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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[CALIDAD MICROBIOLÓGICA DE PROPÓLEO CRUDO Y SÓLIDOS SOLUBLES DE EXTRACTOS DE PROPÓLEOS DE Apis mellifera EN COLOMBIA]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[RAW PROPOLIS MICROBIOLOGIC QUALITY AND SOLUBLE SOLIDS OF Apis mellifera PROPOLIS EXTRACTS IN COLOMBIA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Raw propolis samples from three different geographical origins were submitted to the microbiological quality tests and to the extraction of the dry matter using two ethanol extracts (70 and 96%). The aerobic mesophile, total coliforms, fecal coliforms, Staphylococcus sp., molds and yeasts indicator groups were quantified, finding in average 93x103; 79x102; <1; 94; 10x104 CFU/g respectively. The pathogen detection was made for Escherichia coli obtaining 51 samples free of the pathogen and 2 samples with presence of it, and for Staphylococcus aureus, which were present in 4 and 2% of the samples respectively. The microbiologic results were compared with the quality standards of Japan, Peru, and El Salvador, finding that the indicator groups molds and yeasts was the most critical, where 92 to 94% of the evaluated samples were off limits of the international standards. These results show that the ethanol extracts made at concentrations of 70 and 96% of Colombian propolis, obtained in average 93.0 and 175.3 mg/ml of dry extract respectively. The concentration of dry extract was compared with the standards of Brazil, Argentina and Japan. For the most strict standard, which is the Brazilian, there were found complying percentages of 53.4 and 56.1% for propolis ethanol extracts (PEE) of 70 and 96% respectively and for the Japan standard they were found acceptable 75.9 and 69.7% of the PEE 70% and 96% respectively. The results are linked to the flora, geographical origins and to the non specialized production methods. This study included raw propolis samples from countries such as Belgium, Chile, Cuba and New Zealand.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <font size="2" face="verdana">     <p align="center"><b>CALIDAD  MICROBIOL&Oacute;GICA DE PROP&Oacute;LEO CRUDO Y S&Oacute;LIDOS SOLUBLES DE EXTRACTOS DE PROP&Oacute;LEOS  DE <i>Apis mellifera</i> EN COLOMBIA</b></a></p>     <p align="center">RAW PROPOLIS MICROBIOLOGIC  QUALITY AND SOLUBLE SOLIDS OF <i>Apis  mellifera</i> PROPOLIS EXTRACTS IN COLOMBIA</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><i>C. Talero<sup>1, 2*</sup>,  D. Hern&aacute;ndez<sup>1</sup>, J. Figueroa<sup>1</sup></i></p>     <p align="center"><sup>1 </sup>Grupo  de investigaci&oacute;n AYNI Ciencia y Tecnolog&iacute;a Ap&iacute;cola, Facultad de Medicina  Veterinaria y de Zootecnia,     <br>   Universidad Nacional de Colombia. Cr. 30 nro. 45-03.  Bogot&aacute; (Colombia).    <br> <sup>2</sup> Grupo de Investigaci&oacute;n  Bioguavio/Agroudec, Programa de Zootecnia,     <br> Universidad de Cundinamarca, sede  Fusagasug&aacute;. Diagonal 18 nro. 20-29. Fusagasug&aacute; (Colombia).    <br> *Autor  para correspondencia: <a href="mailto:catalerou@unal.edu.co">catalerou@unal.edu.co</a></p> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="verdana"><i>Art&iacute;culo recibido: 28 de febrero de 2012; aprobado: 7 de agosto de 2012</i></font></p> <font size="2" face="verdana"><hr size="1">     <blockquote>       <p align="justify"><b>RESUMEN</b></p>       <p align="justify">Se tomaron cincuenta y nueve muestras  de prop&oacute;leo crudo recolectadas en tres or&iacute;genes geogr&aacute;ficos de Colombia, a las  cuales se les realiz&oacute; control de la calidad microbiol&oacute;gica, y se determin&oacute; el  porcentaje de extracto seco obtenido de las extracciones etan&oacute;licas de prop&oacute;leo  (EEP) al 70 y 96%. Se cuantificaron los grupos indicadores mes&oacute;filos aerobios,  coliformes totales, coliformes fecales, <i>Staphylococcus </i>sp., mohos y levaduras, y se encontraron conteos en promedio de 93x10<sup>3</sup>; 79x10<sup>2</sup>; &lt;1; 94; 10x10<sup>4</sup> UFC/g, respectivamente. La detecci&oacute;n de pat&oacute;genos se realiz&oacute; para <i>Escherichia coli</i> y <i>Staphylococcus  aureus</i>, los cuales estuvieron presentes en el 4 y 2% de las muestras,  respectivamente. Los hallazgos microbiol&oacute;gicos se compararon con&nbsp; normas de calidad de Jap&oacute;n, Per&uacute; y El  Salvador; se encontr&oacute; que el grupo indicador mohos y levaduras fue el m&aacute;s  cr&iacute;tico, donde&nbsp; 92 a 94% de las muestras  evaluadas estuvieron por fuera de los l&iacute;mites exigidos por estas normas. Los  resultados indican que las extracciones con etanol al 70 y 96% de prop&oacute;leos  colombianos, en promedio obtuvieron 93,0 y 175,3 mg/ml de extracto seco,  respectivamente. La concentraci&oacute;n de extracto seco se compar&oacute; con la  normatividad existente en Brasil, Argentina y Jap&oacute;n. Para la norma m&aacute;s exigente,  que corresponde a la brasile&ntilde;a, se hallaron porcentajes de cumplimiento del 53,4  y 56,1% para EEP 70 y 96%, respectivamente, y para la norma de Jap&oacute;n se  encontraron aceptables 75,9 y 69,7% de los EEP 70 y 96%, respectivamente. Los  resultados est&aacute;n asociados al origen fitogeogr&aacute;fico y a la&nbsp; producci&oacute;n no especializada de prop&oacute;leos. En  este estudio se incluyeron muestras de prop&oacute;leo crudo de pa&iacute;ses como B&eacute;lgica,  Chile, Cuba y Nueva Zelanda.