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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EVALUACIÓN DEL ANTAGONISMO Y MULTIPLICACIÓN DE Trichodermasp. EN SUSTRATO DE PLÁTANO EN MEDIO LÍQUIDO ESTáTICO]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The antagonistisc ability of nine isolated natives fungi Trichoderma sp from the collection of strains at Laboratory of phytopathology at University of Cordoba, Colombia was assessed so as its production of spores in crop liquid static medium, cross the in vitro proof antagonism using two phytopathogenic fungi: Fusarium sp. and Rhizoctonia sp., this proof let select the isolated with the major antagonistic activity and adjust the production of spores through fermentation process in liquid static by means of buffer and without buffer with phosphate 0,2 N, being used as principal substrate plantain flour (HP) 5%, besides of nutritional supplements that formed the trataments: HPM (molasses solution 5%), HPL (granulated yeast solution at 2%), HPU (urea solution 0.1%), and as witness PGL (potato glucose liquid). In the test of antagonism was selected the isolated C2 of Trichoderma sp. by present the major antagonistic ability in front of the fungi Fusarium sp., with a inhibition percentage at 78,30% and reporting a index 4 of antagonism, in the process of spores production, the tratament HPL (plantain flour plus yeast without buffer) stressed for the favorable production of conidias, with a concentration of 1,1 x 10(9) conidias/mL. The buffer process were significant differentiated, showing that the variable buffer influenced in the production of conidias, the mediums that shocked in the production show 1,01 x 10(9) conidias/mL, Ïwith respect at don’t shocked 6,3 x 10(8) conidias/mL.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p align="center"><font size="4"><b>EVALUACI&Oacute;N DEL ANTAGONISMO Y MULTIPLICACI&Oacute;N DE <I>Trichoderma</I>sp. EN SUSTRATO DE PL&Aacute;TANO EN MEDIO L&Iacute;QUIDO EST&Aacute;TICO</b></font> </P >      <p   align="center" >Evaluation Of Antagonism And Multiplication The <I>Trichoderma</I>sp. In The Middle Static Liquid Banana Substrate </p >     <P   >ELKIN AGAMEZ RAMOS<Sup>1</Sup>, Bi&oacute;logo; JOS&Eacute; BARRERA VIOLETH<Sup>2</Sup>, Docente M.Sc.; LUIS OVIEDO ZUMAQU&Eacute;<Sup>2</Sup>, Docente M.Sc.</P>     <p><Sup>1</Sup>Investigador del Grupo de Investigaci&oacute;n: Agricultura Sostenible, Universidad de C&oacute;rdoba, Monter&iacute;a, Colombia. <a href="mailto: elkin28@gmail.com">elkin28@gmail.com</a></p>     <p><Sup>2</Sup>Facultad de Ciencias Agr&iacute;colas. Universidad de C&oacute;rdoba, Monter&iacute;a, Colombia. <a href="mailto: jbarrera11@sinu.unicordoba.edu.co">jbarrera11@sinu.unicordoba.edu.co</a> </P >      <P>Presentado 12 de octubre de 2008, aceptado junio 29 de 2009, correcciones julio 27 de 2009. </P ><hr size="1">      <p   align="left" ><b>RESUMEN</b> </p >     <P   > Se evalu&oacute; la capacidad antag&oacute;nica de nueve aislados del hongo <I>Trichoderma </I>sp. proveniente de la colecci&oacute;n de cepas del Laboratorio de Fitopatolog&iacute;a de la Universidad de C&oacute;rdoba, Colombia y su producci&oacute;n de esporas en medios de cultivo l&iacute;quido est&aacute;tico, a trav&eacute;s de pruebas <I>in vitro </I>de antagonismo, utilizando dos hongos fitopat&oacute;genos: <I>Fusarium </I>sp. y <I>Rhizoctonia </I>sp.; esta prueba permiti&oacute; seleccionar el aislado con la mayor actividad antag&oacute;nica, para as&iacute; ajustar la producci&oacute;n de esporas mediante un proceso de fermentaci&oacute;n en estado l&iacute;quido en condici&oacute;n est&aacute;tica mediante procesos de buferizaci&oacute;n y sin buferizaci&oacute;n con fosfato 0,2N, utiliz&aacute;ndose como sustrato principal harina de pl&aacute;tano (HP) 5%, adem&aacute;s de complementos nutricionales que constituyeron los tratamientos: HPM (soluci&oacute;n de melaza 5%), HPL (soluci&oacute;n de levadura granulada al 2%), HPU (soluci&oacute;n de urea 0,1%), y como testigo PGL (papa glucosa l&iacute;quida). En los ensayos de antagonismo se seleccion&oacute; el aislado C2 de <I>Trichoderma </I>sp. por presentar la mayor capacidad antag&oacute;nica frente al hongo <I>Fusarium </I>sp., con un porcentaje de inhibici&oacute;n del 78,30% y reportando un &iacute;ndice 4 de antagonismo, en los procesos de producci&oacute;n de esporas el tratamiento HPL (harina de pl&aacute;tano m&aacute;s levadura sin <I>buffer</I>) se destac&oacute; por su favorable producci&oacute;n de conidias, con una