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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Susceptibilidad de genotipos de Solanum spp. al nematodo causante del nudo radical Meloidogyne spp. &#40;chitwood&#41;]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Susceptibility of genotypes of Solanum spp. to the nematode causative of the root knot Meloidogyne spp. &#40;chitwood&#41;]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The green orange &#40;Solanum quitoense L.&#41; crop has decreased in its productivity due to the pathogens attack such as the root knot nematode Meloidogyne spp. In the Nariño Department of Colombia, pest incidences near to 79&#37; and losses of 50&#37; have been reported. In this study, 45 genotypes of Solanum quitoense were collected in Nariño and Putumayo Departments. Four wild genotypes &#40;S. mammosum, S. hirtum, S. marginatum and S. umbellatum&#41; were collected to look for nematode resistance sources. Nine plants of each genotype two month old were inoculated with 10000 eggs of Meloidogyne spp., leaving three plants as control by each material. The evaluated variables were: plant height, pest severity, pest incidence, fresh weight &#40;stem and root&#41; and Meloidogyne spp. prevalent species. A genotype classification was made through a pest resistance scale and regression among severity and the rest of variables to determine the effect of Meloidogyne spp. over the plant genotypes. The results showed 100&#37; nematode incidence in all genotypes, resistant genotypes ².04&#37;, 34.7&#37; moderately resistant, 42.8&#37; moderately susceptible, 18.3&#37; were susceptible, and 2.04&#37; highly susceptible. The SQbr05 resistant genotype, was not affected by severity. On the other hand, the pest susceptible genotype SQbc04 showed significant reductions in stem and root fresh weight &#40;R² &#61; 0.71 and 0.98&#41;, the wild genotype &#40;S. mammosum&#41; was highly susceptible, Meloidogyne incognita showed 55.31&#37; of presence. The SQbr05 genotype is promising to be evaluated in field.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="4">Susceptibilidad de genotipos de Solanum spp. al nematodo causante del nudo radical Meloidogyne spp. (chitwood)</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Susceptibility of genotypes of Solanum spp. to the nematode causative of the root knot Meloidogyne spp. (chitwood)</font></center></b></p> 				    <p><i>    <center>Cristian Gelpud Chaves, Edwin Mora Marcillo, Claudia Salazar Gonzalez, </center></i></p> 				    <p>Facultad de Ciencias Agr&iacute;colas, Universidad de Nari&ntilde;o, Pasto, Colombia. </p> 				    <p>Autor para correspondencia: 				<a href="mailto:claudiasalazarg@yahoo.com">claudiasalazarg@yahoo.com</a>, 				<a href="mailto:claudiasalazarg@yahoo.com">cristian_gelpud@latinmail.com</a>,  				<a href="mailto:edwin.mora.m@hotmail.com">edwin.mora.m@hotmail.com</a>, 				<a href="mailto:cbet70@yahoo.com">cbet70@yahoo.com</a></p> 				 				    <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>Recibido: 13-08-2010 Aceptado: 18-03-2011</center></p> 				 			        <p><hr size="1"></p> 			   				    <p><b>    <center>Resumen</center></b></p> 				 				    <p>El cultivo del lulo (Solanum quitoense L.) presenta una disminuci&oacute;n en su productividad, debido al ataque de pat&oacute;genos como el nematodo del nudo radical Meloidogyne spp., en el Departamento de Nari&ntilde;o (Colombia), se han reportado incidencias cercanas al 79&#37;, y p&eacute;rdidas del 50&#37;. En la presente investigaci&oacute;n, se colectaron 45 genotipos de (Solanum quitoense L.) en los Departamentos de Nari&ntilde;o y Putumayo y 4 genotipos silvestres (S. mammosum, S. hirtum, S. marginatum y S. umbellatum) buscando fuentes de resistencia al nematodo. Se inocularon 9 plantas de cada genotipo de dos meses de edad con 10000 huevos de Meloidogyne spp., dejando tres testigos por cada material. Las variables evaluadas fueron: altura de planta, severidad, incidencia, peso fresco (tallo y ra&iacute;z) y especies prevalentes de Meloidogyne spp. Se hizo una clasificaci&oacute;n de genotipos mediante escala de resistencia y regresi&oacute;n entre la severidad y las dem&aacute;s variables para establecer el efecto de Meloidogyne spp. sobre los genotipos de planta. Los resultados mostraron 100&#37; de incidencia del nematodo en todos los genotipos, 2.04&#37; genotipos resistentes, 34.7&#37; moderadamente resistentes, 42.8&#37; moderadamente susceptibles, 18.3&#37; susceptibles, y 2.04&#37; altamente susceptibles. El genotipo SQbr05 resistente, no se vio afectado por la severidad, al contrario SQbc04 genotipo susceptible, mostr&oacute; reducciones significativas en peso fresco de tallo y ra&iacute;z, (R&sup2; = 0.71 y 0.98), el genotipo silvestre (S. mammosum) es altamente susceptible, Meloidogyne incognita present&oacute; 55.31&#37; de presencia. El genotipo SQbr05 es promisorio para ser evaluado en campo.</p> 				    <p>Palabras clave: Genotipo, incidencia, Meloidogyne spp., nematodo del nudo radical, resistencia, severidad, Solanum quitoense, Solanum spp.</p> 				    <p><hr size="1">     <p><b>    <center>Abstract</center></b></p> 				    <p>The green orange (Solanum quitoense L.) crop has decreased in its productivity due to the pathogens attack such as the root knot nematode Meloidogyne spp. In the Nari&ntilde;o Department of Colombia, pest incidences near to 79&#37; and losses of 50&#37; have been reported. In this study, 45 genotypes of Solanum quitoense were collected in Nari&ntilde;o and Putumayo Departments. Four wild genotypes (S. mammosum, S. hirtum, S. marginatum and S. umbellatum) were collected to look for nematode resistance sources. Nine plants of each genotype two month old were inoculated with 10000 eggs of Meloidogyne spp., leaving three plants as control by each material. The evaluated variables were: plant height, pest severity, pest incidence, fresh weight (stem and root) and Meloidogyne spp. prevalent species. A genotype classification was made through a pest resistance scale and regression among severity and the rest of variables to determine the effect of Meloidogyne spp. over the plant genotypes. The results showed 100&#37; nematode incidence in all genotypes, resistant genotypes &sup2;.04&#37;, 34.7&#37; moderately resistant, 42.8&#37; moderately susceptible, 18.3&#37; were susceptible, and 2.04&#37; highly susceptible. The SQbr05 resistant genotype, was not affected by severity. On the other hand, the pest susceptible genotype SQbc04 showed significant reductions in stem and root fresh weight (R&sup2; = 0.71 and 0.98), the wild genotype (S. mammosum) was highly susceptible, Meloidogyne incognita showed 55.31&#37; of presence. The SQbr05 genotype is promising to be evaluated in field.