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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de ovitrampas letales como estrategia para el control de Aedes aegypti]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of lethal ovitraps as a strategy for Aedes aegypti control]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Dengue fever is a vector-borne viral disease of major public health importance. In the absence of a vaccine, control measures are primarily focused on reducing the mosquito vector. However, these strategies are very expensive, and the use of lethal ovitraps could contribute, in a practical manner, to the design of cost-effective strategies for vector control. Objective: To determine the most efficient type of lethal ovitrap for Ae. aegypti vector control by combining different types of insecticides, oviposition substrates and attractant infusions. Materials and methods: The study was conducted in two stages. In the first, 18 different ovitraps resulting from the combination of insecticides (deltamethrin and permethrin), oviposition substrates (towel, dacron and flannel), and attractant infusion (10 and 20% hay infusion, and dechlorinated water) were evaluated in the laboratory. For this evaluation, ovitraps were placed into a mosquito holding cage, and 100 gravid Ae. aegypti females were released. The top six ovitraps were selected based on the higher number of registered eggs, and the lower hatched eggs percentage. In the second, the top six ovitraps were evaluated in field conditions. Results: In laboratory conditions, statistical differences were observed between the 18 ovitraps. The ovitraps with deltamethrin were the most efficient showing the best results. In field conditions, the ovitraps with the highest vector reduction were those combining deltamethrin/towel/10% hay infusion. Conclusions: The ovitrap combining deltamethrin, towel as oviposition substrate, and 10% hay infusion as attractant was the most efficient Ae. aegypti vector control.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> </p>     <p>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</p> doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i3.2146" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i3.2146</a>     <p><font size="4">    <center><b>Evaluaci&oacute;n de ovitrampas letales como estrategia para el control de <i>Aedes aegypti</i></b></center></font></p>     <p>    <center>Marcela Quimbayo <sup>1</sup>, Guillermo R&uacute;a-Uribe <sup>1</sup>, Gabriel Parra-Henao <sup>2</sup>, Carolina Torres <sup>3</sup></center></p>            <p><sup>1</sup> Grupo de Entomolog&iacute;a M&eacute;dica, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia </p> 	      <p><sup>2</sup> Red Chagas Colombia, Instituto Nacional de Salud, Bogot&aacute; D.C., Colombia </p>           <p><sup>3</sup> Programa de Estudio y Control de Enfermedades Tropicales, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia</p>    <hr size="1">        <p><b>Contribuci&oacute;n de los autores: </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Marcela Quimbayo: desarrollo de la idea, recolecci&oacute;n, tabulaci&oacute;n e interpretaci&oacute;n de los datos </p>     <p>Guillermo R&uacute;a-Uribe: concepci&oacute;n de la idea e interpretaci&oacute;n de datos </p>     <p>Guillermo R&uacute;a-Uribe, Gabriel Jaime Parra y Carolina Torres: asesor&iacute;a en el desarrollo de la investigaci&oacute;n </p> <hr size="1">           <p><b>Introducci&oacute;n. </b> El dengue es una enfermedad viral de transmisi&oacute;n vectorial de importancia en salud p&uacute;blica. La ausencia de una vacuna ha llevado a que las acciones de control se enfoquen principalmente en la disminuci&oacute;n del mosquito vector. Sin embargo, estas estrategias tienen costos elevados. Las ovitrampas letales podr&iacute;an contribuir de forma pr&aacute;ctica en estrategias costo-efectivas para el control vectorial.</p> 	      <p><b>Objetivo. </b>Determinar el tipo de ovitrampas letales m&aacute;s eficiente para el control vectorial de <i>Aedes aegypti </i>, combinando diferentes tipos de insecticidas, sustrato de ovipostura e infusi&oacute;n atrayente.</p> 	      <p><b>Materiales y m&eacute;todos. </b> El estudio se llev&oacute; a cabo en dos etapas. En la primera, se evaluaron en el laboratorio 18 ovitrampas diferentes provenientes de la combinaci&oacute;n de insecticidas (deltametrina y permetrina), sustratos de ovipostura (toalla, dacr&oacute;n y franela) e infusiones atrayentes (infusi&oacute;n de heno al 10 y 20 % y agua declorada). Para esta evaluaci&oacute;n, las ovitrampas se colocaron en el interior de una jaula de evaluaci&oacute;n y se liberaron 100 hembras gr&aacute;vidas de <i>A. aegypti </i>. Se seleccionaron las seis mejores ovitrampas con base en la mayor cantidad de oviposturas y en la menor emergencia larvaria. La segunda etapa consisti&oacute; en evaluar las seis mejores ovitrampas en condiciones de campo.</p> 	      <p><b>Resultados. </b> Se observ&oacute; una diferencia estad&iacute;stica entre las 18 ovitrampas en el laboratorio. Las que ten&iacute;an deltametrina fueron las que presentaron los mejores resultados. En campo se observ&oacute; que la ovitrampa m&aacute;s eficiente fue la compuesta por deltametrina, toalla e infusi&oacute;n de heno al 10 %.</p> 	      <p><b>Conclusiones. </b>La combinaci&oacute;n de deltametrina, toalla y soluci&oacute;n de heno al 10 % fue la m&aacute;s eficiente para la reducci&oacute;n vectorial de <i>A. aegypti </i>. </p> 	      <p><b>Palabras clave: </b><i>Aedes aegypti </i>, dengue/prevenci&oacute;n y control, insecticidas. </p>            <p><a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i3.2146" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i3.2146</a></p>     <hr size="1">           ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>Evaluation of lethal ovitraps as a strategy for <i>Aedes aegypti </i>control</b></font></p> 	      <p>Introduction: </b> Dengue fever is a vector-borne viral disease of major public health importance. In the absence of a vaccine, control measures are primarily focused on reducing the mosquito vector. However, these strategies are very expensive, and the use of lethal ovitraps could contribute, in a practical manner, to the design of cost-effective strategies for vector control.