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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[POLIMORFISMO DE MICROSATELITES EN INDIVIDUOS DE RAZAS DE BOVINO CRIOLLO COLOMBIANO]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The polymorphism of three microsatellite systems (BMS527, BMS4440 y BMS 2113) was evaluated in 5 Colombian creole breeds: ROM (romosinuano), BON (Blanco orejinegro), CAS (casanareño), SM (San Martinero), CCC (Costeño con cuernos) and two foreign breeds: Cebu and Holstein . Thirty eight alleles in 105 studied individuals were fouund and unique alleles are reported for BON, ROM, CCC and CAS. Total expected heterocigocity which includes the two foreign breeds was 0.7228, where as observed heterocigocity varied between 0.3511 and 0.7787. Hardy/Weinberg desequilibrium was evident in some breeds in two microsatellite systems, as a result, probably of selection effects in creole and foreign breeds. The analysis of several genetic distances showed that the most distant breed was Cebu compared to the Colombian ones and to Holstein , and a cluster that shows HOL-ROM-CAS together. Mixture analysis suggests that Colombian creole breeds have a large genetic contribution from Holstein (between 8 and 22%). Finally we suggest that system BMS2113, could be useful for paternity tests in Colombian creole breeds.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p align="center"><font size="4"> <b>POLIMORFISMO DE MICROSATELITES EN INDIVIDUOS DE RAZAS DE BOVINO CRIOLLO COLOMBIANO </b></font></P >     <p align="center">Microsatellites polymorphism in individuals of Colombian Creole Cattle  </p>     <P   >JANETH ORTEGA TORRES<sup>1</sup>, M. Sc.;LUIS FERNANDO GARC&Iacute;A<sup>2</sup>, Ph. D. <sup>1</sup>Facultad de Medicina Veterinaria y Zoot&eacute;cnica. Universidad Nacional de Colombia. Sede Bogot&aacute;. Bogot&aacute;-Colombia. <a href="mailto:yanethortega2001@yahoo.com">yanethortega2001@yahoo.com</A> Correspondencia:Carrera 50 C No.39-07 Bogot&aacute;-Colombia. <sup>2</sup> Facultad de Ciencias. Departamento de Biolog&iacute;a. Universidad Nacional de Colombia. Sede Bogot&aacute;. Bogot&aacute;-Colombia. <a href="mailto:lfgarciap@unal.edu.co">lfgarciap@unal.edu.co</a> </P >     <P   >Presentado 24 de noviembre de 2008, aceptado 15 de julio de 2009, correcciones 18 de noviembre de 2009. </P ><hr size="1">     <p   >RESUMEN </p >     <P   > Se evalu&oacute; el polimorfismo de tres sistemas microsatelitales (BMS 527, BMS 4440 y BMS 2113) en 5 razas de ganado bovino criollo colombianas: ROM (Romosinuano), BON (Blanco Orejinegro), CAS (Casanare&ntilde;o), SM (San Martinero)  CCC (Coste&ntilde;o con cuernos) y dos razas for&aacute;neas: Ceb&uacute; y Holstein. Se encontraron 38 alelos en 105 individuos estudiados y se reportan alelos &uacute;nicos para BON, ROM,  CCC y CAS. La heterocigosidad esperada total incluidas las dos razas for&aacute;neas  fue de 0.7228, mientras que la observada oscil&oacute; entre 0.3511 y 0.7787. Se evidenci&oacute; desequilibrio de Hardy- Weinberg para algunas razas en dos sistemas microsat&eacute;litales, resultado probable de efectos de selecci&oacute;n a los cuales las razas criollas y for&aacute;neas han estado sujetas. El an&aacute;lisis de diversas distancias gen&eacute;ticas  mostr&oacute;  que la raza m&aacute;s distante fue la Ceb&uacute; en relaci&oacute;n a las colombianas y a Holstein y un cluster consistente que agrupa las razas HOL-ROM-CAS. Los an&aacute;lisis de mezcla sugieren que las razas criollas colombianas tienen mayor aporte gen&eacute;tico de la raza Holstein (entre un 76 y un 88%) que de Ceb&uacute; (entre un 8 y un 22 %). Finalmente, se sugiere que el sistema BMS2113, podr&iacute;a  ser de utilidad para realizar  an&aacute;lisis de paternidad en razas criollas colombianas. </P >     <p   >Palabras clave: microsat&eacute;lites, razas criollas, polimorfismo. </p ><hr size="1">     <p   >ABSTRACT </p >     <P   >The polymorphism of three microsatellite systems (BMS527, BMS4440 y BMS 2113) was evaluated in 5 Colombian creole breeds: ROM (romosinuano), BON (Blanco orejinegro), CAS (casanare&ntilde;o), SM (San Martinero), CCC (Coste&ntilde;o con cuernos) and two foreign breeds: Cebu and Holstein. Thirty eight alleles in 105 studied individuals were fouund and unique alleles are reported for BON, ROM, CCC and CAS. Total expected heterocigocity which includes the two foreign breeds was 0.7228, where as observed heterocigocity varied between 0.3511 and 0.7787. </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >Hardy/Weinberg desequilibrium was evident in some breeds in two microsatellite systems, as a result, probably of selection effects in creole and foreign breeds. The analysis of several genetic distances showed that the most distant breed was Cebu compared to the Colombian ones and to Holstein, and a cluster that shows HOL-ROM-CAS together. Mixture analysis suggests that Colombian creole breeds have a large genetic contribution from Holstein (between 8 and 22%). Finally we suggest that system BMS2113, could be useful for paternity tests in Colombian creole breeds. </P >     <P   >Key words: Microsatellites, Creole breeds, polymorphism </P > <hr size="1">     <p   >INTRODUCCI&Oacute;N </p >     <P   > La ganader&iacute;a bovina en Colombia es una fuente importante de aporte al Producto Interno Bruto (PIB) Nacional con una participaci&oacute;n total de 3.5%, equivalente al 26% del PIB agropecuario ya 56% del pecuario (DANE, 2001). De acuerdo con la FAO, Colombia ocupa el noveno lugar en producci&oacute;n ganadera a nivel mundial y el tercero en America Latina, despu&eacute;s de Brasil y Argentina (FAO, 2003).  