</p>       <p align="justify"><b>Palabras clave:</b> prop&oacute;leos, par&aacute;metros,  clasificaci&oacute;n, normas.</p>   <hr size="1">       <p align="left"><b>ABSTRACT</b></p>       <p align="justify">Raw propolis samples from  three different geographical origins were submitted to the microbiological &nbsp;quality &nbsp;tests &nbsp;and &nbsp;to &nbsp;the &nbsp;extraction &nbsp;of &nbsp;the &nbsp;dry &nbsp;matter &nbsp;using &nbsp;two ethanol extracts (70 and 96%). The aerobic  mesophile, total coliforms, fecal coliforms, <i>Staphylococcus</i> sp., molds and  yeasts indicator groups were quantified, finding in average 93x103; 79x102;  &lt;1; 94; 10x104 CFU/g respectively. The pathogen detection was made for  Escherichia coli obtaining 51 samples free of the pathogen and 2 samples with presence  of it, and for <i>Staphylococcus aureus</i>,  which were present in 4 and 2% of the samples respectively. The microbiologic  results were compared with the quality standards of Japan, Peru, and El  Salvador, finding that the indicator groups molds and yeasts was the most  critical, where 92 to 94% of the evaluated samples were off limits of the  international standards. These results show that the ethanol extracts made at  concentrations of 70 and 96% of Colombian propolis, obtained in average 93.0  and 175.3 mg/ml of dry extract respectively. The concentration of dry extract  was compared with the standards of Brazil, Argentina and Japan. For the most  strict standard, which is the Brazilian, there were found complying percentages  of 53.4 and 56.1% for propolis ethanol extracts (PEE) of 70 and 96%  respectively and for the Japan standard they were found acceptable 75.9 and 69.7%  of the PEE 70% and 96% respectively. The results are linked to the flora,  geographical origins and to the non specialized production methods. This study  included raw propolis samples from countries such as Belgium, Chile, Cuba and  New Zealand.</p>       <p align="justify"><b>Key words:</b> propolis, parameters, classification, standards.</p> </blockquote> <hr size="1">     <p align="justify"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></a></h2>     <p align="justify">El  prop&oacute;leo o prop&oacute;leos (propolis, ligamaza, beeglue) se ha definido como una  sustancia resinosa de color generalmente pardo rojizo a amarillo verdoso, que colectan  las abejas del exudado de plantas y la adici&oacute;n de productos metab&oacute;licos  secretados por el insecto (Bankova 2005; Chaillou <i>et al.</i> 2004), con inclusi&oacute;n de otros materiales durante la  elaboraci&oacute;n del producto, como el polen (Marcucci 1995). El producto colectado  por las abejas (crudo) muestra una alta variabilidad en raz&oacute;n de su estrecha  relaci&oacute;n con la regi&oacute;n geogr&aacute;fica de producci&oacute;n, que puede llegar a presentar  distinta cobertura vegetal, dependiendo de las condiciones agroecol&oacute;gicas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Las  abejas en colmenas comerciales generalmente utilizan el prop&oacute;leo para cubrir  los agujeros y las grietas con el fin de reducir la entrada de la colmena (Krell  1996). Se cree que la utilizaci&oacute;n de prop&oacute;leos de esta manera funciona para  mantener en mejores condiciones la homeostasis del medio ambiente dentro de la  colmena. Esto podr&iacute;a ser el resultado de disminuir el crecimiento microbiano en  las paredes de la colmena e impedir el flujo de aire sin control en el nido y  las paredes de impermeabilizaci&oacute;n y la humedad externa, adem&aacute;s de crear alg&uacute;n  tipo de protecci&oacute;n contra los invasores (Visscher 1980, citado en Simone-Finstrom  y Spivak 2010).</p>     <p align="justify">La  composici&oacute;n qu&iacute;mica del prop&oacute;leo est&aacute; estrechamente asociada con el origen  bot&aacute;nico (Greenaway <i>et al.</i> 1987,  citado en Amoros <i>et al.</i> 1994). En las  zonas templadas, la mayor parte del prop&oacute;leo procede del exudado de los brotes  de chopos o &aacute;lamos pertenecientes al g&eacute;nero <i>Populus</i> spp.; en la zona septentrional de Rusia, de los brotes de abedul (<i>Betula verrucosa</i>) y de <i>P. tremula</i> (Wollenweber y Buchmann  1997); en las regiones mediterr&aacute;neas procede de las choperas y de las hojas de <i>Cistus </i>spp. (Martos <i>et al.</i> 1997); en las zonas donde los &aacute;lamos no son plantas nativas,  tales como Australia y las regiones ecuatoriales de Am&eacute;rica del Sur, las abejas  buscan otras plantas que re&uacute;nan las cualidades requeridas para colectar los  exudados con el fin de elaborar prop&oacute;leos (Park <i>et al.</i> 2002). En Brasil el prop&oacute;leo procede principalmente de las  hojas de especies de <i>Baccharis dracunculifolia</i> (Bankova 2000); en Venezuela y Cuba, de la resina floral del g&eacute;nero <i>Clusia,</i> y en zonas m&aacute;s tropicales se  obtiene de otros vegetales (Cuesta-Rubio <i>et</i> <i>al.</i> 2002).