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<article-id pub-id-type="doi">10.15446/acag.v65n4.50325</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estimación del riesgo de contaminación de fuentes hídricas de pesticidas (Mancozeb y Carbofuran) en Ventaquemada, Boyacá - Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The extensive use of pesticides on crops generates a negative environmental impact that affects soil and water resources. It is necessary to evaluate residual quantities of these substances in water sources that is used by people, animals and agriculture. A simple, reliable and environmentally friendly methodology was developed for the determination of Mancozeb and Carbofuran in water. It was used Britton-Robinson buffer solution as supporting electrolyte, glassy carbon as working electrode, Ag /AgCl as reference electrode and platinum auxiliary electrode. Differential pulse voltammetry (VDP) methods were validated for mancozeb and Carbofuran, which presented a potential of -590 and 445mV, respectively. Linearity presented a correlation coefficient of 0.9948 and 0.9962, detection and quantification limits were 0.0003 and 0.5 mg/L to Mancozeb, 0.0002 and 0.4 mg/L for Carbofuran, and the recoveries were within 85 and 96&#37; (RSD <10&#37;). The voltametry and UV-vis method comparison showed that electrochemical quantification was better. The method was satisfactorily applied for analysis of water samples (25) from Ventaquemada, Boyacá - Colombia, where there is a high agricultural production, especially potato and carrot crops. Mancozeb, was not detected in 16 water source samples, but the rest, surpassed the current regulations. Carbofuran was detected in 22 water source samples, indicating that these compounds are affecting water sources and suggest that the government should take corrective and preventive measures to reduce the environmental impact of pesticides in northern zone of this town.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><a href="http://dx.doi.org/10.15446/acag.v65n4.50325" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/acag.v65n4.50325</a></p>     <p align="center"><font size="4"><b>Estimaci&oacute;n del riesgo de contaminaci&oacute;n de fuentes h&iacute;dricas de pesticidas (Mancozeb y Carbofuran) en Ventaquemada, Boyac&aacute; &#150; Colombia</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>Risk estimate of water sources contamination of pesticides (Mancozeb and Carbofuran) in Ventaquemada, Boyac&aacute; &#150; Colombia</b></font></p>     <p align="center">William Roberto Alza Camacho, Jos&eacute; Mauricio Garc&iacute;a Colmenares y Sandra Patricia Chaparro Acu&ntilde;a<sup>*</sup></p>     <p>Escuela de Ciencias Qu&iacute;micas. Facultad de Ciencias. Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia. Tunja, Boyac&aacute;&#150; Colombia. <sup>*</sup>Autora para correspondencia: <a href="mailto:patricia.chaparro@uptc.edu.co">patricia.chaparro@uptc.edu.co</a></p>     <p align="right">Rec.:30.04.2015 Acep.:30.07.2015</p> <hr noshade size="1">     <p align="center"><b>Resumen</b></p>     <p>El uso indiscriminado de plaguicidas en los cultivos, genera un impacto ambiental negativo que afecta a los organismos vivos, al suelo y al recurso h&iacute;drico, &eacute;ste &uacute;ltimo esencial para la vida. Por lo tanto, es necesario evaluar la residualidad de este tipo de sustancias en fuentes de agua que sirven como abastecimiento a la comunidad, los animales y en labores agr&iacute;colas. Con base en lo anterior, se plantea una metodolog&iacute;a electroqu&iacute;micamente sencilla, confiable, asequible y amigable con el medio ambiente, para la cuantificaci&oacute;n de Mancozeb y Carbofurano en fuentes h&iacute;dricas. El estudio fue realizado usando como electrolito de soporte, soluci&oacute;n buffer Britton&#150;Robinson; electrodo de trabajo de carb&oacute;n v&iacute;treo, Ag/AgCl como electrodo de referencia y platino como electrodo auxiliar. Se validaron los m&eacute;todos de voltametr&iacute;a diferencial de pulso (VDP) para ambos compuestos, los cuales presentaron un potencial de &#150;590 y 445mV, respectivamente. La linealidad de los m&eacute;todos, present&oacute; un