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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[DETERMINACIÓN DE LA DEPENDENCIA MICORRIZAL DEL LULO]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A greenhouse experiment was carried out to determine the mycorrhizal dependency of lulo (Solanum quitoense Lam.). An experimental design completely randomized was used, treatments were arranged in factorial combination 3x2, which consisted of the combination of three soil solution phosphorus (P) concentration (0.002, 0.02 and 0.2 mg L-1) and two levels of inoculation with the mycorrhizal fungus Glomus aggregatum (inoculated and uninoculated). Foliar P content was monitored as a function of time. At harvest, shoot and root dry weight, shoot P content, mycorrhizal colonization, mycorrhizal dependency, and root morphology were determined. The results indicated that lulo can be classified as moderately dependent on the mycorrhizal association. However, increases in soil solution P concentration decreased the mycorrhizal dependency of all plants. All inoculated plants showed mycorrhizal colonization. None of the control plants (uninoculated) exhibited mycorrhizal colonization. Increases in soil solution P significantly decreased mycorrhizal colonization. Mycorhizal inoculation significantly modified the root morphology. At 0.002 and 0.02 mg L-1 root length and surface area significantly increased with the inoculation.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>DETERMINACI&Oacute;N DE LA DEPENDENCIA MICORRIZAL DEL LULO </b></font></p >     <p align="center"><font size="3"><b>Determination Of Mycorrhizal Dependency Of Lulo </b></font></p >     <P >OCTAVIO GONZ&Aacute;LEZ<Sup>1,3</Sup>, M. Sc.; WALTER OSORIO<Sup>2,3</Sup>, Ph.D. </P>     <P ><Sup>1 </Sup>Universidad de Medell&iacute;n, Facultad de Ingenier&iacute;a.   <a href="mailto:oagonzalez@udem.edu.co">oagonzalez@udem.edu.co</a> </P>     <P ><Sup>2 </Sup>Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n, Facultad de   Ciencias, Calle 59A 63-20, Bloque 19-311, Medell&iacute;n, Colombia,   <a href="mailto:nwosorio@unal.edu.co">nwosorio@unal.edu.co</a> </P>     <P ><Sup>3 </Sup>Grupo de Investigaci&oacute;n Microbiolog&iacute;a del Suelo </P>     <P >Presentado 1 de agosto de 2007, aceptado 16 de mayo de 2008, correcciones 11 de junio de 2008. </P><hr size="1">     <p   align="left"><b>RESUMEN </b></p>     <P >Se realiz&oacute; un experimento de invernadero para determinar la dependencia micorrizal del lulo (<I>Solanum quitoense </I>Lam.) h&iacute;brido &ldquo;La selva&rdquo;. Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar, los tratamientos tuvieron un arreglo factorial 3x2 con tres repeticiones; estos consistieron en la combinaci&oacute;n de tres niveles de f&oacute;sforo (P) en la soluci&oacute;n del suelo (0,002, 0,02 y 0,2 mg L<Sup>-1</Sup>) con dos niveles de inoculaci&oacute;n del hongo micorrizal <I>Glomus aggregatum </I>(inoculado y no inoculado). Se emplearon como variables respuesta el contenido de P foliar en funci&oacute;n del tiempo, la masa seca a&eacute;rea y de ra&iacute;ces, la colonizaci&oacute;n micorrizal, la dependencia micorrizal y la morfolog&iacute;a del sistema de ra&iacute;ces al momento de la cosecha. Los resultados indican que esta especie puede ser clasificada como moderadamente dependiente de la asociaci&oacute;n micorrizal. La dependencia micorrizal fue mayor a 0,002 mg L<Sup>-1</Sup>. Todas las plantas inoculadas con <I>G. </I><I>aggregatum </I>exhibieron colonizaci&oacute;n micorrizal, mientras que ninguna de las plantas no inoculadas desarrollaron la asociaci&oacute;n micorrizal. La inoculaci&oacute;n modific&oacute; significativamente la longitud y &aacute;rea superficial del sistema de ra&iacute;ces en las plantas de lulo en los niveles 0,002 y 0,02 mg L<Sup>-1</Sup>. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ><b>Palabras clave:</b><B> </B>f&oacute;sforo, <I>Solanum quitoense</I>, <I>Glomus aggregatum</I>, micorriza. </P> <hr size="1">     <p   align="left"><b>ABSTRACT </b></p>     <P >A greenhouse experiment was carried out to determine the mycorrhizal dependency of lulo (<I>Solanum quitoense </I>Lam.). An experimental design completely randomized was used, treatments were arranged in factorial combination 3x2, which consisted of the combination of three soil solution phosphorus (P) concentration (0.002, 0.02 and 0.2 mg L<Sup>-1</Sup>) and two levels of inoculation with the mycorrhizal fungus <I>Glomus aggregatum </I>(inoculated and uninoculated). Foliar P content was monitored as a function of time. </P>     <P >At harvest, shoot and root dry weight, shoot P content, mycorrhizal colonization, mycorrhizal dependency, and root morphology were determined. The results indicated that lulo can be classified as moderately dependent on the mycorrhizal association. However, increases