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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Patrones electroforéticos de hemoproteínas salivares (nitroforinas) de Rhodnius colombiensis y Rhodnius prolixus (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Electrophoretic patterns of salivary hemeproteins (nitrophorines) of Rhodnius colombiensis and R. prolixus (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. Salivary hemeprotein electrophoresis in starch gels is a recent technique used for differentiation of Rhodnius species with great phenotypic similarity. Furthermore, populations of the same species can be differentiated from geographically separated locales. Of the 15 described Rhodnius species in Latin America, at least eight have been reported in Colombia. Objective. To use the salivary hemeproteins electrophoresis for R. prolixus and R. colombiensis identification. These two species are phenotypically similar and have overlapping domestic and sylvatic cycles where they occur in the upper basin of the Magdalena river, Central Colombia. Material and methods. The content of salivary glands of each insect was subjected to starch gel electrophoresis using glycine buffer, and the bands were revealed with 3,3’,5,5’-tetramethylbenzidine. Band patterns were photographically recorded. Results. Electrophoretic patterns of salivary hemeproteins of R. prolixus and R. colombiensis were able to unequivocally differentiate the two species. Conclusion. The usefulness of the starch gel technique for distinguishing between R. prolixus and R. colombiensis was demonstrated as an additional tool to the morphometric and molecular methods already in use for differentiation of these two species.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <B><FONT FACE="Arial" SIZE=4>    <P ALIGN="CENTER">Patrones electrofor&eacute;ticos de hemoprote&iacute;nas salivares (nitroforinas) de <I>Rhodnius colombiensis</I> y <I>Rhodnius prolixus</I> (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae)</P> </B></FONT><FONT FACE="Arial">    <P ALIGN="CENTER">Andrea Ar&eacute;valo <SUP>1</SUP>, Julio C&eacute;sar Carranza <SUP>1</SUP>, Felipe Guhl <SUP>2</SUP>, Gustavo Adolfo Vallejo <SUP>1</P>     <P>1</SUP> Laboratorio de Investigaciones en Parasitolog&iacute;a Tropical, Facultad de iencias, Universidad del Tolima, Ibagu&eacute;, Colombia.</P> <SUP>    <P>2</SUP> Centro de Investigaciones en Microbiolog&iacute;a y Parasitolog&iacute;a Tropical, Universidad de los Andes, Bogot&aacute; D.C., Colombia.</P> </FONT><FONT FACE="Arial" SIZE=3>    <P>Recibido: 23/03/06; aceptado: 08/09/06</P> </FONT><B><FONT FACE="Arial">    <P>Introducci&oacute;n.</B> La electroforesis de hemoprote&iacute;nas salivares en geles de almid&oacute;n es una t&eacute;cnica de reciente aplicaci&oacute;n para diferenciar especies del g&eacute;nero <I>Rhodnius</I> que poseen gran similaridad fenot&iacute;pica o para diferenciar subpoblaciones de la misma especie, separadas geogr&aacute;ficamente. De las 15 especies de <I>Rhodnius </I>descritas en latinoam&eacute;rica, por lo menos ocho han sido reportadas en el territorio colombiano.</P> <B>    <P>Objetivo.</B> Utilizar la electroforesis de hemoprote&iacute;nas salivares para diferenciar <I>R. prolixus</I> de <I>R. colombiensis</I>, dos especies con similaridad fenot&iacute;pica cuyos ciclos dom&eacute;stico y selv&aacute;tico se superponen en la cuenca alta del r&iacute;o Magdalena en la regi&oacute;n Central de Colombia.</P> <B>    <P>Materiales y M&eacute;todos.</B> El contenido de las gl&aacute;ndulas salivares de cada insecto se someti&oacute; a electroforesis en gel de almid&oacute;n utilizando buffer de glicina y revelado de las bandas con 3,3’,5,5’-tetrametilbenzidina. Los patrones de bandeo fueron registrados fotogr&aacute;ficamente.