</p>     <p align="justify">En  los an&aacute;lisis de la composici&oacute;n qu&iacute;mica de los prop&oacute;leos se han identificado al  menos 300 compuestos (Mani <i>et al.</i> 2006)  y hasta 150 compuestos para una misma muestra (Greenaway <i>et</i> <i>al</i>. 1990); en la  fracci&oacute;n arom&aacute;tica, m&aacute;s de 100 compuestos (Bankova 1987; Greenaway <i>et al.</i> 1987, 1988, citado en Amoros <i>et al.</i> 1994). Los prop&oacute;leos est&aacute;n  constituidos fundamentalmente por flavonoides, derivados de &eacute;steres y &aacute;cidos  fen&oacute;licos. Los principales grupos fen&oacute;licos identificados son: flavonoides,  &aacute;cidos arom&aacute;ticos y sus &eacute;steres, aldeh&iacute;dos arom&aacute;ticos, cumarinas, triglic&eacute;ridos  fen&oacute;licos (Bedascarrasbure 2000). Los flavonoides no son los marcadores  qu&iacute;micos principales, pero los compuestos menores tambi&eacute;n pueden ser involucrados  en la actividad biol&oacute;gica (Bankova <i>et al</i>.  1987, citado en Amoros <i>et al.</i> 1994).  Existen otros componentes como los triterpenos (P&eacute;rez <i>et al.</i> 2009); el primer reporte sobre la presencia de este tipo de  metabolito secundario fue la identificaci&oacute;n del triterpeno ac&iacute;clico escualeno,  precursor de los triterpenos tetrac&iacute;clicos y pentac&iacute;clicos (Silva <i>et al.</i> 1992).</p>     <p align="justify">Las  investigaciones realizadas en las &uacute;ltimas d&eacute;cadas, orientadas a determinar las  propiedades biol&oacute;gicas del prop&oacute;leo a nivel mundial, han permitido establecer  que a los compuestos fen&oacute;licos se les atribuye acci&oacute;n farmacol&oacute;gica, quedando  establecidas sus propiedades antibi&oacute;tica, fungicida, antiviral y antitumoral,  entre otras (Burdock, 1997). Sin embargo, la presencia de triterpenos pentac&iacute;clicos  en prop&oacute;leos brasile&ntilde;os en particular y en prop&oacute;leos de pa&iacute;ses tropicales en  general, constituye una caracter&iacute;stica importante de su composici&oacute;n qu&iacute;mica  vinculada a su actividad antiinflamatoria, anticancer&iacute;gena y antiviral (P&eacute;rez <i>et al.</i> 2009). </p>     <p align="justify">Los  lineamientos de calidad para prop&oacute;leo son complejos, ya que los prop&oacute;leos  presentan diferentes colores, olores y composici&oacute;n; los lineamientos tambi&eacute;n tienen  directa relaci&oacute;n con los m&eacute;todos de extracci&oacute;n, adem&aacute;s del cuidado y la  higiene, tanto en el almacenamiento como en la conservaci&oacute;n del producto.</p>     <p align="justify">Los  primeros esfuerzos propuestos en cuanto a est&aacute;ndares oficiales de calidad referidos  al producto &ldquo;crudo o bruto&rdquo; y a veces a sus extractos (forma tradicional de  extraer compuestos activos para ser empleados en la industria) iniciaron en los  pa&iacute;ses del Este europeo. Los l&iacute;mites m&aacute;ximos y m&iacute;nimos para ciertos grupos qu&iacute;micos  est&aacute;n determinados, pero son pocas las pruebas estandarizadas que est&aacute;n  disponibles para establecer la actividad biol&oacute;gica de varios componentes (L&oacute;pez  y Ubillos 2004).</p>     <p align="justify">En  la actualidad, las sustancias que determinan la calidad de los prop&oacute;leos no se  unifican como norma, y cada pa&iacute;s o compa&ntilde;&iacute;a tiene sus propios est&aacute;ndares, incluidos  los t&eacute;rminos espec&iacute;ficos para los prop&oacute;leos y sus productos relacionados. Los  esfuerzos en investigaci&oacute;n se encaminan entonces hacia la &ldquo;estandarizaci&oacute;n  internacional de los prop&oacute;leos&rdquo; como una de las propuestas para el Foro Mundial  de Ciencias del Prop&oacute;leos (WPSF) (Lee y Jo 2011).</p>     <p align="justify">Colombia  (Sur Am&eacute;rica) no posee ning&uacute;n tipo de normatividad o est&aacute;ndar para el prop&oacute;leo  crudo o sus extractos, aunque se han realizado investigaciones previas alrededor  de los prop&oacute;leos en caracterizaci&oacute;n antimicrobiana y fisicoqu&iacute;mica (Moreno <i>et al.</i> 2007; Palomino <i>et al</i>. 2009; Bastos <i>et al.</i> 2011a; Samara-Ortega <i>et  al.</i> 2011; Viloria <i>et al.</i> 2012). Hoy  en d&iacute;a, la calidad de este producto y su valor comercial no tienen relaci&oacute;n  directa; el precio es determinado por <s>&nbsp;</s>caracter&iacute;sticas como el aspecto, la presentaci&oacute;n,  el color, olor y sabor que poseen cierta relaci&oacute;n con la &ldquo;calidad real&rdquo; del  producto, pero es una valoraci&oacute;n subjetiva. Complementar su evaluaci&oacute;n mediante  la determinaci&oacute;n anal&iacute;tica permitir&aacute; obtener valores de composici&oacute;n como  par&aacute;metros fundamentales de la calidad de los prop&oacute;leos y, por tanto,  establecer el valor comercial del mismo.</p>     <p align="justify">El  presente estudio se desarroll&oacute; con el objetivo de evaluar la calidad microbiol&oacute;gica  y de porcentaje de extracto seco de prop&oacute;leos de <i>Apis mellifera</i> en Colombia, y as&iacute; establecer par&aacute;metros de calidad  para su comercializaci&oacute;n como materia prima de uso industrial.