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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Seroprevalencia de la enfermedad de Chagas y factores de riesgo asociados en una población de Morroa, Sucre]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. Chagas disease is a major public health problem in Latin America. In Colombia, a large area has the ecoepidemiological conditions which favor the active transmition of this infection. Objective. This study was undertaken in a population from the municipality of Morroa, Sucre Province, to evaluate risk factors and to determine the seroprevalence to Chagas disease. Materials and methods. A questionnaire was given to a sample population of 122 people classed as rural (n=76) or urban area (n = 46). A serological screening was undertaken by Elisa test, with confirmation of seropositives with IHA (Chagatest®) and parasitological confirmation by polymerase chain reaction (PCR). Results. Four people were positive by Elisa test (3.3%); however, they were negative by IHA and PCR. One of the four positives by Elisa was positive by indirect immuno flourescence (IFAT) as well. The sample showed a low presence of seropositives against Trypanosoma cruzi. However, the presence of parasite could not be confirmed by the PCR test.The main risk factors were houses thatched with palm roofs, clay floors, wood walls, and presence of domestic animal reservoirs. Conclusions. The study population presented risk factors for the establishment of active transmission. The presence of triatomines must be verified in this area and establishment of control measures are necessary for preventiving the resurgence of the Chagas disease in Morroa.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <B><FONT FACE="Helvetica" SIZE=4>    <P ALIGN="CENTER">Seroprevalencia de la enfermedad de Chagas y factores de riesgo asociados en una poblaci&oacute;n de Morroa, Sucre</P> </B></FONT><FONT FACE="Arial">    <P>Richard Hoyos <SUP>1</SUP>, Lisandro Pacheco <SUP>1</SUP>, Luz Adriana Agudelo <SUP>2</SUP>, German Zafra <SUP>3</SUP>, Pedro Blanco <SUP>1</SUP>, Omar Triana <SUP>2</P>     <P>1</SUP> Grupo de Investigaciones Biom&eacute;dicas, Universidad de Sucre, Sincelejo, Sucre, Colombia.</P> <SUP>    <P>2</SUP> Grupo de Chagas, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia.</P> <SUP>    <P>3</SUP> Grupo de Inmunolog&iacute;a y Epidemiolog&iacute;a Molecular, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, Colombia.</P> </FONT><FONT FACE="Arial" SIZE=3>    <P>Recibido: 02/02/06; aceptado: 16/08/06</P> </FONT><B><FONT FACE="Arial">    <P>Introducci&oacute;n.</B> La enfermedad de Chagas constituye un grave problema de salud p&uacute;blica en Latinoam&eacute;rica; en Colombia existen en gran parte de su geograf&iacute;a las condiciones ecoepidemiol&oacute;gicas propicias para la transmisi&oacute;n activa de esta enfermedad.</P> <B>    <P>Objetivo.</B> En este estudio fue evaluada una poblaci&oacute;n del municipio de Morroa, departamento de Sucre, para identificar factores de riesgo y determinar la seroprevalencia a la enfermedad de Chagas. </P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos.</B> A una muestra de 122 personas pertenecientes al &aacute;rea rural (n=76) y urbana (n=46), se les aplic&oacute; una encuesta epidemiol&oacute;gica y se les realiz&oacute; un tamizaje serol&oacute;gico con la prueba Elisa, confirmaci&oacute;n de seropositivos con hemoaglutinaci&oacute;n indirecta (HAI) (Chagatest&reg;) y reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) como prueba parasitol&oacute;gica confirmatoria.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Resultados.</B> Cuatro de las personas resultaron positivas para Elisa (3,28%); sin embargo, fueron negativas a HAI y PCR. La serolog&iacute;a discordante fue definida con prueba de inmunofluorescencia indirecta (IFI), encontr&aacute;ndose una de las cuatro personas positivas. La poblaci&oacute;n analizada mostr&oacute; una baja presencia de anticuerpos anti–<I>Trypanosoma cruzi</I>. No fue posible determinar la presencia del par&aacute;sito en sangre usando la prueba PCR. Los principales factores de riesgo presentes fueron casas con techos de palmas, piso de tierra, paredes de bahareque y madera, y la presencia de reservorios (animales dom&eacute;sticos). </P> <B>    <P>Conclusiones. </B>Nuestros resultados indican que la zona estudiada presenta elementos de riesgo para el establecimiento de un ciclo de transmisi&oacute;n activa, se hace necesario verificar la presencia de triatominos en la zona de estudio y establecer medidas para prevenir la presencia de la enfermedad de Chagas en el &aacute;rea de Morroa, Sucre.