</P> <B>    <P>Resultados.</B> Usando esta t&eacute;cnica se observaron los perfiles electrofor&eacute;ticos de las hemoprote&iacute;nas salivares de <I>R. prolixus</I> y <I>R. colombiensis </I>los cuales permitieron su inequ&iacute;voca diferenciaci&oacute;n<I>.</I> </P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Conclusi&oacute;n.</B> Estos resultados demuestran la utilidad de la t&eacute;cnica para la diferenciaci&oacute;n entre <I>R. prolixus</I> y <I>R. colombiensis</I> en adici&oacute;n a m&eacute;todos morfom&eacute;tricos y moleculares previamente utilizados para diferenciar estas dos especies. </P> <B>    <P>Palabras clave:</B> <I>Rhodnius</I>, Triatominae, saliva, Colombia.</P> <B>    <P>Electrophoretic patterns of salivary hemeproteins (nitrophorines) of <I>Rhodnius colombiensis</I> and <I>R. prolixus</I> (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae)</P>     <P>Introduction. </B>Salivary hemeprotein electrophoresis in starch gels is a recent technique used for differentiation of <I>Rhodnius</I> species with great phenotypic similarity. Furthermore, populations of the same species can be differentiated from geographically separated locales. Of the 15 described <I>Rhodnius </I>species in Latin America, at least eight have been reported in Colombia. </P> <B>    <P>Objective. </B>To use the salivary hemeproteins electrophoresis for <I>R. prolixus</I> and <I>R. colombiensis</I> identification. These two species are phenotypically similar and have overlapping domestic and sylvatic cycles where they occur in the upper basin of the Magdalena river, Central Colombia.</P> <B>    <P>Material and methods.</B> The content of salivary glands of each insect was subjected to starch gel electrophoresis using glycine buffer, and the bands were revealed with 3,3’,5,5’-tetramethylbenzidine. Band patterns were photographically recorded.</P> <B>    <P>Results.</B> Electrophoretic patterns of salivary hemeproteins of <I>R. prolixus</I> and <I>R. colombiensis</I> were able to unequivocally differentiate the two species.</P> <B>    <P>Conclusion. </B>The usefulness of the starch gel technique for distinguishing between <I>R. prolixus</I> and <I>R. colombiensis</I> was demonstrated as an additional tool to the morphometric and molecular methods already in use for differentiation of these two species. </P> <B>    <P>Key words:</B> <I>Rhodnius</I>, Triatominae, saliva, Colombia.</P>     <P>La saliva de los insectos hemat&oacute;fagos presenta sustancias anticoagulantes, antihistam&iacute;nicas, vasodilatorias y antiplaquetarias que facilitan el proceso de alimentaci&oacute;n sobre el hu&eacute;sped vertebrado (1-4). En los triatominos se han encontrado varias sustancias relacionadas con estas funciones. En el caso del g&eacute;nero <I>Rhodnius</I>, hasta el momento se han reportado ocho prote&iacute;nas salivares: tres factores que contrarrestan la agregaci&oacute;n plaquetaria, llamados inhibidores de agregaci&oacute;n de <I>R. prolixus</I> (RPAI 1-3) (prote&iacute;nas lipocalinas) (4,5); una apirasa que se encarga de hidrolizar el ADP bloqueando la agregaci&oacute;n plaquetaria (4,6), y, por &uacute;ltimo, las nitroforinas (NPs), un grupo de cuatro hemoprote&iacute;nas denominadas NP1 a NP4 seg&uacute;n su relativa abundancia en las gl&aacute;ndulas salivares (7). Las nitroforinas se pueden agrupar en dos conjuntos con base en las relaciones de sus secuencias de amino&aacute;cidos; es as&iacute; como NP1 y NP4 son id&eacute;nticas en un 90%, y NP2 y NP3 son id&eacute;nticas en un 80% (4,7,8). Para <I>Cimex lectularius </I>de la familia Cimicidae se ha reportado otra nitroforina que, aun cuando no es significativamente similar a las de <I>R. prolixus </I>(familia Reduviidae), revelar&iacute;a una