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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Mutagénesis inducida en microbulbos de Allium sativum L.]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Centroccidental &#8220;Lisandro Alvarado&#8221; Decanato de Agronomía Departamento de Ciencias Biológicas]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A protocol for induced mutagenesis in clone Boconó (Allium sativum) microbulb cultured in vitro was established. For this, two assays were realized: test or radio sensitivity assays were performed to determine the appropriate gamma radiation dose and test or mutagenesis assays to determine the behavior of the plant material up to storage stage. In order to determine radio sensitivity, microbulbs grown were irradiated with four gamma ray doses (6, 8, 10 and 12 Krad) more control. Optimal dose was established considering 50&#37; microbulb survival (LD50). In this assays a randomized blocks design with 5 treatments and 20 replications per treatment was used. After mutagenic treatment, microbulbs were irradiated with 8 and 10 Krad and then stored at 10 °C in darkness for 45 days. In this assays a randomized blocks design with 3 treatments considered two doses (8 and 10 Krad) more control and 20 replications per treatment was used. In both trials, higher mean weight and diameter were shown in microbulbs irradiated with 8 and 10 Krad, suggesting gamma irradiation to be applied with 8 and 10 Krad in order to facilitate mutant production with desirable agronomic traits in clone Boconó]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Cultivo de tejidos]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">    <p><a href="http://dx.doi.org/10.15446/acag.v64n3.44792" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/acag.v64n3.44792</a></p>      <p align="center"><font size="4"><b>Mutag&eacute;nesis inducida en microbulbos de <i>Allium sativum</i> L.</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>Induced mutagenesis in microbulbs of <i>Allium sativum</i> L.</b></font></p>     <p align="center">Adriana Pardo Rold&aacute;n</p>     <p align="center">Universidad Centroccidental &ldquo;Lisandro Alvarado&rdquo;, Decanato de Agronom&iacute;a. Departamento de Ciencias Biol&oacute;gicas. C&aacute;tedra de Gen&eacute;tica. Unidad de Biotecnolog&iacute;a Vegetal (UCLA). Tarabana, estado Lara, Venezuela. Autor para correspondencia: <a href="mailto:apardo@ucla.edu.ve">apardo@ucla.edu.ve</a></p>     <p align="right">Rec.: 05.08.14 Acep.:06.04.15</p> <hr noshade size="1">     <p align="center"><b>Resumen</b></p>     <p>Se estableci&oacute; un protocolo de mutag&eacute;nesis en microbulbos de ajo (<i>Allium sativum</i> L.) clon Bocon&oacute; cultivado in vitro. Para el efecto se realizaron dos ensayos, uno de radiosensibilidad para establecer la dosimetr&iacute;a apropiada de radiaci&oacute;n gamma y otro de mutag&eacute;nesis para determinar el comportamiento de los materiales hasta la etapa de almacenamiento. En el primero los microbulbos fueron tratados con cuatros dosis de radiaci&oacute;n gamma (6, 8, 10 y 12 Krad), m&aacute;s un control. Para establecer la dosis &oacute;ptima se consider&oacute; la sobrevivencia del 50&#37; de los microbulbos (DL<sub>50</sub>). Se emple&oacute; un dise&ntilde;o de bloques al azar con cinco tratamientos y 20 repeticiones por tratamiento. En el ensayo mutag&eacute;nico los microbulbos fueron irradiados con 8 y 10 Krad y almacenados durante 45 d&iacute;as a 10 &deg;C en condiciones de oscuridad En este caso se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o de bloques al azar con tres tratamientos (0, 8 y 10 Krad) y 20 repeticiones por tratamiento. En ambos ensayos, los microbulbos irradiados con 8 y 10 Krad registraron los mayores promedios para peso y di&aacute;metro, lo cual permite concluir que estas dosis son adecuadas para favorecer la producci&oacute;n de mutantes con caracter&iacute;sticas agron&oacute;micas deseables en el clon Bocon&oacute;.