concentraci&oacute;n de 1,1 x 10<Sup>9 </Sup>conidias/mL. Los procesos de buferizaci&oacute;n se diferenciaron significativamente, demostrando que la variable <I>buffer </I>influy&oacute; en la producci&oacute;n de conidias, los medios que se amortiguaron mostraron una producci&oacute;n de 1,01 x 10<Sup>9 </Sup>conidias/mL, con respecto a los que no se amortiguaron 6,3 x 10<Sup>8 </Sup>conidias/mL. </P >     <P ><b>Palabras clave</b>: <I>Trichoderma </I>sp., <I>Fusarium </I>sp., <I>Rhizoctonia </I>sp., antagonismo, espora, fermentaci&oacute;n l&iacute;quida. </P ><hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p   align="left" ><b>ABSTRACT</b> </p >     <P   > The antagonistisc ability of nine isolated natives fungi <I>Trichoderma </I>sp from the collection of strains at Laboratory of phytopathology at University of Cordoba, Colombia was assessed so as its production of spores in crop liquid static medium, cross the <I>in vitro </I>proof antagonism using two phytopathogenic fungi: <I>Fusarium </I>sp. and <I>Rhizoctonia </I>sp., this proof let select the isolated with the major antagonistic activity and adjust the production of spores through fermentation process in liquid static by means of <I>buffer </I>and without <I>buffer </I>with phosphate 0,2 N, being used as principal substrate plantain flour (HP) 5%, besides of nutritional supplements that formed the trataments: HPM (molasses solution 5%), HPL (granulated yeast solution at 2%), HPU (urea solution 0.1%), and as witness PGL (potato glucose liquid). In the test of antagonism was selected the isolated C2 of <I>Trichoderma </I>sp. by present the major antagonistic ability in front of the fungi <I>Fusarium </I>sp., with a inhibition percentage at 78,30% and reporting a index 4 of antagonism, in the process of spores production, the tratament HPL (plantain flour plus yeast without <I>buffer</I>) stressed for the favorable production of conidias, with a concentration of 1,1 x 10<Sup>9 </Sup>conidias/mL. The <I>buffer </I>process were significant differentiated, showing that the variable <I>buffer </I>influenced in the production of conidias, the mediums that shocked in the production show 1,01 x 10<Sup>9 </Sup>conidias/mL, &Iuml;with respect at don&rsquo;t shocked 6,3 x 10<Sup>8 </Sup>conidias/mL. </P >     <P   ><b>Key words</b>: <I>Trichoderma </I>sp., <I>Fusarium </I>sp., <I>Rhizoctonia </I>sp., antagonism, spores, liquid fermentation. </P ><hr size="1">      <p   align="left" ><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b> </p >     <P   > El hongo <I>Trichoderma </I>sp. es un antagonista, que ataca a un gran n&uacute;mero de fitopat&oacute;genos por lo cual es ampliamente utilizado en el control biol&oacute;gico de diversas enfermedades, debido a su ubicuidad, a su facilidad para ser aislado y cultivado, a su r&aacute;pido crecimiento en un gran n&uacute;mero de sustratos; lo cual permite obtener niveles de in&oacute;culos muy altos en poco tiempo y no atacan a plantas superiores, dejando ver la posibilidad de aprovechar recursos disponibles en el medio, como por ejemplo los desechos de cultivos agr&iacute;colas (Papavizas <I>et &aacute;l.</I>, 1982; Bell <I>et &aacute;l.</I>, 1982). </P >     <P   >Las especies de <I>Trichoderma </I>son biocontroladores de pat&oacute;genos f&uacute;ngicos del suelo, el micoparasitismo es el principal mecanismo de acci&oacute;n de <I>Trichoderma </I>sp. Este agente antagonista envuelve el hongo pat&oacute;geno y penetra sus c&eacute;lulas caus&aacute;ndole un da&ntilde;o extensivo a nivel celular (pared, membrana y desorden citoplasm&aacute;tico), principalmente en los g&eacute;neros <I>Phytophthora, Rhizoctonia, Sclerotium, Pythium </I>y <I>Fusarium </I>entre otros (Harman <I>et &aacute;l.</I>, 1981). Trabajos realizados por Benhamou y Chet, 1993, afirman que estos da&ntilde;os no son ocasionados por las sustancias producidas en el avance del antagonista, sino que los da&ntilde;os comienzan a observarse cuando ambos hongos tanto <I>Trichoderma </I>sp. como <I>Rhizoctonia solani </I>entran en contacto, reiterando que el mecanismo de acci&oacute;n es el micoparasitismo. La relaci&oacute;n antag&oacute;nica de <I>Trichoderma </I>sp. frente a <I>Glomus mossae, </I>reportada en trabajos por McAllister <I>et &aacute;l.