evoluci&oacute;n convergente entre estas hemoprote&iacute;nas (9,10). En <I>Rhodnius</I>, las NP transportan &oacute;xido n&iacute;trico e histamina a trav&eacute;s de su grupo hemo (Fe III), el cual es el sitio de enlace para ambas mol&eacute;culas (4,11-14). El &oacute;xido n&iacute;trico permite la vasodilataci&oacute;n e inhibe la agregaci&oacute;n plaquetaria (4,11,15). Por su parte, la uni&oacute;n de la histamina a las NP impide la respuesta de inflamaci&oacute;n en el hu&eacute;sped vertebrado (4,12,13). La NP2 o prolixin-S se encarga de bloquear la cascada de coagulaci&oacute;n, ya que evita que el factor X se convierta en el factor Xa (4,13,16). Por otro lado, se ha comprobado que las NP en <I>R. prolixus</I> son estadio espec&iacute;ficas, es decir, que puede presentarse una o faltar otra de un estadio a otro. Es as&iacute; como la NP2 est&aacute; presente desde el primer estadio ninfal (N1) hasta el adulto. En el primer estadio se han purificado, adem&aacute;s, dos hemoprote&iacute;nas salivares, la NP5 y la NP6, cuya cantidad va disminuyendo en las gl&aacute;ndulas salivares con las mudas sucesivas hasta ausentarse en la fase adulta. En el segundo estadio (N2) aparece la NP4. En el tercer estadio ninfal (N3) se presenta la NP1. Por ultimo, en el quinto estadio ninfal (N5) aparece la NP3, y a partir de este momento ya est&aacute;n presentes las cuatro nitroforinas, NP1 a NP4, que perduran en el adulto (17).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>En el g&eacute;nero <I>Rhodnius</I> existen varias especies epidemiol&oacute;gicamente importantes para la transmisi&oacute;n de los par&aacute;sitos <I>T. cruzi</I> y <I>T. rangeli</I>. Seg&uacute;n las caracter&iacute;sticas biol&oacute;gicas, ecol&oacute;gicas y etol&oacute;gicas de estos vectores, que suelen variar de una zona geogr&aacute;fica a otra, pueden considerarse como vectores primarios o secundarios, o estar en proceso de alcanzar este &uacute;ltimo nivel. Algunas especies del g&eacute;nero <I>Rhodnius</I> suelen ser fenot&iacute;picamente similares y, adem&aacute;s, ser simp&aacute;tricas en algunas zonas geogr&aacute;ficas. En los estudios de la epidemiolog&iacute;a y la biolog&iacute;a de los vectores y de los ciclos de transmisi&oacute;n de los par&aacute;sitos <I>T. cruzi</I> y <I>T. rangeli</I>, as&iacute; como en las encuestas entomol&oacute;gicas y en las campa&ntilde;as de control y prevenci&oacute;n vectorial, se han utilizado diferentes tipos de t&eacute;cnicas que han permitido distinguir la mayor&iacute;a de las especies pertenecientes a este g&eacute;nero, entre ellos la morfolog&iacute;a (18-20), las isoenzimas (21-23), la morfometr&iacute;a cuantitativa (23), el an&aacute;lisis cuantitativo de patrones de sensilias antenales (24), el an&aacute;lisis de secuencias de ADN mitocondrial (25,26) y el an&aacute;lisis de genitalia masculina (20,27); sin embargo, algunas veces no suelen ser muy efectivas, ya que no generan diferencias y, adem&aacute;s, algunas son dispendiosas y muy costosas.</P>     <P>Mediante la electroforesis de hemoprote&iacute;nas salivares es posible diferenciar especies fenot&iacute;picamente similares o poblaciones de una misma especie separadas por &aacute;reas geogr&aacute;ficas (28,29). Adem&aacute;s, los perfiles electrofor&eacute;ticos de las hemoprote&iacute;nas pueden reflejar distancias biogeogr&aacute;ficas entre poblaciones y revelar relaciones filogen&eacute;ticas entre las especies (28). Estas diferencias son considerablemente importantes para la epidemiolog&iacute;a de los vectores de <I>T. cruzi</I> (30) y <I>T. rangeli</I>, y ayudan a identificar las especies relacionadas en el ciclo de transmisi&oacute;n de un &aacute;rea geogr&aacute;fica espec&iacute;fica. Trabajos previos han mostrado que la diferenciaci&oacute;n