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<publisher-name><![CDATA[Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Ciencias, Departamento de Biología]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[CARACTERIZACIÓN DE VARIANTES ALÉLICAS DE CITOCROMO CYP2D6 EN LA POBLACIÓN DE LA REGIÓN CENTROCCIDENTAL DE VENEZUELA]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Characterization Of Cytochrome Cyp2d6 Allele Variants In The Population Of The Central-Western Region Of Venezuela]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Centroccidental Lisandro Alvarado (UCLA) Decanato de Ciencias de la Salud Laboratorio de Genética Molecular]]></institution>
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<country>Venezuela</country>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The CYP2D6 gene encodes for a monooxygenase belonging to the cytochrome P450, which is involved in the biotransformation of a large number of commonly prescribed drugs such as antidepressants, antihypertensive and antineoplastic. Some side effects, as well as therapeutic failure may be related to abnormal activity of CYP2D6 product of polymorphisms in the CYP2D6 gene. In order to predict the frequency of some poor metabolisers phenotypes of CYP2D6 in the population of the Central-Western region of Venezuela it was determined the allelic and genotypic frequencies of CYP2D6 *3, *4, *6 allelic variants. DNA was extracted from peripheral blood of 100 apparently healthy volunteers, and proceded to genotyping by PCR tetra-primer allele-specific analysis and agarose gel electrophoresis. We compared the frequencies obtained with those of other countries. The most frequent allele was CYP2D6 *4 with 16.5%, showing a significant difference to the reported in Asian populations. This work is a preliminary study on the characterization of a wider group of CYP2D6 alleles in order to assist the development of an individualized pharmacotherapy in our country.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Citocromo P450]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4">  <b>CARACTERIZACI&Oacute;N DE VARIANTES AL&Eacute;LICAS DE CITOCROMO CYP2D6 EN LA POBLACI&Oacute;N DE LA REGI&Oacute;N CENTROCCIDENTAL DE VENEZUELA </b></font></P >     <p align="center"><b><font size="3">Characterization Of Cytochrome Cyp2d6 Allele Variants In The Population Of The Central-Western Region Of Venezuela</font> </b></p>        <P    >PEDRO GRIM&Aacute;N<Sup>1</Sup>, B.Sc.; YEINMY MOR&Aacute;N<Sup>1</Sup>, B.Sc.; MAR&Iacute;A CAMARGO<Sup>1</Sup>, TSU; MIGUEL ANGEL CHIURILLO<Sup>1</Sup>, Ph.D. </p >     <P    ><Sup>1 </Sup>Laboratorio de Gen&eacute;tica Molecular Dr. Jorge Yunis-Turbay.   Decanato de Ciencias de la Salud. Universidad Centroccidental   Lisandro Alvarado (UCLA). Barquisimeto. Venezuela.    Correspondencia: Miguel Angel Chiurillo. Laboratorio de Gen&eacute;tica   Molecular Dr. Jorge Yunis-Turbay. Decanato de Ciencias de la Salud.   Universidad Centroccidental Lisandro Alvarado (UCLA). Barquisimeto.   Avenida Libertador. 3001. Estado Lara. Venezuela. Fax: (58) 251 259 18 86. E-mail: <a href="mailto:mchiurillo@ucla.edu.ve">mchiurillo@ucla.edu.ve</a></p >     <P    >Presentado 17 de diciembre de 2008, aceptado 15 de enero de 2009, correcciones 19 de febrero de 2009 </p > <hr size="1">     <p    ><b>RESUMEN</b> </p >     <P    >El gen CYP2D6 codifica para una monooxigenasa perteneciente al citocromo P450, la cual est&aacute; involucrada en la biotransformaci&oacute;n de un gran n&uacute;mero de drogas com&uacute;nmente prescritas, como antidepresivos, antineopl&aacute;sicos y antihipertensivos. Algunos efectos adversos, as&iacute; como falla terap&eacute;utica pueden ser relacionados con la actividad anormal de CYP2D6 producto de polimorfismos en el gen de dicha enzima. Con el fin de predecir la frecuencia de algunos fenotipos metabolizadores pobres de CYP2D6 en la poblaci&oacute;n de la regi&oacute;n centroccidental de Venezuela se determinaron las frecuencias al&eacute;licas y genot&iacute;picas de las variantes al&eacute;licas CYP2D6*3, *4 y *6. Se extrajo ADN gen&oacute;mico a partir de sangre perif&eacute;rica de 100 individuos voluntarios aparentemente sanos, y se procedi&oacute; a la genotipificaci&oacute;n por PCR tetra-<I>primer </I>alelo-espec&iacute;fica y an&aacute;lisis por electroforesis en geles de agarosa. Se compararon las frecuencias obtenidas con poblaciones de otros pa&iacute;ses. El alelo m&aacute;s frecuente fue CYP2D6*4 con 16,5%, mostrando una diferencia significativa con la reportada con poblaciones asi&aacute;ticas. Este trabajo constituye un estudio preliminar en la caracterizaci&oacute;n de un grupo m&aacute;s amplio de alelos de CYP2D6 con el fin de asistir al desarrollo de una farmacoterapia individualizada en nuestro pa&iacute;s.</P >     <P    ><b>Palabras clave:</b> Citocromo P450, CYP2D6, Farmacogen&eacute;tica.</P > <hr size="1">     <p    ><b>ABSTRACT</b> </p >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >The CYP2D6 gene encodes for a monooxygenase belonging to the cytochrome P450, which is involved in the biotransformation of a large number of commonly prescribed drugs such as antidepressants, antihypertensive and antineoplastic. Some side effects, as well as therapeutic failure may be related to abnormal activity of CYP2D6 product of polymorphisms in the CYP2D6 gene. In order to predict the frequency of some poor metabolisers phenotypes of CYP2D6 in the population of the Central-Western region of Venezuela it was determined the allelic and genotypic frequencies of CYP2D6 *3, *4, *6 allelic variants. DNA was extracted from peripheral blood of 100 apparently healthy volunteers, and proceded to genotyping by PCR tetra-primer allele-specific analysis and agarose gel electrophoresis. We compared the frequencies obtained with those of other countries. The most frequent allele was CYP2D6 *4 with 16.5%, showing a significant difference to the reported in Asian populations. This work is a preliminary study on the characterization of a wider group of CYP2D6 alleles in order to assist the development of an individualized pharmacotherapy in our country. </P >     <p ><b>Key words:</b> cytochrome P450, CYP2D6, Pharmacogenetic. </P > <hr size="1">     <p    ><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b> </p >     <p >CYP2D6 es una monooxigenasa miembro de la superfamilia de citocromo P450, involucrada en el metabolismo de una amplia gama de f&aacute;rmacos de utilidad cl&iacute;nica, como neurol&eacute;pticos, antidepresivos, inhibidores selectivos de la recaptaci&oacute;n de serotonina y &beta;-bloqueantes, as&iacute; como de ciertas sustancias end&oacute;genas (Ingelman-Sundberg, 2005). El gen que codifica para CYP2D6 est&aacute; localizado cerca de dos pseudogenes alineados en tanda, CYP2D8P y CYP2D7P, en el cromosoma 22q13.1 (Ledesma y Agundez, 2005). Esta regi&oacute;n del genoma es altamente polim&oacute;rfica y se han descrito alrededor de 70 variantes al&eacute;licas, las cuales en su mayor&iacute;a llevan a un cambio en la actividad enzim&aacute;tica (<a href="www.cypalleles.ki.se/cyp2d6.htm">www.cypalleles.ki.se/cyp2d6.htm</a>), siendo esto una de las principales causas de las diferencias interindividuales en la respuesta a f&aacute;rmacos que son metabolizados por este citocromo. </P >     <p >Los individuos pueden ser clasificados seg&uacute;n la actividad enzim&aacute;tica de CYP2D6, la cual puede presentar cuatro fenotipos: metabolizadores pobres (MP) cuando la actividad enzim&aacute;tica es nula, metabolizadores ultrar&aacute;pidos cuando la actividad enzim&aacute;tica est&aacute; incrementada debido a la existencia de m&uacute;ltiples copias del gen. Se consideran como metabolizadores extensivos a individuos con actividad normal y como metabolizadores intermedios aquellos que tienen actividad enzim&aacute;tica disminuida (Crescenti <I>et al.</I>, 2007). Se han relacionado alrededor de 20 polimorfismos con el fenotipo MP (Zanger <I>et al.</I>, 2004), de los cuales aproximadamente el 95% corresponden a los alelos *3, *4, *5 y *6, en individuos cauc&aacute;sicos (Sachse <I>et al.