</p>     <p><b>Palabras claves:</b> Cultivo de tejidos, ajo, <i>Allium sativum</i>, bulbificaci&oacute;n, radiaci&oacute;n gamma, dosimetr&iacute;a.</p> <hr noshade size="1">      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><b>Abstract</b></p>     <p>A protocol for induced mutagenesis in clone Bocon&oacute; (<i>Allium sativum</i>) microbulb cultured in vitro was established. For this, two assays were realized: test or radio sensitivity assays were performed to determine the appropriate gamma radiation dose and test or mutagenesis assays to determine the behavior of the plant material up to storage stage. In order to determine radio sensitivity, microbulbs grown were irradiated with four gamma ray doses (6, 8, 10 and 12 Krad) more control. Optimal dose was established considering 50&#37; microbulb survival (LD<sub>50</sub>). In this assays a randomized blocks design with 5 treatments and 20 replications per treatment was used. After mutagenic treatment, microbulbs were irradiated with 8 and 10 Krad and then stored at 10 &deg;C in darkness for 45 days. In this assays a randomized blocks design with 3 treatments considered two doses (8 and 10 Krad) more control and 20 replications per treatment was used. In both trials, higher mean weight and diameter were shown in microbulbs irradiated with 8 and 10 Krad, suggesting gamma irradiation to be applied with 8 and 10 Krad in order to facilitate mutant production with desirable agronomic traits in clone Bocon&oacute;. </p>     <p><b>Key words:</b> Tissue culture, bulb induction, <i>Allium sativum</i>, gamma irradiation, radio sensitivity.</p>  <hr noshade size="1">     <p align="center"><b>Introducci&oacute;n</b></p>     <p>El ajo (<i>Allium sativum</i> L.) es un cultivo ampliamente utilizado por sus cualidades culinarias y medicinales (Brewster, 2008). Durante el proceso de domesticaci&oacute;n de la especie se ha favorecido la selecci&oacute;n hacia el desarrollo vegetativo y el rendimiento de los bulbos en detrimento del sistema de reproducci&oacute;n y la formaci&oacute;n de inflorescencias en las plantas. Lo anterior explica por qu&eacute; la mayor&iacute;a de los cultivares de ajo desarrollados a nivel mundial son estrictamente de propagaci&oacute;n asexual o vegetativa, siendo &eacute;ste el &uacute;nico sistema de producci&oacute;n utilizado comercialmente, limitando el mejoramiento a la selecci&oacute;n de la variabilidad gen&eacute;tica preexistente, al uso de las mutaciones inducidas y a las t&eacute;cnicas del cultivo de tejidos como estrategias para generar nuevas variantes. (Zheng <i>et al.</i>, 2007; Matijevic <i>et al.</i>, 2013). La aplicaci&oacute;n de mut&aacute;genos implica evaluar los efectos biol&oacute;gicos producidos en una determinada c&eacute;lula o tejido, por lo que se deben considerar factores como el tipo de mut&aacute;geno, la dosis de radiaci&oacute;n empleada, y el tama&ntilde;o y procedencia de los explantes y su radiosensibilidad (Taner y Kunter, 2004). Debido a que la respuesta a un determinado mut&aacute;geno se mide principalmente en funci&oacute;n del porcentaje de sobrevivencia y la tasa de regeneraci&oacute;n y/o multiplicaci&oacute;n del material irradiado, es necesario determinar la dosis de radiaci&oacute;n que permite la sobrevivencia de los materiales y posteriormente seleccionar entre estos el mayor n&uacute;mero de mutantes con caracter&iacute;sticas deseables. Ahloowalia y Maluszynski (2001) realizaron ensayos de radiosensibilidad con el fin de establecer el rango de radiaci&oacute;n que puede ser aplicado a un determinado cultivo. Dentro de los mut&aacute;genos f&iacute;sicos, las radiaciones gamma son las m&aacute;s utilizadas para generar variabilidad en los cultivos agr&iacute;colas, as&iacute; como para reducir las p&eacute;rdidas poscosecha, eliminar la brotaci&oacute;n precoz, minimizar la contaminaci&oacute;n, controlar enfermedades y plagas, extender la vida &uacute;til de los cultivos, entre otros (Piri <i>et al.