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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A total of 235 accessions of Capsicum sp from the gene bank of the Colombian National University campus Palmira’s were screened under controlled glasshouse conditions for their reaction to pepper deforming mosaic virus. Only 5.5 % 8139 of the accessions inoculated showed resistance to the Virus, as determined by symptom expression and serological (PTA-ELISA and RT-PCR). The resistant genotypes included varieties of C. annuum, C frutescens, C. chinense y C. baccatum.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="4">Evaluaci&oacute;n de accesiones de <i>Capsicum</i> spp. por su reacci&oacute;n al virus del mosaico deformante del piment&oacute;n (PepDMV)</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Screening of <i>Capsicum</i> spp. to the deforming mosaic virus from pepper (PepDMV)</font></center></b></p>     <p><i>    <center>Catherine Pardey R.<sup>1</sup>, Andr&eacute;s M. Posso T.<sup>2</sup> Mario A. Garc&iacute;a D.<sup>3</sup></center></i></p>     <p><sup>1</sup>Profesora. Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad del Magdalena. <sup>2</sup>Laboratorista. Laboratorio de biolog&iacute;a molecular, Universidad Nacional de Colombia Sede Palmira <sup>3</sup>Profesor Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia sede Palmira A.A. 237 Palmira Valle del Cauca, Colombia. Autor para correspondencia: <a href="mailto:magarciad@palmira.unal.edu.co">magarciad@palmira.unal.edu.co</a> </p>     <p>    <center>Rec. 10.08.09 Acep. 25.01.10</center></p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>    <center>Resumen</center></b></p>     <p>Se evaluaron 235 accesiones de <i>Capsicum</i> spp. procedentes del Banco de Germoplasma de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira en condiciones de invernadero por su reacci&oacute;n al Virus deformante del Piment&oacute;n (PepDMV). Solamente se identificaron 13 accesiones (5%) como resistentes al virus, seg&uacute;n la ausencia de s&iacute;ntomas y ausencia del virus en pruebas serol&oacute;gicas (PTA-ELISA y RT-PCR). Los materiales resistentes incluyen variedades de <i>C. annuum</i>, <i>C. frutescens</i>, <i>C. chinense</i> y <i>C. baccatum</i>.</p>     <p><b>Palabra clave:</b> <i>Capsicum</i>, potyvirus, virus del mosaico deformante del piment&oacute;n, PepDMV, evaluaci&oacute;n.</p> <hr size="1">     <p>    <center><b>Abstract</center></b></p>     <p>A total of 235 accessions of Capsicum sp from the gene bank of the Colombian National University campus Palmira’s were screened under controlled glasshouse conditions for their reaction to pepper deforming mosaic virus. Only 5.5 % 8139 of the accessions inoculated showed resistance to the Virus, as determined by symptom expression and serological (PTA-ELISA and RT-PCR). The resistant genotypes included varieties of <i>C. annuum</i>, <i>C frutescens</i>, <i>C. chinense</i> y <i>C. baccatum</i>.</p>     <p><b>Key words:</b> <i>Capsicum</i>, potyvirus, virus del mosaico deformante del piment&oacute;n, PepDMV, screening.</p> <hr size="1">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Introducci&oacute;n</font></center></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los potyvirus constituyen uno de los principales grupos de virus que atacan las especies cultivadas de <i>Capsicum</i> en todo el mundo (Green y Kim, 1991). En el Valle del Cauca, Colombia, se ha comprobado que el principal virus que afecta a las especies de este g&eacute;nero es el potyvirus causante del mosaico deformante del piment&oacute;n (PepDMV) (Morales et al., 2005).</p>     <p>Las solan&aacute;ceas incluyen numerosas especies hospederas de potyvirus, los cuales pueden causar s&iacute;ntomas de mosaico (manchas de color verde oscuro y verde claro) y deformaciones diversas en todos los &oacute;rganos de las plantas afectadas, incluyendo los frutos.