morfol&oacute;gica de <I>R. colombiensis </I>y <I>R. prolixus</I> no es f&aacute;cil, tanto as&iacute; que durante varios a&ntilde;os a la especie <I>R. colombiensis</I> se le denomin&oacute; <I>R. prolixus</I> "forma Tolima" (31); posteriormente, a partir de estudios de isoenzimas, genitalia y genes ribosomales, se concluy&oacute; que se trataba de una especie diferente hoy denominada como <I>R. colombiensis </I>(20, 32). En el presente trabajo se detectaron diferencias por medio de los patrones electrofor&eacute;ticos de hemoprote&iacute;nas entre las especies <I>R. colombiensis</I> y <I>R. prolixus</I>, dos especies fenot&iacute;picamente similares y simp&aacute;tricas, ya que sus ciclos selv&aacute;tico y dom&eacute;stico se traslapan en la cuenca alta del R&iacute;o Magdalena. Estas especies se han considerado vectores importantes para la transmisi&oacute;n de <I>T. cruzi</I> y <I>T. rangeli</I> en esa zona geogr&aacute;fica. <I>R. colombiensis</I> presenta prevalencias de <I>T. cruzi</I> y <I>T. rangeli</I> del 45 y 28,6%, respectivamente (datos no publicados), situaci&oacute;n que configura un riesgo para la transmisi&oacute;n de <I>T. cruzi </I>por parte de este vector en la regi&oacute;n central de Colombia.</P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos</P> <I>    <P>Insectos</P> </B></I>    <P>Los triatominos fueron recolectados en el municipio de Coyaima, departamento del Tolima, Colombia. Los adultos de <I>R. colombiensis</I> fueron capturados en siete palmas de vino (<I>Attalea butyraceae</I>) y los de <I>R. prolixus</I> dentro de 10 viviendas humanas de las veredas Totarco Dinde y Chenche Cucal del municipio de Coyaima. Los insectos se mantuvieron a 28 ± 1°C, con humedad relativa de 75 a 80% y una fotoperiodicidad de 12/12 horas en una incubadora autom&aacute;tica B.O.D. Lab-Line, y fueron alimentados semanalmente sobre gallinas.</P>     <P>Para la determinaci&oacute;n de las especies se utiliz&oacute; la clave taxon&oacute;mica de Lent &amp; Wygodzinsky (1979) (18) y se realiz&oacute; amplificaci&oacute;n por reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) de genes ADNr siguiendo la metodolog&iacute;a descrita por Jaramillo <I>et al</I>. 2001 (32). </P> <B><I>    <P>Preparaci&oacute;n de la muestra y electroforesis</P> </B></I>    <P>Se disectaron 13 insectos adultos de <I>R. prolixus</I> y 13 de <I>R. colombiensis</I> y sus gl&aacute;ndulas salivares fueron lavadas en soluci&oacute;n salina est&eacute;ril al 0,9%. Las gl&aacute;ndulas salivares de cada insecto se maceraron y homogeneizaron con 10 ml de <I>buffer</I> de corrido (glicina 0,15 M/NaOH, pH 9,5). Una vez homogeneizadas, el contenido de las gl&aacute;ndulas fue absorbido en hilos de algod&oacute;n est&eacute;riles de 0,9 cm y colocados en las canaletas del gel de almid&oacute;n al 8% preparado con <I>buffer </I>de corrido (glicina 0,15M/NaOH, pH 9,5) diluido 1:10. La electroforesis se llev&oacute; a cabo a 300 voltios por cuatro horas. Para el revelado, los geles se sumergieron en una soluci&oacute;n de 0,3 mg/ml de 3,3’,5,5’-tetrametilbenzidina en una mezcla de etanol, &aacute;cido ac&eacute;tico y agua en proporci&oacute;n 1:1:1. Luego se transfirieron a una soluci&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 2% hasta la aparici&oacute;n de las bandas (28,29). Con fines comparativos, se examinaron los patrones electrofor&eacute;ticos de las hemoprote&iacute;nas de dos adultos de <I>R. pallescens</I>.