coeficiente de correlaci&oacute;n de 0.9948 y 0.9962, los l&iacute;mites de detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n fueron de 0.0003 y 0.5 mg/L para Mancozeb y 0.0002 y 0.4 mg/L para Carbofurano. La recuperaci&oacute;n estuvo entre un 85 y 96&#37; con una desviaci&oacute;n est&aacute;ndar relativa por debajo del 10&#37;. Se evaluaron 25 muestras de agua provenientes de fuentes h&iacute;dricas ubicadas en la zona norte del Municipio de Ventaquemada, Boyac&aacute;&#150; Colombia, donde hay una alta producci&oacute;n agr&iacute;cola, especialmente de los cultivos de papa y zanahoria. De las muestras analizadas, el Mancozeb no se detect&oacute; en 16 muestras, pero en el resto de ellas, sobrepas&oacute; la normatividad vigente. En cuanto al Carbofurano, se descubri&oacute; en 22 muestras, lo que indica que estos compuestos est&aacute;n afectando el recurso h&iacute;drico y sugiere que se deben tomar medidas correctivas y preventivas para reducir el impacto ambiental de los plaguicidas en esta regi&oacute;n.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> Impacto ambiental, residualidad, detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n, voltametr&iacute;a diferencial de pulso (VDP), reactivos.</p> <hr noshade size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><b>Abstract</b></p>     <p>The extensive use of pesticides on crops generates a negative environmental impact that affects soil and water resources. It is necessary to evaluate residual quantities of these substances in water sources that is used by people, animals and agriculture. A simple, reliable and environmentally friendly methodology was developed for the determination of Mancozeb and Carbofuran in water. It was used Britton&#150;Robinson buffer solution as supporting electrolyte, glassy carbon as working electrode, Ag /AgCl as reference electrode and platinum auxiliary electrode. Differential pulse voltammetry (VDP) methods were validated for mancozeb and Carbofuran, which presented a potential of &#150;590 and 445mV, respectively. Linearity presented a correlation coefficient of 0.9948 and 0.9962, detection and quantification limits were 0.0003 and 0.5 mg/L to Mancozeb, 0.0002 and 0.4 mg/L for Carbofuran, and the recoveries were within 85 and 96&#37; (RSD <u>&lt;</u>10&#37;). The voltametry and UV&#150;vis method comparison showed that electrochemical quantification was better. The method was satisfactorily applied for analysis of water samples (25) from Ventaquemada, Boyac&aacute; &#150; Colombia, where there is a high agricultural production, especially potato and carrot crops. Mancozeb, was not detected in 16 water source samples, but the rest, surpassed the current regulations. Carbofuran was detected in 22 water source samples, indicating that these compounds are affecting water sources and suggest that the government should take corrective and preventive measures to reduce the environmental impact of pesticides in northern zone of this town.</p>     <p><b>Keywords:</b> Environmental impact, residuality, detection and quantification, differential pulse voltammetry (DPV), reagents.</p> <hr noshade size="1">     <p align="center"><b>Introducci&oacute;n</b></p>     <p>El uso indiscriminado de plaguicidas es preocupante por sus efectos sobre el equilibrio de los ecosistemas, debido a que ha sido reconocido como fuente potencial de impacto negativo sobre el medio ambiente y su presencia en aguas y suelos se ha incrementado notoriamente. Se ha determinado que los fungicidas e insecticidas, son los productos m&aacute;s aplicados para la reducci&oacute;n y/o eliminaci&oacute;n de plagas. El Mancozeb y Carbofurano, se destacan como los plaguicidas comerciales m&aacute;s solicitados por los agricultores. El Mancozeb es b&aacute;sicamente, la sal de etilenbisditiocarbamato usada ampliamente para proteger cultivos agr&iacute;colas de enfermedades f&uacute;ngicas (Paro <i>et al.</i> 2012), debido a su amplio espectro biol&oacute;gico; los bajos costos de producci&oacute;n y a su perfil toxicol&oacute;gico seguro (Mujawar <i>et al.