en presencia del pat&oacute;geno y del vector.</p>     <p>En las l&iacute;neas FLA hubo infecci&oacute;n y desarrollo de s&iacute;ntomas, pero la severidad m&aacute;xima fue 1.0 (s&iacute;ntomas leves visibles solo despu&eacute;s de b&uacute;squeda cuidadosa). En las l&iacute;neas FLA 496-11-6-1-0 y FLA 653-3-1-0 se detect&oacute; el virus en plantas que desarrollaron s&iacute;ntomas s&oacute;lo a partir de los 21 DDI; en la l&iacute;nea FLA 478-6-3-1-11, adem&aacute;s de baja incidencia, no se detect&oacute; el virus. El comportamiento sugiere un mecanismo de resistencia, por el cual el virus puede o no multiplicarse en alg&uacute;n grado, pero la dispersi&oacute;n se restringe y los s&iacute;ntomas son localizados y no evidentes. La l&iacute;nea FLA 456-4, en la cual se detect&oacute; ADN viral en la totalidad de las plantas evaluadas a los 28 DDI, es un caso de resistencia a la enfermedad en el que el virus puede moverse sist&eacute;micamente en el hospedero sin manifestar s&iacute;ntomas (Kang <i>et al</i>., 2005).</p>     <p>Las l&iacute;neas FLA buscaron introgresi&oacute;n de genes de resistencia al TYLCV presentes en accesiones de especies silvestres de <i>Solanum (Lycopersicon</i>). La l&iacute;nea FLA 456-4 viene del cruce de LA 2779 (<i>S. chilense</i>), que posee el gen Ty-3 (parcialmente dominante para resistencia al TYLCV, y ligado a otro gen de resistencia, el Ty-1) (Bian <i>et al</i>., 2007), y el h&iacute;brido comercial &#39;<i>Tyking</i>&#39;, el cual aparentemente posee otro tipo de resistencia al TYLCV y a begomovirus bipartitos presentes en Brasil (Giordano <i>et al</i>., 2005). Esta l&iacute;nea ya hab&iacute;a sido reportada como resistente a begomovirus presentes en el Valle de Zapotit&aacute;n, El Salvador (P&eacute;rez y Hanson, 2004). El origen de la resistencia para FLA 653-3-1-0 viene igualmente de la accesi&oacute;n LA 2779 de <i>L. chilense</i> y el h&iacute;brido <i>Tyking</i>, y se ha reportado como fuente de resistencia a infecciones de TYLCV controlada por un alelo recesivo (<i>tgr-1</i>) que afecta el movimiento del virus. Para la l&iacute;nea FLA 478-6-3 la fuente de resistencia es la accesi&oacute;n LA1938 de <i>L. chilense</i> (Bian, <i>et al</i>., 2007).</p>     <p>Los resultados mostraron alg&uacute;n grado de resistencia al ToYMV en todas las l&iacute;neas FLA, con lo que se confirm&oacute; que algunos genotipos resistentes a begomovirus monopartito TYLCV se comportan como resistentes a begomovirus bipartitos (Santana <i>et al</i>., 2001; P&eacute;rez y Hanson, 2004; Lapidot y Friedmann, 2002). Las observaciones sugieren que existen genes de resistencia a begomovirus, tanto monopartitos como bipartitos, en especies silvestres de tomate, como <i>S. chilense</i>.</p>     <p>Cualquiera de las l&iacute;neas FLA podr&iacute;a ser fuente potencial de resistencia al ToYMV. Sin embargo, en un programa de mejoramiento es necesario conocer los mecanismos de resistencia para aumentar la vida &uacute;til de las variedades mejoradas. Van Den Bosch y colaboradores (2006) definieron cuatro tipos de resistencia que pueden o no ejercer presi&oacute;n evolutiva sobre el virus y disminuir la durabilidad de la resistencia. El primero es la resistencia que reduce el t&iacute;tulo del virus (restringe la multiplicaci&oacute;n), como consecuencia la acumulaci&oacute;n del virus es muy baja y no se desarrollan s&iacute;ntomas. El segundo es la resistencia a la expresi&oacute;n de s&iacute;ntomas a pesar de la existencia de un t&iacute;tulo alto del virus. Y los otros dos implican la resistencia en el momento de la inoculaci&oacute;n o de la adquisici&oacute;n del virus por el vector, donde adem&aacute;s de los factores bioqu&iacute;micos puede estar involucrada la arquitectura de la planta (ej. densidad de tricomas). La l&iacute;nea FLA 456-4 fue un claro ejemplo de la resistencia que disminuye los s&iacute;ntomas a pesar de la multiplicaci&oacute;n irrestricta del virus a los 28 DDI. Este tipo de resistencia debe ser manejado con cuidado, pues seg&uacute;n el modelo planteado este genotipo ser&iacute;a una buena fuente de in&oacute;culo en el campo.