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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Trypanosomatidae de importancia en salud pública en animales silvestres y sinantrópicos en un área rural del municipio Tovar del estado Mérida, Venezuela]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. Chagas disease and leishmaniasis are important public health problems due to their high frequency and broad distribution in Latin America. Understanding of the roles of reservoir animals is crucial for a global assessment of the epidemiology of these diseases. Objective. To identify parasites classed as Trypanosomatidae as they occurred in sylvatic animals, and to establish rates of coinfection. Materials and methods. Sylvatic animals were systematically captured in the rural area of El Carrizal, Merida State, Venezuela, betweenJuly, 1998 and February, 2000. The captures were made in Tomahawk type homemade traps, placed 15 nights per month throughout the study period. Blood was extracted from each captured and anesthetized animal by means of cardiac puncture. The search for trypanosomatids was undertaken by fresh blood examination, Giemsa stained blood smears and by means of blood-agar culture. Occasional xenodiagnoses were made to check diagnostic accuracy. The isolates obtained in culture media were identified by restriction fragment analysis and hybridization with specific probes. Results. Three species of sylvatic animals (n=215) were captured: Rattus spp. (135), Sigmodon hispidus (73) and Didelphis marsupialis (7). From them, three species of Trypanosomatidae were identified: Leishmania (Viannia) guyanensis, Trypanosoma cruzi and Trypanosoma lewisi. Trypanosoma. cruzi was identified in D. marsupialis (4/7), S. hispidus (1/73) and Rattus spp. (1/ 135), whereas L.(V.) guyanensis and T. lewisi were identified only in Rattus spp., 1/135 and 12/ 135, respectively. Conclusions. The coexistence of these genetically related hemoflagellates in sylvatic hosts was important for understanding the immunological interactions that may be established in reservoir animals, and the possible implications that this may have for the susceptible host. Finally, the identification of L.(V.) guyanensis in Rattus spp and T. cruzi in S. hispidus constituted the first reports of this relationship in Venezuela.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <B><FONT FACE="Arial" SIZE=4>    <P ALIGN="CENTER">Trypanosomatidae de importancia en salud p&uacute;blica en animales silvestres y sinantr&oacute;picos en un &aacute;rea rural del municipio Tovar del estado M&eacute;rida, Venezuela</P> </B></FONT><FONT FACE="Arial">    <P ALIGN="CENTER">H&eacute;ctor de Lima <SUP>1</SUP>, Jos&eacute; Carrero <SUP>2</SUP>, Armando Rodr&iacute;guez <SUP>1</SUP>, Zoraya de Guglielmo <SUP>1</SUP>, Noris Rodr&iacute;guez <SUP>1</P> </FONT>    <P>1</SUP><FONT FACE="Arial"> Instituto de Biomedicina, Universidad Central de Venezuela, Caracas, Venezuela.</P> </FONT><SUP>    <P>2</SUP><FONT FACE="Arial"> Servicio de Dermatolog&iacute;a Regional de Tovar, M&oacute;dulo Las Acacias, Tovar, M&eacute;rida, Venezuela.</P> <B>    <P>Introducci&oacute;n. </B>La enfermedad de Chagas y la leishmaniasis son patolog&iacute;as de gran importancia en salud p&uacute;blica debido a su alta frecuencia y amplia distribuci&oacute;n en Am&eacute;rica Latina. El estudio de los animales reservorios es vital para una comprensi&oacute;n global de estas enfermedades.</P> <B>    <P>Objetivo. </B>En el presente trabajo nos propusimos identificar par&aacute;sitos de la familia Trypanosomatidae en animales silvestres con la finalidad de establecer posibles relaciones debidas a la coinfecci&oacute;n.</P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos. </B>En El Carrizal, un &aacute;rea rural del estado M&eacute;rida, Venezuela, entre julio de 1998 y febrero de 2000 se realizaron capturas sistem&aacute;ticas de animales silvestres con la finalidad de poner en evidencia la presencia de par&aacute;sitos pertenecientes a la familia Trypanosomatidae. Las capturas fueron realizadas con trampas caseras tipo Tomahawk, colocadas 15 noches por mes durante el periodo del estudio. A los animales capturados se les practic&oacute; punci&oacute;n cardiaca bajo anestesia para extracci&oacute;n de sangre con la cual se realizaron los siguientes estudios: examen en fresco, extendido para coloraci&oacute;n con Giemsa y cultivo en agar-sangre. Se realizaron algunos xenodiagn&oacute;sticos. Los aislamientos obtenidos por medio de cultivo se identificaron por medio de an&aacute;lisis de restricci&oacute;n e hibridaci&oacute;n con sondas espec&iacute;ficas.