</i> 2014). Sin embargo, se ha evidenciado que la etilentiourea (ETU), metabolito que se forma al disociarse en el agua en presencia de ox&iacute;geno y que tiene alta movilidad en suelos debido a su elevada solubilidad en agua, es la responsable de su toxicidad a largo plazo en humanos y en el medio ambiente. Se ha comprobado que tiene efectos perjudiciales en animales de laboratorio, los cuales han llegado a presentar cambios histopatol&oacute;gicos en el h&iacute;gado, en las gl&aacute;ndulas suprarrenales y en las gl&aacute;ndulas mamarias (Paro <i>et al.</i> 2012); necrosis renal, aberraciones cromosomales, degeneraci&oacute;n neural (Brody <i>et al.</i> 2013), da&ntilde;o en el ADN (Medjdoub <i>et al.</i> 2011), y es disruptor endocrino (Bhaskar &amp; Mohanty, 2014). La toxicidad del Mancozeb, se relaciona con la contaminaci&oacute;n del suelo por labores agr&iacute;colas, elev&aacute;ndose el interrogante de c&oacute;mo se afecta el metabolismo de las plantas y c&oacute;mo es su impacto en la composici&oacute;n de los alimentos y en su calidad toxicol&oacute;gica (Pereira <i>et al.</i> 2014). Los m&eacute;todos indirectos para la cuantificaci&oacute;n de este fungicida, incluyen espectrofotometr&iacute;a UV&#150;Vis (Paramasivam &amp; Chandrasekaran, 2013), cromatograf&iacute;a de gases acoplada con espectrometr&iacute;a de masas (Mujawar <i>et al.</i> 2014), espectrometr&iacute;a FTIR, cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alto rendimiento HPLC (L&oacute;pez <i>et al.</i> 2013), cromatograf&iacute;a l&iacute;quida acoplada a espectrometr&iacute;a de masas y m&eacute;todos vibracionales (Moros <i>et al.</i> 2007).</p>     <p>El carbofurano (2,3 dihidro&#150;2,2&#150;dimetil&#150;7&#150;benzofuranil&#150;metilcarbamato) es un insecticida y acaricida de contacto, sist&eacute;mico y de amplio espectro usado en una gran variedad de cultivos (Berm&uacute;dez <i>et al.</i> 2011; Plangklang &amp; Reungsang, 2009). Este compuesto es muy t&oacute;xico para los mam&iacute;feros y la LD<sub>50</sub> para ratas es de 50 mg/kg. Sus propiedades t&oacute;xicas incluyen la inhibici&oacute;n de la acetilcolinesterasa, convulsiones violentas y trastorno neuromuscular si se inhala (ITII, 1994). Tambi&eacute;n se reporta que es teratog&eacute;nico, genot&oacute;xico, mutag&eacute;nico, hepatot&oacute;xico (Gbadegesin <i>et al.</i> 2014) y disruptor endocrino (Hern&aacute;ndez <i>et al.</i> 2011). La solubilidad en agua es alta, por lo tanto, se considera un contaminante potencial de aguas subterr&aacute;neas por lixiviaci&oacute;n. El riesgo de que el carbofurano afecte plantas y microorganismos, o su presencia en el agua en altas cantidades, depende de su concentraci&oacute;n en el suelo y de los procesos de absorci&oacute;n y desorci&oacute;n (Berm&uacute;dez <i>et al.</i> 2011). Debido a su gran toxicidad y aplicabilidad se reportan varios m&eacute;todos de cuantificaci&oacute;n dentro de los que est&aacute;n espectrofotometr&iacute;a UV&#150;Vis (Tamrakar <i>et al.</i> 2007), cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alto rendimiento (Berm&uacute;dez <i>et al.</i> 2011; Otieno <i>et al.</i> 2010), cromatograf&iacute;a de gases, fluorimetr&iacute;a, sensores amperom&eacute;tricos (Sun <i>et al.</i> 2012) y cromatograf&iacute;a de gases acoplada a espectrometr&iacute;a de masas (Otieno <i>et al.</i> 2010; Bravo <i>et al.</i> 2005). El monitoreo de plaguicidas en aguas, es importante para la protecci&oacute;n de la salud humana y el control del medio ambiente. Sin embargo, los m&eacute;todos anteriormente mencionados para la cuantificaci&oacute;n de estos plaguicidas requieren equipos costosos, pretratamientos de la muestra complicados, operadores profesionales y residuos peligrosos para el medio ambiente, lo cual limita su aplicaci&oacute;n. La electroqu&iacute;mica para la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de plaguicidas, es un m&eacute;todo alternativo de amplio espectro, econ&oacute;mico, vers&aacute;til y amigable con el ambiente, que tiene ventajas sobre otras t&eacute;cnicas anal&iacute;ticas como su alta especificidad y sensibilidad, operaci&oacute;n sencilla para el tratamiento de las muestras y bajo costo (Jeyapragasam &amp; Saraswathi, 2014). El objetivo de este trabajo fue validar las metodolog&iacute;as voltam&eacute;tricas para la cuantificaci&oacute;n de carbofurano y mancozeb y determinar la residualidad de estos plaguicidas en aguas provenientes de fuentes h&iacute;dricas del norte del Municipio de Ventaquemada, Boyac&aacute;&#150; Colombia.