</P> <B>    <P>Palabras claves: </B><I>Trypanosoma cruzi</I>, enfermedad de Chagas, serolog&iacute;a, factores de riesgo, prueba de Elisa, epidemiolog&iacute;a.</P> <B>    <P>Seroprevalence of Chagas disease and associated risk factors in a population of Morroa, Sucre</P>     <P>Introduction.</B> Chagas disease is a major public health problem in Latin America. In Colombia, a large area has the ecoepidemiological conditions which favor the active transmition of this infection. </P> <B>    <P>Objective.</B> This study was undertaken in a population from the municipality of Morroa, Sucre Province, to evaluate risk factors and to determine the seroprevalence to Chagas disease. </P> <B>    <P>Materials and methods.</B> A questionnaire was given to a sample population of 122 people classed as rural (n=76) or urban area (n = 46). A serological screening was undertaken by Elisa test, with confirmation of seropositives with IHA (Chagatest&reg;) and parasitological confirmation by polymerase chain reaction&nbsp;(PCR).</P> <B>    <P>Results.</B> Four people were positive by Elisa test (3.3%); however, they were negative by IHA and PCR. One of the four positives by Elisa was positive by indirect immuno flourescence (IFAT) as well. The sample showed a low presence of seropositives against <I>Trypanosoma cruzi</I>. However, the presence of parasite could not be confirmed by the PCR test.The main risk factors were houses thatched with palm roofs, clay floors, wood walls, and presence of domestic animal reservoirs. </P> <B>    <P>Conclusions.</B> The study population presented risk factors for the establishment of active transmission. The presence of triatomines must be verified in this area and establishment of control measures are necessary for preventiving the resurgence of the Chagas disease in Morroa.</P> <B>    <P>Key words: </B><I>Trypanosoma cruzi</I>, Chagas disease, serology, risk factors, Elisa test, epidemiology.</P> <I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Trypanosoma cruzi</I>, agente causal de la enfermedad de Chagas, es transmitido por insectos vectores de la subfamilia Triatominae. La fase cr&oacute;nica de la enfermedad se caracteriza por complicaciones card&iacute;acas y digestivas (1). Los datos serol&oacute;gicos indican que alrededor de 17 a 24 millones de latinoamericanos se encuentran infectados y cerca de 120 millones est&aacute;n en riesgo de infectarse (2). En Colombia se ha estimado que un 5% de la poblaci&oacute;n puede estar infectada y un 23% se encuentra en zona de alto riesgo (3). </P>     <P>Las principales condiciones para el establecimiento de la enfermedad de Chagas en las zonas de riesgo son la presencia del insecto vector, los animales silvestres que sirvan de reservorios, la circulaci&oacute;n del par&aacute;sito y las condiciones socioecon&oacute;micas de la regi&oacute;n (tipo de vivienda, hacinamiento y presencia de animales dom&eacute;sticos que facilitan la transmisi&oacute;n activa de <I>T. cruzi</I>)<I> </I>(4).</P>     <P>Las condiciones biol&oacute;gicas, ecol&oacute;gicas y ambientales del territorio nacional favorecen los ciclos ecoepidemiol&oacute;gicos del par&aacute;sito, lo que hace necesario realizar encuestas serol&oacute;gicas para conocer la proporci&oacute;n de individuos infectados en las zonas geogr&aacute;ficas del pa&iacute;s.</P>     <P>Para estos estudios epidemiol&oacute;gicos se utilizan los m&eacute;todos serol&oacute;gicos convencionales: inmunoensayo ligado a una enzima (Elisa), hemoaglutinaci&oacute;n indirecta (HAI) e inmuno-fluorescencia indirecta (IFI) para detectar la presencia de anticuerpos contra <I>T. cruzi, </I>(4,5). Cuando se desea determinar la presencia del par&aacute;sito <I>T. cruzi</I> en sangre circulante, la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) constituye una importante herramienta que de alguna manera reem-plaza las t&eacute;cnicas de microscop&iacute;a existentes (6).</P>     <P>La presencia de vectores triatominos en el departamento de Sucre (7), la falta de datos relacionados con la epidemiolog&iacute;a y los factores de riesgo para la enfermedad de Chagas en la regi&oacute;n motivaron el presente estudio de una muestra poblacional del municipio de Morroa, Sucre, considerado de bajo riesgo (8), con el fin de determinar la seroprevalencia de la enfermedad de Chagas con m&eacute;todos serol&oacute;gicos convencionales y evaluar los factores de riesgo asociados.