</p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Key-words: Genotype, incidence, Meloidogyne spp., nematode of the root knot, resistance, severity, Solanum quitoense, Solanum spp.</p> 				    <p><hr size="1">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Introducci&oacute;n</font></center></b></p> 				    <p>Los nematodos agalladores de ra&iacute;ces (Meloidogyne spp.), son los m&aacute;s importantes a nivel mundial, tanto por su amplia distribuci&oacute;n como por el elevado n&uacute;mero de familias y especies de plantas que afecta. Adem&aacute;s el g&eacute;nero contiene m&aacute;s de 90 especies que infectan miles de plantas herb&aacute;ceas y le&ntilde;osas (Karssen y Moens, 2006). La familia <span class="long-text">Heteroderidae se considera la de mayor perjuicio econ&oacute;mico (Williamson y Gleason, 2003). As&iacute; mismo, </span>Trudgill y Blok (2001), mencionan que M. incognita prevalece en ecosistemas tropicales siendo el par&aacute;sito m&aacute;s da&ntilde;ino de los cultivos.</p> 				    <p>En Colombia el lulo (Solanum quitoense L.) presenta disminuci&oacute;n en su productividad debido al ataque de enfermedades y plagas, como es el caso del nematodo del nudo radical Meloidogyne spp., que se caracteriza por producir agallas que afectan la absorci&oacute;n de agua y nutrientes, reduciendo la vida &uacute;til del cultivo de 5 a 2 a&ntilde;os, siendo M. incognita, la especie m&aacute;s importante (Tamayo et al., 2003; Tamayo, 2001).</p> 				    <p>Seg&uacute;n el Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural MADR (2010) el &aacute;rea cultivada en lulo para Colombia en 2008 fue de 5631 ha, con una producci&oacute;n de 46457 toneladas y un rendimiento promedio de 8.3 t.ha<sup>-1</sup>. En Nari&ntilde;o para el mismo a&ntilde;o se cultivaron 420 ha, con una producci&oacute;n total de 2331 t y un rendimiento promedio de 5.6 t.ha<sup>-1</sup>. Entre los municipios productores est&aacute;n: San Pedro de Cartago, Col&oacute;n, El Tambo, Ancuya, Buesaco, La Uni&oacute;n, San Lorenzo y Consac&aacute;, entre otros (MADR, 2010). Constituy&eacute;ndose en una actividad econ&oacute;mica importante para Nari&ntilde;o (Chaves et al., 2002; Gaviria, 2004; Betancourth, 2005).</p> 				    <p>En Nari&ntilde;o reportaron incidencia de nudo radical en los municipios de San Jos&eacute; de Alb&aacute;n, Buesaco y Cartago, fue de 79.6&#37;, 63.3&#37; y 57.4&#37; respectivamente (Garc&iacute;a y Obando, 2005).</p> 				    <p>Vanholme et al. (2004), mencionan que M. incognita infecta entre cinco y siete c&eacute;lulas del procambium para inducir en ellas hipertrofia y formar el sitio de alimentaci&oacute;n, generando c&eacute;lulas gigantes y binucleadas. Seg&uacute;n De Almeida-Engler et al. (1999) las c&eacute;lulas son estimuladas a producir diversos ciclos de mitosis sin citoquinesis, form&aacute;ndose c&eacute;lulas gigantes multinucleadas; su expansi&oacute;n se produce por un crecimiento isotr&oacute;pico y su tama&ntilde;o final suele estar alrededor de 400 veces el de una c&eacute;lula vascular normal.</p> 				    <p>Caillaud et al. (2008), indican que la infecci&oacute;n inducida por Meloidogyne spp. provoca la alteraci&oacute;n y modificaci&oacute;n en funciones claves de la planta como el ciclo celular, comunicaci&oacute;n mediante hormonas y s&iacute;ntesis de ADN entre otras, con la consecuente formaci&oacute;n de nudos que engloban las c&eacute;lulas gigantes, siendo los sitios de alimentaci&oacute;n, estando claramente visibles en las infecciones por M. arenaria, M. incognita o M. javanica (Vovlas et al., 2005), los cuales obstruyen el transporte de auxinas en la ra&iacute;z, adem&aacute;s de alterar el flujo de nutrientes desde la ra&iacute;z hacia la parte superior de la planta.</p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Investigaciones realizadas por Fontagro, IICA-Prociandino (2003), indican que en condiciones de campo Meloidogyne spp. ocasionan p&eacute;rdidas en lulo cercanas al 50&#37;, cuando no hay ning&uacute;n tipo de control, y del 40&#37; de reducci&oacute;n de los par&aacute;metros de desarrollo y crecimiento en invernadero.</p> 				    <p>En el marco de las estrategias de lucha contra enfermedades de las plantas, Sa&ntilde;udo y Betancourth (2005), mencionan que la b&uacute;squeda de genotipos que muestren distintos grados de resistencia a ellas, y a la vez con buena capacidad productiva, es la de mayor implicaci&oacute;n desde los puntos de vista, ecol&oacute;gico, agron&oacute;mico y econ&oacute;mico, promoviendo cultivos equilibrados y productivos, que exijan menores vol&uacute;menes y frecuencias de plaguicidas. De otra parte, se pueden seleccionar plantas por resistencia constitutiva, la cual es innata y hace referencia a caracteres morfol&oacute;gicos de la planta &oacute; con resistencia inducida a trav&eacute;s de la activaci&oacute;n de mecanismos de defensa que se presentan posterior al ataque del pat&oacute;geno (Agrios, 2004).</p> 				    <p>Por lo anteriormente expuesto, el presente trabajo se plante&oacute; con el objetivo de evaluar diferentes genotipos de lulo en su reacci&oacute;n al nematodo del nudo radical Meloidogyne spp. buscando fuentes de resistencia que permitan establecer estrategias viables para el manejo de la enfermedad.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></center></b></p> 				    <p>Localizaci&oacute;n: Esta investigaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo en el Laboratorio de Fitopatolog&iacute;a e Invernadero de la Universidad de Nari&ntilde;o, ubicada al noroeste de la ciudad de San Juan de Pasto, altitud de 2540 msnm, 01&deg;12'13'' N y 77&deg;15'23'' O y temperatura promedio de 20&deg;C.</p> 				    <p>Material Vegetal: La colecci&oacute;n de los genotipos de lulo (S. quitoense) se realiz&oacute; en seis municipios del Departamento de Nari&ntilde;o (La Florida, San Pedro de Cartago, La Uni&oacute;n, Berruecos, Buesaco, San Lorenzo) y en los municipios de Santiago y Col&oacute;n (Departamento del Putumayo), adem&aacute;s se evaluaron genotipos silvestres (S. mammosum, S. hirtum, S. marginatum y S. umbellatum) cedidos de la colecci&oacute;n de la Facultad de Ciencias Agr&iacute;colas de la Universidad de Nari&ntilde;o.</p> 				    <p>Colecta: Se seleccionaron plantas con caracter&iacute;sticas sobresalientes en arquitectura, producci&oacute;n, tama&ntilde;o de fruto y ausencia de enfermedades. De cada planta se tomaron cuatro frutos que presentaban estado fisiol&oacute;gico de madurez, &eacute;stos se guardaron en una bolsa individual etiquetada con su procedencia, adem&aacute;s se llev&oacute; registro de coordenadas mediante GPS. De cada genotipo se observaron y anotaron caracter&iacute;sticas agron&oacute;micas como: color del tallo, altura de la planta, color de la hoja, presencia o ausencia de espinas, pistilo corto o largo, color del fruto y carga de la planta. Por lo tanto, se obtuvieron 45 materiales de S. quitoense y cuatro (4) genotipos silvestres S. mammosum, S. hirtum, S. marginatum y S. umbellatum.