</i>, 2011). En este campo, los rayos gamma son considerados un tipo de radiaci&oacute;n ionizante usualmente obtenidos por radiois&oacute;topos, con cobalto 60 (<sup>60</sup>Co) y cesium 137 (<sup>137</sup>Cs) como principales fuentes de radiaci&oacute;n, siendo la unidad com&uacute;nmente utilizada para medir la cantidad de exposici&oacute;n a la radiaci&oacute;n el Grays (Gy) o sus equivalentes el rads (1 rads = 0.01 Grays) y/o el Krad (1 Krad = 1000 rads) (IAEA, 2005). En el cultivo de ajo se han realizado investigaciones a partir de bulbos tratados con radiaci&oacute;n gamma con el objeto de mejorar caracter&iacute;sticas como resistencia a enfermedades (Al-Safadi <i>et al.</i>, 2000; Nabulsi <i>et al.</i>, 2001), inhibici&oacute;n de la brotaci&oacute;n (Croci <i>et al.</i>, 1987; Taner y Kunter, 2004; P&eacute;rez <i>et al.</i>, 2007), ganancia en peso (Croci y Curzio, 1983), durabilidad en almacenamiento (AL-Safadi, 2000), cambios morfol&oacute;gicos (Pellegrini <i>et al.</i>, 2000; Wi <i>et al.</i>, 2007) y modificaciones en el sabor (Ceci <i>et al.</i>, 1991), entre otras caracter&iacute;sticas. Por otra parte, la combinaci&oacute;n de t&eacute;cnicas como el cultivo de tejidos y la mutag&eacute;nesis ha facilitado, en una gran diversidad de cultivos agr&iacute;colas, la regeneraci&oacute;n de un alto n&uacute;mero de variantes deseados, la obtenci&oacute;n de materiales libres de plagas y enfermedades y la posibilidad de irradiar un alto n&uacute;mero de explantes (Zhen, 2001; Zheng <i>et al.</i>, 2007). Por lo anteriormente se&ntilde;alado, en este estudio se plante&oacute; como objetivo desarrollar un protocolo para la mutag&eacute;nesis in vitro en el clon Bocon&oacute; de <i>A. sativum,</i> a trav&eacute;s de las t&eacute;cnicas de cultivo de tejidos y la aplicaci&oacute;n de radiaci&oacute;n gamma.</p>      <p align="center"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>     <p><b>Establecimiento del cultivo in vitro</b></p>     <p>Las etapas de iniciaci&oacute;n y posterior propagaci&oacute;n de bulbos de <i>A. sativum</i> mediante el cultivo <i>in vitro</i> se realizaron en el Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a de Posgrado de Horticultura de la Universidad Centroccidental Lisandro Alvarado (UCLA), en Tarabana, Estado Lara, Venezuela. En el comienzo los &aacute;pices caulinares fueron cultivados en medio Murashige y Skoog (MS) con 0.1 mg/l de &aacute;cido naftalenac&eacute;tico (ANA) y 0.5 mg/l de 2-isopenteniladenina (2ip). Para alcanzar la fase de propagaci&oacute;n (bulbificaci&oacute;n), los brotes procedentes del cultivo de &aacute;pices caulinares fueron cultivados en medio MS con 2 mg/l de 2ip m&aacute;s 90 g/l de sacarosa y 8 g/l de agar de acuerdo con el protocolo de Mujica <i>et al.</i> (2008). Para los ensayos de radiosensibilidad y mutag&eacute;nesis se utilizaron microbulbos de ajo clon Bocon&oacute;, con un peso entre 0.5 y 0.8 g y di&aacute;metro ecuatorial comprendido entre los 0.5 y 1 cm.</p>      <p><b>Ensayo de radiosensibilidad</b></p>     <p>El experimento se realiz&oacute; en la Unidad de Planta Pegamma, del Instituto Venezolano de Investigaciones Cient&iacute;ficas (IVIC) ubicado en los Altos de Pipe, los Teques, Estado Miranda, Venezuela. Los microbulbos fueron colocados a 75 cm de distancia y 8 cm de altura de la fuente de radiaci&oacute;n gamma (<sup>60</sup>Co). El poder y la velocidad de la fuente el d&iacute;a de radiaci&oacute;n fue de 9813 Curie y 195 Krad/h, respectivamente. De acuerdo con estos valores, se aplicaron cinco dosis de radiaci&oacute;n: 0, 6, 8, 10 y 12 Krad, correspondientes a un tiempo de exposici&oacute;n de 0, 1 min 50 s, 2 min 28 s, 3 min 41 s, y 4 min 16 s, respectivamente.