Se reconocen en el pa&iacute;s siete razas criollas colombianas ROM (Romosinuana), CCC (Coste&ntilde;o con cuernos), CAS (Casanare&ntilde;o), SM (San Martinera), HV (Hart&oacute;n del Valle), CH (Chino Santandereano) y BON (Blanco Orejinegro) (Hern&aacute;ndez <I>et &aacute;l,</I> 1996) adaptadas a diferentes condiciones medio ambientales y derivadas de ganado originario de las Islas Gomera en Espa&ntilde;a, las cuales fueron  tra&iacute;das al continente en el segundo viaje realizado por Crist&oacute;bal Col&oacute;n hacia 1493 (Beteta, 1999). </P >     <P   >El an&aacute;lisis de par&aacute;metros gen&eacute;ticos en las poblaciones de ganado criollo es  importante pues a partir de estos, es posible proponer pol&iacute;ticas de manejo de estos recursos. El objetivo principal en todos los programas de conservaci&oacute;n es mantener altos &iacute;ndices de diversidad gen&eacute;tica, evitando los cruces consangu&iacute;neos, de tal manera que par&aacute;metros tales como Fis y heterocigosidad son importantes para determinar los niveles de consanguinidad que dichas poblaciones puedan tener (FAO, 2003). </P >     <P   >La utilizaci&oacute;n de marcadores moleculares tipo microsat&eacute;lite para analizar par&aacute;metros de diversidad gen&eacute;tica, relaciones de parentesco, relaciones filogen&eacute;ticas e identificaciones forenses, ha sido ampliamente reportada en estudios de poblaciones, b&aacute;sicamente debido a su alto polimorfismo y reproducibilidad (Edin  y Meuwissen, 2001). </P >     <P   >Estudios de razas de ganado criollo a nivel mundial muestran que las razas con m&aacute;s alta heterocigosidad son las espa&ntilde;olas (Arranz <I>et &aacute;l</I>,1997), seguidas por las Africanas  y Asi&aacute;ticas  y las de menor  diversidad gen&eacute;tica las  inglesas y francesas (Machugh <I>et &aacute;l,</I> 1997, Moazami-Goudarzi <I>et &aacute;l</I>, 1997). De acuerdo a estudios  previos reportados para razas criollas colombianas (Moreno <I>et &aacute;l</I>, 1999, Bedoya <I>et &aacute;l,</I> 2001,  Sastre 2003y  Barrera <I>et &aacute;l</I>, 2006) la diversidad gen&eacute;tica de estas es relativamente alta  al igual que  las obtenidas para razas espa&ntilde;olas, argentinas y bolivianas (Liron <I>et &aacute;l, </I>2006), lo cual demuestra el buen manejo zoot&eacute;cnico que se le ha dado al ganado criollo colombiano. Sin embargo, en algunos de estos n&uacute;cleos de conservaci&oacute;n el tama&ntilde;o de la poblaci&oacute;n podr&iacute;a tener un efecto inmediato para la conservaci&oacute;n de las mismas. Este trabajo evalu&oacute; el polimorfismo en tres sistemas microsatelitales en cinco de siete razas criollas colombianas, y dos for&aacute;neas, Holstein y Ceb&uacute;. </P >     <p   >MATERIALES Y METODOS </p >     <P   > Se analizaron 105 individuos no emparentados,  pertenecientes a cinco razas de bovinos criollos Colombianos: BON, CAS, ROM, CCC, SM y dos razas externas comerciales Freisian Holstein y Brahman. Los n&uacute;cleos fueron derivados de los hatos de Corpoica e ICA y de la Hacienda Q-May (Departamento del Casanare). </P >      <p   >Extracci&oacute;n de ADN y Reacci&oacute;n de PCR </p >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >El ADN fue extra&iacute;do a partir de PBL  (<I>Pellet Bovine linfocites</I> - por sus siglas en ingl&eacute;s) seg&uacute;n el protocolo de Sambrook J, Fritsch EF, Maniatis T. (1989), o a partir de semen en pajillas congeladas en nitr&oacute;geno l&iacute;quido en el laboratorio de Reproducci&oacute;n Animal de Corpoica. El ADN se visualiz&oacute; bajo luz ultravioleta mediante geles de agarosa te&ntilde;idos con bromuro de etidio. La reacci&oacute;n de PCR fue realizada en un termociclador MJ Research &reg; utilizando entre 40 y 60 &micro;g de ADN para un volumen total final de 25 &micro;l. Los primers utilizados fueron cedidos por la Universidad de Texas y las secuencias se encuentran disponibles con los autores. Las concentraciones de MgCl2, al igual que el n&uacute;mero de ciclos y la temperatura de anillamiento fueron ajustadas para cada par de primers. Los primers fueron marcados en su extremo 5` con 6-Fam, Rox, o Hex.  Los productos de la amplificaci&oacute;n se visualizaron bajo luz UV en geles de agarosa al 2%. </P >     <p   >Genotipificaci&oacute;n </p >      <P   >Las muestras se corrieron por electroforesis capilar en un equipo ABI 310 junto con un marcador ROX (75 y 450 pb). La asignaci&oacute;n de alelos en pares de bases se realiz&oacute; con el programa GeneScan de Applied Biosystems &reg; </P >     <p   >An&aacute;lisis gen&eacute;ticos </p >     <P   > Las frecuencias de alelos se determinaron por conteo directo mediante MSA (Dieringer <I>et &aacute;l, </I>2002). El n&uacute;mero promedio de alelos por locus polimorfico yalelos &uacute;nicos por sistema fueron determinados utilizando el programa GDA (Lewis y Zaykin, 2001). Se estableci&oacute; el desequilibrio de Hardy-Weinberg por microsatelite y por raza. Se realizaron pruebas no par&aacute;metricas Mann y Witney (1947),  Kolmogorov (1933) y Smirnov (1939)  para muestras independientes con el fin de probar por pares la relaci&oacute;n que existe entre los valores observados y los modelos mutacionales de microsat&eacute;lites SMM (<I>Step-wise mutational model</I>) e IAM (<I>Infinite allele model</I>).  