</p> 				    <p>Propagaci&oacute;n: Se extrajo semilla de frutos, se dej&oacute; fermentar por 24 horas para facilitar la separaci&oacute;n del muc&iacute;lago, &eacute;stas fueron secadas por 2 d&iacute;as en papel peri&oacute;dico a temperatura ambiente, finalmente se realiz&oacute; la siembra en bandejas de germinaci&oacute;n utilizando turba como sustrato con 3 semillas por cada alveolo. Cuando las plantas cumplieron un mes de edad fueron trasplantadas a suelo previamente desinfestado en bolsas de 2 kg de capacidad.</p> 				    <p>Fuente de in&oacute;culo: Se tom&oacute; tejido radical de plantas de lulo infectado por el nematodo, el cual se lav&oacute; y cort&oacute; en peque&ntilde;as secciones, se tomaron 50 g de tejido y se licuaron en 50 ml de agua destilada durante 25 segundos, la soluci&oacute;n obtenida fue pasada a trav&eacute;s de tres tamices 200, 325 y 400 mallas. El material que se retuvo en los tamices de 325 y 400 mallas fue lavado y llevado a un erlenmeyer de 300 ml, esta soluci&oacute;n se agit&oacute; suavemente y se retir&oacute; 1 ml la cual se deposit&oacute; en la rejilla de conteo, as&iacute; se calibr&oacute; una cantidad de 200 huevos/ml de suspensi&oacute;n (Lozada et al., 2002).</p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Inoculaci&oacute;n: La inoculaci&oacute;n de los genotipos se realiz&oacute; a los dos meses de edad, utilizando 9 plantas de cada genotipo (49) a las cuales se les agreg&oacute; 50 ml de suspensi&oacute;n con una cantidad total de 10000 huevos de Meloidogyne spp., a los primeros 5 cm de profundidad del suelo de cada planta (Ma&ntilde;uzca y Var&oacute;n, 2001). Se utilizaron 3 plantas como testigo de cada genotipo, a las cuales se les inocul&oacute; 50 ml de agua destilada (Lozada et al., 2002).</p> 				    <p><b>Variables evaluadas</b></p> 				    <p><b>Incidencia: </b>Para la evaluaci&oacute;n de la incidencia, se observ&oacute; a los 60 d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n (ddi), el n&uacute;mero de plantas de cada genotipo infectadas por Meloidogyne spp., los resultados fueron expresados en porcentaje (&#37;).</p> 				    <p><b>Severidad:</b> A los 60 d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n se evalu&oacute; al azar 4 plantas inoculadas y 2 testigos de cada genotipo usando la escala de infecci&oacute;n radical propuesta por Taylor y Sasser (1983) (<a href="img/revistas/acag/v60n1/v60n1a05f1.jpg" target="blank"> Figura 1 </a>).</p> 				    <p><b>Reacci&oacute;n del genotipo:</b> La determinaci&oacute;n de los diferentes grados de reacci&oacute;n se realiz&oacute; tomando como referencia los grados de severidad calificados en los genotipos seg&uacute;n la escala propuesta por Taylor y Sasser (1983), los cuales se articularon en una escala de reacci&oacute;n planteada por Sa&ntilde;udo et al. (2003), y Sharma et al. (2006) (<a href="img/revistas/acag/v60n1/v60n1a05t1.jpg" target="blank"> Tabla 1 </a>).</p> 				    <p><b>Altura:</b> Se midi&oacute; la altura de los genotipos a los 15, 30, 45 y 60 d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n.</p> 				    <p>Peso fresco: Las mediciones de peso en fresco se realizaron 60 d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n tomando las 4 plantas inoculadas y 2 plantas testigo, de cada genotipo que se calific&oacute; para la obtenci&oacute;n de la severidad y la determinaci&oacute;n de la reacci&oacute;n. Estas fueron lavadas cuidadosamente, se etiquetaron y se pesaron por cada parte (tallo y ra&iacute;z) en fresco (Ni&ntilde;o et al., 2008).</p> 				    <p><b>Identificaci&oacute;n de especies de Meloidogyne: </b>Se trabaj&oacute; patr&oacute;n perineal el cual se hizo extrayendo hembras de ra&iacute;ces infectadas tomadas al azar en los genotipos, estas fueron puestas en un portaobjetos con una gota de glicerina y una gota de agua, con la aguja de disecci&oacute;n se sostuvo la hembra de la parte anterior y con una cuchilla se hizo un corte transversal en la parte media del cuerpo, se dej&oacute; la regi&oacute;n del ano y la vulva para su identificaci&oacute;n (Garc&iacute;a y Obando, 2005; Sa&ntilde;udo et al., 2003), posteriormente, con ayuda de una pajilla se removi&oacute; tejido interno del cuerpo con el fin de identificar con mayor facilidad las l&iacute;neas anales y vulvares (Cepeda-Siller, 2001), sobre el corte se coloc&oacute; un cubreobjetos extendiendo las paredes hacia fuera, tanto el cubre y porta objetos se sellaron con esmalte transparente (Garc&iacute;a y Obando, 2005).</p> 				    <p>Un total de 47 cortes se llevaron al microscopio y se compararon por medio de las claves de Taylor y Sasser (1983). Los patrones perineales obtenidos se observaron y compararon con los patrones determinantes para cada especie y posteriormente se identific&oacute; la especie a la que correspondi&oacute; cada corte, observando la forma, el tipo de arco dorsal, l&iacute;neas de campo lateral y estr&iacute;as de los patrones perineales en las hembras (Cepeda-Siller, 2001).</p> 				    <p>An&aacute;lisis estad&iacute;stico: Para valorar el efecto de la enfermedad sobre los genotipos se realizaron regresiones lineales entre la severidad y las dem&aacute;s variables (Sharma et al., 2006) contrastando genotipos con reacciones de resistencia diferentes; haciendo uso del software estad&iacute;stico S.A.S V 8.</p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>    <center> 				      <p><font face="verdana" size="3">Resultados y discusi&oacute;n</font></p> </center></b></p> <b>Incidencia</b>     <p>Sesenta d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n (ddi) se estableci&oacute; que el 100&#37; de los genotipos fueron afectados por Meloidogyne spp., lo cual indic&oacute; que no se present&oacute; inmunidad en los genotipos. Sin embargo, se obtuvo diferencias en la respuesta de cada uno. Resultados similares mencionan <span class="apple-style-span">Sharma et al. (2006)</span><span class="apple-converted-space">&nbsp;quienes evaluando 23 materiales de arveja (Pisum sativum) a M. incognita, donde encontraron 100&#37; de incidencia 45 (ddi) y distintos grados de reacci&oacute;n al nematodo, lo que permite establecer que los grados de reacci&oacute;n son causados por las caracter&iacute;sticas propias de cada material. La incidencia de Meloidogyne spp., puede ser explicada seg&uacute;n lo planteado por </span>Esmenjaud (1996) quien menciona que las larvas penetran en las ra&iacute;ces de plantas resistentes o susceptibles en n&uacute;meros casi iguales, estos factores de resistencia tanto constitutivos como inductivos caracter&iacute;sticos de cada genotipo conducen a la reducci&oacute;n en el tiempo del factor de reproducci&oacute;n (Fr) del nematodo observ&aacute;ndose variaci&oacute;n en la respuesta. Por otra parte, los nematodos del g&eacute;nero Meloidogyne spp., presentan un elevado n&uacute;mero de especies de plantas sensibles a su parasitismo (Karssen y Moens, 2006).