in soil solution P concentration decreased the mycorrhizal dependency of all plants. All inoculated plants showed mycorrhizal colonization. None of the control plants (uninoculated) exhibited mycorrhizal colonization. Increases in soil solution P significantly decreased mycorrhizal colonization. Mycorhizal inoculation significantly modified the root morphology. At 0.002 and 0.02 mg L<Sup>-1 </Sup>root length and surface area significantly increased with the inoculation. </P>     <P ><b>Key words:</b> Phosporus, <I>Solanum quitoense</I>, <I>Glomus aggregatum</I>, mycorrhiza </P> <hr size="1">     <p   align="left"><b>INTRODUCCI&Oacute;N </b></p>     <P >El cultivo del lulo es considerado una de las actividades agr&iacute;colas m&aacute;s promisorias para el pa&iacute;s en el contexto de la internacionalizaci&oacute;n de la econom&iacute;a. Sin embargo, el rendimiento de &eacute;ste es relativamente bajo debido a problemas del cultivo, particular-mente a la baja disponibilidad de f&oacute;sforo (P) en los suelos en los cuales com&uacute;nmente se cultiva. La alta capacidad de retenci&oacute;n de P que exhiben los suelos del tr&oacute;pico andino limita la eficiencia de la fertilizaci&oacute;n fosf&oacute;rica ya que el i&oacute;n fosfato r&aacute;pidamente es precipitado o adsorbido (Ozane y Shaw, 1967). Dada la baja eficiencia en la fertilizaci&oacute;n fosf&oacute;rica (3-5%), los agricultores deben aplicar altas dosis de fertilizantes fosf&oacute;ricos, lo que aumenta los costos de producci&oacute;n. Las plantas en suelos fijadores de P se adaptan incrementando su habilidad para competir por nutrientes estableciendo asociaci&oacute;n simbi&oacute;tica con microorganismos del suelo como los hongos formadores de micorriza arbuscular (HMA) (Muthukumar <I>et al.</I>, 2003). Seg&uacute;n varios autores (Blal <I>et al.</I>, 1990, Olusola y Osonubi, 2002, Zakaria y Abbott, 2002) el uso de HMA es una alternativa viable para el manejo de sistemas agr&iacute;colas ya que con su inoculaci&oacute;n se incrementa la eficiencia de la fertilizaci&oacute;n fosf&oacute;rica. Adem&aacute;s, Yano y Takaki (2005) reportan que los HMA est&aacute;n involucrados en la tolerancia de las especies a suelos &aacute;cidos ya que la simbiosis mejora el desarrollo de la ra&iacute;z de las plantas. Sin embargo, antes de usar esta biotecnolog&iacute;a es necesario determinar el grado de dependencia micorrizal (DM) de la especie vegetal de inter&eacute;s con el fin de conocer su potencial respuesta al uso de los HMA. El objetivo de este experimento fue determinar la dependencia micorrizal de lulo h&iacute;brido &ldquo;La Selva&rdquo;. </P>     <p   align="left"><b>MATERALES Y M&Eacute;TODOS </b></p>     <P >El experimento se realiz&oacute; en el invernadero de la Estaci&oacute;n Experimental Piedras Blancas (Medell&iacute;n, Colombia) perteneciente a la Universidad Nacional de Colombia. La estaci&oacute;n esta localizada en el corregimiento de Santa Elena (6&ordm; 15&rsquo; 38&rdquo; N, 75&ordm;30&rsquo; 23&rdquo; W, altitud de 2.484 m), temperatura promedio de 17 &ordm;C y precipitaci&oacute;n anual de 1.700 mm. El sitio se encuentra en una zona de vida de bosque h&uacute;medo montano bajo (Espinal, 1977). </P>     <P >Como sustrato de crecimiento se utiliz&oacute; una mezcla de suelo, cuarzo y cascarilla de arroz, en proporci&oacute;n 2:1:0.3, respectivamente. El suelo correspondi&oacute; a una muestra del horizonte subsuperficial (Bt) de un Ultisol del cerro el Volador, Medell&iacute;n, para as&iacute; reducir la influencia del P org&aacute;nico sobre el P disponible. El suelo se sec&oacute; al aire, se tamiz&oacute; a 4 mm y luego de mezclarse con cuarzo y cascarilla se analiz&oacute; en el Laboratorio de Suelos de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Los resultados fueron: Arena 68%, Limo 12%, Arcilla 20%, textura FArA (Bouyucos), pH 4,7 (agua, 1:1, V:V), materia org&aacute;nica 0,1 % (Walkley y Black), Ca, Mg y K, 1,2, 0,7 y 0,04 cmolc kg<Sup>-1 </Sup>(acetato de amonio 1<I>M</I>, pH 7), respectivamente; Al 0,9 cmolc kg<Sup>-1 </Sup>(KCl 1<I>M</I>); P 2 mg kg<Sup>-1 </Sup>(Bray II); Fe, Mn, Cu y Zn 19,16,1 y 1 mg kg<Sup>-1</Sup>, respectivamente, (Olsen-EDTA); B 0,1 mg kg<Sup>-1 </Sup>(Agua Caliente); NO3-2 mg kg<Sup>-1 </Sup>(sulfato de aluminio 0,025 <I>M</I>) y NH4+ 3,0 mg kg<Sup>-1 </Sup>(KCl 1<I>M</I>). El sustrato se esteriliz&oacute; dos veces en autoclave a 120 &ordm;C y 0,1 MPa, una hora cada vez. Luego 3 kg (base seca) del sustrato est&eacute;ril se trasfirieron a potes pl&aacute;sticos de 2,5 L de capacidad (15 x 17 cm). La fertilizaci&oacute;n del sustrato consisti&oacute; en la adici&oacute;n de 2.000 mg de CaCO3, 436 mg de (NH4)2SO4, 1.548 mg de CaSO4.2H2O, 984 mg de MgSO4.7H2O, 160 mg de MgO, 5 EDTA-Fe(II), 5 mg de EDTA-Cu(II), 5 mg de EDTA-Zn y 5 mg de Na2B8O13.4H2O por kg de