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los microbulbos, una vez irradiados, fueron trasferidos a medio fresco de bulbificaci&oacute;n MS con 2 mg/l de 2ip m&aacute;s 90 g/l de sacarosa y 8 g/l de agar, con dos subsiguientes subcultivos a 45 y 90 d&iacute;as. En ambas &eacute;pocas (edades) se evaluaron las variables: peso seco (g), di&aacute;metro ecuatorial (cm) y di&aacute;metro polar (cm) de los microbulbos. Al final del experimento, se determin&oacute; el porcentaje de sobrevivencia seg&uacute;n la escala 1 - 0, donde 1 = microbulbos que permanecieron viables y/o turgentes, y 0 = microbulbos inviables o totalmente secos (<a href="#f1">Figura 1</a>). Para determinar la radiosensibilidad de los materiales se estableci&oacute; como dosis &oacute;ptima aquella que permiti&oacute; la sobrevivencia de 50&#37; de los microbulbos (DL<sub>50</sub>).</p>      <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/acag/v64n3/v64n3a08f1.jpg"></a></p>      <p>Para las variables evaluadas (peso, di&aacute;metro y sobrevivencia) se aplic&oacute; un dise&ntilde;o de bloques al azar con cinco tratamientos (0, 6, 8, 10, 12 Krad), 20 repeticiones por tratamiento y un microbulbo por tubo de ensayo como unidad experimental.</p>      <p><b>Ensayo de mutag&eacute;nesis</b></p>     <p>Una vez determinada la radiosensibilidad, los microbulbos provenientes del cultivo <i>in vitro</i> seleccionados con base en su peso (0.5 a 0.9 g) y di&aacute;metro ecuatorial (0.8 a 1 cm), fueron tratados con 8 y 10 Krad de radiaci&oacute;n gamma, siguiendo el protocolo anteriormente descrito.</p>      <p>Una vez irradiados, los microbulbos fueron trasferidos a medio fresco de bulbificaci&oacute;n MS con 2 mg/l de 2ip m&aacute;s 90 g/l de sacarosa y 8 g/l de agar y dos subcultivos posteriores a 45 y 90 d&iacute;as para evaluar las variables peso seco (g), di&aacute;metro ecuatorial (cm) y polar (cm) de los microbulbos. Una vez finalizada la etapa de cultivo <i>in vitro,</i> los microbulbos fueron colocados en bandejas pl&aacute;sticas 20 x 10 x 10 cm provistas de tapa antes de su almacenamiento a 10 &deg;C y condiciones de oscuridad durante 45 d&iacute;as, para nuevamente medir las variables peso seco (g), di&aacute;metro ecuatorial (cm) y polar (cm) de los microbulbos. Tanto en la etapa de bulbificaci&oacute;n, como en la etapa de almacenamiento, se aplic&oacute; un dise&ntilde;o de bloques al azar con tres tratamientos (0, 8, 10 Krad), 20 repeticiones por tratamiento y un microbulbo por tubo de ensayo como unidad experimental.</p>      <p align="center"><b>An&aacute;lisis de datos</b></p>     <p>Los datos de sobrevivencia fueron analizados por el m&eacute;todo no param&eacute;trica (Kruskal-Wallis, 1952) con la prueba de medias por comparaci&oacute;n de rangos m&uacute;ltiples, indicando sus respectivos promedios; mientras que para el peso y el di&aacute;metro de los microbulbos se aplic&oacute; la prueba de Tukey. En todos los casos, el nivel de significancia fue de 5&#37;. Para el an&aacute;lisis se utiliz&oacute; el programa estad&iacute;stico Infogen, versi&oacute;n 2012.</p>     <p align="center"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></p>      <p><b>Establecimiento del cultivo in vitro</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La iniciaci&oacute;n ocurri&oacute; en el 98&#37; de los &aacute;pices cultivados en MS con 0.1 mg/l de ANA y 0.5 mg/l de 2ip, permitiendo el desarrollo de un solo brote por tubo de ensayo con promedios de altura entre 4 y 4.6 cm. Por otra parte, la microbulbificaci&oacute;n a partir de brotes cultivados en MS suplementado con 2 mg/l de 2ip y 90 mg/l de sacarosa, permiti&oacute; el desarrollo de un solo microbulbo por tubo de ensayo, evidenciando la eficiencia del protocolo de regeneraci&oacute;n de microbulbos de <i>A. sativum</i> utilizado.