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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[INDUCCIÓN DE FENILALANINA AMONIO LIASA Y VARIACIÓN EN EL CONTENIDO DE COMPUESTOS FENÓLICOS EN FRUTOS DE LULO (Solanum quitoense Lam) INFECTADOS CON Colletotrichum acutatum.]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Induction of phenylalanine ammonia lyase and variation in phenolic compounds content in Lulo fruits (Solanum quitoense Lam) infected by Colletotrichum acutatum)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Phenylalanine ammonia lyase (PAL) activity induction was evaluated in lulo fruits to determine the role of this enzyme in biochemical responses towards the pathogen Colletotrichum acutatum. We studied the experimental conditions to obtain the enzyme, using lulo peel, and found that the best conditions for extraction were buffer of boric acid-sodium borate 0.1M pH 8.8, 1% SDS, 3% PVPP and, for measuring the enzymatic activity: L- phenylalanine 5mM, pH 8.0, 20°C , 30 &#924;L of extract and incubation during 45 min. Then, we performed an in vivo assay using lulo fruits in three maturity stages, which were inoculated either with the fungus or sterile water. Enzymatic induction was studied at five post-inoculation times, and it was found that there is a differential response as a consequence of the presence of the pathogen and the maturity stage. In semi-mature lulos, a bigger increase in PAL was obtained among 12-48 hpi which is related to a higher content of phenolic compounds and to the latest development in the characteristic symptoms of anthracnose. These results allow postulating, in a preliminary way, a possible positive relationship between inductions of PAL, phenolics and responses of tolerance to C. acutatum. For green and mature lulos we observed as well, an increase of PAL activity but only at 12 and 24 hpi which showed relation with an increase in the total phenolic content. However, for these stages the phenolics were significantly lower at higher times.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p align="center"><font size="4"><b>INDUCCI&Oacute;N DE  FENILALANINA AMONIO LIASA Y VARIACI&Oacute;N EN EL CONTENIDO DE COMPUESTOS FEN&Oacute;LICOS EN FRUTOS DE LULO (<I>Solanum quitoense Lam</I>) INFECTADOS CON <I>Colletotrichum acutatum</I>.</b></font> </P >     <P align="center"   > Induction of phenylalanine ammonia lyase and variation in phenolic compounds content in Lulo fruits <I>(Solanum quitoense </I>Lam) infected by <I>Colletotrichum acutatum)</I>. </P >     <P   >MAIRA ANDREA ARRIETA-GUEVARA<sup>1</sup> Ms. Sc, BLANCA LIGIA HIGUERA-MANCIPE<sup>1</sup> Dr. Sc. Ciencias-Qu&iacute;mica, SIXTA TULIA MART&Iacute;NEZ-PERALTA<sup>1</sup>, Ms. Sc. <sup>1</sup> Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia-Sede, Carrera 30 No. 45-08. Bogot&aacute;, Colombia, Correspondencia: <a href="mailto:maarrietag@unal.edu.co">maarrietag@unal.edu.co</a> , <a href="mailto:blhiguerad@unal.edu.co">blhiguerad@unal.edu.co</a> . </P >     <P   >Presentado 7 de septiembre de 2009, aceptado 5 de noviembre de 2009, correcciones 14 de diciembre de 2009 </P ><hr size="1">     <P   >RESUMEN </P >     <P   > Se evalu&oacute; la din&aacute;mica de la actividad fenilalanina amonio liasa (PAL) en corteza de frutos de lulo <I>(Solanum quitoense </I>Lam) con el fin de determinar su participaci&oacute;n en respuestas bioqu&iacute;micas hacia <I>Colletotrichum acutatum. </I>Se establecieron como mejores condiciones para la extracci&oacute;n de la enzima, buffer &aacute;cido b&oacute;rico-borato de sodio 0.1M pH 8.8, 1% SDS, 3% PVPP y para medir la actividad, sustrato L-fenilalanina 5 mM, pH 8,0, 20&deg;C, 30 &mu;L de extracto y 45 min. Se realiz&oacute; un ensayo <I>in vivo</I> usando frutos en tres estados de madurez, los cuales fueron inoculados con el pat&oacute;geno o tratados con agua est&eacute;ril. A cinco tiempos (hpi = horas post-infecci&oacute;n) se determin&oacute; la actividad PAL y el contenido total de fenoles, encontr&aacute;ndose que hay una respuesta diferencial de la enzima por efecto del pat&oacute;geno y por el estado de madurez. Para frutos en el estado pint&oacute;n se obtuvo el mayor aumento de PAL, el que perdur&oacute; hasta 48 hpi, al compararlo con los controles y con los otros dos estados de madurez. Este aumento mostr&oacute; relaci&oacute;n con un marcado incremento en el contenido total de fenoles y con el desarrollo m&aacute;s tard&iacute;o de s&iacute;ntomas caracter&iacute;sticos de antracnosis, observado para los frutos pintones. Estos resultados permiten postular, una posible relaci&oacute;n positiva entre inducci&oacute;n de PAL, aumento de fen&oacute;licos y respuesta de tolerancia a <I>C. acutatum</I>. Para lulos en estado verde y maduro se observ&oacute; aumento de PAL a 12 y 24 hpi que coincidi&oacute; tambi&eacute;n con incremento en el contenido de fenoles totales, aunque para estos dos &uacute;ltimos estados dicho contenido disminuy&oacute; significativamente a tiempos mayores. </P >     <P   ><I>Palabras clave: Lulo, fenilalanina amonio liasa, antracnosis, enzimas de defensa vegetal. </I></P ><hr size="1">     <P   >ABSTRACT </P >     <P   >Phenylalanine ammonia lyase (PAL) activity induction was evaluated in lulo fruits to determine the role of this enzyme in biochemical responses towards the pathogen <I>Colletotrichum acutatum</I>.  We studied the experimental conditions to obtain the enzyme, using lulo peel, and found that the best conditions for extraction were buffer of boric acid-sodium borate 0.1M pH 8.8, 1% SDS, 3% PVPP and, for measuring the enzymatic activity:  L- phenylalanine 5mM, pH 8.0, 20&deg;C, 30 &mu;L of extract and incubation during 45 min. Then, we performed an <I>in vivo</I> assay using lulo fruits in three maturity stages, which were inoculated either with the fungus or sterile water. Enzymatic induction was studied at five post-inoculation times, and it was found that there is a differential response as a consequence of the presence of the pathogen and the maturity stage. In semi-mature lulos, a bigger increase in PAL was obtained among 12-48 hpi which is related to a higher content of phenolic compounds and to the latest development in the characteristic symptoms of anthracnose. These results allow postulating, in a preliminary way, a possible positive relationship between inductions of PAL, phenolics and responses of tolerance to <I>C. acutatum</I>. For green and mature lulos we observed as well, an increase of PAL activity but only at 12 and 24 hpi which showed relation with an increase in the total phenolic content. However, for these stages the phenolics were significantly lower at higher times. </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   ><I>Key words: Lulo, phenylalanine ammonia lyase, anthracnose, vegetal defense enzymes. </I></P ><hr size="1">     <P   >INTRODUCCI&Oacute;N </P >     <P   > Un importante n&uacute;mero de frutas de origen andino tienen gran potencial de convertirse en productos de exportaci&oacute;n con un alto beneficio econ&oacute;mico para los agricultores.  