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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto fungistático de extractos y aceites esenciales de Lippia origanoides HBK y Thymus vulgaris L. como alternativas de manejo de Botrytis cinerea en fresa]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The strawberry gray mold caused by Botrytis cinerea is a disease that causes significant postharvest losses. In this t study the fungistatic effect of extracts and essential oils of Lippia origanoides HBK and Thymus vulgaris L (at concentrations of 128, 256 and 500 mg / l) on the pathogenic fungus Botrytis cinerea under in vitro and in vivo conditions was evaluated. In the in vitro test, the percentage of inhibition of mycelial growth was determined. It was observed that the essential oil (EO) from Lippia origanoides showed the highest percentage of control (66.2&#37;) of Botrytis cinerea. The evaluation in vivo showed that, the control percentage of the damage incidence from the pathogenic fungus (by an incidence value scale from 0 to 7 according to specific characteristics of deterioration of fruits) on bananas inoculated with Botrytis cinerea was measured. After 120 hours of monitoring, it was observed that the EO efficiently controlled the incidence of damage caused by the pathogen studied and no significant differences were observed when chemical control (fungicide Benomyl) was applied]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> <hr>     <p><b><i>Protecci&oacute;n de cultivos</i></b>  doi:<a href="http://dx.doi.org/10.15446/acag.v64n1.35773" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/acag.v64n1.35773</a> e-ISSN 2323-0118</p> <hr>     <p align="center"><b><font face="verdana" size="4">Efecto fungist&aacute;tico de extractos y aceites esenciales de <i>Lippia origanoides</i> HBK y <i>Thymus vulgaris</i> L. como alternativas de manejo de <i>Botrytis cinerea</i> en fresa </font></b></p>     <p align="center"><b><font face="verdana" size="3">Fungistatic effect of extracts and essential oils of <i>Lippia origanoides</i> HBK and <i>Thymus vulgaris</i> L. as alternative management of <i>Botrytis cinerea</i> in strawberry</font></b></p>     <p align="center"><i>Luis Alejandro Taborda Andrade<sup>1*</sup>, Manuel Salvador S&aacute;nchez Orozco<sup>2</sup>, Carmen Rosa Bonilla Correa<sup>3</sup> y Carlos Huertas Davey<sup>4</sup></i></p>     <p><sup>1</sup>Universidad De La Salle, Colombia, Facultad de Ciencias Agropecuarias; <sup>2,4</sup>Universidad Nacional de Colombia sede Palmira, Colombia, facultad de Ciencias Agropecuarias; <sup>3</sup>Universidad Nacional de Colombia sede Bogot&aacute;, Colombia. *Autor para correspondencia: <a href="mailto:lataborda@unisalle.edu.co">lataborda@unisalle.edu.co</a></p>     <p align="right">Rec.: 02.12.2012 Acep.: 04.02.2014</p>     <p align="center"><b>Resumen</b></p>     <p>El moho gris de la fresa causado por <i>Botrytis cinerea</i> es una enfermedad que produce importantes p&eacute;rdidas poscosecha. En el estudio se evalu&oacute; el efecto fungist&aacute;tico de extractos y aceites esenciales de <i>Lippia origanoides</i> HBK y <i>Thymus vulgaris</i> L. en concentraciones de 128, 256 y 500 mg/lt sobre <i>B. cinerea</i> in vitro e in vivo. In vitro se determin&oacute; el porcentaje de inhibici&oacute;n del crecimiento micelial del hongo. En estas condiciones se observ&oacute; que el aceite esencial (AE) de <i>L. origanoides</i> present&oacute; el porcentaje de control m&aacute;s alto (66.2%) sobre <i>B. cinerea</i>. In vivo, se observ&oacute; que en bananos inoculados con <i>B. cinerea</i> despu&eacute;s de 120 los AE controlaron eficientemente la incidencia de da&ntilde;o causado por el pat&oacute;geno estudiado y no se encontraron diferencias significativas con el control qu&iacute;mico utilizando el fungicida Benomil.