</p> 				    <p><b>Severidad</b></p> 				    <p>Los resultados de severidad 60 ddi indicaron variaci&oacute;n en los grados de reacci&oacute;n de los genotipos evaluados (<a href="img/revistas/acag/v60n1/v60n1a05t2.jpg" target="blank"> Tabla 2 </a>), determinando que de los 49 genotipos colectados el 0&#37; fue catalogado como inmune (I), el 2.04&#37; fue resistente (R), el 34.7&#37; fue moderadamente resistente (MR), el 42.85&#37; moderadamente susceptible (MS), el 18.36&#37; susceptible (S) y el 2.04&#37; altamente susceptible (AS). Los genotipos de lulo comercial (Solanum quitoense) al igual que los genotipos silvestres (S. mammosum, S. hirtum, S. marginatum y S. umbellatum), presentaron distintos grados de respuesta a Meloidogyne spp., el 42.85&#37; de los genotipos es decir 21 materiales presentaron moderada susceptibilidad (26-50&#37; de severidad), lo que permite establecer una marcada sensibilidad de las especies evaluadas al nematodo.</p> 				    <p>La respuesta de los materiales evaluados permiti&oacute; establecer variaci&oacute;n en la reacci&oacute;n, categorizando materiales desde resistentes hasta altamente susceptibles. El genotipo SQbr05 (2.04&#37;) fue catalogado como resistente por presentar baja severidad (1-10&#37;), por el contrario el genotipo silvestre S. mammosum (2.04&#37;) present&oacute; alta severidad (76-100&#37;). Estos datos son similares a los obtenidos por <span class="apple-style-span">Sharma et al. (2006)</span><span class="apple-converted-space">&nbsp;quienes evaluaron la reacci&oacute;n de 23 materiales de arveja (Pisum sativum) a M. incognita 45 ddi encontrando 13&#37; resistentes, 13&#37; tolerantes, 39.13&#37; moderadamente resistentes, 30.43&#37; moderadamente susceptibles y 4.34&#37; susceptibles; estipulando que los</span> mecanismos de respuesta de las especie a Meloidogyne spp., ya sean constitutivos o inductivos se expresan diferencialmente dependiendo de la interacci&oacute;n entre el nematodo y el hospedante, factor que determina la activaci&oacute;n o ausencia en la expresi&oacute;n de estos mecanismos de resistencia.</p> 				    <p>Seg&uacute;n Camacho (1991), la ausencia en la expresi&oacute;n de mecanismos de respuesta es lo que determina inicialmente un abundante n&uacute;mero de sitios de alimentaci&oacute;n del nematodo, elevado n&uacute;mero y tama&ntilde;o de nudos, trae consigo una alta escala de infecci&oacute;n radical. La activaci&oacute;n y respuesta de estos mecanismos en el hospedante pueden alterar el desarrollo del nematodo en su estado de parasitismo, impidiendo el ciclo de reproducci&oacute;n con la consecuente disminuci&oacute;n de los sitios de alimentaci&oacute;n, la escasa formaci&oacute;n de nudos y una baja escala de infecci&oacute;n radical.</p> 				    <p><span class="apple-style-span">En cuanto a la selecci&oacute;n de genotipos con distintos grados de reacci&oacute;n, Hussey y</span><span class="apple-converted-space">&nbsp;</span><span class="apple-style-span">Janssen (2004), </span><span class="apple-converted-space">mencionan que la determinaci&oacute;n del &iacute;ndice de nudosidad (escala de infecci&oacute;n radical) en la selecci&oacute;n de genotipos resistentes en evaluaciones preliminares, constituye una medida apropiada en cuanto se contin&uacute;e con selecciones en evaluaciones que permitan determinar el factor de reproducci&oacute;n (Fr) del nematodo en los materiales seleccionados. Adem&aacute;s de conocer caracter&iacute;sticas de &iacute;ndole agron&oacute;mica, en este sentido, los materiales que presentaron baja escala de infecci&oacute;n radical como resistentes y moderadamente resistentes pueden ser evaluados en campo buscando posibilidades de manejo de la enfermedad en zonas productoras con elevadas incidencias.</span></p> 				    <p><b>Altura de la planta</b></p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los resultados en la variable altura 60 (ddi), mostraron que la presi&oacute;n de in&oacute;culo no afect&oacute; la altura de los genotipos clasificados como resistentes, moderadamente resistentes y susceptibles. Sin embargo, en genotipos clasificados como altamente susceptibles el fitopar&aacute;sito no afect&oacute; la altura, de esta forma el an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal para el material S. mammosum (AS) mostr&oacute; un coeficiente de determinaci&oacute;n que permite establecer un buen ajuste al modelo propuesto (Altura= 38.779-0.0834 severidad), ya que demuestra que el 79&#37; (R<sup>2</sup> = 0.79) de la variaci&oacute;n total de la altura se puede explicar por el efecto de la severidad de la enfermedad.</p> 				    <p>El an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal para los materiales SQbr05 (R), S. hirtum (MR), SQbc04(S), mostr&oacute; que los coeficientes de determinaci&oacute;n no permitieron establecer el ajuste a los modelos propuestos, respectivamente para los materiales, puesto que demostraron &uacute;nicamente el 23&#37;, 0.02&#37;, 3.1&#37;, (R<sup>2</sup> = 0.23, 0.0002, 0.031) de la variaci&oacute;n total de las alturas no es explicable por el efecto de la severidad de la enfermedad (<a href="img/revistas/acag/v60n1/v60n1a05f1.jpg" target="blank"> Figura 2 </a>).</p> 				    <p>Estos resultados concuerdan con los de Jarquin (1999), quien en su investigaci&oacute;n orientada al manejo del nematodo en el cultivo de caf&eacute; (Coffea arabica L.), determin&oacute; que la altura de plantas de caf&eacute; 60 ddi, en presencia de Meloidogyne incognita, no se vio afectada comparada con sus testigos. Lo que indica que no hay un efecto depresivo de la altura en los hospedantes a pesar del desarrollo de la infeccion en la parte radical de la planta. Por otra parte, en materiales categorizados altamente suceptibles como S. mammosum s&iacute; se present&oacute; un efecto depresivo de la altura, en este sentido se puede determinar que el nematodo causa da&ntilde;o suficiente para disminuir la altura en materiales que presenten una elevada severidad y paralelamente el incremento exponencial de la tasa de reproducci&oacute;n del nematodo. Lo cual repercute en la disminuci&oacute;n de la tasa metab&oacute;lica del hospedero debido a la supresi&oacute;n de tejido radical activo y a la interrupci&oacute;n mec&aacute;nica del flujo de agua y nutrientes (Jacquet et al., 2005).