Se determinaron estas pruebas como las m&aacute;s convenientes ya que su an&aacute;loga param&eacute;trica (prueba t), requiere supuestos de normalidad que no fueron el caso en estos datos. Las mismas pruebas evaluaron posibles diferencias para heterocigosidades observadas por raza en sistemas individuales o en combinaciones de ellos. </P >     <P   >Se calcul&oacute; la heterocigosidad  gen&eacute;tica esperada (He), y el contenido de informaci&oacute;n polimorfica (PIC) utilizando el programa MSA, adem&aacute;s se calcul&oacute; el poder de exclusi&oacute;n a priori utilizando el programa  Cervus (Marshall, <I>et &aacute;l</I>, 1998), para cada uno de los marcadores. Mediante  el programa ADMIX v 2.0 (Dupanloup y Bertorelle, 2001) se estim&oacute; el porcentaje de mezcla de cada una de las razas criollas, con respecto a las razas Ceb&uacute; y Holstein, bajo el supuesto te&oacute;rico del aporte gen&eacute;tico de dos poblaciones ancestrales a una poblaci&oacute;n h&iacute;brida (criollos colombianos). </P >     <P   >Se calcularon las distancias gen&eacute;ticasde proporci&oacute;n de alelos compartidos (POSA), Nei 83 y Delta &micro;&#61472;(&part;&micro;)2, utilizando el programa MSA. Los dendrogramas fueron construidos mediante PAUP (Swofford, 1999). </P >     <p   >RESULTADOS </p >     <p   >Frecuencias al&eacute;licas y NPA </p >     <P   >Se detectaron 38 alelos en los tres sistemas microsatelitales estudiados con un promedio de 10.3 alelos por sistema valor cercano a los reportados por otros autores: Barrera <I>et &aacute;l</I>. 2006 (11.58), Moreno <I>et &aacute;l</I>. 2001 (8.9), Bedoya <I>et &aacute;l</I>. 2001 (8.8). No se encontr&oacute; una distribuci&oacute;n homog&eacute;nea de frecuencias en ninguna de las razas, y en cada una se presentaron alelos con frecuencias altas vs. alelos con frecuencias bajas. El n&uacute;mero promedio de alelos m&aacute;s alto fue para la raza ROM (7.3), considerando el total de los tres loci y el m&aacute;s bajo fue para CAS (4). </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >Para el sistema BMS 527, el alelo con mayor frecuencia en la poblaci&oacute;n corresponde al 176 con porcentajes superiores al 30%, excepto en SM con 5%. Considerando el n&uacute;mero total de alelos encontrados para este microsat&eacute;lite (12), las razas CAS y SM presentaron &uacute;nicamente 6 de ellos, mientras que ROM present&oacute; 11. Para este mismo sistema, se encontr&oacute; un alelo &uacute;nico para la raza BON (184) y se report&oacute; un alelo fuera del rango establecido para este sistema en las razas HOL y ROM (118). Se encontr&oacute; un alelo compartido (160) para las razas CEBU, ROM y CCC, mientras que tres alelos (170, 172 y 176) estaban presentes en todas las razas. </P >     <P   >Para el sistema BMS4440 se encontraron un total de 10 alelos, frente a 11 reportados. La raza con menor n&uacute;mero de alelos fue HOL con dos, y las razas con mayor n&uacute;mero de alelos fueron BON y ROM con cinco cada una. El alelo 122 est&aacute; presente en todas las razas con porcentajes superiores a 25%, excepto en SM con 5%. Para este sistema se encontraron alelos compartidos en CEBU y BON (alelo 140) mientras que para HOL y ROM el 126. Los alelos privados por raza son el 148 presente en BON, el 146 en ROM y el 134 en la raza CCC. </P >     <P   >Para el sistema  BMS2113 se encontraron 9 alelos de 11 reportados. La raza con mayor n&uacute;mero de alelos fue ROM que present&oacute; 6 alelos y la raza con menor fue BON con 1. Se presentaron alelos privados para ROM  (alelo 144) y CAS (con el alelo 138). </P >     <p   >Equilibrio de Hardy-Weinberg </p >     <P   >Al examinar todos los microsat&eacute;lites en conjunto entre razas, solo ROM present&oacute; una desviaci&oacute;n significativa del equilibrio de Hardy &ndash;Weinberg.  Cuando las razas fueron examinadas individualmente por marcador, se observaron desviaciones significativas (<a href="#tabla1">Tabla 1</a>). CAS fue la &uacute;nica raza que no present&oacute; desequilibrio en ninguno de los loci. </P >    <p>    <center><a name="tabla1"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a15t1.jpg"></center></p>     <p   >Modelos de Evoluci&oacute;n de microsat&eacute;lites </p >      <P   >La evaluaci&oacute;n de si existen diferencias significativas en el n&uacute;mero de alelos observados en cada sistema y el n&uacute;mero de alelos esperados bajo dos modelos de evoluci&oacute;n de microsat&eacute;lites (<I>stepwise</I> vs infinito) de acuerdo a las pruebas no param&eacute;tricas de Mann-Witney y Kolmogorov Smirnov para dos muestras independientes, mostraron que no existen diferencias significativas respecto al n&uacute;mero de alelos obtenidos y los esperados bajo los dos supuestos mutacionales (<a href="#tabla2">Tabla 2</a>). </P >    <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="tabla2"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a15t2.jpg"></center></p>     <p   >Heterocigosidades observadas por raza </p >     <P   >Las razas BON y SM presentaron heterocigosidades observadas (0.2388 y 0.3511 respectivamente) por debajo de las reportadas por Bedoya <I>et &aacute;l</I>. 2001 las cuales fueron de 0.67 y 0.73 respectivamente. Para todas las dem&aacute;s razas criollas se encontr&oacute; que la heterocigosidad observada tiene valores similares a aquellas reportadas por Bedoya <I>et &aacute;l</I>. (2001) con valores entre 0.2388 para BON y 0.7666 para CEBU. Tambi&eacute;n se observ&oacute; que los valores encontrados en este trabajo comparados con los de Bedoya <I>et &aacute;l</I>.