</p>     <p align="justify"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</a></b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Este  estudio se realiz&oacute; en el Laboratorio de Microbiolog&iacute;a de la Facultad de  Medicina Veterinaria y de Zootecnia de la Universidad Nacional de Colombia,  sede Bogot&aacute;, en el marco del Proyecto Cualificaci&oacute;n de productos de las abejas:  miel, polen y prop&oacute;leos mediante indicadores microbiol&oacute;gicos.</p>     <p align="justify"><b>Recolecci&oacute;n de muestras</b></p>     <p align="justify">Se  emplearon 59 muestras de prop&oacute;leo crudo, provenientes de tres or&iacute;genes  geogr&aacute;ficos, 16 de Boyac&aacute;, 16 de Cundinamarca y&nbsp;  27 de Santander, en su mayor&iacute;a obtenidas mediante raspado de colmenas  comerciales de <i>Apis mellifera</i> entre  los a&ntilde;os 2008 y 2010. Se incluy&oacute; en este estudio una muestra de prop&oacute;leo crudo de cada uno de los siguientes pa&iacute;ses: B&eacute;lgica,  Chile, Cuba y Nueva Zelanda.</p>     <p align="justify"><b>Control de calidad microbiol&oacute;gico</b></p>     <p align="justify">Para  evaluar la calidad microbiol&oacute;gica, se siguieron los m&eacute;todos de recuento en  placa y b&uacute;squeda de pat&oacute;genos descritos en la International Commission on  Microbiological Specifications for Foods (ICMSF 2000). Se detectaron y cuantificaron  los grupos indicadores: mes&oacute;filos aerobios, coliformes totales, coliformes  fecales, <i>Escherichia coli, Staphylococcus  </i>sp.<i>, Staphylococcus aureus</i>, mohos y levaduras, para 53 muestras procedentes  de Colombia.</p>     <p align="justify">Los  resultados de la calidad microbiol&oacute;gica se compararon con el cumplimiento de la  normatividad internacional existente para este producto de los pa&iacute;ses de Jap&oacute;n,  Per&uacute; y El Salvador &nbsp;(JCP 2010; MDS 2003; CONACYT 2003).</p>     <p align="justify"><b>Obtenci&oacute;n de extractos etan&oacute;licos de prop&oacute;leos</b></p>     <p align="justify">A  las muestras de prop&oacute;leo crudo se les retiraron las impurezas mec&aacute;nicas, y se  trituraron y homogeneizaron separadamente. Cada muestra fue pesada, dividida en  dos partes iguales y extra&iacute;das en recipientes de vidrio cerrados, con dos concentraciones  diferentes de disolvente etan&oacute;lico (70 y 96%), conservando una relaci&oacute;n disolvente:soluto  70:30 (Almeida 2003; Bruschi y Lara 2006). Se procedi&oacute; a obtener principios  activos en la disoluci&oacute;n, mediante agitaciones diarias por 1 minuto de los extractos  de prop&oacute;leo crudo con etanol, durante 30 d&iacute;as, a temperatura promedio de 25&deg;C y  en la oscuridad con el fin de evitar alteraciones en los metabolitos secundarios. </p>     <p align="justify">Posterior  a los 30 d&iacute;as, la disoluci&oacute;n se llev&oacute; a refrigeraci&oacute;n a 4&deg;C por 12 h para  separar las ceras que se precipitan (Bedascarrasbure <i>et al.</i> 2006) en la mezcla de solventes de extracci&oacute;n. La mezcla se  filtr&oacute; al final del proceso para obtener el Extracto Etan&oacute;lico de Prop&oacute;leo  &ldquo;madre&rdquo; (EEPm).</p>     <p align="justify">El  extracto seco (materia seca o s&oacute;lidos solubles totales) se determin&oacute; para los  EEPm, adaptando la metodolog&iacute;a de las Normas para prop&oacute;leos de Brasil,  Argentina y Jap&oacute;n (MAPA  2001; CONAL 2008; JCP 2010). Un (1) ml del EEPm se pes&oacute; en un recipiente previamente aforado  y se someti&oacute; a 100 &plusmn; 2&deg;C por 60 min en horno de secado para eliminar completamente  el solvente. El conjunto se coloc&oacute; en un desecador hasta llegar a temperatura  ambiente y se registr&oacute; el peso; el procedimiento se repiti&oacute; con intervalos de  15 min, hasta obtener un peso constante.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>An&aacute;lisis de datos</b></p>     <p align="justify">Para  el control de calidad microbiol&oacute;gico de las muestras de prop&oacute;leo crudo se  emple&oacute; un an&aacute;lisis&nbsp; estad&iacute;stico  descriptivo. Los extractos secos de los EEP fueron expresados en porcentaje  (%ES) y se obtuvo la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar.</p>     <p align="justify"><b>RESULTADOS</b></a>    <p align="justify">La  cuantificaci&oacute;n de los grupos microbianos indicadores (aerobios mes&oacute;filos,  coliformes totales, coliformes fecales, <i>Staphylococcus </i>sp., mohos y levaduras) y la detecci&oacute;n de los microorganismos pat&oacute;genos <i>Escherichia coli</i> y <i>Staphylococcus aureus</i>, en prop&oacute;leos colombianos se muestran en la <a href="img/revistas/rfmvz/v59n2/v59n2a05t01.jpg" target="_blank">Tabla  1</a>.</p>     <p align="center"><b><a href="img/revistas/rfmvz/v59n2/v59n2a05t01.jpg" target="_blank">TABLA  1</a></b>.  Control de calidad microbiol&oacute;gico de muestras de prop&oacute;leo de abejas <i>Apis mellifera</i> de Colombia colectadas en  tres regiones de Colombia durante el periodo 2008- 2010.</p>     <p align="justify">El porcentaje de las  muestras que cumplen con la normatividad internacional existente en cuanto al control  de calidad microbiol&oacute;gica (cuantificaci&oacute;n de los grupos microbianos, indicadores  y detecci&oacute;n de los microorganismos pat&oacute;genos) de prop&oacute;leos crudos de Colombia  se indica en la <a href="img/revistas/rfmvz/v59n2/v59n2a05t02.