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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Seguimiento de paciente con enfermedad de Chagas y trasplante de corazón mediante las PCR S35-S36 y TcH2AF-R]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Using S35-S36 and TcH2AF-R primer-based PCR tests to follow-up a Chagas´ disease patient who had undergone a heart transplant]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. Cardiomyopathy is the most common clinical form of Chagas´ disease in Colombia, and one treatment option is a heart transplant. Tracking the behavior of the Chagas´ parasite, Trypanosoma cruzi, is a priority due to the risk of post-transplant reactivation of the infection. Objective. A case is presented of a patient who had suffered from dilated chagasic cardiopathy and cardiac failure, and had subsequently undergone heart transplant. The case was monitored by PCR, histopathological and echocardiographic examinations. Materials and methods. Blood samples were drawn before and after the transplant, and post-transplant endomyocardial biopsies were taken. The extracted DNA was amplified with the TcH2AF-R and S35-S36 primers. Parasitemia was examined by the microhematocrit test. In addition, histopathological studies determined the parasite presence and transplant rejection status. Echocardiograms were administered to evaluate cardiac function. Results. Of the blood samples taken 83 and 48 days pre-transplant, the latter was positive by the S35-S36 PCR test. PCR tests in blood with both primers were negative up to the second month post-transplant. However, both PCR tests were positive by the third month post-transplant. Thereupon, the patient was treated with nifurtimox. Both tests presented negative results in blood 35 days after treatment was started and remained negative thereafter at 0, 3, 10 and 12 months post-treatment. The pathology, microhematocrit, and PCR test results from biopsies were negative on all the specified dates. Conclusions. PCR tests were used as indicators of a reactivation of trypanosomid infection in the patient. After treatment administration, PCR tests became negative. The patient´s clinical evolution was favorable.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">      <p>PRESENTACI&Oacute;N DE CASO</p>      <p><font face="verdana" size="4">    <center><b>Seguimiento de paciente con enfermedad de Chagas y trasplante de coraz&oacute;n mediante las PCR S35-S36 y TcH2AF-R</b></center></font></p>      <p>    <center>Paula Ximena Pav&iacute;a<sup>1</sup>, Nubia Luc&iacute;a Roa<sup>2</sup>, Ana Mar&iacute;a Uribe<sup>3</sup>, Concepci&oacute;n Judith Puerta<sup>1</sup></center></p> <sup>1</sup> Laboratorio de Parasitolog&iacute;a Molecular, Departamento de Microbiolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, D.C., Colombia</p> <sup>2</sup> Cl&iacute;nica de Falla y Trasplante Cardiaco, Departamento de Cardiolog&iacute;a, Hospital Universitario San Ignacio, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, D.C., Colombia</p> <sup>3</sup> Laboratorio de Patolog&iacute;a, Hospital Universitario San Ignacio, Pontificia Universidad, Javeriana, Bogot&aacute;, D.C., Colombia    <br>      <p>Recibido: 09/08/10; aceptado:11/02/11 </p>  <hr size="1">     <p><b>Introducci&oacute;n.</b></b>      <p>La cardiomiopat&iacute;a es la forma cl&iacute;nica m&aacute;s com&uacute;n de la enfermedad de Chagas en Colombia, siendo el trasplante una opci&oacute;n para su tratamiento. Debido al riesgo de reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n posterior al trasplante, es prioritario vigilar el comportamiento del par&aacute;sito.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Objetivo. </b>Presentar el caso de un paciente con cardiopat&iacute;a chag&aacute;sica dilatada y falla cardiaca, a quien se le practic&oacute; trasplante de coraz&oacute;n y se le hizo seguimiento mediante PCR, an&aacute;lisis histopatol&oacute;gicos y ecocardiogr&aacute;ficos.</p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos. </b>Se tomaron muestras de sangre antes de la intervenci&oacute;n y despu&eacute;s de ella y de biopsias endomioc&aacute;rdicas posteriores al trasplante. El ADN extra&iacute;do fue amplificado con los iniciadores TcH2AF-R y S35-S36. La parasitemia se examin&oacute; mediante la t&eacute;cnica de microhematocrito. Se practicaron estudios histopatol&oacute;gicos para determinar la presencia del par&aacute;sito o el rechazo del trasplante y, ecocardiogr&aacute;ficos, para evaluar la funci&oacute;n cardiaca.