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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Acinetobacter baumannii resistente a carbapenémicos causante de osteomielitis e infecciones de la piel y los tejidos blandos en hospitales de Medellín, Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Acinetobacter baumannii is an opportunistic bacterium which infects seriously ill patients, particularly those with ventilator-associated pneumonia and bacteremia. The emergence of resistance to carbapenem limits the options for the treatment of infections caused by this bacterium. Objective: To describe the clinical and molecular characteristics of infections caused by carbapenem-resistant A. baumannii in Medellín hospitals. Materials and methods: A cross-sectional descriptive study was carried out in five Medellín hospitals over a 2-year period. Clinical information was obtained from medical histories of patients. The presence of carbapenemases was evaluated by three-dimensional test and PCR. Molecular typing was performed using PFGE and MLST. Results: The study included 32 patients, 13 of whom presented skin and soft tissue infections (n=7, 21.9%) or osteomyelitis (n=6, 18.7%). Resistance rates of the isolates exceeded 80% for all the antibiotics evaluated except colistin and tigecycline. Carbapenemases OXA-23 and OXA-51, as well as the insertion sequence IS Aba1 , were detected in all the isolates. PFGE revealed high genetic diversity in the isolates and MLST showed clones ST229 and ST758 are circulating in the city. Conclusion: In contrast to previous reports, the results of the present study showed osteomyelitis and infections of skin and soft tissues to be the main infections caused by carbapenem-resistant A. baumannii in Medellín hospitals and revealed its importance as an etiological agent for this type of infections.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>ART&Iacute;CULO ORIGINAL </p>     <p>doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v35i4.2572" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v35i4.2572</a> </p>     <p><font size="4">    <center><b><i>Acinetobacter baumannii </i></b><b>resistente a carbapen&eacute;micos causante de osteomielitis e infecciones de la piel y los tejidos blandos en hospitales de Medell&iacute;n, Colombia </b></center></font></p>     <p>    <center>Johanna Marcela Vanegas <sup>1</sup>, Luis Felipe Higuita <sup>1</sup>, Carlos Andr&eacute;s Vargas <sup>1</sup>, Astrid Vanessa Cienfuegos <sup>1</sup>, &Eacute;rika Andrea Rodr&iacute;guez <sup>1</sup>, Gustavo Eduardo Roncancio <sup>2</sup>, Judy Natalia Jim&eacute;nez <sup>1</sup></center></p>     <p><sup>1</sup> Grupo de Microbiolog&iacute;a Molecular, Grupo de Microbiolog&iacute;a B&aacute;sica y Aplicada, Escuela de Microbiolog&iacute;a, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia </p>     <p><sup>2</sup> Cl&iacute;nica CardioVid, Medell&iacute;n, Colombia </p>     <p><b>Contribuci&oacute;n de los autores: </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Johanna M. Vanegas, &Eacute;rika Rodr&iacute;guez, Judy Natalia Jim&eacute;nez, Astrid V. Cienfuegos y Gustavo Roncancio: dise&ntilde;o y experimentos </p>     <p>Todos los autores participaron en la recolecci&oacute;n de datos, el an&aacute;lisis de la informaci&oacute;n y en la elaboraci&oacute;n del manuscrito. </p>     <p>Recibido: 10/10/14; aceptado: 27/05/15 </p> <hr size="1">     <p><b>Introducci&oacute;n. </b><i>Acinetobacter baumannii </i>es una bacteria oportunista que infecta a pacientes gravemente enfermos, principalmente con neumon&iacute;a asociada al uso del respirador y bacteriemia. La aparici&oacute;n de resistencia a los carbapen&eacute;micos limita las opciones terap&eacute;uticas para el manejo de las infecciones ocasionadas por esta bacteria. </p>     <p><b>Objetivo. </b>Describir las caracter&iacute;sticas cl&iacute;nicas y moleculares de las infecciones ocasionadas por <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos en hospitales de Medell&iacute;n. </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos. </b>Durante dos a&ntilde;os se llev&oacute; a cabo un estudio descriptivo de corte transversal en cinco hospitales de Medell&iacute;n. La informaci&oacute;n cl&iacute;nica proven&iacute;a de las historias cl&iacute;nicas. La presencia de carbapenemasas se evalu&oacute; mediante el test tridimensional y la t&eacute;cnica de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa. La tipificaci&oacute;n molecular se hizo con electroforesis en gel de campo pulsado y tipificaci&oacute;n de secuencias de m&uacute;ltiples locus. </p>     <p><b>Resultados. </b>Se incluyeron 32 pacientes, 13 de los cuales presentaban infecciones de la piel y los tejidos blandos (n=7, 21,9 %), y osteomielitis (n=6, 18,7 %). Los porcentajes de resistencia fueron superiores a 80 % para todos los antibi&oacute;ticos evaluados, excepto para la colistina y la tigecilina. Las carbapenemasas OXA-23 y OXA-51, as&iacute; como la secuencia de inserci&oacute;n IS <i>Aba1 </i>, se detectaron en todos los aislamientos. La electroforesis en gel de campo pulsado revel&oacute; una gran diversidad gen&eacute;tica en los aislamientos, y la tipificaci&oacute;n de secuencias de m&uacute;ltiples locus evidenci&oacute; la circulaci&oacute;n de los clones ST229 y ST758 en la ciudad. </p>     <p><b>Conclusi&oacute;n. </b>Contrario a lo reportado previamente, los resultados del estudio revelaron que la osteomielitis y las infecciones de la