sustrato. As&iacute; mismo, se aplic&oacute; P en forma de KH2PO4 para obtener tres concentraciones de P en la soluci&oacute;n del suelo (0,002, 0,02 y 0,2 mg L<Sup>-1</Sup>) seg&uacute;n lo propuesto por Habte y Manjunath (1991) para estudios de DM. Para este fin se realiz&oacute; una isoterma de adsorci&oacute;n de P de acuerdo al m&eacute;todo de Fox y Kamprath (1970) (<a href="#fig1">Fig. 1</a> ) con muestras del suelo fertilizado. Las cantidades de KH2PO4 requeridas fueron 0,953 y 2.810 mg kg<Sup>-1</Sup>; para ajustar una cantidad de potasio similar en los tratamientos de aplic&oacute; 1.533, 1.066 y 0 mg kg<Sup>-1</Sup>, respectivamente. Cada pote recibi&oacute; semanalmente 50 cm<Sup>3 </Sup>de la soluci&oacute;n nutritiva Hoagland libre de P que ten&iacute;a las siguientes concentraciones (mg L<Sup>-1</Sup>): N 50, K 132, Mg 106, S 204, Zn 10, Cu 5, B 0.8 y Mo 0.5. El sustrato se mantuvo a 50-60% de su m&aacute;xima capacidad de retenci&oacute;n de agua (44 %), para lo cual se aplico agua destilada &oacute; la soluci&oacute;n nutritiva mencionada. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/abc/v13n2/v13n2a11f1.jpg"></center></p>     <P >Las pl&aacute;ntulas de lulo h&iacute;brido &ldquo;La Selva&rdquo; fueron obtenidas por micropropagaci&oacute;n <I>in vitro </I>de un productor local. Se trasplantaron dos pl&aacute;ntulas por pote y 15 d&iacute;as despu&eacute;s se raleo y se dej&oacute; una planta por pote. Se utiliz&oacute; un inoculo crudo de <I>G. aggregatum </I>de efectividad comprobada en otros estudios de DM (Miyasaka <I>et al.</I>, 1993) el cual conten&iacute;a esporas, fragmentos de ra&iacute;ces infectadas e hifas del hongo suspendidas en una matriz s&oacute;lida compuesta por suelo y cuarzo (1:1). El inoculo tuvo 8.500 prop&aacute;gulos micorrizales infectivos por kg determinado por el m&eacute;todo del n&uacute;mero m&aacute;s probable (NMP) (Porter, 1979). Este hongo fue original-mente suministrado por Dr. M. Habte de la Universidad de Hawaii (Honolulu, USA) y multiplicado en ra&iacute;ces de sorgo y kudzu. La efectividad de &eacute;ste HMA para incrementar la absorci&oacute;n de P y el crecimiento vegetal en suelos con bajo contenido de P soluble ha sido comprobada por P&eacute;rez <I>et al. </I>(2004) y Jaramillo <I>et al. </I>(2004). Al momento de la siembra 50 g del in&oacute;culo de <I>G. aggregatum </I>se mezclaron con los 1.000 g m&aacute;s superficiales del sustrato del pote. Los potes no inoculados recibieron 50 g de arena esterilizada y filtrados de una suspensi&oacute;n del in&oacute;culo crudo (al 10%) luego de remover las estructuras de los hongos con papel filtro Schleicher y Schuell (tama&ntilde;o de poro: 2 &micro;m). Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar, los tratamientos tuvieron un arreglo factorial 3x2, cada tratamiento tuvo tres repeticiones; los tratamientos consistieron en la combinaci&oacute;n de tres niveles de P en la soluci&oacute;n del suelo (0,002, 0,02 y 0,2 mg L<Sup>-1</Sup>) y dos niveles de inoculaci&oacute;n micorrizal (inoculado y no inoculado). Se emplearon como variables de respuesta: (i) contenido de P foliar en funci&oacute;n del tiempo, para esto se tomaron muestras de hojas j&oacute;venes completamente maduras con un perforador (6 mm de di&aacute;metro) a los 21, 40, 65, 89, 102 y 115 d&iacute;as despu&eacute;s del transplante (Habte <I>et al.</I>, 1987). El P fue determinado por el m&eacute;todo del azul de molibdato (Murphy y Riley, 1962) luego de reducir las muestras foliares a cenizas en una mufla a 500 &ordm;C por 3 h. Este m&eacute;todo de muestreo no destructivo fue originalmente propuesto por Aziz y Habte (1987); (ii) masa seca a&eacute;rea y de ra&iacute;ces al final del periodo de crecimiento (115 d&iacute;as), para esto las muestras se llevaron a una estufa y se secaron a 60 &ordm;C durante 96 horas. Luego se determin&oacute; la masa seca a&eacute;rea (MSA), de ra&iacute;ces (MSR) y total (MST); (iii) colonizaci&oacute;n micorrizal de ra&iacute;ces finas; las cuales se sometieron a KOH para aclaraci&oacute;n (Phillips y Hayman, 1970), luego se ti&ntilde;eron con fucsina &aacute;cida (Kormanik <I>et al.