</p>      <p><b>Resultados. </b>De las muestras de sangre tomadas a los 83 y 48 d&iacute;as previos al trasplante, la &uacute;ltima fue positiva por la PCR S35-S36. Hasta el segundo mes despu&eacute;s del trasplante, ambas PCR fueron negativas. Al tercer mes despu&eacute;s del trasplante, ambas PCR fueron positivas, por lo cual se inici&oacute; tratamiento con nifurtimox. Tras 35 d&iacute;as de haberse iniciado el tratamiento, ambas pruebas presentaron resultados negativos, al igual que las tomadas a los 0, 3, 10 y 12 meses posteriores. Los resultados de la histopatolog&iacute;a, del microhematocrito y de las PCR de las biopsias, fueron negativos en todas las fechas.</p>      <p><b>Conclusiones. </b>Las PCR permitieron sospechar la reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n en el paciente, se le administr&oacute; el tratamiento y posterioremente las pruebas se tornaron negativas. La evoluci&oacute;n cl&iacute;nica del paciente ha sido favorable.</p>      <p><b>Palabras clave: </b><i>Trypanosoma cruzi</i>, enfermedad de Chagas, trasplante, reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR), ecocardiograf&iacute;a, cardiomiopat&iacute;a dilatada.</p>  <hr size="1">      <p><font size="3"><b>Using S35-S36 and TcH2AF-R primer-based PCR tests to follow-up a Chagas&acute; disease patient who had undergone a heart transplant</b></font></p>      <p><b>Introduction. </b>Cardiomyopathy is the most common clinical form of Chagas&acute; disease in Colombia, and one treatment option is a heart transplant. Tracking the behavior of the Chagas&acute; parasite, <i>Trypanosoma cruzi</i>, is a priority due to the risk of post-transplant reactivation of the infection.</p>      <p><b>Objective. </b>A case is presented of a patient who had suffered from dilated chagasic cardiopathy and cardiac failure, and had subsequently undergone heart transplant. The case was monitored by PCR, histopathological and echocardiographic examinations.</p>      <p><b>Materials and methods. </b>Blood samples were drawn before and after the transplant, and post-transplant endomyocardial biopsies were taken. The extracted DNA was amplified with the TcH2AF-R and S35-S36 primers. Parasitemia was examined by the microhematocrit test. In addition, histopathological studies determined the parasite presence and transplant rejection status. Echocardiograms were administered to evaluate cardiac function.</p>      <p><b>Results. </b>Of the blood samples taken 83 and 48 days pre-transplant, the latter was positive by the S35-S36 PCR test. PCR tests in blood with both primers were negative up to the second month post-transplant. However, both PCR tests were positive by the third month post-transplant. Thereupon, the patient was treated with nifurtimox. Both tests presented negative results in blood 35 days after treatment was started and remained negative thereafter at 0, 3, 10 and 12 months post-treatment. The pathology, microhematocrit, and PCR test results from biopsies were negative on all the specified dates.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Conclusions. </b>PCR tests were used as indicators of a reactivation of trypanosomid infection in the patient. After treatment administration, PCR tests became negative. The patient&acute;s clinical evolution was favorable.</p>      <p><b>Key words: </b><i>Trypanosoma cruzi</i>, Chagas disease, transplantation, polymerase chain reaction, echocardiography; cardiomiopathy, dilated.</p>  <hr size="1">     <p>La enfermedad de Chagas constituye uno de los problemas de salud p&uacute;blica m&aacute;s importante en Centroam&eacute;rica y Suram&eacute;rica. Alrededor de 8 millones de personas se encuentran infectadas, se presentan, aproximadamente, 41.200 nuevos casos por a&ntilde;o y 108 millones de individuos se encuentran en riesgo de adquirir la enfermedad (1). En Colombia, actualmente se estima que existen, aproximadamente, 436.000 infectados, de los cuales, aproximadamente, 131.474 cursan con cardiopat&iacute;a chag&aacute;sica (2).