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> <i>Botrytis cinerea</i>, <i>Lippia origanoides</i> HBK, <i>Thymus vulgaris</i> L, evaluaciones in vitro e in vivo, aceites esenciales, extractos, inhibici&oacute;n de crecimiento micelial.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><b>Abstract</b></p>     <p>The strawberry gray mold caused by <i>Botrytis cinerea</i> is a disease that causes significant postharvest losses. In this t study the fungistatic effect of extracts and essential oils of <i>Lippia origanoides</i> HBK and <i>Thymus vulgaris</i> L (at concentrations of 128, 256 and 500 mg / l) on the pathogenic fungus <i>Botrytis cinerea</i> under in vitro and in vivo conditions was evaluated. In the <i>in vitro</i> test, the percentage of inhibition of mycelial growth was determined. It was observed that the essential oil (EO) from <i>Lippia origanoides</i> showed the highest percentage of control (66.2%) of <i>Botrytis cinerea</i>. The evaluation <i>in vivo</i> showed that, the control percentage of the damage incidence from the pathogenic fungus (by an incidence value scale from 0 to 7 according to specific characteristics of deterioration of fruits) on bananas inoculated with <i>Botrytis cinerea</i> was measured. After 120 hours of monitoring, it was observed that the EO efficiently controlled the incidence of damage caused by the pathogen studied and no significant differences were observed when chemical control (fungicide Benomyl) was applied.</p>     <p><b>Key words:</b> <i>Botrytis cinerea</i>, <i>Lippia origanoides</i> HBK, <i>Thymus vulgaris</i> L, in vitro and in vivo evaluations, essential oils, extracts, inhibition of mycelial growth.</p>     <p align="center"><b><font face="verdana" size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>     <p>La fresa (<i>Fragaria</i> sp.) es un cultivo con un potencial importante en la econom&iacute;a regional y nacional (Cano, 2012). Sin embargo, su fruto es altamente perecedero y susceptible a da&ntilde;os mec&aacute;nicos, p&eacute;rdidas de agua y deterioro fisiol&oacute;gico y microbiol&oacute;gico causados por hongos como <i>Botrytis cinerea</i> (moho gris) que ocasionan la pudrici&oacute;n del fruto y consecuente p&eacute;rdida de su valor econ&oacute;mico (Cruz <i>et al</i>., 2008).</p>     <p>El moho gris en la fresa constituye una enfermedad que produce p&eacute;rdidas importantes en poscosecha (aproximadamente de 20%), lo que afecta la econom&iacute;a de los productores, comercializadores y consumidores (L&oacute;pez <i>et al</i>., 2006). Los fungicidas qu&iacute;micos han sido tradicionalmente los medios primarios para el control de este pat&oacute;geno, pero su aplicaci&oacute;n continua ha generado el inter&eacute;s p&uacute;blico por los problemas ocasionados como toxicidad, altos costos, reducci&oacute;n de exportaciones por presencia de residuos en producto de consumo y da&ntilde;os al medio ambiente, a la salud de los operarios y del consumidor final (Arturo, 2008; Montoro <i>et al</i>., 2009). Por otra parte, los microorganismos fitopat&oacute;genos han generado resistencia a los ingredientes activos de algunos fungicidas sint&eacute;ticos, como una respuesta a la presi&oacute;n de selecci&oacute;n a las altas dosis y aplicaciones continuas sin previo estudio y cronograma de control, lo que ocasiona grandes p&eacute;rdidas econ&oacute;micas (Leroch <i>et al</i>., 2010; Wilson <i>et al</i>., 1997).