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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Diseminación de Klebsiella pneumoniae productoras de KPC-3 en hospitales de Bogotá durante un periodo de tres años]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction : One of the major worldwide public health problems today are the infections caused by carbapenem-resistant Enterobacteriaceae (CRE), among which carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae (CRKP), constitutes one of the most common pathogens causing nosocomial infection. Objective: This study was aimed at describing the dissemination of KPC-3 enzyme-producing Klebsiella pneumoniae in clinical isolates from hospitals in Bogotá. Materials and methods: Eighty-two CRKP isolates collected from 10 hospitals in Bogotá from 2008-2010 were analysed; disk diffusion and microdilution were used for phenotypic detection of enzymes and PCR for genotyping. Automated and manual methods were used for determining profiles for antimicrobial susceptibility testing (AST) with 13 agents. PFGE was used for obtaining the isolates´ genetic relationship. Results: This study gives an overview of CRKP patterns in 10 hospitals in Bogota which were found to present resistance to multiple antibiotic families. The CRKPs were grouped in different clones, each having different subtypes, and were spread in the 10 hospitals over the three-year period (2008-2010). Conclusions: The dissemination of KPC-3-producing Klebsiella pneumoniae nosocomial isolates in Bogota highlights the need for strengthening epidemiological surveillance against this type of microorganism and the development of specific priority activities for preventing and controlling such infection.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>COMUNICACI&Oacute;N BREVE</p>     <p>doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1696" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1696</a> </p>     <p><font size="4">    <center><b>Diseminaci&oacute;n de <i>Klebsiella pneumoniae </i>productoras de KPC-3 en hospitales de Bogot&aacute; durante un periodo de tres a&ntilde;os</b></center></font></p>     <p>    <center>Edna Catering Rodr&iacute;guez <sup>1</sup>, Sandra Yamile Saavedra <sup>1</sup>, Aura Luc&iacute;a Leal <sup>1</sup>, Carlos &Aacute;lvarez <sup>2</sup>, Narda Olarte <sup>3</sup>, Alberto Valderrama <sup>3</sup>, Sonia Isabel Cuervo <sup>4</sup>, Javier Escobar <sup>5</sup></center></p>     <p><sup>1</sup> <b></b>Grupo de Resistencia Bacteriana de Bogot&aacute; (GREBO), Bogot&aacute;, D.C., Colombia </p>     <p><sup>2</sup> <b></b>Hospital Universitario San Ignacio, Bogot&aacute;, D.C., Colombia </p>     <p><sup>3</sup> <b></b>Hospital El Tunal, Bogot&aacute;, D.C., Colombia </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><sup>4</sup> <b></b>Instituto Nacional de Cancerolog&iacute;a, Bogot&aacute;, D.C., Colombia </p>     <p><sup>5</sup> <b></b>Instituto de Gen&eacute;tica Molecular, Universidad El Bosque, Bogot&aacute;, D.C., Colombia </p>     <p><b>Contribuci&oacute;n de los autores: </b></p>     <p>Edna Rodr&iacute;guez: caracterizaci&oacute;n fenot&iacute;pica de los aislamientos, determinaci&oacute;n de relaci&oacute;n 'clonal' y an&aacute;lisis de resultados. </p>     <p>Sandra Yamile Saavedra: caracterizaci&oacute;n gen&eacute;tica de los aislamientos. </p>     <p>Aura Luc&iacute;a Leal: obtenci&oacute;n de aislamientos y an&aacute;lisis de resultados. </p>     <p>Narda Olarte: obtenci&oacute;n de aislamientos y datos demogr&aacute;ficos, an&aacute;lisis de resultados, elaboraci&oacute;n del manuscrito. </p>     <p>Carlos &Aacute;lvarez, Alberto Valderrama y Sonia Isabel Cuervo: obtenci&oacute;n de aislamientos y datos demogr&aacute;ficos, y an&aacute;lisis de resultados. </p>     <p>Javier Escobar: tipificaci&oacute;n molecular de aislamientos. </p>     <p>Todos los autores participaron en la escritura del manuscrito.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Recibido: 05/06/13; aceptado: 17/01/14</p>  <hr size="1">     <p><b>Introducci&oacute;n. </b>Uno de los principales problemas de salud p&uacute;blica a nivel mundial son las infecciones producidas por enterobacterias resistentes a los carbapen&eacute;micos, entre las cuales <i>Klebsiella pneumoniae </i>es uno de los pat&oacute;genos que con mayor frecuencia causa infecciones en el &aacute;mbito hospitalario. </p>     <p><b>Objetivo. </b> El objetivo del estudio fue describir la diseminaci&oacute;n de aislamientos cl&iacute;nicos de <i>K. pneumoniae </i> productores de la enzima KPC-3 recuperados en hospitales de Bogot&aacute;. </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos. </b>Se analizaron 82 aislamientos de <i>K. pneumoniae </i>resistentes a antibi&oacute;ticos carbapen&eacute;micos recuperados entre el 2008 y el 2010 en 10 hospitales, a los cuales se les realizaron pruebas de detecci&oacute;n fenot&iacute;pica de enzimas por difusi&oacute;n de disco y microdiluci&oacute;n, y de detecci&oacute;n genot&iacute;pica por PCR. La determinaci&oacute;n de perfiles de sensibilidad frente a 13 antimicrobianos se realiz&oacute; por m&eacute;todos automatizados y manuales. La relaci&oacute;n gen&eacute;tica de los aislamientos se obtuvo por la t&eacute;cnica de PFGE. </p>     <p><b>Resultados. </b> Este estudio presenta el panorama del comportamiento de las enterobacterias resistentes a los carbapen&eacute;micos diseminadas en el curso de tres a&ntilde;os en 10 hospitales de la ciudad, con caracter&iacute;sticas de resistencia a