(2001)y Sastre (2003) muestran valores similares para la herocigosidad de la raza CEBU y CAS (valores entre 0.6691 y 0.7666 paraCEBU y 0.5 y 0.7273 para CAS). </P >     <P   >Con el prop&oacute;sito de observar posibles diferencias en los c&aacute;lculos de heterocigosidad como resultado en la variaci&oacute;n en el n&uacute;mero de individuos y sistemas genotipificados, los an&aacute;lisis se hicieron por particiones como se muestra en la <a href="#tabla3">Tabla 3</a>. En &eacute;sta se incluyen los valores de heterocigosidad para las diferentes combinaciones consideradas para cada una de las razas de estudio. Las pruebas no param&eacute;tricas no muestran diferencias significativas para las comparaciones realizadas (p=0.01). </P >    <p>    <center><a name="tabla3"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a15t3.jpg"></center></p>     <P   >El poder de exclusi&oacute;n a priori calculado para cada uno de los microsat&eacute;lites, mostr&oacute; que el marcador con mayor poder de exclusi&oacute;n es el sistema BMS527, seguido de  BMS2113. (<a href="#tabla4">Tabla 4</a>). El poder de exclusi&oacute;n a priori para los tres marcadores en conjunto es de 0.9511. El contenido de informaci&oacute;n polimorfica es alto para el marcador BMS527 y el m&aacute;s bajo lo muestra el marcador BMS4440. Sin embargo, hay que tener en cuenta que el marcador BMS 527 se encuentra en desequilibrio de HW, por lo tanto estos valores hay que tomarlos con precauci&oacute;n. </P >    <p>    <center><a name="tabla4"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a15t4.jpg"></center></p>     <p   >Distancias Gen&eacute;ticas </p >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >La <a href="#fig1">Fig 1</a> muestra tres dendogramas obtenidos con las distancias POSA (proporci&oacute;n de alelos compartidos), Nei Standard que asume el modelo mutacional de IAM y Delta &micro; que asume un modelo mutacional SMM. A pesar de supuestos biol&oacute;gicos distintos, la topolog&iacute;a resultante es muy similar para las tres distancias analizadas. Las tres distancias utilizadas mostraron a Ceb&uacute; como la raza m&aacute;s alejada, con un &uacute;nico cluster que incluye a las cinco razas criollas y HOL. Adicionalmente el cluster (HOL-CAS-ROM) se mantuvo con las tres distancias analizadas aunque con arreglos distintos. </P >    <p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a15f1.jpg"></center></p>     <P   >Los coeficientes de mezcla que expresan el aporte gen&eacute;tico de las razas CEBU y HOL a las razas de ganado criollo colombiano, analizado mediante el par&aacute;metro My,  sugieren que la contribuci&oacute;n de la raza Ceb&uacute; a las razas colombianas est&aacute; entre 8 y 22%, y la de Holstein entre 76 y 88% (<a href="#tabla5">Tabla 5</a>), es decir los resultados sugieren que el aporte de la raza HOL en las razas colombianas es mayor al de CEBU. </P >    <p>    <center><a name="tabla5"></a><img src="img/revistas/abc/v15n1/v15n1a15t5.jpg"></center></p>     <p   >DISCUSI&Oacute;N </p >     <P   >Teniendo en cuenta individualmente los microsat&eacute;lites utilizados, dos (BMS527 y BMS4440) permitieron identificar en 100 y 90.9% respectivamente de los alelos reportados, mientras que BMS2113 report&oacute; el 81.8%. Por otra parte el n&uacute;mero promedio de alelos (NPA) teniendo en cuenta los tres sistemas estudiados fue de 10.3, superior a los reportados en comparaciones de otras razas que utilizan mayor n&uacute;mero de individuos y de sistemas. Por ejemplo, Machado <I>et &aacute;l.</I> (2003) reporta 7.11 alelos por locus utilizando tres razas brasile&ntilde;as y Holstein analizando nueve sistemas gen&eacute;ticos. En razas francesas dicho valor varia entre  6 y 7.7 (Moazami-Goudarzi <I>et &aacute;l,</I> 1997), en italianas es de 6.5 y 8 (Ciampolini <I>et &aacute;l</I>, 1995), en brit&aacute;nicas 3.4 y 3.8 (Machugh <I>et &aacute;l, </I>1997) y  en espa&ntilde;olas 9.95 (Arranz <I>et &aacute;l,</I>1997). Con respecto a las razas criollas colombianas, el NPA encontrado es superior al encontrado por Bedoya <I>et &aacute;l</I>. (2001) quienes reportan un NPA de 8.8 para cinco sistemas en siete razas criollas. Es importante anotar que los NPA son obtenidos de sistemas distintos y en n&uacute;mero de individuos y razas evaluadas variables. Bedoya <I>et &aacute;l</I>. 2001 utiliz&oacute; 199 individuos, ocho razas y cinco sistemas, &eacute;ste trabajo utiliza 105 individuos, siete razas y tres sistemas microsatelitales. Se observa que a diferencia del estudio de Bedoya <I>et &aacute;l</I>. 2001 &eacute;ste trabajo reporta el mayor n&uacute;mero promedio de alelos en la raza ROM (7.3 vs 3.75). El trabajo de Bedoya <I>et &aacute;l</I>. 2001  subestim&oacute; probablemente el verdadero NPA como resultado del bajo n&uacute;mero de individuos muestreados (5) vs 20 de este trabajo. Por otra parte y a pesar del bajo n&uacute;mero de individuos muestreados por Bedoya <I>et &aacute;l</I>. 2001  (4) para la raza CAS con respecto a los genotipicados en este trabajo (13), ambos reportan el menor NPA para las razas colombianas (3.0 y 4.0 respectivamente). </P >     <P   >Los alelos &uacute;nicos encontrados en este trabajo podr&iacute;an ser &uacute;tiles en un conjunto de marcadores espec&iacute;ficos para la identificaci&oacute;n de razas, en particular cuando se desea rastrear el origen de carne o en eventos de robo de ganado. Sin embargo, se requieren estudios de genotipos simulados para estimar la confiabilidad en la asignaci&oacute;n de razas con alelos &uacute;nicos en donde se deben probar distintas combinaciones de microsat&eacute;lites. Por ejemplo, Machugh<I>et &aacute;l.</I> (1998) reportagenotipos simulados para siete razas europeas con un m&aacute;ximo de 10 sistemas y un m&iacute;nimo de dos. En general, a mayor n&uacute;mero de microsat&eacute;lites utilizados, la designaci&oacute;n era m&aacute;s exitosa (entre 90 y 100%). Sorprendemente, Machughet &aacute;l (1998)  logr&oacute; la asignaci&oacute;n correcta con un &eacute;xito del 89% utilizando solamente dos microsat&eacute;lites y de 92% utilizando cuatro. En el primer caso uno de los sistemas utilizados corresponde a BMS2113 incluido  en este trabajo en donde &eacute;ste sistema demostr&oacute; ser eficiente en las pruebas de exclusi&oacute;n para paternidad. </P >     <P   >Cuando se analizaron razas individuales, se encontr&oacute; que varios sistemas aparec&iacute;an en desequilibrio de HW, particularmente para el primer sistema microsatelital (BMS527). Sin embargo, no parece ser el exceso de homocigotos el