1Ingeniero Agroindustrial. Facultad Ingeniería Agroindustrial, Grupo de Investigación Tecnologías Emergentes en Agroindustria (TEA), Universidad de Nariño, Pasto, Colombia.
2Profesor Asociado, Facultad Ingeniería Agroindustrial, Grupo de investigación Tecnologías Emergentes en Agroindustria (TEA), Universidad de Nariño. Pasto, Colombia.
*Autor para correspondencia: Osorio_oswaldo@udenar.edu.co , Tel.+057-27314481, Fax.+057-2731448; †andre5505@hotmail.com; ‡ahurtadob@hotmail.com
En este estudio se midió el rendimiento de aceite y la composición de ácidos grasos presentes en semillas de las frutas andinas tropicales: lulo de la variedad castilla (Solanum quitoense), mora de la variedad castilla (Rubus glaucus) y maracuyá (Passiflora edulis). La extracción se hizo con solventes en un extractor Soxhlet utilizando éter etílico al 99.8% de pureza y punto de ebullición 40 - 60 °C. Para identificar los ácidos grasos se empleó cromatografía de gases con detector FID (GC-FID). Los rendimientos en aceite fueron de 8.5% para lulo, 12.2% para mora y 21.2% para maracuyá. Los ácidos grasos encontrados en semillas de lulo fueron palmítico (15.6%) y linoléico (58.1%); en semillas de mora linoléico (50.1%) y linolénico (25.1%) y en las de maracuyá palmítico (15.44%), oleico (15.47%) y linoléico (63.1%). El contenido graso de las semillas evaluadas evidenció su potencial como materia prima oleaginosa y por sus contenidos de ácidos grasos se pueden considerar una fuente importante de componentes para las industrias alimentaria, farmacéutica y cosmética.
Palabras clave: Ácidos grasos, cromatografía, Passiflora edulis, Rubus glaucus, Solanum quitoense.
The objective of the study was to determine yield in oil and composition in the fatty acids present in three different seeds from Andean fruits: Lulo castilla variety (Solanum quitoense); blackberry castilla variety (Rubus glaucus), and the passion fruit or maracuya (Passiflora edulis). The extraction was carried out by solvent extraction method with a Soxhlet extractor using ethyl ether as solvent at 99.8% to purity and boiling point of 40 - 60 ° C. To identify the fatty acids gas chromatography with FID detector (GC-FID) was used. Oil yields were obtained from 8.5% for lulo, 12.2% for blackberry and 21.2% for maracuya. The fatty acids found were the follow: In seeds of lulo were found palmitic acid 15.6% and linoleic acid 58.1%; in seeds of blackberry 50.1% of linoleic acid and linolenic acid 25.1%; in seeds of maracuya, palmitic acid 15.44%, oleic acid 15.47% and linoleic 63.1%. The fat content of the studied seeds evidence their potential as oleaginous raw material and the identification of the previous fatty acids makes them an important source of components for the food, pharmaceutical or cosmetic industry.
Key words: Chromatography, fatty acids, Passiflora edulis, Rubus glaucus, Solanum quitoense.
]]>Los frutales andinos tropicales comprenden especies con diferentes grados de desarrollo y alto potencial de aceptación por los consumidores. Entre ellas sobresalen mora (Rubus glaucus Benth.), lulo (Solanum quitoense Lam.) y algunas pasifloras como maracuyá (Passiflora edulis Sims) (Lobo, 2006).
La mora pertenece a la familia de las rosáceas, el fruto es un agregado de pequeñas drupas de color generalmente púrpura, unidas a un receptáculo cónico que se separa fácilmente de la planta, la semilla es de forma arriñonada y su color varía de púrpura a rojo intenso (Vanarsdel, 1963). El lulo pertenece a la familia Solanácea y al género Solanum que es el más grande y diverso (Bedoya y Barrero, 2009), el fruto es ovoide con cáscara amarilla, anaranjada o parda, cubierta de finas espinas o vellos, internamente se divide en cuatro compartimentos, llenos de pulpa de color verdoso y numerosas semillas (Schultes y Cuatrecasas, 1958). El maracuyá pertenece a la familia Passifloraceae y al género Passiflora, el fruto es una baya de forma globosa, la base y el ápice son redondeados, la corteza es de color amarillo y consistencia dura, lisa y cerosa; contiene de 200- 300 semillas de color negro o violeta oscuro (García, 2002).