Entre estas frutas, el lulo &oacute; naranjilla (<I>Solanum quitoense</I> Lam), originario de los bosques h&uacute;medos subtropicales de Colombia, Ecuador y Per&uacute;, ha sido seleccionado por el DANE (2004) como una de las diez frutas m&aacute;s promisorias en Colombia debido a su valor nutritivo, sabor agridulce, aroma particular y posibilidad de usos agroindustriales; correspondiendo su produci&oacute;n a 11.36% entre las diez. Sin embargo, esta especie tiene limitantes importantes que restringen su cultivo, como son la susceptibilidad a enfermedades ocasionadas por hongos y virus, problemas de deterioro post-cosecha, heterogeneidad en la calidad de la fruta, disponibilidad limitada del material libre de pat&oacute;genos, entre otros. La antracnosis producida por el hongo <I>Colletotrichum acutatum </I>(Tamayo, 2001; Cer&oacute;n, 2005) es una enfermedad que ocasiona p&eacute;rdidas importantes en los cultivos de lulo con el correspondiente impacto socio-econ&oacute;mico. </P >     <P   >A pesar del potencial econ&oacute;mico que representan los frutos para el pa&iacute;s, no se dispone actualmente de un conocimiento cient&iacute;fico b&aacute;sico que permita caracterizar, desde el punto de vista bioqu&iacute;mico, las principales enfermedades que los afectan, en especial aquellas que son de particular impacto econ&oacute;mico.  Dicho conocimiento es b&aacute;sico para implementar programas de manejo de estas enfermedades  y para la obtenci&oacute;n de variedades resistentes. En el pa&iacute;s se han realizado estudios sobre el fruto de lulo pero enfocados principalmente a caracterizar procesos fisiol&oacute;gicos de poscosecha (Cort&eacute;s, 2006; Rubio, 1999). Son escasos los reportes conocidos hasta el momento de estudios referentes a la caracterizaci&oacute;n de los eventos bioqu&iacute;micos que median la interacci&oacute;n del fruto de lulo con el pat&oacute;geno que causa la antracnosis y que aporten al conocimiento cient&iacute;fico b&aacute;sico de la enfermedad, el cual es fundamental para poder buscar estrategias tendientes a disminuir la susceptibilidad del fruto frente al pat&oacute;geno. Se conocen s&oacute;lo los trabajos recientes (Caicedo e Higuera, 2007; Caicedo <I>et &aacute;l</I>., 2009) en este mismo modelo, en los que se report&oacute; inducci&oacute;n de las enzimas polifenoloxidasa y peroxidasa como respuesta a este pat&oacute;geno, inducci&oacute;n que present&oacute; dependencia con el tiempo y con el estado de madurez. En estos estudios se postul&oacute; una posible relaci&oacute;n positiva entre inducci&oacute;n enzim&aacute;tica m&aacute;s r&aacute;pida y s&iacute;ntomas m&aacute;s tard&iacute;os de la enfermedad. El objetivo del presente estudio fue evaluar la actividad de la enzima fenilalanina amonio liasa en corteza de frutos de lulo en tres estados de madurez sometidos a la acci&oacute;n del pat&oacute;geno <I>C. acutatum,</I> con el fin de determinar su posible participaci&oacute;n en respuestas bioqu&iacute;micas del hospedero y su relaci&oacute;n con el contenido de compuestos fen&oacute;licos totales y con el desarrollo de la enfermedad antracnosis. Esta enzima es clave y la primera en la ruta fenilpropanoide, ruta metab&oacute;lica involucrada con frecuencia en mecanismos de defensa vegetal. </P >     <P   >MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </P >      <P   >MATERIAL BIOL&Oacute;GICO </P >      <P   >Se utiliz&oacute; una cepa del hongo <I>Colletotrichum acutatum</I>, adquirida en el cepario del departamento de Microbiolog&iacute;a de la Universidad de los Andes, la cual fue cultivada en medio PDA (papa-dextrosa-agar) a 20 &deg;C y sub-cultivada en medio l&iacute;quido papa-dextrosa, manteniendo el cultivo en agitaci&oacute;n constante por 10-12 d&iacute;as a 20 &deg;C. A partir de este cultivo se prepar&oacute; una suspensi&oacute;n (1x106 conidias/ mL) para la inoculaci&oacute;n de los frutos. Los materiales vegetales usados fueron frutos de lulo (<I>Solanum quitoense</I>) <I>var.</I> <I>quitoense</I>, cosechados en tres estados de madurez (verde, pint&oacute;n y maduro) provenientes de un mismo cultivo de Campohermoso (Boyac&aacute;) situado a 1.300 msnm y temperatura promedio de 23&deg;C. </P >     <P   >SELECCI&Oacute;N DE LAS CONDICIONES EXPERIMENTALES PARA LA EXTRACCI&Oacute;N DE LA ENZIMA FENILALANINA AMONIO LIASA (EC 4.3.1.5) A PARTIR DE LA CORTEZA DE LOS FRUTOS </P >     <P   > Para la extracci&oacute;n se tomaron 500 mg de corteza de lulo y se maceraron en presencia de nitr&oacute;geno l&iacute;quido, seguido de tres lavados consecutivos con 2 mL de acetona fr&iacute;a (4 &ordm;C) cada uno.  Las muestras fueron luego centrifugadas por 10 min a 10.000 x g. Sobre el <I>p&eacute;llet </I>obtenido se evaluaron 9 sistemas de extracci&oacute;n, empleando como buffer de partida &aacute;cido b&oacute;rico / borato de sodio 0.1 M, pH 8.8 , SDS (dodecil sulfato de sodio) al 1 %; se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o experimental del tipo cuadrado latino, se evaluaron 3 variables, la primera relacionada con la composici&oacute;n del buffer (adici&oacute;n de polivinilpolipirrolidona / PVPP 0%, 3%, 5%), la segunda referente a la relaci&oacute;n buffer: material vegetal (1:2, 1:3, 1:4) y la  tercera sobre el tiempo de extracci&oacute;n (30, 45 y 60 min). Se realizaron  tres r&eacute;plicas por sistema evaluado. Una vez obtenidos los extractos enzim&aacute;ticos, se determin&oacute; la actividad PAL (Ardila, 2005) con el fin de establecer el buffer con el cual se logra la mayor actividad de esta enzima. </P >     <P   >SELECCI&Oacute;N DE PAR&Aacute;METROS ADECUADOS PARA LA MEDIDA DE ACTIVIDAD ENZIM&Aacute;TICA PAL </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   > Se estudiaron diversas condiciones experimentales (<a href="#tabla1">Tabla 1</a>) para poner a punto la medida de actividad PAL tomando como base, para la escogencia de estos intervalos, reportes previos (Ardila, 2005; Kovacik y Backor<I>.,</I> 2007).  