</I>, 1980) y posteriormente se determin&oacute; la colonizaci&oacute;n micorrizal siguiendo el m&eacute;todo del intercepto de cuadricula propuesto por Giovannetti y Mosse (1980); (iv) dependencia micorrizal (DM) para lo cual se utiliz&oacute; la masa seca total y se empleo la formula propuesta por Plenchette <I>et al. </I>(1983), luego se consider&oacute; la clasificaci&oacute;n de DM propuesta por Habte y Manjunath (1991); (v) La morfolog&iacute;a del sistema de ra&iacute;ces se determin&oacute; al momento de la cosecha, el sistema de ra&iacute;ces se separ&oacute; en dos grupos: ra&iacute;ces gruesas (g) y finas (f). Luego, se obtuvo una imagen digital de cada grupo de ra&iacute;ces mediante un esc&aacute;ner (HP psc 1210), la cual se proces&oacute; con el <I>software </I>Rootedge versi&oacute;n 2.3b. Con este <I>software </I>se determin&oacute; la longitud de cada grupo de ra&iacute;ces: longitud de ra&iacute;ces gruesas (Lg), longitud de ra&iacute;ces finas (Lf) y la longitud total (Lt), el di&aacute;metro promedio y el &aacute;rea superficial de cada grupo (Ag, Af y At, respectivamente). Los datos obtenidos fueron sometidos a an&aacute;lisis de varianza (Prueba F) para determinar si exist&iacute;an diferencias significativas en funci&oacute;n de los tratamientos. La prueba de LSD se us&oacute; para separar promedios con respecto al control no inoculado en cada uno de los niveles de P en soluci&oacute;n. Para los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos se emple&oacute; un nivel de significancia (<I>P</I>&le;0,05) y estos fueron realizados con el paquete estad&iacute;stico Statgraphics versi&oacute;n 4.0. </P>     <p   align="left"><b>RESULTADOS </b></p>     <P>El incremento en la concentraci&oacute;n de P en la soluci&oacute;n del suelo y la inoculaci&oacute;n con <I>G. </I><I>aggregatum </I>incrementaron significativamente (<I>P</I>&le;0,05) la MSA, MSR y MST del lulo en los tres niveles de P evaluados. Al nivel m&aacute;s bajo P disponible (0,002 mg L<Sup>-1</Sup>) las plantas que crecieron en el sustrato inoculado tuvieron una MST 4,8 veces mayor que aquellas del sustrato no inoculado; igualmente a 0,02 y 0,2 mg L<Sup>-1 </Sup>el incremento con la inoculaci&oacute;n micorrizal sobre la MST fue del 71 y 40% respectivamente (<a href="#fig2">Fig. 2</a> ). </P>     <p>    <center><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/abc/v13n2/v13n2a11f2.jpg"></center></p>     <P> En t&eacute;rminos absolutos el incremento fue mayor al nivel de 0,02 mg L<Sup>-1 </Sup>(<a href="#fig2">Fig. 2</a> ). As&iacute; mismo, el incremento en la concentraci&oacute;n de P en la soluci&oacute;n del suelo aument&oacute; significativamente (<I>P</I>&le;0,05) la longitud de ra&iacute;ces gruesas (Lg), finas (Lf) y ra&iacute;z total (Lt) en las plantas de lulo. La Lg increment&oacute; significativamente en el nivel de 0,02 mg L<Sup>-1</Sup>; sin embargo, al nivel m&aacute;s bajo (0,002 mg L<Sup>-1</Sup>) y m&aacute;s alto (0,2 mg L<Sup>-1</Sup>) no hubo efecto significativo. La inoculaci&oacute;n micorrizal increment&oacute; significativamente (<I>P</I>&le;0.05) Lf y Lt a los niveles de 0,002 y 0,02 mg L<Sup>-1</Sup>, pero no a 0,2 mg L<Sup>-1</Sup>. El efecto de la inocu-laci&oacute;n micorrizal fue significativamente (<I>P</I>&le;0,05) mayor a 0,02 mg L<Sup>-1 </Sup>(<a href="#fig3">Fig. 3</a> ). </P>    <p>    <center><a name="fig3"></a><img src="img/revistas/abc/v13n2/v13n2a11f3.jpg"></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>El &aacute;rea superficial de las ra&iacute;ces gruesas (Ag), finas (Af) y ra&iacute;z total (At) tambi&eacute;n se increment&oacute; significativamente (<I>P</I>&le;0,05) con el aumento en la concentraci&oacute;n de P en la soluci&oacute;n del suelo. La inoculaci&oacute;n micorrizal increment&oacute; significativamente (<I>P</I>&le;0,05) el &aacute;rea superficial de ra&iacute;ces finas (Af) y el &aacute;rea superficial total (At) en todos los niveles de P disponible. El efecto de la inoculaci&oacute;n fue significativamente (<I>P</I>&le;0,05) mayor al nivel de 0,02 mg L<Sup>-1 </Sup>(<a href="#fig4">Fig. 4</a> ). </P>    <p>    <center><a name="fig4"></a><img src="img/revistas/abc/v13n2/v13n2a11f4.jpg"></center></p>     <P> Todas las plantas que crecieron en el sustrato inoculado presentaron colonizaci&oacute;n micorrizal, mientras que las plantas del sustrato no inoculado no desarrollaron la asociaci&oacute;n micorrizal. La colonizaci&oacute;n fue significativamente (<I>P</I>&le;0,05) menor al m&aacute;s alto nivel de P (0,2 mg L<Sup>-1</Sup>) (<a href="#fig5">Fig. 5</a> ). </P>    <p>    <center><a name="fig5"></a><img src="img/revistas/abc/v13n2/v13n2a11f5.jpg"></center></p>     <P > El incremento de la concentraci&oacute;n de P disponible en el sustrato aument&oacute; significativamente el contenido de P foliar. La inoculaci&oacute;n tuvo efecto significativo (<I>P</I>&le;0,05) sobre el contenido de P en las hojas en algunos d&iacute;as de muestreo pero no al momento de la cosecha a todas las concentraciones de P disponible. Las pl&aacute;ntulas de lulo exhibieron dependencia micorrizal (DM), pero esta disminuy&oacute; con el incremento en la concentraci&oacute;n de P en la soluci&oacute;n del suelo (<a href="#fig6">Fig. 6</a> ). El valor de DM a 0,02 mg L<Sup>-1 </Sup>fue de 41,4%, lo que permite clasificar esta especie vegetal como moderadamente dependiente de la asociaci&oacute;n micorrizal. </P>    <p>    <center><a name="fig6"></a><img src="img/revistas/abc/v13n2/v13n2a11f6.jpg"></center></p>     <p   align="left"><b>DISCUSI&Oacute;N </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P >Los resultados claramente ofrecen evidencia de que las plantas de lulo &ldquo;La Selva&rdquo; exhiben dependencia a la asociaci&oacute;n micorrizal. La raz&oacute;n para dicha dependencia puede radicar en el limitado sistema de ra&iacute;ces de esta especie. Los hongos micorrizales pueden modificar morfol&oacute;gica y anat&oacute;micamente la planta hu&eacute;sped; en especial los tejidos radicales. Los beneficios de estos hongos sobre las plantas hu&eacute;sped no son s&oacute;lo explicables a trav&eacute;s del mejoramiento en la captaci&oacute;n de nutrientes de la planta si no que obedecen a efectos metab&oacute;licos m&aacute;s profundos y complejos dada la integraci&oacute;n intima de los simbiontes (Rodr&iacute;guez <I>et al.</I>, 2003). Aunque los beneficios de la asociaci&oacute;n micorrizal para especies de la familia solanaceae est&aacute;n documentados (Bryla y Koide, 1998; Edathil <I>et al. </I>1996) es muy poco lo publicado con relaci&oacute;n a la DM de las especies de esta familia. Los estudios de DM (Monz&oacute;n y Azcon 1996; Habte 1995; Khalil <I>et al. </I>1994; Duponnois <I>et al. </I>2001), no solo hacen posible conocer la respuesta micorrizal a diferentes niveles de P, sino que permiten estudiar relaciones entre la planta y el hongo en el ambiente suelo. En este trabajo se ha incluido, para el c&aacute;lculo de la DM la masa seca total, es decir la suma de la parte a&eacute;rea y de ra&iacute;ces. Esta decisi&oacute;n se ha tomado por los beneficios observados sobre la masa seca del sistema de ra&iacute;ces con la inoculaci&oacute;n micorrizal (<a href="#fig3">Fig. 3</a>  y <a href="#fig4">Fig. 4</a> ). Esta aproximaci&oacute;n difiere de estudios de DM realizados por otros autores (Habte y Manjunath 1991; Zangaro <I>et al. </I>2005; Yano <I>et al. </I>1998) que no tuvieron en cuanta los efectos sobre el sistema de ra&iacute;ces. Incluir las ra&iacute;ces en el c&aacute;lculo de la DM permite una explicaci&oacute;n integral del efecto de los hongos micorrizales sobre la planta. Es bien sabido que el sistema de ra&iacute;ces puede cambiar en funci&oacute;n de la condici&oacute;n del suelo, particularmente de la disponibilidad de P y as&iacute; mismo, ser m&aacute;s eficiente en la captaci&oacute;n de nutrientes de baja movilidad por aumentar la superficie absorbente. Los cambios en la morfolog&iacute;a del sistema de ra&iacute;ces con la inoculaci&oacute;n micorrizal han sido comprobados en plantas de lulo en este trabajo y reportados en otras especies por otros autores (Baon <I>et al. </I>1994; y Barker <I>et al. </I>1998). </P>     <P >Zangaro <I>et al. </I>(2005) estudiado la relaci&oacute;n entre HMA y las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas de la ra&iacute;z, plantean que especies vegetales que exhiban ra&iacute;ces finas con densos y largos pelos absorbentes, presentan alta respuesta micorrizal. En contraste, Saif (1987) report&oacute; que los pastos tropicales con largos pelos absorbentes son m&aacute;s beneficiados por los hongos micorrizales que las especies de cortos pelos absorbentes. Duponnois <I>et al. </I>(2001) mostraron una correlaci&oacute;n positiva entre la respuesta a HMA de leguminosas tropicales y la longitud y densidad de las ra&iacute;ces. Siqueira y Saggin-Junior (2001) reportaron que algunas especies nativas tropicales en Brasil con gruesas ra&iacute;ces y pocos pelos absorbentes no respondieron a los HMA, en tanto otras especies con finas ra&iacute;ces y abundantes pelos absorbentes fueron de muy alta respuesta. Los resultados obtenidos en lulo dado su sistema de ra&iacute;ces, coinciden con lo planteado por Zangaro <I>et al. </I>(2005) y por Baon <I>et al. </I>(1994), que reportan que plantas de ra&iacute;ces con largos y numerosos pelos absorbentes, tienden a exhibir alta colonizaci&oacute;n micorrizal. Los resultados obtenidos con <I>S. quitoense </I>h&iacute;brido &ldquo;La Selva&rdquo;, indican que exhibe una moderada DM (25-50%), seg&uacute;n la categor&iacute;a propuesta por Habte y Manjunath (1991). Este resultado sorprende porque se esperaba una mayor DM, ya que los suelos en donde crecen naturalmente esta especie son muy bajos en P disponible. Pero igualmente las plantas inoculadas presentaron una baja tasa de absorci&oacute;n de P, lo que podr&iacute;a explicar la DM obtenida. Evento este diferente a resultados encontrados por Smith, <I>et al. </I>(2003) que reportan el incremento en la incorporaci&oacute;n de P, de la soluci&oacute;n del suelo por plantas colonizadas con estos hongos. Khalil <I>et al. </I>(1999) reportaron una correlaci&oacute;n entre la colonizaci&oacute;n micorrizal y el contenido de P en la parte a&eacute;rea. Bryla y Koide, (1998) evaluaron dos genotipos de tomate dependientes y no dependientes y encontraron marcadas