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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Respuesta fisiológica de semillas de Cratylia argentea (Desvaux) O. Kuntze a condiciones de almacenamiento y crioconservación]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[On the cryoconservation cool rooms of the Nacional University of Colombia, Palmira, and the International Center for Tropical Agriculture (CIAT), the effects on germination of Cratylia argentea seeds (cv. Veranera ) of three moisture levels (10, 8 and 6%), the liquid N (LN) cryoperservation and two storage conditions were evaluated. The results showed high initial physiological quality of seeds and lack of any type of physical or physiological dormancy which drastically reduce germination on non controlled storage conditions. Germination decreased drastically when moisture content was reduced to 6% which mean the possible non ortodoxus behavior of the Cratylia seeds. For seed cryoperservation by LN inmersion during one month, the adecuate moisture content is 8%. Non differences on seed germination respect to the three moisture levels were observed when cryoperservation period had one hour of duration on liquid nitrogen.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="4">Respuesta fisiol&oacute;gica de semillas de <i>Cratylia argentea</i> (Desvaux) O. Kuntze a condiciones de almacenamiento y crioconservaci&oacute;n</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Physiological response of <i>Cratylia argentea</i> (Desvaux) O. Kuntze seeds to storage and cryoconservation conditions</font></center></b></p>     <p><i>    <center>Diana Mar&iacute;a Montoya B&aacute;rcenas<sup>1</sup>, Carmen Rosa Bonilla Correa<sup>2</sup>, Manuel Salvador S&aacute;nchez Orozco<sup>2</sup>, Carlos Iv&aacute;n Cardozo Conde<sup>2</sup>, Roosevelt Escobar<sup>3</sup></center></i></p>     <p><sup>1</sup>Facultad de Ingenier&iacute;a y Administraci&oacute;n, Universidad Nacional de Colombia. AA 237. Palmira, Valle del Cauca, Colombia. <sup>2</sup>Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia. AA 237. Palmira, Valle del Cauca, Colombia. <sup>3</sup>Centro Internacional de Agricultura Tropical, CIAT. AA 6713. Cali, Valle del Cauca, Colombia. Autor para correspondencia: <a href="mailto:mssanchezo@palmira.unal.edu.co">mssanchezo@palmira.unal.edu.co</a></p>     <p>    <center>Rec. 19-06-09 Acep. 03-09-09</center></p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>    <center>Resumen</center></b></p>     <p>En la Universidad Nacional de Colombia y en los cuartos de crioconservaci&oacute;n del Instituto Humboldt del Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT) (Palmira, Colombia) en un dise&ntilde;o completamente al azar, con cuatro repeticiones, se evaluaron los efectos de tres contenidos de humedad (10%, 8% y 6 %), el congelamiento ultrarr&aacute;pido a trav&eacute;s de inmersi&oacute;n en nitr&oacute;geno l&iacute;quido (NL) y dos condiciones de almacenamiento en la germinaci&oacute;n de las semillas de <i>Cratylia argentea</i> (Desvaux) O. Kuntze cultivar Veranera. Los resultados mostraron la alta calidad fisiol&oacute;gica inicial de las semillas de esta leguminosa forrajera y la ausencia de latencia f&iacute;sica o fisiol&oacute;gica, aunque la germinaci&oacute;n se reduce dr&aacute;sticamente en condiciones no controladas de almacenamiento. La germinaci&oacute;n disminuy&oacute; significativamente cuando el contenido de humedad se redujo a 6%, indicando el posible comportamiento recalcitrante, o sea semillas que pierden su viabilidad por deshidrataci&oacute;n producida por el medio donde se encuentren, sea &eacute;ste de almacenamiento o natural (Vieira et al., 1994). Para la crioconservaci&oacute;n por inmersi&oacute;n en nitr&oacute;geno l&iacute;quido durante un mes, el contenido adecuado de humedad fue de 8%, aunque no se detectaron diferencias en la germinaci&oacute;n cuando las semillas en los tres niveles de humedad se crioconservaron durante una hora en nitr&oacute;geno l&iacute;quido.