La actividad enzim&aacute;tica se determin&oacute; espectrofotom&eacute;tricamente midiendo el cambio de absorbancia a 270 nm y se expres&oacute; como nmoles de &aacute;cido trans-cin&aacute;mico/min*mg de prote&iacute;na. La mezcla de reacci&oacute;n conten&iacute;a el extracto enzim&aacute;tico, 400 &mu;L de sustrato (L-fenilalanina) y buffer boratos 0.1 M, con pH seg&uacute;n valor a evaluar. Los par&aacute;metros se estudiaron siguiendo un dise&ntilde;o experimental escalonado. Cada determinaci&oacute;n se hizo por triplicado. </P >    <p>    <center><a name="tabla1"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9t1.jpg"></center></p>     <P   >CUANTIFICACI&Oacute;N DE PROTE&Iacute;NA </P >     <P   > El contenido de prote&iacute;na se determin&oacute; en los diferentes extractos por el m&eacute;todo de Lowry (Deutscher, 1990) usando BSA (alb&uacute;mina de suero bovino) como est&aacute;ndar. Cada determinaci&oacute;n se realiz&oacute; por triplicado. </P >     <P   >PROPIEDADES FISICOQU&Iacute;MICAS DE LOS FRUTOS DE LULO <I>(Solanum quitoense </I>L) </P >     <P   > Con el fin de establecer el &iacute;ndice de madurez, y clasificar con &eacute;ste los frutos usados en el estudio, y para evaluar si se presenta alguna relaci&oacute;n entre propiedades fisicoqu&iacute;micas y desarrollo de  los s&iacute;ntomas de antracnosis, se realiz&oacute; la determinaci&oacute;n de los par&aacute;metros: pH (utilizando un potenci&oacute;metro SCHOOT Handylab pH/LF12&reg;), dureza, acidez titulable y grados Brix.  La acidez se determin&oacute; realizando una titulaci&oacute;n &aacute;cido base con NaOH 0,1 N (Norma T&eacute;cnica Colombiana, NTC 4623) y se expres&oacute; como % de &aacute;cido c&iacute;trico. Los grados Brix (s&oacute;lidos solubles) se evaluaron seg&uacute;n NTC 4624, colocando la pulpa sobre un refract&oacute;metro (ATAGO 8682&reg;) a temperatura ambiente. Todas estas determinaciones se realizaron por triplicado. </P >     <P   >EVALUACI&Oacute;N DE LA INDUCCI&Oacute;N DE PAL POR EFECTO DE LA INFECCI&Oacute;N DE LOS FRUTOS DE LULO CON <I>C. acutatum </I></P >     <P   > Los frutos para el ensayo <I>in vivo</I> fueron clasificados en verde, pint&oacute;n y maduro haciendo uso del &iacute;ndice de madurez (&deg;Brix/acidez titulable) (<a href="#tabla2">Tabla 2</a>). Los frutos fueron previamente desinfectados por lavado con soluci&oacute;n de hipoclorito de sodio al 5%, luego lavados exhaustivamente con agua est&eacute;ril y una vez secos, se inocularon con 15 &mu;L de una suspensi&oacute;n del pat&oacute;geno (<I>C. acutatum</I>) de concentraci&oacute;n aproximada 1x106 conidias/mL, sobre una herida superficial hecha con bistur&iacute; (1 cm de longitud) en dos sitios opuestos (sim&eacute;tricos) del fruto. Adicionalmente, se trataron de la misma forma frutos que se usaron como testigo, a los cuales se les coloc&oacute; el mismo volumen de agua est&eacute;ril en vez de la suspensi&oacute;n del pat&oacute;geno, y tambi&eacute;n se usaron frutos sin ning&uacute;n tratamiento (frutos control).  Se almacenaron luego en frascos de vidrio (un fruto por frasco) provistos de una servilleta humedecida con agua (todo el sistema previamente esterilizado) con el fin de mantener una humedad relativa elevada. Se taparon con vinilpel y se mantuvieron todos los frutos bajo las mismas condiciones de temperatura y luz. Se realizaron muestreos a las cero, 12, 24, 48 y 72 horas post-inoculaci&oacute;n (hpi), tomando en cada tiempo tres frutos por tratamiento y por estado de madurez, a los que se les retir&oacute; la corteza cercana al &aacute;rea de inoculaci&oacute;n (en todos los casos se tom&oacute; un &aacute;rea de 1 cm2) y se registr&oacute; la aparici&oacute;n de alg&uacute;n signo visible del desarrollo de la enfermedad como por ejemplo, aparici&oacute;n y profundidad de manchas necr&oacute;ticas alrededor del sitio de infecci&oacute;n y aparici&oacute;n de micelio algodonoso. Sobre estas muestras se realiz&oacute; la extracci&oacute;n y se evalu&oacute; la actividad PAL.  Se conservaron muestras de lulo inoculadas, durante tiempos mayores, para ser usados como control positivo del desarrollo de la enfermedad. </P >    <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="tabla2"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9t2.jpg"></center></p>     <P   >DETERMINACI&Oacute;N DEL CONTENIDO DE FENOLES TOTALES </P >     <P   >Para la determinaci&oacute;n del contenido de compuestos fen&oacute;licos totales presentes en la corteza de los frutos inoculados con el pat&oacute;geno y en los inoculados con agua est&eacute;ril, se tomaron 500 mg de la muestra los cuales fueron macerados con nitr&oacute;geno l&iacute;quido. Luego se realiz&oacute; la extracci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos para cada muestra agit&aacute;ndola por un periodo de 30 segundos con acetona fr&iacute;a en proporci&oacute;n 1:2.  Posteriormente se centrifug&oacute; durante 10 minutos, a 4 &deg;C, 7000 g y se retir&oacute; el sobrenadante (este procedimiento fue realizado tres veces). Los sobrenadantes fueron recolectados en frascos &aacute;mbar y refrigerados a -20 &deg;C hasta su posterior an&aacute;lisis.  La cuantificaci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos totales se realiz&oacute; utilizando el m&eacute;todo de Folin-Ciocalteu&acute;s (Makkar <I>et &aacute;l., </I>2000) determinando el cambio de absorbancia a 765 nm con ayuda de una curva de calibraci&oacute;n realizada con &aacute;cido g&aacute;lico como patr&oacute;n (Sigma-Aldrich Chem. Co) en un intervalo de concentraci&oacute;n entre 0 y 25 ppm.  El contenido de fenoles totales fue expresado como ppm de &aacute;cido g&aacute;lico por mg de material vegetal. </P >     <P   >AN&Aacute;LISIS ESTAD&Iacute;STICO </P >     <P   >Los resultados obtenidos se procesaron usando an&aacute;lisis de varianza (ANDEVA) y pruebas de rango m&uacute;ltiple (P=0,05), usando el programa Statgraphics Plus 5.1&reg;.  