</p> 	      <p><b>Objective: </b> To determine the most efficient type of lethal ovitrap for <i>Ae. aegypti </i> vector control by combining different types of insecticides, oviposition substrates and attractant infusions.</p> 	      <p><b>Materials and methods: </b> The study was conducted in two stages. In the first, 18 different ovitraps resulting from the combination of insecticides (deltamethrin and permethrin), oviposition substrates (towel, dacron and flannel), and attractant infusion (10 and 20% hay infusion, and dechlorinated water) were evaluated in the laboratory. For this evaluation, ovitraps were placed into a mosquito holding cage, and 100 gravid <i>Ae. aegypti </i> females were released. The top six ovitraps were selected based on the higher number of registered eggs, and the lower hatched eggs percentage. In the second, the top six ovitraps were evaluated in field conditions.</p> 	      <p><b>Results: </b> In laboratory conditions, statistical differences were observed between the 18 ovitraps. The ovitraps with deltamethrin were the most efficient showing the best results. In field conditions, the ovitraps with the highest vector reduction were those combining deltamethrin/towel/10% hay infusion.</p> 	      <p><b>Conclusions: </b> The ovitrap combining deltamethrin, towel as oviposition substrate, and 10% hay infusion as attractant was the most efficient <i>Ae. aegypti </i> vector control.</p> 	      <p><b>Key words: </b><i>Aedes aegypti </i>, dengue/prevention and control, insecticides. </p>           <p><a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i3.2146" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i3.2146</a></p>     <hr size="1">           <p>El dengue es la principal enfermedad viral transmitida por vectores (1). La creciente morbilidad y mortalidad que se registran actualmente en las zonas donde se distribuye la enfermedad, la convierten en un grave problema de salud p&uacute;blica (1). En Colombia, el promedio de casos en los &uacute;ltimos a&ntilde;os end&eacute;micos ha sido de 25.700. Sin embargo, la incidencia y la distribuci&oacute;n de los casos de la enfermedad han tenido un incremento en los &uacute;ltimos 20 a&ntilde;os, con reportes de epidemias peri&oacute;dicas, entre ellas, las del 2003, 2007 y 2010, con 52.588, 43.227 y 157.152 casos, respectivamente (2). </p>           <p>En el pa&iacute;s, <i>Aedes aegypti </i>(Linnaeus, 1762) (Diptera: Culicidae) es el principal vector del virus del dengue y se encuentra distribuido en cerca del 90 % del territorio situado entre 1.000 y 1.800 metros sobre el nivel del mar (3). Se ha notificado la presencia de <i>Aedes albopictus </i>(Skuse, 1984) (Diptera: Culicidae), otro posible vector del virus del dengue, en Leticia (4), Buenaventura (5), Cali (6), Barrancabermeja (Guti&eacute;rrez M, <i>et al. </i>. Hallazgo de <i>Aedes albopictus </i>(Diptera: Culicidae) en el municipio de Barrancabermeja, Colombia. XX Congreso Latinoamericano de Parasitolog&iacute;a, 2011) y, m&aacute;s recientemente, en Medell&iacute;n (7).</p>           ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Debido a la ausencia de una vacuna contra el dengue, los m&eacute;todos de prevenci&oacute;n de la enfermedad se basan principalmente en el control vectorial mediante la utilizaci&oacute;n de insecticidas (adulticidas y larvicidas) y la eliminaci&oacute;n manual de criaderos. En cuanto a los primeros, se ha indicado que son un m&eacute;todo eficaz; sin embargo, durante los a&ntilde;os epid&eacute;micos habr&iacute;a que considerar que se requiere un elevado n&uacute;mero de personal para cubrir todas las &aacute;reas afectadas, convirtiendo su uso en una estrategia costosa y compleja (8). Por otro lado, para la implementaci&oacute;n de programas permanentes de eliminaci&oacute;n manual de criaderos, se requiere de gran participaci&oacute;n comunitaria (9). </p>           <p>Ante la complejidad de estas medidas de inter venci&oacute;n, las ovitrampas letales surgen como una estrategia complementaria y m&aacute;s econ&oacute;mica para el control vectorial. Adem&aacute;s, como valor agregado, las ovitrampas han demostrado ser de gran utilidad en los programas de control de las poblaciones del vector, como se evidenci&oacute; en las investigaciones de Perich, <i>et al. </i>, (10) en Brasil. </p>           <p>Sin embargo, para la implementaci&oacute;n de las ovitrampas en los programas de vigilancia y control en las ciudades del pa&iacute;s donde el dengue es end&eacute;mico, se deben determinar tanto los elementos que la conforman (tipo de insecticida, sustrato de oviposici&oacute;n e infusi&oacute;n atrayente), como la persistencia de su poder letal. El presente estudio se desarroll&oacute; para recoger dicha informaci&oacute;n. Los resultados obtenidos en esta investigaci&oacute;n ser&aacute;n de utilidad para las autoridades de salud en el desarrollo de programas adecuados de vigilancia y control de <i>A. aegypti </i>, y de prevenci&oacute;n de la enfermedad. </p>           <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>           <p><b><i>Dise&ntilde;o de ovitrampas letales </i></b></p>           <p>Las ovitrampas empleadas en este estudio consist&iacute;an en un recipiente pl&aacute;stico de color negro, de 15 cm de alto por 32 cm de circunferencia, que conten&iacute;a 700 cm 3 del medio atrayente por evaluar (infusi&oacute;n de heno al 10 y 20 % y agua declorada). Para hacer las infusiones se sigui&oacute; el protocolo sugerido por Reiter y Nathan (11). </p>           <p>En la margen superior interna de la ovitrampa se coloc&oacute; el sustrato para la oviposici&oacute;n, el cual consisti&oacute; en un trozo de tela de 8 x 32 cm de toalla, dacr&oacute;n y franela de color rojo. Previamente, el sustrato de oviposici&oacute;n se impregnaba con uno de los insecticidas por evaluar (deltametrina o permetrina), es decir, insecticidas piretroides de baja toxicidad sobre los cuales no se conocieran reportes de resistencia o sensibilidad en la