</p>      <p>Durante el curso de la infecci&oacute;n por <i>Trypanosoma cruzi</i>, 10 a 30 % de las personas con serolog&iacute;a positiva pueden presentar cambios electro-cardiogr&aacute;ficos 10 a 20 a&ntilde;os despu&eacute;s de la infecci&oacute;n y 10% de los individuos pueden morir por la evoluci&oacute;n a cardiopat&iacute;a chag&aacute;sica cr&oacute;nica (3,4). En Colombia, la forma m&aacute;s com&uacute;n de la enfermedad es la cardiopat&iacute;a, caracterizada por arritmias leves a graves, miocarditis, cardiomiopat&iacute;a dilatada, falla cardiaca y muerte s&uacute;bita (5). La fisiopatolog&iacute;a de la cardiomiopat&iacute;a dilatada es compleja y parcialmente comprendida. Los pacientes con esta afecci&oacute;n pueden progresar a insuficiencia cardiaca resistente a un manejo m&eacute;dico &oacute;ptimo, correspondiente al estadio D de la falla cardiaca (6), y requerir de trasplante cardiaco (7). Despu&eacute;s del trasplante, los pacientes corren gran riesgo de presentar reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n de manera temprana, debido a las condiciones de inmunosupresi&oacute;n a que se ven sometidos para tal procedimiento (8-10).</p>      <p>El seguimiento del paciente con enfermedad de Chagas y trasplante para identificar reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n, se hace principalmente mediante an&aacute;lisis parasitol&oacute;gicos directos, como microhematocrito, hemocultivo y xenodiagn&oacute;stico, estudio histopatol&oacute;gico y pruebas de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) en sangre o tejidos, siendo el xenodiagn&oacute;stico y el hemocultivo los menos utilizados por su menor sensibilidad y tiempo requerido no menor de 30 d&iacute;as para obtener el resultado (11). El estudio histopatol&oacute;gico es uno de los m&eacute;todos m&aacute;s utilizados para detectar <i>T. cruzi </i>en lesiones del tejido cardiaco y otros. Sin embargo, no siempre se observan formas intracelulares del par&aacute;sito (12). La PCR ha sido utilizada para detectar <i>T. cruzi </i>en tejidos de pacientes con enfermedad de Chagas, dadas sus ventajas en t&eacute;rminos de sensibilidad y especificidad (9,12-15).</p>      <p>En este trabajo se presenta el seguimiento de un paciente con cardiomiopat&iacute;a chag&aacute;sica sometido a trasplante cardiaco, en quien se sigui&oacute; el comportamiento del par&aacute;sito mediante las PCR TcH2AF-R y S35-S36, espec&iacute;ficas para <i>T. cruzi </i>(16-20).</p>      <p><b>Presentaci&oacute;n del caso</b></p>      <p> Se trata de una mujer de 55 a&ntilde;os de edad natural de Soat&aacute; (Boyac&aacute;) con diagn&oacute;stico de enfermedad de Chagas confirmado por pruebas serol&oacute;gicas y cardiomiopat&iacute;a cr&oacute;nica dilatada, que consult&oacute; al servicio de urgencias del Hospital Universitario San Ignacio de Bogot&aacute;, en noviembre de 2007, por s&iacute;ndrome de falla cardiaca aguda con compromiso grave de la fracci&oacute;n de eyecci&oacute;n (28 %) de tres a&ntilde;os de evoluci&oacute;n.</p>      <p>Se procedi&oacute; a practicar trasplante cardiaco en mayo del 2008. Para dicho procedimiento, se hizo inducci&oacute;n con ciclosporina oral, daclizumab y metilprednisolona. En el periodo posoperatorio la paciente recibi&oacute; como inmunomoduladores prednisolona, ciclosporina y micofenolato de mofetilo, y por protocolo, recibi&oacute; profilaxis para infecciones por citomegalovirus, <i>Pneumocystis jirovecii </i>y <i>Aspergillus fumigatus</i>, con valganciclovir, trimetoprim-sulfametoxazol e itraconazol por los primeros tres meses. </p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b><i>Muestras analizadas</i></b></p>      <p> Se tomaron dos muestras de sangre antes de la intervenci&oacute;n, a los 83 y 48 d&iacute;as antes del trasplante. Las muestras de sangre y de la biopsia de endomiocardio se tomaron 17 y 25 d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante, quincenalmente durante los siguientes dos meses, mensualmente hasta los seis meses, y a los 9, 16 y 18 meses. Ambos tipos de muestras fueron analizadas mediante las PCR TcH2AF-R y S35-S36. Las muestras de sangre fueron analizadas tambi&eacute;n mediante la t&eacute;cnica de microhematocrito para la b&uacute;squeda del par&aacute;sito.</p>      <p><b><i>An&aacute;lisis histopatol&oacute;gico</i></b></p>      <p> El an&aacute;lisis histopatol&oacute;gico de las biopsias endomioc&aacute;rdicas se hizo en el Laboratorio de Patolog&iacute;a del Hospital Universitario San Ignacio, mediante las t&eacute;cnicas de hematoxilina y eosina convencional y coloraci&oacute;n de tricr&oacute;mico. El rechazo en la histopatolog&iacute;a se determin&oacute; de acuerdo con la clasificaci&oacute;n de la <i>International Society for Heart and Lung Transplantation </i>(21).