</p>     <p>Recientemente las investigaciones se han enfocado en la evaluaci&oacute;n de varias alternativas de control para reducir la dependencia de fungicidas sint&eacute;ticos, entre ellas microorganismos antagonistas, tratamientos f&iacute;sicos, sustancias naturales como aceites esenciales (AE) y extractos de diferente tipo. Los AE y extractos etan&oacute;licos (EE) de las especies de los g&eacute;neros <i>Lippia</i> y <i>Thymus</i> presentan propiedades biocontroladoras (Combrinck <i>et al</i>., 2011; Lizcano, 2007; L&oacute;pez <i>et al</i>., 2006; Bol&iacute;var <i>et al</i>., 2009; Bouchra <i>et al</i>., 2003; Alzate <i>et al</i>., 2009). El objetivo del trabajo fue evaluar el potencial fungist&aacute;tico in vitro e in vivo de los aceites esenciales y los extractos etan&oacute;licos de <i>L. origanoides</i> HBK y <i>T. vulgaris</i> como alternativas de manejo de <i>B. cinerea</i>.</p>     <p align="center"><b><font face="verdana" size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>     <p><b>Material vegetal</b></p>     <p>Las muestras de material vegetal de <i>L. origanoides</i> y <i>T. vulgaris</i> fueron obtenidas de parcelas establecidas de la colecci&oacute;n de trabajo de plantas medicinales y arom&aacute;ticas del Centro Experimental de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira (CEUNP), donde predominan Vertisoles, un promedio de precipitaci&oacute;n anual de 1000 mm, 25 &deg;C y humedad relativa de 83%.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El follaje recolectado de ambas especies se coloc&oacute; en bandejas met&aacute;licas para exponerlo al ambiente durante tres d&iacute;as en condiciones de sombra, en el Laboratorio de Fitoqu&iacute;mica de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira.</p>     <p><b>Obtenci&oacute;n de extractos etan&oacute;licos</b></p>     <p>Para obtener los EE se molieron 50 g de follaje, previamente expuesto a deshidrataci&oacute;n en el ambiente de laboratorio (42% de humedad), de cada especie y se dispusieron en dos reservorios porta-muestras cada uno de 10 cm de di&aacute;metro, al cual se le adicionaron 180 ml de etanol con 98% de pureza. Los reservorios fueron sellados para evitar la volatilizaci&oacute;n de los fitocompuestos y se almacenaron durante 3 d&iacute;as a una temperatura, promedio, de 25 &deg;C. Despu&eacute;s de este tiempo se extrajeron los percolados o concentrados etan&oacute;licos los cuales fueron roto-evaporados con un equipo Buchi modelo R-114. En este proceso se recuperaron 176 ml de etanol de cada uno de los reservorios que conten&iacute;an las muestras de <i>L. origanoides</i> y <i>T. vulgaris</i> y se obtuvieron 10 g de materia seca de extracto final en cada muestra.</p>     <p><b>Obtenci&oacute;n de aceites esenciales</b></p>     <p>Los AE se obtuvieron por hidro-destilaci&oacute;n en un equipo Clevenger de muestras de 100 g de hojas (42% de humedad) de 1 - 3 cm de tama&ntilde;o; colocadas en reservorio de vidrio piloto para hidro-destilaci&oacute;n.</p>     <p>En todas las corridas o etapas de destilaci&oacute;n se emplearon 200 ml de agua destilada contenida en un matraz redondo que fue calentado en estufa a temperatura constante de 80 &deg;C. Una vez condensado el vapor del proceso, para la separaci&oacute;n de fases (hidrolato-aceite esencial) se emple&oacute; una trampa Clevenger. A continuaci&oacute;n se retir&oacute; el aceite y por cada mil&iacute;metro de &eacute;ste se agregaron 5 g de sulfato de sodio anhidro (Na<sub>2</sub>SO<sub>4</sub>) con el fin de secar los residuos de humedad, evitar la oxidaci&oacute;n y finalmente conservarlo a 10 &deg;C.</p>     <p><b>Inoculaci&oacute;n con <i>Botrytis cinerea</i></b></p>     <p>El hongo pat&oacute;geno estudiado se aisl&oacute; de muestras de fresas (<i>Fragaria</i> sp.) infectadas con <i>B. cinerea</i>. Las muestras fueron recolectadas en un cultivo de una finca comercial de la vereda El Castillo, municipio de Palmira, Valle, y conservadas en c&aacute;maras h&uacute;medas (98% HR) con el objeto de estimular el crecimiento del pat&oacute;geno.