ciudad. </p>           <p>Para la impregnaci&oacute;n de los sustratos de ovipostura con los insecticidas seleccionados, se tuvieron en cuenta los siguientes aspectos: el tama&ntilde;o de la tela (&aacute;rea en m 2 ), en este caso el &aacute;rea fue de 0,0912 m 2 (38 cm de largo x 24 cm de ancho); los insecticidas empleados, deltametrina y permetrina en este estudio, y la concentraci&oacute;n requerida de insecticida (mg/m 2 ) en la tela: 25 % de deltametrina y 30 % de permetrina. Los insecticidas utilizados en la presentaci&oacute;n comercial fueron deltametrina (Delmostyn &reg; 2,5 EC) y permetrina <b> ( </b>Permost VPM &reg; &nbsp;55 %), de la casa comercial Vectors &amp; Pets V&amp;P Management. Con base en esta informaci&oacute;n se calcul&oacute; la dosis o cantidad necesaria de insecticida para impregnar las telas. </p>           <p>Para determinar la absorci&oacute;n de la tela, se tuvo en cuenta que la cantidad de la mezcla para impregnar una depende de su tama&ntilde;o (dimensi&oacute;n en m 2 ) y del material con que est&eacute; confeccionada. Se hizo la siguiente prueba de absorci&oacute;n: se verti&oacute; una cantidad conocida de agua en un recipiente; se introdujo la tela revolviendo hasta que quedara totalmente empapada y, luego, se sac&oacute; del recipiente; se dej&oacute; que escurriera y el excedente de agua se exprimi&oacute; suavemente dentro del recipiente. A continuaci&oacute;n, se midi&oacute; exactamente el agua sobrante en el recipiente y se rest&oacute; de la cantidad total de agua inicial. La diferencia resultante correspondi&oacute; a la cantidad de agua absorbida por la tela (12). </p>           <p>Para la preparaci&oacute;n de la mezcla de impregnaci&oacute;n, se sigui&oacute; el siguiente procedimiento: la mezcla de agua e insecticida se prepar&oacute; en un recipiente pl&aacute;stico de 30 x 20 cm y 10 cm de alto, y una vez estuvo bien mezclada, se sumergieron las telas separadas por tipos (toalla, dacr&oacute;n o franela) hasta garantizar la impregnaci&oacute;n total y se las dej&oacute; sumergidas durante 10 minutos. Finalmente, se sacaron para dejarlas secar en una superficie completamente plana y oscura, y as&iacute;, garantizar que el insecticida no se escurriera e inactivara. </p>           ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Con base en la combinaci&oacute;n de los dos tipos de insecticida, las tres categor&iacute;as de sustratos de oviposici&oacute;n y las tres clases de infusiones atrayentes, se dise&ntilde;aron 18 diferentes ovitrampas letales, cada una de las cuales correspondi&oacute; a un tratamiento. Cada uno de los tratamientos se evalu&oacute; por triplicado.</p>           <p> <b><i>Evaluaci&oacute;n de laboratorio </i></b></p>           <p>El poder letal de cada una de las ovitrampas se estim&oacute; utilizando una jaula de evaluaci&oacute;n confeccionada en un cubo de 70 cm por cada lado cuyo interior se encontraba dividido por dos tabiques, lo que permiti&oacute; tener cuatro &aacute;reas de evaluaci&oacute;n (<a href="#figura1">figura 1</a>). En tres de estas &aacute;reas se ubic&oacute; la ovitrampa letal sujeta a evaluaci&oacute;n y en la cuarta &aacute;rea se coloc&oacute; la ovitrampa de control, para cuyo sustrato de ovipostura se utiliz&oacute; una servilleta de papel libre de insecticida y, como infusi&oacute;n atrayente, la misma soluci&oacute;n utilizada en las ovitrampas evaluadas. </p>           <p>    <center> <a name="figura1"><img src="img/revistas/bio/v34n3/v34n3a16i1.jpg"></a></center></p>     <p>En la caja de evaluaci&oacute;n se liberaron 100 mosquitos hembra de <i>A. aegypti </i>de seis d&iacute;as de edad y alimentadas, lo que se determin&oacute; empleando los estadios de Sella (WHO, 1975). Los mosquitos proven&iacute;an de larvas y pupas recolectadas en diferentes barrios de Medell&iacute;n. Los experimentos se hicieron con los primeros mosquitos adultos obtenidos en el laboratorio. Para el manejo de las colonias de mosquitos, se sigui&oacute; el protocolo del <i>Manual for mosquito rearing and experimental techniques </i>de la <i>American Mosquito Control Association </i>(13). </p>     <p>Para determinar el poder letal de las ovitrampas, se emple&oacute; un estereoscopio (marca Nikon, Modelo C-PS, N&ordm; 1071370) y se estableci&oacute; el n&uacute;mero de huevos puestos en cada sustrato de ovipostura y el n&uacute;mero de larvas L2 obtenidas. Este &uacute;ltimo valor se obtuvo sumergiendo en agua declorada las oviposturas con un proceso embrionario de tres d&iacute;as. Las larvas obtenidas fueron alimentadas siguiendo el protocolo del <i>Manual for mosquito rearing and experimental techniques </i>(13). </p>     <p>Tanto la evaluaci&oacute;n en el laboratorio de las ovitrampas letales como el mantenimiento de las colonias, se hicieron en el laboratorio del Grupo de Entomolog&iacute;a M&eacute;dica de la Facultad de Medicina de la Universidad de Antioquia, en condiciones controladas de temperatura a 27&plusmn;1 &deg;C, humedad relativa de 75&plusmn;5 % y fotoper&iacute;odo de 12 horas de luz y 12 horas de oscuridad usando iluminaci&oacute;n artificial . </p>     <p><b><i>Evaluaci&oacute;n de campo </i></b></p>     <p>Con el prop&oacute;sito de evaluar las seis combinaciones de ovitrampas letales con los mejores resultados en la etapa de laboratorio, se hizo la evaluaci&oacute;n de campo en viviendas del barrio Aranjuez de Medell&iacute;n, por ser esta una localidad que hist&oacute;ricamente ha presentado alta incidencia de la enfermedad y elevados valores de &iacute;ndices entomol&oacute;gicos, tener f&aacute;cil acceso y contar con el inter&eacute;s de la comu nidad para participar en este tipo de estudios. Se consider&oacute; como la mejor ovitrampa letal la que registr&oacute; el mayor n&uacute;mero de huevos puestos y la menor emergencia de larvas. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Cada una de las seis combinaciones de ovitrampas letales se evalu&oacute; cinco veces, una en cada casa seleccionada. Adem&aacute;s de la ovitrampa letal evaluada, se dispuso de una de control. Se seleccionaron de manera aleatoria 30 viviendas del barrio. En cada vivienda se colocaron una ovitrampa letal y una de control. Ambas se pusieron una cerca de la otra, a una distancia m&aacute;xima de un metro, en sitios frecuentados por <i>A. aegypti </i>para su ovipostura. Las trampas se colocaron en lugares que no recibieran agua lluvia, de manera que no se alteraran las concentraciones de las infusiones de heno. </p>     <p>Los sustratos de oviposturas de las ovitrampas letales se retiraron y evaluaron semanalmente durante cuatro semanas, es decir, hasta cuando la cantidad de huevos encontrados en las ovitrampas tratadas y en las de control dejaron de presentar diferencias estad&iacute;sticamente significativas. </p>     <p><b><i>Evaluaci&oacute;n de la persistencia del poder letal de las ovitrampas </i></b></p>     <p>En las evaluaciones de campo se determin&oacute; la persistencia de las ovitrampas como controladoras de la poblaci&oacute;n de <i>A. aegypti </i>. En el presente estudio se consider&oacute; la persistencia como la caracter&iacute;stica que tiene el insecticida de seguir activo a lo largo del tiempo, particularidad tambi&eacute;n denominada efecto residual. La persistencia se evalu&oacute; contando semanalmente el n&uacute;mero de huevos por ovitrampa letal, as&iacute; como la emergencia de larvas, y se hizo hasta observar resultados similares en las ovitrampas tratadas y las de control. </p>     <p><b><i>An&aacute;lisis de la informaci&oacute;n </i></b></p>     <p>Los c&aacute;lculos y an&aacute;lisis se hicieron siguiendo los procedimientos explicados en <i>Applied Linear Statistical Models </i> (14). Para ello, los datos se analizaron usando el programa SPSS ™, versi&oacute;n 16. Se verific&oacute; la homogeneidad de varianza con la prueba de Levene (14) y, en los casos en los que no se observ&oacute; normalidad, fue necesario hacer una transformaci&oacute;n estad&iacute;stica de los datos con el fin de obtener homogeneidad de varianza. Las medias se compararon usando an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) de tres v&iacute;as (datos de laboratorio) y de dos v&iacute;as (datos de campo). Se hicieron compara ciones pareadas <i>post hoc </i> utilizando la prueba de honestidad de significaci&oacute;n de Tuckey (14). Todas las comparaciones se consideraron estad&iacute;sticamente significativas si el valor de p <i></i>era menor de <i></i>0,05. </p>     <p><b>Resultados </b></p>     <p><b><i>Evaluaci&oacute;n de laboratorio </i></b></p>     <p><i>N&uacute;mero de huevos. </i>En las diferentes ovitrampas letales evaluadas se registraron oviposturas. Sin embargo, se observ&oacute; una gran fluctuaci&oacute;n en la cantidad de huevos puestos, siendo la ovitrampa con la combinaci&oacute;n de deltametrina, toalla y agua declorada en la que mayor cantidad se registr&oacute; (1.332 huevos), mientras que en la que conten&iacute;a la combinaci&oacute;n de permetrina, dacr&oacute;n y soluci&oacute;n de heno al 20 %, el n&uacute;mero de huevos fue el m&aacute;s bajo, 42 (<a href="#figura2">figura 2</a>). Mediante la prueba ANOVA se determin&oacute; la diferencia estad&iacute;sticamente signi ficativa en las cantidades de huevos puestos en las diferentes ovitrampas letales, siendo las impregnadas con deltametrina las que registraron un mayor n&uacute;mero de huevos. </p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center> <a name="figura2"><img src="img/revistas/bio/v34n3/v34n3a16g1.jpg"></a></center></p>      <p><i>Larvas emergidas. </i>En 14 de las 18 ovitrampas letales no se registr&oacute; presencia de larvas L2, pero s&iacute; en todas las de control. Los resultados obtenidos permitieron determinar diferencias estad&iacute;sticas significativas (prueba de Levene, f=1,71, gl=17, p=0,171 <i>) </i>en la emergencia de larvas en las diferentes ovitrampas letales evaluadas. Las que registraron emergencia de larvas fueron las elaboradas con la combinaci&oacute;n de deltametrina, toalla o dacr&oacute;n y soluci&oacute;n de heno al 10 % o al 20 %, en tanto que en las que conten&iacute;an permetrina no se observaron larvas (<a href="#figura3">figura 3</a>). El insecticida empleado en las seis mejores ovitrampas letales fue la deltametrina. </p>     <p>    <center>   <a name="figura3"><img src="img/revistas/bio/v34n3/v34n3a16g2.jpg"></a></center></p>     >    <p><b><i>Evaluaci&oacute;n de campo </i></b></p>     <p>Con base en los resultados de laboratorio, se seleccionaron las seis mejores ovitrampas letales: 1) <i></i>deltametrina, toalla y soluci&oacute;n de heno al 10 %; 2) deltametrina, toalla y agua; 3) deltametrina, dacr&oacute;n y agua; 4) deltametrina, franela y soluci&oacute;n de heno al 10 %; 5) deltametrina, franela y soluci&oacute;n de heno al 20 %, y 6) deltametrina, franela y agua. En la figura 2 se se&ntilde;alan con un asterisco las seis mejores ovitrampas letales seleccionadas para la evaluaci&oacute;n de campo.</p>     <p><i>N&uacute;mero de huevos puestos. <b></b></i>En las diferentes ovitrampas letales evaluadas en condiciones de campo se registraron oviposturas. Sin embargo, el an&aacute;lisis estad&iacute;stico permiti&oacute; determinar diferencias estad&iacute;sticamente significativas en la cantidad de huevos puestos, siendo las ovitrampas en las que se us&oacute; soluci&oacute;n de heno al 10 % o agua declorada como infusi&oacute;n atrayente y toalla o franela como sustrato de ovipostura las que registraron un mayor n&uacute;mero de huevos (<a href="#figura4">figura 4</a>). </p>     <p>    <center> <a name="figura4"><img src="img/revistas/bio/v34n3/v34n3a16g3.jpg"></a></center></p>      <p><i>Larvas emergidas. </i> Tan solo en dos de las seis ovitrampas evaluadas no se registr&oacute; emergencia de larvas, mientras que en las dem&aacute;s la emergencia de larvas fluct&uacute;o entre 6 y 86 larvas L2. El an&aacute;lisis de los resultados permiti&oacute; observar diferencias estad&iacute;sticamente significativas en la emergencia de larvas en las diferentes ovitrampas letales evaluadas. Aquellas en donde no se registr&oacute; emergencia de larvas fueron las confeccionadas con la combinaci&oacute;n de deltametrina, soluci&oacute;n de heno al 10% y toalla, o la de deltametrina, soluci&oacute;n de heno al 10 % y franela como sustrato