</P>     <P>El n&uacute;mero de bandas generado en cada carril del gel fue determinado en el momento inicial en que se desarrolla la coloraci&oacute;n, pues a medida que transcurre el tiempo, las bandas pierden resoluci&oacute;n. A partir de las fotograf&iacute;as y del n&uacute;mero de bandas observadas al inicio de la coloraci&oacute;n se obtuvieron diagramas que representan el n&uacute;mero de bandas en cada carril. </P> <B><I>    <P>An&aacute;lisis de datos</P> </B></I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>De conformidad con el an&aacute;lisis propuesto por Soares <I>et al</I>. (29), se calcul&oacute; el &iacute;ndice de polimorfismo de hemoprote&iacute;nas (P) para cada especie, <I>p</I> = 1- S(X2), donde X es igual a la frecuencia absoluta de cada perfil de hemoprote&iacute;nas en la especie sobre el n&uacute;mero total de insectos examinados. </P> <B>    <P>Resultados</P> </B>    <P>El n&uacute;mero de perfiles y el patr&oacute;n de bandeo obtenido a trav&eacute;s de la electroforesis de hemoprote&iacute;nas salivares en geles delgados de almid&oacute;n para <I>R. colombiensis</I> y <I>R. prolixus</I> permiti&oacute; establecer una clara diferencia entre las dos especies (</FONT><A HREF="#figura1">figura 1</A><FONT FACE="Arial"> y </FONT><A HREF="#figura2">figura 2</A><FONT FACE="Arial">). <I>R. prolixus</I> present&oacute; cinco perfiles en el corrido electrofor&eacute;tico, designados desde la A hasta la E en las </FONT><A HREF="#figura1">figura 1</A><FONT FACE="Arial"> y </FONT><A HREF="#figura2">figura 2</A><FONT FACE="Arial">; por otro lado, <I>R. colombiensis</I> mostr&oacute; tres perfiles (A, B y C) (</FONT><A HREF="#figura1">figura 1</A><FONT FACE="Arial"> y </FONT><A HREF="#figura2">figura 2</A><FONT FACE="Arial">) <I>R. prolixus</I> present&oacute; un promedio de 3,1 bandas, con un m&aacute;ximo de cinco y un m&iacute;nimo de dos; en <I>R. colombiensis </I>solamente se observaron dos bandas en todos las insectos examinados (</FONT><A HREF="#figura1">figura 1</A><FONT FACE="Arial"> y </FONT><A HREF="#figura2">figura 2</A><FONT FACE="Arial">). Adem&aacute;s, se observ&oacute; que las hemoprote&iacute;nas salivares de <I>R. colombiensis</I> tienen polaridad negativa, pues corrieron hacia el polo positivo. En <I>R. prolixus,</I> las hemoprote&iacute;nas presentan carga positiva y negativa, pues en el corrido electrofor&eacute;tico fue evidente una atracci&oacute;n hacia ambos polos (</FONT><A HREF="#figura1">figura 1</A><FONT FACE="Arial"> y </FONT><A HREF="#figura2">figura 2</A><FONT FACE="Arial">).</P>     <P><A NAME="figura1"></A></P>  </FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v27s1/1sa15i1.jpg"></P>     <P><A NAME="figura2"></A></P>     <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v27s1/1sa15i2.jpg"></P>  <FONT FACE="Arial">    <P>El &iacute;ndice de polimorfismo de las hemoprote&iacute;nas salivares (<I>p</I>) para las dos especies estudiadas fue de <I>p</I> = 0,7577 en <I>R. prolixus </I>y en <I>R. colombiensis de</I> <I>p</I> = 0,6156.</P> <B>    <P>Discusi&oacute;n</P> </B><I>    <P>R. prolixus </I>present&oacute; un &iacute;ndice de polimorfismo de hemoprote&iacute;nas (<I>p</I>) alto (<I>p</I> = 0,7577) con respecto a <I>R. colombiensis, </I>que present&oacute; un &iacute;ndice inferior (<I>p</I> = 0,6156). Para Soares <I>et al</I>., (29) el &iacute;ndice de polimorfismo de <I>R. prolixus</I> present&oacute; un valor <I>p</I> = 0,7300, inferior en 0,0277 al valor obtenido para esta especie (<I>p</I> = 0,7577) en el presente trabajo. Es probable que esta diferencia se deba a la procedencia de ambas poblaciones, ya que la poblaci&oacute;n utilizada por Soares <I>et al</I>. (29) era originaria de Venezuela, mientras que los <I>R. prolixus</I> utilizados en el presente estudio se recolectaron en la regi&oacute;n central de Colombia. Por otro lado, los perfiles electrofor&eacute;ticos de las hemoprote&iacute;nas pueden reflejar distancias biogeogr&aacute;ficas entre las poblaciones estudiadas (28). El valor (<I>p</I>) de <I>R. colombiensis</I> (<I>p</I> = 0,6156) se acerca mucho al &iacute;ndice