</P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos</P> <I>    <P>Localidad y poblaci&oacute;n de estudio</P> </B></I>    <P>El estudio se llev&oacute; a cabo en el municipio de Morroa (coordenadas geogr&aacute;ficas: 9° 28' norte, 9° 18' sur, 75° 15' este y 75°21' oeste, departamento de Sucre), situado a 150 metros sobre el nivel del mar en la costa Atl&aacute;ntica de Colombia, con una temperatura promedio de 27°C y predominio de clima de sabana tropical y vegetaci&oacute;n principal-mente compuesta de palmas y &aacute;reas boscosas. La poblaci&oacute;n es de 16.120 personas, de las cuales el 68% pertenece al &aacute;rea rural. La muestra poblacional fue calculada bas&aacute;ndose en el programa estad&iacute;stico Epi info 2003, utilizando un promedio de prevalencia de la enfermedad de Chagas del 5%, la poblaci&oacute;n del municipio y un nivel de confianza del 95%. </P> <B><I>    <P>Muestras</P> </B></I>    <P>Las personas que participaron en el estudio deb&iacute;an pertenecer al &aacute;rea de Morroa y tener un periodo de permanencia en la zona mayor a cinco a&ntilde;os, las personas que no cumpl&iacute;an con estos criterios no fueron tenidas en cuenta para la realizaci&oacute;n del estudio. Previa firma de consentimiento informado, las personas respondieron una encuesta epidemiol&oacute;gica y se extrajo una muestra de sangre que fue dividida en dos viales: uno para extracci&oacute;n de suero y uno con anticoagulante (EDTA – 0,2 M, pH = 8,0) para extracci&oacute;n de ADN. Las muestras de sangre y suero se recolectaron en el Laboratorio Cl&iacute;nico del Centro M&eacute;dico de Salud San Blas del 2 de septiembre al 3 diciembre del 2004, y correspondieron a 122 personas asentadas en 117 viviendas del &aacute;rea rural y urbana.</P> <B><I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Encuesta epidemiol&oacute;gica</P> </B></I>    <P>Las variables tomadas en cuenta fueron el tipo de vivienda; el conocimiento sobre el vector, para lo cual a cada persona participante en el estudio se le mostraron ejemplares adultos y ninfales de <I>Triatoma maculata;</I> los lugares de avistamiento del insecto, los tipos de animales dom&eacute;sticos y el hacinamiento. Se realiz&oacute; una b&uacute;squeda pasiva de vectores, para lo cual se distribuyeron viales pl&aacute;sticos rotulados est&eacute;riles en el corregimiento de Las Flores. Estos datos se procesaron en el programa estad&iacute;stico Epi Info 2003.</P> <B><I>    <P>Ensayos serol&oacute;gicos</P> </B></I>    <P>La Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS) recomienda que las muestras de suero sean clasificadas como positivas para la enfermedad de Chagas si son reactivas a dos de tres t&eacute;cnicas serol&oacute;gicas con metodolog&iacute;as diferentes (2). En este trabajo se utilizaron como pruebas diagn&oacute;sticas Elisa, HAI e IFI.</P>     <P>La prueba de Elisa se desarroll&oacute; de acuerdo al protocolo descrito por Gea <I>et al.</I> (1987) y Takasu <I>et al.</I> (1989) (9,10); el ensayo se realiz&oacute; en microplacas Nunc – Immuno Plate (Maxisorp surface) y un lector de Elisa Biorad (model 550). El ant&iacute;geno consisti&oacute; en un extracto crudo de epimastigotes de<I> T. cruzi</I> (cepa Y), el cual se adicion&oacute; a una concentraci&oacute;n de 1,22 ug\ml e incubado 24 horas en <I>buffer</I> carbonato (pH = 9,6). Los sueros se utilizaron en diluciones de 1:800 y como conjugado enzim&aacute;tico se utiliz&oacute; anti-inmunoglobulina G ligada a fosfatasa alcalina en diluci&oacute;n de 1:1000. El sustrato p – nitrofenilfosfato (Sigma # catalogo 104) se adicion&oacute; a una concentraci&oacute;n de 1 mg\ml para ser le&iacute;da a una longitud de onda de 410 nm despu&eacute;s de agregar 50 ul de NaOH 3N. Se consideraron muestras reactivas positivas aquellas cuya D.O fuera mayor al punto de corte (punto de corte = 0,300).</P> <B><I>    <P>Hemoaglutinaci&oacute;n indirecta</P> </B></I>    <P>Esta prueba se realiz&oacute; con el kit Chagatest&reg; (Wiener Lab) y se consideraron reactivas las muestras con t&iacute;tulos iguales o mayores a 1:32. </P> <B><I>    <P>Inmunofluorescencia indirecta</P> </B></I>    <P>En esta prueba se utilizaron como ant&iacute;geno prote&iacute;nas formalizadas totales de epimastigotes de la cepa HA de <I>T. cruzi</I> de Colombia, y como anticuerpo, un anti IgG humano marcado con isotiocianato de fluoresce&iacute;na (FITC), seg&uacute;n el protocolo establecido en el laboratorio de Chagas de la Universidad de Antioquia (11). El punto de corte se estableci&oacute; a partir de la segunda diluci&oacute;n (1:40). </P> <B><I>    <P>Extracci&oacute;n de ADN y PCR</P> </B></I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>El protocolo de extracci&oacute;n empleado es el descrito por Sambrook <I>et al.