de ovipostura (<a href="#figura5">figura 5</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center> <a name="figura5"><img src="img/revistas/bio/v34n3/v34n3a16g4.jpg"></a></center></p>      <p><b><i>Persistencia del poder letal </i></b></p>     <p><i>Presencia de oviposiciones. </i> Se observaron oviposturas en las seis ovitrampas letales evaluadas solo hasta la segunda semana. Mediante el ANOVA se determin&oacute; la diferencia estad&iacute;sticamente significativa en la cantidad de huevos puestos entre los 8 y los 15 d&iacute;as despu&eacute;s de la colocaci&oacute;n de las trampas, siendo las ovitrampas letales evaluadas a los ocho d&iacute;as las que registraron mayor n&uacute;mero de posturas. Se observ&oacute; que un mayor n&uacute;mero de huevos en las ovitrampas en las que se hab&iacute;a usado el agua como medio atrayente y toalla o franela como sustrato de oviposici&oacute;n (<a href="#figura6">figura 6</a>). </p>     <p>    <center> <a name="figura6"><img src="img/revistas/bio/v34n3/v34n3a16g5.jpg"></a></center></p>      <p><i>Larvas emergidas </i>. <b></b>Se observ&oacute; que en el octavo d&iacute;a despu&eacute;s de poner las trampas, se registraba emergencia de larvas solo en dos de ellas. Por otro lado, en el d&iacute;a 15 se observ&oacute; emergencia de larvas con todos los tratamientos (<a href="#figura7">figura 7</a>). Tal diferencia en el porcentaje de emergencia entre los d&iacute;as 8 y 15 fue estad&iacute;sticamente significativa para todas las ovitrampas evaluadas.</p>     <p>    <center> <a name="figura7"><img src="img/revistas/bio/v34n3/v34n3a16g6.jpg"></a></center></p>     <p><b>Discusi&oacute;n </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En el presente estudio se evidenci&oacute; que, en condiciones de laboratorio, la ovitrampa letal con la combinaci&oacute;n de deltametrina, toalla y agua declorada registr&oacute; la mayor cantidad de huevos. Se han reportado resultados comparables en los trabajos de Zeichner y Perich (15), en los que se evaluaron diferentes insecticidas (permetrina, deltametrina, cipermetrina y ciflutrina) y se observ&oacute; que en las ovitrampas impregnadas con delta metrina se registraba el mayor n&uacute;mero de huevos puestos. Sin embargo, seg&uacute;n estos autores (15), los mejores resultados se obtuvieron con la infusi&oacute;n de heno al 10 %, mientras que en el presente estudio, el mejor resultado se obtuvo en la ovitrampa con agua declorada. Tal diferencia podr&iacute;a explicarse por el hecho de que las evaluaciones de Zeichner y Perich (15) se desarrollaron en condiciones de campo, en tanto que los resultados de esta etapa del presente estudio se obtuvieron en condiciones de laboratorio. </p>     <p>A pesar de que los dos insecticidas evaluados en este estudio (deltametrina y permetrina) pertenecen a un mismo grupo (piretroides), la menor oviposici&oacute;n en las ovitrampas con permetrina podr&iacute;a explicarse por su mayor efecto de repelencia, tal como ha sido propuesto por Ayala, <i>et al. </i> (16). </p>     <p>En cuanto a la comparaci&oacute;n de los diferentes tipos de sustratos impregnados con insecticida, no se encontraron trabajos que la hubieran evaluado. Sin embargo, Lenhart, <i>et al. </i>, (17) demostraron que en las ovitrampas con tela se recolectaba una mayor cantidad de huevos que en las tablillas de madera, por lo que los investigadores consideraron que la tela proporcionaba una mayor superficie de contacto para la oviposici&oacute;n. </p>     <p>Pero no solo en la ovipostura es importante el tipo de sustrato. Tambi&eacute;n es necesario tener en cuenta el color de la tela empleada, tal como ha sido evidenciado en los estudios de Muir, <i>et al., </i>(18) en los cuales, al evaluar la reflectancia, se determin&oacute; que los colores brillantes como el rojo eran m&aacute;s atractivos para la ovipostura de <i>Aedes </i>sp. Adem&aacute;s, seg&uacute;n Zeichner y Perich (15), el color rojo permite una mejor visibilidad de los huevos al momento de contarlos, y Badano y Regidor (19) han sugerido que el efecto del color es m&aacute;s fuerte que el del tama&ntilde;o de la superficie, aunque la respuesta de <i>A. aegypti </i>hacia los colores depende del ambiente lum&iacute;nico alrededor de las trampas. Con base en las anteriores apreciaciones, en el presente estudio, al igual que en el de Williams, <i>et al., </i>(8) se emple&oacute; tela de color rojo para las evaluaciones. </p>     <p>En cuanto a las evaluaciones en condiciones de campo, se determin&oacute; que la ovitrampa letal con mejores resultados fue la que conten&iacute;a la combinaci&oacute;n de deltametrina, toalla y soluci&oacute;n de heno al 10 %, la cual registr&oacute; los mayores valores de ovipostura, pero los m&aacute;s bajos para la emergencia de larvas. Estos hallazgos son comparables con los reportados por Perich, <i>et al., </i>(10) quienes demostraron que las ovitrampas letales que conten&iacute;an soluci&oacute;n de heno al 10 % y sustratos de ovipostura impregnados con deltametrina afectaban significativamente las poblaciones de <i>A. aegypti </i>en dos poblados cercanos a Rio de Janeiro. </p>     <p>En el presente estudio tambi&eacute;n se observ&oacute; que la persistencia del poder letal de las ovitrampas disminuy&oacute; significativamente a la semana de colocadas. Estos resultados difieren de lo observado por Williams, <i>et al., </i>(8) quienes encontraron que el poder letal de las trampas persisti&oacute; durante cuatro semanas, discrepancia que podr&iacute;a explicarse por el uso de insecticidas diferentes, ya que en la presente investigaci&oacute;n se evalu&oacute; la deltametrina y, en el estudio de Williams, <i>et al., </i>(8) se utiliz&oacute; bifentrina . </p>     <p>En otro estudio llevado a cabo en condiciones de campo, se compararon las ovitrampas letales con las estrategias de aplicaci&oacute;n de <i>Bacillus </i><i>thuringiensis </i> var. <i> israeliensis </i>, ambas intervenciones acompa&ntilde;adas de campa&ntilde;as de educaci&oacute;n comunitaria (20). Los resultados indicaron que ni las ovitrampas ni el <i>B. thuringiensis </i> var. <i> israeliensis </i><i></i>hab&iacute;an generado una