Se utiliz&oacute; la prueba de Diferencias M&iacute;nimas Significativas (DMS). </P >     <P   >RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N </P >      <P   >SELECCI&Oacute;N DE CONDICIONES ADECUADAS PARA LA EXTRACCI&Oacute;N DE LA  ENZIMA PAL </P >      <P   >Los resultados obtenidos al evaluar los nueve sistemas de extracci&oacute;n se muestran en la <a href="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>. El an&aacute;lisis de estos resultados (ANDEVA) indic&oacute; que el sistema  compuesto por buffer boratos 0.1M pH 8,0, 1 % de SDS, 3 % de PVPP, en proporci&oacute;n 1:2 (material vegetal: buffer) y agitaci&oacute;n durante 45 minutos (2 en la <a href="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>), permiti&oacute; obtener los mayores valores de actividad PAL, con diferencias significativas (P= 0,05) respecto a los dem&aacute;s sistemas estudiados.  Por tanto, se seleccion&oacute; &eacute;ste como el m&aacute;s adecuado para la extracci&oacute;n de PAL a lo largo del estudio de inducci&oacute;n. Este resultado coincide con algunos reportes (Alunni <I>et &aacute;l.</I>, 2003) en los cuales se indica que el uso de PVPP (pol&iacute;mero insoluble) ayuda a retirar los compuestos fen&oacute;licos remanentes despu&eacute;s del tratamiento con acetona fr&iacute;a, los cuales pueden actuar como inhibidores de la enzima PAL. </P >     <P   >DETERMINACI&Oacute;N DE LAS CONDICIONES APROPIADAS PARA MEDIR ACTIVIDAD ENZIM&Aacute;TICA DE FENILALANINA AMONIO LIASA (PAL) </P >     <P   > Para establecer las condiciones adecuadas de pH, temperatura, volumen de extracto enzim&aacute;tico y concentraci&oacute;n de sustrato, para la medida de actividad PAL, se midi&oacute; la actividad espec&iacute;fica utilizando el sistema de extracci&oacute;n No. 2 (<a href="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>) y el dato del contenido de prote&iacute;na de cada extracto enzim&aacute;tico evaluado.  En las <a href="#fig2">Fig. 2</a> a <a href="#fig6">Fig. 6</a>, se presentan los valores obtenidos para cada par&aacute;metro experimental estudiado.  Teniendo en cuenta estos resultados, se pudo establecer que los par&aacute;metros adecuados para la medida de actividad de la enzima PAL, extra&iacute;da a partir de corteza de lulo, son: pH 8,0; sustrato L- fenilalanina 5 mM, 20 &deg;C, 30 &mu;L de extracto enzim&aacute;tico y 45 minutos de tiempo de incubaci&oacute;n, dados los mayores valores de actividad obtenidos, con diferencias significativas  respecto a las otras condiciones evaluadas. Al comparar con diversos reportes de literatura se encontr&oacute; que el pH es similar al obtenido para PAL de tomate (Sudhamoy <I>et &aacute;l</I>., 2008), lechuga (Hyodo <I>et &aacute;l.,</I> 1978), avena (Rybka <I>et &aacute;l</I>., 1998)<I>.</I> Sin embargo, se encontraron diferencias con respecto a datos cin&eacute;ticos de otras PAL&acute;s estudiadas en diferentes fuentes vegetales, las cuales pueden ser atribuidas posiblemente a la existencia de diferentes isoformas de PAL presentes en las especies vegetales.  Para el caso de la extra&iacute;da del fruto de lulo se observa que a concentraciones de sustrato por encima de 20 mM la actividad disminuye significativamente, posiblemente por inhibici&oacute;n por efecto del producto de reacci&oacute;n.  En cuanto al tiempo de reacci&oacute;n, en otros estudios se ha reportado 60 minutos como el tiempo &oacute;ptimo (Zhang <I>et &aacute;l., </I>2008; Kovacik y Backor<I>, </I>2007; Morell&oacute; <I>et &aacute;l</I>., 2005). En el presente estudio, el tiempo de reacci&oacute;n encontrado fue de 45 minutos; la diferencia puede ser atribuida a la presencia de diferentes isoformas de PAL en las especies vegetales.  Puede postularse que las isoformas de PAL presentes en corteza de lulo son m&aacute;s activas, en comparaci&oacute;n con las encontradas por ejemplo en alfalfa, pimienta, pepino, entre otras, (Orr <I>et &aacute;l.</I>, 1993; Garmendia <I>et &aacute;l., 2006</I>; Shaldea <I>et &aacute;l., </I>2003). </P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f2.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="fig3"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f3.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="fig4"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f4.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="fig5"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f5.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="fig6"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f6.jpg"></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >Es de resaltar que para lulo no se encuentran estudios de caracterizaci&oacute;n de enzimas en general, y menos a&uacute;n de las involucradas en respuestas de defensa frente a pat&oacute;genos, y tampoco se dispone de mayor informaci&oacute;n sobre la cin&eacute;tica de esta enzima en particular. </P >     <P   >PROPIEDADES FISICOQU&Iacute;MICAS DE LOS FRUTOS DE LULO </P >     <P   >En la <a href="#tabla2">Tabla 2</a> se indican los resultados obtenidos para algunos par&aacute;metros fisicoqu&iacute;micos de los frutos usados en la investigaci&oacute;n. Con base en la relaci&oacute;n entre los grados Brix y la acidez, se clasificaron los frutos para conformar los grupos correspondientes a los estados verde, pint&oacute;n y maduro. Cabe mencionar que estos valores est&aacute;n acordes con lo reportado en estudios previos (Casierra, <I>et &aacute;l</I>., 2004, Caicedo, 2005; Caicedo e Higuera, 2007), realizados usando lulos de la misma variedad que los que se emplearon en este estudio. Como se muestra en la <a href="#tabla2">Tabla 2</a>, no se obtuvieron diferencias marcadas en la mayor&iacute;a de las propiedades medidas, por tanto, no es posible inferir que alguna de &eacute;stas favorezca o no la invasi&oacute;n por parte del pat&oacute;geno. En la propiedad que se observ&oacute; mayor diferencia con el estado de madurez fue en la dureza, pero no se pudo establecer que existiera relaci&oacute;n con la infecci&oacute;n, pues los frutos con mayor dureza (verdes) fueron, en este estudio, los m&aacute;s susceptibles a desarrollar s&iacute;ntomas de infecci&oacute;n. La poca diferencia en propiedades como pH y acidez entre los tres estados de madurez ya ha sido previamente documentada para el lulo y es por ello que estos par&aacute;metros no se utilizan por lo general para caracterizar el grado de madurez del fruto. </P >     <P   >EVALUACI&Oacute;N DEL COMPORTAMIENTO DE LA ENZIMA FENILALANINA AMONIO LIASA (PAL) EN FRUTOS DE LULO (<I>Solanum quitoense</I> Lam) FRENTE AL ATAQUE DEL PAT&Oacute;GENO <I>Colletotrichum acutatum</I> DURANTE LA INTERACCI&Oacute;N FRUTO- PAT&Oacute;GENO </P >      <P   >Evaluaci&oacute;n de s&iacute;ntomas de antracnosis </P >      <P   >Los resultados de la evaluaci&oacute;n visual diaria de los frutos permitieron establecer que los s&iacute;ntomas caracter&iacute;sticos, tales como manchas necr&oacute;ticas y aparici&oacute;n de micelio algodonoso sobre la zona de inoculaci&oacute;n, se presentaron en promedio a 72 hpi para los frutos en estado verde y maduro, siendo m&aacute;s afectados los frutos en estado verde, mientras que los frutos en estado pint&oacute;n fueron los menos afectados. En estos &uacute;ltimos, la aparici&oacute;n de s&iacute;ntomas se observ&oacute; solo a partir de 144 hpi. Ninguno de los frutos control o testigo present&oacute; evidencias de antracnosis durante el tiempo que dur&oacute; el experimento.  