</p>     <p>El reconocimiento de las colonias fungosas se realiz&oacute; mediante el m&eacute;todo de impronta (L&oacute;pez <i>et al</i>., 2006) antes de montar placas con azul de algod&oacute;n y observar al microscopio con ampliaci&oacute;n 40X. Para la identificaci&oacute;n de estructuras fungosas se utilizaron las claves de Barnett (1972) y Pardo (1995) y la siembra de los cultivos puros se hizo en PDA inclinado refrigerado a 8 &deg;C.</p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n <i>in vitro</i></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria se determin&oacute; mediante el m&eacute;todo de diluci&oacute;n en caldo de los extractos a los cuales se les atribuy&oacute; actividad fungist&aacute;tica, seg&uacute;n lo establecido en el documento Eucast, ED 7.1 (Rodr&iacute;guez-Tudela <i>et al</i>., 2008), las concentraciones evaluadas fueron 128, 256 y 500 mg/ml. La inhibici&oacute;n del crecimiento de micelios se determin&oacute; mediante la Ecuaci&oacute;n 1 propuesta por Sztejnberg <i>et al</i>. (1987) (Alzate <i>et al</i>., 2009):</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/acag/v64n1/v64n1a11e1.jpg"></p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n in vivo</b></p>     <p>Para esta evaluaci&oacute;n fueron seleccionados frutos en escala 4 de madurez, seg&uacute;n lo establecen las normas NTC 4130 1997 para fresa variedad Chandler (Icontec, 1997). Los frutos fueron lavados con agua esterilizada y una soluci&oacute;n de hipoclorito al 1%.</p>     <p>Siguiendo la metodolog&iacute;a propuesta por Alvarado <i>et al</i>. (2011) para cada tratamiento se tomaron cinco frutos de fresa que fueron perforados con una aguja est&eacute;ril en orificios de 2 mm de ancho x 2mm de profundidad, en la parte superior, cerca al ped&uacute;nculo. Posteriormente, estos frutos fueron colocados en vasos de precipitado que conten&iacute;an las soluciones de los tratamientos evaluados (256 y 500 mg/lt) y cubiertos totalmente durante 5 segundos para posteriormente colocarlos en una superficie lisa dentro de la campana de flujo laminar, donde se secaron durante 5 min a 25 &deg;C hasta 69% de HR. Finalmente se asperjaron con la soluci&oacute;n de 1.0 x 10<sup>5</sup> esporas/ml.</p>     <p>Un procedimiento similar se realiz&oacute; para los tratamientos testigo -un tratamiento con etanol a 98% de pureza en vaso de precipitado, y una soluci&oacute;n del fungicida Benomil de s&iacute;ntesis qu&iacute;mica a una concentraci&oacute;n de 100 &micro;g/ml-. Finalmente, los frutos se dispusieron en contenedores pl&aacute;sticos estibados, recubiertos por anjeo, donde se realiz&oacute; seguimiento por 120 h antes de calificar los &iacute;ndices de severidad y porcentajes de control</p>     <p><b>Indice de severidad y porcentajes de control</b></p>     <p>De acuerdo con el modelo propuesto por Alvarado <i>et al</i>. (2011) se elabor&oacute; un diagrama pictogr&aacute;fico del &iacute;ndice de severidad de da&ntilde;o causado por el pat&oacute;geno en el fruto. El modelo se basa en el seguimiento y observaci&oacute;n del di&aacute;metro de las lesiones de los frutos cada 12 h durante 5 d&iacute;as, registrando el avance parcial de la infecci&oacute;n con respecto a la infecci&oacute;n total del fruto en el tiempo.</p>     <p>Esta escala se utiliz&oacute; para seguir el progreso de la infecci&oacute;n a 48, 96 y 120 horas en los frutos inoculados. Adicionalmente se determin&oacute; el porcentaje de control de cada tratamiento sobre el hongo pat&oacute;geno evaluado, en funci&oacute;n del porcentaje de infecci&oacute;n presentada por el testigo negativo, como se calcula con la Ecuaci&oacute;n 2.