</P> <B>    <P>Resultados. </B>Se capturaron y estudiaron 215 animales pertenecientes a tres especies: Rattus spp. (135), <I>Sigmodon hispidus</I> (73) y <I>Didelphis marsupialis</I> (7). Igualmente, se identificaron tres especies de Trypanosomatidae: Leishmania ( V) guyanensis, <I>Trypanosoma cruzi</I> y <I>Trypanosoma lewisi</I>. Mientras <I>T. cruzi</I> fue identificado en <I>D. marsupialis</I> (4/7), <I>S. hispidus</I> (1/73) y Rattus spp. (1/135), <I>L.( V) guyanensis</I> y <I>T. lewisi</I> s&oacute;lo se identificaron en <I>Rattus</I> spp. (1/135 y 12/135, respectivamente).</P> <B>    <P>Conclusi&oacute;n. </B>El estudio de la coexistencia de estas diferentes especies de flagelados gen&eacute;ticamente relacionados nos parece de importancia por las interacciones inmunol&oacute;gicas que se pueden establecer en los animales reservorios y las posibles implicaciones que esto puede tener en el hu&eacute;sped susceptible. Finalmente, las identificaciones de <I>L.( V) guyanensis</I> y <I>T. cruzi</I> en <I>Rattus</I> spp. y <I>S. hispidus</I>, respectivamente, son las primeras reportadas en Venezuela.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Palabras clave: </B><I>Leishmania guyanensis, Trypanosoma cruzi, Trypanosoma lewisi</I>, reservorios de enfermedades, Venezuela.</P> <B>    <P>Trypanosomatidae of public health importance occurring in wild and synanthropic animals of rural Venezuela</P>     <P>Introduction. </B>Chagas disease and leishmaniasis are important public health problems due to their high frequency and broad distribution in Latin America. Understanding of the roles of reservoir animals is crucial for a global assessment of the epidemiology of these diseases.</P> <B>    <P>Objective. </B>To identify parasites classed as Trypanosomatidae as they occurred in sylvatic animals, and to establish rates of coinfection.</P> <B>    <P>Materials and methods. </B>Sylvatic animals were systematically captured in the rural area of El Carrizal, Merida State, Venezuela, betweenJuly, 1998 and February, 2000. The captures were made in Tomahawk type homemade traps, placed 15 nights per month throughout the study period. Blood was extracted from each captured and anesthetized animal by means of cardiac puncture. The search for trypanosomatids was undertaken by fresh blood examination, Giemsa stained blood smears and by means of blood-agar culture. Occasional xenodiagnoses were made to check diagnostic accuracy. The isolates obtained in culture media were identified by restriction fragment analysis and hybridization with specific probes.</P> <B>    <P>Results. </B>Three species of sylvatic animals (n=215) were captured: Rattus spp. (135), Sigmodon hispidus (73) and <I>Didelphis marsupialis</I> (7). From them, three species of Trypanosomatidae were identified: <I>Leishmania (Viannia) guyanensis, Trypanosoma cruzi</I> and <I>Trypanosoma lewisi</I>. <I>Trypanosoma. cruzi</I> was identified in <I>D. marsupialis</I> (4/7), <I>S. his</I>pidus (1/73) and <I>Rattus</I> spp. (1/ 135), whereas <I>L.(V.) guyanensis</I> and <I>T. lewisi</I> were identified only in <I>Rattus</I> spp., 1/135 and 12/ 135, respectively.</P> <B>    <P>Conclusions. </B>The coexistence of these genetically related hemoflagellates in sylvatic hosts was important for understanding the immunological interactions that may be established in reservoir animals, and the possible implications that this may have for the susceptible host. Finally, the identification of <I>L.(V.) guyanensis</I> in <I>Rattus</I> spp and <I>T. cruzi</I> in <I>S. hispidus</I> constituted the first reports of this relationship in Venezuela.</P> <B>    <P>Keywords: </B><I>Leishmania guyanensis, Trypanosoma cruzi, Trypanosoma lewisi</I>, diseases reservoirs, Venezuela</P>     <P>Los par&aacute;sitos de la familia Trypanosomatidae representan un verdadero problema de salud p&uacute;blica en Venezuela; se registran, por un lado, diferentes especies de Leishmania de los subg&eacute;neros <I>Viannia y Leishmania</I>, agentes causales de las diversas formas cl&iacute;nicas de leishmaniasis cut&aacute;nea y de la forma visceral y, por el otro, <I>Trypanosoma cruzi</I>, agente causal de la enfermedad de Chagas. Estos dos grupos de protozoarios comparten las siguientes caracter&iacute;sticas: (i) en la naturaleza tienen una relaci&oacute;n compleja con vectores invertebrados, donde cumplen parte de su ciclo, y que difieren para ambos grupos, as&iacute; como con reservorios vertebrados, muchos de los cuales comparten, y un hospedero susceptible com&uacute;n, que es el ser humano; (ii) tienen una amplia distribuci&oacute;n a lo largo de casi todo el continente americano y muchos de sus focos geogr&aacute;ficos coinciden; (iii) la poblaci&oacute;n en riesgo de contraer cualquiera de estas enfermedades en Am&eacute;rica es superior a los 100 millones de habitantes, los cuales fundamentalmente habitan en &aacute;reas rurales y suburbanas, dedic&aacute;ndose a las labores agr&iacute;colas o pecuarias y, en la mayor&iacute;a de los casos, con importantes restricciones econ&oacute;micas (1,2).