piel y los tejidos blandos eran los principales cuadros cl&iacute;nicos causados por <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos en instituciones de Medell&iacute;n, y resaltan su importancia como agente etiol&oacute;gico de este tipo de infecciones. </p>     <p><b>Palabras clave: </b><i>Acinetobacter baumannii, </i>carbapen&eacute;micos, farmacorresistencia microbiana, infecciones de los tejidos blandos, osteomielitis. </p>     <p>doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v35i4.2572" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v35i4.2572</a> </p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>Carbapenem-resistant <i>Acinetobacter baumannii </i>causing osteomyelitis and infections of skin and soft tissues in hospitals of Medell&iacute;n, Colombia </b></font></p>     <p><b>Introduction: </b><i>Acinetobacter baumannii </i>is an opportunistic bacterium which infects seriously ill patients, particularly those with ventilator-associated pneumonia and bacteremia. The emergence of resistance to carbapenem limits the options for the treatment of infections caused by this bacterium. </p>     <p><b>Objective: </b>To describe the clinical and molecular characteristics of infections caused by carbapenem-resistant <i>A. baumannii </i>in Medell&iacute;n hospitals. </p>     <p><b>Materials and methods: </b>A cross-sectional descriptive study was carried out in five Medell&iacute;n hospitals over a 2-year period. Clinical information was obtained from medical histories of patients. The presence of carbapenemases was evaluated by three-dimensional test and PCR. Molecular typing was performed using PFGE and MLST. </p>     <p><b>Results: </b>The study included 32 patients, 13 of whom presented skin and soft tissue infections (n=7, 21.9%) or osteomyelitis (n=6, 18.7%). Resistance rates of the isolates exceeded 80% for all the antibiotics evaluated except colistin and tigecycline. Carbapenemases OXA-23 and OXA-51, as well as the insertion sequence IS <i>Aba1 </i>, were detected in all the isolates. PFGE revealed high genetic diversity in the isolates and MLST showed clones ST229 and ST758 are circulating in the city. </p>     <p><b>Conclusion: </b>In contrast to previous reports, the results of the present study showed osteomyelitis and infections of skin and soft tissues to be the main infections caused by carbapenem-resistant <i>A. baumannii </i>in Medell&iacute;n hospitals and revealed its importance as an etiological agent for this type of infections. </p>     <p><b>Key words: </b><i>Acinetobacter baumannii </i>, carbapenems, drug resistance, microbial; soft tissue infections, osteomyelitis. </p>     <p>doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v35i4.2572" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v35i4.2572</a> </p> <hr size="1">     <p><i>Acinetobacter baumannii </i>es un pat&oacute;geno cada vez m&aacute;s frecuente en los hospitales como causa de infecciones de las v&iacute;as urinarias y del abdomen, y m&aacute;s com&uacute;nmente de neumon&iacute;a y bacteriemia (1). Su presencia en las unidades de cuidados intensivos reviste especial gravedad, pues afecta pacientes con varias enfermedades concomitantes, inmunocomprometidos o sometidos a procedimientos invasivos, lo que origina altos porcentajes de mortalidad (1). </p>     <p>El manejo de las infecciones causadas por <i>A. baumannii </i>es complejo debido a que presentan diversos mecanismos de resistencia intr&iacute;nsecos y adquiridos, como son la producci&oacute;n de betalactamasas, la poca permeabilidad y las bombas de expulsi&oacute;n (2,3). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los carbapen&eacute;micos han sido el tratamiento de elecci&oacute;n para las infecciones ocasionadas por <i>A. baumannii </i>multirresistente; sin embargo, la bacteria ha desarrollado resistencia a dichos antibi&oacute;ticos, lo que complica a&uacute;n m&aacute;s el tratamiento de las infecciones que ocasiona (4). La resistencia de <i>A. baumannii </i>a los carbapen&eacute;micos est&aacute; mediada principalmente por enzimas que degradan el antibi&oacute;tico llamadas carbapenemasas, espec&iacute;ficamente las carbapenemasas de clase D u oxacilinasas, como OXA-23, OXA-24, OXA-51 y OXA-58, algunas de las cuales est&aacute;n asociadas con elementos de inserci&oacute;n, como el IS <i>Aba1, </i>que act&uacute;an como promotores de la transcripci&oacute;n (5). </p>     <p>La aparici&oacute;n de resistencia a los carbapen&eacute;micos reduce las opciones terap&eacute;uticas. Adem&aacute;s, la utilizaci&oacute;n de tratamientos emp&iacute;ricos inapropiados ejerce una presi&oacute;n selectiva que favorece la eliminaci&oacute;n de las bacterias sensibles y el crecimiento y la diseminaci&oacute;n de las resistentes, lo que resulta en per&iacute;odos de hospitalizaci&oacute;n prolongados, tasas de mortalidad altas y mayores costos en la atenci&oacute;n hospitalaria (6,7). </p>     <p>En Colombia, han venido aumentando de forma significativa los niveles de resistencia de <i>A. baumannii </i>a los carbapen&eacute;micos desde 2009, hasta alcanzar 37,1 % de resistencia a imipenem y 98,8 % a meropenem en aislamientos provenientes de unidades de cuidados intensivos en 2012 (8). En Medell&iacute;n, tambi&eacute;n se observ&oacute; un aumento de 28 a 35 % en la resistencia a meropenem y de 27 a 34 % a imipenem entre 2010 y 2012 (9). As&iacute; mismo, se ha reportado la circulaci&oacute;n en el pa&iacute;s del gen <i>bla </i>OXA-23, relacionado