1Grupo de Investigación PLANTAE, Departamento de Biología. Facultad de Ciencias Básicas. Universidad Francisco de Paula Santander, San José de Cúcuta, Colombia. 2Centro de Ciencias Biológicas e da Saúde, Universidade Federal de São Carlos, São Carlos-SP, Brasil. 3Grupo de Investigación PLANTAE. Departamento de Ciencias Agrícolas y Ciencias Pecuarias. Facultad de Ciencias Agrarias y del Ambiente. Universidad Francisco de Paula Santander, San José de Cúcuta, Colombia. * *Autor de correspondencia gchavesbe@gmail.com
En un Oxisol de los Llanos Orientales de Colombia, en condiciones de campo se evaluó el efecto de la aplicación de agroquímicos sobre los microorganismos presentes en un cultivo de arroz secano. Los agroquímicos evaluados fueron Glifosato, Bispiribac, Azoxystrobin y Malatión, aplicados en dosis comerciales, en un diseño experimental de bloques con medidas repetidas. Para el recuento de microorganismos se tomaron muestras compuestas de suelo rizosférico usando la metodología de transectos. A partir de las muestras fueron realizados conteos microbianos empleando dilución en placa y los datos se analizaron empleando análisis de varianza y prueba de comparaciones múltiples. En los conteos se encontraron bacterias Gram (+), Gram (-), actinomicetos, y los grupos funcionales fijadores de nitrógeno y solubilizadores de fósforo, junto con los hongos Trichoderma spp., Fusarium spp. y Penicillium spp. Los hongos, los actinomicetos y los solubilizadores de fósforo fueron los microorganismos más afectados por los agroquímicos, con reducciones en la abundancia. Las bacterias presentaron comportamientos variables dependiendo del agroquímico y los fijadores de nitrógeno fueron estimulados por los tratamientos. Estos resultados indican que los agroquímicos utilizados en el estudio pueden impactar de diferente manera los microorganismos que se encargan de la descomposición de la materia orgánica.
Palabra clave: Agroquímicos, microorganismos, suelo, xenobióticos.
This paper show an analysis of the effect of agrochemicals used in a rice crop on the abundance of Oxisol soil microorganisms in the region of the Eastern Plains of Colombia, under field conditions. Evaluated Agrochemicals were Glyphosate, Bispiribac, Azoxystrobin and Malathion, applied in commercial dosages, in a block design with repeated measures. For the enumeration of microorganisms, soil samples were taken from rhizospheric soil using the transects methodology. From the samples, microbial counts were carried out using the method of dilution in plate and the data were analyzed using the Minitab 14 software using analysis of variance and test for multiple comparisons. In the counts bacteria Gram (+), Gram (-), actinomycetes, and functional groups: nitrogen fixers, and phosphorus solubilizing, together with the fungus, Trichoderma spp., Fusarium spp., and Penicillium spp. were found. In general, fungi, actinomycetes and the phosphorus solubilizing microorganisms were more affected by the agrochemicals with reductions in their abundance. Bacteria presented varying behaviors depending on the agrochemical and the nitrogen fixers were stimulated by the treatments. These results indicate that the chemicals may impact in different ways to the microorganisms that are responsible for the decomposition of organic matter.
Key words: Agrochemicals, microorganisms, soil, Xenobiotics.
Las plagas y enfermedades reducen de manera significativa la producción de los cultivos. Para prevenir los efectos devastadores de estos organismos nocivos se emplean agroquímicos (fungicidas, herbicidas e insecticidas) diseñados para controlar los patógenos o enfermedades en los cultivos comerciales. Estos productos son un componente importante de la agricultura moderna, pero su empleo continuo puede ocasionar numerosos problemas e influir en los microorganismos benéficos del suelo; entre aquellos se encuentran los fungicidas que se emplean con más frecuencia que otra clase de agroquímicos en regiones tropicales (Dardis y Walsh, 2000).