</p> 				    <p><b>Peso fresco</b></p> 				    <p>Los an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal para las variables peso fresco ra&iacute;z (<a href="img/revistas/acag/v60n1/v60n1a05f3.jpg" target="blank"> Figura 3 </a>) y peso fresco de tallo (<a href="img/revistas/acag/v60n1/v60n1a05f4.jpg" target="blank"> Figura 4 </a>), indicaron que la severidad de la enfermedad sobre los genotipos que se clasificaron como susceptibles y altamente susceptibles disminuy&oacute; los pesos en fresco de tallo y ra&iacute;z, genotipos clasificados como resistentes y moderadamente resistentes no presentaron disminuci&oacute;n.</p> 				    <p>El an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal para la variable peso fresco de ra&iacute;z en los materiales SQbc04 (S) y S. mammosum (AS) mostraron que los coeficientes de determinaci&oacute;n permitieron establecer buenos ajustes a los modelos propuestos (Peso fresco ra&iacute;z = 6.9185-0.0884 severidad; peso fresco ra&iacute;z = 31.161-0.02182 severidad), respectivamente para los materiales, puesto que demostraron que el 98&#37; y 72&#37; (R&sup2; = 0.98 y 0.72) de la variaci&oacute;n total del peso fresco de ra&iacute;z se puede explicar por el efecto de la severidad de la enfermedad.</p> 				    <p>Estos mismos materiales SQbc04 (S) y S. mammosum (AS), en el an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal para la variable peso fresco de tallo indicaron que los coeficientes de determinaci&oacute;n obtenidos permitieron establecer buenos ajustes a los modelos propuestos (Peso fresco tallo = 35.38-0.2397 severidad; Peso fresco tallo = 20.438-0.14032 severidad), respectivamente para los materiales, puesto que demostraron que el 71&#37; y 91&#37; (R&sup2; = 0.71 y 0.91) de la variaci&oacute;n total del peso fresco del tallo se puede explicar por el efecto de la severidad de la enfermedad.</p> 				    <p>El an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal para las variables peso fresco de ra&iacute;z y peso fresco de tallo para los genotipos SQbr05 (R) y S. hirtum (MR) mostr&oacute; que los coeficientes de determinaci&oacute;n no permitieron establecer el ajuste a los modelos propuestos, puesto que demostraron que &uacute;nicamente el 27&#37; y 12&#37; (R&sup2; = 0.27 y 0.12), as&iacute; como 0.5&#37; y 19&#37; (R&sup2; = 0.05 y 0.19) de la variaci&oacute;n total del peso fresco de ra&iacute;z y peso fresco del tallo respectivamente, no se explica por efecto de la severidad de la enfermedad.</p> 				    <p>Estos resultados concuerdan con los obtenidos por Sha<span class="apple-style-span">rma et al. (2006), quienes encontraron </span>coeficientes de determinaci&oacute;n<span class="apple-style-span"> altos, pudiendo demostrar que el 94&#37; y el 92&#37; (</span>R&sup2; = 0.94 y 0.92) <span class="apple-style-span">de la variaci&oacute;n total del peso freso y seco en materiales de arveja </span><span class="apple-converted-space">(Pisum sativum) se explica por el efecto del &iacute;ndice de nudosidad causado por M. incognita,</span> indicando que el aumento de la acci&oacute;n parasitaria del nematodo est&aacute; en capacidad de disminuir los pesos tanto de la zona de infecci&oacute;n en este caso el tejido radical y de componentes estructurales de la parte aerea tales como el tallo. Es de se&ntilde;alar que factores de resistencia activados en materiales resistentes y moderadamente resistentes dificultan el proceso de infecci&oacute;n en estados como pre-penetraci&oacute;n, penetraci&oacute;n y reproducci&oacute;n (Sa&ntilde;udo y Betancourth, 2005), impidiendo el acoplamiento en las c&eacute;lulas radicales y posteriormente los sitios de alimentaci&oacute;n, lo que reduce significativamente la tasa de reproducci&oacute;n del nematodo, de la no alteraci&oacute;n del proceso de absorci&oacute;n y adsorci&oacute;n de nutrientes esenciales y agua depende en gran medida el correcto funcionamiento fisiol&oacute;gico de la planta. En este sentido, componentes de crecimiento de la planta como el peso de tallo y ra&iacute;z continuaran su normal desarrollo y no ser&aacute;n afectados en sentido negativo, tal y como se observ&oacute; en genotipos resistentes (SQbr05) y moderadamente resistentes S. hirtum (<a href="img/revistas/acag/v60n1/v60n1a05f5.jpg" target="blank"> Figura 5 </a>). Dicha resistencia en materiales silvestres como S. hirtum, es mencionada por Lobo (2000), quien en investigaciones report&oacute; este material como resistente a M. incognita raza 2. Mientras que la ausencia en la expresi&oacute;n de estos factores de resistencia, marca un avanzado estado y alta tasa de reproducci&oacute;n del nematodo en el tejido radical, alterando gravemente el proceso fisiol&oacute;gico de absorci&oacute;n y adsorci&oacute;n de nutrientes y agua afectando de manera negativa componentes de crecimiento tales como peso del tallo y peso de la ra&iacute;z; esta disminuci&oacute;n se observ&oacute; en los materiales catalogados como susceptibles (SQbc04) y altamente susceptibles (S. mammosum) (<a href="img/revistas/acag/v60n1/v60n1a05f6.jpg" target="blank"> Figura 6 </a>).</p> 				    <p>La susceptibilidad de los hospedantes al nematodo puede ser explicada tambi&eacute;n desde el punto de vista poblacional del pat&oacute;geno. En investigaciones realizadas con materiales silvestres como S. mammosum a diferentes niveles poblacionales de M. incognita, la susceptibilidad aument&oacute; cuando este genotipo fue expuesto a un nivel poblacional alto (Gonzales et al., 2010).</p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El hu&eacute;sped posee innumerables mecanismos de resistencia, pueden ser constitutivos actuando estos en las fases de contacto pre-penetraci&oacute;n y penetraci&oacute;n y mecanismos inductivos que activan en las fases de actuaci&oacute;n y establecimiento. Por lo tanto, la expresi&oacute;n de estos factores se debe a factores gen&eacute;ticos en la interacci&oacute;n del hu&eacute;sped con el nematodo, la expresi&oacute;n de la resistencia involucra la expresi&oacute;n tanto de mecanismos constitutivos como inductivos en distintos grados, el estudio de la resistencia a Meloidogyne spp., en un n&uacute;mero significativo de especies se enfoca a factores inductivos siendo las defensas bioqu&iacute;micas las de mayor implicaci&oacute;n, de esta forma las plantas producen una gran variedad de qu&iacute;micos biol&oacute;gicamente activos y metabolitos secundarios, que est&aacute;n involucrados en la defensa de la planta contra las plagas y enfermedades. Las principales clases de metabolitos secundarios incluyen alcaloides, terpenoides y fenilpropanoides (Wuyts, 2006). Estos tipos de metabolitos secundarios probablemente est&aacute;n expres&aacute;ndose en los genotipos de S. quitoense que se catalogaron como resistentes y en genotipos silvestres considerados moderadamente resistentes como S. hirtum.