</p>     <p align="center"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>     <p><b>Instrumentos</b></p>     <p>El estudio se llev&oacute; a cabo en un polar&oacute;grafo BAS CV 50W equipado con un analizador voltamperom&eacute;trico, y estaci&oacute;n electroqu&iacute;mica CGME analizador, la estaci&oacute;n electroqu&iacute;mica estaba conformada de un electrodo de trabajo carb&oacute;n v&iacute;treo BASI MF&#150;2070<sup>&reg;</sup>, electrodo de referencia Ag/AgCl BASI MF&#150;2052<sup>&reg;</sup> y un electrodo auxiliar de platino BASI MW&#150;1032<sup>&reg;</sup>. Adicionalmente, se us&oacute; una balanza anal&iacute;tica BOECO BAS 32<sup>&reg;</sup> resoluci&oacute;n 0.0001g, pH&#150;metro Schott CG 842<sup>&reg;</sup> resoluci&oacute;n 0.01 y conductiv&iacute;metro YSI 63<sup>&reg;</sup> resoluci&oacute;n 0.1. Todos los equipos cuentan con sus certificados de calibraci&oacute;n.</p>     <p><b>Materiales</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Todos los reactivos empleados fueron grado anal&iacute;tico: Mancozeb 99,9&#37; (etileno bis ditiocarbamato de manganeso coordinado con iones de zinc) de Sigma, Carbofurano 99,9&#37; (2,3&#150;dihidro&#150;2,2&#150;dimetilbenzofuran&#150;7&#150;il metilcarbamato) de sigma, hidr&oacute;xido de sodio 98&#37; Panreac, &aacute;cido b&oacute;rico 99,8&#37; Merck, &aacute;cido fosf&oacute;rico 85&#37; Carlos Herba, &aacute;cido percl&oacute;rico 65&#37; Panreac, &aacute;cido ac&eacute;tico 99,5&#150;100,5&#37; Panreac, &aacute;cido sulf&uacute;rico 98&#37; de M&amp;B, perclorato de sodio 98&#37; de Alfa Aesar, EDTA 99&#150;101&#37; de Panreac. Todas las soluciones se prepararon con agua desionizada de conductividad 0,05uS (Sistema Milli&#150;Di <sup>&reg;</sup> y Simplicity).</p>     <p><b>Soluciones</b></p>     <p>A partir de soluciones est&aacute;ndar de 1000mg/L de cada plaguicida (Mancozeb y Carbofurano), se prepararon soluciones de trabajo de 100 y 10mg/L. Las medidas electroqu&iacute;micas o voltam&eacute;tricas se realizaron en buffer Britton Robinson como electrolito de soporte (0,618g de &aacute;cido b&oacute;rico, 0,56mL de &aacute;cido ac&eacute;tico, 0,48mL de &aacute;cido orto&#150;fosf&oacute;rico en un volumen de 100mL con agua desionizada), el pH se ajust&oacute; con NaOH y H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> 1M para mancozeb a pH 5 y carbofurano a pH 2,8.</p>     <p><b>Selecci&oacute;n del pH de trabajo</b></p>     <p>Se evalu&oacute; el comportamiento electroqu&iacute;mico de mancozeb en un rango de pH de: 1&#150;10, en soluci&oacute;n Briton&#150;Robinson, el pH seleccionado para carbofurano fue tomado seg&uacute;n lo reportado por Bravo <i>et al.</i> (2005), que sugiere pH 2.8 para este insecticida.</p>     <p><b>Par&aacute;metros para la detecci&oacute;n electroqu&iacute;mica</b></p>     <p>La optimizaci&oacute;n de las condiciones para la determinaci&oacute;n de la se&ntilde;al de cada plaguicida, se evalu&oacute; mediante un dise&ntilde;o factorial 3<sup>4</sup> (Sensibilidad 1, 10 y 100&micro;A/V; Tiempo de quietud 5, 10 y 15s; Amplitud de onda 20, 25 y 30mV y Tiempo de desoxigenaci&oacute;n 50, 60 y 70s). En la <a href="#t1">Tabla 1</a>, se detallan las condiciones a las cuales se llev&oacute; a cabo el estudio. Para la cuantificaci&oacute;n de Mancozeb, se agreg&oacute; un volumen conocido de soluci&oacute;n de trabajo en un rango de 0,1&#150;3,0mg/L, 3mL de agua y 4mL de la soluci&oacute;n electrol&iacute;tica. La mezcla obtenida, se transfiri&oacute; a la celda electroqu&iacute;mica, se program&oacute; el equipo seg&uacute;n las condiciones optimizadas previa a los par&aacute;metros y se procedi&oacute; a la medici&oacute;n. Los potenciales seleccionados para la determinaci&oacute;n cuantitativa de cada plaguicida fueron tomados seg&uacute;n la respuesta voltam&eacute;trica de oxidaci&oacute;n que el compuesto generaba. Estos potenciales fueron establecidos por determinaci&oacute;n an&oacute;dica: Mancozeb (&#150;590 &#177; 12mV), y Carbofurano (445 &#177; 9mV). Los potenciales contrastados con otros m&eacute;todos voltam&eacute;tricos presentan desplazamientos en los potenciales redox, debido a que emplean electrodo trabajo de gota de mercurio, modificaci&oacute;n de electrodos y diversos electrolitos de soporte; Mancozeb &#150;430mV, (Swarupa <i>et al.