</P>     <P>En Venezuela las formas cut&aacute;neas de leishmaniasis tienen una amplia distribuci&oacute;n a nivel nacional. Se han registrado casos en 23 de las 24 entidades federales; la &uacute;nica excepci&oacute;n es el estado Delta Amacuro. Para el decenio 1994-2003, a pesar del subregistro existente se reportaron 24.051 casos de leishmaniasis cut&aacute;nea, con un promedio anual de 2.405 casos. Esto refleja una tasa anual promedio muy cercana a 10 por 100.000 habitantes (3).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Por otra parte, la transmisi&oacute;n de <I>T. cruzi</I> en Venezuela, aunque geogr&aacute;ficamente algo m&aacute;s limitada que la de la leishmaniasis, abarca toda la regi&oacute;n andina y de la costa, pero fundamentalmente se mantiene con &iacute;ndices importantes de transmisi&oacute;n en los estados Barinas, Lara y Portuguesa (2,4,5). Hasta 1980, la enfermedad de Chagas se consideraba una de las cinco primeras causas de muerte a nivel nacional. En la medida en que los programas de control se han ido implementando ha descendido a las posiciones decimotercera y decimoctava, con un promedio anual de aproximadamente 720 muertes, (4,5).</P>     <P>Una gran variedad de mam&iacute;feros han sido implicados como reservorios naturales de estas enfermedades, y muchos de ellos son comunes a ambas (1,2). Adem&aacute;s, algunos de estos pertenecientes a la misma familia Trypanosomatidae, tales como <I>Trypanosoma lewisi</I> y Trypanosoma rangeli. El hecho de que todos estos par&aacute;sitos mantengan una estrecha relaci&oacute;n gen&eacute;tica y compartan muchas caracter&iacute;sticas antig&eacute;nicas nos plantea la posibilidad de que su interacci&oacute;n en ciertos focos, donde comparten determinados animales reservorios, implique una variaci&oacute;n en su comportamiento con respecto a (i) la susceptibilidad (increment&aacute;ndola o disminuy&eacute;ndola) de ciertos reservorios a la infecci&oacute;n por par&aacute;sitos de la misma familia (Trypanosomatidae) o (ii) a su capacidad para infectar al hospedero susceptible.</P>     <P>Por ello, en el presente trabajo nos planteamos identificar las diversas especies de par&aacute;sitos de la familia Trypanosomatidae en animales silvestres por medio de t&eacute;cnicas tradicionales morfol&oacute;gicas, biol&oacute;gicas y de biolog&iacute;a molecular en un &aacute;rea end&eacute;mica de leishmaniasis cut&aacute;nea, en la cual no tenemos reportes de la existencia de la enfermedad de Chagas.</P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos</P>     <P>&Aacute;rea de estudio</P> </B>    <P>El Carrizal (08°17'40"N-71°45'51"O) es una peque&ntilde;a comunidad rural localizada en el municipio Tovar al suroeste del estado M&eacute;rida en Venezuela (</FONT><A HREF="#figura1">figura 1</A><FONT FACE="Arial">), tradicionalmente end&eacute;mica para leishmaniasis cut&aacute;nea; se reportaron 15 casos durante la realizaci&oacute;n del estudio (3), mientras que no se detectaron casos de Chagas.</P>     <P><A NAME="figura1"></A></P> </FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v26n1/1a06i1.jpg"></P>     <P><FONT FACE="Arial">Tiene una poblaci&oacute;n estimada de cerca de 400 habitantes que viven dispersos en un &aacute;rea de unos 6 kil&oacute;metros cuadrados, dedicados en su mayor&iacute;a a las labores agr&iacute;colas; su principal rubro es el caf&eacute;. El &aacute;rea en estudio es un bosque siempre verde que se ubica en la cordillera de los Andes entre 1.200 y 1.300 metros sobre el nivel del mar, con una temperatura promedio de 21°C y altamente intervenido por la presencia de m&uacute;ltiples sembrad&iacute;os intercalados con las viviendas y &aacute;reas boscosas v&iacute;rgenes. El estado M&eacute;rida, con una poblaci&oacute;n estimada de 750.000 habitantes, se ubica en el suroeste del pa&iacute;s, y en el periodo comprendido entre 1994 y 2003 report&oacute; casi el 9,78% del total de casos de leishmaniasis cut&aacute;nea a nivel nacional (3), lo que corresponde a una tasa de 33,27 por 100.000 habitantes.</P> <B>    <P>Captura de animales</P> </B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Los animales fueron capturados durante 19 meses entre julio de 1998 y febrero de 2000. Las trampas se colocaban quince d&iacute;as por mes en horas nocturnas adentro y alrededor de las viviendas, as&iacute; como en las &aacute;reas de cultivos. Se utilizaron trampas de fabricaci&oacute;n casera tipo Tomahawk. Como cebo se emple&oacute; cambur (pl&aacute;tano) y ma&iacute;z. Los animales se mantuvieron vivos en cautiverio hasta el momento de ser estudiados.