</p> 				    <p>La acci&oacute;n de los metabolitos secundarios en la defensa contra Meloidogyne spp., es mencionada por Wuyts (2006), quien en ensayos in vitro demostr&oacute; que estos afectan el comportamiento de M. incognita, actuando como atrayentes o repelentes, induciendo par&aacute;lisis, reduciendo la incubaci&oacute;n o causando hasta la muerte.</p> 				    <p>El mismo autor, encontr&oacute; en variedades resistentes de banano a M. incognita una mayor cantidad de fenilpropanoides en comparaci&oacute;n con las variedades susceptibles. Adem&aacute;s report&oacute; paredes celulares en ra&iacute;ces resistentes con niveles significativamente m&aacute;s altos de lignina y &eacute;steres de &aacute;cido fer&uacute;lico, mayores niveles de estos compuestos en las variedades resistentes significan que sus paredes celulares est&aacute;n mejor equipadas para las modificaciones y que aumentan la resistencia contra las enzimas hidrol&iacute;ticas secretadas por los nematodos durante el proceso de infecci&oacute;n.</p> 				    <p>Por otra parte, el &aacute;cido salic&iacute;lico (AS), el cual se acumula en los sitios de localizaci&oacute;n del nematodo, es capaz de migrar a trav&eacute;s de los tejidos, act&uacute;a como un elicitor que dispara los sistemas de se&ntilde;ales de las c&eacute;lulas vegetales, as&iacute; el AS end&oacute;geno induce la expresi&oacute;n de genes que trae como resultado la formaci&oacute;n de una serie de prote&iacute;nas PR y la producci&oacute;n de fitoalexinas (Hussey y Janssen, 2004). Concentraciones de AS probablemente est&eacute;n expresadas en los materiales resistentes de S. quitoense junto con materiales moderadamente resistentes como S. hirtum.</p> 				    <p>Zinoveva et al. (2001), detectaron un orden de diferencia en la magnitud del contenido de AS en ra&iacute;ces y hojas de tomate (Solanum lycopersicon L.), en plantas resistentes y susceptibles a M. incognita, estas diferencias fueron mayores durante la invasi&oacute;n, lo cual brinda soporte a la idea de la inmediata relaci&oacute;n del AS en la resistencia del tomate a nematodos.<span class="long-text"> Con relaci&oacute;n a los mecanismos de resistencia del hu&eacute;sped y la interacci&oacute;n de estos con el nematodo, probablemente el nematodo est&aacute; en capacidad de alterar el funcionamiento bioqu&iacute;mico de la c&eacute;lula, suprimiendo o evadiendo paralelamente los mecanismos de defensa que logre activar el hu&eacute;sped (Robertson et al. 1999, 2000; Prior et al., 2001).</span></p> 				    <p><span class="long-text">Otros estudios determinaron que el nematodo al momento de penetrar el tejido radical secreta un conjunto de prote&iacute;nas por v&iacute;as apopl&aacute;sticas y simpl&aacute;sticas. Este conjunto de prote&iacute;nas alteran en primera instancia la pared celular vegetal facilitando la migraci&oacute;n a trav&eacute;s de la ra&iacute;z de la planta, las prote&iacute;nas secretadas en el citoplasma de la c&eacute;lula ejercen cambios en la expresi&oacute;n bioqu&iacute;mica, estos cambios se acent&uacute;an en materiales susceptibles y altamente susceptibles (Huang et al., 2006; Wang et al., 1999).</span></p> 				    <p>Williamson y Gleason (2003), reportaron en dos cultivares de soya con diferentes grados de susceptibilidad a M. incognita altos niveles de actividad de quitinasas, la inducci&oacute;n temprana de estas enzimas confiere resistencia a nematodos formadores de agallas, adem&aacute;s demostraron que la invasi&oacute;n de los nematodos a la planta result&oacute; en la inducci&oacute;n de PRs en plantas inmunizadas de pepino, la invasi&oacute;n provoc&oacute; incrementos de la actividad de ambas enzimas, los incrementos observados de estas enzimas excedieron los mostrados por las plantas susceptibles bajo las mismas condiciones lo cual indica su funci&oacute;n en la interacci&oacute;n.</p> 				    <p ><b>Especies de Meloidogyne</b></p> 				    <p>Los resultados 60ddi, indicaron que en los genotipos evaluados, el 55&#37; de las especies presentes del g&eacute;nero Meloidogyne pertenencen a M. incognita, el 21&#37; M. arenaria, 13&#37; M. hapla, 9&#37; M. exigua, y el 2&#37; a M. javanica (<a href="img/revistas/acag/v60n1/v60n1a05f7.jpg" target="blank"> Figura 7 </a>).</p>     <p>Estos resultados concuerdan con los reportados por Garc&iacute;a y Obando (2005), quienes en la identificaci&oacute;n de especies del g&eacute;nero Meloidogyne spp. en el cultivo del lulo en los municipios del norte de Nari&ntilde;o, encontraron como especies de mayor frecuencia a M. incognita, con un total de 60.99&#37;, M. arenaria 25.89&#37;, M. exigua 4.61&#37;, M. hapla 4.25&#37;; considerando a M. incognita como la especie de mayor inciencia en el cultivo del lulo en el Departamento de Nari&ntilde;o. Por otra parte Gaviria (2004), se&ntilde;ala a M. incognita como la especie de mayor importancia gracias a su gran capacidad adaptativa a diferenctes ecosistemas tanto en el tr&oacute;pico como en el subtr&oacute;pico.</p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En cuanto a la capacidad reproductiva del nematodo, Lordello (1992) determin&oacute; que cada hembra de M. incognita produce un promedio de 800 huevos llegando incluso hasta 2000 huevos en comparaci&oacute;n con las hembras de otras especies, las cuales producen un promedio de 400 huevos cada una, explicando la elevada tasa de reproducci&oacute;n de M. incognita, lo cual influye para su alta presencia en hospederos susceptibles comparado con especies del mismo g&eacute;nero.</p> 				    <p><b>    <center> 				      <p><font face="verdana" size="3">Conclusiones</font></p> </center></b></p> 				    <p>Dentro de la variabilidad gen&eacute;tica de las especies evaluadas, no se encontraron genotipos inmunes, pero si resistentes hasta altamente susceptibles al ataque de Meloidogyne spp.</p> 				    <p>El nematodo no tiene efecto negativo en las variables evaluadas sobre genotipos resistentes SQbr05 de Solanum quitoense y moderadamente resistentes, pero s&iacute; en los genotipos altamente susceptibles y susceptibles.</p> 				    <p>Existe la posibilidad de avanzar en el manejo de la enfermedad de nudo radical con genotipos resistentes y moderadamente resistentes evaluando su comportamiento en condiciones de campo y valorando el efecto del nematodo sobre los componentes de rendimiento.<b></b></p> 				 <b>    <center>    <p><font face="verdana" size="3">Referencias </font></p></center> 			    </b></p> 				     <!