</p>      <p><b>Ensayo de radiosensibilidad</b></p>     <p>Durante la determinaci&oacute;n de la radiosensibilidad a la radiaci&oacute;n gamma en microbulbos de <i>A. sativum,</i> tanto los testigos como los bulbos irradiados con 6, 8 y 10 Krad presentaron porcentajes de sobrevivencia superiores a 50&#37; (DL<sub>50</sub>), mientras que los tratados con 12 Krad mostraron el menor promedio (20&#37;) al final del experimento (<a href="#t1">Tabla 1</a>). El comportamiento similar de los tratamientos 6, 8 y 10 Krad de radiaci&oacute;n gamma vs. testigo, indican que estos favorecen el desarrollo y/o crecimiento de microbulbos del clon Bocon&oacute; de ajo.</p>      <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/acag/v64n3/v64n3a08t1.jpg"></a></p>      <p>Al-Safadi <i>et al.</i> (2000); Nabulsi <i>et al.</i> (2001); Zheng <i>et al.</i> (2007) y Wi <i>et al.</i> (2007) encontraron en bulbillos o &lsquo;dientes&rsquo; de <i>A. sativum</i> que las dosis &oacute;ptimas de irradiaci&oacute;n con gamma variaban entre 0.1 a 0.7 Krad. Para materiales provenientes de cultivo de tejidos, Zhen (2001) encontr&oacute; como rango &oacute;ptimo entre 0.5 y 1 Krad sobre callos irradiados con rayos gamma. En otras investigaciones (Croci y Curzio, 1983; IAEA, 1997; Taner y Kunter, 2004 y P&eacute;rez <i>et al.</i>, 2007) encontraron que dosis entre 3 y 9 Krad estimulaban el desarrollo y/o crecimiento de bulbos formados de <i>A. sativum,</i> indicando que cada tipo de estructura, bien sea dientes, microbulbos o bulbos, requiere de una dosis de radiaci&oacute;n espec&iacute;fica para su sobrevivencia y posterior regeneraci&oacute;n.</p>      <p>Los an&aacute;lisis del peso seco de los microbulbos mostraron diferencias (P &lt; 0.05) entre tratamientos. En este caso, a los 45 d&iacute;as utilizando la prueba de Tukey fue posible conformar tres grupos (<a href="#t2">Tabla 2</a>). Los microbulbos irradiados con 8 Krad presentaron el mayor valor promedio seguido por los tratamientos con 10 y 12 Krad. Por el contrario, los microbulbos testigo y los irradiados con 6 Krad presentaron los menores valores para esta variable. En comparaci&oacute;n con el testigo, los materiales irradiados con 8, 10 y 12 Krad experimentaron una ganancia en peso de 0.35, 0.18 y 0.18 g, respectivamente.</p>      <p align="center"><a name="t2"><img src="img/revistas/acag/v64n3/v64n3a08t2.jpg"></a></p>      <p>Noventa d&iacute;as despu&eacute;s del tratamiento mutag&eacute;nico la prueba de Tukey permiti&oacute; conformar tres grupos, con un valor promedio m&aacute;ximo observado en los microbulbos irradiados con 8 Krad, seguido por el tratamiento con 10 Krad. En el &uacute;ltimo grupo se encontraron los microbulbos testigo y los irradiados con 12 y 6 Krad. Igual que en el caso anterior, los materiales irradiados con 8 y 10 Krad experimentaron una ganancia en peso de 0.55 y 0.28 g, en relaci&oacute;n con el testigo.</p>      <p>En los materiales tratados con 6 Krad la ganancia de peso fue baja (0.03 g) y en los irradiados con 12 Krad se observ&oacute; una reducci&oacute;n de 0.06 g. Pellegrini <i>et al.</i> (2000) y Wi <i>et al.</i> (2007) encontraron que bajas dosis de radiaci&oacute;n (6 Krad) no afectan los materiales irradiados, mientras que altas dosis (12 Krad) reducen de forma dr&aacute;stica el desarrollo o crecimiento debido a alteraciones en el proceso de mitosis en las c&eacute;lulas tratadas. Wi <i>et al.</i> (2007) determinaron que altas dosis de radiaci&oacute;n pueden afectar c&eacute;lulas, tejidos e inclusive organelos como los cloroplastos. Tambi&eacute;n es ampliamente conocido que las radiaciones gamma con frecuencia producen mutaciones tanto g&eacute;nicas como cromos&oacute;micas (Donini, 1997), que no solo inhiben los procesos de divisi&oacute;n celular, sino tambi&eacute;n la multiplicaci&oacute;n y consecuentemente el crecimiento o desarrollo de los tejidos.