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/acag/v64n1/v64n1a11e2.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Dise&ntilde;o experimental y an&aacute;lisis de datos</b></p>     <p>Los tratamientos en el experimento <i>in vitro</i> se dispusieron en un factorial aumentad 2<sup>2</sup> x 3 + testigos, donde los factores evaluados fueron: especies vegetales (2) (<i>L. origanoides</i> y <i>T. vulgaris</i>), tipos de extractos (2) (AE y EE) y concentraciones (3) (128, 256 y 500 mg/lt) y como testigo la aplicaci&oacute;n de 100 &micro;g/ml del fungicida comercial Benomil. En el ensayo in vivo se evaluaron dos concentraciones (256 y 500 mg/lt). Los datos fueron analizados con el software estad&iacute;stico SAS (Statistical Analysis System Versi&oacute;n 9.3.1, 2012).</p>     <p align="center"><b><font face="verdana" size="3">Resultados y discusi&oacute;n</font></b></p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n in vitro</b></p>     <p>Los extractos de <i>L. origanoides</i> presentaron mayor porcentaje promedio de inhibici&oacute;n de crecimiento micelial (44%) que los de <i>T. vulgaris</i> (37%). Esta diferencia se debe a la concentraci&oacute;n de metabolitos complementarios con actividad biol&oacute;gica inhibitoria. Seg&uacute;n Ruiz <i>et al</i>. (2007) el timol en <i>L. origanoides</i> HBK se encuentra en una concentraci&oacute;n de 68% y seg&uacute;n Maqtari <i>et al</i>. (2011) en <i>T. vulgaris</i> la concentraci&oacute;n es de 54%.</p>     <p>Se observan diferencias (P &lt; 0.05) entre los extractos evaluados. Los AE presentaron un porcentaje promedio de inhibici&oacute;n de crecimiento de <i>B. cinerea</i> de 55.9%, siendo mayor que el obtenido con los extractos etan&oacute;licos (37.1%) (<a href="#Cuadro 1">Cuadro 1</a>). Hammami <i>et al</i>., (2011) encontraron resultados similares a los del presente estudio cuando evaluaron el potencial biocontrolador de AE y EE de <i>Viola odorata</i> sobre <i>B. cinerea</i> cultivado in vitro, no obstante los primeros presentaron mayor actividad inhibitoria que los EE.</p>     <p align="center"><a name="Cuadro 1"><img src="img/revistas/acag/v64n1/v64n1a11t1.jpg"></a></p>     <p>Igualmente se encontraron diferencias (P &lt; 0.05) entre las concentraciones evaluadas. La concentraci&oacute;n m&aacute;s alta (500 mg/lt) present&oacute; el mayor porcentaje de inhibici&oacute;n (58.3%). Las concentraciones 256 y 128 mg/lt inhibieron 41 y 40.1% el crecimiento micelial de <i>B. cinerea</i>, respectivamente, (P &gt; 0.05). Los AE en las concentraciones m&aacute;s altas (500 mg/lt) presentaron los mayores porcentajes promedio de inhibici&oacute;n (66.2%), (<a href="#Foto 1">Foto 1</a> y <a href="#Cuadro 1">Cuadro 1</a>). Estos resultados son similares a obtenidos por Lizcano (2007) con extractos etan&oacute;licos de <i>T. vulgaris</i> en tres diluciones, donde el tratamiento de 500 mg/lt tambi&eacute;n present&oacute; mayor inhibici&oacute;n del crecimiento micelial de <i>B. cinerea</i> in vitro. </p>     <p align="center"><a name="Foto 1"><img src="img/revistas/acag/v64n1/v64n1a11g1.jpg"></a></p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n in vivo</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En este medio de cultivo, los extractos de <i>L. origanoides</i> mostraron promedios altos de inhibici&oacute;n de crecimiento micelial (90.5%) y estad&iacute;sticamente similares a los obtenidos con <i>T. vulgaris</i> (89%). El promedio de inhibici&oacute;n de crecimiento micelial del hongo fue mayor (P &lt; 0.05) en los AE (92.2%) en comparaci&oacute;n con los resultados obtenidos con los EE (87.4%) (<a href="#Cuadro 2">Cuadro 2</a>), lo que coincide con los resultados obtenidos en las evaluaciones in vitro en este ensayo y con los resultados obtenidos por Fang <i>et al</i>. (2011) quienes evaluaron el potencial biocontrolador de AE y EE de <i>V. odorata</i> en el control de <i>B. cinerea</i> in vitro e in vivo encontrando, en ambos casos, que los AE tienen mayor actividad antif&uacute;ngica que los etan&oacute;licos.