diferencias en su crecimiento; la caracter&iacute;stica que determin&oacute; la no dependencia en algunos de estos materiales fue la gran longitud y densidad de ra&iacute;z. Las plantas pueden desarrollar diferentes estrategias para captar P a bajas concentraciones en el suelo (Marschner, 1998). Una alternativa es la producci&oacute;n de un sistema fibroso, de ra&iacute;ces finas ampliamente ramificado y con abundancia de pelos absorbentes, como las observadas en las plantas de lulo estudiadas. Se encontr&oacute; que las ra&iacute;ces exhiben una dominancia de ra&iacute;ces finas terciarias y de mayor nivel que les per-mite explorar mayor volumen de suelo y penetrar los agregados del mismo (Parniske, 2004). La inoculaci&oacute;n micorrizal afect&oacute; la morfolog&iacute;a de las ra&iacute;ces significativamente en lulo. Estos resultados se relacionan con la respuesta a la inoculaci&oacute;n micorrizal en esta planta para producci&oacute;n de MSA, MSR y MST. Los resultados permiten concluir que se present&oacute; un efecto de la concentraci&oacute;n de P disponible en el sustrato sobre el crecimiento y la DM de las plantas de lulo &ldquo;La Selva&rdquo;. En general se observa que al incrementar la concentraci&oacute;n de P en la soluci&oacute;n disminuye la DM. En lulo la mayor DM se present&oacute; al nivel m&aacute;s bajo de P en soluci&oacute;n (0,002 mg L<Sup>-1</Sup>), lo que podr&iacute;a explicarse como una estrategia de estas plantas de establecer la asociaci&oacute;n con HMA para mejorar la absorci&oacute;n de P. Igualmente, Zandavalli <I>et al. </I>(2004), reportan que el grado de colonizaci&oacute;n micorrizal es controlado por el nivel de P en el tejido del hospedero y que una alta disponibilidad de P para las plantas reduce la colonizaci&oacute;n de la ra&iacute;z por HMA. La concentraci&oacute;n de P en la soluci&oacute;n del suelo, afect&oacute; el grado de colonizaci&oacute;n micorrizal; los valores m&aacute;s altos de infecci&oacute;n se obtuvieron en el nivel bajo (0,002 mg L<Sup>-1</Sup>) y medio (0,02 mg L<Sup>-1</Sup>) de P en soluci&oacute;n. Estos resultados sugieren que a niveles altos de P en la soluci&oacute;n del suelo, la colonizaci&oacute;n de la ra&iacute;z por HMA disminuye, es decir a un nivel alto de P se deprime la colonizaci&oacute;n micorrizal y la planta no requiere establecer la asociaci&oacute;n. Presumiblemente a este nivel alto de P se pueden &ldquo;apagar&rdquo; los transportadores de P de las hifas micorrizales no realizando absorci&oacute;n de P. En el crecimiento de las plantas, no se evidenci&oacute; relaci&oacute;n entre la masa y el contenido de P. Esto podr&iacute;a sugerir un efecto de diluci&oacute;n del elemento en toda la planta requerido para aumentar la masa de la ra&iacute;z. Resultados similares han sido reportados por Khalil <I>et al.</I>, (1999) y por Zandavalli <I>et al.</I>, (2004). La colonizaci&oacute;n disminuyo al aumentar el nivel de P, probablemente esto se puede asociar con un bajo suministro de fotosintatos de la planta al HMA, reafirmando que es la planta quien controla y regula el desarrollo del hongo. La estrategia de la planta puede ser reducir el drenaje de carbono o de fotosintatos hacia el hongo bajo condiciones de alta disponibilidad de P. Especies con una DM mayor deber&iacute;an exhibir una mayor colonizaci&oacute;n micorrizal, es decir una mayor masa fungal. El grado de colonizaci&oacute;n de la ra&iacute;z es controlado por el nivel de P en el tejido del hospedero (Zandavalli <I>et al.</I>, 2004). Una alta disponibilidad de P para las plantas se expresa en una reducci&oacute;n del porcentaje de colonizaci&oacute;n por los HMA, reportes similares han sido hechos por Yano <I>et al. </I>(1998), al afirmar que las plantas translocaron m&aacute;s cantidad de fotosintatos al sistema de ra&iacute;ces que a la parte a&eacute;rea, probablemente adapt&aacute;ndose a un estr&eacute;s ambiental. Se recomienda para futuros estudios de DM, que involucren especies vegetales adaptadas a suelos con baja disponibilidad de P, establecer la concentraci&oacute;n de P en la soluci&oacute;n del suelo entre 0,002 y 0,02 mg L<Sup>-1</Sup>. Este aspecto se justifica por los niveles tan bajos de P en la soluci&oacute;n del suelo que se encuentran para los h&aacute;bitat donde crecen las especies vegetales tropicales y por la alta aplicaci&oacute;n de P v&iacute;a fertilizante que es necesario adicionar al suelo en los sistemas agr&iacute;colas de producci&oacute;n en el tr&oacute;pico. </P>     <p   align="left"><b>AGRADECIMIENTOS </b></p>     <P >Este trabajo se realiz&oacute; con el apoyo financiero de la Direcci&oacute;n de Investigaciones (DIME) de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n, en el marco del proyecto &ldquo;Determinaci&oacute;n de la dependencia micorrizal de frutales de clima fr&iacute;o&rdquo; (30802731). </P>     <p   align="left"><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A </b></p>     <!