</i> 2013), &#150;455mV (Shan <i>et al.</i> 1999), Carbofurano 688Mv.</p>      <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/acag/v65n4/v65n4a07t1.jpg"></a></p>      <p><b>Selecci&oacute;n de la curva de calibraci&oacute;n</b></p>     <p>Las concentraciones de las soluciones est&aacute;ndar de mancozeb fueron 0.3, 0.5, 0.7, 0.9, 1.0, 2.0, 3.0, 4.0 y 5.0mg/L y para carbofurano 0.5, 0.7, 0.9, 1.0, 2.0, 3.0, 4.0, 5.0, 6.0 y 7.0mg/L.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Validaci&oacute;n de los m&eacute;todos</b></p>     <p>Se determinaron los principales atributos del m&eacute;todo: l&iacute;mite de detecci&oacute;n (DL), l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n (QL), sensibilidad (Eurachem, 2005); precisi&oacute;n (con desviaci&oacute;n est&aacute;ndar y coeficiente de variaci&oacute;n) y exactitud (con porcentaje de recuperaci&oacute;n), lo que se logr&oacute; mediante la evaluaci&oacute;n de seis lotes de soluciones compuestas por un blanco (soluci&oacute;n Britton Robinson), un est&aacute;ndar alto (5 y 7 ppm para mancozeb y carbofurano respectivamente), un est&aacute;ndar bajo (0,5 y 3 ppm), dos muestras naturales (dos muestras de agua recolectadas en la zona norte del Municipio de Ventaquemada, Boyac&aacute; &#150; Colombia. Un adicionado alto (2 y 6 ppm) y uno bajo (0,5 y 3 ppm), llevando a cabo el estudio, dos analistas. Los resultados fueron contrastados con los obtenidos en contra&#150;muestras por la t&eacute;cnica de espectroscopia UV&#150;Vis seg&uacute;n Kaur <i>et al.</i> (2011), y Tamrakar <i>et al.</i> (2007). El tratamiento estad&iacute;stico de los datos se realiz&oacute; con el paquete SPSS, 2012<sup>&reg;</sup>.</p>     <p><b>Determinaci&oacute;n de Mancozeb y Carbofurano en aguas</b></p>     <p>Veinticinco muestras de agua (2 litros por cada muestra y por triplicado) fueron recolectadas de forma aleatoria en diferentes fuentes h&iacute;dricas (quebradas y pozos de almacenamiento aleda&ntilde;os a cultivos de papa y zanahoria) de la zona norte del municipio de Ventaquemada, veredas de Puente de Boyac&aacute; y Bojirque, Boyac&aacute;&#150; Colombia; las cuales se etiquetaron por georreferenciaci&oacute;n (<a href="img/revistas/acag/v65n4/v65n4a07t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). La toma, transporte, conservaci&oacute;n y pretratamiento de las muestras, se llev&oacute; a cabo cuidadosamente conforme a los lineamientos t&eacute;cnicos estandarizados. Una vez en el laboratorio, se tomaron al&iacute;cuotas de 10mL de cada muestra y se le adicion&oacute; un 1mL de EDTA 0,01N como soluci&oacute;n acomplejante, luego se agitaron durante 5 minutos en un rotador orbital (marca UNICO, modelo L&#150;RT28<sup>&reg;</sup>); el precipitado formado fue separado mediante la ayuda de un equipo de filtraci&oacute;n con bomba de vac&iacute;o (marca BARNANT COMPANY<sup>&reg;</sup>, modelo 400&#150;3910) y papel filtro de fibra de vidrio grado GC&#150;50 de 47mm de tama&ntilde;o. La cuantificaci&oacute;n de los plaguicidas se llev&oacute; a cabo como se describi&oacute; anteriormente. Con la intensidad de corriente generada, se calcul&oacute; la concentraci&oacute;n de cada pesticida, para lo cual se emplearon las ecuaciones lineales de las curvas de calibraci&oacute;n y teniendo en cuenta el tama&ntilde;o de la muestra.</p>     <p><b>Dise&ntilde;o experimental</b></p>     <p>La validaci&oacute;n se evalu&oacute; a trav&eacute;s de un dise&ntilde;o factorial 2<sup>6</sup>, las muestras se analizaron al azar por triplicado, en total se realizaron 64 ensayos por dos analistas.</p>     <p align="center"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></p>     <p><b>Selecci&oacute;n de pH</b></p>     <p>La oxidaci&oacute;n de Mancozeb se evalu&oacute; en un rango de pH de 1&#150;10 con el m&eacute;todo de voltametr&iacute;a de onda cuadrada (VOC), presentando mejor respuesta a pH 5 (<a href="img/revistas/acag/v65n4/v65n4a07f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). Swarupa <i>et al.