</I>, 1997), siendo el alelo con mayor frecuencia el *4, caracterizado por una sustituci&oacute;n de base G1934A en el sitio de <I>splicing </I>entre el intr&oacute;n tres y el ex&oacute;n cuatro, produciendo un cambio en el marco de lectura resultando de esta mutaci&oacute;n una prote&iacute;na truncada (Hanioka <I>et al.</I>, 1990). La variante *3 consiste en una deleci&oacute;n de una base 2549A que tambi&eacute;n produce un cambio en el marco de lectura (Kagimoto et al., 1990), el alelo *5 es causada por la deleción completa del gen, y la variante *6 corresponde a una deleción de una base T1707 en el exón tres, originando un cambio en el marco de lectura y la generación de un codón de parada después de la deleción (Saxena et al., 1994).</P >     <p >En este trabajo se investigaron las frecuencias alélicas y genotípicas de los alelos *3, *4 y *6 de 100 individuos sanos con el fin de predecir fenotipos MP en una muestra de la población de la región centroccidental de Venezuela.</P >     <p ><b>MATERIALES Y MÉTODOS</b></P >     <p >MUESTRAS  </P >     <p >El estudio incluyó 100 individuos aparentemente sanos no relacionados (39 hombres   y 61 mujeres) con un promedio de edad de 21,5 años (16-40 años) procedentes de   los estados de la región centroccidental de Venezuela: Estados Lara, Portuguesa o   Yaracuy. El estudio reunió los requerimientos éticos del comité del Decanato de Ciencias   de la Salud-UCLA, y todos los participantes dieron su consentimiento informado   por escrito. A cada uno de los individuos, con las características mencionadas, se le   tomó aproxi-madamente 5 mL de sangre periférica, la cual fue colectada en   vacutainers que contenían EDTA como anticoagulante.</P >     <p >EXTRACCIÓN DE ADN</P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p >La extracción se realizó a partir de 300 µL de sangre periférica mediante el Wizard   Genomic DNA Purification Kit (Promega). La concentración del ADN de las muestras fue   estimada por espectrofotometría a 260/280 nm de longitud de onda empleando un   equipo GeneQuant pro (Amersham-Pharmacia).</P >     <p >DETERMINACIÓN DE VARIANTES ALÉLICAS</P >     <p >La detección de los alelos se hizo por PCR tetra-primer empleando los iniciadores   reportados por Hersberger et al., 2000 (<a href="#tabla1">Tabla 1</a>).</P >    <p>    <center><a name="tabla1"></a><img src="img/revistas/abc/v14n1/v14n1a14t1.jpg"></center></p>     <p >Los iniciadores se usaron a una concentraci&oacute;n inicial de 10 &micro;M. A un volumen final de 25 &micro;L para las reacciones de PCR, se les agreg&oacute; 5 &micro;L de buffer 5X, 0,25 &micro;L de <I>GoTaq flexi DNA Polimerase </I>(Promega; 5u/&micro;L), 1,5 &micro;L de cloruro de magnesio (25 mM) y 1 &micro;L de mezcla dNTPs. </P >     <p >Para la detecci&oacute;n del alelo *3, la mezcla de la reacci&oacute;n de tetra-<I>primer </I>PCR estaba compuesta por 0,3 &micro;L de <I>primer </I>3, 0,3 &micro;L de <I>primer </I>4<I>new</I>, 0,75 &micro;L de <I>primer </I>6, 0,75 &micro;l de <I>primer </I>awt. Las condiciones de amplificaci&oacute;n usadas fueron: 2 minutos a 95 &ordm;C, seguido de 20 ciclos de 94 &ordm;C por 30 s, 63 &ordm;C por 30 s, 72 &ordm;C por 60 s; y luego 27 ciclos de 94 &ordm;C por 30 s, 53&ordm;C por 30 s, 72&ordm;C por 60 s. </P >     <p >Para la detecci&oacute;n del alelo *4, la mezcla de la reacci&oacute;n de tetra-<I>primer </I>fue 0,5 &micro;L de primer 1<I>new</I>, 0,5 &micro;L de <I>primer </I>2<I>new</I>, 0,75 &micro;L de <I>primer </I>Bmut y 0,5 &micro;L de <I>primer </I>7. Las condiciones usadas para la amplificaci&oacute;n fueron: 2 minutos a 95 &ordm;C, seguido de 15 ciclos de 94 &ordm;C por 30 s, 65 &ordm;C por 30 s, 72 &ordm;C por 60 s; y posteriormente 27 ciclos de 94 &ordm;C por 30 s, 53 &ordm;C por 30 s, 72 &ordm;C por 60 s. </P >     <p >Para la detecci&oacute;n del alelo *6, la mezcla de la reacci&oacute;n de tetra-<I>primer </I>PCR estaba compuesta por 0,5 &micro;L de <I>primer </I>1<I>new</I>, 0,5 &micro;l de primer 2<I>new</I>, 0,75 de <I>primer </I>Tmut, 0,75 &micro;L de <I>primer </I>11. Las condiciones de la PCR fueron: 2 minutos a 95 &ordm;C, seguido de 15 ciclos de 94 &ordm;C por 30 s, 63 &ordm;C por 30 s, 72 &ordm;C por 60 s; y luego por 27 ciclos de 94 &ordm;C por 30 s, 53 &ordm;C por 30 s, 72 &ordm;C por 60 s. </P >     <p >Los productos de PCR fueron separados por electroforesis en gel de agarosa a 3% te&ntilde;ido con bromuro de etidio para ser visualizado empleando Kodak Gel Logic 200 Imagen System (<a href="#fig1">Fig. 1</a>).