</p>      <p>En el presente estudio el di&aacute;metro ecuatorial del microbulbo no mostr&oacute; diferencias (P &gt; 0.05) por efecto de los tratamientos; lo que s&iacute; se observ&oacute; para el di&aacute;metro polar (cm) a 45 y 90 d&iacute;as de evaluaci&oacute;n (<a href="#t3">Tabla 3</a>). En este caso a los 45 d&iacute;as la prueba de Tukey separ&oacute; los tratamientos en tres grupos, con un valor m&aacute;ximo observado en los materiales irradiados con 8, 10 y 6 Krad. En relaci&oacute;n con el tratamiento testigo, la elongaci&oacute;n de los microbulbos irradiados vari&oacute; entre 0.13 y 0.16 cm. Noventa d&iacute;as despu&eacute;s de la irradiaci&oacute;n se conformaron cuatro grupos para esta misma variable, correspondientes a los microbulbos tratados con 8, 10, testigo y 6 y 12 Krad. Cabe destacar, que los materiales tratados con 8 y 10 Krad, experimentaron una elongaci&oacute;n, con respecto al testigo, de 0.27 y 0.21 cm, respectivamente.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t3"><img src="img/revistas/acag/v64n3/v64n3a08t3.jpg"></a></p>      <p>En una misma edad de evaluaci&oacute;n, se encontr&oacute; mayor elongaci&oacute;n en los materiales irradiados con 8 y 10 Krad (0.26 y 0.22 cm), en relaci&oacute;n con el testigo, lo que no se observ&oacute; en los tratamientos con 6 y 12 Krad. Estos resultados indican que la aplicaci&oacute;n de 8 y 10 Krad de radiaci&oacute;n gamma estimul&oacute; la actividad mit&oacute;tica en las yemas apicales ubicadas en la base del tallo o disco caulinar, dirigiendo el proceso de bulbificaci&oacute;n m&aacute;s hacia la elongaci&oacute;n y/o la producci&oacute;n de reservas para el desarrollo o emergencia posterior de brotes en detrimento del volumen o grosor de los microbulbos.</p>      <p><b>Ensayo de mutag&eacute;nesis</b></p>     <p>En este ensayo el an&aacute;lisis para el peso de microbulbos no mostr&oacute; diferencias (P &gt; 0.05) 45 d&iacute;as despu&eacute;s de la irradiaci&oacute;n; no obstante, a 90 d&iacute;as si se detectaron diferencias a este mismo nivel de probabilidad. De acuerdo con este resultado la prueba de Tukey permiti&oacute; la separaci&oacute;n en dos grupos, observando los mayores promedios con la aplicaci&oacute;n de 10 Krad, seguido por 8 Krad y el testigo o control (<a href="#t4">Tabla 4</a>). En este caso, los microbulbos irradiados con 8 y 10 Krad experimentaron una ganancia en peso seco de 0.24 y 0.88 g, respectivamente.</p>      <p align="center"><a name="t4"><img src="img/revistas/acag/v64n3/v64n3a08t4.jpg"></a></p>      <p>Los resultados en la <a href="#t4">Tabla 4</a> muestran que entre 45 y 90 los microbulbos presentaron ganancias de peso de 0.44 y 0.99 g cuando fueron irradiados, respectivamente, con 8 y 10 Krad, mientras que en el testigo o control la ganancia en peso fue de 0.23 g. Pellegrini <i>et al.</i> (2000) y Al-Safadi <i>et al.</i> (2000), reportaron m&iacute;nimas perdidas de peso en bulbos de ajo irradiados con gamma en comparaci&oacute;n al testigo o control. Asimismo, los cultivares &ldquo;Rosado Paraguayo&rdquo; y &ldquo;Red&rdquo; de <i>A. sativum,</i> experimentaron una m&iacute;nima perdida de peso cuando fueron irradiados con 5 y 3 Krad de gamma, respectivamente (IAEA, 1997). Para los di&aacute;metros ecuatorial y polar no se encontraron diferencias a 45 y 90 d&iacute;as entre los tratamientos y el testigo (<a href="#t5">Tabla 5</a>).</p>      <p align="center"><a name="t5"><img src="img/revistas/acag/v64n3/v64n3a08t5.jpg"></a></p>      <p>Por los resultados antes mencionados y para fines pr&aacute;cticos, se eligieron las dosis de 8 y 10 Krad, como dosis &oacute;ptimas para microbulbos de ajo, ya que con ellos se garantiza una alta penetraci&oacute;n en los tejidos (Donini, 1997; IAEA, 1997; Piri <i>et al.</i>, 2011).</p>      <p>Durante la etapa de almacenamiento de los microbulbos bajo condiciones <i>ex vitro</i> (10 &deg;C y condiciones de oscuridad) se encontraron diferencias (P &lt; 0.05) para las variables peso seco y di&aacute;metros, observando los mayores promedios con la aplicaci&oacute;n de 10 Krad, seguido por 8 Krad y el testigo o control (<a href="#t6">Tabla 6</a>).