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>. </p>     <p align="center"><b><a href="img/revistas/rfmvz/v59n2/v59n2a05t02.jpg" target="_blank">TABLA  2</a>.</b> Control de calidad microbiol&oacute;gico de muestras de prop&oacute;leo de abejas <i>Apis mellifera</i> de Colombia seg&uacute;n el  requisito de las normas internacionales (n = 53).</p>     <p align="justify">Los  hallazgos en la concentraci&oacute;n de s&oacute;lidos solubles en los EEP expresados en  mg/ml de soluci&oacute;n se presentan en la <a href="img/revistas/rfmvz/v59n2/v59n2a05t03.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>, seg&uacute;n la zona de origen  geogr&aacute;fico y la soluci&oacute;n hidroralcoh&oacute;lica empleada para la extracci&oacute;n.</p>     <p align="center"><b><a href="img/revistas/rfmvz/v59n2/v59n2a05t03.jpg" target="_blank">TABLA  3</a></b>.  Concentraci&oacute;n de extracto seco a partir de dos concentraciones de etanol.</p>     <p align="justify">M&aacute;s  del 50% de los EEP colombianos se consideraron aceptables para las normas de Brasil,  Argentina y Jap&oacute;n (<a href="img/revistas/rfmvz/v59n2/v59n2a05t04.jpg" target="_blank">Tabla 4</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><b><a href="img/revistas/rfmvz/v59n2/v59n2a05t04.jpg" target="_blank">TABLA  4</a></b>.  Porcentaje de muestras aceptables en rendimiento de extracto seco de &nbsp;prop&oacute;leos de abejas <i>Apis mellifera </i>en Colombia comparadas con el porcentaje de extracto  seco reportado en las normas para prop&oacute;leo de Brasil, Argentina y Jap&oacute;n. (n =  118).</p>     <p align="justify"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p align="justify">Los  principales indicadores del porcentaje de rechazo de las muestras evaluadas,  seg&uacute;n la confrontaci&oacute;n con las normas internacionales en cuanto a la calidad  microbiol&oacute;gica del producto, son los recuentos de mohos y levaduras. La  presencia de hongos se puede explicar debido a un mal manejo asociado a la  humedad de la materia prima. Adicionalmente, el crecimiento de estos  microorganismos se puede dar por la presencia de trazas de miel y polen en el  prop&oacute;leo crudo obtenido de la colmena.</p>     <p align="justify">Los  coliformes totales y los aerobios mes&oacute;filos son indicadores microbiol&oacute;gicos de  importancia para las muestras de prop&oacute;leo crudo evaluadas (Tabla 2); un  porcentaje alto de muestras superan los l&iacute;mites en las normas internacionales,  lo cual indica probablemente condiciones sanitarias deficientes en el proceso  de recolecci&oacute;n y conservaci&oacute;n de las muestras.</p>     <p align="justify">El  4% de las muestras de prop&oacute;leo crudo fueron positivas para coliformes fecales (Tabla  2), en donde el criterio de aceptaci&oacute;n es igual a cero en la norma salvadore&ntilde;a;  lo anterior sugiere una probable contaminaci&oacute;n de fuente fecal humana o animal,  contaminaci&oacute;n que pudo producirse durante el proceso de recolecci&oacute;n en campo de  las muestras. Para el indicador de <i>E.  coli</i>, requisito en la norma peruana, 4% de las muestras tuvieron presencia  de esta bacteria.<s></s></p>     <p align="justify">El  2% de las muestras de prop&oacute;leo crudo registraron presencia de <i>S. aureus</i> (Tabla 2). Esta bacteria es  indicadora de condiciones de manejo o deficiencia de proceso; pueden provenir  de la piel, la garganta, la nariz durante la manipulaci&oacute;n de la materia prima.</p>     <p align="justify">En  cuanto a la determinaci&oacute;n de materia seca -par&aacute;metro que cuantifica el porcentaje  de s&oacute;lidos solubles extra&iacute;dos de prop&oacute;leos, en promedio-, el 9,3% de las muestras present&oacute; s&oacute;lidos  solubles entre 81,9 y 103,3 mg/ml, cuando se emple&oacute; como solvente etanol al  70%. Un aumento en la concentraci&oacute;n de etanol (96%) incrementa el n&uacute;mero de  muestras (17,5 en promedio) que muestran valores de s&oacute;lidos superiores (154,4 -  187,4 mg/ml) al anteriormente mencionado (Tabla 3), resultados semejantes a los  anteriormente obtenidos con etanol al 70%, de EEP colombianos que variaron en  un rango de 2,72 a 9,17% (Bastos <i>et al.</i> 2011a), de prop&oacute;leos brasile&ntilde;os (prop&oacute;leo marr&oacute;n) que presentaron valores entre  2,6 a 27,6% (Bastos <i>et al.</i> 2011b) y  de prop&oacute;leos de Chile (prop&oacute;leo de producci&oacute;n especializada) 9,6% (Et. 70%) y  18,6 (Et. 96%); Cuba (prop&oacute;leo rojo cubano) 10,5 (Et. 70%) y 14,6% (Et. 96%);  Nueva Zelanda (prop&oacute;leo de colmenas en producci&oacute;n de miel de Manuka) 12,1% (Et.  70%) y 13,2 (Et. 96%); B&eacute;lgica 21,1% (Et. 70%) y 24,9% (Et. 6%), evaluados en  el presente estudio (Tabla 3).</p>     <p align="justify">Las  extracciones con etanol al 70% mostraron valores promedio de extractos secos  menores a los obtenidos con la extracci&oacute;n con etanol al 96%, lo cual se explica  en parte a la menor solubilidad de resinas y ceras en el agua (Tabla 3), justificado  en parte por la menor solubilidad de las resinas y las ceras en el agua,  condici&oacute;n que se present&oacute; al emplear la disoluci&oacute;n etan&oacute;lica (70%) que contiene  la mayor proporci&oacute;n de agua. Bastos <i>et  al.