Se comprob&oacute;, as&iacute; mismo, que los frutos usados para el estudio estaban inicialmente libres del pat&oacute;geno, mediante cultivo de muestras de corteza tomadas al azar en medio PDA durante 7 d&iacute;as.  En ninguna caja se observ&oacute; crecimiento alguno de microorganismos. </P >     <P   >Evaluaci&oacute;n de la inducci&oacute;n de la enzima fenilalanina amonio liasa (PAL) durante el ensayo <I>In vivo </I></P >     <P   >Los resultados de actividad PAL obtenidos a cada tiempo de muestreo se analizaron estad&iacute;sticamente entre tratamientos, a un determinado tiempo, para establecer una posible inducci&oacute;n por efecto del pat&oacute;geno. </P >        <p><I>a) Estado de madurez verde</I>. En la <a href="#fig7">Figura 7</a> se comparan los resultados de actividad PAL obtenidos a los diferentes tiempos para lulos en estado verde, durante el ensayo de inoculaci&oacute;n.  Entre 12 y 24 hpi la actividad PAL aument&oacute; significativamente en los tres tratamientos, pero en los frutos inoculados con el hongo el aumento fue mayor. Dicha inducci&oacute;n de la enzima puede atribuirse a un cambio en el metabolismo del fruto que puede estar relacionado con respuestas a la presencia del pat&oacute;geno, pues al realizar la comparaci&oacute;n con el respectivo control y con el testigo se observa una diferencia significativa. Este comportamiento coincide con otros modelos reportados en la literatura como es el caso de avena - <I>Stagonospora nodorum </I>(Rybka <I>et &aacute;l.</I>, 1998), pimienta- <I>Verticillium dahliae </I>(Garmendia <I>et &aacute;l., </I>2006), alfalfa- <I>Verticillium albo-atrum</I> (Koike y Nanbu, 1997). Cabe anotar que a partir de 48 hpi  las actividades PAL para frutos en estado verde en los tres tratamientos fueron notablemente menores a las que se determinaron para frutos en estado pint&oacute;n y a&uacute;n para los maduros y esta respuesta podr&iacute;a estar relacionada con el grado de severidad de la enfermedad, pues en frutos verdes los s&iacute;ntomas se presentaron m&aacute;s r&aacute;pido, si se comparan con los otros dos estados de madurez. </p >    <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="fig7"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f7.jpg"></center></p>      <P   ><I>b) Estado de madurez pint&oacute;n.</I> En la <a href="#fig8">Figura 8</a>, se presentan los resultados obtenidos para el comportamiento de la enzima PAL obtenida de frutos en estado pint&oacute;n durante el ensayo <I>In vivo </I>de respuesta a la inoculaci&oacute;n. Puede apreciarse un aumento significativo, que perdur&oacute; a todo lo largo de los tiempos evaluados, para el caso de los frutos sometidos a la inoculaci&oacute;n con el pat&oacute;geno.  Dicho aumento puede atribuirse a una respuesta del fruto al hongo, dadas las diferencias con sus respectivos controles. Se descarta que este aumento pueda deberse s&oacute;lo a respuesta al estr&eacute;s de la herida pues la actividad obtenida es mucho m&aacute;s alta que la que se observ&oacute; para los frutos testigos (tambi&eacute;n sometidos a inoculaci&oacute;n pero con agua). Se encontr&oacute;, adem&aacute;s, que las actividades PAL para los frutos en este estado de madurez son, en general, significativamente m&aacute;s altas (casi el doble) si se comparan con las obtenidas en los estados verde y maduro (<a href="#fig7">Fig. 7</a> y <a href="#fig9">Fig. 9</a>).  Esta notable diferencia en la magnitud de actividad PAL, observada para los tres tratamientos, puede estar asociada con los metabolismos activos que tienen lugar en el fruto que est&aacute; en proceso de maduraci&oacute;n, adem&aacute;s de la ya comentada y evidente inducci&oacute;n en los que estuvieron sometidos a la acci&oacute;n del hongo. Los resultados permiten entonces asociar una importante inducci&oacute;n de actividad de la enzima PAL con la respuesta de los frutos al pat&oacute;geno <I>C. acutatum. </I>La literatura reporta modelos en los que PAL ha sido relacionada con estreses, ya sea bi&oacute;ticos &oacute; abi&oacute;ticos, como es el caso de esp&aacute;rrago- <I>Fusarium oxysporum </I>f. sp <I>asparagi </I>(Chenyang <I>et &aacute;l., </I>2001), caup&iacute;- <I>Rhizoctonia solani </I>(Chandra <I>et &aacute;l., </I>2007)<I>, </I>canola<I>- Leptosphaeria maculans </I>(Chakraborty <I>et &aacute;l., 1993).</I> Al analizar la observaci&oacute;n de los s&iacute;ntomas de la enfermedad con relaci&oacute;n a la actividad PAL, puede postularse una posible relaci&oacute;n positiva entre inducci&oacute;n de esta enzima y retardo en la aparici&oacute;n de s&iacute;ntomas caracter&iacute;sticos de &eacute;sta, pues como se anot&oacute; anteriormente, en este estudio los frutos en estado pint&oacute;n fueron los que tardaron m&aacute;s en presentarlos.</P >    <p>    <center><a name="fig8"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f8.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="fig9"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f9.jpg"></center></p>     <P   ><I>c) Estado maduro.</I> En la <a href="#fig9">Figura 9</a> se muestran los resultados obtenidos para actividad PAL de corteza de frutos en estado maduro. Como se observa, se present&oacute; tambi&eacute;n aumento a tiempos 12 y 24 hpi, el cual fue significativamente mayor en los frutos inoculados con el pat&oacute;geno.  Puede entonces postularse que hay una inducci&oacute;n de PAL la cual se asocia con una respuesta del fruto frente al estr&eacute;s ocasionado por la inoculaci&oacute;n con el pat&oacute;geno, dado que para los frutos testigo y control los valores fueron significativamente menores.  