con una resistencia elevada de <i>A. baumannii </i>a los carbapen&eacute;micos (10). </p>     <p>A pesar de los altos porcentajes de resistencia a carbapen&eacute;micos en <i>A. baumannii </i>, todav&iacute;a se sabe poco sobre el comportamiento de las infecciones ocasionadas por este microorganismo. Adem&aacute;s, si se considera que la epidemiolog&iacute;a de estas infecciones var&iacute;a dependiendo de la regi&oacute;n geogr&aacute;fica, e incluso de las instituciones, en este trabajo se propuso describir las caracter&iacute;sticas cl&iacute;nicas y moleculares de las infecciones ocasionadas por <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos en cinco hospitales de alto nivel de complejidad de Medell&iacute;n, Colombia. </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>     <p><b><i>Poblaci&oacute;n de estudio </i></b></p>     <p>Se hizo un estudio descriptivo de corte transversal en cinco hospitales de alto nivel de complejidad de Medell&iacute;n, entre junio de 2012 y junio de 2014. Los hospitales A y B son hospitales universitarios de 662 y 700 camas, respectivamente. Los hospitales C y D son hospitales de un tama&ntilde;o menor, con 286 y 300 camas, respectivamente, y el hospital E es un hospital especializado en cardiolog&iacute;a con 140 camas. </p>     <p>En cada una de las instituciones participantes se incluyeron todos los pacientes con diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n por <i>A. baumannii </i>con resistencia </p>     <br>     <p>intermedia o total a carbapen&eacute;micos seg&uacute;n los puntos de corte establecidos por el <i>Clinical and Laboratory Standards Institute </i>(CLSI), 2012, durante el periodo de estudio (11). Las pruebas fenot&iacute;picas y moleculares se hicieron en el primer aislamiento recuperado de cada paciente durante la hospitalizaci&oacute;n. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Informaci&oacute;n cl&iacute;nica y epidemiol&oacute;gica </i></b></p>     <p>La informaci&oacute;n cl&iacute;nica y epidemiol&oacute;gica se obtuvo a partir de la revisi&oacute;n de la historia cl&iacute;nica de cada paciente, utilizando un formulario dise&ntilde;ado para tal fin. Las variables inclu&iacute;an las caracter&iacute;sticas sociodemogr&aacute;ficas, el uso previo de antibi&oacute;ticos, la estancia en unidades de cuidados intensivos en el momento del aislamiento causante de la infecci&oacute;n, el tipo de infecci&oacute;n, las enfermedades concomitantes y la condici&oacute;n final de los pacientes. Las infecciones se clasificaron como adquiridas en la comunidad o asociadas a la atenci&oacute;n en salud, de acuerdo con las definiciones establecidas por los <i>Centers for Disease Control and Prevention </i>(CDC) (12). </p>     <p><b><i>Identificaci&oacute;n y pruebas de sensibilidad </i></b></p>     <p>La identificaci&oacute;n y las pruebas de sensibilidad se hicieron utilizando el sistema automatizado VITEK-2 (BioM&eacute;rieux, Marcy l&acute;Etoile, France). Los antibi&oacute;ticos evaluados fueron ampicilina-sulbactam, piperacilina-tazobactam, ceftazidima, cefotaxime, cefepime, imipenem, meropenem, gentamicina, amikacina, ciprofloxacina, tigeciclina y colistina. La interpretaci&oacute;n de la sensibilidad se ajust&oacute; a los puntos de corte establecidos por el CLSI, 2012 (11), excepto la de la tigeciclina, para la cual se tomaron los puntos de corte establecidos por la <i>U.S. Food and Drug Administration </i>(FDA) (13). </p>     <p><b><i>Detecci&oacute;n fenot&iacute;pica y molecular de las carbapenemasas </i></b></p>     <p>La detecci&oacute;n fenot&iacute;pica de las carbapenemasas se hizo utilizando una variaci&oacute;n del test tridimensional (14), en tanto que la detecci&oacute;n molecular se hizo mediante la amplificaci&oacute;n por reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) de los genes <i>bla </i>KPC, <i>bla </i>VIM, <i>bla </i>IMP, <i>bla </i>NDM, <i>bla </i>OXA-48, <i>bla </i>OXA-51, <i>bla </i>OXA-23, <i>bla </i>OXA-24 y <i>bla </i>OXA- 58, con base en protocolos previamente descritos (15-17). Adem&aacute;s, se detect&oacute; la secuencia de inserci&oacute;n IS <i>Aba-1 </i>y su presencia &quot;corriente arriba&quot; de los genes <i>bla </i>OXA-51 y <i>bla </i>OXA-23 (18). La amplificaci&oacute;n del gen <i>bla </i>OXA-51 se emple&oacute; como marcador de especie (17) <i>. </i></p>     <p><b><i>Electroforesis en gel de campo pulsado </i></b></p>     <p>Para la electroforesis en gel de campo pulsado ( <i>Pulsed-field Gel Electrophoresis </i>, PFGE), se utiliz&oacute; la enzima <i>Apa </i>I (Thermo Scientific, United States) durante un tiempo de restricci&oacute;n de dos horas a una temperatura de 37 &deg;C. Los patrones electrofor&eacute;ticos se normalizaron utilizando el marcador lambda (New England Biolabs, UK). Para la separaci&oacute;n electrofor&eacute;tica, se utiliz&oacute; el sistema Chef-DR III (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA), bajo las siguientes condiciones: temperatura, 11,3 &deg;C; pulso inicial, 1 segundo; pulso final, 50 segundos; tiempo de corrida, 21 horas; &aacute;ngulo, 120&deg;, y 6 v/cm de gradiente de voltaje. El grado de relaci&oacute;n de los aislamientos se analiz&oacute; mediante el programa BioNumerics, versi&oacute;n 3.0 (Applied Maths), usando el coeficiente de similitud de Dice. Se consider&oacute; un punto de corte mayor o igual a 80 % para determinar los aislamientos gen&eacute;ticamente relacionados. Los dendrogramas se generaron usando el logaritmo del <i>Unweighted Pairs Geometric-Matched Analysis </i>(UPGMA), con 1 % de tolerancia y 0,5 % de optimizaci&oacute;n. </p>     <p><b><i>Tipificaci&oacute;n de secuencias de m&uacute;ltiples locus </i></b></p>     <p>La tipificaci&oacute;n de secuencias de m&uacute;ltiples locus ( <i>Multilocus Sequence Typing </i>, MLST) se hizo en siete aislamientos seleccionados; se tuvo en cuenta el n&uacute;mero de muestras aportadas por cada instituci&oacute;n y se incluy&oacute;, al menos, un aislamiento por hospital de acuerdo con el protocolo descrito por Bartual, <i>et al </i>. (19). Los tipos de alelos y los tipos de secuencias se asignaron de acuerdo con la base de datos de http://pubmlst.org/abaumannii/. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>An&aacute;lisis estad&iacute;stico </i></b></p>     <p>Para el an&aacute;lisis de la informaci&oacute;n, se utilizaron frecuencias absolutas y relativas utilizando el programa SPSS &reg;, versi&oacute;n 20.0 (SPSS Inc., Chicago, USA). </p>     <p><b><i>Consideraciones &eacute;ticas </i></b></p>     <p>El protocolo de estudio fue avalado por el comit&eacute; de &eacute;tica e investigaci&oacute;n de cada hospital participante y por el Comit&eacute; de Bio&eacute;tica de la Universidad de Antioquia (CBE-SIU) (aprobaci&oacute;n N o 11-35-415). </p>     <p><b>Resultados </b></p>     <p><b><i>Caracter&iacute;sticas cl&iacute;nicas y epidemiol&oacute;gicas </i></b></p>     <p>En el periodo de estudio se registraron 32 pacientes con infecci&oacute;n por <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos, la mayor&iacute;a de los cuales proven&iacute;a de los hospitales A (44 %, n=14) y C (28 %, n=9), seguidos de los hospitales B (16 %, n=5), D (9 %, n=3) y E (3 %, n=1). Todos los pacientes eran adultos, la mitad de ellos mayor de 55 a&ntilde;os y, en su mayor&iacute;a, hombres. Los antecedentes cl&iacute;nicos m&aacute;s frecuentes fueron la hospitalizaci&oacute;n previa, la cirug&iacute;a y el uso de antibi&oacute;ticos en los &uacute;ltimos seis meses. El uso de antibi&oacute;ticos se registr&oacute; en 78,1 % (n=25) de los pacientes; los m&aacute;s utilizados fueron piperacilina-tazobactam y los carbapen&eacute;micos (48 %, n=12 cada uno). Los tipos de infecci&oacute;n m&aacute;s frecuentes fueron las infecciones de la piel y los tejidos blandos (21,9 %, n=7), la osteomielitis (18,8 %, n=6) y la infecci&oacute;n abdominal (18,8 %, n=6). M&aacute;s de la mitad de los pacientes se encontraban hospitalizados en salas diferentes a la unidad de cuidados intensivos en el momento de la toma de la muestra. La mortalidad por cualquier causa fue de 28,1 % (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>). </p>     <p>    <center> <a name="cuadro1"><img src="img/revistas/bio/v35n4/v35n4a10t1.gif"></a></center></p>      <p><b><i>Porcentajes de resistencia y detecci&oacute;n de carbapenemasas </i></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los aislamientos de <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos presentaron porcentajes de resistencia superiores a 80 % para todos los betalact&aacute;micos evaluados (incluidos ampicilina-sulbactam, piperacilina-tazobactam, ceftazidima y cefepime) y para otros antibi&oacute;ticos, como ciproflo-xacina y gentamicina. En contraste, la resistencia a la tigeciclina y la colistina fue de 3,4 y 3,2 %, respectivamente. El porcentaje de resistencia a meropenen e imipenem fue de 100 % (<a href="#figura1">figura 1</a>). </p>     <p>    <center> <a name="figura1"><img src="img/revistas/bio/v35n4/v35n4a10g1.jpg"></a></center></p>      <p>El test tridimensional fue positivo en 24 aislamientos (75 %) y negativo en ocho (25 %). Sin embargo, los genes <i>bla </i>OXA-51, <i>bla </i>OXA-23 e IS <i>Aba </i>1 se detectaron en todas las cepas, independientemente del resultado del test tridimensional. La amplificaci&oacute;n de la secuencia de inserci&oacute;n IS <i>Aba </i>1 <i>, </i>se detect&oacute; &quot;corriente arriba&quot; de los genes <i>bla </i><i>OXA-23 </i>y <i>bla </i><i>OXA-51 </i>en 62,5 % (n=20) y 3,1 % (n=1) de los casos, respectivamente. La presencia simult&aacute;nea de esta secuencia &quot;corriente arriba&quot; de ambos genes se encontr&oacute; en 31,2 % (n=10) de los aislamientos. </p>     <p><b><i>Tipificaci&oacute;n molecular </i></b></p>     <p>La PFGE revel&oacute; una gran diversidad gen&eacute;tica en los aislamientos evaluados, con porcentajes de similitud inferiores a 80 % para la mayor&iacute;a de ellos (<a href="#figura2">figura 2</a>). Por su parte, con la MLST se evidenci&oacute; la presencia del clon ST229 en los hospitales A, C, D y E, y del clon ST758, en los hospitales A y B (<a href="#figura2">figura 2</a>). </p>     <p>    <center> <a name="figura2"><img src="img/revistas/bio/v35n4/v35n4a10g2.jpg"></a></center></p>      <p><b>Discusi&oacute;n </b></p>     <p>A pesar de que <i>A. baumannii </i>es un pat&oacute;geno que con frecuencia causa infecciones como la neumon&iacute;a asociada al respirador y la bacteriemia (1), los resultados de este estudio evidenciaron la presencia de <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos en infecciones de la piel y de los tejidos blandos y en la osteomielitis. En las infecciones de la piel el papel de <i>A. baumannii </i>ha generado controversia debido a que la colonizaci&oacute;n de este &oacute;rgano por parte del microorganismo es frecuente. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Sin embargo, algunos autores han reportado cuatro caracter&iacute;sticas comunes en los pacientes con este cuadro cl&iacute;nico: </p>     <p>1) condiciones subyacentes como diabetes y trauma; </p>     <p>2) infecci&oacute;n acompa&ntilde;ada de bacteriemia; </p>     <p>3) multirresistencia e infecci&oacute;n con varios microorganismos en la mayor&iacute;a de los casos, y </p>     <p>4) necesidad de tratamiento quir&uacute;rgico, y aumento de la mortalidad (20). </p>     <p>En este estudio, la mayor&iacute;a de estas caracter&iacute;sticas se evidenciaron en los pacientes con infecciones de la piel y los tejidos blandos, lo que sugiere la presencia de <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos como agente causal de este tipo de infecci&oacute;n (<a href="#cuadro2">cuadro 2</a>). </p>     <p>    <center> <a name="cuadro2"><img src="img/revistas/bio/v35n4/v35n4a10t2.gif"></a></center></p>      <p>La osteomielitis fue otra infecci&oacute;n frecuente en la poblaci&oacute;n de estudio y, aunque esta usualmente se atribuye a bacterias Gram positivas, en un estudio reciente se report&oacute; un aumento de casos ocasionados por bacilos Gram negativos, entre los cuales <i>A. baumannii </i>fue la segunda bacteria m&aacute;s frecuentemente detectada despu&eacute;s de <i>Enterobacter </i>spp. en este tipo de infecci&oacute;n (21). Adem&aacute;s, tres de los seis pacientes con osteomielitis hab&iacute;an sufrido trauma, caracter&iacute;stica que se ha descrito en las infecciones por bacilos Gram negativos, y en dos de ellos <i>A. baumannii </i>fue el &uacute;nico agente causal encontrado (<a href="#cuadro2">cuadro 2</a>). </p>     <p>Los resultados del presente estudio difieren de lo reportado por otros grupos en el pa&iacute;s. En primer lugar, llam&oacute; la atenci&oacute;n que en Medell&iacute;n <i>A. baumannii </i>tuviera menor incidencia como causa de infecci&oacute;n que otros bacilos Gram negativos. La recopilaci&oacute;n del grupo GERMEN report&oacute; 253 aislamientos de esta bacteria en 26 instituciones hospitalarias y laboratorios de la ciudad en el 2013, lo que ni siquiera la sit&uacute;a entre los diez principales microorganismos encontrados en hospitales o unidades de cuidados intensivos (22). La situaci&oacute;n reportada por el Instituto Nacional de Salud en 2013 revela un panorama diferente, pues sit&uacute;a a <i>A. baumannii </i>como el noveno micro-organismo m&aacute;s frecuente en las unidades de cuidados intensivos en Colombia, en tanto que en su bolet&iacute;n de 2013, el grupo GREBO ubic&oacute; al microorganismo como el d&eacute;cimo m&aacute;s frecuente en las unidades de cuidados intensivos, el sexto m&aacute;s detectado en muestras de sangre en dichas unidades y el s&eacute;ptimo asociado a la bacteriemia durante la hospitalizaci&oacute;n (23,24). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Tambi&eacute;n, cabe destacar las diferencias en torno a la frecuencia con que el microorganismo se asocia a infecciones. En el presente estudio se relacion&oacute; m&aacute;s con infecciones de la piel, los tejidos blandos y el hueso, mientras que en otros estudios llevados a cabo en el pa&iacute;s, <i>A. baumannii </i>se ha registrado con mayor frecuencia como agente causal de neumon&iacute;a y bacteriemia (25,26). </p>     <p>En este trabajo, las infecciones por <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos presentaron un comportamiento similar a lo descrito en los estudios de epidemiolog&iacute;a a nivel mundial, en lo que se refiere al predominio de esta bacteria en pacientes con enfermedades concomitantes, antecedentes de hospitalizaci&oacute;n y uso previo de antibi&oacute;ticos (1,27), espec&iacute;ficamente de carbapen&eacute;micos en casi la mitad de los pacientes. Teniendo en cuenta que esta caracter&iacute;stica se considera un factor de riesgo independiente para la infecci&oacute;n por <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos (OR, 6,1; IC 95% : 2,2 - 17,1; p=0,001), es necesario establecer pol&iacute;ticas sobre el uso de antibi&oacute;ticos para controlar la aparici&oacute;n de cepas resistentes (28). </p>     <p>Aunque la hospitalizaci&oacute;n en la unidad de cuidados intensivos tambi&eacute;n es frecuente en los pacientes con <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos (27,29), en este estudio m&aacute;s de la mitad de los pacientes se encontraba hospitalizada en otras salas, lo que evidencia la importancia de fortalecer la vigilancia de las infecciones ocasionadas por esta bacteria en servicios diferentes a la unidad de cuidados intensivos. </p>     <p>Todas las infecciones fueron ocasionadas por aislamientos con porcentajes elevados de resistencia a la mayor&iacute;a de los antibi&oacute;ticos disponibles, lo que limita sustancialmente las opciones terap&eacute;uticas y hace necesario emplear tratamientos combinados que puedan tener un efecto sin&eacute;rgico para el control de la infecci&oacute;n que, sin embargo, no siempre tienen &eacute;xito. </p>     <p>La carbapenemasa OXA-23 se detect&oacute; en todos los aislamientos recuperados, incluso en aquellos provenientes de infecciones de la piel y los tejidos blandos y de la osteomielitis. Esta enzima puede aparecer codificada en pl&aacute;smidos f&aacute;cilmente trasmisibles de una bacteria a otra y est&aacute; implicada en diferentes brotes hospitalarios en todo el mundo (30). En Suram&eacute;rica, la OXA-23 se ha reportado en pa&iacute;ses como Brasil y Argentina, y en Colombia, se la considera como el mecanismo m&aacute;s