</I> (1989) (12): 500 µL de sangre se mezclaron con <I>buffer</I> de lisis 2X (Tris - HCl 10 mM PH = 7,4; EDTA 5M a pH = 8,0; SDS al 1%) y 10 µL de proteinasa K (20 mg/ml); se incubaron a 55°C por 1 hora y despu&eacute;s toda la noche a 37°C; luego se inactiv&oacute; la proteinasa K (5 minutos a 95°C) para centrifugar a 12.000 r.p.m por 40 minutos; el sobrenadante resultante se tom&oacute; para la extracci&oacute;n del ADN con sales de alta molaridad. El sobrenadante de ADN se resuspendi&oacute; en 50 µL de <I>buffer </I>TE 1X, almacen&aacute;ndose luego a -20°C hasta su uso.</P>     <P>En la prueba de PCR se usaron los iniciadores S35 (5‘AAA TAA TGT ACG GGT GAG ATG CAT G 3‘) y S36 (5‘GGG TTC GAT TGG GGT TGG TG 3‘), que amplifican un fragmento de 330 bp de las regiones variables de minic&iacute;rculos del kDNA de <I>T. cruzi</I>. La reacci&oacute;n de amplificaci&oacute;n se realiz&oacute; seg&uacute;n Moser <I>et al.</I> (1989) (13) as&iacute;: 2 µL de <I>buffer</I> PCR (10X), 0,4 µL de dNTPs mezclados (200 mM), 1,2 µL de MgCl2 (1,5 mM), 1,2 µL de cada iniciador (0,6 mM), 0,2 µL de Taq polimerasa y 6 µL de ADN problema, para un volumen final de 25 µL. La PCR se llev&oacute; a cabo en un termociclador PCR – Express (Hybaid) en las siguientes condiciones: 1 ciclo a 94°C (5 minutos), 35 ciclos a 94°C (1 minuto) 65°C (1 minuto) 72 °C (1 minuto), y una extensi&oacute;n final a 72°C (10 minutos). Los productos amplificados se sometieron a una electroforesis en gel de agarosa al 1,8% y se visualizaron bajo luz U.V despu&eacute;s de la tinci&oacute;n con bromuro de etidio.</P> <B><I>    <P>Consideraciones &eacute;ticas</P> </B></I>    <P>El Comit&eacute; de Investigaciones de la Facultad de Educaci&oacute;n y Ciencias de la Universidad de Sucre aprob&oacute; este estudio.</P> <B>    <P>Resultados</P> </B>    <P>La encuesta epidemiol&oacute;gica revel&oacute; que en la muestra poblacional estudiada (n = 122), las condiciones socioecon&oacute;micas de la vivienda fueron uno de los factores de riesgo encontrados con mayor frecuencia. Los tipos de vivienda correspondieron principalmente a tres categor&iacute;as: la combinada (62 viviendas, 50,9%), que presenta por lo menos un elemento estructural de riesgo para la infestaci&oacute;n por triatominos; en segundo lugar tenemos el "rancho"(37 viviendas, 30,3%), que presenta todos los elementos estructurales de riesgo para la infestaci&oacute;n por vectores de la enfermedad de Chagas y, por &uacute;ltimo, la casa de material (18,8%).</P>     <P>Los animales dom&eacute;sticos encontrados en la mayor&iacute;a de las viviendas de la poblaci&oacute;n encuestada fueron perros (<I>Canis familiaris,</I> 57,2%), gallinas (<I>Gallus gallus, </I>44,4%) y cerdos (<I>Sus scropha, </I>36,7%), present&aacute;ndose convivencia de diferentes especies dentro de la misma casa.</P>     <P>El hacinamiento fue un factor presente en el 83,6% de los domicilios encuestados, ya que presentaban cinco o m&aacute;s personas por habitaci&oacute;n en el domicilio. </P>     <P>Las personas que manifestaron conocer el vector despu&eacute;s de ver ejemplares adultos y ninfales de <I>T. maculata</I> fueron 54 (44,2%), siendo las paredes de las habitaciones el lugar m&aacute;s frecuente de observaci&oacute;n y los dormitorios el sitio predilecto para la alimentaci&oacute;n de los triatominos (34 y 44%, respectivamente). La b&uacute;squeda pasiva de vectores en el corregimiento de Las Flores fue negativa.</P>     <P>El an&aacute;lisis por Elisa revel&oacute; cuatro personas seropositivas, un hombre y tres mujeres que se encontraban en el grupo de edad entre los 14 y 45 a&ntilde;os. A los sueros seropositivos se les realiz&oacute; una prueba de HAI con el estuche Chagatest&reg; (Wiener Lab) con resultados negativos. Dada la discrepancia que exist&iacute;a en cuanto al estado serol&oacute;gico de estos cuatro individuos (Elisa +, HAI -), se defini&oacute; la seropositividad con el ensayo de IFI, el cual dio resultado positivo en una de las cuatro muestras, con un t&iacute;tulo de 1:40.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La amplificaci&oacute;n del kDNA de <I>T. cruzi</I> por PCR en las muestras de sangre pertenecientes a individuos seropositivos por Elisa y positivos para IFI fue negativa.