</p>     <p align="center"><a name="Cuadro 2"><img src="img/revistas/acag/v64n1/v64n1a11t2.jpg"></a></p>     <p>Estos resultados son explicables, debido a que los metabolitos secundarios (complementarios) vol&aacute;tiles con actividad promisoria biocontroladora se encuentran de forma concentrada en los AE y se obtienen por el mecanismo de volatilizaci&oacute;n-condensaci&oacute;n, mientras que la extracci&oacute;n con etanol significa necesariamente el arrastre de otros compuestos de la planta en elevadas concentraciones que pueden afectar el potencial biocontrolador (Hammami <i>et al</i>., 2011).</p>     <p>Aunque en promedio los AE de <i>L. origanoides</i> en concentraciones altas (500 mg/ lt) presentaron porcentajes de control ligeramente superiores en comparaci&oacute;n con las concentraciones m&aacute;s bajas, no se detectaron diferencias (P &gt; 0.05) entre las concentraciones evaluadas. Este resultado es contrario al obtenido en los experimentos in vitro con las mismas especies y con los resultados obtenidos por Soylu <i>et al</i>. (2010) quienes al evaluar tres concentraciones (35, 75 y 100 mg/lt) de AE de <i>Origanum syriacum</i> en el control in vivo de <i>B. cinerea</i> encontraron alta correlaci&oacute;n entre la concentraci&oacute;n de AE y el porcentaje de control del pat&oacute;geno.</p>     <p>Por otra parte, las evaluaciones a 48, 96 y 120 h despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n demostraron que el porcentaje de control se mantiene en niveles superiores a 80%, comparable a los &iacute;ndices de inhibici&oacute;n del crecimiento micelial obtenidos con el control qu&iacute;mico (Benomil) (<a href="#Figura 1">Figura 1</a>), lo que confirma el potencial de estas especies vegetales como alternativas eficientes para el control de este pat&oacute;geno, lo que mitiga los impactos ambientales y los da&ntilde;os a la salud de operadores en cosecha y poscosecha y por tanto al consumidor final (Jacometti <i>et al</i>., 2010) (Wilson <i>et al</i>., 1997).</p>     <p align="center"><a name="Figura 1"><img src="img/revistas/acag/v64n1/v64n1a11f1.jpg"></a></p>     <p align="center"><b><font face="verdana" size="3">Conclusiones</font></b></p> <ul>     <li>Los aceites esenciales y extractos etan&oacute;licos de <i>Lippia origanoides</i> presentaron mayor inhibici&oacute;n del crecimiento micelial del hongo pat&oacute;geno <i>Botrytis cinerea</i> en fresa, cuando se compara con los resultados obtenidos con estos mismos derivados a partir de <i>Thymus vulgaris</i>.</li>     <li>Los aceites esenciales de <i>L. origanoides</i> y <i>T. vulgaris</i> presentaron las mayores inhibiciones promedio del crecimiento micelial in vitro e in vivo del hongo pat&oacute;geno <i>B. Cinerea</i>, com&uacute;n en frutos de fresa.</li>     <li>Los aceites esenciales y extractos etan&oacute;licos de <i>L. origanoides</i> y <i>T. vulgaris</i> son alternativas promisorias y eficientes en el control del hongo pat&oacute;geno <i>B. cinerea</i>.</li>     ]]></body>