</p>     <p><b>Palabras clave:</b>  <i>Cratylia argentea</i>, leguminosae, leguminosas forrajeras, semillas, almacenamiento de semillas, calidad fisiol&oacute;gica, crioconservaci&oacute;n, germinaci&oacute;n</p> <hr size="1">     <p>    <center><b>Abstract</b></center> </p>     <p>On the cryoconservation cool rooms of the Nacional University of Colombia, Palmira, and the International Center for Tropical Agriculture (CIAT), the effects on germination of <i>Cratylia argentea</i> seeds (cv. Veranera ) of three moisture levels (10, 8 and 6%), the liquid N (LN) cryoperservation and two storage conditions were evaluated. The results showed high initial physiological quality of seeds and lack of any type of physical or physiological dormancy which drastically reduce germination on non controlled storage conditions. Germination decreased drastically when moisture content was reduced to 6% which mean the possible non ortodoxus behavior of the <i>Cratylia</i> seeds. For seed cryoperservation by LN inmersion during one month, the adecuate moisture content is 8%. Non differences on seed germination respect to the three moisture levels were observed when cryoperservation period had one hour of duration on liquid nitrogen.</p>     <p><b>Key words:</b> <i>Cratylia argentea</i>, legume, seeds, physiological quality, cryoperservation, germination.</p> <hr size="1">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Introducci&oacute;n</font></center></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Cratylia argentea</i> (Desv.) Kuntze es una leguminosa arbustiva forrajera nativa de la Amazonia y la parte central de Brasil, Per&uacute; y Bolivia, incorporada a los programas de evaluaci&oacute;n forrajera del tr&oacute;pico latinoamericano. Es un arbusto que alcanza entre 1.5 y 3 m de altura. Se adapta bien a diferentes tipos de suelos, siempre que estos sean bien drenados. Crece en sitios localizados desde el nivel del mar hasta 1200 m.s.n.m. con precipitaciones entre 1000 a 4000 mm. Una caracter&iacute;stica importante de esta especie es su alta retenci&oacute;n foliar y la capacidad de rebrote durante la &eacute;poca seca, debido al desarrollo de ra&iacute;ces vigorosas que alcanzan entre 1.30 a 1.80 m y favorecen la tolerancia de la planta a la sequ&iacute;a, aun en condiciones de suelos pobres y &aacute;cidos (Peters et al., 2003; Pizarro et al., 1995).</p>     <p>Aunque la producci&oacute;n de semilla es alta, de buena calidad y sin marcada latencia f&iacute;sica (dureza) o fisiol&oacute;gica, se han detectado problemas de conservaci&oacute;n ya que bajo ciertas condiciones de almacenamiento presenta p&eacute;rdidas dr&aacute;sticas en calidad fisiol&oacute;gica (viabilidad, vigor, germinaci&oacute;n) (Lascano, 1998).</p>     <p>En varios estudios (Hong y Ellis, 1992b; Ellis et al., 1995; Vertucci et al., 1994, Cromarty et al., 1982; Delouche, 1971) se ha demostrado que las semillas ortodoxas –o sea aquellas que no reducen su viabilidad con la deshidrataci&oacute;n– tienden a conservar por m&aacute;s tiempo la calidad fisiol&oacute;gica (longevidad, viabilidad, germinaci&oacute;n) si se almacenan a baja temperatura y baja humedad relativa; en contraste, las semillas recalcitrantes –o sea semillas que pierden su viabilidad por deshidrataci&oacute;n producida por el medio donde se encuentren, sea &eacute;ste de almacenamiento o natural– pierden r&aacute;pidamente su capacidad de germinaci&oacute;n al exponerse a condiciones de baja humedad (Kermode y Finch-Savage, 2002). Aunque las t&eacute;cnicas de secado son suficientemente conocidas, se han realizado algunas investigaciones utilizando s&iacute;lica-gel en el secado de semillas para conservaci&oacute;n de germoplasma. Zhan y Tao (1989) lograron tratar semillas sin afectar su viabilidad con un secado lento, utilizando relaciones bajas de s&iacute;lica-gel:semillas. Arce et al. (2007) encontraron resultados positivos con semillas crioconservadas de <i>Sapindus saponaria</i>. Cuando el secado es r&aacute;pido o brusco se compromete la viabilidad de las semillas, especialmente cuando &eacute;stas no han alcanzado el nivel de humedad y madurez en el que puedan soportar descensos bruscos de humedad.