</p>     <p>En Colombia las p&eacute;rdidas econ&oacute;micas en cultivos son atribuidas principalmente a problemas virales. El monitoreo del virus en el Valle del Cauca as&iacute; lo confirma (Pardey; 2008), lo que justifica el desarrollo de l&iacute;neas con resistencias a estos virus para obtener variedades mejoradas de especies de <i>Capsicum</i>.</p>     <p>El objetivo del trabajo fue evaluar accesiones existentes en el Banco de Germoplasma de <i>Capsicum</i> de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira, para identificar materiales resistentes al virus del mosaico deformante del piment&oacute;n (PepDMV).</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></center></b></p>     <p>En un invernadero en condiciones controladas de aireaci&oacute;n, humedad y temperatura y libre de insectos, se sembraron 235 accesiones de <i>Capsicum</i> spp. con 10 plantas cada una. Las inoculaciones del virus fueron realizadas dos veces por semana durante dos semanas con el aislamiento del Virus del mosaico deformante del piment&oacute;n, mantenido en el Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT) sobre plantas de <i>Nicotiana benthamiana</i>.</p>     <p>La evaluaci&oacute;n visual se inici&oacute; aproximadamente tres semanas despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n, cuando las hojas verdaderas mostraron s&iacute;ntomas, utilizando la escala de evaluaci&oacute;n a PepDMV (<a href="#Cuadro 1">Cuadro 1</a>). La evaluaci&oacute;n se prolong&oacute; durante dos semanas con el fin de observar la expresi&oacute;n de s&iacute;ntomas tard&iacute;os en algunas plantas. Las variables evaluadas fueron: mosaico, deformaci&oacute;n e incidencia (<a href="img/revistas/acag/v59n1/v59n1a12g1.JPG" target="blank">Foto 1</a>). Se realizaron dos evaluaciones en el tiempo. Las plantas sin s&iacute;ntomas se evaluaron mediante prueba inmunoenzim&aacute;tica PTA ELISA en el modo indirecto de fijaci&oacute;n del ant&iacute;geno a la placa. Las placas se trataron con los ant&iacute;genos o muestras maceradas en diluci&oacute;n aproximada de 1/10, usando una soluci&oacute;n amortiguadora de carbonato de sodio para el cubrimiento. Esta soluci&oacute;n tambi&eacute;n sirvi&oacute; de control blanco. Como anticuerpo se us&oacute; un monoclonal espec&iacute;fico (PTY 1) para Potyvirus (AGDIA, Elkhart, IN), a una diluci&oacute;n 1/200 en soluci&oacute;n amortiguadora de PBS-Tween m&aacute;s 0.2% de Alb&uacute;mina de suero bovino (BSA Sigma A-4503) y 2% de Polivinilpirrolidona MW 40.000 (Sigma PVP-40).</p>     <p>    <center><a name="Cuadro 1"><img src="img/revistas/acag/v59n1/v59n1a12c1.JPG"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Como conjugado se utiliz&oacute; una inmunoglobulina comercial contra rat&oacute;n, marcada con Fosfatasa Alcalina (Sigma A-5153) en diluci&oacute;n 1/2000. Con la muestra y el conjugado se realizaron incubaciones de 2 h a temperatura ambiente y las placas con los anticuerpos monoclonales se dejaron a 4 &deg;C durante toda la noche. Para detecci&oacute;n del complejo ant&iacute;geno-anticuerpo-conjugado, se utiliz&oacute; como substrato de color una soluci&oacute;n fresca de P-Nitrofenil Fosfato (Sigma 104 105) a una concentraci&oacute;n de 1mg/ml en tamp&oacute;n Dietnolamina a 9.7%, pH 9.8. Las reacciones colorim&eacute;tricas se cuantificaron en valores de absorbancia a 405 nm usando un lector de ELISA Dynex MRX a 30 y 60 min despu&eacute;s de agregado el substrato, sin detener la reacci&oacute;n. En todas las pruebas de ELISA se incluy&oacute; un control positivo (bean common mosaic virus) y tejido de plantas sanas como control negativo.