En la actualidad estas frutas tienen gran demanda en la industria de jugos y pulpas (Lobo, 2006), razón por la cual generan una cantidad alta de residuos cuyo valor como materias primas no es muy conocido (Brennan et al., 1998). Entre estos residuos se encuentran las semillas caracterizadas por su alto contenido de fibra, constituida principalmente por celulosa, sustancias pécticas y hemicelulosas (Badui, 1999); además de una amplia variedad de componentes según el tipo de semilla y sus tejidos específicos (Stroshine y Hamann, 1993).
En el departamento de Nariño, Colombia, es urgente desarrollar tecnologías para el aprovechamiento de semillas provenientes de frutas procesadas, con el fin de obtener aceites para las industrias farmacéutica y cosmética. Boucher (1999) considera que es urgente tomar conciencia y definir planes de investigación para aprovechar la riqueza de los productos promisorios autóctonos. La obtención de aceites a partir de semillas residuales de frutas procesadas es una alternativa agroindustrial para agregar valor a este tipo de residuo.
García et al. (2003) encontraron residuos de aceites y ácidos grasos en mora, y Ocampo et al., (2007) hallaron triglicéridos de ácidos grasos saturados e insaturados (linoleico, oleico, esteárico y linolénico) en las semillas de guanábana, lo que representa un potencial para usos industriales (Solís et al., 2010).
El presente trabajo tuvo como objetivo determinar el rendimiento de aceites y la composición de ácidos grasos presentes en semillas de mora, lulo y maracuyá, como una alternativa de desarrollo agroindustrial para la utilización integral de estos subproductos en las industrias de alimentos, farmacéuticos y cosméticos.
Materia prima. Se utilizaron muestras de 1 kg de semillas de lulo de la variedad Castilla (Solanum quitoense), mora de la variedad Castilla (Rubus glaucus Benth) y maracuyá (Passiflora edulis), suministradas por la empresa Inpadena, dedicada a la obtención de pulpas de estas frutas en el municipio de Pasto.
Procesamiento. Inicialmente se retiró el exceso de pulpa adherido a las semillas; para ello se lavaron con agua corriente al mismo tiempo que se seleccionaron para eliminar semillas vanas. Posteriormente fueron secadas en bandejas, a una temperatura de 60 °C con velocidad de aire de 20 m/s durante 8 h. Finalmente, las semillas secas fueron pasadas por molino de martillos (Hsiao Lin Machine modelo 61060) y por un tamiz modelo (PS-35 serie 1182) y serie de tamices 10-30, A.S.T.M.E. por 5 min.
Extracción de aceites. Para la extracción de aceites se procesaron 15.00 ± 0.01 g de semillas de cada fruta con diámetro de partícula entre 0.5943 y 0.8407 cm. Para el procedimiento se utilizó un extractor Soxhlet, empleando como solvente éter etílico (99.8%) y punto de ebullición entre 40 °C y 60 °C (Bernal, 1998) con reflujo de 8 h. La recuperación del solvente se realizó por destilación en un evaporador rotatorio (Eyela Oil Bath OSB–2000). El extracto fue secado por 30 min a 60 ± 2 °C en un horno eléctrico (Thermolab Dies) hasta eliminar el solvente residual, se enfrió y se pesó para determinar el rendimiento; finalmente el aceite obtenido fue conservado en viales (frascos de vidrio ámbar con rosca).
Determinación de humedad. Para determinar la humedad en las muestras, se pesaron 2.00 ± 0.01 g que fueron sometidos a una temperatura de 100 °C en un horno eléctrico (Thermolab Dies) durante 24 h hasta alcanzar un peso constante, antes de proceder a determinar su peso seco (Less, 1998).
El pesaje de las muestras, la determinación del rendimiento y la humedad se realizaron en balanza analítica Precisa 310M de 3000 g con precisión de ± 0.01 g.
Determinación de ácidos grasos. Para la preparación de las muestras se utilizó el método de derivatización empleado por los laboratorios especializados de la Universidad de Nariño, que se basa en la técnica de transesterificación catalizada con ácido. Para el efecto, se extrajeron 200 µl de cada aceite a los cuales se les adicionó 1 ml de hexano grado HPLC, posteriormente se prepararon 10 ml de solución al 5% de HCl en CH3OH. Esta solución, en conjunto con la muestra, se dejaron durante 2 h a 70 °C en reflujo y después se agregaron 5 ml de agua destilada antes de dejar en reposo por 10 min, tiempo después del cual se añadieron 2 ml de hexano grado HPLC para finalmente separar la muestra en un embudo especial.