</p>     <p>Uno de los aspectos m&aacute;s importantes en la conservaci&oacute;n de semillas de especies forrajeras es el almacenamiento, y su duraci&oacute;n depender&aacute; del contenido de humedad, grado de latencia, tratamientos de escarificaci&oacute;n, envase y comercializaci&oacute;n, entre otros (Ferguson, 1994). El congelamiento ultrarr&aacute;pido a trav&eacute;s de inmersi&oacute;n en nitr&oacute;geno l&iacute;quido es uno de los medios disponibles para la conservaci&oacute;n en el largo plazo de recursos gen&eacute;ticos, especialmente de especies que tienen semillas de comportamiento recalcitrante.</p>     <p>La tecnolog&iacute;a de crioconservaci&oacute;n permite conservar c&eacute;lulas, tejidos u &oacute;rganos vegetales durante un tiempo indefinido, sin que exista riesgo de p&eacute;rdida de viabilidad. El material vegetal se conserva a temperaturas muy bajas (entre -150 &deg;C y -196 &deg;C) por lo que se usa como refrigerante NL o su fase de vapor. A estas temperaturas el metabolismo celular se detiene por completo, impidiendo procesos que producir&iacute;an da&ntilde;os irreparables en el material. La t&eacute;cnica ha sido evaluada en m&aacute;s de 70 especies y en muchos casos, aunque se ha probado la resistencia de suspensiones celulares, callos, protoplastos, meristemos y embriones a la congelaci&oacute;n en nitr&oacute;geno l&iacute;quido, no necesariamente significa, que la t&eacute;cnica sea efectivamente usada con &eacute;xito para el almacenamiento de especies vegetales en general (Engelmann, 2000; Villa et al., 2007). Cardoso et al. (2000) al estudiar el efecto de la crioconservaci&oacute;n sobre la germinaci&oacute;n de semillas de diez especies de leguminosas forrajeras no encontraron efectos negativos sobre su viabilidad, lo que demuestra que esta t&eacute;cnica es un m&eacute;todo adecuado para la conservaci&oacute;n de las semillas de estas especies.</p>     <p>El presente estudio se realiz&oacute; con el objetivo de evaluar la respuesta fisiol&oacute;gica de las semillas de <i>Cratylia argentea</i> (Desv.) O. Kuntze cultivar Veranera a la crioconservaci&oacute;n y a varias condiciones de almacenamiento.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></center></b></p>     <p><b>Localizaci&oacute;n</b></p>     <p>Los ensayos se realizaron en los Laboratorios de Fisiolog&iacute;a Vegetal de la Universidad Nacional de Colombia, sede Palmira, y en los cuartos de crioconservaci&oacute;n del Instituto Humboldt en el Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), ubicados en el municipio de Palmira (3&deg; 31&#39; norte y 76&deg; 81&#39; oeste, a 980 m.s.n.m., 1100 mm de precipitaci&oacute;n, humedad relativa de 78% y temperatura promedia anual de 24.5 &deg;C), Valle del Cauca, Colombia. La semilla se obtuvo de lotes cosechados en abril de 2004, en el CIAT por el Proyecto de Forrajes Mejorados para Prop&oacute;sitos M&uacute;ltiples para el Mundo en Desarrollo. Para los ensayos las muestras de semilla fueron separadas por tama&ntilde;os en fracciones grandes, medianas y peque&ntilde;as, utilizando un soplador General. El contenido de humedad se determin&oacute; seg&uacute;n la recomendaci&oacute;n ISTA (2005) y se calcul&oacute; mediante la f&oacute;rmula siguiente:</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><img src="img/revistas/acag/v58n3/v58n3a08e1.GIF"></p>     <p>donde,</p>     <p>M<sub>1</sub>= peso del recipiente con tapa (g), M<sub>2</sub>= peso del recipiente con tapa + contenido de la semilla (5 &plusmn; 0.2 g) antes del secado en horno el&eacute;ctrico 130 &deg;C por 8 h, M<sub>3</sub> = peso del recipiente con tapa + contenido despu&eacute;s del secado (g). Las mediciones se realizaron con tres repeticiones.