</p>      <p><b><i>An&aacute;lisis por reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa</i></b></p>      <p> El ADN de 1 ml de sangre fue extra&iacute;do por el m&eacute;todo de triple fenol-cloroformo-alcohol isoam&iacute;lico, seguido de la precipitaci&oacute;n de ADN con etanol absoluto y, aproximadamente, el de 10 Î¼m de las biopsias, por el m&eacute;todo de <i>salting out </i>(22). El ADN obtenido, concentrado y diluido 1/5, 1/10, 1/20 y 1/40, fue amplificado con los iniciadores TcH2AF (5&acute;-GAGAGTGATCGTGGGAGAGCA-3&acute;) y TcH2AR (5&acute;-AGTGGCAGACTTTGGGGTC-3&acute;), los cuales amplifican una banda de 234 pb del elemento SIRE ubicado en la regi&oacute;n 3&acute; no codificante de la unidad de 1,2 kb del gen <i>histona H2A </i>(16), y los iniciadores S35 (5&acute;-AAATAATGTACGGGTGGAGATGCATGA-3&acute;) y S36 (5&acute;-GGGTTCGATTGGGGTTGGTGT-3&acute;), los cuales amplifican un fragmento de 330 pb correspondiente a la regi&oacute;n variable de los mini-c&iacute;rculos de <i>T. cruzi </i>(20).</p>      <p>Las reacciones de amplificaci&oacute;n se llevaron a cabo de acuerdo con lo descrito por Pav&iacute;a <i>et al</i>. (2007), utilizando los siguientes controles: control negativo, en el que se adicion&oacute; agua en lugar de ADN; control positivo, ADN de <i>T. cruzi </i>de formas de cultivo; control humano, ADN de un individuo sano, y control de la extracci&oacute;n del ADN, en el cual se utiliz&oacute; agua en lugar de sangre durante el procedimiento de extracci&oacute;n (17). Los productos de amplificaci&oacute;n se analizaron mediante electroforesis en geles de agarosa al 1,5 % te&ntilde;idos con bromuro de etidio. Para descartar la presencia de inhibidores de la PCR en las muestras negativas, a &eacute;stas se les adicion&oacute; ADN del par&aacute;sito, y luego se hizo la respectiva amplificaci&oacute;n.</p>      <p><b>Resultados</b></p>      <p> <b><i>Seguimiento de la reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n por T. cruzi despu&eacute;s del trasplante</i></b></p>      <p> Antes del trasplante, se le tomaron al paciente dos muestras de sangre en fechas diferentes, y solamente la &uacute;ltima muestra (48 d&iacute;as antes del trasplante) fue positiva con los iniciadores S35-S36. Hasta el segundo mes despu&eacute;s del trasplante, las PCR en sangre con ambos iniciadores presentaron resultados negativos. Al tercer mes posterior al trasplante, ambas PCR, TcH2AF-R y S35-S36, fueron positivas en sangre, observ&aacute;ndose los productos de amplificaci&oacute;n espec&iacute;ficos de 234 y 330 pb, respectivamente (<a href="#figura1">figura 1</a>).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="figura1"><img src="img/revistas/bio/v31n2/2a04i1.jpg"></a></center></p>      <p>Con base en estos resultados, se formul&oacute; tratamiento con nifurtimox (Lampit &reg;), 8 a 10 mg/kg, durante 60 d&iacute;as, y tras 18 d&iacute;as de haberlo iniciado, ambas PCR continuaron positivas en sangre, con resultados negativos 27 d&iacute;as m&aacute;s tarde. Se continu&oacute; el seguimiento del paciente, y se observ&oacute; al finalizar el tratamiento y a los 3, 10 y 12 meses despu&eacute;s de finalizado (270, 480 y 540 d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante) que ambas PCR permanecieron negativas en sangre (<a href="#figura2">figura 2</a>). Los resultados de microhematocrito, histopatolog&iacute;a y PCR de la biopsia endomioc&aacute;rdica, fueron negativos para <i>T. cruzi </i>en todas las fechas.</p>      <p>    <center><a name="figura2"><img src="img/revistas/bio/v31n2/2a04i2.jpg"></a></center></p>      <p><b><i>Hallazgos histopatol&oacute;gicos</i></b></p>      <p> Las biopsias mostraron presencia de infiltrado inflamatorio mononuclear, difuso, en los d&iacute;as 90 y 120 despu&eacute;s del trasplante, lo cual se clasifica como rechazo celular agudo leve (1R).</p>      <p>En el estudio histopatol&oacute;gico, a los 150 y 180 d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante, se observ&oacute; aumento del infiltrado inflamatorio, con un foco agresivo que lesionaba la fibra mioc&aacute;rdica, lo que se interpret&oacute; como rechazo celular agudo leve con mayor inflamaci&oacute;n que la vista en las biopsias anteriores. Con la coloraci&oacute;n de tricr&oacute;mico se identific&oacute; fibrosis importante, la cual no se esperaba ver de acuerdo con el tiempo de evoluci&oacute;n del trasplante. Las biopsias de las siguientes fechas (270 y 360 d&iacute;as) fueron calificadas como 1R y 0R, respectivamente (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>). No se identific&oacute; el microorganismo en ninguna de las biopsias analizadas.