A 48 y 72 hpi los valores de actividad PAL disminuyeron en forma importante para los tres tratamientos y no se observ&oacute; diferencia en los inoculados con el hongo. Cabe resaltar que las magnitudes de la actividad PAL obtenidas para este estado de madurez fueron notablemente menores si se comparan con los estados pint&oacute;n y verde. Aunque no existen reportes donde se correlacione la incidencia de la enfermedad con el estado de madurez en frutos como el lulo, es claro que durante los procesos de maduraci&oacute;n se promueven cambios bioqu&iacute;micos y/o histol&oacute;gicos que pueden tener incidencia durante la interacci&oacute;n hospedero-pat&oacute;geno. </P >     <P   >EVALUACI&Oacute;N DEL CONTENIDO DE FENOLES TOTALES </P >     <P   >La determinaci&oacute;n del contenido de fenoles totales se realiz&oacute; con el fin de evaluar si se presenta un aumento en la concentraci&oacute;n de estos compuestos, producto de los cambios metab&oacute;licos que se suceden en los frutos como consecuencia de la inoculaci&oacute;n con el pat&oacute;geno, y si este aumento tiene relaci&oacute;n con la inducci&oacute;n observada de la enzima PAL. </P >     <P   ><I>a) Frutos en estado verde</I>.  Los resultados obtenidos para este estado de madurez, los cuales se presentan en la <a href="#fig10">Figura 10</a>, muestran a tiempos 12 y 24 hpi un alto contenido de fenoles en los frutos testigo y los inoculados con el pat&oacute;geno, aumento que puede estar relacionado con el estr&eacute;s producido a causa de la herida ocasionada con el bistur&iacute;. Sin embargo, puede apreciarse que en los frutos inoculados con <I>C. acutatum</I> el contenido de fenoles es significativamente mayor. Este aumento coincide con el aumento de la actividad PAL observado a estos tiempos, y este comportamiento puede tambi&eacute;n ser atribuido a una respuesta del fruto frente al ataque del hongo.  A partir de 48 hpi se aprecia una disminuci&oacute;n notable en el contenido de fenoles para los tres tratamientos, hecho este que coincide con la aparici&oacute;n de los primeros s&iacute;ntomas de la enfermedad, como la aparici&oacute;n de manchas necr&oacute;ticas y la formaci&oacute;n de micelio algodonoso en el sitio de la inoculaci&oacute;n, indicando que la defensa pasiva del fruto ha sido vulnerable al ataque del pat&oacute;geno. Cabe recordar que los frutos en estado verde fueron los que presentaron primero los s&iacute;ntomas de antracnosis. </P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="fig10"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f10.jpg"></center></p>     <P   ><I>b) Frutos en estado pint&oacute;n.</I> La <a href="#fig11">Figura 11</a> muestra los resultados obtenidos en la determinaci&oacute;n del contenido de fenoles para los frutos en estado pint&oacute;n durante el ensayo de inoculaci&oacute;n. Como en el caso de los frutos verdes, se aprecia un incremento significativo en el contenido de fenoles para los frutos sometidos al estr&eacute;s del corte. Sin embargo, para los inoculados con el hongo el aumento fue mayor en comparaci&oacute;n con los controles y testigos.  Es muy notable el aumento observado a 72 hpi para los sometidos a la acci&oacute;n del pat&oacute;geno (m&aacute;s del doble respecto a los controles), hecho que no sucedi&oacute; con los frutos en estado verde. Puede determinarse que dicho aumento se relaciona con una respuesta del hospedero al pat&oacute;geno, pues las diferencias que hay entre los frutos testigo y los inoculados con el hongo son significativas.  Esta acumulaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos present&oacute; relaci&oacute;n con la elevada actividad PAL obtenida durante el ensayo <I>In vivo</I>, a partir de 48 hpi para este estado de madurez, que como se anot&oacute; antes, fue en el que se demor&oacute; m&aacute;s la aparici&oacute;n de s&iacute;ntomas de la enfermedad. No se observ&oacute; disminuci&oacute;n a los tiempos mayores (48 y 72 hpi) como sucedi&oacute; con los frutos verdes y maduros. </P >    <p>    <center><a name="fig11"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f11.jpg"></center></p>     <P   ><I>c) Frutos en estado maduro</I>.  Se observ&oacute; que a tiempos tempranos (0 y 12 hpi) el contenido de fen&oacute;licos es mayor comparado con los otros dos estados evaluados, para los tres tratamientos (<a href="#fig12">Figura 12</a>). Sin embargo, dicho contenido present&oacute; una disminuci&oacute;n significativa a partir de 24 hpi, tal como sucedi&oacute; en los frutos verdes, la que podr&iacute;a estar entonces relacionada con la m&aacute;s r&aacute;pida aparici&oacute;n de los primeros s&iacute;ntomas de la enfermedad antracnosis.  En promedio, se observ&oacute; que el contenido constitutivo de fenoles totales es mayor en frutos de lulo en estado maduro para los tres tratamientos, si se compara con los otros dos estados de madurez, hecho &eacute;ste que puede estar asociado con los cambios metab&oacute;licos normales que se presentan en el fruto como consecuencia del proceso de maduraci&oacute;n. El hecho de presentar este estado de madurez los mayores contenidos de fenoles totales no se puede asociar <I>a priori</I> con posibilidad de menores s&iacute;ntomas, pues es sabido que con frecuencia el efecto en defensa se debe s&oacute;lo a ciertos fenoles particulares m&aacute;s que al total de ellos. En caso de que se trate de compuestos espec&iacute;ficos (se est&aacute; analizando este aspecto en otro estudio a&uacute;n no publicado) podr&iacute;a tenerse el caso de que en los frutos maduros &eacute;stos compuestos espec&iacute;ficos no est&eacute;n evidentemente aumentados por la infecci&oacute;n, lo que explicar&iacute;a el desarrollo de s&iacute;ntomas. </P >    <p>    <center><a name="fig12"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a9f12.jpg"></center></p>     <P   >Los resultados observados en el modelo Lulo (<I>Solanum quitoense</I> Lam)- <I>C. acutatum</I> est&aacute;n de acuerdo con algunos reportes de la literatura en los cuales se ha encontrado que el metabolismo fen&oacute;lico es uno de los que con frecuencia se induce durante la interacci&oacute;n planta-pat&oacute;geno. Por ejemplo, estudios realizados en diferentes modelos muestran un aumento en la concentraci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos presentes, los cuales act&uacute;an principalmente como inhibidores del crecimiento de pat&oacute;genos. En plantas de olivo (<I>Olea europaea</I> L.) infectadas se ha demostrado que las sustancias fen&oacute;licas aumentan su concentraci&oacute;n y que pueden inhibir el crecimiento de bacterias, tales como <I>Lactobacillus plantarum</I> y <I>Leuconostoc mesenteroides</I>, entre otras, as&iacute; como hongos pertenecientes al g&eacute;nero <I>Phytophthora</I>, (Del R&iacute;o <I>et &aacute;l.,</I> 2003).  