</i> (2013), determinaron que la mejor respuesta de este compuesto se presentaba a pH 4,5 empleando buffer de acetato, lo que es similar a lo hallado en la presente investigaci&oacute;n. El Mancozeb, en su proceso de oxidaci&oacute;n genera una se&ntilde;al hacia &#150;590 &#177; 12mV (<a href="img/revistas/acag/v65n4/v65n4a07f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>); la intensidad de corriente m&aacute;xima se presenta a pH 5. Swarupa <i>et al.</i> (2013), emplearon un electrodo modificado de carb&oacute;n v&iacute;treo para detectar mancozeb cat&oacute;dicamente por voltametr&iacute;a c&iacute;clica y diferencial de pulso, encontrando un potencial de reducci&oacute;n de 410mV. La electroactividad del Carbofurano, fue llevada a cabo por determinaci&oacute;n an&oacute;dica con VDP y present&oacute; adem&aacute;s, un potencial de oxidaci&oacute;n hacia 445 &#177; 9mV (<a href="img/revistas/acag/v65n4/v65n4a07f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>). Lo anterior indica una mayor sensibilidad de la t&eacute;cnica. Los carbamatos son mol&eacute;culas no electro&#150;activas, por lo tanto, no presentan respuesta electroqu&iacute;mica alguna. Sin embargo, sus productos de hidr&oacute;lisis se oxidan f&aacute;cilmente sobre electrodo de carb&oacute;n v&iacute;treo y producen derivados fen&oacute;licos (<a href="#f2">Figura 2</a>).</p>      <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/acag/v65n4/v65n4a07f2.jpg"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Validaci&oacute;n de los m&eacute;todos</b></p>     <p>Se grafic&oacute; la respuesta generada por el equipo, intensidad (Amperios) vs concentraci&oacute;n, lo cual permiti&oacute; establecer el rango lineal del m&eacute;todo y la construcci&oacute;n de las curvas de calibraci&oacute;n (4), en las que se obtuvo un coeficiente de correlaci&oacute;n de 0,9962 (Carbofurano) y 0,9948 (Mancozeb) (<a href="img/revistas/acag/v65n4/v65n4a07f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>). Los atributos de validaci&oacute;n (<a href="#t3">Tabla 3</a>), indican que la exactitud y precisi&oacute;n est&aacute;n por encima del 87&#37;, aunque el desempe&ntilde;o del m&eacute;todo en estos aspectos ofreci&oacute; mejores resultados para el Carbofurano. Los l&iacute;mites de detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n fueron de 0.0003 y 0.5 mg/L para Mancozeb y 0.0002 y 0.4 mg/L para Carbofurano, valores similares a los encontrados en otros plaguicidas reportados recientemente por espectrofotometr&iacute;a cin&eacute;tica (0.12&#150;0.26mg/L) y por t&eacute;cnicas voltam&eacute;tricas (0.3&#150;0.8mg/L); Swarupa <i>et al.</i> 2013). La selectividad de los m&eacute;todos es alta porque otros pesticidas pueden estar presentes como residuos en las muestras analizadas (por ejemplo organofosforados), pero no son interferencias para el an&aacute;lisis porque el electrolito de soporte y en particular el pH, son totalmente diferentes. El an&aacute;lisis de varianza de las soluciones analizadas en la validaci&oacute;n, indic&oacute; que no hab&iacute;a diferencia significativa alguna entre los lotes y entre los analistas, lo que indica que los m&eacute;todos son reproducibles. En adici&oacute;n a lo anterior, los resultados obtenidos presentan coeficientes de variaci&oacute;n inferiores al 10&#37;, lo que indica que los m&eacute;todos son precisos. En cuanto a los porcentajes de recuperaci&oacute;n superiores al 85&#37;, indican que los m&eacute;todos son exactos. Los m&eacute;todos validados fueron comparados con las t&eacute;cnicas de espectrofotometr&iacute;a UV&#150;Vis y los resultados indicaron que los m&eacute;todos voltam&eacute;tricos fueron superiores. Es decir, el m&eacute;todo es m&aacute;s sensible y registra concentraciones m&aacute;s bajas del analito en muestras de agua. Esta diferencia se evalu&oacute; por medio de un an&aacute;lisis de varianza de un factor donde se tuvo como referencia la concentraci&oacute;n de los est&aacute;ndares evaluados. No se present&oacute; diferencia significativa en la concentraci&oacute;n de los est&aacute;ndares de los plaguicidas por los dos m&eacute;todos mencionados. El an&aacute;lisis fue realizado con un nivel de confiabilidad del 95&#37;.