</P> <B>    <P>M&eacute;todos diagn&oacute;sticos</P> </B>    <P>Los animales fueron examinados en la b&uacute;squeda de lesiones sospechosas, tales como &uacute;lceras, escoriaciones, n&oacute;dulos y &aacute;reas de alopecia. Bajo anestesia se procedi&oacute; a tomar una muestra de sangre por punci&oacute;n cardiaca con la cual se realizaban el examen en fresco, el extendido para coloraci&oacute;n con Giemsa y el cultivo en medio agarsangre. Si alguno de estos ex&aacute;menes resultaba positivo para Trypanosomatidae, el animal se sacrificaba en c&aacute;mara de &eacute;ter y se tomaban muestras de piel, h&iacute;gado y bazo para el estudio histopatol&oacute;gico y el cultivo. Se realiz&oacute; xenodiagn&oacute;stico en un n&uacute;mero limitado de animales, empleando cinco ninfas de tercer estadio de <I>Rhodnius prolixus</I>. El contenido fecal de los triatominos se examinaba semanalmente durante un mes a partir de la primera semana posterior a su alimentaci&oacute;n; de resultar negativos tres o cuatro ex&aacute;menes, se descartaban los insectos.</P> <B>    <P>Aislamiento y cultivo de par&aacute;sitos</P> </B>    <P>Los par&aacute;sitos se cultivaron en medio agar-sangre (Difco) con suplemento de 10% de sangre de conejo desfibrinada m&aacute;s 200 unidades de penicilina cristalina por mililitro. Los cultivos se examinaban al microscopio cada 7 d&iacute;as y los no contaminados se manten&iacute;an en observaci&oacute;n durante un mes y luego se descartaban si permanec&iacute;an negativos. Una vez que los cultivos se hac&iacute;an positivos, se amplificaban en cajas de Petri que conten&iacute;an el mismo medio. Los par&aacute;sitos en fase estacionaria eran cosechados por centrifugaci&oacute;n a 5.000 rpm durante 10 minutos a 4°C y, luego, lavados tres veces con tamp&oacute;n fosfato-salino est&eacute;ril, pH 7,4.</P> <B>    <P>Aislamiento y digesti&oacute;n del ADNk</P> </B>    <P>El ADN del cinetoplasto se aisl&oacute; tal como lo reportaron Rodr&iacute;guez et al. (6). Para los an&aacute;lisis de esquizodemo se digirieron 5 µg de ADNk con 5 unidades de la enzima Msp I (Gibco-BRL). Los productos digeridos se separaron por electroforesis en geles de poliacrilamida con un gradiente lineal (4,5% a 10%) y se corrieron a 7 mAmp durante toda la noche. El gel se colore&oacute; con nitrato de plata y, finalmente, fue fotografiado. La hibridaci&oacute;n con sondas espec&iacute;ficas se realiz&oacute; tal como se describe en Barrios et al. (7). La prehibridaci&oacute;n y la hibridaci&oacute;n se realizaron durante toda la noche a 42°C en un tamp&oacute;n que conten&iacute;a formamida al 50%. Los filtros fueron revelados usando el Sistema Genios (Boehringer-Mannheim) seg&uacute;n las instrucciones del fabricante.</P> <B>    <P>Aspectos &eacute;ticos</P> </B>    <P>Los animales estudiados fueron tratados bajo las normas y principios de la gu&iacute;a internacional de principios para la investigaci&oacute;n biom&eacute;dica que involucra animales (8,9). As&iacute; mismo, se solicit&oacute; la correspondiente autorizaci&oacute;n del Comit&eacute; de Bio&eacute;tica de nuestra instituci&oacute;n, y se obtuvo la aprobaci&oacute;n necesaria.</P> <B>    <P>Resultados</P> </B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Se capturaron y estudiaron 215 animales pertenecientes a tres especies (</FONT><A HREF="#cuadro1">cuadro 1</A><FONT FACE="Arial">): <I>Rattus</I> spp. (135), <I>S. hispidus</I> (73) y <I>D. marsupialis</I> (7). En el examen f&iacute;sico, estos animales no revelaron lesiones de enfermedad alguna. Los resultados obtenidos por los cuatro diferentes m&eacute;todos empleados para la identificaci&oacute;n y diagn&oacute;stico de las diferentes especies de Trypanosomatidae se resumen en el </FONT><A HREF="#cuadro2">cuadro 2</A><FONT FACE="Arial">. En D. marsupialis, considerando todos los m&eacute;todos, se encontr&oacute; un 57,14% (4/7) de los ejemplares estudiados infectado por flagelados que, bas&aacute;ndonos en criterios morfol&oacute;gicos y en la positividad de 2/7 xenodiagn&oacute;sticos, fueron clasificados como <I>T. cruzi</I>. Todos los casos con examen en fresco positivo en <I>D. marsupialis</I> se caracterizaron por una parasitemia extremadamente baja (1 par&aacute;sito/50 campos de 40X).</P>     <P><A NAME="cuadro1"></A></P> </FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v26n1/1a06t1.gif"></P>     <P><A NAME="cuadro2"></A></P>     <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v26n1/1a06t2.gif"></P> <FONT FACE="Arial">    <P>En <I>Rattus</I> spp., en el examen en fresco se observaron flagelados en 12/135 ejemplares (8,88%); todos los casos fueron morfol&oacute;gicamente caracter&iacute;sticos de T. lewisi. Contrariamente a lo observado en <I>D. marsupialis</I>, los xenodiagn&oacute;sticos realizados en Rattus resultaron todos negativos y las parasitemias observadas fueron bastante altas (5 a 10 par&aacute;sitos/campo de 40X). En lo que respecta a S. hispidus, no se observaron par&aacute;sitos en el examen en fresco ni por xenodiagn&oacute;stico.