</I>, 1994, indican a que a pesar de estar las hifas del hongo antagonista en contacto, no se observa el enrollamiento, afirmando que no es el micoparasitismo el mecanismo de acci&oacute;n sino la producci&oacute;n de antibi&oacute;ticos p&eacute;ptidos. Aunque otro estudio hecho por Garc&iacute;a y Zambrano, 1991, en donde se evalu&oacute; el tipo de antagonismo de tres aislamientos de <I>Trichoderma </I>sp. ante <I>Macrophomina phaseolina </I>y concluyeron que la antibi&oacute;sis parece ser el mecanismo de acci&oacute;n en esta relaci&oacute;n, pero que hace falta continuar investigando sobre los posibles antibi&oacute;ticos producidos. Las especies de <I>Trichoderma </I>act&uacute;an como hiperpar&aacute;sitos competitivos que producen metabolitos antif&uacute;ngicos y enzimas hidrol&iacute;ticas a los que se les atribuyen los cambios estructurales a nivel celular, tales como vacuolizaci&oacute;n, granulaci&oacute;n, desintegraci&oacute;n del citoplasma y lisis celular, encontrados en los organismos con los que interact&uacute;a (Ezziyyani <I>et &aacute;l.</I>, 2004).</P >     <P   > El hongo <I>Trichoderma </I>sp. puede encontrar tanto fuera como dentro de la riz&oacute;sfera; es en la riz&oacute;sfera donde puede colonizar y proteger las ra&iacute;ces de las plantas. Pero &eacute;sta no es la &uacute;nica ventaja que las plantas superiores reciben de <I>Trichoderma </I>sp. varios autores han se&ntilde;alado el incremento en peso de las pl&aacute;ntulas que se desarrollan en presencia de este hongo. Por ejemplo, el aumento en peso de las plantas de fr&iacute;jol; del peso de los brotes de pl&aacute;ntulas de trigo; pl&aacute;ntulas de manzanas m&aacute;s largas y vigorosas, incremento en la tasa de germinaci&oacute;n y el peso seco de brotes y gu&iacute;as de plantas de tomate, en el aumento del crecimiento del sistema radicular de plantas mejoradas de ma&iacute;z dulce; as&iacute; mismo, se ha encontrado interacci&oacute;n sinerg&iacute;stica entre <I>Trichoderma </I>sp. y un hongo micorr&iacute;sico en el desarrollo de <I>Citrus reshni </I>(Smith <I>et &aacute;l.</I>, 1990). </P >     <P   >Esta investigaci&oacute;n propone utilizar harina de pl&aacute;tano como sustrato para la producci&oacute;n de <I>Trichoderma </I>sp. en medios de cultivo l&iacute;quidos est&aacute;ticos, teniendo en cuenta, que en la zona (C&oacute;rdoba-Colombia) se generan 6.849 toneladas/a&ntilde;o de &ldquo;puntilla&rdquo; (pl&aacute;tano que no es exportado, y se comercializa en el mercado interno) que corresponde a un 10% de la p&eacute;rdida de poscosecha del cultivo de pl&aacute;tano; cabe resaltar, que la harina de pl&aacute;tano proporciona elementos que son requeridos en el metabolismo del hongo <I>Trichoderma </I>sp. teniendo en cuenta el principio de especificidad del antagonista <I>Trichoderma </I>sp. por grupos de pat&oacute;genos que se encuentran en su mismo h&aacute;bitat (Acevedo y Arcia, 1989), la producci&oacute;n de aislados nativos de <I>Trichoderma </I>sp. en medio l&iacute;quido est&aacute;tico, es una alternativa importante que contribuir&aacute; a la utilizaci&oacute;n del control biol&oacute;gico de enfermedades que atacan a los cultivos de importancia econ&oacute;mica en la agricultura de la regi&oacute;n, al mismo tiempo que incita a reducir el uso de agroqu&iacute;micos. El objetivo de este trabajo fue evaluar el antagonismo de nueve aislados nativos de <I>Trichoderma </I>sp. mediante ensayos de antagonismo <I>in vitro</I>, a partir de los resultados obtenidos en esta prueba se seleccion&oacute; el aislado <I>Trichoderma </I>sp., con el &iacute;ndice m&aacute;s alto de antagonismo para as&iacute; llevar a cabo un proceso de producci&oacute;n de esporas en medios l&iacute;quidos en condici&oacute;n est&aacute;tica mediante procesos de buferizaci&oacute;n y sin buferizaci&oacute;n con fosfato 0,2N, utiliz&aacute;ndose como medio principal harina de pl&aacute;tano 5% y sometidos a procesos de buferizaci&oacute;n, esto con la finalidad de contribuir con informaci&oacute;n &uacute;til para la consecuci&oacute;n de herramientas que permitan la obtenci&oacute;n de posibles productos agroecol&oacute;gicos con aislados de <I>Trichoderma </I>sp., los cuales en futuras investigaciones se puedan experimentar en el campo para el control de plagas f&uacute;ngicas y dar as&iacute; un paso al uso e implementaci&oacute;n de una tecnolog&iacute;a org&aacute;nica y sostenible, en el que se utilicen fungicidas de bajo impacto ambiental. </P >     <P   ><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></P >     <P   ><b>&Aacute;REA DE ESTUDIO</b> </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >Esta investigaci&oacute;n se realiz&oacute; en el Laboratorio de Fitopatolog&iacute;a de la Universidad de    C&oacute;rdoba, ubicada geogr&aacute;ficamente en el norte del municipio de Monter&iacute;a (C&oacute;rdoba,    Colombia), localizada entre los 08&ordm; 45&rsquo; 27&rsquo;&rsquo; latitud Norte y 75&ordm; 53&rsquo; 24&rsquo;&rsquo; longitud Oeste,    a 49 msnm, temperatura promedio de 28,3 &deg;C, precipitaci&oacute;n anual de 1.249 mm, y una    humedad relativa anual que oscila entre 80 y 85%.  </P >     <P   ><b>OBTENCI&Oacute;N DE LOS AISLADOS DE TRICHODERMA SP.</b></P >     <P   > Se utilizaron nueve aislados de Trichoderma sp., proveniente de la colecci&oacute;n de cepas del    Laboratorio de Fitopatolog&iacute;a de la Universidad de C&oacute;rdoba, los cuales fueron aislados    de cultivos de pl&aacute;tano en los municipios de Tierralta, Mo&ntilde;itos (C&oacute;rdoba) y San Juan de    Urab&aacute; (Antioquia), cado uno de estos aislados fueron codificados de la siguiente forma:    C1, C2 C3, C4 C5, C6, C7, C8 y C9. Los aislados fueron activados en papa-dextrosaagar    ((PDA) 20 g de D(+) glucosa, 22 g de extracto de papa, 15 g de agar) e incubados    por siete d&iacute;as a 25-28 &deg;C.</P >     <P   ><b>ENSAYOS DE ANTAGONISMO</b></P >     <P   >Para la realizaci&oacute;n de los bioensayos se emple&oacute; la t&eacute;cnica de enfrentamiento (antagonistapat&oacute;geno)    por medio del cultivo dual (Pinz&oacute;n et &aacute;l., 1999). Se utilizaron como hongos pat&oacute;genos:    Fusarium sp. y Rhizoctonia sp., los cuales fueron proporcionados por el Laboratorio    de Fitopatolog&iacute;a, Facultad de Ciencias Agr&iacute;colas de la Universidad de C&oacute;rdoba y como    hongos antagonistas los nueve aislados de Trichoderma sp.</P >     <P   ><b>EVALUACI&Oacute;N DE LA CAPACIDAD ANTAG&Oacute;NICA DE TRICHODERMA FRENTE A FUSARIUM SP.    Y RHIZOCTONIA SP.</b></P >     <P   > La evaluaci&oacute;n del antagonismo se realiz&oacute; en funci&oacute;n del porcentaje de inhibici&oacute;n del crecimiento    micelial (% MI) del pat&oacute;geno y en el grado de invasi&oacute;n-destrucci&oacute;n sobre la colonia    de estos, teniendo como base un periodo de evaluaci&oacute;n de 10 d&iacute;as. Para determinar el    grado de invasi&oacute;n-destrucci&oacute;n de Trichoderma sp. se emple&oacute; la escala que determina cualitativa    y cuantitativamente la capacidad antag&oacute;nica que posee el hongo Trichoderma en invadir    y destruir la colonia de los hongos pat&oacute;genos, utilizando &iacute;ndices o valores que van desde    0-4, considerando como &iacute;ndice 3 una capacidad antag&oacute;nica satisfactoria para una cepa    de Trichoderma sp. (<a href="#tabla1">Tabla 1</a>; Bell et &aacute;l., 1982; Calistru et &aacute;l., 1997; Ortiz y Orduz, 2001).</P >    <p>    <center><a name="tabla1"></a><img src="img/revistas/abc/v14n3/v14n3a5t1.jpg"></center></p>     <P   ><b>DISE&Ntilde;O EXPERIMENTAL</b></P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >Los tratamientos en el bioensayo de antagonismo, se distribuyeron en un dise&ntilde;o    completamente al azar (DCA) ajustado a un arreglo factorial 9 x 2 (nueve aislados de    Trichoderma sp. frente a dos pat&oacute;genos: Fusarium sp. y Rhizoctonia sp.) con tres repeticiones    por cada tratamiento. Los datos obtenidos fueron sometidos a un an&aacute;lisis de    varianza y prueba de comparaci&oacute;n de medias Tukey, utilizando el software estad&iacute;stico    SAS versi&oacute;n 5.0 con (a = 0,05). A partir de estos ensayos y con base a la evaluaci&oacute;n    obtenida, se seleccion&oacute; el aislado con el mayor &iacute;ndice de antagonismo de acuerdo a la    escala de evaluaci&oacute;n antag&oacute;nica y porcentaje alto de inhibici&oacute;n micelial (IM %), para  as&iacute; llevarse a cabo los ensayos de producci&oacute;n de esporas en medios l&iacute;quidos est&aacute;ticos.</P >     <P   ><b>PRODUCCI&Oacute;N DE ESPORAS EN MEDIOS DE CULTIVOS L&Iacute;QUIDOS EST&Aacute;TICOS</b></P >     <P   >Sustratos implementados para la preparaci&oacute;n de los medios l&iacute;quidos. Para la producci&oacute;n    de esporas de Trichoderma sp. en medios l&iacute;quidos est&aacute;ticos, se utiliz&oacute; como    ingrediente principal harina de pl&aacute;tano, la cual fue preparada a partir de la pulpa del    fruto y adem&aacute;s se utilizaron agar papa glucosa l&iacute;quida (no comercial), soluciones de  melaza, levadura y &uacute;rea 0,1%.