Otros ensayos realizados usando cultivo de c&eacute;lulas de Hierba de San Juan <I>(Hypericum perforatum L),</I> elicitadas con el hongo <I>Colletotrichum gloeosporioides,</I> muestran aumento en la concentraci&oacute;n de xantonas, compuestos con caracter&iacute;sticas apolares a los que le atribuyen propiedades antimicrobiales. Dicho aumento es considerado como una respuesta de defensa provocada por algunos componentes presentes en  el hongo elicitor (glicoprote&iacute;nas, oligosac&aacute;ridos) (Concei&ccedil;&atilde;o <I>et &aacute;l., </I>2006).  Teniendo en cuenta lo anterior, es posible sugerir que la acumulaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos totales, observada a partir de 12 hpi en los frutos de lulo en los tres estados de madurez inoculados con el pat&oacute;geno, se trate de una respuesta a su presencia, acumulaci&oacute;n que en el caso de los frutos pintones se mantiene durante todo el tiempo del experimento y se incrementa notablemente a las 72 hpi, lo que se puede asimilar, en principio, a una respuesta defensiva, dada la relaci&oacute;n positiva encontrada entre este aumento y la demora en la aparici&oacute;n de los s&iacute;ntomas de la enfermedad. </P > </font>     <P   ><font size="2">CONCLUSION</font> </P > <font face="verdana" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >Los resultados de esta investigaci&oacute;n se constituyen en los primeros reportes de participaci&oacute;n de la enzima PAL en respuestas del lulo al pat&oacute;geno <I>C. acutatum. </I>Las evidencias acumuladas muestran que en frutos de lulo en estado pint&oacute;n la actividad PAL fue mucho mayor que en estado verde y maduro y que en este estado de madurez la aparici&oacute;n de s&iacute;ntomas de la antracnosis fue m&aacute;s tard&iacute;a. En general todos los frutos respondieron al pat&oacute;geno (y a la herida) activando esta enzima hacia las 12 y 24 horas de estar en contacto con &eacute;ste.  La inducci&oacute;n de actividad PAL por efecto del hongo mostr&oacute; relaci&oacute;n positiva con el aumento en el contenido de fen&oacute;licos totales, al nivel de corteza de frutos de lulo, </P >     <P   >comportamiento que tambi&eacute;n evidenci&oacute; dependencia  con el estado de madurez del fruto. </P >     <P   >AGRADECIMIENTOS </P >     <P   > Los autores expresan su agradecimiento al Departamento de Qu&iacute;mica y a la Divisi&oacute;n de investigaci&oacute;n de la Sede Bogot&aacute; de la Universidad Nacional de Colombia por el apoyo otorgado para este estudio. </P >     <P   >BIBLIOGRAF&Iacute;A </P >     <!-- ref --><P   > ALUNNI S, CIPICIANI A, FIORINI G, OTTAVI L. Mechanisms of inhibition of phenylalanine ammonia lyase by phenol inhibitors and phenol / glycine synergistic inhibitors. Archives of Biochemistry and Biophysics.  2003; 412: 170-175. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-548X201000010000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >ARDILA H. Evaluaci&oacute;n de algunas respuestas bioqu&iacute;micas y moleculares relacionadas con el metabolismo de los fenoles en el modelo Clavel (<I>Dianthus caryophyllus</I> L.)-<I>Fusarium oxysporum</I> f. sp.<I>dianthi</I> raza 2. [Tesis de Maestr&iacute;a]. Bogot&aacute;: Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia; 2005. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-548X201000010000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >CASIERRA F, GARC&Iacute;A E, LUDDERS P. Determinaci&oacute;n del punto &oacute;ptimo de cosecha en el lulo <I>Solanum quitoense </I>Lam. var. <I>quitoense </I>y <I>septentrionale</I>. Agronom&iacute;a Colombiana. 2004; 22(1):32-39. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-548X201000010000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >CAICEDO O. Evaluaci&oacute;n de la inducci&oacute;n de polifenoloxidasa y peroxidasa como respuesta  a la interacci&oacute;n fruto de lulo (<I>Solanum quitoense</I> Lam)- <I>Colletotrichum acutatum</I>. (Tesis de Maestr&iacute;a). Bogot&aacute;: Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia; 2005. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-548X201000010000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >CAICEDO O. Inducci&oacute;n de polifenoloxidasa en frutos de Lulo <i>(Solanum     quitoense</i>) como respuesta a la infecci&oacute;n con <i>Colletotrichum       acutatum. </i>Acta biol.   Colomb. 2007;   12 S: 41 -   54. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-548X201000010000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >CAICEDO O, HIGUERA B, MART&Iacute;NEZ S. Inducci&oacute;n de actividad peroxidasa y de fenoles totales como respuesta del fruto de lulo (<I>Solanum quitoense </I>Lam) al pat&oacute;geno causal de la antracnosis.  Rev. Colomb. Qu&iacute;m. 2009; 38 (1): 25-42. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-548X201000010000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >CER&Oacute;N S. Detecci&oacute;n de <I>Colletotrichum </I>(Penz) Sacc en estructuras vegetativas y reproductivas de lulo <I>Solanum quitoense </I>Lam [tesis de maestr&iacute;a en Fitopatolog&iacute;a]. Bogot&aacute; DC: Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia; 2005. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-548X201000010000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >CHAKRABORTY U, CHAKRABORTY BN, KAPOOR M. Changes in the levels of peroxidase and phenylalanine ammonia-lyase in <I>Brassica napus</I> cultivars showing variable resistance to <I>Leptosphaeria maculans</I>.  Folia Microbiol. 1993; 38 (6): 491- 496. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-548X201000010000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >CHANDRA A, RAGHVENDRA S, DUBEY A, SAXENA P. Change in phenylalanine ammonia lyase activity and isozyme patterns of polyphenol oxidase and peroxidase by salicylic acid leading to enhance resistance in cowpea against <I>Rhizoctonia solani</I>.  Acta Physiol Plant. 2007;  29: 361-367. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-548X201000010000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >CHENYANG H, HSIANG T, WOLYN D. Activation of defense responses to Fusarium infection in <I>Asparagus densiflorus</I>.  Eur J Plant Pathol. 