</p>     <p>Para las otras l&iacute;neas (FLA 496-11-6-1-0, FLA 653-3-1-0 y FLA 478-6-3-1-11) el mecanismo de resistencia ser&iacute;a similar al descrito donde la multiplicaci&oacute;n del virus se restringe, particularmente a partir de cierta edad de la planta o condiciones de inoculaci&oacute;n o adquisici&oacute;n del virus, que permite el escape a la infecci&oacute;n en algunos individuos, mientras en otros evita los efectos adversos en las etapas iniciales, las m&aacute;s susceptibles al da&ntilde;o. Piven y colaboradores (1995), evaluando accesiones de <i>L. chilense</i>, fuente de resistencia para las l&iacute;neas FLA, sugieren que en algunos materiales la resistencia podr&iacute;a estar asociada con evitar la transmisi&oacute;n del virus por el vector o con la inhibici&oacute;n de la entrada del virus. Este tipo de resistencia no genera presi&oacute;n de selecci&oacute;n en el virus, por lo que ser&iacute;a m&aacute;s favorable en el inicio de un programa de mejoramiento en el que se busca entregar cultivares que pongan la m&iacute;nima presi&oacute;n de selecci&oacute;n en el virus para que evolucione en cepas m&aacute;s agresivas (Van Den Bosch <i>et al</i>, 2006). Sin embargo, la experiencia con el mosaico dorado amarillo del fr&iacute;jol com&uacute;n demuestra que este tipo de resistencia var&iacute;a seg&uacute;n la dosis (incidencia) del virus, y que estos materiales gradualmente disminuyen el nivel de resistencia (Morales, 2001).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Seg&uacute;n la caracterizaci&oacute;n agromorfol&oacute;gica las l&iacute;neas FLA se adaptaron a las condiciones de evaluaci&oacute;n en campo y en general, a excepci&oacute;n de la l&iacute;nea FLA 456-4 que produce frutos peque&ntilde;os de color naranja, todas tienen buen tama&ntilde;o de fruto con caracter&iacute;sticas similares al tomate milano, con rendimientos que oscilaron entre 1.5 y 2.0 kg planta<sup>-1</sup>.</p>     <p>Evaluando las caracter&iacute;sticas de resistencia y las condiciones agro-morfol&oacute;gicas se pueden seleccionar las l&iacute;neas FLA 653-3-1-0, FLA 496-11-6-1-0 y FLA 478-6-3-1-11 como fuentes de resistencia al ToYMV detectado en el Valle del Cauca. La importancia que ha cobrado la distribuci&oacute;n del ToYMV en Colombia genera la necesidad de construir programas de mejoramiento en tomate para el desarrollo de variedades resistentes, base de cualquier proyecto de control de begomovirus (Morales, 2006). La selecci&oacute;n de fuentes de resistencia y la estandarizaci&oacute;n de las t&eacute;cnicas de inoculaci&oacute;n y detecci&oacute;n del virus logradas en el estudio para el ToYMV constituyen la base para el inicio de un proyecto de mejoramiento para la variedad Unapal Maravilla que busque reducir las p&eacute;rdidas econ&oacute;micas provocadas por las enfermedades virales en los &uacute;ltimos a&ntilde;os tratando de no afectar la producci&oacute;n y calidad del cultivo.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">AGRADECIMIENTOS</font></center></b></p>     <p>Al doctor Peter Jones, del Centro Asi&aacute;tico para el Desarrollo e Investigaci&oacute;n de Vegetales (AVRDC), por el env&iacute;o de las semillas de las l&iacute;neas FLA y CLN2026D; a Alejandro Quintero del CIAT, por la colaboraci&oacute;n en los trabajos en invernadero y campo; y a los trabajadores de CEUNP, por la colaboraci&oacute;n en el montaje y control de los ensayos de campo que hicieron parte de la tesis de maestr&iacute;a de A. K. Mart&iacute;nez A.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></center></b></p>     <!-- ref --><p>1.Bian, X.-Y.; Thomas, M.R.; Rasheed, M.S.; Saeed, M.; Hanson, P.; De Barro, P.J.; Resaian, M.A. 2007A recessive allele (tgr-1) conditioning tomato resistance to geminivirus infection is associated with impaired viral movement. <i>Phytopatho</i> 97: 930-937.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-2812200800030000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2.Corporaci&oacute;n Colombia Internacional. 2006. Plan Hort&iacute;cola Nacional [<a href=http://www.cci.org.co/publicaciones/1_PHNfinal.pdf target="_blank">http://www.cci.org.co/publicaciones/1_PHNfinal.pdf]</a> 08-2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-2812200800030000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3.Corrales, A.R.; Mart&iacute;nez, A.K.; Morales, F.J. Caracterizaci&oacute;n molecular de los begomovirus que afectan la producci&oacute;n de tomate (<i>Solanum lycopersicum</i>) en Cundinamarca y Tolima, Colombia. En prensa.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-2812200800030000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4.De Barro, P.J.; Driver, F. 1997. Use of RAPD PCR to distinguish the B biotype from other biotypes of <i>Bemisia tabaci</i> (Gennadius) (Hemiptera: Aleyrodidae). <i>Aust. J. Entom</i>. 36: 149-152.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-2812200800030000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5.Fauquet, C. M.; Bisaro, D. M.; Briddon, R.W.; Brown, J. K.; Harrison, B. D.; Rybicki, E. P.; Stenger, D. C.; Stanley, J. 2003. Revision of taxonomic criteria for species demarcation in the family <i>Geminiviridae</i>, and an updated list of begomovirus species. <i>Arch. Virol</i>. 