</P> <B>    <P>Discusi&oacute;n </P> </B>    <P>En el ciclo silvestre los triatominos est&aacute;n ubicados en ecotopos con unas caracter&iacute;sticas particulares dependiendo del g&eacute;nero Triatominae<I> </I>al que pertenezcan; as&iacute;, las especies pertenecientes a <I>Rhodnius</I> se han encontrado asociadas principalmente a palmas (14,15); <I>Panstrongylus sp.</I> se encuentra en cavidades y huecos de palmas, en &aacute;rboles y tambi&eacute;n en madrigueras de vertebrados silvestres (16); <I>Triatoma sp.</I> frecuentemente se localiza en h&aacute;bitats rocosos y madrigueras de roedores (16). Los diferentes nichos ecol&oacute;gicos colonizados por las especies <I>Triatominae</I> se distribuyen de acuerdo a la asociaci&oacute;n que presentan en el ambiente silvestre y las preferencias de sustrato se reflejan en los sitios infestados por los triatominos dentro de las casas (14); por esta raz&oacute;n, se considera que uno de los factores de riesgo mas relevantes es el tipo de construcci&oacute;n de los domicilios. En la poblaci&oacute;n estudiada, la mayor parte de las viviendas presentaban por lo menos un elemento estructural de riesgo para la infestaci&oacute;n por triatominos (50,9%), y otro porcentaje (30,3%) presentaba todos los elementos estructurales de riesgo para la infestaci&oacute;n por vectores de la enfermedad de Chagas, ya que las viviendas con paredes de bahareque y techos de palma presentan los micrositios (fisuras) y microclimas que permiten una domiciliaci&oacute;n acelerada de triatominos por tener una temperatura y humedad similares a las de los silvestres (17). </P>     <P>Aunque se considera que las casas con elementos materiales s&oacute;lidos (bloque, cemento y tejas de asbesto-cemento, presentes en un 18,8%) no presentan ning&uacute;n tipo de riesgo, se ha observado que algunas especies como <I>T. maculata</I> y <I>T. dimidiata,</I> presentes en Colombia y la Costa Atl&aacute;ntica (14,15,18), tienen una presencia ligada al hacinamiento y no a estructuras de riesgo, consider&aacute;ndose la presencia de estas especies vectoras un factor de riesgo para cualquier tipo de vivienda (15,19). El hacinamiento fue del 83,6%, lo que indica que hab&iacute;a casas con dos habitaciones y cinco o m&aacute;s habitantes; adem&aacute;s, las caracter&iacute;sticas de higiene asociadas con el hacinamiento se consideran como de riesgo para la transmisi&oacute;n vectorial (19,20), la infestaci&oacute;n, y tambi&eacute;n para la picadura de los triatominos a individuos, ya que facilitan una mayor concentraci&oacute;n de fuentes de alimentos en un m&iacute;nimo de espacio.</P>     <P>Los principales animales dom&eacute;sticos encontrados coinciden con los reservorios caracterizados para <I>T. cruzi</I> y con otras experiencias epidemiol&oacute;gicas, en las que se han encontrado fuertes asociaciones entre cerdos y la especie <I>Panstrongylus geniculatus </I>(21), y entre gallinas y <I>T. dimidiata</I>, <I>T. maculata</I> y <I>Rhodnius prolixus </I>(3,15, 22). Hay que resaltar que existen reportes que asocian la presencia de especies de triatominos infectados con tripanosomas en los municipios del departamento de Sucre (7,23,24).</P>     <P>Los perros son los reservorios principales para <I>T. cruzi</I> y los tres principales g&eacute;neros de <I>Triatominae</I> tienen como fuente fundamental de alimento<I> </I>a esta especie. La presencia de posibles fuentes de alimentos susceptibles de ser reservorios est&aacute; ligada a altas densidades de animales dom&eacute;sticos que duermen en el intradomicilio y peridomicilio, adem&aacute;s de la presencia de diferentes especies de animales en la vivienda, como se observ&oacute; en la muestra poblacional estudiada, en la que adem&aacute;s de los tres reservorios antes mencio-nados, se encontraron patos (<I>Anas sp</I>), pavos (<I>Meleagris gallipavo</I>), gatos (<I>Felis catus</I>), burros (<I>Equus asinus</I>), vacas (<I>Bos taurus</I>), lo que aumenta la densidad de animales en los domicilios estudiados y facilita a los insectos vectores la obtenci&oacute;n de alimento.