Los agroquímicos son fuente de carbono y nitrógeno y se degradan principalmente por la actividad microbiana. La entrada continua de estos compuestos en el ecosistema del suelo puede afectar los microorganismos y su actividad, lo que ocasiona modificación de los procesos biológicos esenciales para la fertilidad y la productividad de los cultivos (Alvear et al., 2006; Cycoń et al., 2010). La persistencia y dispersión de estos compuestos en el suelo depende de las propiedades físicoquímicas del agroquímico, de las características del suelo y las condiciones climáticas (Caldiz et al., 2007; Hernández-Soriano et al., 2007; Sawunyama y Bailey, 2001).
Los pesticidas disminuyen la actividad de enzimas del suelo y pueden influir en la mayoría de las reacciones bioquímicas, entre ellas: la mineralización de la M.O., la nitrificación, la denitrificación, la amonificación, las reacciones redox, y la metanogénesis (Hussain et al., 2009).
Entre las metodologías para determinar los efectos colaterales y residuales de los pesticidas en la microbiología del suelo se encuentran la tasa de respiración microbiana, el recambio de M.O. la biomasa microbiana y las actividades microbianas como fijación de nitrógeno, nitrificación, denitrificación y actividad enzimática (Chen et al., 2003; Cycoń et al., 2010; Pozo et al., 1994).
En los Llanos Orientales de Colombia, el arroz es uno de los principales cultivos y en Colombia ocupa el segundo lugar por área sembrada (Gutiérrez Alemán et al., 2011). La actividad arrocera se caracteriza por el alto uso de agroquímicos (Gutiérrez Alemán et al., 2011), sin embargo no se conoce el efecto de estas prácticas sobre la microbiota del suelo; por tanto, el objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto de diversos agroquímicos sobre los microorganismos edáficos en un Oxisol cultivado con arroz secano en los Llanos Orientales de Colombia.
Localización
El trabajo se realizó en un Oxisol franco arcilloso en un área de 300 m2, en la vereda Bella Suiza del municipio de Villavicencio, Colombia. El ecosistema es sabana nativa y el sitio experimental se encontraba a 04'07.088 N 073'30.313 O, a 348 m.s.n.m. y una temperatura promedio de 27 °C. La precipitación anual es de 1807.7 mm con 112 días de lluvia y una humedad relativa de 75%. Los muestreos de suelo para análisis se tomaron entre abril y agosto de 2009. Al comienzo del ensayo se tomó una muestra de 500g de suelo para el análisis de las propiedades físicoquímicas (Atlas y Barthe, 2002).
]]> Fase de campoEl manejo del cultivo de arroz secano se hizo de forma convencional, tal como lo realizan los productores de la región. El lote original de sabana nativa fue dividido en 30 bloques de 100 m2. La preparación del suelo consistió en arado con cincel rígido y rastrillo para la siembra del cultivo. Un mes más tarde se aplicó una dosis equivalente de Glifosato a razón de 2.5 lt/ha como herbicida pre-emergente (tratamiento 1 -T1) y 12 días después se realizó la siembra a voleo de la semilla de arroz secano variedad Progreso. Veinte días después de la germinación se aplicó herbicida Bispiribac (0.4 lt/ha) como selectivo posemergente (tratamiento 2 -T2) para malezas gramíneas de hoja angosta. Cuarenta días después de la germinación se aplicó el fungicida Azoxystrobin a razón de 0.5 lt/ha (tratamiento 3 -T3) para el manejo de hongos en el cultivo. Finalmente, 65 días después de la germinación, se aplicó el insecticida Malatión en dosis de 1.5 lt/ha (tratamiento 4 -T4). Las aplicaciones de la secuencia de agroquímicos se consideró como tratamiento fijo para las parcelas bloques, por tanto el diseño experimental fue de medidas repetidas con bloques completamente aleatorizados.
Microbiología de suelos y análisis de datos
Para el conteo de microorganismos en el suelo se tomaron cinco muestras compuestas de 500 g a una profundidad entre 0 y 20 cm usando la metodología de transectos en cada parcela bloque. Los muestreos iniciales se hicieron antes de la aplicación de los agroquímicos y 3 días después de la aplicación de cada producto; las muestras fueron conservadas en bolsas plásticas refrigeradas (4 – 6 °C) y llevadas al Laboratorio de Microbiología de la Fundación de Asesorías para el Sector Rural (Fundases) y el Laboratorio de Suelos de la Facultad de Agronomía de la Universidad Nacional de Colombia sede Bogotá.