m&uacute;ltiples familias de antibi&oacute;ticos y pertenecientes a varios grupos de clones, cada uno con diferentes subtipos. </p>     <p><b>Conclusiones. </b> La diseminaci&oacute;n de aislamientos cl&iacute;nicos de <i>K. pneumoniae </i> productores de enzima KPC-3 en Bogot&aacute; plantea la necesidad de fortalecer las acciones de vigilancia epidemiol&oacute;gica frente a este tipo de microorganismos y el desarrollo prioritario de actividades espec&iacute;ficas de prevenci&oacute;n y control de infecciones. </p>     <p><b>Palabras clave: </b><i>Klebsiella pneumoniae </i>, farmacorresistencia bacteriana, salud p&uacute;blica, hospitales, Colombia. </p>     <p>doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1696" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1696</a> </p> <hr size="1">     <p><font size="3"><b>The spread of KPC-3 <i> Klebsiella pneumoniae </i> in hospitals in Bogot&aacute; over a three-year period (2008-2010) </b></font></p>     <p><b>Introduction </b><b>: </b>One of the major worldwide public health problems today are the infections caused by carbapenem-resistant <i>Enterobacteriaceae </i> (CRE), among which carbapenem-resistant <i>Klebsiella pneumoniae </i> (CRKP), constitutes one of the most common pathogens causing nosocomial infection. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Objective: </b>This study was aimed at describing the dissemination of KPC-3 enzyme-producing <i>Klebsiella pneumoniae </i> in clinical isolates from hospitals in Bogot&aacute;. </p>     <p><b>Materials and methods: </b>Eighty-two CRKP isolates collected from 10 hospitals in Bogot&aacute; from 2008-2010 were analysed; disk diffusion and microdilution were used for phenotypic detection of enzymes and PCR for genotyping. Automated and manual methods were used for determining profiles for antimicrobial susceptibility testing (AST) with 13 agents. PFGE was used for obtaining the isolates' genetic relationship. </p>     <p><b>Results: </b>This study gives an overview of CRKP patterns in 10 hospitals in Bogota which were found to present resistance to multiple antibiotic families. The CRKPs were grouped in different clones, each having different subtypes, and were spread in the 10 hospitals over the three-year period (2008-2010). </p>     <p><b>Conclusions: </b>The dissemination of KPC-3-producing <i>Klebsiella pneumoniae </i> nosocomial isolates in Bogota highlights the need for strengthening epidemiological surveillance against this type of microorganism and the development of specific priority activities for preventing and controlling such infection. </p>     <p><b>Key words: </b><i>Klebsiella pneumonia </i>; drug resistance, bacterial; public health <i>, </i>hospitals, Colombia. </p>     <p>doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1696" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1696</a> </p> <hr size="1">     <p>La resistencia a los antimicrobianos plantea una amenaza cada vez mayor para la salud p&uacute;blica. En el mundo, las cepas resistentes de algunos agentes infecciosos est&aacute;n repercutiendo de forma devastadora en el control de enfermedades. Uno de los principales problemas que han centrado la atenci&oacute;n del mundo acad&eacute;mico y cient&iacute;fico, de las autoridades sanitarias y de la comunidad en general son las infecciones producidas por enterobacterias resistentes a los carbapen&eacute;micos o enterobacterias productoras de carbapenemasas, las cuales est&aacute;n emergiendo como importantes agentes pat&oacute;genos en los centros de atenci&oacute;n en salud (1). </p>     <p>Actualmente, <i>Klebsiella pneumoniae </i> resistente a carbapen&eacute;micos es una de las especies de enterobacterias resistentes a estos medicamentos m&aacute;s com&uacute;nmente aisladas en Estados Unidos, y su importancia radica en que es resistente a casi todos los agentes antimicrobianos disponibles (2). La Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud (OPS) resalta la importancia de la detecci&oacute;n de este mecanismo de resistencia que incrementa de manera importante la morbilidad y la mortalidad en los pacientes afectados y, particularmente, de los infectados por <i>K. pneumoniae </i>, microorganismo que puede ser causante de 20 a 30 % de los casos de neumon&iacute;as asociadas a la atenci&oacute;n en salud en la regi&oacute;n y se encuentra entre los tres primeros pat&oacute;genos aislados en bacteriemias hospitalarias causadas por microorganismos Gram negativos (3). Asimismo, se le han atribuido tasas de mortalidad de m&aacute;s de 50 % (1,4,5). </p>     <p>La clasificaci&oacute;n de las betalactamasas se basa tradicionalmente en sus caracter&iacute;sticas funcionales o estructura primaria; teniendo en cuenta la secuencia de prote&iacute;nas se establecen cuatro grupos, A, B, C, y D (6), clasificaci&oacute;n en la que se encuentran las carbapenemasas, enzimas capaces de hidrolizar la mayor parte de betalact&aacute;micos, incluidos los carbapen&eacute;micos; las de clase B o metalo-betalactamasas, por ejemplo, VIM ( <i>Verona Integron-encoded Metallo-betalactamase) </i> o IMP (imipenemasa), que no presentan actividad frente a aztreonam y cuya acci&oacute;n es inhibida con EDTA ( <i>ethylene-diamine-tetra-acetic acid </i>); las de clase D, que tienen actividad frente a oxacilinas, siendo la OXA-48 la m&aacute;s frecuentemente reportada, y, por &uacute;ltimo, las de clase A, que suelen ser sensibles a la acci&oacute;n del &aacute;cido clavul&aacute;nico y presentan una menor actividad frente a meropenem que a imipenem, y de las cuales la KPC ( <i>Klebsiella </i><i>pneumoniae carbapenemase </i>) es la m&aacute;s amplia mente diseminada en todo el mundo en sus variantes KPC-2 y KPC-3 (7). </p>     <p>La prevalencia actual de los aislamientos produc tores de carbapenemasas todav&iacute;a se desconoce debido a que en muchos pa&iacute;ses no se han establecido protocolos para su detecci&oacute;n. En Colombia, la magnitud del problema ha sido evidenciada por distintas redes de investigaci&oacute;n, que han reportado la presencia de este tipo de enzimas circulando en diferentes hospitales (8) (Saavedra SY, &Aacute;lvarez CA, Cuervo SI, Olarte N, Escobar JA, Leal AL, <i>et al </i>. Dissemination of a clone KPC-3-producing <i>Klebsiella pneumoniae </i> in hospitals, Bogota, Colombia. 