</p>     <p><b>Secado de semillas</b></p>     <p>Las semillas fueron secadas utilizando la relaci&oacute;n s&iacute;lica-gel:semilla de 2:1. Para la construcci&oacute;n de la curva de secado se establecieron los niveles de humedad 10%, 8% y 6% y para determinar el contenido de humedad se utiliz&oacute; la f&oacute;rmula de Hong y Ellis (1996):</p>     <p><img src="img/revistas/acag/v58n3/v58n3a08e2.GIF"></p>     <p>a partir de la cual se obtiene la humedad final:</p>     <p><img src="img/revistas/acag/v58n3/v58n3a08e3.GIF"></p>     <p>donde, <i>Hi</i> = contenido de humedad (%) inicial de la semilla, determinado por el m&eacute;todo gravim&eacute;trico; <i>Hf</i> = contenido humedad (%) determinado; <i>pi</i> = peso inicial y <i>pf</i> = peso final de las semillas. Las mediciones fueron realizadas cada media hora durante 6 horas evitando, en lo posible, que las semillas ganaran humedad del ambiente. Las curvas de secado se realizaron con base en el peso perdido cuando se colocaron en s&iacute;lica-gel. Las muestras de semillas de <i>C. argentea</i>, con contenidos de humedad de 10%, 8% y 6% se empacaron al vac&iacute;o en bolsas de aluminio herm&eacute;ticamente selladas y se sometieron directamente a NL, sin crioprotectores. Se evalu&oacute; el efecto en la germinaci&oacute;n de dos periodos de exposici&oacute;n a NL: 1 mes; y una hora. Muestras adicionales de semillas fueron almacenadas a temperatura ambiente en las condiciones de Palmira (humedad relativa entre el 50% y 70% y temperatura, promedio, de 24 &deg;C) y en condiciones refrigeradas a 10 &deg;C en el Laboratorio de Fisiolog&iacute;a Vegetal de la Universidad Nacional de Colombia, sede Palmira.</p>     <p><b>Pruebas de germinaci&oacute;n</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las semillas crioconservadas fueron descongeladas a temperatura ambiente durante 12 h, descartando aquellas que presentaron signos evidentes de da&ntilde;o. Las pruebas de germinaci&oacute;n fueron realizadas en cuatro repeticiones con 25 semillas cada una y en condiciones ambientales del Laboratorio de Fisiolog&iacute;a Vegetal. Como sustrato de germinaci&oacute;n se utiliz&oacute; arena, la cual se pas&oacute; a trav&eacute;s de una zaranda para eliminar elementos extra&ntilde;os, lavada con agua, desinfectada con hipoclorito de sodio al 5% durante 12 h, secada y esterilizada en horno a 105 &deg;C durante 6 h. Dependiendo de la humedad de la arena en los recipientes de siembra, se aplic&oacute; riego con agua destilada. En las evaluaciones se incluyeron conteos de pl&aacute;ntulas normales, anormales y semillas muertas (ISTA, 2005).</p>     <p><b>Prueba de viabilidad de semillas</b></p>     <p>Esta prueba es utilizada para determinar la germinaci&oacute;n potencial y el vigor de las semillas, evaluando la tinci&oacute;n del embri&oacute;n y los cotiledones de la semilla cuando se sumergen en una soluci&oacute;n al 0.5% de cloruro trifenil tetrazolio. En este estudio, la prueba se realiz&oacute; en dos repeticiones de 25 semillas cada una, las cuales fueron lavadas con agua y secadas con papel absorbente antes de determinar el n&uacute;mero de semillas viables y no-viables, utilizando los protocolos de interpretaci&oacute;n para semillas de soya (Delouche et al., 1971). Los resultados fueron analizados mediante S.A.S (Statistical Analysis System). Versi&oacute;n 8.2 de 2002.