</p>      <p align="center"><a name="t3"><img src="img/revistas/acag/v65n4/v65n4a07t3.jpg"></a></p>      <p><b>Residualidad de mancozeb y carbofurano en muestras de agua</b></p>     <p>La aplicaci&oacute;n de los m&eacute;todos electroqu&iacute;micos validados se realiz&oacute; en la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de mancozeb y carbofurano en aguas provenientes de la zona norte del Municipio de Ventaquemada, Boyac&aacute; &#150; Colombia, &aacute;rea de una amplia producci&oacute;n agr&iacute;cola, especialmente de los cultivos de papa y zanahoria. De las 25 muestras evaluadas, el Mancozeb no se detect&oacute; en 16 muestras de agua (<a href="img/revistas/acag/v65n4/v65n4a07t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>), pero en el resto de las muestras de agua, excedi&oacute; el l&iacute;mite m&aacute;ximo residual permitido y estandarizado internacionalmente. En cuanto al Carbofur&aacute;n, no se detect&oacute; solamente en 3 muestras de agua, lo que indica, que este insecticida es uno de los plaguicidas m&aacute;s usados en esta regi&oacute;n y que su uso excesivo est&aacute; contaminando las reservas h&iacute;dricas, lo que puede causar un riesgo para la salud de los campesinos y animales que utilizan esta agua para consumo. El monitoreo de residuos de plaguicidas en aguas, es de crucial importancia para determinar el grado de exposici&oacute;n de una poblaci&oacute;n y prevenir posibles consecuencias toxicol&oacute;gicas a largo plazo. Adem&aacute;s, la implementaci&oacute;n de programas de prevenci&oacute;n en el uso correcto y racional de pesticidas, reducir&iacute;a los riesgos de la comunidad a intoxicaciones con este tipo de sustancias.</p>     <p align="center"><b>Conclusiones</b></p> <ul>     <li>La aplicaci&oacute;n de los m&eacute;todos validados en el an&aacute;lisis de muestras de fuentes h&iacute;dricas, permiti&oacute; conocer que en la zona norte del Municipio de Ventaquemada, Boyac&aacute;&#150; Colombia, regi&oacute;n donde tradicionalmente se establecen los cultivos de papa y zanahoria; se est&aacute;n utilizando indiscriminadamente estos dos pesticidas, debido a que en la mayor&iacute;a de las muestras de agua evalauadas, se evideenci&oacute; que excedian los l&iacute;mites m&iacute;nimos residuales permitidos para estos compuestos en esta matriz. Los m&eacute;todos electroqu&iacute;micos fueron exitosamente aplicados en an&aacute;lisis rutinarios con una precisi&oacute;n (desviaci&oacute;n est&aacute;ndar relativa <u>&lt;</u> 10&#37;) y exactitud (porcentajes de recuperaci&oacute;n por encima del 88&#37;) satisfactorias. Adicionalmente, se usaron cantidades peque&ntilde;as de reactivos y muestra de agua, reduciendo el impacto ambiental por la minimizaci&oacute;n de los residuos qu&iacute;micos.</li>     </ul>     <p align="center"><b>Agradecimientos</b></p>     <p>Los autores agradecen a COLCIENCIAS y a la Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia por el apoyo financiero al Convenio 0212&#150;2013, titulado: "Sistema de detecci&oacute;n in situ de plaguicidas en la cadena de la papa al alcance de los agricultores".</p> <hr noshade size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><b>Referencias</b></p>     <!-- ref --><p>Berm&uacute;dez. A. Fern&aacute;ndez. D. Pateiro. M. Novoa. J.C. Simal. J. Arias. M. (2011). Adsorption and desorption kinetics of Carbofuran in acid soils. <i>J Hazard Mater</i>, 190(1&#150;3), 159&#150;167. doi:10.1016/j.jhazmat.2011.03.021.