<body><![CDATA[<li>Los resultados <i>in vitro</i> demostraron una proporcionalidad directa entre las concentraciones evaluadas y el porcentaje de control de <i>B. cinerea</i> en fresa, siendo la concentraci&oacute;n de 500 mg/lt la que present&oacute; mayores porcentajes de inhibici&oacute;n.</li>     </ul>     <p align="center"><b><font face="verdana" size="3">Agradecimientos</font></b></p>     <p>Los autores agradecen a la Direcci&oacute;n de Investigaci&oacute;n de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira, a Colciencias y a la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad de La Salle por el apoyo financiero a la realizaci&oacute;n de la investigaci&oacute;n.</p>     <p align="center"><b><font face="verdana" size="3">Referencias</font></b></p>     <!-- ref --><p>Al-Maqtari, M. A.; Alghalibi,S. M.; y Alhamzy, E. H. 2011. Chemical composition y antimicrobial activity of essential oil of <i>Thymus vulgaris</i> from Yemen. Turkish J. Biochem. 36:342 - 349.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-2812201500010001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Alvarado, H. A. M.; Barrera, N. L.,; Hern&aacute;ndez, A. N.; y Vel&aacute;zquez del Valle, M. G. 2011. Antifungal activity of chitosan y essential oils on <i>Rhizopus stolonifer</i> (Ehrenb.: Fr.) Vuill causal agent of soft rot of tomato. Rev. Col. Biot. 13:127 - 134.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-2812201500010001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Alzate, D.; Gonzalo, I.; Afanador, M.; y Durango, R. 2009. Evaluaci&oacute;n de la fitotoxicidad y la actividad antif&uacute;ngica contra <i>Colletotrichum acutatum</i> de los aceites esenciales de tomillo (<i>Thymus vulgaris</i>), limoncillo (<i>Cymbopogon citratus</i>) y sus componentes mayoritarios. Vitae 16:116 - 125.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2812201500010001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Arturo, C. 2008. S&iacute;ntomas ocasionados por plaguicidas en trabajadores agr&iacute;colas. Rev. Med. Inst. Mex Seguro Soc. 46:145 - 152.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-2812201500010001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Barnett, H. 1972. Illustrated genera of imperfect fungi. USA. p. 70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-2812201500010001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Bol&iacute;var, K.; Sanabria, M. E.; Rodr&iacute;guez, D.; de Camacaro, M. P.; Ulacio, D.; Cumana, L.; y Crescente, O. 2009. Potencial efecto fungicida de extractos vegetales en el desarrollo in vitro del hongo <i>Colletotrichum gloeosporioides</i> (Penz.) Penz. &amp; Sacc. y de la antracnosis en frutos de mango. Rev. UDO Agr&iacute;cola 9(1):175 - 181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-2812201500010001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Bouchra, C.; Achouri, M.; Idrissi Hassani, L. M.; y Hmamouchi, M. 2003. Chemical composition and antifungal activity of essential oils of seven Moroccan Labiatae against <i>Botrytis cinerea</i> Pers: J. Ethnopharm. 89(1):165 - 169.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-2812201500010001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Cano S. C. 1993. Corporaci&oacute;n Colombiana Internacional. Alimentos Hoy. 4(4) p. 20 - 22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-2812201500010001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Combrinck, S. T; Regnier, S.; y Kamatou, G. P. 2011. In vitro, activity of eighteen essential oils and some major components against common postharvest fungal pathogens of fruit. Ind. Crops Prod. 33:344 - 349.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-2812201500010001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Cruz, L.; Jacksens, L.; Siro, I.; Devlieghere, F.; y Debevere, J. 2008. Envasado de fresas en alta concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno con atm&oacute;sfera modificada en equilibrio. Cien. Tecn. Alim. 18. (3), p. 24-29&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-2812201500010001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Fang, X. L.; Wang, Y. H.; y Zhang, X. 2011. In vitro and in vivo antimicrobial activity of <i>Xenorhabdus bovienii</i> YL002 against <i>Phytophthora capsici</i> y <i>Botrytis cinerea</i>. J. Applied Microb. 