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Resultados y discusi&oacute;n</font></center></b></p>     <p><b>Caracter&iacute;sticas de las semillas</b></p>     <p>El peso unitario de las semillas vari&oacute; entre 32 y 43 g/100 semillas, reflejando el efecto de las condiciones clim&aacute;ticas variantes durante la floraci&oacute;n y formaci&oacute;n de semillas de <i>C. argentea</i> que para esta especie se puede extender hasta 3 meses (Peters et al, 2003). Las semillas comenzaron a germinar 3 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra (d.d.s.), no obstante, la mayor germinaci&oacute;n ocurri&oacute; entre los 7 y 21 d.d.s.. La viabilidad y la germinaci&oacute;n inicial fueron altas (97% y 95%, respectivamente) (<a href="#Cuadro 1">Cuadro 1</a>), indicando la alta calidad fisiol&oacute;gica de las semillas y la ausencia de latencias f&iacute;sica y/o fisiol&oacute;gica.</p>     <p>    <center><a name="Cuadro 1"><img src="img/revistas/acag/v58n3/v58n3a08t1.GIF"></a></center></p>     <p><b>Curvas de secado</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las semillas colocadas en s&iacute;lica-gel presentaron p&eacute;rdida acelerada de humedad, disminuyendo de 10.9% hasta 6.2% en 120 min. Seguidamente se present&oacute; una fase de tiempo igual para pasar de 6.2% a 4% y permanecer aproximadamente constante (<a href="#Figura 1">Figura 1</a>). La tasa de p&eacute;rdida de agua se relaciona con el grosor de las cubiertas de la semilla (Chac&oacute;n y Bustamante, 2001) y las semillas recalcitrantes con cubiertas rotas se desecan m&aacute;s r&aacute;pidamente y en un porcentaje m&aacute;s alto (Mwang&#39;Ingo et al., 2004).</p>     <p>    <center><a name="Figura 1"><img src="img/revistas/acag/v58n3/v58n3a08f1.JPG"></a></center></p>     <p><b>Germinaci&oacute;n de semillas sin crioconservaci&oacute;n</b></p>     <p>En los tres niveles de humedad las semillas empezaron a germinar 5 d.d.s. Siete d.d.s. la germinaci&oacute;n fue 69% en semillas con el 10% de contenido de humedad, en semillas con 8% y 6% de humedad las germinaciones fueron 18% y 30%, respectivamente. Veinte d.d.s. se observ&oacute; una reducci&oacute;n importante de la germinaci&oacute;n en los niveles bajos de contenido de humedad, indicando un probable comportamiento no ortodoxo de las semillas de esta especie. Aunque regularmente las semillas recalcitrantes pierden r&aacute;pidamente su capacidad de germinaci&oacute;n al exponerse a condiciones de baja humedad (Kermode y Finch-Savage, 2002), al final de la prueba (28 d&iacute;as) se obtuvieron germinaciones de 95%, 86% y 76% para los contenidos de humedad de 10%, 8% y 6%, respectivamente. En el <a href="#Cuadro 2">Cuadro 2</a> se presentan los resultados de germinaci&oacute;n obtenidos en diferentes contenidos de humedad.</p>     <p>    <center><a name="Cuadro 2"><img src="img/revistas/acag/v58n3/v58n3a08t2.GIF"></a></center></p>     <p><b>Pruebas de crioconservaci&oacute;n Crioconservaci&oacute;n en NL durante un mes.</b></p>     <p>Despu&eacute;s de un mes en NL, el mayor porcentaje de germinaci&oacute;n se observ&oacute; con semillas que conten&iacute;an 8% de humedad, las cuales presentaron 12% de germinaci&oacute;n 5 d.d.s. y 86%, 10 d.d.s. (<a href="#Cuadro 3">Cuadro 3</a>). Al final de la prueba se registraron 5% de pl&aacute;ntulas anormales y el 9% de semillas muertas. Las semillas con el 6% de humedad presentaron la germinaci&oacute;n m&aacute;s baja (73%) 21 d.d.s., siendo el tratamiento en que se presentaron los mayores porcentajes de pl&aacute;ntulas anormales (15%) y de semillas muertas (27%). Las semillas con 10% de humedad comenzaron a germinar 5 d.d.s., alcanzando 79% de germinaci&oacute;n 21 d.d.s.. De este porcentaje 71% correspondieron a pl&aacute;ntulas normales, adem&aacute;s, se registr&oacute; 21% de semillas muertas. Como se deduce de estos resultados, las semillas crioconservadas con el 6% de humedad presentaron la m&aacute;s alta proporci&oacute;n de pl&aacute;ntulas anormales y semillas muertas.