Procedimientos analíticos. El análisis de los ácidos grasos presentes en las semillas fue realizado con el uso de un cromatógrafo de gases marca Shimadzu GC-17.A, con una columna Supelcowax 10 (30m x 0.25mm ID 0.25µm) y detector FID a una temperatura de 280 °C, modo inyección: Split, relación 20:1, a flujo de 1.0 ml/min, temperatura inyector 250 °C. Temperaturas programadas columna: 40 °C hasta 130 °C a razón de 15 °C por minuto, posteriormente se incrementó a 240 °C (10 min) a razón de 30 °C por minuto; por último se llevó a una temperatura de 250 °C aumentando 10 °C por minuto.
Se utilizaron patrones de metil-ésteres de ácidos grasos para las comparaciones respectivas, así como índices de retención para aquellos compuestos no identificados mediante el cromatograma estándar. El diseño experimental fue totalmente aleatorizado, las mediciones se realizaron por triplicado y los resultados se presentaron como valores promedio.
]]> Resultados y discusión
Rendimientos de aceite
Los menores contenidos de humedad y los mayores porcentajes de aceite se encontraron en semillas de maracuyá, seguido de semillas de mora (Cuadro 1). En este estudio los valores de ácido graso en mora fueron mayores a los obtenidos (9.2%) por García et al. (2003). De acuerdo con los porcentajes de grasa, en las semillas de los frutos evaluados es posible predecir su alto potencial como oleaginosas para las industrias de alimentos, farmacéutica y cosmética, altamente consumidoras de aceites vegetales.
Identificación de ácidos grasos
En las muestras analizadas se encontraron los ‘picos’ correspondientes a los estándares de metil ésteres de ácidos grasos a diferentes tiempos de retención, identificando los siguientes: palmítico, esteárico, oleico, linoleico y linolénico, en la tres semillas (Figura 1). También aparece el ácido palmitoleico solo en la semillas de lulo (Solanum quitoense) (Cuadro 2). Los cromatogramas muestran seis señales en el aceite de Solanum quitoense (Figura 2), cinco en Rubus glaucus Benth (Figura 3) y cinco en Passiflora edulis (Figura 4). El análisis de los picos de cada cromatograma mostró los ácidos grasos presentes en las semillas de cada tipo (Cuadro 2). Los resultados permiten comparar los aceites por su composición porcentual en ácidos grasos, la cual varió (P < 0.05) entre las semillas de las diferentes frutas. Es importante enfatizar la presencia de palmitoleico en las semillas de Solanum quitoense.
El ácido graso más abundante en las semillas fue el linoleico en concentraciones > 50%. Este ácido es esencial para los humanos, ya que carece de las enzimas necesarias para insertar dobles enlaces en los átomos de carbono que están más allá del carbono 9 (Ronayne de Ferrer, 2000; Sanhueza et al., 2002; Galgani, 2004; Tapia, 2005) y su importancia radica fundamentalmente en que es un precursor de ácidos grasos de mayor longitud de cadena, entre ellos, el araquidónico, lo que lo caracteriza como un ácido esencial para el metabolismo de los alimentos (Simopoulos, 1991; Peterson et al., 2006).
Según Pariza (1999) los ácidos grasos poli-insaturados (linolénico y linoleico) tienen ingredientes nutracéuticos esenciales para el crecimiento y el buen estado de la piel y el pelo (Ziller, 1994). Estos y los demás aceites identificados en las frutas evaluadas en este estudio, tienen diferentes usos industriales, como es el caso de oleico en la formulación cosmética y en mezclas con aceites minerales (Martini, 2005), y el palmítico como factor de consistencia o de acidificación en emulsiones (Martini, 2005). El linoleico participa en la síntesis de prostaglandinas, en la generación de membrana, y en otros procesos biológicos relacionados con la regeneración celular (Moreno, 1990). Por su parte, los ácidos grasos linoleico, oleico y linolénico son compuestos emolientes que se emplean habitualmente en cosmética y dermofarmacia (Benaiges, 2008).
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