responsable del desequilibrio pues en general las heterocigosidades son altas junto con los valores de NPA. Es posible que fuerzas evolutivas como la deriva gen&eacute;tica, la selecci&oacute;n, la mutaci&oacute;n y la migraci&oacute;n pudieran estar rompiendo este equilibrio en las poblaciones de ganado criollo colombianas, en donde no se mantienen como poblaciones naturales sino en n&uacute;cleos de conservaci&oacute;n; dichas fuerzas evolutivas pueden estar jugando un papel importante en su acervo gen&eacute;tico. Por una parte, el efecto de la deriva gen&eacute;tica podr&iacute;a ser importante en estas poblaciones dado su tama&ntilde;o relativamente limitado, y por otra es posible que dentro del  ganado criollo existan alelos no neutros que representen una ventaja selectiva que contribuya a la divergencia de las poblaciones. Adicionalmente las mutaciones de baja frecuencia podr&iacute;an contribuir a la diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica dentro de las poblaciones, medible solamente despu&eacute;s de algunas generaciones. Finalmente, es importante aclarar, que el desequilibrio encontrado puede ser causado por  un deficiente muestreo (Taberlet <I>et &aacute;l</I>, 1996). </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >No es de extra&ntilde;ar que haya desequilibrio para algunos sistemas en razas de bovinos criollos colombianos si se compara con la literatura existente. Por ejemplo Steigleder<I>et &aacute;l.</I> (2004) en una evaluaci&oacute;n para diferentes razas de ganado criollo brasile&ntilde;o, utilizando 14 marcadores microsatelitales, mostraron que solo uno de los sistemas est&aacute; en equilibrio de HW; sin embargo no se encontraron evidencias que sugieran que este desequilibrio sea debido a endogamia o a subdivisi&oacute;n de la poblaci&oacute;n pues la heterocigosidad fue alta variando entre 0.51 y 0.89. En este caso, la atribuci&oacute;n del desequilibrio se explic&oacute; probablemente por error de muestreo. En otro estudio Pimentel de Melo <I>et &aacute;l</I> (2003) caracterizaron gen&eacute;ticamente el ganado Aberdeen Angus del Brasil usando fragmentos de restricci&oacute;n y cuatro microsat&eacute;lites. Se encontr&oacute; que solo uno de los microsat&eacute;lites estudiados (CSFM50) present&oacute; desviaci&oacute;n del equilibrio de HW, que los autores explican debido al uso intensivo de inseminaci&oacute;n artificial y transferencia de embriones. Mart&iacute;n-Burriel <I>et &aacute;l</I>. (1999) analizaron la diversidad gen&eacute;tica en seis razas nativas espa&ntilde;olas utilizando 30 microsat&eacute;lites, encontrando una de las razas estudiadas en desequilibrio de HW en cuatro de los 30 loci.  Este resultado junto  con la baja heterocigosidad podr&iacute;a  deberse al efecto Wahlund, en donde la raza de toros de lidia en Espa&ntilde;a se divide en peque&ntilde;as ganader&iacute;as, induciendo aislamiento reproductivo dentro de esta raza. Hansen <I>et &aacute;l. </I>(2002) al evaluar la diversidad gen&eacute;tica con 15 microsat&eacute;lites en razas de ganado de Canad&aacute;, y al compararlo con el ganado Pardo suizo, Holstein y Jersey de Canad&aacute;, encontraron la raza Holstein  en desequilibrio en varios de los microsat&eacute;lites utilizados por efectos probables de selecci&oacute;n. Machugh<I>et &aacute;l.</I> (1994) estudiaron la variabilidad gen&eacute;tica en ganado Europeo, encontrando que tres de doce microsat&eacute;lites presentaban  desequilibrio de HW; uno de ellos localizado dentro del gen de la prolactina (PRL). En este caso, el desequilibrio podr&iacute;a ser explicado por efectos de selecci&oacute;n para producci&oacute;n de leche dentro del ganado europeo. </P >     <P   >Cuando se compara la informaci&oacute;n de marcadores en individuos distintos existe el problema de contar el n&uacute;mero actual vs. el n&uacute;mero observado de diferencias mutacionales pues dos individuos pueden compartir un alelo por ancestr&iacute;a com&uacute;n o simple convergencia. Adicionalmente, cuando dos individuos difieren en por ejemplo dos repeticiones en la longitud de un marcador microsatelital, la pregunta que surge es si se trata de una o dos mutaciones.  Es decir, un conteo correcto es cr&iacute;tico, aunque la mayor&iacute;a de las mutaciones de los microsat&eacute;lites se asumea pasos &uacute;nicos. Un primer modelo mutacional, modelo de alelos infinitos (<I>Infinite allele model)</I>, asume que cada mutaci&oacute;n que surge es &uacute;nica y sugiere que un n&uacute;mero infinito de alelos es generado. As&iacute;, cada conteo es considerado como una nueva mutaci&oacute;n. Por el contrario, el modelo de pasos (<I>stepwise model</I>) considera los cambios en longitud, permitiendo un paso hacia arriba o hacia abajo por cada mutaci&oacute;n. En este trabajo, la evaluaci&oacute;n de los dos modelos de evoluci&oacute;n de microsat&eacute;lites no evidenci&oacute; que los datos se ajusten a uno m&aacute;s que a otro. Se presume una igual probabilidad para los eventos de deleci&oacute;n y adici&oacute;n, y existen evidencias basadas en la distribuci&oacute;n de los alelos y an&aacute;lisis de pedigr&iacute;es que muestran que la mayor&iacute;a de las mutaciones son compatibles con el modelo <I>stepwise</I>. </P >     <P   >Adicionalmente, muchos estudios han sugerido que las mutaciones tienen una tendencia hacia la expansi&oacute;n (Amos <I>et &aacute;l,</I> 1996), aunque la tendencia mutacional parece depender del tama&ntilde;o del microsat&eacute;lite. Dentro de un locus, los alelos m&aacute;s grandes tender&iacute;an a perder repeticiones y aquellos peque&ntilde;os tender&iacute;an a ganarlas, lo que podr&iacute;a ser un mecanismo para impedir que estas regiones del genoma se expandan de manera infinita a lo largo de la evoluci&oacute;n. Se requiere de estudios de pedigr&iacute;es de bovinos para determinar las frecuencias mutacionales de distintos microsat&eacute;lites, y determinar los mecanismos de generaci&oacute;n de nuevos alelos para predecir cual modelo mutacional est&aacute; operando en estas poblaciones. </P >     <P   >La presencia de un alelo de 118 pares de bases  en dos razas para el microsat&eacute;lite BMS527, que est&aacute; por fuera del rango esperado para &eacute;ste (165-187), permite presumir que se pudo haber originado por  uno o varios  eventos de deleci&oacute;n en el interior del mismo, puesto que el alelo nuevo es  mucho m&aacute;s peque&ntilde;o. Se ha reportado en la literatura que cerca del 15 % de las mutaciones en humanos son de uno o dos pasos (Brinkmann <I>et &aacute;l</I>, 1998), sin embargo Huang <I>et &aacute;l.