</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="Cuadro 3"><img src="img/revistas/acag/v58n3/v58n3a08t3.GIF"></a></center></p>     <p>Si se considera que en el tratamiento de secado (sin crioconservaci&oacute;n) se obtuvieron germinaciones de 95%, 86% y 76% para los contenidos de humedad de 10%, 8% y 6%, respectivamente, y se asume que, estos valores son los m&aacute;ximos potenciales germinativos que se podr&iacute;an obtener en las semillas suspendidas en NL, la germinaci&oacute;n total relativa (GTR), calculada como la relaci&oacute;n entre el total de pl&aacute;ntulas obtenidas en la prueba de germinaci&oacute;n de las semillas crioconservadas y el m&aacute;ximo potencial de germinaci&oacute;n, la GTR de las semillas crioconservadas ser&iacute;a de 83%, 100% y 96%, y la germinaci&oacute;n normal relativa (GNR), calculada como la relaci&oacute;n entre las pl&aacute;ntulas normales obtenidas en la prueba de germinaci&oacute;n de las semillas crioconservadas y el m&aacute;ximo potencial germinativo, ser&iacute;a de 75%, 94% y 76%, respectivamente, en los tres niveles de humedad evaluados. Estos resultados indican que el contenido de humedad adecuado para crioconservar semillas de <i>C. argentea</i> es 8 %. Las semillas da&ntilde;adas por efecto del tratamiento de crioconservaci&oacute;n en NL no presentaron diferencias estad&iacute;sticamente significativas y variaron entre 2% y 4% en los niveles de humedad evaluados. Para preservar semillas de germoplasma de <i>Arachis pintoi</i> (Leguminosae), el nivel de humedad de las semillas para inmersi&oacute;n en NL es del 4% (Rey y Mroginski, 2009)</p>     <p><b>Crioconservaci&oacute;n en NL durante 1 hora.</b></p>     <p>Las semillas con 10% de humedad presentaron la mayor germinaci&oacute;n total (88%), mientras las semillas con 6% representaron la germinaci&oacute;n total m&aacute;s baja (75%). La GTR de las semillas expuestas una hora en NL fue de 93%, 94% y 99%, respectivamente, para los contenidos de humedad 10%, 8% y 6% (P &gt; 0.05), indicando claramente que la exposici&oacute;n de las semillas durante 1 h en NL no afect&oacute; la germinaci&oacute;n en los niveles de humedad evaluados. Resultados en trabajos realizados para evaluar el efecto de la crioconservaci&oacute;n en semillas de varias especies de leguminosas sugieren el enorme potencial de la crioconservaci&oacute;n para la conservaci&oacute;n de semillas de estas especies (Cardoso et al, 2000).</p>     <p><b>Almacenamiento</b>. Un mes despu&eacute;s de almacenamiento en condiciones de cuarto frioo (H R: 55% y T:18&deg;C), las semillas con 10%, 8% y 6% de humedad redujeron, respectivamente, su germinaci&oacute;n en 20%, 6% y 14%. Las semillas almacenadas en las condiciones ambientales perdieron dr&aacute;sticamente la germinaci&oacute;n (40%, 34% y 34%) para los contenidos de humedad 10%, 8% y 6 %, respectivamente (<a href="#Cuadro 4">Cuadro 4</a>), indicando, claramente, la sensibilidad de las semillas de esta especie a las condiciones de almacenamiento.</p>     <p>    <center><a name="Cuadro 4"><img src="img/revistas/acag/v58n3/v58n3a08t4.GIF"></a></center></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Conclusiones</font></center></b></p>     <p>De los resultados de este estudio es posible concluir lo siguiente:</p> <ul>      ]]></body>
<body><![CDATA[<li>Las semillas de Cratylia argentea (Desvaux) O. Kuntze presentan alta calidad fisiol&oacute;gica inicial y ausencia de latencia f&iacute;sica o fisiol&oacute;gica, pero reducen su germinaci&oacute;n dr&aacute;sticamente en condiciones no controladas de almacenamiento.</li>     <li>Las semillas pierden agua r&aacute;pidamente, reduciendo el contenido de humedad de 11% a 6%, en las primeras 4 h de almacenamiento.</li>     <li>Las semillas presentan una reducci&oacute;n importante de la germinaci&oacute;n en los niveles bajos de contenido de humedad (&lt;8%) indicando un probable comportamiento no ortodoxo de las semillas de esta especie.