reducci&oacute;n significativa del n&uacute;mero de mosquitos, pero s&iacute; lograron una reducci&oacute;n en los &iacute;ndices de riesgo entomol&oacute;gico (&iacute;ndices de Breteau, de vivienda y de dep&oacute;sito), los cuales no se ven necesariamente afectados por la abundancia del vector. A pesar de que el objetivo del presente estudio no era evaluar el impacto de las ovitrampas letales sobre los &iacute;ndices entomol&oacute; gicos, los resultados observados difieren de los hallazgos obtenidos por Ocampo, <i>et al., </i>(20), en el sentido de que el empleo de las ovitrampas permiti&oacute; una reducci&oacute;n en la cantidad de mosquitos debido a su poca y, en algunos casos, nula emergencia. </p>     <p>En el presente estudio se encontr&oacute;, espec&iacute;fica mente, que las ovitrampas letales con agua como medio atrayente mostraron una mayor cantidad de huevos en las evaluaciones de laboratorio. Sin embargo, este hallazgo no concord&oacute; con las observaciones de campo, en las cuales los mejores resultados de oviposici&oacute;n correspondieron al empleo de soluci&oacute;n de heno al 10 %. Es posible que esta divergencia entre los resultados de laboratorio y los de campo se deba a la procedencia de las hembras utilizadas en estas evaluaciones. Los mosquitos que se emplearon en el laboratorio proven&iacute;an de diferentes regiones de la ciudad, mientras que, en las observaciones de campo, eran hembras silvestres. A pesar del resultado obtenido en condiciones de laboratorio, es importante resaltar que en diversos estudios de campo se ha determinado que las infusiones de heno son el m&aacute;s atractivo medio de oviposici&oacute;n (15,21,22). La preferencia por este tipo de infusi&oacute;n puede deberse a que los procesos fisiol&oacute;gicos m&aacute;s im portantes de los mosquitos est&aacute;n mediados por los olores del medio en el que se desarrollan (23). En este sentido, la respuesta olfativa en los mosquitos est&aacute; condicionada por una serie de factores externos, entre ellos la lluvia, el viento, la humed ad y la temperatura, as&iacute; como por factores internos, como la edad, el sexo, el estado fisiol&oacute;gico y la preferencia alimentaria, los cuales influyen en el comportamiento de selecci&oacute;n de la fuente de olor (23). Si bien el estado fisiol&oacute;gico de los mosquitos determina su comportamiento, su expresi&oacute;n est&aacute; influida por est&iacute;mulos f&iacute;sicos provenientes del ambiente y es mediada por se&ntilde;ales qu&iacute;micas que emanan de sitios con caracter&iacute;sticas adecuadas para la oviposici&oacute;n y de los posibles hu&eacute;spedes vertebrados que son fuente de sangre (24). </p>     <p>A pesar de los resultados obtenidos en el presente estudio, son m&uacute;ltiples los estudios que avalan la utilizaci&oacute;n de las ovitrampas letales en los programas de vigilancia y control del dengue. Entre ellos cabe destacar los de Louren&ccedil;o de Oliveira, <i>et al., </i>(25), Santos, <i>et al., </i>(26) y Gama, <i>et al. </i>(27). Las siguientes son algunas de las caracter&iacute;sticas m&aacute;s relevantes de las ovitrampas que respaldan su empleo: 1) representan un m&eacute;todo que brinda mayor sensibilidad que los levantamientos tradicionales de &iacute;ndices entomol&oacute;gicos, debido a que permite determinar la presencia o ausencia de <i>A. aegypti </i>y <i></i>reconocer los sitios de mayor densidad del vector, y, por lo tanto, reconocer o detectar el riesgo entomol&oacute;gico de transmisi&oacute;n (28); 2) pueden reducir las densidades de <i>A. aegypti </i>y ser empleadas en programas de vigilancia entomol&oacute;gica, tal como ha sido propuesto por Marques, <i>et al., </i> (29) y Braga, <i>et al. </i>, (30); 3) adem&aacute;s de su simplicidad, tienen una alta especificidad para <i>A. aegypti </i> y un gran potencial para combinarlas con otras estrategias de control vectorial, como el qu&iacute;mico y el biol&oacute;gico (31), y 4) pueden emplearse para evaluar intervenciones y para hacer estudios de reinfestaci&oacute;n (32). </p>     <p>Para garantizar un mayor &eacute;xito de la estrategia, es necesario considerar el lugar de la vivienda en donde debe colocarse la ovitrampa letal, tal como se indica en los estudios de Dibo, <i>et al., </i>(32), quienes determinaron que los mejores lugares de ubicaci&oacute;n de las ovitrampas son los espacios abiertos de las viviendas, tales como solares o patios. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Si se est&aacute; contemplando el uso de ovitrampas letales como una estrategia de control vectorial, se sugiere impregnar con deltametrina el sustrato de ovipostura hecho con toalla de color rojo y soluci&oacute;n de heno al 10 % como atrayente. Sin embargo, de acuerdo con Masuh (33), el &eacute;xito de una intervenci&oacute;n antivectorial reside en la combinaci&oacute;n precisa de todas las herramientas disponibles y el reconocimiento de las limitaciones que cada una tiene. Adem&aacute;s, para que una estrategia sea integral y eficiente debe comprometer diferentes componentes, entre ellos, la movilizaci&oacute;n y parti cipaci&oacute;n comunitaria, tal como lo han precisado Ocampo, <i>et al. </i> (20). </p>     <p>De acuerdo con lo se&ntilde;alado, se concluy&oacute; que en las evaluaciones de campo, la combinaci&oacute;n de deltametrina, toalla y soluci&oacute;n de heno al 10 % es la adecuada en la elaboraci&oacute;n de una ovitrampa efectiva para la reducci&oacute;n de poblaciones de <i>A. aegypti </i>. Sin embargo, la baja persistencia observada implica que las ovitrampas letales deben revisarse semanalmente, actividad en la cual la comunidad podr&iacute;a participar. </p>     <p>A pesar de que las ovitrampas letales mostraron ser una herramienta apropiada para reducir la cantidad de mosquitos <i>A. aegypti </i> en el control del dengue, es necesario integrarlas con otras estrategias de intervenci&oacute;n y control, como son el empleo de insecticidas, el uso de productos para el control biol&oacute;gico y, fundamentalmente, la movilizaci&oacute;n y participaci&oacute;n comunitarias. </p>     <p>    <center><b>Agradecimientos </b></center></p>     <p>A la