20 th European Congress of Clinical Microbiology and Infectious Diseases . Vienna, Austria, April 10-13, 2010. <i></i>Clin Microbiol Infect. 2010;16(S3):S361; Saavedra SY, Alvarez CA, Saavedra C, Cuervo SI, Escobar JA, Ovalle MV, <i>et al </i>. Diseminaci&oacute;n de aislamientos de <i>Klebsiella pneumoniae </i> productores de KPC en hospitales de Colombia. VII Encuentro Nacional de Investigaci&oacute;n en Enfermedades Infecciosas. Infectio. 2010:14(Supl.1):79 ). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El objetivo de este estudio fue describir la diseminaci&oacute;n de aislamientos cl&iacute;nicos de <i>K. pneumoniae </i>productores de la enzima KPC-3 recuperados en 10 hospitales de alta complejidad pertenecientes al Grupo de Resistencia Bacteriana de Bogot&aacute; (GREBO) durante el periodo de enero de 2008 a diciembre de 2010. </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>     <p><b><i>Muestra </i></b></p>     <p>En el estudio se utilizaron 82 aislamientos de <i>K. pneumoniae </i> recuperados entre enero de 2008 y diciembre de 2010 en 10 hospitales de tercer nivel de complejidad pertenecientes a la red GREBO de Bogot&aacute;, ocho de naturaleza p&uacute;blica y dos privados, con un promedio de egresos anuales superior a 17.000 durante el periodo de estudio y con un n&uacute;mero promedio de 250 camas distribuidas en las unidades de cuidados intensivos de adultos y neonatos y en los servicios especializados. Los aislamientos fueron remitidos para ser procesados en el laboratorio de la Universidad Nacional de Colombia con caracterizaci&oacute;n previa del perfil de sensibilidad establecida mediante los m&eacute;todos automatizados disponibles en cada instituci&oacute;n. </p>     <p><b><i>Determinaci&oacute;n de perfiles de sensibilidad antimicrobiana </i></b></p>     <p>La determinaci&oacute;n se realiz&oacute; para los antibi&oacute;ticos ampicilina y sulbactam, aztreonam, ceftriaxona, ceftazidima, cefotaxima, cefepime, amikacina, gentamicina, trimetoprim-sulfametoxasol, tigeciclina, imipenem y meropenem con los paneles o las tarjetas de los equipos automatizados o semi- automatizados disponibles en cada instituci&oacute;n, los cuales inclu&iacute;an Microscan <b>&reg; </b> (Siemens), Phoenix <b>&reg; </b>(Beckton Dickinson) y Vitek <b>&reg; </b> (bioM&eacute;rieux). </p>     <p>Para determinar la concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima (CIM) del imipenem y el meropenem se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica del E-test &reg; utilizando la cepa de <i>Escherichia coli </i> ATCC 25922 como control de referencia y siguiendo las recomendaciones del <i>Clinical and Laboratory Standards Institute </i> (CLSI) (9). Para la tigeciclina, los aislamientos se evaluaron con el m&eacute;todo de microdiluci&oacute;n en caldo (Sensititre &reg; panels; TREK Diagnostic Systems, Westlake, OH); la interpretaci&oacute;n de los resultados se hizo utilizando los puntos de corte establecidos por la <i>Food and Drugs Administration </i> (FDA). Con el mismo m&eacute;todo se evalu&oacute; la sensibilidad a la colistina y la polimixina en los aislamientos de cada grupo 'clonal' y la interpretaci&oacute;n de los resultados se hizo utilizando los puntos de corte establecidos por el <i>European Committee on Antimicrobial </i><i>Susceptibility Testing </i> (EUCAST). </p>     <p>A todos los aislamientos se les practic&oacute; la prueba de difusi&oacute;n con disco (Kirby-Bauer) frente a los mismos antibi&oacute;ticos probados por microdiluci&oacute;n. La determinaci&oacute;n de la presencia de enzimas del tipo de las betalactamasas de espectro extendido (BLEE) se realiz&oacute; por prueba confirmatoria de doble disco con &aacute;cido clavul&aacute;nico. La producci&oacute;n de carbapenemasas se detect&oacute; inicialmente usando la prueba modificada de Hodge y la prueba de sinergia con meropenem y &aacute;cido fenil-bor&oacute;nico como tamizaci&oacute;n de la expresi&oacute;n de carbapenemasas clase A. </p>     <p><b><i>Detecci&oacute;n de betalactamasas BLEE y carbapenemasas </i></b></p>     <p>La extracci&oacute;n de ADN de los aislamientos se hizo por ebullici&oacute;n; todos los aislamientos se evaluaron para carbapenemasas ( <i>bla </i>KPC) (10), betalactamasas AmpC de pl&aacute;smidos (11) y betalactamasas BLEE (genes <i>blaTEM </i>, <i>blaSHV </i>y <i>blaCTX-M) </i>(12). En los aislamientos positivos para CTX-M se confirm&oacute; el filogrupo por PCR (13). El tipo de carbapenemasa KPC se determin&oacute; por ensayo de restricci&oacute;n para diferenciar KPC-2 y KPC-3 (14) y por secuenciaci&oacute;n directa del producto de amplificaci&oacute;n, el cual fue analizado con el programa BLAST <i>(Basic Local Alignment Search Tool) </i>(http://www.ncbi.nim.gov.co/BLAST). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Electroforesis en gel de campo pulsado </i></b></p>     <p>Esta prueba se hizo en los 82 aislamientos seleccionados utilizando la enzima de restricci&oacute;n <i>Xba </i>I con el equipo CHEF-DR &reg; IIII (Bio-Rad). La electroforesis se corri&oacute; con un tiempo inicial de 2,2 segundos, un tiempo final de 63,8 segundos, y una corriente de seis voltios durante 18 horas en tamp&oacute;n TBE (tris-borate-EDTA, pH 8,4) a 14 &deg;C. </p>     <p>Los resultados se analizaron con el m&eacute;todo de UPGMA ( <i>Unweighted Pair Group Method using Arithmetic Average </i>) y el coeficiente de Dice del programa GelCompar, versi&oacute;n 4.0 (BioRad). Los patrones de PFGE que se agruparon con una similitud de m&aacute;s de 75 % se consideraron como pertenecientes al mismo grupo 'clonal'. </p>     <p><b>Resultados </b></p>     <p>Durante el periodo de estudio, los 82 aislamientos hab&iacute;an sido recuperados y caracterizados como resistentes a carbapen&eacute;micos en los hospitales que los remitieron al GREBO. Los aislamientos se recuperaron de los siguientes tipos de muestra: 32,9 % de orina, 25,6 % de sangre y el restante 41,5 % de cultivos de punta de cat&eacute;ter, aspirado traqueal, herida quir&uacute;rgica, hueso, lavado bronquial, l&iacute;quidos corporales est&eacute;riles y secreciones peritoneales. </p>     <p>Todos presentaron resistencia a la combinaci&oacute;n de ampicilina y sulbactam, a aztreonam, a cefepime, a ceftriaxona, a ciprofloxacina y a gentamicina; 28 % (23/82) fue detectado por los sistemas automatizados como positivo para BLEE; sin embargo, al practicar la prueba confirmatoria se encontraron 18 aislamientos adicionales 41/82 (50 %). Todos los aislamientos fueron positivos en la prueba de Hodge y en la de sinergia con &aacute;cido bor&oacute;nico. </p>     <p>En cerca de la mitad de los resultados generados para amikacina, se presentaron discrepancias entre la determinaci&oacute;n con los sistemas automatizados y la prueba manual, mostrando un porcentaje de resistencia de 48,7 % (40/82) y de 83 % (68/82), respectivamente. Todos los aislamientos presentaron sensibilidad a tigeciclina. </p>     <p>Los resultados se analizaron con los puntos de corte establecidos por el CLSI, 2010, para interpretar los resultados de sensibilidad antimicrobiana frente a carbapen&eacute;micos, y se hall&oacute; que los paneles con imipenem y meropenem utilizados por los hospitales remitentes de los aislamientos permitieron clasificar 87,8 % de ellos como resistentes, y el restante 12,2 % en la categor&iacute;a de sensible utilizando equipo automatizado. </p>     <p>La determinaci&oacute;n de la CIM para carbapen&eacute;micos con la t&eacute;cnica de E-test mostr&oacute; una CIM mayor de 32 &micro;g/ml para meropenem en 73,8 % de los aislamientos, mientras que para imipenem se present&oacute; una CIM de 8 &micro;g/ml en 19 % y una mayor de 256 &micro;g/ml en 29,4 % de los aislamientos. </p>     <p>Por otra parte, se probaron los aislamientos con ertapenem por difusi&oacute;n, identific&aacute;ndolos como resistentes. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En el <a href="#cuadro1">cuadro 1</a> se puede observar la comparaci&oacute;n de los resultados obtenidos con los puntos de corte del CLSI, 2012, lo que evidenci&oacute; que todos los aislamientos resultaron resistentes con las t&eacute;cnicas empleadas. Los antibi&oacute;ticos colistina y polimixina se evaluaron en un representante de cada clon, obteni&eacute;ndose una CIM menor de 2 &micro;g/ml para cada antibi&oacute;tico, lo que los ubic&oacute; en la clasificaci&oacute;n de sensibles. </p>     <p>    <center>     <a name="cuadro1"><img src="img/revistas/bio/v34s1/v34s1a25t1.gif"></a>     </center> </p>     <p>En todos los aislamientos se observ&oacute; amplificaci&oacute;n con el iniciador para KPC, confirm&aacute;ndose posteriormente la variante KPC-3 por ensayo de restricci&oacute;n en la totalidad de los aislamientos; a 19 % de ellos se le realiz&oacute; ensayo de secuenciaci&oacute;n. Todos los aislamientos fueron positivos para <i>bla </i>TEM, 96 % fue positivo para <i>bla </i>SHV y tres aislamientos fueron positivos para CTX-M (dos aislamientos del filogrupo CTX-M-1 y un aislamiento del CTX-M-2). Ning&uacute;n aislamiento amplific&oacute; con los iniciadores para AmpC de pl&aacute;smidos. </p>     <p>En el ensayo de subtipificaci&oacute;n por PFGE de los 82 aislamientos, se encontraron tres grupos 'clonales' diferentes denominados por las primeras letras del alfabeto, A, B y C (<a href="#figura1">figura 1</a>); los grupos 'clonales' A y B mostraron una relaci&oacute;n entre ellos de m&aacute;s de 75 %; el grupo A conten&iacute;a 39 aislamientos distribuidos en 18 subtipos diferentes; el grupo B conten&iacute;a 25 aislamientos con 14 subtipos, y, por &uacute;ltimo, el grupo C, con 13 aislamientos y nueve subtipos, se relacion&oacute; en m&aacute;s de 70 % con A y B; los subtipos de cada grupo se encontraron a lo largo de los tres a&ntilde;os de estudio y en diferentes hospitales. Los aislamientos que no se agruparon en ning&uacute;n clon correspond&iacute;an a tres hospitales diferentes y se aislaron en 22008 y 2010. </p>     <p>    <center>   <a name="figura1"><img src="img/revistas/bio/v34s1/v34s1a25i1.jpg"></a></center> </p>     <p><b>Discusi&oacute;n </b></p>     <p>Desde el primer reporte de KPC y su posterior diseminaci&oacute;n a otros pa&iacute;ses a mediados de los a&ntilde;os noventa (15,16) son numerosos los informes sobre microorganismos que adquirieron elementos gen&eacute;ticos que codifican para estas enzimas, lo cual ha permitido observar y describir su variado comportamiento frente a los antibi&oacute;ticos utilizados para su contenci&oacute;n y control. </p>     <p>En Colombia este fen&oacute;meno se report&oacute; desde el 2006, cuando se encontr&oacute; la variante KPC-2 (8), aunque tambi&eacute;n se ha presentado la variante KPC-3 en aislamientos relacionados con brotes (17) (Saavedra SY, &Aacute;lvarez CA, Cuervo SI, Olarte N, Escobar JA, Leal AL, <i>et al </i>. Dissemination of a clone KPC-3-producing <i>Klebsiella pneumoniae </i> in hospitals, Bogot&aacute;, Colombia. 