</p>      <p>    <center><a name="cuadro1"><img src="img/revistas/bio/v31n2/2a04t1.gif"></a></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Hallazgos ecocardiogr&aacute;ficos </i></b></p>      <p> En el seguimiento ecocardiogr&aacute;fico no se encontr&oacute; alteraci&oacute;n hasta el estudio realizado a los 75 d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante, cuando se presentaron por primera vez insuficiencia mitral leve, dilataci&oacute;n del ventr&iacute;culo derecho y ligera disminuci&oacute;n de la fracci&oacute;n de eyecci&oacute;n del ventr&iacute;culo izquierdo (50 %). En los estudios practicados posteriormente se encontr&oacute; aumento de la insuficiencia mitral hasta GIII/IV y fracci&oacute;n de eyecci&oacute;n del ventr&iacute;culo izquierdo adecuada. En el estudio practicado a los 180 d&iacute;as, se encontr&oacute; disminuci&oacute;n de la fracci&oacute;n de eyecci&oacute;n a 45 %, con persistencia de la insuficiencia mitral GIII/IV. En los controles a los 270 y 360 d&iacute;as, se encontr&oacute; deterioro en la fracci&oacute;n de eyecci&oacute;n (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>).</p>      <p><b><i>Alteraciones cl&iacute;nicas despu&eacute;s del trasplante </i></b></p>      <p> El paciente tuvo una evoluci&oacute;n cl&iacute;nica adecuada hasta los 90 d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante, sin signos de falla cardiaca, miocarditis, fiebre ni n&oacute;dulos subcut&aacute;neos que pudieran asociarse con reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n o rechazo agudo. A los 90 d&iacute;as se encontr&oacute; leve congesti&oacute;n sist&eacute;mica, dada por hepatomegalia e ingurgitaci&oacute;n yugular, sin disnea. En las siguientes consultas no se encontr&oacute; ning&uacute;n signo ni s&iacute;ntoma que sugiriera falla cardiaca o reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n por <i>T. cruzi</i>.</p>      <p><b>Discusi&oacute;n</b></p>      <p> A pesar de la controversia previamente existente sobre someter a trasplante cardiaco a los pacientes con cardiomiopat&iacute;a de origen chag&aacute;sico, se ha visto que estos pacientes presentan menor frecuencia de rechazo (23,24) y supervivencia similar (10,14,24,25), e incluso superior seg&uacute;n algunas series, a la de los pacientes no chag&aacute;sicos (7). Adem&aacute;s, las complicaciones del trasplante, como neoplasias o infecciones, no parecen ser m&aacute;s frecuentes o graves en ellos (23,24,26,27). M&aacute;s a&uacute;n, los estudios recientes de Bertolino <i>et al</i>. informan que 30 % de los enfermos con enfermedad de Chagas en lista de espera de trasplante de coraz&oacute;n, tienen un desenlace fatal, frente al 16 % de los que no presentan esta enfermedad en iguales condiciones (28). Por lo tanto, actualmente el trasplante es considerado una de las opciones de tratamiento indicada para los pacientes con cardiomiopat&iacute;a chag&aacute;sica cr&oacute;nica (11,27-29).</p>  La reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n causada por <i>T. cruzi </i>es una amenaza para la supervivencia del injerto y del paciente; &eacute;sta se puede presentar con una frecuencia de 8 a 90 % (11,26), diagnostic&aacute;ndose con mayor frecuencia en el primer a&ntilde;o despu&eacute;s del trasplante, especialmente en los primeros tres meses cuando el tratamiento de inmunosupresi&oacute;n es m&aacute;s intenso (11).</p>  En el seguimiento de la reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n por <i>T. cruzi </i>en pacientes con trasplante, se ha observado que la PCR tiene mayor sensibilidad que los m&eacute;todos convencionales directos y ha permitido detectar el par&aacute;sito de forma temprana, antes de que aparezcan los s&iacute;ntomas asociados a la reactivaci&oacute;n de la enfermedad (14,30). De acuerdo con lo anterior, los resultados del microhematocrito en este estudio fueron negativos en todas las fechas. Por el contrario, ambas PCR permitieron detectar el par&aacute;sito a los 90 d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante. M&aacute;s a&uacute;n, la PCR TcH2AF-R &ndash;de menor sensibilidad que la prueba S35-S36&ndash; cambi&oacute; de negativa en las muestras antes del trasplante y despu&eacute;s de &eacute;l hasta los dos meses, a positiva en la muestra tres meses despu&eacute;s del trasplante, resultado que podr&iacute;a explicarse por un aumento de la parasitemia.