</P >     <P   >Preparaci&oacute;n de los medios l&iacute;quidos. Los medios fueron preparados con base a harina    de pl&aacute;tano al 5% p/v, los cuales, adicionalmente se agregaron otros nutrientes de    acuerdo a los tratamientos (<a href="#tabla2">Tabla 2</a>). La unidad experimental de cada tratamiento    estuvo constituida por un erlenmeyer de 500 mL, los cuales conten&iacute;an 100 mL de cada    medio l&iacute;quido. El pH de cada medio se ajust&oacute; a 5,5 con HCl 0,1N y NaOH 5%, con    ayuda de pH-metro an&aacute;logo WPA modelo C-14; una vez preparados cada uno de los    tratamientos los medios de cada tratamiento fueron sometidos a esterilizaci&oacute;n en  autoclave a 121 &ordm;C durante 30 minutos.</P >    <p>    <center><a name="tabla2"></a><img src="img/revistas/abc/v14n3/v14n3a5t2.jpg"></center></p>     <P   >Por otra parte los cuatro tratamientos fueron sometidos a un proceso de buferizaci&oacute;n    con fosfato 0,2 N y estos mismos cuatro medios sin proceso de buferizaci&oacute;n. De la    misma manera se realiz&oacute; la preparaci&oacute;n de los medios anteriormente descritos este  &uacute;ltimo sin ajustar el pH y sin buferizaci&oacute;n de los mismos</P >     <P   >Inoculaci&oacute;n de los medios l&iacute;quidos est&aacute;ticos. Los medios de cultivo fueron inoculados    con soluciones de Trichoderma sp. provenientes de cultivos puros de cinco d&iacute;as de incubaci&oacute;n,    con una concentraci&oacute;n de 2x107 conidias/mL, la concentraci&oacute;n se determin&oacute;    mediante el recuento de esporas en c&aacute;mara de Neubauer (Improve 0,100 mm), tomando    los discos con esporas y agreg&aacute;ndolos en un tubo de ensayo con 10 mL de agua    destilada est&eacute;ril que conten&iacute;a Tween 80 al 0,1%, esta soluci&oacute;n madre se homogeneiz&oacute;    en un agitador vibratorio durante 30 segundos, se realizaron diluciones seriadas decimales  con la adici&oacute;n de Tween 80 al 0,1% (Fern&aacute;ndez y Vega, 2001).</P >     <P   >Dise&ntilde;o experimental. Los tratamientos se distribuyeron en un dise&ntilde;o completamente al azar (DCA) con un arreglo factorial 2x4 (dos procesos de buferizaci&oacute;n y cuatro medios l&iacute;quidos). Los datos obtenidos fueron sometidos a un an&aacute;lisis de varianza y prueba de comparaci&oacute;n de medias Tukey, utilizando el software estad&iacute;stico SAS versi&oacute;n 5.0 y con a = 0,05. Al cabo de siete d&iacute;as se realiz&oacute; un conteo de esporas en c&aacute;mara de Neubauer (Fern&aacute;ndez y Vega, 2001). </P >     <p   align="left" ><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b> </b></p >      ]]></body>
<body><![CDATA[<p   ><b>BIOENSAYOS DE ANTAGONISMO</b> </p >     <P   >El an&aacute;lisis de varianza muestra que estad&iacute;sticamente existen diferencias significativas en el crecimiento del hongo <I>Fusarium </I>sp.; en la <a href="#tabla1">Tabla 1</a> se observa esta diferencia entre los crecimientos de los aislados de <I>Trichoderma </I>sp. que afectan a cada uno de los fitopat&oacute;genos en forma distinta. </P >     <P   >Con respecto a los resultados obtenidos, la mayor inhibici&oacute;n la caus&oacute; el aislado C2, el cual inhibi&oacute; el crecimiento de <I>Fusarium </I>sp. en un 78,30% y el aislado C1 que redujo el crecimiento de <I>Rhizoctonia </I>sp. en un 18,67%. Al enfrentarse los aislados de <I>Trichoderma </I>sp. contra el hongo <I>Rhizoctonia </I>sp., se observ&oacute; una reducci&oacute;n en el crecimiento de este &uacute;ltimo, pero no existieron diferencias significativas entre los tratamientos. El comportamiento de <I>Rhizoctonia </I>sp. en competencia con los aislados C5 y C9 fue similar al comportamiento del mismo en cultivo puro. Mientras que el crecimiento de <I>Fusarium </I>sp. present&oacute; diferencias estad&iacute;sticas al enfrentarse a los nueve aislados de <I>Trichoderma </I>sp. en cultivos duales; mostrando un menor crecimiento micelial al competir con el aislado C2, seguido de los aislados C4, C8, C7 y C1, los dem&aacute;s aislados inhibieron el crecimiento de <I>Fusarium </I>sp., pero en menor proporci&oacute;n (<a href="#tabla3">Tabla 3</a>). </P >      <p>    <center><a name="tabla3"></a><img src="img/revistas/abc/v14n3/v14n3a5t3.jpg"></center></p>      <P>Los aislados C2 y C1 presentaron capacidad antag&oacute;nica eficiente (&iacute;ndice 4 y 3) para controlar los hongos fitopat&oacute;genos <I>Fusarium </I>sp. y <I>Rhizoctonia </I>sp. respectivamente, demostrando un buen nivel de competencia por espacio y nutrientes, demostrando as&iacute; su mecanismo de acci&oacute;n por micoparasitismo, lo cual coincide con lo observado en diferentes estudios realizados por Angulo <I>et &aacute;l.</I>, 1992, quienes atribuyen el efecto de este mecanismo en el control <I>in vitro </I>de este hongo. </P>      <P>Resultados similares obtuvo Ezziyyani <I>et &aacute;l.