</P>     <P>De 16 cultivos obtenidos en las tres especies de animales estudiadas, s&oacute;lo tres ( <I>S. hispidus</I>, 1; <I>Rattus</I> spp., 2) crecieron y se adaptaron adecuadamente en el medio, lo que permiti&oacute; su identificaci&oacute;n taxon&oacute;mica por t&eacute;cnicas de biolog&iacute;a molecular. Todos los cultivos se obtuvieron a partir de muestras de sangre, ninguno de los &oacute;rganos cultivados (bazo, h&iacute;gado, piel) dio cultivo positivo. La </FONT><A HREF="#figura2">figura 2</A><FONT FACE="Arial"> muestra los patrones de restricci&oacute;n de las tres cepas aisladas despu&eacute;s de la digesti&oacute;n con la endonucleasa Msp I. La muestra 1 (aislamiento de <I>Rattus</I>) present&oacute; un patr&oacute;n de restricci&oacute;n similar al de <I>L. ( V.) guyanensis</I> (M4147) (l&iacute;nea 5). Este resultado fue confirmado despu&eacute;s de la hibridaci&oacute;n con sondas para L. ( V.) braziliensis (</FONT><A HREF="#figura3">figura 3A</A><FONT FACE="Arial">), <I>L. ( V.) guyanensis</I> (</FONT><A HREF="#figura3">figura 3</A><FONT FACE="Arial">B) y <I>L. ( L.) amazonensis</I> (</FONT><A HREF="#figura3">figura 3</A><FONT FACE="Arial">C).</P>     <P><A NAME="figura2"></A></P>     <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v26n1/1a06i2.jpg"></P>     <P><A NAME="figura3"></A></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v26n1/1a06i3.jpg"></P>     <P>Las muestras 2 (aislamiento de <I>Sigmodon</I>) y 3 (aislamiento de <I>Rattus</I>) tuvieron un patr&oacute;n de restricci&oacute;n similar a <I>T. cruzi</I> (l&iacute;nea 7), hecho confirmado por la hibridaci&oacute;n con sondas para <I>L. (V.) braziliensis, L. ( V.) guyanensis, L. ( L.) amazonensis y T. cruzi</I> (resultados no mostrados).</P> <B>    <P>Discusi&oacute;n</P> </B>    <P>El estudio de los posibles reservorios silvestres y sinantr&oacute;picos de hemoflagelados zoon&oacute;ticos es de gran relevancia a nivel mundial y en especial en Suram&eacute;rica, en donde dos de sus representantes, <I>Leishmania</I> spp. y <I>Trypanosoma cruzi</I>, se han descrito en muchas especies de vertebrados con infecci&oacute;n natural por alguno de estos par&aacute;sitos y en algunos casos por ambos (1,2). Sin embargo, estos estudios no han evaluado la importancia epidemiol&oacute;gica de la coexistencia de diversas especies de hemoflagelados, incluidos algunos sin aparente importancia m&eacute;dica, en determinados animales vertebrados en un &aacute;rea geogr&aacute;fica delimitada. La mayor&iacute;a de los estudios se han limitado a evaluar la presencia de s&oacute;lo uno de ellos, bien sea Leishmania spp., <I>T. cruzi o T. lewisi</I>, sin pensar en la posibilidad de que la existencia previa de alguno de ellos pudiera significar cambios inmunol&oacute;gicos importantes en el vertebrado que determinen una mayor o menor susceptibilidad del mismo a otros par&aacute;sitos, incluidas otras especies de hemoflagelados. Algunos estudios previos (10,11) sugieren que la infecci&oacute;n de ratas por <I>T. lewisi</I> genera un estado de inmunosupresi&oacute;n que incrementa su susceptibilidad a posteriores infecciones por <I>Salmonella typhimurium</I> y <I>Toxoplasma gondii</I>.</P>     <P>En Venezuela se han realizado pocos estudios para la identificaci&oacute;n de reservorios silvestres de par&aacute;sitos hemoflagelados; la mayor&iacute;a de los trabajos se han dedicado al estudio de animales dom&eacute;sticos (12).</P>     <P>En el caso de Leishmania, los primeros animales silvestres descritos con infecci&oacute;n natural fueron de la zona de Socopo, estado Barinas, donde se encontr&oacute; en 1/29 Zygodontomys microtinus con amastigotes en una lesi&oacute;n en la cola, y posteriormente, en 1/80 Proechymys guyanensis se demostr&oacute; la presencia de par&aacute;sitos en una lesi&oacute;n ulcerada del animal (12). En ninguno de estos dos casos se identific&oacute; la especie de par&aacute;sito involucrada. En <I>D. marsupialis</I> (2/40) se encontraron par&aacute;sitos identificados como <I>L. ( V.) guyanensis</I> en la ciudad de Trujillo (13). En un estudio realizado en el estado Lara (14), de 519 animales estudiados, pertenecientes a 10 especies diferentes, se confirm&oacute; la infecci&oacute;n natural de <I>S. hispidus</I> (1/391) con <I>L. ( V.) braziliensis</I> y de <I>Rattus</I> spp. (2/68) con L. ( L.) mexicana y (3/68) con <I>L. ( V.) braziliensis</I>.