Secretar&iacute;a de Salud de Medell&iacute;n, por facilitar los datos hist&oacute;ricos de los &iacute;ndices de la ciudad; al Grupo de Entomolog&iacute;a M&eacute;dica de la Facultad de Medicina de la Universidad de Antioquia, particularmente a Diego Zapata y Alejandro Ocampo, por el apoyo en las labores de campo; al profesor Jos&eacute; Chauca del Instituto de Medicina Tropical Alexander von Humboldt de la Universidad Peruana Cayetano Heredia, por su asistencia en el an&aacute;lisis estad&iacute;stico; al Programa Iberoamericano de Ciencia y Tecnolog&iacute;a para el Desarrollo (CYTED), <b></b>por el apoyo a trav&eacute;s de la REDSAT DENGUE (C&oacute;digo 209RT0384 ) y, muy especialmente, a la comunidad del barrio Aranjuez, en donde se desarroll&oacute; la fase de campo. </p>     <p>    <center><b>Conflicto de intereses </b></center></p>     <p>Los autores manifiestan que no existe, de manera directa o indirecta, ning&uacute;n tipo de conflicto de intereses, financieros, acad&eacute;micos ni personales para la publicaci&oacute;n de este art&iacute;culo. </p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><b>Financiaci&oacute;n </b></center></p>     <p>Esta investigaci&oacute;n fue financiada por el Comit&eacute; para el Desarrollo de la Investigaci&oacute;n, CODI, de la Universidad de Antioquia, c&oacute;digo 2500. </p>     <p>    <center><b>Referencias </b></center></p>     <!-- ref --><p>1. <b>World Health Organization. </b> Dengue hemorrhagic fever: Diagnosis, treatment, prevention and control. 2nd edition. Geneva: WHO; 1997. p. 1-92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-4157201400030001600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2. <b>Pan American Health Organization. </b> Dengue and dengue hemorrhagic fever in the Americas: Guidelines for prevention and control. Scientific and Technical Publications. 1st edition. Washington, D.C.: Pan American Health Organization; 1994. p. 1-97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-4157201400030001600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3. <b>Ministerio de la Protecci&oacute;n Social, Instituto Nacional de Salud, Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud. </b> Gu&iacute;a de atenci&oacute;n cl&iacute;nica integral del paciente con dengue. Bogot&aacute;: Ministerio de la Protecci&oacute;n Social; 2010. p. 1-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-4157201400030001600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>4. <b>V&eacute;lez ID, Qui&ntilde;ones ML, Su&aacute;rez M, Olano V, Murcia LM, Correa E, <i>et al </i>. </b> Presencia de <i>Aedes albopictus </i> en Leticia, Amazonas, Colombia. Biom&eacute;dica. 1998;18:192-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-4157201400030001600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5. <b>Su&aacute;rez M. </b><i>Aedes albopictus </i>(Skuse) (Diptera, Culicidae) en Buenaventura, Colombia. Inf Quinc Epidemiol Nac. 2001;6:221-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-4157201400030001600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6. <b>Cu&eacute;llar ME, Vel&aacute;squez OL, Gonz&aacute;lez R, Morales CA. </b>Detecci&oacute;n de <i>Aedes albopictus </i> (Skuse) (Diptera: Culicidae) en la ciudad de Cali, Valle del Cauca, Colombia. Biom&eacute;dica. 2007;27:273-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-4157201400030001600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>7. <b>R&uacute;a-Uribe G, Su&aacute;rez-Acosta C, Londo&ntilde;o V, S&aacute;nchez J, Rojo R, Bello B. </b> Primera evidencia de <i>Aedes albopictus </i>(Skuse) (Diptera: Culicidae) en la ciudad de Medell&iacute;n, Antioquia, Colombia. Rev Salud P&uacute;blica de Medell&iacute;n. 2011;5:89-98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-4157201400030001600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8. <b>Williams CR, Ritchie SA, Long SA, Dennison N, Russell RC. </b>Impact of a Bifenthrin-treated lethal ovitrap on <i>Aedes aegypti </i>oviposition and mortality in north Queensland, Australia. J Med Entomol. 2007;44:256-62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-4157201400030001600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>9. <b>Tibaire MM. </b> Actualizaci&oacute;n en dengue. Parte 1. <b></b>Rev Soc Ven Microbiol. 2001;21:39-45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-4157201400030001600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10. <b>Perich MJ, Kardec A, Bragat IA, Portal IF, Burge R, Zeichner BC, <i>et al </i>. </b> Field evaluation of a lethal ovitrap against dengue vectors in Brazil. Med Vet Entomol. 2003;17:205-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-4157201400030001600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11. <b>Reiter P, Nathan MB. </b> Gu&iacute;as para la evaluaci&oacute;n de la eficacia del rociado espacial de insecticidas para el control del vector del dengue <i>Ae. aegypti. </i> Ginebra: World Health Organization; 2003. p. 3-44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-4157201400030001600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12. <b>Instituto Nacional de Salud. </b> Manual t&eacute;cnico. Materiales impregnados con insecticida para el control de la malaria y otras enfermedades transmitidas por vectores. Bogot&aacute;: Kimpres Ltda.; 2004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-4157201400030001600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>13. <b>American Mosquito Control Association (AMCA). </b> Manual for mosquito rearing en experimental techniques. Bulletin N&ordm; 5. California: Board-Mosquito News; 1970. p. 1-124.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-4157201400030001600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>14. <b>Neter J, Kutner M, Nachtsheim C, Wasserman W. </b> Applied linear statistical models. Fourth edition. New York: McGraw-Hill/Irwin; 1996.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-4157201400030001600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>15. <b>Zeichner BC, Perich MJ. </b> Laboratory testing of a lethal ovitrap for <i>Aedes aegypti. </i>Med Vet Entomol. 