</i> (2011b) mencionan que las altas desviaciones est&aacute;ndar de la materia  seca de EEP est&aacute;n influidas por su ubicaci&oacute;n geogr&aacute;fica, el origen bot&aacute;nico, el  clima y la composici&oacute;n del suelo, que se refleja en este par&aacute;metro  fisicoqu&iacute;mico. Los EEP evaluados en este estudio presentaron una alta  fluctuaci&oacute;n en cuanto al porcentaje de extracto seco en cada regi&oacute;n.  Adicionalmente, en investigaciones anteriores hay evidencias de una mayor  actividad antibacteriana (<i>S. aureus</i> y <i>E. coli</i>) cuando el porcentaje de  extracto seco es m&aacute;s alto (Bastos <i>et al.</i> 2011a; Bastos <i>et al.</i> 2011b).</p>     <p align="justify">La  normatividad internacional existente en Brasil, Argentina y Jap&oacute;n establecen un  m&iacute;nimo de 11, 10 y 8%, respectivamente, en el de extracto seco obtenido del EEP  (Tabla 4).</p>     <p align="justify">Las  muestras de EEP colombianos que no cumplieron con la concentraci&oacute;n exigida por  las normas internacionales se puede explicar por la calidad del prop&oacute;leo crudo,  en t&eacute;rminos de impurezas, y la proporci&oacute;n de cera de abejas en la materia  prima.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>CONCLUSIONES</b></p>     <p align="justify">El modelo de obtenci&oacute;n de prop&oacute;leos en campo debe  evaluarse en Colombia, considerando la biodiversidad bot&aacute;nica presente en las  distintas regiones y los sistemas de producci&oacute;n. La normatividad para el  control microbiol&oacute;gico y para la estandarizaci&oacute;n de rendimiento en extracto seco  ha de adoptarse mediante una norma propia, para dar claridad de la condici&oacute;n de  comercio de este producto dentro del territorio nacional. </p>     <p align="justify">Colombia ha avanzado en la tipificaci&oacute;n en cuanto a  actividad biol&oacute;gica de los prop&oacute;leos por regiones geogr&aacute;ficas, pero se hace  necesario un mayor conocimiento sobre la composici&oacute;n fisicoqu&iacute;mica y la  determinaci&oacute;n de marcadores qu&iacute;micos que permitan identificarlos.  Adicionalmente, se requiere ampliar las zonas de estudio de tal manera que se  encuentren zonas recomendadas para la producci&oacute;n de prop&oacute;leos, y apicultores  especializados en producirlo con sistemas productivos eficientes. </p>     <p align="justify"><b>AGRADECIMIENTOS</b>     <p align="justify">Al  Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural de Colombia y a la Universidad  Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;, por la cofinanciaci&oacute;n de esta investigaci&oacute;n.  A las asociaciones de apicultores (Asoapiboy, Asoapicom, Asoapis), por el  aporte de su trabajo con las abejas. Al Laboratorio de Microbiolog&iacute;a de la Facultad  de Medicina Veterinaria y de Zootecnia, Universidad Nacional de Colombia, por  su apoyo y colaboraci&oacute;n.</p> <hr size="1">     <p align="justify"><b>REFERENCIAS</b>     <!-- ref --><p align="justify">1. Almeida S. 2003. Preparo do extrato de pr&oacute;polis  legal. MensagemDoce (70).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-2952201200020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">2. Amoros M, Lurton E, Boustiel J, Girre L. 1994. Comparison  of the anti-herpes simplex virus activities of propolis and3-methyl-but-2-enyl  caffeate. J Nat Prod. 57(5): 644-647.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-2952201200020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">3. Bankova V, Dyulgerov A, Popov S, Marekov N. 1987. A GC/MS study of the propolis phenolic constituents. Z. Naturforsch. 42C: 147.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2952201200020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">4. Bankova V. 2000. Determininig quality in propolis  samples. J Am Apither Soc. 7(2).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-2952201200020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">5. Bankova V. 2005. Chemical diversity of propolis and  the problem of standardization. J  Ethnopharmacol. 100: 114-117.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-2952201200020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">6. Bastos EM, Guzm&aacute;n D, Figueroa J, Tello J, Scoaris  DO. 2011a. Caracterizaci&oacute;n antimicrobiana y  fisicoqu&iacute;mica de prop&oacute;leos de <i>Apis  mellifera</i> L. (Hymenoptera: Apidae) de la regi&oacute;n andina colombiana. Acta Biol.Colomb. 16(1): 175-184.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-2952201200020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> <font size="2" face="verdana">    <!-- ref --><p align="justify">7. Bastos EM, Galbiati C, Loureiro E, Scoaris DO. 2011b.  Indicadores f&iacute;sico-qu&iacute;micos e atividade antibacteriana de pr&oacute;polis marrom  frente &agrave; <i>Escherichia coli</i>. Arq. Bras. Med. Vet.  Zootec. 63(5): 1255-1259.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-2952201200020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">8.  