-- ref --><p>Agrios, G. 2004. Plant pathology. Academic Press. New York. 635 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-2812201100010000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Betancourth, C. 2005. Aspectos fitosanitarios de importancia en frutales andinos de clima fr&iacute;o y fr&iacute;o moderado. En: Memorias del I Semirario Internacional sobre agrobiodiversidad y producci&oacute;n de frutales andinos de clima fr&iacute;o y fr&iacute;o moderado. Pasto.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-2812201100010000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Caillaud, M. C.; Dubreuil, G.; Quentin, M.; Perfus-Barbeoch, L.; Lecomte, P.; De Almeida-Engler, J.; Abad, P.; Rosso, M. N.; and Favery, B. 2008. Root-knot nematodes manipulate plant cell functions during a compatible interaction. Journal of Plant Physiology 165: 104-113.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-2812201100010000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Camacho, R. V. 1991. Reacci&oacute;n de tres selecciones de batata a diferentes niveles poblacionales del nem&aacute;todo Meloidogyne incognita. Tesis de grado. Maracay, Ecuador, Universidad Central de Ecuador. 46 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-2812201100010000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Chaves, J.; Gaviria, F.; Torres, F.; y Obando, L. 2002. An&aacute;lisis de algunos aspectos agroecon&oacute;micos del cultivo del lulo (Solanum quitoense L.). En: Revista de Ciencias Agr&iacute;colas, Vol. XIX No I-II. Universidad de Nari&ntilde;o, Facultad de Ciencias Agr&iacute;colas. Pasto. P&aacute;gs. 178-188.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-2812201100010000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Cepeda-Siller, M. 2001. Nematodos de los frutales. Trillas. M&eacute;xico. 204 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-2812201100010000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>De Almeida-Engler, J.; De Vleesschauwer, V. V.; Burssens, S.; Celenza, Jr. J. L.; Inze, D.; Van Montagu, M.; Engler, G.; and Gheysen, G. 1999. Molecular markers and cell cycle inhibitors show the importance of cell cycle progression in nematode-induced galls and syncytia. Plant Cell 11: 793-808.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-2812201100010000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Esmenjaud, D. 1996. Portainjertos resistentes a nematodos. Aconex 51: 28-32.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-2812201100010000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Fontagro, IICA-Prociandino. 2003. Manejo integrado de plagas para el mejoramiento de la producci&oacute;n sostenible de frutas en la Zona Andina, Informe T&eacute;cnico Final. En: Memorias del Seminario Internacional "Manejo integrado de plagas para el mejoramiento de la producci&oacute;n sostenible de frutas en la zona Andina&quot; Medell&iacute;n - Colombia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-2812201100010000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Garc&iacute;a, F; y Obando, B. 2005. Reconocimiento de especies de Meloidogyne en tomate de &aacute;rbol (Solanum betaceaum cav sent) y lulo (Solanum quitoense L.) en la zona Norte del Departamento de Nari&ntilde;o. Tesis Ingeniero Agr&oacute;nomo. Universidad de Nari&ntilde;o, Facultad de Ciencias Agr&iacute;colas, Pasto. 62 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-2812201100010000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Gaviria, B. 2004. Identificaci&oacute;n de especies de Meloidogyne spp., asociadas con los cultivos de tomate de &aacute;rbol, lulo y granadilla en Colombia. En: Revista Universidad Cat&oacute;lica de Oriente N&deg; 18: 53-65.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-2812201100010000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Gonzales, F.; G&oacute;mez, L.; Rodr&iacute;guez, M.; Pi&ntilde;on, M.; Casanova, A.; Gomez, O.; y Rodr&iacute;guez, I. 2010. Respuesta de genotipos de solan&aacute;ceas frente a Meloidogyne incognita (kofoid y white) chitwood raza 2 y M. arenaria (neal) chitwood. Rev. Protecci&oacute;n Veg. Vol. 22, No. 1.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-2812201100010000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Huang, G.; Dong, R.; Allen, R.; Davis, E. L.; Baum, T. J.; and Hussey, R. S. 2006. A root-knot nematode secretory peptide functions as a ligand for a plant transcription factor. Molecular Plant-Microbe Interactions 19: 463-470.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-2812201100010000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hussey, R. S.; and Janssen, G. J. W. 2004. Root-knot nematode: Meloidogyne Species. In: Starr, J. L.; Cook, R.; and Bridge, J. (Eds.). Plant Resistance to Parasitic Nematodes. CABI Publishing, New York. Pp. 43-70.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-2812201100010000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Jacquet, M.; Bongiovanni, M.; Martinez, M.; Verschave, P.; Wajnberg, E.; and Castagnone-Sereno, P. 2005. Variation in resistance to the root-knot nematode Meloidogyne incognita in tomato genotypes bearing the Mi gene. Plant Pathology 54: 93-99.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-2812201100010000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Jarquin, J. 1999. Efecto de diferentes coberturas vivas sobre Meloidogyne incognita Kofoid y White (1919); y el desarrollo de pl&aacute;ntulas de caf&eacute; (Coffea arabica L.). Universidad Centro Americana; Facultad de Tecnolog&iacute;a y Ciencia del Ambiente. Managua - Nicaruaga. 81 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-2812201100010000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Karssen, G.; and Moens, M. 2006. Root-knot nematodes. In: Perry, R. N.; and Moens, M. (Eds.). Plant Nematology. CABI publishing, Wallingford, U.K. Pp. 59-90.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-2812201100010000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Lobo, M. 2000. Papel de la variabilidad gen&eacute;tica en el desarrollo de los frutales andinos como alternativa productiva. En: Memorias 3er Seminario de Frutales de Clima Fr&iacute;o Moderado. Centro de Desarrollo Tecnol&oacute;gico de Frutales, Manizales, Noviembre15 al 17 de 2000. Pp. 27-36.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-2812201100010000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Lordello, L. 1992. Nematodides das plantas cultivadas. 8ed. Sao paulo: Novel S.A. 314 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-2812201100010000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Lozada, S.; Var&oacute;n, F.; y G&oacute;mez, E. 2002. Nematodos asociados al tomate de &aacute;rbol (Solanum bataceum) en el Valle del Cauca. En: Revista de la Asociaci&oacute;n Colombiana de Fitopatolog&iacute;a y Ciencias Afines, ASCOLFI 26 (2): 93-98.