</P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/abc/v14n1/v14n1a14f1.jpg"></center></p>     <p ><b>AN&Aacute;LISIS ESTAD&Iacute;STICO</b></P >     <p >Se determinaron las frecuencias al&eacute;licas y genot&iacute;picas. Se utiliz&oacute; la prueba de Chicuadrado para comparar las frecuencias al&eacute;licas entre las poblaciones comparadas mediante el paquete estad&iacute;stico SSPS 11.0. Las diferencias fueron consideradas estad&iacute;sticamente significativas para valores de p <0,05. </p>     <p ><b>RESULTADOS</b></p>       <p >En este estudio se investigó las frecuencias alélicas de las variantes MP CYP2D6*3, *4 y *6 en 100 individuos voluntarios procedentes de la región centroccidental de Venezuela. La variante alélica que se presentó con mayor frecuencia fue el alelo *4 (16,5%), siendo en el 1% de los casos homocigotos. La frecuencia encontrada del alelo *6 fue 1%, mientras que el alelo *3 no se detectó en los sujetos del estudio (<a href="#tabla2">Tabla 2</a> y <a href="#tabla3">Tabla 3</a>).</p>     <p>    <center><a name="tabla2"></a><img src="img/revistas/abc/v14n1/v14n1a14t2.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="tabla3"></a><img src="img/revistas/abc/v14n1/v14n1a14t3.jpg"></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p >La distribución de las frecuencias alélicas de CYP2D6*3, *4 y *6 obtenidas en este trabajo fueron tomadas como referencia para ser comparadas con diferentes poblaciones empleando el test X2 (<a href="#tabla4">Tabla 4</a>). Se encontraron diferencias significativas al comparar con las frecuencias de CYP2D6*4 reportadas para poblaciones del Sur de la India (p < 0,05) y China (p < 0,001), no así para poblaciones de Europa y América .</p>     <p >No se evidenciaron diferencias significativas con las frecuencias de los alelos *3 y *6 en las poblaciones usadas para comparación.</p>     <p>    <center><a name="tabla4"></a><img src="img/revistas/abc/v14n1/v14n1a14t4.jpg"></center></p>     <p    ><b>DISCUSI&Oacute;N </b></p >     <p >Es esencial determinar la prevalencia de polimorfismos de CYP2D6 en cada poblaci&oacute;n, debido a que las frecuencias de las variantes al&eacute;licas son diferentes en cada grupo &eacute;tnico, aunque el efecto de cada variante al&eacute;lica sea id&eacute;ntico para cada poblaci&oacute;n (Leathart <I>et al.</I>, 1998). A&uacute;n cuando han sido reportados m&aacute;s de 20 polimorfismos de CYP2D6 causantes del fenotipo MP, la mayor&iacute;a ocurren de manera infrecuente y no resultan de relevancia pr&aacute;ctica (Zanger <I>et al.</I>, 2004). </P >     <p >En este trabajo se reportan la detecci&oacute;n de tres de estos alelos MP (*3, *4 y *6) mediante ensayo de PCR tetra-<I>primer </I>en la poblaci&oacute;n de la regi&oacute;n centroccidental de Venezuela. La mutaci&oacute;n causante de fenotipo MP m&aacute;s frecuente fue *4. Las frecuencias de estos alelos fueron encontradas semejantes a aquellas reportadas para diferentes poblaciones europeas (Sachse <I>et al.</I>, 1997; Sabbagh <I>et al.</I>, 1999; Gaikovitch <I>et al.</I>, 2003; Scordo <I>et al.</I>, 2004; Menoyo <I>et al.</I>, 2006; Crescenti <I>et al.</I>, 2007), as&iacute; como en poblaciones latinoamericanas de Colombia y M&eacute;xico (Isaza <I>et al.</I>, 2000; L&oacute;pez <I>et al.</I>, 2005). Mientras que para poblaciones europeas las frecuencias para este alelo est&aacute;n entre 15%-21%, en Colombia en 19,4% y en M&eacute;xico 11,21%, en el presente estudio, la frecuencia de CYP2D6*4 fue encontrada en 16,5%, sin evidenciar diferencias estad&iacute;sticamente significativas. </P >     <p >En contraste, las poblaciones asi&aacute;ticas consideradas en este trabajo presentan frecuencias menores de *4 que resultan en diferencias significativas (Ji <I>et al.