</I> (2002) en un estudio realizado en 53 pedigr&iacute;es, encontr&oacute; que cerca del 63% son mutaciones m&uacute;ltiples, pudiendo ser hasta de cinco o m&aacute;s pasoslo cual podr&iacute;a explicar el alelo de tama&ntilde;o tan corto como el de  118 pares de bases encontrado en este trabajo. </P >     <P   >Con el prop&oacute;sito de comparar las heterocigosidades esperadas incluyendo microsat&eacute;lites individuales o combinaciones de los mismos, las pruebas de Mann-Witney-Wilcoxon revelaron que no hay diferencias significativas entre las heterocigosidades cuando se comparan todos los microsat&eacute;lites y las combinaciones de los mismos (p &lt;0.01). A pesar de las diferencias en el n&uacute;mero de individuos analizados por microsat&eacute;lite, los an&aacute;lisis demuestran que los sistemas permitieron identificar un alto porcentaje de los alelos reportados para cada sistema. </P >     <P   >La diferencia en las heterocigosidades con respecto al trabajo de Bedoya <I>et &aacute;l.</I> (2001) puede ser debida al mayor n&uacute;mero de individuos  y de microsat&eacute;lites, a la presencia de alelos nulos en los individuos analizados o a que los dos estudios utilizan sistemas microsatelitales diferentes. </P >     <P   >En cuanto a las heterocigosidades observadas,solamente dos razas (BON y SM) mostraron valores relativamente distintos a los reportados por Bedoya<I>et &aacute;l</I>,(2001). </P >     <P   >Esto probablemente se debe a que para estas dos razas se tipificaron muy pocos individuos en alguno de los sistemas (BON n=1 para BMS4440, que result&oacute; homocigoto). En el caso de las dem&aacute;s razas fue evidente que los valores reportados por Bedoya<I>et &aacute;l</I>, (2001) o Sastre (2003) quienes utilizaron un mayor n&uacute;mero de marcadores no difirieron de manera importante con respecto a los encontrados en este trabajo en el que se usaron tan solo tres sistemas. Esto sugiere que se pueden obtener datos informativos de una poblaci&oacute;n aun en el caso de emplear pocos sistemas microsatelitales, probablemente debido al poder discriminatorio de los mismos. </P >     <P   >De acuerdo con la historia, se sabe que las razas Espa&ntilde;olas que entraron primero al continente Americano, debido a que estaban asentadas en el puerto de C&aacute;diz, son las razasBerrenda, Retinta y Rubia Gallega (Beteta, 2000). Los primeros an&aacute;lisis bioqu&iacute;micos muestran similitudes entre estas razas  y las del ganado criollo colombiano (Hern&aacute;ndez, 1976 citado en Beteta, 2000).Estudios iniciales tanto de similitud de color como de an&aacute;lisis de polimorfismo bioqu&iacute;micos, muestran una clara ascendencia retinta para las razas colombianas ROM, CAS, CH y CCC. Puede evidenciarse una marcada cercan&iacute;a entre las razas CAS y ROM, a trav&eacute;s del an&aacute;lisis de dos de las tres distancias gen&eacute;ticas realizadas en este trabajo. Esta cercan&iacute;a podr&iacute;a ser explicada por el ancestro &uacute;nico, com&uacute;n de la raza retinta espa&ntilde;ola. Otras razas americanas como la criolla mexicana y la <I>Long Horn</I> de Estados Unidos, han mostrado tener ascendencia de las razas espa&ntilde;olas Berrenda y Retinta (Beteta, 2000). </P >     <P   >No hay un claro patr&oacute;n de diferenciaci&oacute;n entre razas lo cual es, probablemente, el resultado de la mezcla continuada llevada a cabo por d&eacute;cadas, entre razas criollas, y for&aacute;neas como la Ceb&uacute; y la Holstein. Los coeficientes de mezcla encontrados en este trabajo sugieren que el aporte gen&eacute;tico de la raza HOL fue mayor para todas las razas criollas que el de la raza CEBU. Similarmente, en un estudio realizado por Barrera <I>et &aacute;l</I>. (2006), no se encontraron haplotipos mitocondriales &uacute;nicos para <I>Bos indicus</I> en la raza CEBU, los hallados compart&iacute;an haplotipos de origen <I>Bos taurus</I>. </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >La raza que mostr&oacute; mayor mezcla con CEBU fue la SM, la primera es resistente a la sequ&iacute;a y puede buscar alimento en grandes extensiones, lo cual pudo ser de inter&eacute;s para los ganaderos de la zona quienes cruzaron CEBU con SM, procurando mejorar la resistencia de la raza criolla a las sequ&iacute;as y la adaptaci&oacute;n mediante la b&uacute;squeda de zonas de pastoreo en las grandes extensiones de los Llanos Orientales. </P >     <P   >Se sabe que el desarrollo de la raza SM se centr&oacute; en las sabanas secas de San Mart&iacute;n (Piedemonte Llanero del Departamento del Meta) y se les atribuye a los Jesuitas el inicio de la selecci&oacute;n fenot&iacute;pica de los ancestrales bovinos llaneros,a partir del siglo XVII. En 1950 para evitar la extinci&oacute;n de la raza por cruzamiento absorbente con toros CEBU, se estableci&oacute; un n&uacute;cleo en San Mart&iacute;n. Los coeficientes de mezcla encontrados en este trabajo, sugieren que el manejo del