</I>, 2005, al comprobar la capacidad micoparas&iacute;tico de <I>T. harzianum </I>frente a <I>Phytophthora capsici, </I>el cual utiliza como alimento, adem&aacute;s de ejercer una notable competencia por espacio y por nutrientes sobre el mismo; McAllister <I>et &aacute;l.</I>, 1994, utilizaron <I>Trichoderma </I>como alternativa ecol&oacute;gica para el control de <I>Fusarium </I>demostrando que todos los aislados mostraron efecto micoparas&iacute;tico, obstruyendo de esta forma las funciones biol&oacute;gicas y fisiol&oacute;gicas del pat&oacute;geno, adem&aacute;s de detener su crecimiento. Una vez m&aacute;s se demuestra la particular habilidad paras&iacute;tica de los diferentes aislamientos de <I>Trichoderma </I>sp. frente a un mismo fitopat&oacute;geno. Stefanova, 1999, demuestra la actividad metab&oacute;lica de cepas de <I>Trichoderma </I>sp. para el control de los hongos, fitopat&oacute;genos <I>Phytophthora nicotianae, Phytophthora capsici, Rhyzoctonia solani </I>y <I>Pythium </I>sp., adem&aacute;s de provocar un efecto fungist&aacute;tico notable sobre los fitopat&oacute;genos por la emanaci&oacute;n de sustancias vol&aacute;tiles por parte de <I>Trichoderma</I>. En trabajos realizados por Benhamou y Chet, 1993, reiteran que los da&ntilde;os contra <I>Rhizoctonia solani </I>comienzan a observarse cuando ambos hongos entran en contacto y no antes por las sustancias producidas en el avance del antagonista, present&aacute;ndose invasi&oacute;n y esporulaci&oacute;n sobre la colonia de Rhizoctonia solani e inhibici&oacute;n de la producci&oacute;n de escler&oacute;cios. </P >     <P   >Los &iacute;ndices de antagonismo que presentaron los diferentes aislados de Trichoderma sp.    exhibieron en su mayor&iacute;a buenos resultados como los mostrados por el aislado C2 al    enfrentarse a Fusarium sp. (&iacute;ndice 4), este mismo grado de antagonismo presentaron    los aislados C4, C5 y C8, los aislados restantes detuvieron el crecimiento micelial de    este, e invadieron la colonia, pero la esporulaci&oacute;n sobre el pat&oacute;geno fue poca, sin    embargo, pueden considerarse buenos antagonistas; al enfrentarse con Rhizoctonia sp.,    el aislado C8 fue el que obtuvo el mayor &iacute;ndice de antagonismo, al momento de invadirlo,    probablemente por la naturaleza nativa de los aislados, lo que favorece a la    afinidad que determinadas especies de Trichoderma puedan tener por un fitopat&oacute;geno    en especial. Estas diferencias en los resultados obtenidos demuestran la alta variabilidad    en la actividad antag&oacute;nica de los diferentes aislamientos de Trichoderma sp.    Mihuta-Grimm y Rowe, 1986, ensayaron 255 aislamientos de Trichoderma sp. obtenidos    de diferentes zonas, donde el 15% de los mismos fueron efectivos al controlar Rhizoctonia;    determinaron que las cepas aisladas del mismo lugar son m&aacute;s efectivas que las procedentes    de otros sitios, de igual manera Acevedo y Arcia, 1989, se&ntilde;alan la importancia de  buscar antagonistas efectivos en cada &aacute;rea geogr&aacute;fica</P >     <P   ><b>EVALUACI&Oacute;N DE LA PRODUCCI&Oacute;N DE ESPORAS DE TRICHODERMA SP. EN MEDIOS L&Iacute;QUIDOS</b>    <br>   Se seleccion&oacute; el aislado C2 de Trichoderma por presentar el &iacute;ndice de antagonismo m&aacute;s alto en los bioensayos de antagonismo, a partir de este resultado el aislado C2 se llev&oacute; a un proceso de producci&oacute;n de esporas en medio l&iacute;quido est&aacute;tico. En el an&aacute;lisis de varianza no se evidenciaron efectos significativos (P< 0,05) de los tratamientos sobre la multiplicaci&oacute;n del hongo. En la <a href="#tabla4">Tabla 4</a>, se observa que los tratamientos PGL y HPM, siempre mostraron una tendencia positiva a favorecer la producci&oacute;n de conidias. En investigaciones realizadas por Mart&iacute;nez, 2000, reporta que al cultivar Trichoderma harzianum en el medio de avena (11%) no afecta su capacidad antag&oacute;nica frente a Fusarium oxisporum, demostrando la posibilidad de emplear este medio en la producci&oacute;n a escala industrial de Trichoderma harzianum para el control biol&oacute;gico de este fitopat&oacute;geno.