</I>, 2002; Theophilus <I>et al.</I>, 2006). Los asi&aacute;ticos y otros pobladores de las islas del pac&iacute;fico tienen una alta frecuencia del alelo MP CYP2D6*10 (Bradford, 2002). La informaci&oacute;n de amerindios de Norte, Centro y Sur Am&eacute;rica indican frecuencias comparativamente menores del alelo *10, debido probablemente a un efecto fundador (Bradford, 2002). </P >     <p >Estimaciones revelan que entre el 20 y 25% de todas las drogas de uso cl&iacute;nico son metabolizadas al menos en parte por CYP2D6 (Evans y Relling, 2004). Esta enzima responde por solo un peque&ntilde;o porcentaje de todo el metabolismo hep&aacute;tico del citocromo P450, pero su papel en el metabolismo de f&aacute;rmacos es mucho mayor que su contenido relativo (Zanger <I>et al.</I>, 2004). Los individuos homocigotos para uno de los alelos MP de CYP2D6 o quienes presentan una combinaci&oacute;n de dos alelos MP muestran una actividad disminuida de esta enzima y efectos adversos ante algunas terapias farmacol&oacute;gicas de rutina, en las cuales la eliminaci&oacute;n de la droga es dependiente de CYP2D6 (Ingelman-Sundberg, 2005). Cuatro de estos alelos, *3, *4, *5 y *6, causan el 93-97% de los fenotipos MP en la poblaci&oacute;n cauc&aacute;sica (Sachse <I>et al.</I>, 1997). </P >     <p >CYP2D6 es crucial en el metabolismo de drogas, por ello existe la necesidad de estudios de farmacogen&eacute;tica con muestras grandes en cada poblaci&oacute;n. Debido a que la poblaci&oacute;n venezolana es fundamentalmente de car&aacute;cter mixto, a&uacute;n m&aacute;s se torna relevante la evaluaci&oacute;n de las variantes al&eacute;licas de varios citocromo P450. La determinaci&oacute;n de los alelos MP *3, *4 y *6 de CYP2D6, incluyendo otros que ser&aacute;n analizados en el futuro, facilitar&aacute; su uso en la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica asistiendo al desarrollo de una farmacoterapia individualizada.</P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ><b>AGRADECIMIENTOS</b></P >     <p >Este trabajo fue financiado por Proyecto 025-ME-2005 CDCHT-UCLA. </P >     <p ><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></P >     <!-- ref --><p >BRADFORD LD. CYP2D6 allele frequency in European Caucasians, Asians, Africans and their descendants. Pharmacogenomics. 2002;3(2):229-243.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-548X200900010001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >CRESCENTI A, MAS S, GASS&Oacute; S, BAIGET M, BERNARDO M, LAFUENTE A. Simultaneous genotyping of CYP2D6 *3, *4, *5 and *6 polymorphisms in a spanish population through multiplex long polymerase chain reaction and minisequencing multiplex single base extension analysis. Clin Exp Pharmacol Physiol. 2007;34(10):992-997.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-548X200900010001400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >EVANS WE, RELLING MV. Moving towards individualizad with pharmacogenetics. Nature. 2004;429:464-468.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-548X200900010001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >GAIKOVITCH EA, CASCORBI I, MROZIKIEWICZ PM, BROCKM&Ouml;LLER J, FR&Ouml;TSCHL R, K&Ouml;PKE K, <I>et al. </I>Polymorphisms of drug metabolizing enzymes CYP2C9, CYP2C19, CYP2D6, CYP1A1, NAT2 and p-glycoprotein in a Russian population. Eur J Clin Pharmcol. 2003;59(4):303-312.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-548X200900010001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >HANIOKA N, KIMURA S, MEYER UA, GONZALEZ FJ. The human CYP2D locus associated with a   common genetic defect in drug oxidation: a G1934--A base change in intron 3 of   a mutant CYP2D6 allele results in an aberrant 3&#39; splice recognition site. Am J Hum Genet. 1990;47(6):994-1001.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-548X200900010001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >HERSBERGER M, MARTI-JAUN J, RENTSCH K, H&Auml;NSELEER E. Rapid detection of the CYP2D6*3, CYP2d6*4, and CYP2D6*6 alleles by tetraprimer PCR and of the CYP2D6*5 allele by multiplex long PCR. 