cruzamiento selectivo no ha sido suficiente para eliminar el componente CEBU de esta raza. </P >     <P   >El porcentaje de mezcla de la raza CCC con CEBU, encontrado en este trabajo tiene un valor del 18%.Los primeros reportes de ganado CEBU en Colombia, aunque no son muy claros, muestran que el ganado <I>Bos indicus </I>fue tra&iacute;do inicialmente a Colombia a comienzo del siglo XX (Asoceb&uacute;). Hacia el a&ntilde;o 1913, dos toros, uno Guzerat y el otro Nerole, fueron importados de la India, para una ganader&iacute;a de Zambrano, Bol&iacute;var y fueron mezclados con ganado de la costa, lo que podr&iacute;a explicar el porcentaje encontrado. Aunque en un momento de la historia se prohibi&oacute; la importaci&oacute;n de ganado proveniente de la India, debido a que se cre&iacute;a que era portador de enfermedades, ya hab&iacute;an transcurrido varias generaciones de cruces. Sin embargo, pocos a&ntilde;os despu&eacute;s se levant&oacute; la prohibici&oacute;n y continuaron entrando a Colombia ejemplares de Ceb&uacute;, provenientes principalmente de los Estados Unidos, los cuales se dispersaron a trav&eacute;s de la geograf&iacute;a colombiana y se mezclaron con las diferentes razas existentes aportando as&iacute; a su patrimonio gen&eacute;tico.Por otra parte, el bajo &iacute;ndice de mezcla encontrado entre la raza BON con CEBU, puede deberse a la poca adaptaci&oacute;n de esta &uacute;ltima a las condiciones geogr&aacute;ficas y clim&aacute;ticas de la zona andina en donde se asienta el ganado BON, por lo que no se dieron las condiciones para que los ganaderos incentivaran la mezcla. </P >     <p   >AGRADECIMIENTOS </p >     <P   >Los autores expresan su agradecimiento a la Universidad Nacional de Colombia, a Corpoica por las instalaciones, a Colciencias por la financiaci&oacute;n y a la Universidad de Texas por suministrar la secuencia de los cebadores y asesoria para la realizaci&oacute;n de este trabajo. </P >     <p   >BIBLIOGRAFIA </p >     <!-- ref --><P   > AMOS W, RUBENSTAIN DC. Microsatellites are subject to directional evolution. Nature Genetics<I>. </I>1996; 12: 13-14. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-548X201000010001500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >ARRANZ J, BAYON J, Y SAN PRIMITIVO F. Comparison ofprotein markers and microsatellites in differentiation of cattle populations.Animal Genetics. 1997;27:415-419. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-548X201000010001500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >BARRERA GP, MART&Iacute;NEZ R, P&Eacute;REZ JE, POLANCO N, ARIZA, F. Evaluaci&oacute;n de la variabilidad gen&eacute;tica en ganado criollo colombiano mediante 12 marcadores microsat&eacute;lites. Animal Genetics Resources Information. 2006;38: 35-45. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-548X201000010001500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >BEDOYA G, CARVAJAL L,BERM&Uacute;DEZ N, MORENO FL, M&Aacute;RQUEZ ME, <I>et &aacute;l</I>. Estructura molecular y poblacional del ganado criollo Colombiano (GCC). Rev.Co. Cienc.Pec. 2001; 14:2. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-548X201000010001500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >BETETA M. Llegada del vacuno  espa&ntilde;ol a Suram&eacute;rica. Anales de la Real Academia de Ciencias Veterinarias. 2000, 7(7): 99-116. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-548X201000010001500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >BRINKMANN B, KLINTSCHARM, NEUHUBERF, H&Uuml;HNE J, BURKHARDR. Mutation rates in microsatellites: Influence of the structure and length of the tandem repeat. American J Human Genetics.1998; 62: 1408-1415. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-548X201000010001500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >CIAMPOLINI R, MOAZAMI G, VAIMAN D, DILLMAN C, MAZZATI E. Individual multilocus genotypes using microsatellite polymorphisms to permit the analysis of the genetic variability within and between Italian beef cattle. Journal of Animal Science. 1995;73: 3259-3568. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-548X201000010001500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >DANE. Encuesta Nacional Agropecuaria. Resultados (Internet). 2001 Disponible en: <a href="http://www.dane.gov.co/daneweb_V09/#twoj_fragment1-3" target="_blank">http://www.dane.gov.co/daneweb_V09/#twoj_fragment1-3</a>. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-548X201000010001500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >DIERINGER D, SCHL&Ouml;TTERER C. Microsatellite analyzer (MSA): a plataform independent analysis tool for large microsatellite data sets. Molecular Ecology Notes .2003;3(1): 167-169. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-548X201000010001500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >DUPANLOUP I, BERTORELLE G. Inferring admixture proportions from molecular data: extension to any number of parental populations. Molecular Biology and Evolution. 2001; 18(4): 672-675. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-548X201000010001500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >EDIN H, MEUWISSEN TH. Marker-Based estimates of between and within population kinships for the conservation of genetic diversity. J Anim Breed Genet. 2001; 118(3) 141-159. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-548X201000010001500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >FAO. Food and Agricultural Organisation of the United Nations. Documento L&iacute;neas directrices- Caracterizaci&oacute;n, (MoDAD) (Internet). 