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-2812201100010000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Ministerio de agricultura y desarrollo rural (MADR). 2010. Consolidado agropecuario nacional 2008. Bogot&aacute;. 170 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-2812201100010000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Ma&ntilde;uzca, A.; y Var&oacute;n, F. 2001. Identificaci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de organismos fungosos como posibles agentes biocontroladores de Meloidogyne spp. En: Revista de la Asociaci&oacute;n Colombiana de Fitopatolog&iacute;a y Ciencias Afines, ASCOLFI 25 (1): 33-37.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-2812201100010000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Ni&ntilde;o, N.; Arbel&aacute;ez, G.; y Navarro, R. 2008. Efecto de diferentes densidades poblacionales de Meloidogyne hapla sobre uchuva (Physalis peruviana L.) en invernadero. En: Agronom&iacute;a Colombiana Vol. 26. No 1. Bogot&aacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-2812201100010000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Prior, A.; Jones, J. T.; Blok, V. C.; Beauchamp, J.; McDermott, L.; Cooper, A.; and Kennedy, M. W. 2001. A surface-associated retinol- and fatty acid-bindingprotein (Gp-FAR-1) from the potato cyst nematode Globodera pallida: lipid binding activities, structural analysis and expression pattern. The biochemicall journal 356: 387-394.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-2812201100010000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Robertson, L.; Robertson, W. M.; and Jones, J. T. 1999. Direct analysis of the secretions of the potato cyst nematode Globodera rostochiensis. Parasitology 119: 167-176.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-2812201100010000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Robertson, L.; Robertson, W. M.; Sobczak, M.; Helder, J.; Tetaud, E.; Ariyanayagam, M. R.; Ferguson, M. A.; Fairlamb, A.; and Jones, J. T. 2000. Cloning, expression and functional characterisation of a peroxiredoxin from the potato cyst nematode Globodera rostochiensis. Molecular and Biochemical Parasitology 111: 41-49.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-2812201100010000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Sa&ntilde;udo, B.; y Betancourth, C. 2005. Fundamentos de Fitomejoramiento. Universidad de Nari&ntilde;o. Pasto. 150 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-2812201100010000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Sa&ntilde;udo, B.; Betancourth, C.; y Salazar, C. 2003. Principios de nematolog&iacute;a agr&iacute;cola. Universidad de Nari&ntilde;o, Pasto.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-2812201100010000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><span class="apple-style-span">Sharma, A.; Haseeb, A.; and Abusar, S. 2006. </span>Screening of field pea (Pisum sativum) selections for their reactions to root-knot nematode (Meloidogyne incognita). J. Zhejiang Univ SCIENCE B 7 (3): 209-214.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-2812201100010000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Tamayo, P.; Navarro, R.; y De la Rotta, M. 2003. Enfermedades del cultivo del lulo en Colombia. En: Bolet&iacute;n T&eacute;cnico No 18 Gu&iacute;a de Diagn&oacute;stico y Control. 2 ed. Rionegro, Antioquia: CORPOICA. 48 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-2812201100010000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Tamayo, P. 2001. Principales enfermedades del tomate de &aacute;rbol, la mora y el lulo en Colombia. Corporaci&oacute;n Colombiana de Investigaci&oacute;n Agropecuaria, CORPOICA, Regional 4, Centro de Investigaci&oacute;n â€˜'La Selva''. Rionegro, Antioquia. Bolet&iacute;n T&eacute;cnico 12: 44 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-2812201100010000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Taylor, A.; y Sasser, J. 1983. Identificaci&oacute;n y control de los nematodos de n&oacute;dulo de la ra&iacute;z (especies de Meloidogyne). Proyecto Internacional de Meloidogyne (MIP). Departamento de Fitopatolog&iacute;a - Universidad del Estado de Carolina del Norte - EEUU. Pp. 89-95.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-2812201100010000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Trudgill, D. L.; and Blok, V. C. 2001. Apomictic, polyphagous rootknot nematodes: exceptionally successful and damaging biotrophic root pathogens. Annu. Rev. Phytopathol. 39: 53-77.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-2812201100010000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Vanholme, B.; De Meutter, J.; Tytgat, T.; Van Montagu, M.; Coomans, A.; and Gheysen, G. 2004. Secretions of plant-parasitic nematodes: a molecular update. Gene 332: 13-27.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-2812201100010000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Vovlas, N.; Rapoport, H. F.; Jim&eacute;nez-D&iacute;az, R. M.; and Castillo, P. 2005. Differences in feeding sites induced by root-knot nematodes, Meloidogyne spp., in chickpea. Phytopathology 95: 368-375.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-2812201100010000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Wang, X.; Meyers, D.; Yan, Y.; Baum, T.; Smant, G.; Hussey, R.; and Davis, E. 1999. In plant localization of a beta-1,4-endoglucanase secreted by Heteroderaglycines. Molecular Plant-Microbe Interactions 12: 64-67.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-2812201100010000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Williamson, V. M.; and Gleason, C. A. 2003. Plant-nematode interactions. Current Opinion in Plant Biology 6: 327-333.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-2812201100010000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Wuyts, N. 2006. Interacci&oacute;n entre los nematodos fitoparasitos y el metabolismo secundario de las plantas, con &eacute;nfasis en los fenilpropaniodes en las ra&iacute;ces. Infomusa 15: 43-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-2812201100010000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Zinoveva, S. V.; Perekhod, E. A.; Il'ina, A. V.; Udalova, Zh. V.; Gerasimova, N. G.; and Vasyukova, N. I. 2001. PR Proteins in plants infested with the root-knot nematode Meloidogyne incognita (Kofoid et White, 1919) Chitwood 1949. Doklady Biological Sciences 379: 393-395.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-2812201100010000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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