20 th European Congress of Clinical Microbiology and Infectious Diseases . Vienna, Austria, April 10-13, 2010. Clin Microbiol Infect. 2010;16(S3):S361; Saavedra SY, &Aacute;lvarez CA, Saavedra C, Cuervo SI, Escobar JA, Ovalle MV, <i>et al </i>. Diseminaci&oacute;n de aislamientos de <i>Klebsiella pneumoniae </i> productores de KPC en hospitales de Colombia. VII Encuentro Nacional de Investigaci&oacute;n en Enfermedades Infecciosas. Infectio. 2010:14(Supl.1):79). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Nuestros resultados proporcionan un panorama del comportamiento de las KPC en Bogot&aacute;, que se resume en los siguientes tres aspectos. </p>     <p>1) Se evidenci&oacute; la presencia de clones que estuvieron circulando durante los tres a&ntilde;os de estudio en 10 hospitales de Bogot&aacute;, lo que demuestra el &eacute;xito de este tipo de mecanismos de resistencia para mantenerse en el tiempo y diseminarse. </p>     <p>2) Las CIM elevadas encontradas en nuestros aislamientos contrastan con lo reportado en otros microorganismos portadores de KPC-3 que se caracterizan por presentar resistencia de bajo nivel, por lo menos, frente a los carbapen&eacute;micos (18), situaci&oacute;n que tiene un impacto cl&iacute;nico, especial mente en lo referente al uso de tratamientos combinados con antibi&oacute;ticos que han demostrado actividad frente a productores de KPC, como los aminogluc&oacute;sidos (19), aunque en nuestra evaluaci&oacute;n la gentamicina, por ejemplo, present&oacute; resistencia en m&aacute;s de 96 % de los aislamientos. </p>     <p>Considerando lo anterior, se hace necesario que los laboratorios de microbiolog&iacute;a garanticen sus t&eacute;cnicas actuales y trabajen en su mejoramiento continuo, con el fin de generar resultados que reflejen con mayor certeza datos como los de la CIM, ya que es una de las variables en las que se fundamenta el tratamiento contra estos microorganismos. </p>     <p>Otros antibi&oacute;ticos, como la colistina y la tigeciclina, se utilizan para el tratamiento contra microorganismos portadores de carbapenemasas (20,21), y nuestros aislamientos presentaron sensibilidad <i>in vitro </i>frente a estos dos agentes. Sin embargo, actualmente ya hay reportes de aislamientos portadores de KPC resistentes a estos antibi&oacute;ticos en Estados Unidos (22), Europa (23,24) Asia (25) y, m&aacute;s recientemente, en Suram&eacute;rica (26). </p>     <p>3) Por &uacute;ltimo, la variante KPC-3 result&oacute; ser el mecanismo de resistencia a carbapen&eacute;micos m&aacute;s frecuente entre los aislamientos estudiados, situaci&oacute;n que no es usual en pa&iacute;ses de Am&eacute;rica pero s&iacute; en Europa y Asia, donde se ha asociado principalmente con pacientes que viajaron a zonas end&eacute;micas (27-30). </p>     <p>Los sistemas de determinaci&oacute;n de la sensibilidad antimicrobiana, ya fueran los m&eacute;todos automatizados o los manuales, mostraron diferencias en la detecci&oacute;n de enzimas de tipo BLEE y en la determinaci&oacute;n de la resistencia a amikacina y a carbapen&eacute;micos, lo cual sugiere que el antibiograma debe analizarse en un contexto global en el que se tengan en cuenta todas las variables que puedan influenciar el resultado. Aqu&iacute; se demuestra que la combinaci&oacute;n de las dos t&eacute;cnicas increment&oacute; la detecci&oacute;n de este tipo de mecanismos de resistencia. </p>     <p>Este trabajo colaborativo permiti&oacute; identificar que las instituciones participantes cuentan con la capacidad t&eacute;cnica para llevar a cabo las caracterizaciones fenot&iacute;picas de identificaci&oacute;n y establecer los perfiles de sensibilidad, as&iacute; como algunas pruebas de tamizaci&oacute;n de enzimas. Se debe trabajar para introducir pruebas confirmatorias de los patrones de sensibilidad y contar con el apoyo de laboratorios de referencia en estudios de biolog&iacute;a molecular que pueden aportar de forma significativa al an&aacute;lisis, la tipificaci&oacute;n, la caracterizaci&oacute;n de brotes, la detecci&oacute;n de clones epid&eacute;micos y la diseminaci&oacute;n local de microorganismos resistentes. </p>     <p>La diseminaci&oacute;n de aislamientos cl&iacute;nicos de <i>K. pneumoniae </i> productores de enzima KPC-3 en Bogot&aacute; subraya la necesidad de fortalecer las acciones de vigilancia epidemiol&oacute;gica frente a estos microorganismos y el desarrollo prioritario de actividades espec&iacute;ficas de prevenci&oacute;n y control de infecciones. </p>     <p>Frente al surgimiento y diseminaci&oacute;n de este tipo de resistencia con tan importante impacto cl&iacute;nico, es fundamental establecer pol&iacute;ticas institucionales que permitan su contenci&oacute;n. Entre ellas se debe incluir, en primer lugar, el desarrollo y fortalecimiento de programas de vigilancia de bacterias resistentes en los hospitales, que incluyan aspectos como la estandarizaci&oacute;n de t&eacute;cnicas para la detecci&oacute;n y la confirmaci&oacute;n de estos perfiles en los laboratorios de microbiolog&iacute;a, as&iacute; como la optimizaci&oacute;n de los procesos y flujos de informaci&oacute;n con los laboratorios de referencia. En los sistemas de vigilancia institucional se deben definir los microorganismos prioritarios con su marcador de resistencia, por ejemplo, SARM, <i>Klebsiella </i>KPC, <i>Acinetobacter </i>resistente a carbapen&eacute;micos, o <i>Clostriduim difficile, </i>de acuerdo con la epidemiologia local. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En segundo lugar, deben desarrollarse y fortalecerse los programas de control de infecciones causadas por microorganismos multirresistentes que est&eacute;n orientados a la prevenci&oacute;n de la diseminaci&oacute;n y, asimismo, implementar estrategias basadas en la informaci&oacute;n cient&iacute;fica disponible que sean costo-efectivas, como la higiene de las manos, las precauciones de aislamiento, la educaci&oacute;n, la desinfecci&oacute;n de &aacute;reas, los programas de gerencia de antibi&oacute;ticos, la retroalimentaci&oacute;n institucional e interinstitucional y la b&uacute;squeda de alternativas o mecanismos orientados al cambio de cultura con relaci&oacute;n a la aplicaci&oacute;n permanente de medidas de prevenci&oacute;n que cuenten con mayor respuesta y con el compromiso administrativo tanto de las instituciones como de los entes de verificaci&oacute;n y control, de manera que este problema sea visto como prioridad de salud p&uacute;blica en nuestro pa&iacute;s. </p>     <p>    <center><b>Agradecimientos</b></center> </p>     <p>Nuestro reconocimiento a los hospitales pertene cientes al GREBO. <b></b></p>     <p>    <center><b>Conflicto de intereses </b></center> </p>     <p>Los autores de este manuscrito declaran que no hay conflicto de intereses. </p>     <p>    <center><b>Financiaci&oacute;n</b></center> </p>     <p>Este proyecto se financi&oacute; con recursos del GREBO.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Correspondencia: Edna Catering Rodr&iacute;guez, Grupo de Resistencia Bacteriana de Bogot&aacute; (GREBO), Calle 31 N&ordm; 33-38, 2&ordm; piso, Bogot&aacute;, D.C., Colombia    Tel&eacute;fono: 244 1508 <a href="mailto:edcrodriguezca@unal.edu.co">edcrodriguezca@unal.edu.co</a></p>     <p>    <center><b>Referencias</b></center> </p>     <!-- ref --><p>1. <b>Schwaber MJ, Carmeli Y. </b> Carbapenem-resistant <i>Enterobacteriaceae: </i> A potential threat. JAMA. 2008;24: 2911-3. <a href="http://dx.doi.org/10.1001/jama.2008.896" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1001/jama.2008.896</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-4157201400050002500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. <b>Lledo W, Hern&aacute;ndez M, L&oacute;pez E, Molinari OL, Soto RQ, Hern&aacute;ndez E, </b><b><i>et al. </i></b>Guidance for control of infections with carbapenem-resistant or carbapenemase-producing <i>Enterobacteriaceae </i>in acute care facilities. MMWR. 2009; 58:256-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-4157201400050002500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>3. <b>Lizaso D, Aguilera C. </b> Epidemiolog&iacute;a y factores de riesgo de mortalidad de las bacteriemias intrahospitalarias por bacilos gramnegativos. Rev Chil Infectol. 2008;5:368-73. <a href="http://dx.doi.org/10.4067/S0716-10182008000500010" target="_blank">http://dx.doi.org/10.4067/S0716-10182008000500010</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-4157201400050002500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. <b>Borer A, Saidel-Odes L, Riesenberg K, Eskira S, Peled N, Nativ R, </b><b><i>et al. </i></b> Attributable mortality rate for carbapenem-resistant <i>Klebsiella pneumoniae </i> bacteremia. Infect Control Hosp Epidemiol. 2009;10: 972-6. <a href="http://dx.doi.org/10.1086/605922" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1086/605922</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-4157201400050002500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. <b>Patel G, Huprikar S, Factor SH, Jenkins SG, Calfee DP. </b>Outcomes of carbapenem-resistant <i>Klebsiella pneumoniae </i>infection and the impact of antimicrobial and adjunctive therapies. Infect Control Hosp Epidemiol. 2008;12:1099- 1106. <a href="http://dx.doi.org/10.1086/592412" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1086/592412</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-4157201400050002500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. <b>Bush K, Jacoby GA. </b>Updated functional classification of beta- lactamases. Antimicrob Agents Chemother. 2010;54:969- 76. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01009-09" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01009-09</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-4157201400050002500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. <b>Mu&ntilde;oz-Price LS, Poirel L, Bonomo RA, Schwaber MJ, Daikos GL, Cormican M, <i>et al. </i></b> Clinical epidemiology of the global expansion of <i>Klebsiella pneumoniae </i>carbapenemases. Lancet Infect Dis. 2013;13:785-96. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/S1473-3099(13)70190-7" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/S1473-3099(13)70190-7</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-4157201400050002500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. <b>Villegas MV, Lolans K, Correa A, Su&aacute;rez CJ, L&oacute;pez JA, Vallejo M, <i> et al. </i></b>First detection of the plasmid-mediated class A carbapenemase KPC-2 in clinical isolates of <i>Klebsiella pneumoniae </i> from South America. Antimicrob Agents Chemother. 