2003. Disponible en: <a href="http://www.fao.org/dad-is/" target="_blank">http://www.fao.org/dad-is/</a> </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-548X201000010001500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >HANSEN C, SHRESTHA JNB, PARKERRJ, CROWGH, MCALPINE PJ, DERRJN. Genetic diversity among Canadians, Brown Swiss, Holstein and Jersey cattle of Canada based on 15 bovine microsatellite markers. 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Free program distributed by the authors over the Internet from <a href="http://hydrodictyon.eeb.uconn.edu/people/plewis/software.php" target="_blank">http://hydrodictyon.eeb.uconn.edu/people/plewis/software.php</a> </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-548X201000010001500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >LIRON JO, PERO-GARC&Iacute;A P, GIOVAMBATTISTA G. Genetic Characterization of Argentine and Bolivian Creole Cattle Breeds Assessed through Microsatellites. Journal of Heredity. 2006; 97 (4): 331-339. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-548X201000010001500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >MACHADO MA, SCHUSTER I, MART&Iacute;NEZ ML, CAMPOS AL. Genetic Diversity of four Cattle Breeds Using Microsatellite Markers. R. Bras. Zootec. 2003; 32: 93-98. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-548X201000010001500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >MACHUGH D, LOFTUS RT, BRADLEY D, SHARP PM, CUNNINGHAM P. Microsatellite DNA variation within and among European cattle breeds. 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Genetics structure of seven European cattle breeds assessed using 20 microsatellites markers. Animal Genetics. 1998; 29 (5): 333-340. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-548X201000010001500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >MANN HB Y WITNEYDR. On a test on whether one or two random variables is stochastically larger than the other. Annals of Mathematical statistics. 1947; 18: 50-60. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-548X201000010001500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >MARSHALL TC, SLATE J, KRUUK L, PEMBERTON JM. Statistical confidence for likelihood-based paternity inference in natural populations. Molecular Ecology. 1998; 7: 639-65. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-548X201000010001500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >MART&Iacute;N-BURRIEL I, GARC&Iacute;A-MURO E, ZARAGOZA P. Genetic diversity analysis of six Spanish native cattle breeds using microsatellites. Animal Genetics. 1999; 30: 177-182. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-548X201000010001500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >MOAZAMI-GOUDARZIK, DLALOE, FURET JP, GROSCLAUDE F. Analysis of genetic relationships between 10 cattle breeds witp7 microsatellites. Animal Genetics. 1997; 338-345. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-548X201000010001500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >MORENO FL, DAVIES S, ESTRADA JL, M&Aacute;RQUEZ ME, CARVAJAL LG, <I>et &aacute;l</I>. Estudio Gen&eacute;tico Molecular de Ganado Criollo Colombiano. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias. Colombia. 1999;12: 255-255. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-548X201000010001500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >MORENO F, BEDOYA G, DERR J N, CARVAJAL LG, BERM&Uacute;DEZ N, ZULUAGA FN, <I>et al. </I>Diversidad y relaciones filogen&eacute;ticas del ganado criollo colombiano. Rev Corpoica. 2001;3(2):17-25. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-548X201000010001500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >PIMENTEL DE MELLO L, TAMBASCO-TALHARID, LEHMANN COUTINHO AL, DE ALMEIDA REGITANO LC. Genetic characterization of Aberdeen Angus cattle using molecular markers. Genetics and Molecular Biology.2003;26:2:33-137. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-548X201000010001500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >SAMBROOK J, FRITSCH EF, MANIATIS T. Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 2nd edn. Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York. 1989. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-548X201000010001500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >SASTRE HJ. Ganado criollo Casanare&ntilde;o, patrimonio gen&eacute;tico bovino de la Orinoqu&iacute;a Colombiana. Descripci&oacute;n etnol&oacute;gica y estrategias para su rescate y conservaci&oacute;n. (Tesis de doctorado). Facultad de Veterinaria. Universidad de C&oacute;rdoba, Espa&ntilde;a.2003. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-548X201000010001500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >SMIRNOV NV.  Estimate of deviation between empirical distributions functions in two independent samples (In Russian). Bulletin Moscow University.1939; 2: 3-16. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-548X201000010001500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > STEIGLEDER CS, ALMEIDA EA, WEIMER TA. Genetics Diversity of Brazilian creole cattle based on fourteen microsatellite loci. Arch. Zootec. 2004; 53:3-11. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-548X201000010001500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >SWOFFORD DL. PAUP* Phylogenetic Analyses Using Parsimony,and other methods. Sinauer Associates, Sunderland, MA. 1999. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-548X201000010001500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > TABERLET P, GRIFFINS,  GOOSEEN SB, QUESTIAU S, MANCEAU V, <I>et &aacute;l</I>. Reliable genotyping of samples with very low DNA quantities using PCR. Nucleic Acids Research. 1996; 26: 3189-3194. </P ></font>     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-548X201000010001500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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