</p>      <p align="center"><a name="t6"><img src="img/revistas/acag/v64n3/v64n3a08t6.jpg"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Estos resultados muestran las ventajas de las condiciones de almacenamiento de ajo en este estudio y coincide con los resultados de Donini (1997) sobre la importancia de evaluar per&iacute;odos y temperaturas de almacenamiento en materiales sometidos a un tratamiento mutag&eacute;nico.</p>       <p align="center"><b>Conclusiones</b></p> <ul>     <li>Con el uso de la irradiaci&oacute;n gamma, los microbulbos de ajo como semilla pre-b&aacute;sica, pueden ser llevados directamente a condiciones controladas de invernadero, disminuyendo los costos en insumos y mano de obra requeridos para la regeneraci&oacute;n mediante otras t&eacute;cnicas de cultivo.</li>     <li>El procedimiento ofrece una ventaja adicional ya que facilita la selecci&oacute;n y el mantenimiento por v&iacute;a vegetativa de mutantes s&oacute;lidos o estables, con caracter&iacute;sticas deseables en cortos per&iacute;odos de tiempo (1 - 2 a&ntilde;os).</li>     <p>Se estableci&oacute; un protocolo para la mutag&eacute;nesis <i>in vitro</i> en el clon Bocon&oacute; de <i>A. sativum.</i> De esta manera, la irradiaci&oacute;n de microbulbos provenientes del cultivo de tejidos, con dosis de 8 y 10 Krad, favorece el desarrollo y crecimiento de microbulbos de ajo, que luego de un proceso de selecci&oacute;n pueden formar parte de programas de mejoramiento gen&eacute;tico en la producci&oacute;n de semilla b&aacute;sica de <i>A. sativum.</i></p>     </ul>      <p align="center"><b>Agradecimientos</b></p>     <p>A Pa&uacute;l Azuaje, Dr. Basilio Donini e Ing. Jaime Jaspe por la colaboraci&oacute;n prestada y al CDCHT-UCLA por el financiamiento otorgado.</p> <hr noshade size="1">      <p align="center"><b>Referencias</b></p>     <!-- ref --><p>Ahloowalia, B. y Maluszynski, M. 2001. Induced mutation: A new paradigm in plant breeding. <i>Euphytica 118</i>:167 - 173.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-2812201500030000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Al-Safadi, B.; Mir-Ali, N.; y Arabi, M. 2000. Improvement of garlic (<i>Allium sativum</i> L.) resistance to white rot and storability using gamma irradiation induced mutation. <i>J. Gen. 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Effect of gamma rays on seed cloves of garlic (<i>Allium sativum</i>) at post-harvest: reversion by exogenous growth regulators. Environ. <i>Exp. Bot.</i> 27(1):1 - 6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2812201500030000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Donini, B. 1997. Mutaciones inducidas en el mejoramiento gen&eacute;tico de los cultivos. Universidad de Oriente. 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Vienna, Austria. 40 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-2812201500030000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Kruskal, W. y Wallis, W. 1952. Use of ranks in one-criterion variance analysis. <i>Journal of the American Statistical Association. 47</i> (260): 583-621.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-2812201500030000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Matijevic, M.; Bado, S.; Lagoda, P.; y Foster, B. 2013. Impact of induced mutations in plant breeding. Plant Genetics and Breeding Technologies. Monduzci. 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Evaluation of some garlic (<i>Allium sativum</i> L.) mutants resistant to white rot disease by RAPD analysis. <i>Ann. Appl. Biol. 138</i>(2):197 - 202.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-2812201500030000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Pellegrini, C.; Croci, C.; y Orioli, G. 2000. Morphological changes induced by different doses of gamma irradiation in garlic sprouts. <i>Rad. Phys. 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