de polimorfismo de <I>R. pallescens</I> (<I>p</I> = 0,6524) (29), especies &eacute;stas morfol&oacute;gicamente similares (20,31). Estos valores estar&iacute;an reflejando el parentesco filogen&eacute;tico entre estas dos especies pertenecientes al grupo "pallescens", conformado por <I>R. pallescens</I>, <I>R. colombiensis</I> y <I>R. ecuadoriensis</I> que representa un <I>cline</I> evolutivo desde el norte de Colombia hasta el sur de la cordillera de los Andes, en donde finalmente se origin&oacute; <I>R. ecuadoriensis</I> en el Ecuador y norte del Per&uacute; (31).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La electroforesis de hemoprote&iacute;nas salivares es una t&eacute;cnica f&aacute;cil y r&aacute;pida que permite diferenciar especies del g&eacute;nero <I>Rhodnius</I>, al cual pertenecen especies epidemiol&oacute;gicamente significativas en la transmisi&oacute;n de los par&aacute;sitos <I>T. cruzi</I> y <I>T. rangeli</I> en muchas regiones de Colombia. Adem&aacute;s, la t&eacute;cnica podr&iacute;a ser &uacute;til en casos en que no se pueda diferenciarlas debido a la similitud morfol&oacute;gica de las especies.</P>     <P>Por otro lado, podr&iacute;a ser una herramienta &uacute;til para los trabajos de encuestas entomol&oacute;gicas y en los programas de control y prevenci&oacute;n vectorial, pues mediante ella se podr&iacute;an identificar las especies de una manera f&aacute;cil y r&aacute;pida cuando se encuentren circulando en los ciclos de transmisi&oacute;n silvestre o dom&eacute;stico en una regi&oacute;n geogr&aacute;fica espec&iacute;fica. Ello tambi&eacute;n ser&iacute;a &uacute;til cuando se van a emplear estrategias de control vectorial, ya que pueden existir especies silvestres que est&eacute;n invadiendo las viviendas, como en el caso de <I>R. colombiensis</I> en la cuenca alta del r&iacute;o Magdalena (regi&oacute;n central de Colombia), cuyas ninfas de cuarto, quinto estadio, hembras y machos han sido encontradas durante trabajos previos en viviendas y construcciones peridomiciliares de zonas en donde se adelantan programas de control tendientes a eliminar a <I>R.</I> <I>prolixus</I>, el principal vector domiciliado en Colombia (datos no publicados). La t&eacute;cnica de electroforesis de hemoprote&iacute;nas es una herramienta que permite diferenciar especies de triatominos de una forma f&aacute;cil, sin embargo, es importante durante el procedimiento de coloraci&oacute;n registrar inmediatamente el n&uacute;mero original de las bandas, pues la intensidad de las mismas va disminuyendo con el tiempo. En conclusi&oacute;n, estos resultados demuestran la utilidad de la t&eacute;cnica para la diferenciaci&oacute;n entre <I>R. prolixus</I> y <I>R. colombiensis</I> y como complemento de m&eacute;todos morfom&eacute;tricos y moleculares previamente utilizados para diferenciarlas. </P> <B>    <P>Conflicto de intereses</P> </B>    <P>El primer autor y los coautores del presente art&iacute;culo declaramos que no ten&iacute;amos conflictos de intereses de orden acad&eacute;mico, institucional u operacional en el momento de realizaci&oacute;n de la investigaci&oacute;n. </P> <B>    <P>Financiaci&oacute;n</P> </B>    <P>Este trabajo recibi&oacute; financiaci&oacute;n del Instituto Colombiano "Francisco Jos&eacute; de Caldas" (Colciencias), proyecto 105-05-279-99, y del Fondo de Investigaciones de la Universidad del Tolima. Tambi&eacute;n recibi&oacute; apoyo internacional de la Red ECLAT (European Community–Latin-American Network for Research on the Biology and Control of Triatominae). </P> </FONT><FONT FACE="Arial" SIZE=3>    <P>Correspondencia:     <BR>Gustavo Adolfo Vallejo, Laboratorio de Investigaciones en Parasitolog&iacute;a Tropical, Facultad de Ciencias, Universidad del Tolima, Ibagu&eacute;, Colombia. Fax (+57-8) 2669176.     <BR><A HREF="mailto:gvallejo@ut.edu.co">gvallejo@ut.edu.co</A></P> <B><FONT FACE="Arial">    <P>Referencias</P> </B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P>1. <B>Stark KR, James AA.</B> The salivary glands of disease vectors. En: Beaty BJ, Marquardt WC, editors. The biology of disease vectors. Colorado: Colorado University Press; 1996. p. 333-48.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0120-4157200700050001500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>2. <B>Ribeiro JM.</B> Role of saliva in blood feeding by arthropods. Annu Rev Entomol 1987;32:463-78.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0120-4157200700050001500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>3. <B>Law JH, Ribeiro JM, Wells MA.</B> Biochemical insights derived from diversity in insects. Annu Rev Biochem<I> </I>1992;61:87-111.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-4157200700050001500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>4. <B>Montfort WR, Weichsel A, Andersen JF.</B> Nitrophorins and related antihemostatic lipocalins from <I>Rhodnius prolixus</I> and other blood-sucking arthropods. Biochim Biophys Acta 2000;1482:110-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-4157200700050001500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>5. <B>Francischetti IM, Ribeiro JM, Champagne D, Andersen J.</B> Purification, cloning, expression and mechanism of action of a novel platelet aggregation inhibitor from salivary gland of the blood-sucking bug, <I>Rhodnius prolixus</I>. J Biol Chem 2000;275:12639-50.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-4157200700050001500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>6. <B>Sarkis JJ, Guimar&atilde;es JA, Ribeiro JM.</B> Salivary apyrase of <I>Rhodnius prolixus</I>. Kinetics and purification. Biochem J 1986;233:885-91.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-4157200700050001500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>7. <B>Champagne DE, Nussenzveig RH, Ribeiro JM.</B> Purification, partial characterization and cloning of nitric oxide-carrying hemeproteins (nitrophorins) from salivary glands of the blood-sucking insect <I>Rhodnius prolixus</I>. J Biol Chem<I> </I>1995;270:8691-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-4157200700050001500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>8. <B>Andersen JF, Montfort WR. </B>The crystal structure of Nitrophorin 2. A trifunctional antihemostatic protein from the saliva of <I>Rhodnius prolixus</I>. J Biol Chem 2000;275:30496-503.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-4157200700050001500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>9. <B>Valenzuela JG, Walker FA, Ribeiro JM.</B> A salivary nitrophorin (nitric-oxide-carrying hemoprotein) in the bedbug <I>Cimex lectularius</I>. J Exp Biol 1995;198:1519-26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-4157200700050001500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>10. <B>Valenzuela JG, Ribeiro JM.</B> Purification and cloning of the salivary nitrophorin from the hemipteran <I>Cimex lectularius</I>. J Exp Biol 1998;201:2659-64.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-4157200700050001500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>11. <B>Ribeiro JM, Hazzard JM, Nussenzveig RH, Champagne DE, Walker FA.</B> Reversible binding of nitric oxide by a salivary heme protein from a bloodsucking insect. Science 1993;260:539-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-4157200700050001500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>12. <B>Ribeiro JM, Walker FA.