</p>     <p>A las plantas resistentes a potyvirus por prueba serol&oacute;gica se les realiz&oacute; RT-PCR (Reverse Transcriptase Polimerase Chain Reaction). Se tomaron 30 mg de tejido foliar para la extracci&oacute;n de ARN, utilizando el Kit RNeasy Plant Mini Kit (Qiagen). A partir de 10 &micro;l de ARN se sintetiz&oacute; el ADN complementario (ADNc) en un volumen final de reacci&oacute;n de 20 &micro;l conteniendo tamp&oacute;n 1X, oligo (dT) 0.5 &micro;M, dNTPs 0,5 mM, DTT 5 mM y 200 U de transcriptasa reversa M-MLV. La mezcla se incub&oacute; por 1 h a 37 &deg;C seguida de 10 min a 70 &deg;C. Para la amplificaci&oacute;n del ARN viral se utilizaron el primer degenerado U341, 5&#39;- ATG RTI TGG TGY ATI GAI AAY GG-3 y el primer oligo (dT) Promega, WI que amplifica parte de la prote&iacute;na de la c&aacute;pside y la regi&oacute;n no traducida (3&#39;-RNT). Se utilizaron 2 &micro;l de la transcripci&oacute;n inversa para la PCR en volumen final de 25 &micro;l con concentraciones finales de tamp&oacute;n taq 1X, MgCL<sub>2</sub>, 2,5 mM, dNTPs 0,2 mM, U341 y oligo (dT) 0,2 &micro;M y 1 unidad de Taq polimerasa (Fermentas). Las condiciones de amplificaci&oacute;n fueron 94 &deg;C por 2 min, seguido de 30 ciclos de 94 &deg;C por 30 seg, 50 &deg;C por 1 min y 72&deg;C por 1 min. Se realiz&oacute; una extensi&oacute;n final a 72 &deg;C por 5 min. Los productos amplificados se analizaron por electroforesis de agarosa al 1.2% te&ntilde;ido con bromuro de et&iacute;dio y visualizados bajo luz ultravioleta.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Resultados y discusi&oacute;n</font></center></b></p>     <p>&uacute;nicamente 13 accesiones de 235 inoculadas mec&aacute;nicamente con el PepDMV no presentaron s&iacute;ntomas de infecci&oacute;n sistem&aacute;tica (<a href="img/revistas/acag/v59n1/v59n1a12c2.JPG" target="blank">Cuadro 2</a>). En las plantas sintom&aacute;ticas se present&oacute; diversidad de s&iacute;ntomas (Foto 1) desde mosaicos y deformaci&oacute;n hasta el enanismo, seg&uacute;n el genotipo. Las pruebas de inmunolog&iacute;a y de RT-PCR comprobaron la ausencia del virus (<a href="img/revistas/acag/v59n1/v59n1a12g2.JPG" target="blank">Foto 2</a>). En algunos casos, se observaron genotipos altamente susceptibles en estados temprano de desarrollo vegetativo, mientras que otras accesiones mostraron la susceptibilidad antes de comenzar la floraci&oacute;n. La resistencia se encontr&oacute; tanto en frutos grandes como peque&ntilde;os; en frutos picantes y no-picantes, y en colores rojos y amarillos.</p>     <p>Las accesiones que mostraron plantas resistentes fueron: 13, 66, 91, 139 que pertenecen a la especie <i>C. annuum</i> incluyendo la variedad comercial de piment&oacute;n Serrano y Cayenne (<a href="img/revistas/acag/v59n1/v59n1a12g3.JPG" target="blank">Foto 3</a>). En la especie <i>C. chinense</i> se mostraron resistentes las accesiones 24 y 631 (<a href="img/revistas/acag/v59n1/v59n1a12g4.JPG" target="blank">Foto 4</a>); en <i>C. baccatum</i>, la accesi&oacute;n 26 (<a href="img/revistas/acag/v59n1/v59n1a12g5.JPG" target="blank">Foto 5</a>) y en <i>C. frutescens</i> las accesiones 70, 232cy, 332ay, 293by (<a href="img/revistas/acag/v59n1/v59n1a12g6.JPG" target="blank">Foto 6</a>).</p>     <p>La resistencia al virus se observ&oacute; en <i>C. annuum</i>, <i>C. frutescens</i>, <i>C. chinense</i> y <i>C. baccatum</i>, especies que tienen h&aacute;bitat de crecimiento espec&iacute;ficos (Smith y Heiser, 1957). <i>Capsicum annuum</i> se distribuye desde el sur de M&eacute;xico hasta Colombia; <i>C. frutescens</i> se distribuye por las zonas costeras del oc&eacute;ano Pac&iacute;fico con altas temperaturas desde M&eacute;xico hasta la costa norte de Colombia; <i>C. chinense</i> se encuentra en la selva Amaz&oacute;nica; y <i>C. baccatum</i> es originario de los Andes peruanos.