</p>      <p>Por otra parte, la falta de identificaci&oacute;n del par&aacute;sito en las biopsias endomioc&aacute;rdicas podr&iacute;a atribuirse a que &eacute;ste estuviese iniciando el proceso de invasi&oacute;n al tejido card&iacute;aco, proceso que se lleva a cabo a trav&eacute;s del epicardio (12).</p>      <p>En resumen, en este estudio se consider&oacute; la reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n a los tres meses despu&eacute;s del trasplante debido al viraje en los resultados de las PCR en sangre con persistencia del resultado positivo hasta los 120 d&iacute;as, a pesar de la ausencia de s&iacute;ntomas asociados a la infecci&oacute;n. El grupo tratante decidi&oacute; iniciar tratamiento antiparasitario, tras el cual se observ&oacute; que las PCR se tornaron negativas y as&iacute; permanecieron.</p>      <p>El paciente cl&iacute;nicamente ha permanecido en adecuada clase funcional, sin signos de falla cardiaca, ni de reactivaci&oacute;n de la enfermedad de Chagas, a pesar de los hallazgos ecocardiogr&aacute;ficos que muestran compromiso de la fracci&oacute;n de eyecci&oacute;n.</p>      <p>Este caso representa el primer reporte en Colombia de seguimiento de trasplante card&iacute;aco en pacientes con enfermedad de Chagas mediante PCR. Dada la baja sensibilidad de las otras pruebas diagn&oacute;sticas, la PCR ser&aacute; de mucha utilidad para el diagn&oacute;stico temprano de reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n en pacientes inmunosuprimidos, en quienes el tiempo para iniciar el tratamiento es determinante para el control de la infecci&oacute;n.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Agradecimientos</b></p>      <p> Los autores expresan su agradecimiento al paciente y a las Unidades de Hemodinamia Cl&iacute;nica y Cardiolog&iacute;a del Hospital Universitario San Ignacio.</p>      <p><b>Conflicto de inter&eacute;s</b></p>      <p> Los autores del presente art&iacute;culo declaramos no tener conflictos de intereses de orden acad&eacute;mico, institucional u operaciotivo, durante esta la investigaci&oacute;n.</p>      <p><b>Financiaci&oacute;n</b></p>      <p>El estudio fue desarrollado como parte del proyecto 00001034 financiado por la Pontificia Universidad Javeriana. </p>     <p>Correspondencia: Concepci&oacute;n Judith Puerta, Laboratorio de Parasitolog&iacute;a Molecular, Departamento de Microbiolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, D.C., Colombia Tel&eacute;fono:(+571) 320 8320, extensi&oacute;n 4024; fax (571) 320 8320, extensi&oacute;n 4021 <a href="mailto:cpuerta@javeriana.edu.co">cpuerta@javeriana.edu.co</a></p>      <p><b>Referencias</b></p>      <!-- ref --><p>1. <b>World Health Organization. </b>Report of the Scientific Working Group on Chagas Disease. Buenos Aires, Argentina, 17-20 April 2005. Update. Geneva: World Health Organization; July 2007. Fecha de consulta: abril de 2010. Disponible en: <a href="http://www.who.int/tdrold/diseases/chagas/swg_chagas.pdf" target="_blank">http://www.who.int/tdrold/diseases/chagas/swg_chagas.pdf</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-4157201100020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. <b>Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud. </b>Estimaci&oacute;n cuantitativa de la enfermedad de Chagas en las Am&eacute;ricas. Washington, D.C.: OPS; 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-4157201100020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. <b>World Health Organization. </b>Control of Chagas disease. Report of a WHO Expert Committee. Technical Report Series. Geneva: World Health Organization; 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-4157201100020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. <b>Bilate AM, Cunha-Neto E. </b>Chagas disease cardiomyopathy: Current concepts of an old disease. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2008;50:67-74.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-4157201100020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. <b>Moncayo A. </b>Chagas disease: Current epidemiological trends after the interruption of vectorial and transfusional transmission in the Southern Cone countries. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2003;98:577-91.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-4157201100020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. <b>G&oacute;mez EA, Senior JM, V&eacute;lez S, Navarrete S, S&aacute;nchez D, Roa NL, <i>et al. </i></b>Gu&iacute;as colombianas sobre la evaluaci&oacute;n y el manejo de la falla card&iacute;aca cr&oacute;nica del adulto. Revista Colombiana de Cardiolog&iacute;a. 2007;14:13-50.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-4157201100020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. <b>Bocchi EA</b><b>, Fiorelli A. </b>The paradox of survival results after heart transplantation for cardiomyopathy caused by <i>Trypanosoma cruzi</i>. First Guidelines Group for Heart Transplantation of the Brazilian Society of Cardiology. Ann Thorac Surg. 2001;71:1833-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-4157201100020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. <b>Phan BA, Laflamme MA, Otero AS, Limaye AP, Buckner FS, Levy WC</b>. Confirmation of Chagas&acute; cardiomyopathy following heart transplantation. Heart Vessels. 2006;21:325-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-4157201100020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. <b>Benvenuti LA, Rogg&eacute;rio A, Sambiase NV, Fiorelli A, Higuchi ML. </b>Polymerase chain reaction in endomyocardial biopsies for monitoring reactivation of Chagas&acute; disease in heart transplantation: A case report and review of the literature. Cardiovasc Pathol. 2005;14:265-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-4157201100020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. <b>Almeida DR, Carvalho AC, Branco JN, Pereira AP, Correa L, Vianna PV, <i>et al</i>. </b>Chagas&acute; disease reactivation after heart transplantation: Efficacy of allopurinol treatment. J Heart Lung Transplant. 1996;15:988-92.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-4157201100020000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. <b>Bacal F, Silva CP, Pires PV, Mangini S, Fiorelli AI, Stolf NG, <i>et al. </i></b>Transplantation for Chagas&acute; disease: An overview of immunosuppression and reactivation in the last two decades. Clin Transplant. 2010;24:E29-34.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-4157201100020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. <b>Schijman AG, Vigliano CA, Viotti RJ, Burgos JM, Brandariz S, Lococo BE, <i>et al</i>. </b><i>Trypanosoma cruzi </i>DNA in cardiac lesions of Argentinean patients with end-stage chronic chagas heart disease. Am J Trop Med Hyg. 2004;70:210-20.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-4157201100020000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. <b>Benvenuti LA, Rogg&eacute;rio A, Freitas HF, Mansur AJ, Fiorelli A, Higuchi ML. </b>Chronic American trypanosomiasis: Parasite persistence in endomyocardial biopsies is associated with high-grade myocarditis. Ann Trop Med Parasitol. 2008;102:481-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-4157201100020000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. <b>Diez M, Favaloro L, Bertolotti A, Burgos JM, Vigliano C, Lastra MP, <i>et al</i>. </b>Usefulness of PCR strategies for early diagnosis of Chagas&acute; disease reactivation and tratament follow-up in heart transplantation. Am J Transplant. 2007;7:1633-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-4157201100020000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. <b>Elias FE, Vigliano CA, Laguens RP, Levin MJ, Berek C. </b>Analysis of the presence of <i>Trypanosoma cruzi </i>in the heart tissue of three patients with chronic Chagas&acute; heart disease. Am J Trop Med Hyg. 2003;68:242-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-4157201100020000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. <b>Pav&iacute;a P, Cuervo C, Montilla M, Nicholls RS, Puerta C. </b>Dise&ntilde;o y estandarizaci&oacute;n de una PCR para la detecci&oacute;n espec&iacute;fica de <i>Trypanosoma cruzi</i>. Infectio. 2003;7:129-36.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-4157201100020000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. <b>Pavia P, Vallejo GA, Montilla M, Nicholls RS, Puerta CJ. </b>Detection of <i>Trypanosoma cruzi </i>and <i>Trypanosma rangeli </i>infection in triatomine vectors by amplification histone H2A and sno-RNA-CL1 genes. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2007;49:23-30.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-4157201100020000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. <b>Gil J, Pav&iacute;a P, Montilla M, Florez AC, Quintero C, Mercado M, <i>et al</i>. </b>Comparison of a PCR test based on the histone H2A/SIRE genes with classical serological tests for the diagnosis of chronic Chagas disease in Colombian patients. Biomedica. 2007;27(Suppl.1):83-91.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-4157201100020000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. <b>Barrera YK, Guevara JM, Pav&iacute;a PX, Montilla M, Nicholls RS, Parra E, </b><b><i>et al</i></b><i>. </i>Evaluation of TcH2AF-R and S35-S36 primers in PCR tests for the detection of <i>Trypanosoma cruzi </i>in mouse cardiac tissue. Biom&eacute;dica. 2008;28:616-26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-4157201100020000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. <b>Sturm NR, Degrave W, Morel C, Simpson L. </b>Sensitive detection and schizodeme classification of <i>Trypanosoma cruzi </i>cells by amplification of kinetoplast minicircle DNA sequences: Use in diagnosis of Chagas disease. Mol Biochem Parasitol. 1989;33:205-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-4157201100020000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. <b>Stewart S, Winters GL, Fishbein MC, Tazelaar HD, Kobashigawa J, Abrams J, <i>et al</i>. </b>Revision of the 1990 Working Formulation for the Standardization of Nomenclature in the Diagnosis of Heart Rejection. J Heart Lung Transplant. 2005;24:1710-20.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-4157201100020000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. <b>Aljanabi SM</b><b>, Mart&iacute;nez I. </b>Universal and rapid salt-extraction of high quality genomic DNA for PCR-based techniques. Nucleic Acids Res. 1997;25:4692-3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-4157201100020000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. <b>de Carvalho VB, Sousa EF, Vila JH, da Silva JP, Caiado MR, Araujo SR, </b><b><i>et al</i></b><b>. </b>Heart transplantation in Chagas&acute; disease. 10 years after the initial experience. Circulation. 1996;94:1815-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-4157201100020000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. <b>Bestetti RB</b><b>, Theodoropoulos TA. </b>A systematic review of studies on heart transplantation for patients with end-stage Chagas&acute; heart disease. J Card Fail. 2009;15:249-55.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-4157201100020000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. <b>Urinovsky F, Salomone O, C&oacute;rdoba R, Zazu A, Columbres A, Zlocowsky J, <i>et al</i>. </b>Mortalidad de los pacientes con cardiopat&iacute;a chag&aacute;sica y trasplante cardiaco. Experiencia inicial. Revista Argentina de Cardiolog&iacute;a. 2003;71:325-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-4157201100020000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. <b>Bestetti RB, Souza TR, Lima MF, Theodoropoulos TA, Cordeiro JA, Burdmann EA. </b>Effects of a mycophenolate mofetil-based immunosuppressive regimen in Chagas&acute; heart transplant recipients. Transplantation. 2007;84:441-2.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-4157201100020000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. <b>Biolo A, Ribeiro AL, Clausell N. </b>Chagas cardiomyopathy -where do we stand after a hundred years? Prog Cardiovasc Dis. 2010;52:300-16.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-4157201100020000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. <b>Bertolino ND, Villafanha DF, Cardinalli-Neto A, Cordeiro JA, Arcanjo MJ, Theodoropoulos TA, <i>et al</i>. </b>Prognostic impact of Chagas&acute; disease in patients awaiting heart transplantation. J Heart Lung Transplant. 2010;29:449-53.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-4157201100020000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. <b>Godoy HL, Guerra CM, Viegas RF, Dinis RZ, Branco JN, Neto VA, <i>et al</i>. </b>Infections in heart transplant recipients in Brazil: The challenge of Chagas&acute; disease. 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