</B> High affinity histamine-binding and antihistaminic activity of the salivary nitric oxide-carrying heme protein (nitrophorin) of <I>Rhodnius prolixus</I>. J Exp Med 1994;180:2251-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-4157200700050001500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>13. <B>Ascenzi P, Nardini M, Bolognesi M, Montfort WR. </B>Nitrophorins. Lipocalin-based heme proteins transporting nitric oxide. Biochem Mol Biol Educ 2002;30:68-71.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-4157200700050001500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>14. <B>Walker FA. </B>Nitric oxide interaction with insect nitrophorins and thoughts on the electron configuration of the {FeNO}6 complex. J Inorg Biochem 2005;99: 216-36.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-4157200700050001500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>15. <B>Moncada S, Radomski MW, Palmer RM.</B> Endothelium-derived relaxing factor: identification as nitric oxide and role in the control of vascular tone and platelet function. Biochem Pharmacol 1988;37:2495-501.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-4157200700050001500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>16. <B>Ribeiro JM, Schneider M, Guimar&atilde;es JA.</B> Purification and characterization of prolixin S (nitrophorin 2), the salivary anticoagulant of the blood-sucking bug <I>Rhodnius prolixus</I>. Biochem J 1995;308:243-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-4157200700050001500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>17. <B>Moreira FM, Coelho HS, Zingali RB, Oliveira PL, Masuda H.</B> Changes in salivary nitrophorin profile during the life cycle of the blood-sucking bug <I>Rhodnius prolixus</I>. Insect Biochem Mol Biol 2003;33:23-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-4157200700050001500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>18. <B>Lent H, Wygodzinsky P.</B> Revision of Triatominae (Hemiptera, Reduviidae), and their significance as vectors of Chagas’ disease. Bull Am Mus Nat Hist 1979;163:123-520.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-4157200700050001500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>19. <B>Carcavallo R, Gal&iacute;ndez I, Jurberg J, Lent H.</B> Atlas of Chagas’ disease vectors in the Americas. R&iacute;o de Janeiro: Editora Fiocruz; 1998. p.53-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-4157200700050001500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>20. <B>Moreno J, Galv&atilde;o C, Jurberg J.</B> <I>Rhodnius colombiensis sp. n.</I> da Col&ocirc;mbia com quadros comparativos entre estructuras f&aacute;licas do g&eacute;nero <I>Rhodnius </I>Stal. 1859 (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae). Entomol Vect 1999;6:601-17.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-4157200700050001500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>21. <B>Harry M, Gal&iacute;ndez I, Cariou ML.</B> Isoenzyme variability and differentiation between <I>Rhodnius prolixus</I>, <I>R. robustus</I> and <I>R. pictipes</I>, vectors of Chagas disease in Venezuela. Med Vet Entomol 1992;6:37-43.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-4157200700050001500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>22. <B>Chavez T, Moreno J, Dujardin JP.</B> Isoenzyme electrophoresis of <I>Rhodnius</I> species: a phenetic approach to relationships within the genus. AnnTrop Med Parasitol 1999;93:299-307.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-4157200700050001500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>23. <B>Dujardin JP, Chavez T, Moreno JM, Machane M, Noireau F, Schofield CJ.</B> Comparison of izoenzyme electrophoresis and morphometric analysis for phylogenetic reconstruction of the Rhodniini (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae). 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