2001; 107: 473-483. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-548X201000010000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >CONCEI&Ccedil;&Atilde;O LF, FERRERES F, TAVARES R, DIAS A. Induction of phenolic compounds in <I>Hypericum perforatum</I> L. cells by <I>Colletotrichum gloeosporioides</I> elicitation.  Phytochemistry. 2006; 67: 149-155. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-548X201000010000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >CORT&Eacute;S RA. Efecto de la refrigeraci&oacute;n y el choque t&eacute;rmico sobre algunos indicadores de actividad antioxidante en lulo (<I>Solanum quitoense</I> Lam) [tesis de maestr&iacute;a]. Bogot&aacute;: Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia; 2006. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-548X201000010000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >DANE. I Censo nacional de 10 frutas agroindistriales y promisorias.  2004 Oct. Disponible en: <a href="http://www.frutasyhortalizas.com.co/portal/includej/zip/CENSO21oct04.zip" target="_blank">http://www.frutasyhortalizas.com.co/portal/includej/zip/CENSO21oct04.zip</a> ? PHPSESSID=69af5c1e0b2671dd3d1066934a4a51a3 </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-548X201000010000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >DEL R&Iacute;O JA, BA&Iacute;DEZ AG, BOT&Iacute;A JM, ORTU&Ntilde;O A. Enhancement of phenolic compounds in olive plants (<I>Olea europaea</I> L.) and their influence on resistance against <I>Phytophthora sp</I>. Food Chem. 2003; 83:75-8. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-548X201000010000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >DEUTSCHER M. Method Enzymol, Guide to Protein Purification. Vol 182. Academic Press. Inc. New York; 1990. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-548X201000010000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >GARMENDIA I, AGUIRREOLEA J, GOICOCHEA N. Defence- related enzymes in pepper roots during interactions with arbuscular mycorrhizal fungi and / or <I>Verticillium dahliae</I>.  Biocontrol. 2006; 51: 293-310. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-548X201000010000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >HYODO H, KURODA H, FA YANG S. Induction of phenylalanine ammonia lyase and increase in phenolics in letucce leaves in relation to the development of ruseet spotting caused by ethylene.  Plant Physiol. 1978; 62: 31-35. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-548X201000010000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >KOIKE M, NANBU K. Phenylalanine ammonia-lyase activity in alfalfa suspension cultures treated with conidia and elicitors of <I>Verticillium albo-atrum</I>. Biol Plantarum. 1977; 39 (3): 349-353. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-548X201000010000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >KOVACIK J, BACKOR M. Phenylalanine ammonia lyase and phenolics compounds in Chamonile tolerance to cadmium and cooper excess. Water Air Soil Poll. 2007; 185: 185-193. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-548X201000010000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >MAKKAR H, BLUEMMEL M, BOROWY NK, BECKER K.  Quantification of tannins in tree foliage. En: A laboratory manual for the FAO/IAEA Co-ordinated research Project on use of nuclear and related techniques to develop simple tannins assays for predicting and improving the safety and efficiency of feeding ruminants on tannins tree foliage&uml;. Viena. 2000. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-548X201000010000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >MORELL&Oacute; JM, ROMERO MP, RAMO T, MOTILVA MJ. Evaluation of L-phenylalanine ammonia-lyase activity and phenolic profile in olive drupe (<I>Olea europaea</I> L.) from fruit setting period to harvesting time. Plant Sci. 2005; 168:65-72. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-548X201000010000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >ORR JD, EDWARDS R, DIXON R.  Stress responses in alfalfa (<I>Medicago sativa</I> L.). Plant Physiol. 1993; 101: 847-856. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-548X201000010000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >RUBIO E. Estudio del cambio de actividad de polifenoloxidasa, PFO, durante el proceso de maduraci&oacute;n del lulo (<I>Solanum quitoense</I> L.) [Tesis de Maestr&iacute;a]. Bogot&aacute;: Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia; 1999. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-548X201000010000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >RYBKA K, ARSENIUK E, WISNIEWSKA J, RACZYNSKA- BOJANOWSKA K. Comparative studies on the activities of chitinase, B-1,3-glucanase, peroxidase and phenylalanine ammonia lyase in the leaves of triticale and wheat infected with <I>Stagonospora nodorum</I>. Acta Physiol Plant. 1998; 20 (1): 59-66. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-548X201000010000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >SHADLEA GL, WESLEYA S, KORTHA K, CHENA F, LAMBB C, DIXON R. Phenylpropanoid compounds and disease resistance in transgenic tobacco with altered expression of L-phenylalanine ammonia-lyase. Phytochemistry. 2003; 64: 153-161. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-548X201000010000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >SUDHAMOY M, ADINPUNYA M, NIRUPAMA M. Time-course study on accumulation of cell wall-bound phenolics and activities of defense enzymes in tomato roots in relation to Fusarium wilt.  World J. Microb Biot.  2008; 42: 135-139. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-548X201000010000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>TAMAYO P. Principales enfermedades del tomate de &aacute;rbol, la mora y el lulo en Colombia.  Corpoica, Bolet&iacute;n t&eacute;cnico, Bogot&aacute;, 2001. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-548X201000010000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >ZHANG S, ZHANG F, HANG F, HUA B. Enhancement of Phenylalanine ammonia lyase, polyphenoloxidase, and peroxidase in Cucumber Seedlings by <I>Bemisia tabaci</I> (Gennadius) (Hemiptera: Aleyrodidae) Infestation. Agricultural Sciences in China. 2008; 7(1): 82-87 </P ></font>     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-548X201000010000900028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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