</P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="tabla4"></a><img src="img/revistas/abc/v14n3/v14n3a5t4.jpg"></center></p>     <P   >Al comparar la producci&oacute;n de esporas en los medios bufferizados y no bufferizados se obtuvieron diferencias altamente significativas, en la <a href="#tabla5">Tabla 5</a>, se observ&oacute; que la variable buffer influy&oacute; en la producci&oacute;n de conidias, los medios que se amortiguaron mostraron una producci&oacute;n de conidias menor respecto a los que no se amortiguaron, de los cuales el medio harina pl&aacute;tano levadura (HPL) exhibi&oacute; los mejores resultados con una concentraci&oacute;n media de 1,1x109 conidias/mL junto a 8,1x109 conidias/mL obtenidos del medio harina pl&aacute;tano &uacute;rea (HPM; Tabla 4). Sin embargo, las concentraciones obtenidas de los medios de cultivo, en general, se encuentran dentro de los valores requeridos (1x107 conidias/mL), en las producciones a escala comercial para biopreparados, como lo exige el registro y control de los bioinsumos y extractos vegetales de uso agr&iacute;cola en Colombia (ICA, 2004).</P >    <p>    <center><a name="tabla5"></a><img src="img/revistas/abc/v14n3/v14n3a5t5.jpg"></center></p>     <P   >En trabajos realizados en medios l&iacute;quidos se han obtenido concentraciones de 1,8x109, 3,6-5,8x108 conidias/mL en el medio melaza de trapiche de ca&ntilde;a panelera y levadura panadera granulada; 8,7x107 conidias/mL en medio avena 11% p/v, pH 5,5; 1x108 conidias/mL obtenida en el medio melaza, almid&oacute;n de ma&iacute;z y levadura (Fern&aacute;ndez, 2002). Bautista y Acevedo, 1993, obtuvieron 7x105 clamidosporas/mL y 3,2x109 micelio m&aacute;s clamidosporas/mL por fermentaci&oacute;n sumergida.</P >     <P   >Los valores de pH que se obtenidos en los medios amortiguados se mantuvieron en un rango de 4,82-5,7 (<a href="#fig1">Fig. 1</a>); mientras que el pH en los medios no amortiguados vari&oacute; en un rango de 4,98 a 6,46; estos valores se pueden considerar como valores admisibles en la producci&oacute;n de <I>Trichoderma </I>sp., ratificando as&iacute; que el rango de pH en que normal-mente se desarrolla <I>Trichoderma </I>sp. es de cinco a seis, como lo demuestra el estudio realizado por Valencia y Castro, 2004, donde se evalu&oacute; el crecimiento de <I>Trichoderma </I>sp. con valores de pH de 4, 5 y 6, los cuales no mostraron diferencias significativas, y en consecuencia no afect&oacute; el crecimiento del hongo. Valencia y Castro, 2004, demostr&oacute; que las conidias de <I>Trichoderma </I>sp. requieren de una fuente de nutrimentos para la germinaci&oacute;n <I>in vitro</I>; y que la respuesta de la conidia a los nutrimentos se ve afectada por la concentraci&oacute;n de iones de hidr&oacute;geno, con mayor germinaci&oacute;n bajo condiciones &aacute;cidas que en condiciones neutras.</P >    <p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/abc/v14n3/v14n3a5f1.jpg"></center></p>     <p   align="left" ><b>CONCLUSIONES</b> </p >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   > Los aislados de <I>Trichoderma </I>sp. mostraron en general un efecto antagonista sobre los hongos fitopat&oacute;genos <I>Fusarium </I>sp. y <I>Rhizoctonia </I>sp., destac&aacute;ndose el aislado C2 de <I>Trichoderma </I>sp, que demostr&oacute; ser un eficiente antagonista del hongo <I>Fusarium </I>sp. el cual registro un &iacute;ndice de antagonismo 4 y de igual forma el aislado C1 inhibi&oacute; el crecimiento del hongo <I>Rhizoctonia </I>sp. con &iacute;ndice antagonismo 3, al enfrentarse en los ensayos duales. La harina de pl&aacute;tano como medio de cultivo para la multiplicaci&oacute;n de <I>Trichoderma </I>sp., es viable, por su alta producci&oacute;n de conidias, cuando se utilizan el medio (HPL) de harina de pl&aacute;tano al 5% y levadura al 2% sin <I>buffer</I>, obteni&eacute;ndose con este medio concentraci&oacute;n final de 1,1x10<Sup>9 </Sup>conidias/ml, y pH 5,7 a los siete d&iacute;as del proceso. </P >     <P   >Los medios l&iacute;quidos evaluados mediante procesos de buferizaci&oacute;n arrojaron valores de pH 5,5-5,6, lo que indica buenos resultados para el crecimiento optimo de <I>Trichoderma </I>sp.; en general, de los medios de cultivo l&iacute;quidos. </P >  <hr>      <P   align="left" ><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b> </P >     <!-- ref --><P   > ACEVEDO R, ARCIA A. Especificidad de <I>Trichoderma </I>sp. En el control biol&oacute;gico de Sclerotium cepivorum Berk, <I>in vitro</I>. Fitopatol Venez. 1989;2(2):56. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-548X200900030000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >ANGULO J, ARVELAEZ G, GUZM&Aacute;N S, LE&Oacute;N J, GONZ&Aacute;LES M, MOLINA J, PARRA J. Control integrado del Marchitamiento vascular del clavel ocasionado por <I>Fusarium oxisporum </I>F. sp. Diamthi. Agron Colom. 