148: 405–421.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-2812200800030000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.Gilbertson, R. L.; Rojas, M. R.; Russel, L.D.; Maxwell, D. P.1991. The use of the asymetric polymerase chain reaction and DNA sequencing to determine genetic variability among isolates of bean golden mosaic geminivirus in the Dominican Republic. <i>J. Gen. Virol</i>. 72: 2843-2848.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-2812200800030000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7.Giordano, L.B.; Silva-Lobo, V.L.; Santana, F.M.; Fonseca, M.E.N.; Boiteux, L.S. 2005. Inheritance of resistance to the bipartite <i>Tomato chlorotic mottle begomovirus</i> derived from <i>Lycopersicon esculentum</i> cv. &#39;Tyking&#39;. <i>Euphytica</i> 143: 27–33.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-2812200800030000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8.IPGRI. 1996. Descriptores para el tomate <i>Lycopersicon</i> spp. Instituto Internacional de Recursos Fitogen&eacute;ticos, Roma, Italia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-2812200800030000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9.Kang, B-C.; Yeam, I.; Jahn, M.M. 2005. Genetics of Plant Virus Resistance. <i>Annu. Rev. Phytopathol</i>. 43: 581-621.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-2812200800030000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10.Lapidot, M.; Friedmann, M. 2002. Breeding for resistance to whitefly-transmitted geminiviruses. <i>Ann Appl Biol</i> 140: 109-127.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-2812200800030000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11.Morales, F.J. 2001. Conventional breeding for resistance to <i>Bemisia tabaci</i>-transmitted geminiviruses. <i>Crop Prot</i>. 20: 825-834.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-2812200800030000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12.Morales, F.J. 2006. History and Current Distribution of Begomovirus in Latin America. <i>Adv. 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Annual Report, 2004, CIAT; p. 376-378.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-2812200800030000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17.Pic&oacute;, B.; D&iacute;ez, J.; Nuez, F. 1998. Evaluation of whitefly-mediated inoculation techniques to screen <i>Lycopersicon esculentum</i> and wild relatives for resistance to Tomato yellow leaf curl virus. <i>Euphytica</i> 101: 259-271.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-2812200800030000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18.Pic&oacute;, B.; D&iacute;ez, M.J.; Nuez, F. 1999. Improved techniques for tomato yellow leaf curl virus in tomato breeding programs. <i>Plant Dis</i>. 83: 1006-1012.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-2812200800030000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19.Piven, N.M.; de Uzc&aacute;tegui, R.C.; Infante, H.D. 1995. Resistance to tomato yellow mosaic virus in species of <i>Lycopersicon</i>. <i>Plant Dis</i>. 79: 590-594.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-2812200800030000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20.Rojas, M.R.; Giltberson, R.L.; Rusell, D. R.; Mawell, D.P. 1993. Use of degenerate primers in the polymerase chain reaction to detect whitefly-transmitted geminiviruses. <i>Plant Dis</i>. 77: 340-347.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-2812200800030000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21.Santana, F.V.; Ribeiro, S.; Moita, A.W.; Moreira, D.J.; Giordano, L.B. 2001. Sources of resistance in <i>Lycopersicon</i> spp. to a bipartite whitefly-transmitted geminivirus from Brazil. <i>Euphytica</i> 122: 45–51.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-2812200800030000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22.Van Den Bosch, F.; Akudibilah, G.; Seal, S.; Jeger, M. .2006. Host resistance and the evolutionary response of plant viruses. <i>J. Appl. 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J; Harrison, B.D. 1997. Evidence that DNA-A of a geminivirus associated with severe cassava mosaic disease in Uganda has arisen by interspecific recombination. <i>J. Gen. Virol</i>. 78: 2101–2111&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-2812200800030000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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