</P>     <P>En el presente estudio, de 215 animales estudiados, pertenecientes a tres especies, se logr&oacute; demostrar la infecci&oacute;n natural con <I>L. ( V.) guyanensis</I> en Rattus spp. (1/135). A pesar de tratarse de una tasa de infecci&oacute;n baja (0,74%), consideramos que esta especie debe estar actuando como reservorio en el &aacute;rea de estudio con base en los siguientes criterios: (i) a partir de cultivos aislados en pacientes de la misma zona se logr&oacute; identificar los par&aacute;sitos pertenecientes a la misma especie de Leishmania (resultado no mostrado); (ii) las dificultades t&eacute;cnicas en el aislamiento y adaptaci&oacute;n de par&aacute;sitos en medios de cultivo, frecuentemente contribuyen a una subestimaci&oacute;n de la tasa de infecci&oacute;n; (iii) Rattus spp. ha sido implicado como reservorio de las diferentes especies de Leishmania a nivel mundial (en el Viejo Mundo se le implica m&aacute;s frecuentemente como reservorio de Leishmania causantes de la forma visceral (15,16), mientras que en Suram&eacute;rica se le asocia con mayor frecuencia a par&aacute;sitos causantes de la forma cut&aacute;nea (14,17-20) y con menor frecuencia a par&aacute;sitos del grupo donovani (21,22); (iv) existen evidencias experimentales de que Rattus spp. act&uacute;a como un buen reservorio para par&aacute;sitos del genero Leishmania; estos par&aacute;sitos inyectados subcut&aacute;neamente en Rattus spp. producen una infecci&oacute;n cr&oacute;nica sin la aparici&oacute;n de lesiones cut&aacute;neas, y conservan la capacidad de infectar al vector (23,24). La ausencia de lesiones es compatible con lo observado por nosotros en el presente trabajo y en trabajos anteriores (14); (v). en Venezuela, Rattus es una especie bastante com&uacute;n en zonas rurales, suburbanas y urbanas (25), que habita en estrecha relaci&oacute;n con el ser humano. La casi totalidad de las capturas son intradomiciliarias o provienen del peridomicilio inmediato. En este trabajo se reporta por primera vez la presencia de <I>L. ( V.) guyanensis</I> en <I>Rattus</I>.</P>     <P>El segundo hemoflagelado observado en el &aacute;rea en estudio fue <I>T. cruzi</I>, identificado en las tres especies de animales capturadas: <I>S. hispidus</I> (1/73), <I>Rattus</I> spp. (1/135) y <I>D. marsupialis</I> (4/7). Todos los Didelphi fueron capturados en el peridomicilio inmediato y 57,14 % de ellos result&oacute; positivo para <I>T. cruzi</I>. A pesar de esta alta tasa de infecci&oacute;n, no hubo conocimiento sobre casos agudos ni cr&oacute;nicos de enfermedad de Chagas durante el periodo en que se desarroll&oacute; el proyecto (19 meses). Se requerir&iacute;a la realizaci&oacute;n de nuevos estudios, sobre todo en lo referente a vectores, y un despistaje serol&oacute;gico en la poblaci&oacute;n general para evaluar la situaci&oacute;n real del foco y determinar si hay transmisi&oacute;n actual, si la hubo en el pasado o si nunca la ha habido.</P>     <P>En Venezuela, <I>T. cruzi</I> se ha encontrado infectando de forma natural 31 especies de vertebrados silvestres pertenecientes a 6 &oacute;rdenes (2). El m&aacute;s frecuentemente encontrado es <I>D. marsupialis</I> (26-28), al igual que ocurre en el resto de Suram&eacute;rica (21,29-32). Por sus h&aacute;bitos de vida representa un importante reservorio tanto del ciclo peridomiciliario como del selv&aacute;tico. D. marsupialis infectado con <I>T. cruzi</I> (6/24, 25%) ha sido reportado en &aacute;reas urbanas de Caracas (28). Se encontr&oacute; <I>Rattus</I> spp. infectado en 0,74% de los animales examinados (1/135). La infecci&oacute;n de <I>Rattus</I> por <I>T. cruzi</I> ya hab&iacute;a sido reportada en Venezuela tanto en &aacute;reas urbanas (33) como rurales.</P>     <P>S. hispidus se encontr&oacute; infectado por <I>T. cruzi</I> en 1,36% (1/73) y, aunque su infecci&oacute;n natural se ha reportado en Colombia y El Salvador (2), &eacute;ste es el primer reporte para Venezuela. Su importancia como reservorio del ciclo selv&aacute;tico est&aacute; por demostrarse.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Finalmente, <I>T. lewisi</I> se encontr&oacute; en 8,88% de Rattus spp. examinados (12/135). Aunque no tiene importancia aparente desde el punto de vista m&eacute;dico, pensamos que podr&iacute;a ser importante desde el punto de vista inmunol&oacute;gico. Estudios experimentales previos confirman que la infecci&oacute;n por <I>T. lewisi</I> en Rattus genera un estado de inmunosupresi&oacute;n que intensifica infecciones por otros par&aacute;sitos, tales como <I>Salmonella typhimurium</I> y <I>Toxoplasma gondii </I>(10,11). En el presente estudio se encontr&oacute; que de 135 animales estudiados, 12 estaban infectados con T. lewisi y dos de ellos estaban simult&aacute;neamente infectados con <I>T. cruzi </I>uno y con <I>L.