1992;10:78-69. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-548X200900030000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >BAUTISTA L, ACEVEDO R. Producci&oacute;n de clamidosporas de <I>Trichoderma </I>en medio l&iacute;quido. Fitopatol Venez. 1993;6(2):55-57 </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-548X200900030000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >BELL D, WELLS H, MARKHAM C. <I>In vitro </I>antagonism of <I>Trichoderma </I>species against six fungal plant pathogens. Phytopathol. 1982;72:379-382. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-548X200900030000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >BENHAMOU N, CHET I. Hyphal interactions between <I>Trichoderma harzianum </I>and <I>Rhizoctonia solani</I>: Ultraestructure and Gold Cytochemistry of the mycoparasitic process. Phytopathol. 1993;83(10):1062-1071. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-548X200900030000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >CALISTRU C, MCLEAN M, BERJAK P. <I>In vitro </I>studies on the potential for biological control of <I>Aspergillus flavus </I>and <I>Fusarium moniliforme </I>by. <I>Trichoderma </I>species. Mycopathol. 1997;139:115-121 </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-548X200900030000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >EZZIYYANI M, P&Eacute;REZ C, AHMED S, REQUENA M, CANDELA M. <I>Trichoderma harzianum </I>como biofungicida para el biocontrol de <I>Phytophthora capsici </I>en plantas de pimiento (<I>Capsicum annuum </I>L.). An Biol. 2004;26:35-45. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-548X200900030000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >EZZIYYANI M, REQUENA M, P&Eacute;REZ C, CANDELA M. Efecto del sustrato y la temperatura en el control biol&oacute;gico de <I>Phytophthora capsici </I>en pimiento (<I>Capsicum annuum </I>L.). An Biol. 2005;27:119-126. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-548X200900030000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >FERN&Aacute;NDEZ O, VEGA L. Microorganismos antagonistas para el control fitosanitario, En: Manejo integrado de plagas, Costa Rica; 2001(62). p. 96-100. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-548X200900030000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >GARC&Iacute;A R, DURAN M, RIERA R. Producci&oacute;n de biomasa de <I>Trichoderma harzianum </I>por fermentaci&oacute;n l&iacute;quida. Fitosanidad 2006 INISAV (Cuba) 10(4):295-298. Disponible en: <a href="http://www.fao.org/agris/search/display.do?f=./2007/CU/CU0705.xml;CU2007102127"target="_blank">http://www.fao.org/agris/search/display.do?f=./2007/CU/CU0705.xml;CU2007102127 </a></P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-548X200900030000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >HARMAN G, CHET I, BAKER R. Factors affecting <I>Trichoderma hamatum </I>applied to seed as a biocontrol agent. 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Interactions between <I>Trichoderma </I>koningii, <I>Fusarium solani </I>and <I>Glomus mosseae. </I>Soil Biol Biochem. 1994;26(10):1369-1374. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-548X200900030000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >MIHUTA-GRIMM L, ROWE C. <I>Trichoderma </I>spp. as biocontrol agents of <I>Rhizoctonia </I>damping-off of radish in organic soil and comparison of four delivery systems. Phytopathol. 1986;76(3):306-312. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-548X200900030000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >PAPAVIZAS G, LEWIS J, ABD-ELMOITY T. Evaluation of new biotypes of <I>Trichoderma harzianum </I>for tolerance to Benomyl and enhanced biocontrol capabilities. Phytopathol. 1982;72:126-132. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-548X200900030000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >PINZ&Oacute;N L, SALGADO R, MART&Iacute;NEZ G. 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Rev Fac Agron (LUZ). 1999;16:509-516 </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-548X200900030000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="justify" >VALENCIA J, CASTRO B. Aspectos biol&oacute;gicos de aislamientos de <I>Trichoderma </I>spp. antag&oacute;nicos a <I>Rosellinia bunodes. </I>Cenicaf&eacute;. 2004;55(1):16-28. </P ></font>     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-548X200900030000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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