Bedascarrasbure E. 2000. Prop&oacute;leos: un valioso producto de la colmena. 1er.  Congreso Internacional de Prop&oacute;leos. Argentina.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-2952201200020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">9.  Bedascarrasbure E, Maldonado L, Fierro W, &Aacute;lvarez A. 2006. Prop&oacute;leos. San  Miguel de Tucuman, Argentina: Magna.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-2952201200020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">10. Bruschi ML, Lara EH. 2006. Preparation and  Antimicrobial Activity of Gelatin Microparticles Containing PropolisAgainst  Oral Pathogens. Drug Dev Ind Pharm. 32: 229-238.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-2952201200020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">11. Burdock G. 1997. Review of the biological properties  and toxicity of bee propolis. Food Chem Toxicol. 36: 347-363.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-2952201200020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">12. Chaillou LL, Herrera HA, Maidana JF. 2004. Estudio  del Prop&oacute;leo de Santiago del Estero Argentina. Ci&ecirc;nc. Tecnol. Aliment. 24(1):  11-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-2952201200020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">13.  &#91;CONAL&#93; Comisi&oacute;n Nacional de Alimentos. 2008. Resoluci&oacute;n Conjunta SPRI N&ordm; 94 y SAGPA N&ordm;  357. Argentina.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-2952201200020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">14.  &#91;CONACYT&#93; Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a. 2003. Norma Salvadore&ntilde;a Obligatoria:  Calidad de Propoleo Crudo NSO. 65.19.02:03. El Salvador.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-2952201200020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">15.  Cuesta-Rubio O, Frontana-Uribe B, Ram&iacute;rez-Apan T, C&aacute;rdenas J. 2002. Polyisoprenylated  Benzophenones in Cuban Propolis; Biological Activity of Nemorosone. Z Naturforsch; 57c: 372-378.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-2952201200020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">16. Greenaway W, Scaysbrook T, Whatley FR. 1987. The analysis of bud exudate of <i>Populus euramericana</i>, and of propolis, by gas chromatography-mass spectrometry. Proc R Soc Lond Ser B Biol Sci. 232, 249-272.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-2952201200020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">17. Greenaway W, Scaysbrook T, Whatley FR. 1988. Composition of propolis in Oxfordshire U.K. and its ion to poplar bud exudates. Z.  Naturforsch. 43C: 301-304.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-2952201200020000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">18. Greenaway W, Scaysbrook T, Whatley FR. 1990. The  compositionand plant origins of propolis: a report of work at Oxford. Bee World.  71: 107-118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-2952201200020000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">19. &#91;ICMSF&#93; International Commission on Microbiological Specifications for Foods. 2000. Microorganismos de los alimentos. 2a. ed. Moreno B, Ramis Verg&eacute;s M, traductores.      Zaragoza, Espa&ntilde;a: Editorial Acribia.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-2952201200020000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">20. &#91;JCP&#93; Japan Council of Propolis. 2010. Propolis  voluntary food standards. Japan.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-2952201200020000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">21. Krell R. 1996. FAO Agricultural Services Bulletin No.  124 Chapter V. &#91;Internet&#93;. Value-added products from beekeeping &#91;FAO&#93;.  Available from: <a href="http://www.fao.org/docrep/w0076E/w0076E00.htm" target="_blank">http://www.fao.org/docrep/w0076E/w0076E00.htm</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-2952201200020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">22. Lee SW, Jo SK. 2011. WPSF  Actividades y Propuestas para la estandarizaci&oacute;n Internacional de los  Prop&oacute;leos. Apimondia 2011 Res&uacute;menes, 28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-2952201200020000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">23.  L&oacute;pez J, Ubillos M. 2004. Estandarizaci&oacute;n del prop&oacute;leo de la provincia de  Oxapampa, departamento de Pasco (Per&uacute;) como materia prima para su utilizaci&oacute;n a  nivel industrial. &#91;Tesis de pregrado&#93;. &#91;Lima, Per&uacute;&#93; Facultad de Farmacio y Bioqu&iacute;mica, Universidad Nacional Mayor de San Marcos.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-2952201200020000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p align="justify">24. Mani F, Damasceno H, Novelli E, Martins E, Sforcin  J. 2006. Propolis: Effect  of different concentrations, extracts and intake period on seric biochemical  variables. J Ethnopharmacol. 105: 95-98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-2952201200020000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">25. Marcucci MC. 1995. Propolis: chemical composition,  biological properties and therapeutic activity. Apidologie. 