</P>     <P>Se realiz&oacute; una b&uacute;squeda pasiva en los domicilios del corregimiento de Las Flores (Morroa, Sucre), despu&eacute;s de realizar actividades de educaci&oacute;n sobre los peligros de la enfermedad de Chagas y el vector <I>Triatominae</I>; esta b&uacute;squeda arroj&oacute; resultados negativos, pues no se encontraron ejemplares de triatominos, aunque s&iacute; hay antecedentes de infestaci&oacute;n a&ntilde;os atr&aacute;s, seg&uacute;n informaciones anecd&oacute;ticas de los moradores de este corregimiento. No se descarta la presencia de vectores en el &aacute;rea de este municipio, debido a que el principal tipo de vegetaci&oacute;n son las palmas en el peri y extradomicilio, y en el departamento de Sucre, Poyet (1995) (24) y Agudelo (2005) (Agudelo L. Experiencias epidemiol&oacute;gicas del Grupo de Chagas, Universidad de Antioquia. En: Jaramillo N, Parra G, Triana O, Moreno J, editores. Memorias del VIII Curso Internacional sobre la Ecoepidemiolog&iacute;a de la Enfermedad de Chagas y sus M&eacute;todos de Estudio. Medell&iacute;n: Editorial Gr&aacute;ficas; 2005) reportan infestaci&oacute;n con triatominos (<I>R. pallescens</I>, <I>T. dimidiata</I> y <I>P. geniculatus</I>) en palmas del g&eacute;nero <I>Attalea</I> (<I>Attalea butyracea</I>, "palma de vino"), <I>Scheelea </I>y <I>Cocos</I> (<I>Cocos nucifera</I>, "palma de coco").</P>     <P>Las pruebas serol&oacute;gicas constituyen importantes herramientas que permiten estimar los niveles de infecci&oacute;n por <I>T. cruzi </I>y evaluar medidas de control epidemiol&oacute;gico y vectorial (20). Sin embargo, la persistencia de resultados falsos debidos a la gran cantidad de reacciones cruzadas con anticuerpos de individuos que padecen otras enfermedades parasitarias relacionadas (4) ha llevado a la OMS a recomendar el uso de por lo menos dos t&eacute;cnicas serol&oacute;gicas con fundamentos metodol&oacute;gicos diferentes (2,4,5). En nuestro estudio, la prueba Elisa para detectar niveles de IgG anti–<I>T. cruzi</I> fue lo suficientemente sensible en los sueros de la poblaci&oacute;n estudiada, discriminando cuatro muestras reactivas cuya densidad &oacute;ptica fue mayor al punto de corte y no se ubicaron dentro de la zona gris (0,270 a 0,330).</P>     <P>Al realizar la prueba de HAI con el estuche Chagatest&reg;, las cuatro muestras resultaron negativas, resultado similar al obtenido por C&aacute;rdenas <I>et al.</I>(2002), quien obtuvo seis muestras reactivas por Elisa y todas negativas por Chagatest&reg;, lo que demuestra la discordancia entre esta prueba y Elisa (25). Hay que destacar que el <I>kit</I> Chagatest&reg; utiliza ant&iacute;geno citoplasm&aacute;tico liofilizado de cepas argentinas, por lo que podr&iacute;a explicarse que las muestras no reaccionen debido a la posible diferencia en determinantes antig&eacute;nicos entre las cepas del cono sur y las cepas de<I> T. cruzi </I>colombianas. Esta hip&oacute;tesis es expuesta por Enciso <I>et al</I>. (2004), quienes, para explicar las discordancias que existen al tamizar muestras por Elisa y estuches de HAI for&aacute;neos, adem&aacute;s proponen aspectos relacionados con el estadio del par&aacute;sito utilizado como ant&iacute;geno, su preparaci&oacute;n, el ciclo de transmisi&oacute;n al que pertenece la cepa aislada, as&iacute; como el hu&eacute;sped o reservorio de origen (26). Estos sueros tambi&eacute;n se analizaron con la t&eacute;cnica de IFI, y se confirm&oacute; una de las cuatro muestras como positiva para <I>T. cruzi</I>, encontr&aacute;ndose el primer caso aut&oacute;ctono de la enfermedad de Chagas en un municipio considerado de bajo riesgo, en el cual no se ha reportado la presencia de individuos infectados por <I>T. cruzi</I>. </P>     <P>La PCR se realiz&oacute; con el objetivo de detectar la presencia del par&aacute;sito en sangre; tres muestras fueron negativas por ausencia de infecci&oacute;n (positivos para Elisa, negativos para Chagatest&reg; e IFI), y una muestra fue negativa por ausencia de parasitemia en sangre perif&eacute;rica (positivo para Elisa e IFI, negativo para Chagatest&reg;); este resultado es consistente con el de personas en estado latente o cr&oacute;nico de la enfermedad de Chagas, que presentan serolog&iacute;a positiva pero escasa presencia de par&aacute;sitos en sangre (6,27); otras posibles causas que pueden incidir en los resultados son el tipo de extracci&oacute;n de ADN utilizado y el volumen de sangre usado en la extracci&oacute;n. Marcon <I>et al</I> (2002) desarrollaron una PCR anidada para detectar <I>T. cruzi</I> en pacientes en estado cr&oacute;nico de la enfermedad (28); sin embargo, la alta sensibilidad encontrada con esta t&eacute;cnica es consecuencia de la alta parasitemia de las cepas procedentes de las &aacute;reas end&eacute;micas brasile&ntilde;as, caracter&iacute;stica diferente a la de los aislamientos colombianos. En este sentido, Morroa es considerada un &aacute;rea de bajo riesgo no end&eacute;mica para la enfermedad de Chagas. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>En conclusi&oacute;n, la zona de estudio present&oacute; los elementos de riesgo estructurales con los ecotopos artificiales propicios para la infestaci&oacute;n de triatominos; la convivencia con diferentes tipos de animales dom&eacute;sticos facilita una fuente de alimento estable y reservorios para el desarrollo de colonias domiciliadas de triatominos y, en consecuencia, la transmisi&oacute;n activa de <I>T. cruzi</I>. Por la prevalencia de 1,22% encontrada en la muestra estudiada se recomienda realizar estudios para ubicar la presencia de vectores triatominos y su &iacute;ndice de infecci&oacute;n natural en los corregimientos y veredas pertenecientes al municipio de Morroa, as&iacute; como establecer el estado seroepidemiol&oacute;gico de poblaciones pertenecientes al corregimiento de Tumbatoro (Morroa, Sucre), sitio de origen del individuo positivo por Elisa e IFI en este estudio.</P> <B>    <P>Conflicto de intereses</P> </B>    <P>Los autores manifiestan no tener conflictos de intereses con respecto a los resultados de esta investigaci&oacute;n.</P> <B>    <P>Financiaci&oacute;n</P> </B>    <P>Este trabajo de investigaci&oacute;n pertenece a la l&iacute;nea de investigaciones biom&eacute;dicas de la Universidad de Sucre y fue financiado parcialmente por el proyecto 1102-04 -12901 registrado en Colciencias, as&iacute; como con recursos del Laboratorio de Investigaciones Biom&eacute;dicas de la Universidad de Sucre y el Grupo de Chagas de la Universidad de Antioquia.</P> </FONT><FONT FACE="Arial" SIZE=3>    <P>Correspondencia:</P>     <P>Richard Hoyos Lopez; Carrera 14 N° 16B – 32, Laboratorio de Investigaciones Biom&eacute;dicas, Sincelejo, Sucre, Colombia. Tel&eacute;fono: (055) 2820830; fax: (055) 2823867.     <BR><A HREF="mailto:richard_hoyoslopez@yahoo.com"><FONT SIZE=3>richard_hoyoslopez@yahoo.com</FONT></A></P> <B><FONT FACE="Arial">     <P>Referencias</P> </B>    <!-- ref --><P>1. <B>Atias A.</B> Parasitolog&iacute;a m&eacute;dica. Santiago de Chile: Publicaciones T&eacute;cnicas Mediterr&aacute;neas Ltda.: 1999. p. 251-64.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-4157200700050001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>2. <B>World Health Organization. </B>Control of Chagas disease. Second Report of the WHO Expert Committee. Technical reports series 905. Geneva: WHO; 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-4157200700050001400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>3. <B>Moncayo A.</B> Chagas disease: current epidemiological trends after the interruption of vectorial and transfusional transmission in the southern cone countries. Mem Inst Oswaldo Cruz 2003;98:577-91.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-4157200700050001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>4.<B> Cannova D, Aguilar M, Pacheco M, Simona M, Medina M.</B> Validaci&oacute;n del inmunoensayo enzim&aacute;tico (Elisa) y hemoaglutinaci&oacute;n indirecta (HAI) para el serodiagn&oacute;stico de la enfermedad de Chagas. Salus 2002;6:4-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-4157200700050001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>5. <B>Gutierrez R, Angulo VM, Tarazona Z, Britto M, Fernandez O.</B> Comparison of four serological tests for the diagnosis of Chagas disease in a Colombian endemic area. Parasitology 2004;129:439-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-4157200700050001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>6<B>. Kirchhoff LV, Votava JR, Ochs DE, Moser DR.</B> Comparison of PCR and microscopic methods for detecting <I>Trypanosoma cruzi</I>. J Clin Microbiol 1996;34:1171-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-4157200700050001400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>7. <B>Molina JA, Gualdron LE, Brochero HL, Olano VA, Barrios D, Guhl F.</B> Distribuci&oacute;n actual e importancia epidemiol&oacute;gica de las especies de triatominos (Reduviidae: Triatominae) en Colombia. Biom&eacute;dica 2000;20:344-60.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-4157200700050001400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>8. <B>Guhl F, Restrepo M, Angulo VM, Antunes CM, Campbell-Lendrum D, Davies C.</B> Lessons from a national survey of Chagas disease transmission risk in Colombia. Trends Parasitol 2005;21:259-62.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-4157200700050001400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>9. <B>Gea S, Rodriguez P, Vottero–Cima E.