2006;50:2880-2. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00186-06" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00186-06</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-4157201400050002500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. <b>Clinical and Laboratory Standards Institute. </b>Performance standards for antimicrobial susceptibility testing: Nineteenth information supplement. M100 S-19. Wayne, PA: CLSI; 2009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-4157201400050002500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>10. <b>Bradford PA, Bratu S, Urban C, Visalli M, Mariano N, Landman D, <i>et al. </i></b> Emergence of carbapenem-resistant <i>Klebsiella </i> species possessing the class A carbapenem- hydrolyzing KPC-2 and inhibitor-resistant TEM-30 beta- lactamases in New York City. Clin Infect Dis. 2004;39:55-60. <a href="http://dx.doi.org/10.1086/421495" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1086/421495</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-4157201400050002500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. <b>P&eacute;rez-P&eacute;rez FJ, Hanson ND. </b>Detection of plasmid-mediated AmpC beta-lactamase genes in clinical isolates by using multiplex PCR. J Clin Microbiol. 2002;40:2153-62. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/JCM.40.6.2153-2162.2002" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/JCM.40.6.2153-2162.2002 </a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-4157201400050002500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. <b>Monstein HJ, Ostholm-Balkhed A, Nilsson MV, Nilsson M, Dornbusch K, Nilsson LE. </b>Multiplex PCR amplification assay for the detection of <i>blaSHV, blaTEM </i> and <i>blaCTX-M </i>genes in <i>Enterobacteriaceae. </i>APMIS. 2007;115:1400-8. <a href="http://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0463.2007.00722.x" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0463.2007.00722.x</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-4157201400050002500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. <b>Woodford N, Fagan EJ, Ellington MJ. </b> Multiplex PCR for rapid detection of genes encoding CTX-M extended- spectrum (beta)-lactamases. J Antimicrob Chemother. 2006; 57:154-5. <a href="http://dx.doi.org/10.1093/jac/dki412" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1093/jac/dki412</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-4157201400050002500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. <b>Cole JM, Schuetz AN, Hill CE, Nolte FS. </b>Development and evaluation of a real-time PCR assay for detection of <i>Klebsiella pneumoniae </i> carbapenemase genes. J Clin Microbiol. 2009;47:322-6. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/JCM.01550-08" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/JCM.01550-08</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-4157201400050002500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. <b>Yigit H, Queenan AM, Anderson GJ, Domenech-S&aacute;nchez A, Biddle JW, Steward CD, <i> et al. </i></b>Novel carbapenem- hydrolyzing beta-lactamase, KPC-1, from a carbapenem- resistant strain of <i>Klebsiella pneumoniae. </i> Antimicrob Agents Chemother. 2001;45:1151-61. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.45.4.1151-1161.2001" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.45.4.1151-1161.2001</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-4157201400050002500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. <b>Samra Z, Ofir O, Lishtzinsky Y, Madar-Shapiro L, Bishara J. </b>Outbreak of carbapenem-resistant <i>Klebsiella pneumoniae </i>producing KPC-3 in a tertiary medical centre in Israel. Int J Antimicrob Agents. 2007;30:525-9. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2007.07.024" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2007.07.024</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-4157201400050002500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. <b>L&oacute;pez JA, Correa A, Navon-Venezia S, Correa AL, Torres JA, Brice&ntilde;o DF, <i> et al. </i></b>Intercontinental spread from Israel to Colombia of a KPC-3-producing <i>Klebsiella pneumoniae </i>strain. Clin Microbiol Infect. 2011;17:52-6. <a href="http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-0691.2010.03209.x" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-0691.2010.03209.x</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-4157201400050002500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. <b>Mojica MF, Correa A, Vargas DA, Maya JJ, Montealegre MC, Rojas LJ, <i> et al. </i></b>Molecular correlates of the spread of KPC-producing <i>Enterobacteriaceae </i> in Colombia. Int J Antimicrob Agents. 2012;40:277-9. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2012.05.006" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2012.05.006</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-4157201400050002500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. <b>Navon-Venezia S, Leavitt A, Schwaber MJ, Rasheed JK, Srinivasan A, Patel JB, <i>et al. </i></b>First report on a hyperepidemic clone of KPC-3-producing <i>Klebsiella pneumoniae </i> in Israel genetically related to a strain causing outbreaks in the United States. Antimicrob Agents Chemother. 