La abundancia de los microorganismos fue medida por la técnica de dilución seriada (UFC/g suelo) en medios específicos para cada grupo microbiano, así, los hongos en papadextrosa- agar; las bacterias Gram(-) en agar MacConkey y las Gram(+) y los fijadores de nitrógeno según la metodología propuesta por Matsumoto et al. (2005). Para determinar los solubilizadores de fósforo se empleó el medio Picovskaya (Nautiyal, 1999). Los conteos de microorganismos fueron analizados con el software estadístico Minitab 14 empleando análisis de varianza (ANOVA) y la prueba de comparación múltiple de Dunnett (P < 0.05).
Características del suelo
Los resultados de los análisis físico-químicos del suelo mostraron que los valores (cmol/kg) de Ca (8.3), Mg (2.3), K (1.2) y CICE (18.7) son altos, por lo que este suelo es atípico para los Oxisoles que predominan en los Llanos Orientales de Colombia. No obstante el pH (4.38), el Al (4.8 cmol/kg), la M.O. (2.1%), el P (10 mg/kg), el Fe (256 mg/kg) y el Mn (45 mg/kg) se encuentran dentro de los valores para este tipo de suelo (Rippstein et al., 2001; Varela et al., 2009).
Población de microorganismos
]]> En el suelo testigo, las bacterias Gram (+) presentaron una población de 2.0 ± 0.5x106 UFC/g de suelo y las Gram (-) de 2.5 ± 0.5x106 UFC/g. El recuento de actinomicetos fue de 1.5 ± 1.3x 105UFC/g. Los fijadores de nitrógeno de 2.75 ± 0.25x104UFC/g. Los solubilizadores de fósforo 8.75 ± 0.25x105UFC/g. Los hongos más frecuentes fueron Penicillium, Fusarium y Trichoderma con 5.25 ± 0.25x103UFC/g, 2.5 ± 0.5x103UFC/g y 1.5 ± 0.5x103UFC/g, respectivamente. El recuento de micelios estériles fue de 8.5 ± 0.5x103UFC/g. Estos valores son más altos que los encontrados por Sierra et al. (2009) y Varela et al. (2009) para suelos cultivados y naturales, respectivamente. Los conteos de los microorganismos fueron altos –hongos totales = 6.3x102 UFC/g, solubilizadores de fósforo = 3.1x104 UFC/g, fijadores de nitrógeno 1 x 103 UFC/g– lo cual puede estar relacionado con la disponibilidad de nutrientes en el suelo, no así con el contenido de M.O. y el pH ácido. El pH ácido y los altos niveles de aluminio y hierro estimulan las poblaciones de solubilizadores de fósforo y fijadores biológicos de nitrógeno (Schloter et al., 2003) (Cuadro 1).Bacterias Gram(+)
Los resultados mostraron diferencias (P < 0.05) en la presencia de bacterias Gram(+) en el suelo con los diferentes tratamientos. De acuerdo con la prueba de comparación múltiple de Dunnett (Dunnett, 1980) estas bacterias no fueron afectadas por la aplicación de Glifosato (T1) ni por Malatión (T4). El Bispiribac (T2) mostró efecto benéfico sobre los conteos de bacterias Gram(+), mientras que con el Azoxystrobin (T3) se observó un efecto negativo sobre el conteo de estas bacterias (Figura 1).El Bispiribac (2.6-bis [(4.6-dimethoxy 2- pyrimidinyl) oxy] benzoato ) pertenece al grupo del acido pyrimidinyl oxybenzoico, compuesto que se aplica en el control posemergente de varias malezas. En el caso de arroz, el efecto de los herbicidas es indirecto ya que el incremento del tamaño del grano ocurre en la medida que estos combaten las malezas. Los herbicidas como el Bispiribac actúan sobre la acetolactato sintasa inhibiendo el crecimiento por el bloqueo de la síntesis de aminoacidos (Osuna et al., 2002). En el Sudeste de Asia y América Latina se ha observado que este tipo de herbicida tiene excelente selectividad en el cultivo de arroz (Osuna et al., 2002; Taniguchi et al., 2010; Watanabe et al., 2003). En este estudio, los resultados sugieren que el efecto del herbicida sobre los microorganismos del suelo es moderado, ya que su aplicación ocasionó disminución de tres de los grupos evaluados, siendo más significativo el efecto sobre los solubilizadores de fósforo.