</li>     <li>Los mejores resultados se encontraron cuando las semillas con 8 % de humedad fueron crioconservadas en NL durante 1 mes.</li>     </ul>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Agradecimientos</font></center></b></p>     <p>Los autores agradecen a la Divisi&oacute;n de Investigaciones de la Universidad Nacional de Colombia-sede Palmira (DIPAL) y a Colciencias por el apoyo y la financiaci&oacute;n del presente trabajo de investigaci&oacute;n.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Referencias</font></center></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Arce, K.; Bonilla C.; S&aacute;nchez O., M. S.; y Escobar, R. 2007. Morfoanatom&iacute;a y respuesta fisiol&oacute;gica de las semillas de chambimbe a condiciones de crioconservaci&oacute;n. Acta Agron&oacute;mica 56(3):135-140.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-2812200900030000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Cardoso, A.; Pita, V. J. M.; y Gomes, G. J. P. 2000. Efecto de la crioconservaci&oacute;n sobre la germinaci&oacute;n de semillas de leguminosas. Rev. Brasil. Produtos Agroind. 2(1):67-71.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-2812200900030000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Chac&oacute;n, P. y R.O. Bustamante. 2001. The effects of seed size and pericarp on seedling recruitment and biomass in <i>Cryptocarya alba</i> (Lauraceae) under two contrasting moisture regimes. Vegetatio 152 (2), 137- 144.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-2812200900030000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Cromarty A. S. et al. 1982. The Design of seed storage facilities for genetic conservation. IBPGR, Secretarial. Roma. 96 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-2812200900030000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Delouche, J. C. 1971. Precepts of seed storage in handbook of seed technology. Mississipi State University. Agron. Techn. 119-153.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-2812200900030000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Delouche, J. C.; Wayne, M.; Raspet, M.; y Lienhard, M. 1971. Prueba de la viabilidad de la semilla con tetrazol. M&eacute;xico/Buenos Aires. 1<sup>a</sup> ed. esp. 71 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-2812200900030000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Engelmann, F. F. 2000. Importancia de la desecaci&oacute;n para la crioconservaci&oacute;n de semillas recalcitrantes y especies de propagaci&oacute;n vegetativa. IPGRI, Via delle Sette Chiese 142, 00145. Roma.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-2812200900030000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Ellis, et al. 1995. Survival and vigor of (<i>lactuca sativa</i>) and sunflower (<i>helianthus anuus</i>) seed stored at low and very-low moisture contents. Ann. Bot. 76(5):521-534.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-2812200900030000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Ferguson, J. 1994. Semillas de especies forrajeras tropicales. Conceptos, casos y enfoque de la investigaci&oacute;n y la producci&oacute;n. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), Cali, Colombia. 370 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-2812200900030000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hong, T. y Ellis, R. 1996. Protocolo para determinar el comportamiento de las semillas en almacenamiento. Instituto Internacional de Recursos Gen&eacute;ticos de Plantas (IPGRI). Roma, Italia. Nelly S&aacute;nchez (UN-Palmira, traductora). Bol. T&eacute;c. 85 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-2812200900030000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hoekstra, F.; Haigh, A.; Tettero, F.; y van Roekel, T. 1994. Changes in soluble sugars in relation to desiccation tolerance in cauliflower seeds. Seed Sci. Res. 4:143-147.