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022376&pid=S0120-2812201600040000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Bhaskar. R. Mohanty. B. (2014). Pesticides in mixture disrupt metabolic regulation: In silico and in vivo analysis of cumulative toxicity of Mancozeb and imidacloprid on body weight of mice. <i>Gen Comp Endocr</i>, 205(1), 226&#150;234. doi:10.1016/j.ygcen.2014.02.007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022378&pid=S0120-2812201600040000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Bravo R. L.M. Caltabiano. C. Fern&aacute;ndez. K.D. Smith. M. Gallegos. R.D. Whitehead. J.R. Weerasekara&#150;Restrepo. P. Bishop. A.M. P&eacute;rez. J.J. Needham. L.L. Barr. D.B. (2005). Quantification of phenolic metabolites of environmental chemicals in human urine using gas chromatography&#150;tandem mass spectrometry and isotope dilution quantification, <i>J Chromatogr B</i>, 820(2),229&#150;236. doi:10.1016/j.jchromb.2005.03.012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022380&pid=S0120-2812201600040000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Brody. H. Chou. E. Gray. J. Pokyrwka. M. Raley. K. (2013). Mancozeb&#150;induced behavioral deficits precede structural neural degeneration. <i>Neurotoxicology</i>, 34, 74&#150;81. doi:10.1016/j.neuro.2012.10.007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022382&pid=S0120-2812201600040000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Gbadegesin. M. Owumi. S. Akinseye. V. Odulona. O. (2014). Evaluation of hepatotoxicity and clastogenicity of Carbofuran in male Wistar rats. <i>Food Chem Toxicol</i>, 65,115&#150;119. doi:10.1016/j.fct.2013.12.034.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022384&pid=S0120-2812201600040000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Hern&aacute;ndez. D. P&eacute;rez. M. Soler. F. Gravato. C. Guilhermino. L. (2011). Effects of carbofuran on the sea bass (<i>Dicentrarchus labrax</i> L.): Study of biomarkers and behaviour alterations. Ecotox Environ Safe, 74(7), 1905&#150;1912. doi: 10.1016/j.ecoenv.2011.07.016.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022386&pid=S0120-2812201600040000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Jeyapragasam. T. Saraswathi. R. (2014). Electrochemical biosensing of Carbofuran based onacetylcholinesterase immobilized onto iron oxide&#150;chitosan nanocomposite. <i>Sensor Actuat B&#150;Chem</i>, 191, 681&#150;687. doi: 10.1016/j.snb.2013.10.054.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022388&pid=S0120-2812201600040000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Kaur. M. Ashok. M. Singh. B. (2011). Fourth derivative spectrophotometric method for the determination of fungicide Maneb using sodium molybdate. <i>Am J Anal Chem</i>, 2, 158&#150;163. doi:10.4236/ajac.2011.22018.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022390&pid=S0120-2812201600040000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>L&oacute;pez. O. Rial. R. Simal. J. (2013). Factors governing the removal of Mancozeb residues from lettuces with washing solutions. <i>Food Control</i>, 34(2), 530&#150; 538. doi:10.1016/j.foodcont.2013.05.022.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022392&pid=S0120-2812201600040000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Medjdoub. A. Merzouk. S.A. Merzouk. H. Chiali. F.Z. Narce. M. (2011). Effects of Mancozeb and Metribuzin on in vitro proliferative responses and oxidative stress of human and rat spleen lymphocytes stimulated by mitogens. <i>Pestic Biochem Phys</i>, 101(1), 27&#150;33. doi: 10.1016/j.pestbp.2011.06.002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022394&pid=S0120-2812201600040000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Moros. J. Armenta. S. Garrigues. S. La guardia. M. (2007). Comparison of two vibrational procedures for the direct determination of Mancozeb in agrochemicals. <i>Talanta</i>, 72(1), 72&#150;79. doi: 10.1016/j.talanta.2006.09.027.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022396&pid=S0120-2812201600040000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Mujawar. S. Utture. S. Fonseca. E. Matarrita. J. Banerjee. K. (2014). 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Dynamics and residues of mixed formulation of fenamidone and Mancozeb in gherkin field ecosystem. <i>Eco Env Saf</i>, 98, 292&#150;296. doi: 10.1016/j.ecoenv.2013.08.006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=022402&pid=S0120-2812201600040000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Paro. R. Tiboni. G. M. Buccione. R. Rossi. G. Cellini. V. Canipari. R. (2012). 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