2009;53:818-20. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00987-08" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00987-08</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-4157201400050002500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. <b>Guzm&aacute;n-Blanco M, Labarca JA, Villegas MV, Gotuzzo E. </b>Extended spectrum beta-lactamase producers among nosocomial <i>Enterobacteriaceae </i> in Latin America. Braz J Infect Dis. 2014. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.bjid.2013.10.005" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.bjid.2013.10.005</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-4157201400050002500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. <b>Petrosillo N, Giannella M, Antonelli M, Antonini M, Barsic B, Belancic L, </b><b><i>et al. </i></b>Colistin-glycopeptide combination in critically ill patients with Gram negative infection: The clinical experience. Antimicrob Agents Chemother. 2013. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00871-13">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00871-13</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-4157201400050002500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. <b>Bratu S, Tolaney P, Karumudi U, Quale J, Mooty M, Nichani S, <i>et al. </i></b> Carbapenemase-producing <i>Klebsiella pneumoniae </i> in Brooklyn, NY: Molecular epidemiology and <i> in vitro </i> activity of polymyxin B and other agents. J Antimicrob Chemother. 2005;56:128-32. <a href="http://dx.doi.org/10.1093/jac/dki175" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1093/jac/dki175</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-4157201400050002500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. <b>Zarkotou O, Pournaras S, Voulgari E, Chrysos G, </b><b>Prekates A, Voutsinas D, <i>et al. </i></b> Risk factors and outcomes associated with acquisition of colistin-resistant KPC- producing <i>Klebsiella pneumoniae </i>: A matched case-control study. J Clin Microbiol. 2010;48:2271-4. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/JCM.02301-09" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/JCM.02301-09</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-4157201400050002500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. <b>Toth A, Damjanova I, Puskas E, J&aacute;nv&aacute;ri L, Farkas M, Dob&aacute;k A, <i>et al. </i></b>Emergence of a colistin-resistant KPC-2-producing <i>Klebsiella pneumoniae </i>ST258 clone in Hungary. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2010;29:765-69. <a href="http://dx.doi.org/10.1007/s10096-010-0921-3" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1007/s10096-010-0921-3</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-4157201400050002500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. <b>Suh JY, Son JS, Chung DR, Peck KR, Ko KS, Song JH. </b>Nonclonal emergence of colistin-resistant <i>Klebsiella pneumoniae </i> isolates from blood samples in South Korea. Antimicrob Agents Chemother. 2010;54:560-2. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00762-09" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00762-09</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-4157201400050002500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. <b>Nastro M, Carranza N, Aprigliano F, Saposnik E, </b><b>Barberis C, Garc&iacute;a S, </b><b><i>et al. </i></b> Emergence of colistin-resistant <i>Klebsiella pneumoniae. </i> Microbiological and epidemio- logical characterization of the isolates producing and non- producing KPC-type carbapenemase. Rev Argent Microbiol. 2013;45:185-90.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-4157201400050002500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>27. <b>Robustillo A, D&iacute;az-Agero C, S&aacute;nchez T, Ruiz-Garbajosa P, Pita MJ, Monge V. </b>Emergence and outbreak of carbapenemase-producing KPC-3 <i>Klebsiella pneumoniae </i>in Spain, September 2009 to February 2010: Control measures. Euro Surveill. 2012;17:20086.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-4157201400050002500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>28. <b>Migliavacca R, Nucleo E, Asticcioli S, Casari E, Bracco S, Sironi MC. </b> Multifocal diffusion of a KPC-3 producing ST512 <i>K. pneumoniae </i>clone in Northern Italy. New Microbiol. 2013;36:109-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-4157201400050002500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>29. <b>Cuzon G, Naas T, Demachy MC, Nordmann P . </b>Nosocomial outbreak of <i>Klebsiella pneumoniae </i> harbouring <i>bla </i>(KPC-3) in France subsequent to a patient transfer from Italy. Int J Antimicrob Agents. 2012;39:448-9. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2012.01.008" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2012.01.008</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-4157201400050002500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. <b>Miriagou V, Cornaglia G, Edelstein M, Galani I, Giske CG, Gniadkowski M. </b>Acquired carbapenemases in Gram-negative bacterial pathogens: Detection and surveillance issues. Clin Microbiol Infect. 2010;16:112-22. <a href="http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-0691.2009.03116.x" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-0691.2009.03116.x</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-4157201400050002500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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