-- ref --><P >AZIZ T, HABTE M. Determining vesicular-arbuscular micorrizal effectiveness by monitoring P status of leaf disk. Can J Microbiol. 1987;33:1097-1101. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000048&pid=S0120-548X200800020001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P >BAON JB, SMITH SE, ALSTON AM. Growth response and phosphorus uptake of rye with long and short root hairs: interactions whit mycorrhizal infection. Plant Soil. 1994;167:247-254. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000049&pid=S0120-548X200800020001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>BARKER SJ, TAGU D, DELP G. Regulation of root and fungal morphogenesis in mycorrhizal symbiosis. Plant Physiol. 1998;116:1201-1207. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000050&pid=S0120-548X200800020001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>BLAL B, GIANINAZZI-PEARSON V, FARDEAU JC, GIANINAZZI S. Influence of vesicular-arbuscular mycorrhizae on phosphate fertilizer efficiency in two tropical acid soils planted with micropropagated oil palm (<I>Elaeis guineensis </I>jacq.). Biol Fertil Soils. 1990;9:43-48. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000051&pid=S0120-548X200800020001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>BRUNDRETT MC. Coevolution of roots and mycorrhizas of land plants. New Phytol. 2002;14:275-304. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000052&pid=S0120-548X200800020001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>BRYLA RD, KOIDE RT. Mycorrhizal response of two tomato genotypes relates to their ability to acquire and utilize phosphorus. Ann Bot London. 1998;82:849-857. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0120-548X200800020001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>DUPONNOIS R, PLENCHETTE C, BA AMADOU M. Growth stimulation of seventeen fallow leguminous plants inoculated with <I>Glomus aggregatum </I>in Senegal. Eur J Soil Biol. 2001;37:181-186. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0120-548X200800020001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>EDATHIL THOMSON T, MANIAN S, UDAIYAN K. Interaction of multiple VAM fungal species on root colonization, plant growth and nutrient status of tomato seedlings (<I>Lycopersicon esculentum </I>Mill.) Agr Ecosyst Environ. 1996;59:63-68. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-548X200800020001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>ESPINAL S. Zonas de vida: formaciones vegetales del departamento de Antioquia. Medell&iacute;n: Universidad Nacional de Colombia; 1977. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-548X200800020001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>FOX R, KAMPRATH E. Phosphate sorption isotherms for evaluating the phosphate requirements of soils. Soil Sci Soc Am Proc. 1970;34:902-907. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-548X200800020001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>GAHOONIA TS, NIELSEN N E, JOSHI P A, JAHOOR A. A root hairless barley mutant for elucidating genetics of root hairs and phosphorus uptake. Plant Soil. 2001;235:211-219. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-548X200800020001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>GIOVANNETTI M, MOSSE B. An evaluation of techniques for measuring vesicular-arbuscular mycorrhizal infection in roots. New Phytol. 1980;84:489-500. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-548X200800020001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>HABTE M, FOX RL, HUANG RS. Determining vesicular-arbuscular mycorrhizal effectiveness by monitoring P status of subleaflets of an indicator plant. Communn Soil Sci Plan. 1987;18(12):1403-1420. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-548X200800020001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>HABTE M, MANJUNATH A. Categories of vesicular-arbuscular mycorrhizal dependency of host especies. 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Rev Fac Nac Agron. 2004;57:2203-2214. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-548X200800020001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>KHALIL S, LOYNACHAN TE, TABATABAI MA. Mycorrhizal dependency and nutrient uptake by improved and unimproved corn and soybean cultivars. Agron J. 1994;86:949-958. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-548X200800020001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>KHALIL S, LOYNACHAN TE, TABATABAI MA. Plant determinants of mycorrhizal dependency in soybean. 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Field Crop Res. 1998;56:203-207 &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-548X200800020001100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>MIYASAKA S, HABTE M, MATSUYAMA D. Mycorrhizal dependency of two hawaian endemic tree species: koa and mamane. J Plant Nutr. 1993;16:1339-1355. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-548X200800020001100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>MONZ&Oacute;N A, AZC&Oacute;N R. Relevance of mycorrhizal fungal origin and host plant genotype to inducing growth and nutrient uptake in Medicago species. 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Appl Soil Ecol. 2003;22:24-53. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-548X200800020001100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>OLUSOLA SA, OSONUBI O. Improving the traditional land use system through agrobiotechnology: a case study of adoption of vesicular arbuscular mycorrhiza (VAM) by resource-poor farmers in Nigeria. Technovation. 2002;22:725-730. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-548X200800020001100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>OZANE PG, SHAW TC. Phosphate sorption by soils as a measures of the phosphate requirement for pasture growth. Aust J Agric Res. 1967;18:601-612. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-548X200800020001100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>PARNISKE M. Molecular genetics of the arbuscular mycorrhizal symbiosis. Plant Biol. 2004;7:414-421. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-548X200800020001100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>P&Eacute;REZ JC, OSORIO NW, &Aacute;LVAREZ CL. Inoculaci&oacute;n micorrizal cambia la morfolog&iacute;a de la ra&iacute;z de esp&aacute;rrago e incrementa el crecimiento y la absorci&oacute;n de f&oacute;sforo en un Andisol. 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Plant Soil 1983; 70: 211-217. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-548X200800020001100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> PORTER W. The “Most Probable Number” method for enumerating infective propagules of vesicular arbuscular mycorrhizal fungi in soil. Aust J Soil Res. 1979;17:515-519.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-548X200800020001100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>RODR&Iacute;GUEZ H, FRAGA R, GONZ&Aacute;LEZ T, BASHAN Y. Genetics of phosphate solubilization and its potential applications for improving plant growth-promoting bacteria. Appl Soil Ecol. 2003;26:249-255. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-548X200800020001100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>SAIF SR. Growth responses of tropical forage plant species to vesiculararbuscular mycorrhizae. Plant Soil. 1987;97:25-35. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-548X200800020001100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>SIQUEIRA JO, SAGGIN OJ. Dependency on arbuscular mycorrhizal fungi and resposiveness of some Brazilian native woody species. Mycorrhiza. 2001;11:245-255. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-548X200800020001100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>SMITH SE, SMITH A, JAKOBSEN I. Mycorrhizal Fungi Can Dominate Phosphate Supply to Plants Irrespective of Growth Responses. Plant Physiol. 2003;133:16-20. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-548X200800020001100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>YANO K, TAKAKI M. Mycorrhizal alleviation of acid soil stress in the sweet potato (Ipomoea batatas). Soil Biol Biochem. 2005;37:1569-1572. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-548X200800020001100036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>YANO K, YAMAUCHI A, LIJIMA M, KONO Y. Arbuscular mycorrhizal formation in undisturbed soil stress for pigeon pea. Appl Soil Ecol. 1998;10:95-102. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-548X200800020001100037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>ZAKARIA SM, ABBOT LK. Phosphorus uptake by a community mycorrhizal fungi in jarrah forest. Plant Soil. 2002;246:313-320. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-548X200800020001100038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>ZANDAVALLI RB, DILLENBURG LRD, DE SOUZA PV. Growth responses of Araucaria angustifolia (Araucariaceae) to inoculation with the mycorrhizal fungus Glomus clarum. Appl Soil Ecol. 2004;25:245-255. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-548X200800020001100039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>ZANGARO W, NISHIDATE FP, SPAGO FR, ROMAGNOLI G, VANDRESSEN G. Relations among arbuscular mycorrhizas, root morphology and seedling growth of tropical native woody species in southern Brazil. J Trop Ecol. 2005;21:529-540. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-548X200800020001100040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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