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Pharmacogenomics J. 2005;5:6-13.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-548X200900010001400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >ISAZA CA, HENAO J, L&Oacute;PEZ AM, CACABELOS R. Isolation, sequence and genotyping of the drug metabolizer CYP2D6 gene in the Colombian population. Methods Find Exp Clin Pharmacol. 2000;22(9):695-705.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-548X200900010001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >JI L, PAN S, MARTI-JAUN J, H&Auml;NSELER E, RENTSCH K, HERSBERGER M. Single step Assay to Analyze CYP2D6 Gene Polymorphism in Asian: allele frequency and a novel *14b allele in Mainland Chinese. Clin Chem. 2002;48(7):938-988.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-548X200900010001400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >KAGIMOTO M, HEIM M, KAGIMOTO K, ZEUGIN T, MEYER UA. Multiple mutations of the human cytochrome P450IID6 gene (CYP2D6) in poor metabolizers of debrisoquine. Study of the functional significance of individual mutations by expression of chimeric genes. 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Identification of Subtypes of CYP2D Gene Rearrangements among Carriers of CYP2D6 Gene Deletion and Duplication. Clin Chem. 2005;51(6):939-943.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-548X200900010001400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >L&Oacute;PEZ M, GUERRERO J, JUNG-COOK H, ALONSO ME. CYP2D6 genotype and phenotype determination in a Mexican Mestizo population. Eur J Clin Pharmacol. 2005;61(10):749-754.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-548X200900010001400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >MENOYO A, DEL RIO E, BAIGET M. Characterization of variant alleles of cytochrome CYP2D6 in a Spanish population. Cell Biochem Funct. 2006;24(5):381-385.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-548X200900010001400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >SABBAGH N, BRICE A, MAREZ D, D&Uuml;RR A, LEGRAND M, LO GUIDICE JM, <i>et al</i><i>. </i>CYP2D6 polymorphism and Parkinson&#39;s disease susceptibility. Mov Disord. 1999;14(2):230-236.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-548X200900010001400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >SACHSE C, BROCKM&Ouml;LLER J, BAUER S, ROOTS I. Cytochrome P450 2D6 variants in a Caucasian population: allele frequencies and phenotypic consequences. Am J Hum Genet. 1997;60(2):284-295.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-548X200900010001400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >SAXENA R, SHAW GL, RELLING MV, FRAME JN, MOIR DT, EVANS WE, <I>et al. </I>Identification of a new variant CYP2D6 allele with a single base deletion in exon 3 and its association with the poor metabolizer phenotype. Hum Mol Genet. 1994;3(6):923-926.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-548X200900010001400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >SCORDO MG, CAPUTI AP, D&#39;ARRIGO C, FAVAA G, SPINA E. Allele and genotype frequencies of CYP2C9, CYP2C19, and CYP2D6 in an Italian population. Pharmacol Res. 2004;50:195-200.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-548X200900010001400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >THEOPHILUS N, CHANDRASEKARAN A, SAM S, GERARD N, RAJAGOPAL K. CYP2D6 Genetic polimorphism in South Indian Population. Biol Pharm Bull. 2006;29(8):1655-1658.</P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-548X200900010001400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >ZANGER UM, RAIMUNDO S, EICHELBAUM M. Cytochrome P450 2D6: Overview and update on pharmacology, genetics, biochemistry. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 2004;369(1):23-37.  </P ></font>     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-548X200900010001400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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