importante de resistencia a carbapen&eacute;micos en <i>A. baumannii </i>(10,31). La presencia simult&aacute;nea de la secuencia de inserci&oacute;n IS <i>Aba1 </i>como promotor de la transcripci&oacute;n de la OXA-23 y de la carbapenemasa cromos&oacute;mica OXA-51, no se hab&iacute;a observado antes en el pa&iacute;s y refleja la versatilidad y la gran capacidad de diseminaci&oacute;n de estos elementos gen&eacute;ticos, tal como se ha registrado en bacterias de la familia Enterobacteriaceae (10,32,33). </p>     <p>La gran diversidad gen&eacute;tica evidenciada por la PFGE contrasta con lo reportado en estudios previos llevados a cabo en Colombia, en los cuales se han observado conglomerados o grupos predominantes mediante esta t&eacute;cnica (10,33). Dicha diversidad puede explicarse por la presi&oacute;n antibi&oacute;tica ejercida con el uso de diferentes esquemas de tratamiento anti-microbiano cuya consecuencia es la aparici&oacute;n de cepas resistentes m&aacute;s que la diseminaci&oacute;n clonal. De ah&iacute; la importancia de establecer y fortalecer las pol&iacute;ticas relativas al uso adecuado de los antibi&oacute;ticos, como estrategia para prevenir la aparici&oacute;n y la diseminaci&oacute;n de <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos en las instituciones de salud. </p>     <p>Independientemente del tipo de infecci&oacute;n, los resultados de la MLST evidenciaron la circulaci&oacute;n de dos clones en la ciudad: ST229 y ST758. El primero de ellos corresponde al complejo clonal CC110, clon internacional detectado en Estados Unidos, Argentina y Corea que puede portar resistencia inclusive a la colistina (27,34). El clon ST758 se report&oacute; en M&eacute;xico en aislamientos de <i>A. baumannii </i>portadores de una variante de la OXA-23 llamada OXA-239 (35). En este estudio se hace uno de los primeros reportes de los clones de <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos circulantes en las ciudades del pa&iacute;s. </p>     <p>Una de las principales limitaciones de este trabajo es su car&aacute;cter descriptivo, ya que no hubo un grupo de comparaci&oacute;n y solo se utiliz&oacute; el VITEK-2 para evaluar la sensibilidad a antibi&oacute;ticos como la tigeciclina y la combinaci&oacute;n de ampicilina- sulbactam. </p>     <p>En conclusi&oacute;n, es importante considerar <i>A. baumannii </i>resistente a carbapen&eacute;micos como agente etiol&oacute;gico de infecciones de la piel y los tejidos blandos y de la osteomielitis en hospitales. Es claro que en algunas ocasiones este microorganismo puede ser un contaminante; sin embargo, dada la dificultad del tratamiento y la facilidad con que se disemina, el personal de laboratorio y los profesionales cl&iacute;nicos deben prestar especial atenci&oacute;n al hallazgo de este patr&oacute;n fenot&iacute;pico y orientar sus esfuerzos hacia el diagn&oacute;stico cl&iacute;nico adecuado, el tratamiento &oacute;ptimo y las medidas de prevenci&oacute;n de brotes, especialmente en lo relacionado con el uso de antibi&oacute;ticos. Por otra parte, las carbapenemasas OXA-23 y OXA-51 y la secuencia de inserci&oacute;n IS <i>Aba </i>1 aparecen como los mecanismos que est&aacute;n mediando la resistencia a carbapen&eacute;micos en los aislamientos de <i>A. baumannii </i>en el pa&iacute;s. </p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><b>Conflicto de intereses </b></center></p>     <p>Gustavo Roncancio ha sido conferencista de MSD y Pfizer. Los dem&aacute;s autores no declaran conflicto de intereses. </p>     <p>    <center><b>Financiaci&oacute;n </b></center></p>     <p>Este trabajo fue financiado por el Departamento Administrativo de Ciencia, Tecnolog&iacute;a e Innovaci&oacute;n, Colciencias (proyecto 111554531404), y por el Comit&eacute; para el Desarrollo de la Investigaci&oacute;n, CODI, de la Universidad de Antioquia (proyecto CIMB-068-12). </p>     <p>Correspondencia:    <br>   Judy Natalia Jim&eacute;nez, Escuela de Microbiolog&iacute;a, Universidad de Antioquia, Calle 67 N&deg; 53-108, bloque 5, oficina 5-135, Medell&iacute;n, Colombia    <br>   Tel&eacute;fono: (574) 219 5497    <br> <a href="mailto:nataliajiudea@gmail.com">nataliajiudea@gmail.com</a></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><b>Referencias </b></center></p>     <!-- ref --><p>1. <b>Torres HA, V&aacute;zquez EG, Yag&uuml;e G, G&oacute;mez JG. </b>Multidrug resistant <i>Acinetobacter baumanii </i>: Clinical update and new highlights. Rev Esp Quimioter. 2010;23:12-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-4157201500040001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>2. <b>Coyne S, Courvalin P, P&eacute;richon B. </b>Efflux-mediated antibiotic resistance in <i>Acinetobacter </i>spp. Antimicrob Agents Chemother. 2011;55:947-53. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.%2001388-10" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC. 01388-10</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-4157201500040001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. <b>Gordon NC, Wareham DW. </b>Multidrug-resistant <i>Acinetobacter baumannii: </i>Mechanisms of virulence and resistance. Int J Antimicrob Agents. 2010;35:219-26. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2009.10.024" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2009.10.024</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-4157201500040001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. <strong>Boucher HW, Talbot GH, Bradley JS, Eduards JE, Gilbert D, Rice LB, <em>et al </em>. </strong>Bad bugs, no drugs: No ESKAPE! An update from the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 2009;48:1-12. <a href="http://dx.doi.org/10.1086/595011">http://dx.doi.org/10.1086/595011</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-4157201500040001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. <b>Niranjan DK, Singh NP, Manchanda V, Rai S, Kaur IR. </b>Multiple carbapenem hydrolyzing genes in clinical isolates of <i>Acinetobacter baumannii. </i>Indian J Med Microbiol. 2013;31:237-41. <a href="http://dx.doi.org/10.4103/0255-0857.115626" target="_blank">http://dx.doi.org/10.4103/0255-0857.115626</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-4157201500040001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>6. <b>Patel G, Huprikar S, Factor SH, Jenkins SG, Calfee DP. </b>Outcomes of carbapenem-resistant <i>Klebsiella pneumoniae </i>infection and the impact of antimicrobial and adjunctive therapies. Infect Control Hosp Epidemiol. 2008;29:1099-106. <a href="http://dx.doi.org/10.1086/592412" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1086/592412</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-4157201500040001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>7. <b>Woodford N, Turton JF, Livermore DM. </b>Multiresistant Gram-negative bacteria: The role of high-risk clones in the dissemination of antibiotic resistance. FEMS Microbiol Rev. 2011;35:736-5. <a href="http://dx.doi.org/10.1111/j.1574-6976.2011.00268.x" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1111/j.1574-6976.2011.00268.x</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-4157201500040001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. <b>Hern&aacute;ndez C, Blanco V, Motoa G, Correa A, Maya JJ, de la Cadena E, <i>et al </i>. </b>Evoluci&oacute;n de la resistencia antimicrobiana de bacilos Gram negativos en unidades de cuidados intensivos en Colombia. Biom&eacute;dica. 2014;34:91-100. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S0120-41572014000500011" target="">http://dx.doi.org/10.1590/S0120-41572014000500011</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-4157201500040001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. <b>Grupo para el Estudio de la Resistencia a Antibi&oacute;ticos de Medell&iacute;n. </b><i>Acinetobacter baumannii </i>. Fecha de consulta: 6 de octubre de 2014. Disponible en: <a href="http://www.grupogermen.org/pdf/Acinetoacter.pdf" target="_blank">http://www.grupogermen.org/pdf/Acinetoacter.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-4157201500040001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>10. <b>Villegas MV, Kattan JN, Correa A, Lolans K, Guzm&aacute;n AM, Woodford N, <i>et al </i>. </b>Dissemination of <i>Acinetobacter baumannii </i>clones with OXA-23 carbapenemase in Colombian hospitals. Antimicrob Agents Chemother. 2007;51:2001-4. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00226-07" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00226-07</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-4157201500040001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. <b>Clinical and Laboratory Standards Institute. </b>Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing: Twenty-second Informational Supplement. CLSI document M100-S22. Wayne: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-4157201500040001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>12. <b>Horan TC, Andrus M, Dudeck MA. </b>CDC/NHSN surveillance definition of health care-associated infection and criteria for specific types of infections in the acute care setting. Am J Infect Control. 2008;36:309-32. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.ajic.2008.03.002" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.ajic.2008.03.002</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-4157201500040001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. <b>Esparza G, Ariza B, Bedoya AM, Bustos I, Casta&ntilde;eda CR, De la Cadena E, <i>et al </i>. </b>Estrategias para la implementaci&oacute;n y reporte de los puntos de corte CLSI vigentes y pruebas fenot&iacute;picas confirmatorias para BLEE y carbapenemasas en bacilos Gram negativos en laboratorios cl&iacute;nicos de Colombia. Infectio. 2013;17:80-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-4157201500040001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>14. <b>Thomson KS, Mejglo ZA, Pearce GN, Regan TJ. </b>3-dimensional susceptibility testing of beta-lactam antibiotics. J Antimicrob Chemother. 1984;13:45-54. <a href="http://dx.doi.org/10.1093/jac/13.1.45" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1093/jac/13.1.45</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-4157201500040001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. <b>Ellington MJ, Kistler J, Livermore DM, Woodford N. </b>Multiplex PCR for rapid detection of genes encoding acquired metallo-beta-lactamases. J Antimicrob Chemother. 2007;59:321-2. <a href="http://dx.doi.org/10.1093/jac/dkl48" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1093/jac/dkl48</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-4157201500040001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. <b>Poirel L, Walsh TR, Cuvillier V, Nordmann P. </b>Multiplex PCR for detection of acquired carbapenemase genes. Diagn Microbiol Infect Dis. 2011;70:119-23. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2010.12.002" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2010.12.002</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-4157201500040001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. <b>Woodford N, Ellington MJ, Coelho JM, Turton JF, Ward ME, Brown S, <i>et al </i>. </b>Multiplex PCR for genes encoding prevalent OXA carbapenemases in <i>Acinetobacter </i>spp. Int J Antimicrob Agents. 2006;27:351-3. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2006.01.004" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2006.01.004</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-4157201500040001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. <b>Turton JF, Ward ME, Woodford N, Kaufmann ME, Pike R, Livermore DM, <i>et al </i>. </b>The role of IS <i>Aba1 </i>in expression of OXA carbapenemase genes in <i>Acinetobacter baumannii. </i>FEMS Microbiol Lett. 2006;258:72-7. <a href="http://dx.doi.org/10.1111/j.1574-6968.2006.00195.x" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1111/j.1574-6968.2006.00195.x</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-4157201500040001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. <b>Bartual SG, Seifert H, Hippler C, Luzon MA, Wisplinghoff H, Rodr&iacute;guez-Valera F. </b>Development of a multilocus sequence typing scheme for characterization of clinical isolates of <i>Acinetobacter baumannii. </i>J Clin Microbiol. 2005;43:4382-90. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/JCM.43.9.4382-4390.2005" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/JCM.43.9.4382-4390.2005</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-4157201500040001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. <b>Guerrero DM, P&eacute;rez F, Conger NG, Solomkin JS, Adams MD, Rather PN, <i>et al </i>. </b><i>Acinetobacter baumannii </i>-associated skin and soft tissue infections: Recognizing a broadening spectrum of disease. Surg Infect (Larchmt). 2010;11:49-57. <a href="http://dx.doi.org/10.1089/sur.2009.022" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1089/sur.2009.022</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-4157201500040001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. <b>Carvalho VC, Oliveira PR, Dal-Paz K, Paula AP, Felix C da S, Lima AL. </b>Gram-negative osteomyelitis: Clinical and microbiological profile. Braz J Infect Dis. 2012;16:63-7. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S1413-86702012000100011" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1590/S1413-86702012000100011</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-4157201500040001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. <b>Grupo para el Estudio de la Resistencia a Antibi&oacute;ticos de Medell&iacute;n. </b>Frecuencias de microorganismos. Fecha de consulta: 23 de marzo de 2015. Disponible en: <a href="http://www.grupogermen.org/pdf/frecuencia.pdf" target="_blank">http://www.grupogermen.org/pdf/frecuencia.pdf</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-4157201500040001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. <b>Grupo GREBO. </b>Mayo 5, D&iacute;a mundial de lavado de manos dedicado a la contenci&oacute;n de la resistencia bacteriana. Bolet&iacute;n Informativo GREBO. 2014;6. Fecha de consulta: 23 de marzo de 2015. Disponible en: <a href="http://www.grebo.org/grebo_site/jgrebo/documentos/Boletin_Grebo_2014.pdf" target="_blank">http://www.grebo.org/grebo_site/jgrebo/documentos/Boletin_Grebo_2014.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0120-4157201500040001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>24. <b>Instituto Nacional de Salud. </b>Vigilancia de resistencia bacteriana a trav&eacute;s de las bases de datos Whonet, agosto 2014. Fecha de consulta: 23 de marzo de 2015. Disponible en: <a href="http://www.ins.gov.co/tramites-y-servicios/examenes-de-inter%C3%A9s-en-salud-publica/Microbiologa/Informe%20de%20resistencia%20Bacteriana%20a%C3%B1o%20%202013.pdf" target="_blank">http://www.ins.gov.co/tramites-y-servicios/examenes-de-inter%C3%A9s-en-salud-publica/Microbiologa/Informe%20de%20resistencia%20Bacteriana%20a%C3%B1o%20%202013.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-4157201500040001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>25. <b>Lemos EV, De la Hoz-Restrepo F, Alvis N, Quevedo E, Ca&ntilde;&oacute;n O, Le&oacute;n Y. </b><i>Acinetobacter baumannii </i>- related mortality in intensive care units in Colombia. Rev Panam Salud P&uacute;blica. 2011;30:287-94. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S1020-49892011001000001" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1590/S1020-49892011001000001</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-4157201500040001000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. <b>Prado A, Arias NL, Ch&aacute;vez M, Cabrera CE, G&oacute;mez RF. </b>Caracterizaci&oacute;n fenot&iacute;pica de aislamientos de <i>Acinetobacter baumannii </i>en una instituci&oacute;n de alta complejidad de la ciudad de Cali. Biom&eacute;dica. 2014;34:101-7. <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1666" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1666</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-4157201500040001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. <b>Karah N, Sundsfjord A, Towner K, Samuelsen &Oslash;. </b>Insights into the global molecular epidemiology of carbapenem non-susceptible clones of <i>Acinetobacter baumannii </i>. 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