26: 83-89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-2952201200020000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">26. Marcucci, MC. 1998. Controle de Qualidade de  Pr&oacute;polis. MensagemDoce(48).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-2952201200020000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">27. Martos I, Cossentini M, Ferreres F, Barberan FA.  1997. Flavonoid composition  of Tunisian honeys and propolis. J  Agric Food Chem; 45(8): 2824-2829.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-2952201200020000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">28. Meda AC, Mattos Meda AP. 1994. Pr&oacute;polis um bem da  humanidade - Produ&ccedil;ao e controle. Anales del X Congreso Brasilero de Apicultura  (p. 46-50). Pousada do Rio Quente Do. Brasil.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-2952201200020000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">29. &#91;MAPA&#93; Ministerio da Agricultura, Pecuaria e  Abastecimento del Brasil. 2001. Instru&ccedil;&atilde;o Normativa n. 3, de 19 de janeiro de  2001, Anexo VII: Regulamento de Identidade e Qualidade de Extrato de Pr&oacute;polis.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-2952201200020000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">30. &#91;MDS&#93; Ministerio de Salud de la Rep&uacute;blica del Per&uacute;. 2003. Proyecto de Actualizaci&oacute;n de la RM N&deg; 615-2003 SA/DM.  Norma sanitaria que  establece los criterios microbiol&oacute;gicos de calidad sanitaria e inocuidad para  los alimentos y bebidas de consumo humano. Lima, Per&uacute;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-2952201200020000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</p>     <!-- ref --><p align="justify">31.  Moreno Z, Mart&iacute;nez P, Figueroa J. 2007. Efecto antimicrobiano in vitro de  prop&oacute;leos argentinos, colombianos  y cubanos sobre <i>Streptococcus mutans</i> ATCC 25175. Revista NOVA. 5(7): 1-100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-2952201200020000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">32.  Palomino L, Garc&iacute;a C, Gil J, Rojano B, Durango D. 2009. Determinaci&oacute;n  del contenido de fenoles y evaluaci&oacute;n de la actividad antioxidante de prop&oacute;leos  recolectados en el Departamento de Antioquia (Colombia). Vitae, Revista de la  Facultad de Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica. 16(3): 388-395.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-2952201200020000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">33.  Park YK, Alencar SM, Scamparine ARP, Aguiar CL. 2002. Pr&oacute;polis produzida no sul do Brasil, Argentina e  Uruguai: Evid&ecirc;ncias fitoqu&iacute;micas de sua origem vegetal. Ci&ecirc;ncia  Rural 2: 997-1003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0120-2952201200020000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">34.  P&eacute;rez JC, Rodr&iacute;guez C, Llanes F. 2009. Triterpenos pentac&iacute;clicos en prop&oacute;leo.  Rev Soc Qu&iacute;m Per&uacute;. 75(4): 439-452.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-2952201200020000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">35.  Samara-Ortega N, Ben&iacute;tez-Campo N, Cabezas-Fajardo FA. 2011. Actividad antibacteriana y  composici&oacute;n cualitativa de prop&oacute;leos provenientes de dos zonas clim&aacute;ticas del  Departamento del Cauca. Biotecnolog&iacute;a en el Sector Agropecuario y  Agroindustrial. 9 (1): 8-16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-2952201200020000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">36.  Silva M, Bittner M, Hoeneisen M.  <i>et al</i>.  1992. Qu&iacute;mica de los triterpenos. Secretar&iacute;a General de los Estados Americanos,  73 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0120-2952201200020000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">37. Simone-Finstrom M, Spivak M. 2010. Propolis and  bee health: the natural history and significance of resin use by honey bees. Apidologie. 41: 295-311.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0120-2952201200020000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">38.  Viloria J, Gil J, Durango D, Garc&iacute;a C. 2012. Caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica del  prop&oacute;leo de la Regi&oacute;n del Bajo Cauca Antioque&ntilde;o (Antioquia, Colombia). Biotecnolog&iacute;a  en el Sector Agropecuario y Agroindustrial. Vol 10: 76-85.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0120-2952201200020000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">39. Visscher P. 1980. Adaptations of honey bees (<i>Apis mellifera</i>) to problems of nest  hygiene. Sociobiology. 5: 249-260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0120-2952201200020000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">40. Wollenweber E, Buchmann SL.  1997. Feralhoney bees in the Sonoran Desert: propolis sourcesother than poplars  (<i>Populus</i> spp.). Z. Naturforsch. 52c: 530-535.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0120-2952201200020000500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>      ]]></body><back>
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