1999;13: 234-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-4157201400030001600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16. <b>Ayala-Sulca Y, Ibarra-Ju&aacute;rez L, Grieco JP, Achee N, Mercado-Hern&aacute;ndez R, Fern&aacute;ndez-Salas I. </b> Respuesta conductual de <i>Aedes aegypti </i>(Linnaeus, 1762) frente a adulticidas piretroides de uso frecuente en salud p&uacute;blica. Rev Peru Med Exp Salud P&uacute;blica. 2008;25:26-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-4157201400030001600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17. <b>Lenhart A, Walle M, Cedillo H, Kroeger A. </b> Building a better ovitrap for detecting <i>Aedes aegypti </i>oviposition. Acta Trop. 2005;96:56-59. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.actatropica.2005.06.020" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.actatropica.2005.06.020</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0120-4157201400030001600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. <b>Muir L, Kay BH, Thorne MJ. </b><i>Aedes aegypti </i>(Diptera: Culicidae) vision: Response to stimuli from the optical environment. J Med Entomol. 1992;29:445-50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0120-4157201400030001600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>19. <b>Badano E, Regidor H. </b> Selecci&oacute;n de h&aacute;bitat de oviposici&oacute;n en <i>Aedes aegypti </i>(Diptera: Culicidae) mediante est&iacute;mulos f&iacute;sicos. Ecol Austral. 2002;12:129-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0120-4157201400030001600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>20. <b>Ocampo CB, Gonz&aacute;lez C, Morales CA, P&eacute;rez M, Wesson D, </b><b>Apperson CS. </b>Evaluation of community-based strategies for <i>Aedes aegypti </i>control in houses in Cali, Colombia. Biom&eacute;dica. 2009;29:282-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0120-4157201400030001600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21. <b>Reiter P, Amador M, Colon N. </b> Enhancement of the CDC ovitrap with hay infusions for daily monitoring of <i>Aedes aegypti </i> populations. J Am Mosq Control Assoc. 1991;7:52-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0120-4157201400030001600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>22. <b>Tang CS, Lam-Phuab SG, Chunga YK, Gigerc AD. </b>Evaluation of a grass infusion-baited autocidal ovitrap for the monitoring of <i>Aedes aegypti </i>(L.). Dengue Bulletin. 2007;3:131-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0120-4157201400030001600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>23. <b>Torres JL, Rodr&iacute;guez M. </b>Se&ntilde;ales f&iacute;sico qu&iacute;micas involucradas en la b&uacute;squeda de hospederos y en la inducci&oacute;n de picadura por mosquitos. Salud P&uacute;blica M&eacute;x. 2003;45: 497-505.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0120-4157201400030001600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>24. <b>Cork A. </b> Olfactory basis of host location by mosquitoes and other haematophagous Diptera. En: Bock GR, Cardew G, editors. Olfaction in mosquitoes-host interactions. Ciba Foundation Symposium 200. Chichester: John Wiley &amp; Sons; 1996. p. 71-88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0120-4157201400030001600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>25. <b>Louren&ccedil;o de Oliveira R, Lima JB, Peres R, Alves F da C, Eiras AE, </b><b>Code&ccedil;o CT. </b>Comparison of different uses of adult traps and ovitraps for assessing dengue vector infestation in endemic areas. J Am Mosq Control Assoc. 2008;24:387- 92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0120-4157201400030001600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>26. <b>Santos S, Melo-Santos M, Regis L, Albuquerque C. </b> Field evaluation of ovitraps consociated with grass infusion and <i>Bacillus thuringiensis </i>var. <i>israelensis </i>to determine oviposition rates of <i>Aedes aegypti. </i> Dengue Bulletin. 2003;27:156-62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0120-4157201400030001600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>27. <b>Gama RA, Eiras AE, Carvalho de Resende M. </b> Effect of lethal ovitrap on the longevity of females of <i>Aedes aegypti </i>(Diptera: Culicidae). Rev Soc Bras Med Trop. 2007;40:640-2. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S0037-86822007000600008" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1590/S0037-86822007000600008</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0120-4157201400030001600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. <b>Dom&iacute;nguez MA. </b> Evaluaci&oacute;n de ovitrampas como sistema de vigilancia entomol&oacute;gica en sitios p&uacute;blicos de Chetumal, Quintana Roo (tesis). M&eacute;xico: Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n; 2010. p. 1-61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0120-4157201400030001600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>29. <b>Marques CC, Marques GR, de Brito M, dos Santos Neto LG, Ishibashi V de C, Gomes F de A. </b> Comparative study of the efficiency of larval and ovitraps for the surveillance of dengue and yellow fever vectors. Rev Sa&uacute;de P&uacute;blica. 1993;27:237-41. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S0034-89101993000400002" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1590/S0034-89101993000400002</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0120-4157201400030001600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. <b>Braga IA, Gomes-Ade C, Nelson M, Mello R de C, Bergamaschi DP, de Souza JM. </b>Comparative study between larval surveys and ovitraps to monitor populations of <i>Aedes aegypti </i>. <i></i>Rev Soc Bras Med Trop. 2000;33:347-53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S0120-4157201400030001600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>31. <b>Villaseca C, Le&oacute;n C, Palomino S, Mostorino E, Lecca G. </b> Validaci&oacute;n de sustratos atractivos a oviposici&oacute;n para la detecci&oacute;n de <i>Aedes aegypti </i>. 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