Bacterias Gram(-)
Los resultados de la prueba Dunnett mostraron que el Azoxystrobin (T3) tuvo un efecto negativo (P < 0.05) en la presencia de bacterias Gram(-) (Figura 1).
El producto es una estrobirulina que funciona inhibiendo la respiración mitocondrial al unirse a los complejos del citocromo- b; unión que inhibe la transferencia de electrones de este citocromo al citocromo-c y la producción de energía a través de la fosforilación oxidativa. Esta inhibición de producción de ATP resulta en la muerte del microorganismo (Barlett et al., 2002). El Azoxystrobin se emplea como fungicida foliar. Este tipo de fungicidas aplicados como ‘spray' se acumulan en alta proporción en el suelo y bajo ciertas condiciones pueden reducir la diversidad de hongos en el suelo (Adetutu et al., 2008). No obstante algunos microorganismos pueden usar los agroquímicos como fuente de carbono (Radosevich et al., 1995), lo que consecuentemente explicaría el incremento de algunas poblaciones de microbios después de la aplicación de herbicidas como Bispiribac y el mismo Azoxystrobin, lo que sugiere la capacidad de los microorganismos presentes en el suelo para metabolizar este tipo de producto.
Actinomicetos
Los tratamientos Malatión, Azoxystrobin y Bispiribac afectaron de forma negativa la población de estos microorganismos, lo cual no se observó con Glifosato (P < 0.05) (Figura 1).
Fijadores de nitrógeno y solubilizadores de fósforo
Los microorganismos fijadores de nitrógeno fueron estimulados por los tratamientos Glifosato (T1), Malatión (T4) y en mayor medida por Azoxystrobin (T3) (P < 0.01) (Figura 1). Busse et al. (2001) encontraron que el Glifosato no tuvo efecto sobre las comunidades de microorganismos en suelos cultivados con pino.
]]> No obstante, en el presente trabajo se observaron efectos negativos de este herbicida sobre la presencia de los microorganismos solubilizadores de fósforo, al igual que en los hongos Penicillium, Fusarium y en los micelios estériles, lo cual indica cierto grado de susceptibilidad de estos al Glifosato. En general, los tratamientos con agroquímicos ocasionaron reducciones drásticas en los microorganismos del suelo en cuanto al control (P < 0.05%) (Figura 1).Penicillum, Fusarium y Trichoderma
La población de este hongo en el suelo fue eliminada por Glifosato (T1) y reducida de manera drástica por Bispiribac (T2) y Azoxystrobin (T3), mientras que el Malatión (T4) no tuvo efecto significativo en este tipo de hongo (Figura 1).
Fusarium fue eliminado por la aplicación de Glifosato (T1), Bispiribac (T2) y Azoxystrobin (T3), mientras que con Malatión (T4) presentó un leve aumento (5 x 103 UFC/g vs. 3 x 103 UFC/g (P < 0.05) (Figura 1).
Los conteos de Trichoderma indicaron que el Malatión eliminó este hongo, mientras que el Bispiribac (T2) y el Azoxystrobin (T3) tuvieron un efecto positivo en su abundancia y el Glifosato no lo afectó (Figura 1).
La abundancia de los micelios estériles varió (P < 0.01) entre tratamientos (Figura 1). Los tratamientos Bispiribac (T2), Azoxystrobin (T3) y Malatión (T4) favorecieron un aumento, mientras que el Glifosato (T1) tuvo un efecto negativo.
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