</B> Characterization of <I>Trypanosoma cruzi</I> antigens recognized by sera from patients with chronic Chagas disease. Int Archs Allergy Appl Immun 1987;84:410-3. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-4157200700050001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>10.<B>Takasu N, Masuko T, Hojo H, Hashimoto Y.</B> A microplate-immunofluorescence assay for anti-<I>Trypanosoma cruzi</I> antibodies. Tohoku J Exp Med 1989;159:307-12. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-4157200700050001400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>11. <B>Agudelo L.</B> Ecoepidemiolog&iacute;a de la enfermedad de Chagas en la cuenca del R&iacute;o Palomino, Sierra Nevada de Santa Marta. (Tesis de maestr&iacute;a) Medell&iacute;n: Universidad de Antioquia; 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-4157200700050001400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>12. <B>Sambrook J, Fritsh E, Maniatis T.</B> Molecular cloning. A laboratory manual. New York: Cold Spring Harbor Laboratory; 1989. p.223-45. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-4157200700050001400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>13. <B>Moser D, Kirchhoff L, Donelson J. </B>Detection of <I>Trypanosoma cruzi</I> by DNA amplification using the polymerase chain reaction. J Clin Microbiol 1989;27:1477-82.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-4157200700050001400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>14. <B>Lent H, Wigodzinsky P. </B>Revision of the Triatominae (Hemiptera, Reduviidae), and their significance as vectors of Chagas disease. Bull Am Mus Nat Hist 1979;163:123-520.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-4157200700050001400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>15. <B>M&aacute;rquez J, Palencia J. </B>Detecci&oacute;n de <I>Trypanosoma cruzi </I>en una poblaci&oacute;n de triatominos (<I>Triatoma maculata) </I>en C&oacute;rdoba, Bol&iacute;var. (Tesis de grado). Sincelejo: Universidad de Sucre; 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-4157200700050001400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>16. <B>Gaunt M, Miles M.</B> The ecotopes and evolution of Triatomine bugs (Triatominae) and their associated try-panosomes. Mem Inst Oswaldo Cruz 2000;95:557-65.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-4157200700050001400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>17. <B>Pizarro JC, Roma&ntilde;a C. </B>Variaci&oacute;n estacional de una poblaci&oacute;n silvestre de <I>Rhodnius pallescens</I> (Heteroptera: Triatominae) BARBER 1932 en la costa Caribe colombiana. Bull Inst Fr Etudes Audines 1998;27:309-25.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-4157200700050001400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>18. <B>Cort&eacute;s L, Su&aacute;rez H. </B>Triatominos (<I>Reduviidae: Triatominae</I>) en un foco de enfermedad de Chagas en Talaigua Nuevo (Bol&iacute;var, Colombia). Biom&eacute;dica 2005;25:568-74.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-4157200700050001400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>19. <B>Segura E, Escobar-Mesa A, Grupo de Estudio Sobre la Enfermedad de Chagas.</B> Epidemiolog&iacute;a de la enfermedad de Chagas en el estado de Veracruz. Salud P&uacute;blica M&eacute;x 2005;47:201-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-4157200700050001400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>20<B>. Sanmartino M, Crocco L.</B> Conocimientos sobre la enfermedad de Chagas y factores de riesgo en comunidades epidemiologicamente diferentes de Argentina. Rev Panam Salud P&uacute;blica<I> </I>2000;7:173-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-4157200700050001400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>21<B>. Valente VC, Valente SA, Noireau F, Carrasco HJ, Miles MA.</B> Chagas disease in the amazon basin: association of <I>Panstrongylus geniculatus</I> (Hem&iacute;ptera, Reduviidae) with domestic pigs. J Med Entomol<I> </I>1998;35:99-103.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-4157200700050001400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>22<B>. D’Alessandro A, Barreto P, Thomas M.</B> Nuevos registros de triatominos domiciliarios y extradomiciliarios en Colombia. Colombia M&eacute;dica 1981;12:75-85.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-4157200700050001400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>23. <B>Corredor A, Santacruz M, Gomez S, Guatame L.</B> Distribuci&oacute;n de los triatominos domiciliados en Colombia. 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