</p>     <p>La resistencia a virus no fue completa sobre el n&uacute;mero de plantas evaluadas (Cuadro 2), solo algunas accesiones mostraron resistencia en todas las plantas inoculadas. Se recomienda hacer multiplicaci&oacute;n de semillas de las plantas identificadas como resistentes al virus y continuar realizando autopolinizaciones controladas con ellas para lograr la fijaci&oacute;n de la resistencia.</p>     <p>La t&eacute;cnica serol&oacute;gica PTA ELISA y la molecular RT-PCR permitieron la detecci&oacute;n del virus. La serol&oacute;gica se emple&oacute; despu&eacute;s de hacer una eliminaci&oacute;n visual de plantas con s&iacute;ntomas para evaluar las plantas asintom&aacute;ticas. La RT-PCR se utiliz&oacute; para validar la ausencia de part&iacute;culas virales en la plantas que mostraron reacci&oacute;n negativa en la prueba serol&oacute;gica. Ambas t&eacute;cnicas mostraron eficiencia para la detecci&oacute;n, sin embargo, el tiempo y costos de implementaci&oacute;n de la t&eacute;cnica RTPCR son m&aacute;s bajos.</p>     <p><b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="verdana" size="3">Conclusiones</font></center></b></p> <ol>     <li>Se encontraron en el banco de germoplasma de <i>Capsicum</i> de la Universidad Nacional de Colombia 13 accesiones con resistencia al Virus deformante del piment&oacute;n (PepDMV); seis (6) accesiones corespondieron a <i>C. annuum</i>, cuatro (4) a <i>C. frutescens</i>, dos (2) a <i>C. chinense</i> y una (1) a <i>C. baccatum</i>. </li>     <li>Las variedades comerciales de aj&iacute; Cayenne y la de piment&oacute;n Serrano, esta &uacute;ltima liberada por la Universidad Nacional de Colombia, poseen resistencia a PepDMV.</li>     <li>La t&eacute;cnica PTA ELISA y la RT-PCR permitieron la detecci&oacute;n de PepDMV</li>     </ol>                                                                                                           </ol>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Agradecimientos</font></center></b></p>     <p>Los autores expresan su agradecimiento al Ministerio de Agricultura por la financiaci&oacute;n de la investigaci&oacute;n. Al doctor. Francisco Morales del Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), por su orientaci&oacute;n en el estudio; al ingeniero Mauricio Casta&ntilde;o del Laboratorio de Virolog&iacute;a del CIAT, por sus servicios t&eacute;cnicos.</p>     <p><b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="verdana" size="3">Referencias </font></center></b></p>     <!-- ref --><p>Morales, F.; Mart&iacute;nez, A. K.; Velasco, A. C.; Arroyabe, J.; y Olaya, C. 2006. Identificaci&oacute;n de un potyvirus que afecta aj&iacute; y piment&oacute;n (<i>Capsicum</i> spp.) en el Valle del Cauca. Fitopatol. Colomb. 24(2):77 - 80.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0120-2812201000010001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Pardey, R., C. 2008. Caracterizaci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de accesiones de <i>Capsicum</i> del banco de germoplasma de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira y determinaci&oacute;n del modo de herencia de la resistencia a potyvirus (PepDMV). Tesis de doctorado. Universidad Nacional de Colombia sede Palmira. 108 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-2812201000010001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Smith, P. G. A y Heiser, C. B. 1957. Taxonomy of <i>Capsicum sinense</i> Jacq. and the geographic distribution of the cultivated Capsicum species. Bull. Torrey. Bot. Club 84(6):413 - 420&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-2812201000010001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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