111:145 - 154.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-2812201500010001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Hammami, I.; Kamoun, N.; y Rebai, A. 2011. Biocontrol of <i>Botrytis cinerea</i> with essential oil y methanol extract of <i>Viola odorata</i> L. flowers. Arch. Appl. Sci. Res. 3:44 - 51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-2812201500010001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>ICONTEC (Instituto Colombiano de Normas T&eacute;cnicas). 1997 Norma T&eacute;cnica NTC Colombiana 4130 1997-05-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-2812201500010001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Jacometti, M. A; Wratten, S. D.; y Walter, M. 2010. Review: alternatives to synthetic fungicides for <i>Botrytis cinerea</i> management in vineyards. Aust. J. Grape Wine Res. 16:154 - 172.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-2812201500010001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Leroch, M.; Kretschmer, M.; y Hahn, M. 2010. Fungicide resistance phenotypes of <i>Botrytis cinerea</i> isolates from commercial vineyards in South West Germany. J. Phytop. 159:63 - 65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-2812201500010001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Lizcano, M. 2007. Evaluaci&oacute;n de la actividad antif&uacute;ngica del extracto de tomillo (<i>Thymus vulgaris</i>) contra <i>Botrytis cinerea</i>, <i>Fusarium oxysporum</i> y <i>Sclerotinia sclerotiorum</i>, tesis publicada en <a href="http://www.javeriana.edu.co/biblos/tesis/ciencias/tesis100.pdf" target="_blank">www.javeriana.edu.co</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-2812201500010001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>L&oacute;pez, A.; V&eacute;lez, M.; S&aacute;nchez, M. S.; Bonilla, C. R.; y Gallo, P. I. 2006. Evaluaci&oacute;n de extractos vegetales para manejo de hongos pat&oacute;genos en banano y fresa almacenados. Acta Agron&oacute;mica 55:39 - 44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-2812201500010001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Montoro, Y.; Moreno, R.; y Gomero, L. 2009. Caracter&iacute;sticas de uso de plaguicidas qu&iacute;micos, y riesgos para la salud en agricultores de la sierra central del Per&uacute;. Rev. Per&uacute;. Med. Exp. Salud Publica 26:466 - 472.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-2812201500010001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Pardo, V. 1995. Hongos fitopat&oacute;genos de Colombia. Medell&iacute;n. Universidad Nacional de Colombia. p. 51-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-2812201500010001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Rodriguez-Tudela, J. L; Arendrup, M. C.; Barchiesi, F.; Bille, J.; Chryssanthou, E,; Cuenca-Estrella, M.; Dannaoui, M., E.; Denning, D. W; Donnelly, J. P.; y Dromer, F. 2008. EUCAST definitive document EDef 7.1: method   for the determination of broth dilution MICs of antifungal agents for   fermentative yeasts. Clin. Microbiol. 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In vitro e in vivo antifungal activities of the essential oils of various plants against tomato grey mould disease agent <i>Botrytis cinerea</i>. Int. J. Food Microb. 143:183 - 189.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-2812201500010001100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Sztejnberg, A.; Freeman, S.; Chet, I.; y Katan, J. 1987. Control of <i>Rosellinia necatrix</i> in soil and in apple orchard by solarization and <i>Trichoderma harzianum</i>. 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