( V.) guyanensis</I> el otro, mientras que los restantes 123 animales no presentaban ning&uacute;n tipo de infecci&oacute;n. Durante la realizaci&oacute;n de este estudio, se evalu&oacute; simult&aacute;neamente otro foco de leishmaniasis cut&aacute;nea en el mismo estado M&eacute;rida, donde se capturaron 189 Rattus spp.; ninguno report&oacute; infecci&oacute;n con <I>T. lewisi</I> y en ellos tampoco pudo demostrarse infecci&oacute;n por otros hemoflagelados, a pesar de que se siguieron los mismos procedimientos. En estudios anteriores (34), en los que se evalu&oacute; un foco activo de leishmaniasis cut&aacute;nea e inactivo para enfermedad de Chagas, se procesaron 40 Rattus spp., y se obtuvo coinfecci&oacute;n entre <I>T. lewisi, Leishmania</I> spp. y <I>T. cruzi</I>. Estudios realizados en Colombia (21) demuestran tambi&eacute;n la infecci&oacute;n simult&aacute;nea de <I>D. marsupialis</I> por <I>T. cruzi</I> y <I>L. chagasi</I>. </P>     <P>Los resultados obtenidos deben considerarse a la hora de evaluar los reservorios de nuevos focos tanto de leishmaniasis como de Chagas, ya que la infecci&oacute;n con <I>T. lewisi</I> podr&iacute;a sensibilizar a los animales silvestres para convertirlos en portadores de otros flagelados de importancia m&eacute;dica. Tambi&eacute;n se requiere la realizaci&oacute;n de experimentos controlados en el laboratorio que corroboren nuestra teor&iacute;a.</P> <B>    <P>Agradecimientos</P> </B>    <P>A la comunidad de El Carrizal por todo el apoyo suministrado durante la realizaci&oacute;n del trabajo de campo.</P> <B>    <P>Conflicto de intereses</P> </B>    <P>Los autores declaran no tener conflicto de intereses en este trabajo.</P> <B>    <P>Financiaci&oacute;n</P> </B>    <P>Banco Mundial / Gobierno de Venezuela, proyecto Ven/96/002/021-024.</P>     <P>Correspondencia:</P>     <P>Hector de Lima, Instituto de Biomedicina, Universidad Central de Venezuela Apartado 4043, Caracas 1010A, Venezuela.</P> <DL>     ]]></body>
<body><![CDATA[<DT>Tele-fax: 58-212-8648624</DT> </DL> </FONT>    <PRE><A HREF="mailto:delimah@cantv.net">delimah@cantv.net</A></PRE> <FONT FACE="Arial">    <P>Recibido: 19/07/05; aceptado: 18/10/05</P> <B>    <P>Referencias</P> </B>    <!-- ref --><P>1. <B>World Health Organization. </B>Las leishmaniasis, informe de un comit&eacute; de expertos de la OMS. Serie de informes t&eacute;cnicos 701. Geneve: WHO; 1984. p.23-74&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-4157200600010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>2. <B>World Health Organization. </B>Second report of the WHO Expert Committee, Control of Chagas’ disease. Technical report series 905. Geneve:WHO; 2002. p.55-63.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-4157200600010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>3. <B>Ministerio de Salud y Desarrollo Social, Venezuela. </B>Servicio Aut&oacute;nomo Instituto de Biomedicina. Unidad de Inform&aacute;tica. Informe anual de leishmaniasis cut&aacute;nea en Venezuela. Caracas: Instituto de Biomedicina;1994-2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-4157200600010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>4. <B>Ministerio de Salud y Desarrollo Social. </B>1980-2000. Anuario de epidemiolog&iacute;a y estad&iacute;stica vital. Caracas: MSDS; 2001.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-4157200600010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>5. <B>Ach&eacute; A, Matos AJ. </B>Interrupting Chagas disease transmission in Venezuela. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 2001;43:37-43.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-4157200600010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>6. <B>Rodr&iacute;guez N, Guzm&aacute;n B, Rodas A, Takiff H, Bloom B, Convit J. </B>Diagnosis of cutaneous leishmaniasis and species discrimination of parasite by PCR and hybridization. J Clin Microbiol 1994;32:2246-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-4157200600010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>7. <B>Barrios MA, Rodr&iacute;guez N, Feliciangeli DM, Ulrich M, Telles S, Pinardi ME <I>et al</I>. </B>Coexistence of two species of Leishmania in the digestive tract of the vector <I>Lutzomyia ovallesi</I>. Am J Trop Med Hyg 1994;51:669-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-4157200600010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>8. <B>Bankowski Z, Howard-Jones N. </B>Biomedical research involving animals: Proposed international guiding principles. Geneva: WHO; 1985.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-4157200600010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>9<B>. Bankowski Z, Howard-Jones N. </B>International guiding principles for biomedical research involving animals. Geneva: WHO; 1986.