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-2812200900030000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hong, T. D. y Ellis, R. H. 1992b. The survival of germinating orthodox seeds after desiccation and hermetic storage. J. Exp. Bot. 43:239-247.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-2812200900030000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ISTA (Internacional Seed Testing Association). 1999. Reglas Internacionales para ensayos de semillas. Ensayo topogr&aacute;fico al tetrazolio. Secretar&iacute;a de Estado de Agricultura y Ganaderia. Espa&ntilde;a.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-2812200900030000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ISTA (Internacional Seed Testing Association). 2005 International Rules for Seed Testing. Basserrsdorf, CH–Suiza.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-2812200900030000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Lascano, C. E. 1998. Calidad nutritiva y utilizaci&oacute;n de <i>Cratylia argentea</i> en: Pizarro, E. A. y Coradin L. (eds.). Taller de trabajo sobre <i>Cratylia argentea</i>. Brasilia, D.F. p. 83-97.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-2812200900030000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Mwang&#39;Ingo, P.; Teklehaimanot, Z.; Maliondo, S.; y Msanga, H. 2004. Storage and presowing treatment of recalcitrant seeds of Africa sandalwood. Seed Sci. Tech. 32, 547-560&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-2812200900030000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Nkang, A. 2002. Carbohydrate composition during seed development and germination in two sub-tropical rainforest tree species (<i>Erythrina caffra</i> and <i>Guilfoylia monostylis</i>). J. Plant Physiol. 159 (5):473-483.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-2812200900030000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Peters, M.; Franco, L. H.; y Schmidt, A. 2003. Especies forrajeras multiprop&oacute;sito. En:<a href=" http://isa.ciat.cgiar.org/catalogo/listado_es.jsp?pager.offset=25&amp;tema=forrajes" target="blank">http://isa.ciat.cgiar.org/catalogo/listado_es.jsp?pager.offset=25&amp;tema=forrajes.</a> 02.05.2009.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-2812200900030000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Pizarro, E. A.; Carvalho, A. M.; y Ramos, A. B. 1995. Introducci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de leguminosas forrajeras arbustivas en el Cerrado brasile&ntilde;o. En: Coradin, L. (eds.). Potencial de g&eacute;nero <i>Cratylia</i> como leguminosa forrajera. Taller de trabajo sobre <i>Cratylia argentea</i>. Embrapa-CPAC, CIAT, Brasilia, D. F. p. 40-49.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-2812200900030000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Rey, H.Y. y Mroginski, L. A. 2009.Cryopreservation of <i>Arachis pintoi</i> (Leguminosae) seeds. Seed Scie Tech. 37 (1):202-205.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-2812200900030000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Vertucci, C; Ross, E.; y Crane, J. 1994. Theoretical basis for seed storage protocols. III. Optimun moisture contents for pea seeds stored at different temperatures. Ann. Bot. 74:531-540.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-2812200900030000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Villa, A. L.; Jimenez, P. &Eacute;.; y Valbuena, R. I. 2007. Preliminary study of the establishment of cryoconservation protocol for oil palm (Elaeis guineensis Jacq). Agron. Col. 25(2):215-223.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-2812200900030000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Zhang, X. Y. y Tao, L. 1989. Silica gel seed drying for germoplasma conservation-practical guidelines. Plant Genet Res. 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