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-4157200600010000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>10. <B>Nielsen K, Sheppard J, Holems W, Tizard I. </B>Increased susceptibility of Trypanosoma lewisi infected, or decomplemented rats to <I>Salmonella typhimurium</I>. Experientia 1978;34:118-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-4157200600010000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>11. <B>Guerrero OM, Chinchilla M, Abrahams E. </B>Increasing of Toxoplasma gondii (Coccidia: Sarcocystidae) infections by <I>Trypanosoma lewisi</I> (Kinetoplastida, trypanosomatidae) in white rats. Rev Biol Trop 1997;45:877-82.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-4157200600010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>12. <B>Bonfante-Garrido R, Barroeta S. </B>Leishmanias y leishmaniasis en Am&eacute;rica con especial referencia a Venezuela. Barquisimeto: Tipograf&iacute;a y Litograf&iacute;a Horizonte C. A.; 2002. p.39-73&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-4157200600010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>13. <B>Scorza JV, Rezzano S, M&aacute;rquez JC. </B>Didelphis marsupialis: reservorio primario de Leishmania spp. en la ciudad de Trujillo, Venezuela. Rev Cub Med Trop 1984;36:194-200.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-4157200600010000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>14. <B>De Lima H, De Guglielmo Z, Rodr&iacute;guez A, Convit J, Rodr&iacute;guez N. </B>Cotton rats ( Sigmodon hispidus) and black rats ( Rattus rattus) as possible reservoirs of Leishmania spp in Lara state, Venezuela. 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Microbes Infect 2003;5:361-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-4157200600010000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>25. <B>Camero CL, G&oacute;mez WE, C&aacute;ceres JL. </B>Infestaci&oacute;n por roedores en inmuebles de Turmero, estado Aragua, Venezuela, 2001. Bolet&iacute;n de Malariolog&iacute;a y Salud Ambiental 2004;XLIV:29-33.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-4157200600010000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>26. <B>Telfort Jr SR, Tonn R. </B>Din&aacute;mica de <I>Trypanosoma cruzi</I> en poblaciones de un reservorio primario, <I>Didelphis marsupialis</I>, en los llanos altos de Venezuela. Bol Oficina Sanit Panam 1982;93:341-64.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-4157200600010000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>27. <B>Gil de Soto ST. </B><I>Didelphis marsupialis</I>, Linnaeus 1758, su importancia como reservorio de <I>Trypanosoma cruzi</I> en la regi&oacute;n de Zipanare (estado Zulia, Venezuela). Kasmera 1971;4:5-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-4157200600010000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>28. <B>Herrera L, Urdaneta-Morales S. </B><I>Didelphis marsupialis</I>: a primary reservoir of <I>Trypanosoma cruzi</I> in urban area of Caracas, Venezuela. Ann Trop Med Parasitol 1992;86:607-12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-4157200600010000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>29. <B>Grisard EC, Carvalho-Pinto CJ, Scholz AF, Toma HK, Schlemper BR Jr, Steindel M. </B><I>Trypanosoma cruzi</I> infection in <I>Didelphis marsupialis</I> in Santa Catarina and Arvoredo Islands, southern Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz 2000;95:795-800.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-4157200600010000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>30. <B>Ramirez LE, Lages-Silva E, Alvarenga-Franco F, Matos A, Vargas N, Fernandes O <I>et al</I>. </B>High prevalence of <I>Trypanosoma rangeli</I> and <I>Trypanosoma cruzi</I> in opossums and triatomids in a formerly-endemic area of Chagas disease in Southeast Brazil. Acta Trop 2002;84:189-98.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-4157200600010000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>31. <B>Wisnivesky-Colli C, Schweigmann NJ, Alberti A, Pietrokovsky SM, Conti O, Montoya S <I>et al</I>. </B>Sylvatic American trypanosomiasis in Argentina. <I>Trypanosoma cruzi</I> infection in mammals from the Chaco forest in Santiago del Estero. Trans R Soc Trop Med Hyg 1992;86:38-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-4157200600010000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>32. <B>Raccurt CP. </B><I>Trypanosoma cruzi</I> in French Guinea: review of accumulated data since 1940. Med Trop 1996;56:79-87.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-4157200600010000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>33. <B>Herrera L, Urdaneta-Morales S. </B>Synanthropic rodent reservoirs of <I>Trypanosoma (Schizotrypanum</I>) cruzi in the valley of Caracas, Venezuela. 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