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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[DEFENSINAS DE PLANTAS Y SU USO POTENCIAL COMO CONTROLADORES DE PLAGAS EN LA AGRICULTURA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[ABSTRACT Plants, as all organisms in nature, have elaborate systems of defense against pathogens; which can be physical or chemical and produced in a constitutive and induced way. Among the induced chemical barriers, there is a group of low molecular weight proteins, known as antimicrobial peptides (AMPs). These peptides include defensins, which are peptides with a molecular weight about 5 to 7 kDa, isoelectric point of 9, and length of about 45 to 55 amino acids. Likewise, they have the ability to avoid the growth of phytopathogenic microorganisms, mainly funguses. Moreover, these peptides create resistance to abiotic conditions of stress in plants. This manuscript seeks to make a clear and current description about the recent characteristics and researches related to plant defensins and their most significant uses in pathogens management in crops of economical relevance. It also intends to go deep into the study of such proteins in order to use them as a control strategy, such as production of transgenic plants and microorganisms.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <P align="center"><font size="4">DEFENSINAS DE PLANTAS Y SU USO POTENCIAL COMO CONTROLADORES DE PLAGAS EN LA AGRICULTURA</font> </P >      <p align="center"    >Plant Defensins and Their Potential Use as Pest Control in Agriculture </p >     <P   >ADRIANA CAROLINA ROJAS ARIAS<Sup>1</Sup>, HUMBERTO MIGUEL ZAMORA ESPITIA<Sup>1</Sup></P>      <p><sup> 1</Sup>Grupo de investigaci&oacute;n en bioqu&iacute;mica fitopatol&oacute;gica y evoluci&oacute;n molecular, Departamento de Qu&iacute;mica, Universidad Nacional de Colombia - Sede Bogot&aacute;. Carera 30 # 45-03, Ciudad Universitaria, edificio 451, laboratorio 318. Bogot&aacute; D.C., Colombia. <a href="mailto:acrojasa@unal.edu.co">acrojasa@unal.edu.co</a> </P >     <P   >Presentado 11 de agosto de 2009, aceptado 25 de noviembre de 2009, correcciones 25 de noviembre de 2009. </P ><hr size="1">     <p    >RESUMEN </p >     <P   >Las plantas, al igual que todos los organismos de la naturaleza, poseen elaborados sistemas de defensa contra pat&oacute;genos, que pueden ser f&iacute;sicos y qu&iacute;micos, y producirse de forma constitutiva e inducida. Dentro de las barreras qu&iacute;micas inducidas se encuentra el grupo de prote&iacute;nas de bajo peso molecular denominadas p&eacute;ptidos antimicrobianos (AMPs), al cual pertenecen las defensinas, p&eacute;ptidos con peso molecular entre 5 a 7 kDa, punto isoel&eacute;ctrico de 9, y longitud de 45 a 55 amino&aacute;cidos; que tienen la capacidad de inhibir efectivamente el crecimiento de microorganismos fitopat&oacute;genos, en su mayor&iacute;a hongos, y adem&aacute;s, generan resistencia a condiciones abi&oacute;ticas de estr&eacute;s en plantas. Este texto pretende realizar una descripci&oacute;n clara y actual de las caracter&iacute;sticas e investigaciones recientes con relaci&oacute;n a las defensinas de plantas y sus m&aacute;s destacados usos en el control de pat&oacute;genos en cultivos de importancia econ&oacute;mica. Se plantea adem&aacute;s la necesidad de profundizar en el conocimiento de dichas prote&iacute;nas para su uso en estrategias de control tales como la producci&oacute;n de plantas y microorganismos transg&eacute;nicos. </P >     <P   >Palabras clave: defensinas de plantas, p&eacute;ptidos antimicrobianos, resistencia a fitopat&oacute;genos, transg&eacute;nicos. </P ><hr size="1">     <p    >ABSTRACT </p >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >Plants, as all organisms in nature, have elaborate systems of defense against pathogens; which can be physical or chemical and produced in a constitutive and induced way. Among the induced chemical barriers, there is a group of low molecular weight proteins, known as antimicrobial peptides (AMPs). These peptides include defensins, which are peptides with a molecular weight about 5 to 7 kDa, isoelectric point of 9, and length of about 45 to 55 amino acids. Likewise, they have the ability to avoid the growth of phytopathogenic microorganisms, mainly funguses. Moreover, these peptides create resistance to abiotic conditions of stress in plants. This manuscript seeks to make a clear and current description about the recent characteristics and researches related to plant defensins and their most significant uses in pathogens management in crops of economical relevance. It also intends to go deep into the study of such proteins in order to use them as a control strategy, such as production of transgenic plants and microorganisms. </P >     <P   >Key words: plant defensins, antimicrobial peptides, plant resistance, transgenic. </P ><hr size="1">     <p    >INTRODUCCI&Oacute;N </p >     <P   >Todos los organismos vivos, desde los microorganismos hasta las plantas y los animales, tienen mecanismos que les son &uacute;tiles para defenderse contra el ataque de pat&oacute;genos, con los cuales han coevolucionado. Los mecanismos m&aacute;s sofisticados de defensa consisten en la producci&oacute;n de anticuerpos y c&eacute;lulas asesinas naturales, que reconocen y eliminan invasores espec&iacute;ficos respectivamente, y que componen la denominada inmunidad adaptativa, exclusiva de los vertebrados superiores (Thomma <I>et al.</I>, 2002). Por otra parte, existe la inmunidad innata, mucho m&aacute;s antigua y distribuida entre los organismos que, a diferencia de la inmunidad adaptativa, carece de la especificidad de reconocimiento de ant&iacute;genos, pero es capaz de exhibir actividad diferencial contra diferentes tipos de invasores y es el principal sistema de defensa encontrado en las plantas (Tavares <I>et al.</I>, 2008). </P >     <P   >Las plantas emplean complejos sistemas de defensa f&iacute;sicos y qu&iacute;micos para resistir o evadir los ataques de pat&oacute;genos. Estos sistemas de defensa se pueden clasificar, de acuerdo al momento de su expresi&oacute;n, en constitutivos, si est&aacute;n presentes durante todo el ciclo de vida de la planta; e inducidos, si su expresi&oacute;n se evidencia en mayor proporci&oacute;n ante la presencia de un pat&oacute;geno (Sels <I>et al.</I>, 2008). A su vez, estas barreras pueden ser f&iacute;sicas o qu&iacute;micas (Chehab <I>et al.</I>, 2008). Dentro de las barreras constitutivas f&iacute;sicas se encuentran la cut&iacute;cula, dep&oacute;sitos de lignina, tricomas y pared celular secundaria entre otros; y como ejemplo de barrera constitutiva qu&iacute;mica podemos citar sustancias t&oacute;xicas tales como las fitoanticipinas (Pedras, 2008; Sels <I>et al.</I>, 2008). En conjunto, estas estrategias constitutivas, tambi&eacute;n denominadas preformadas, componen la primera l&iacute;nea de defensa de la planta y pueden prevenir eficientemente la invasi&oacute;n de muchos microorganismos (Sels <I>et al.</I>, 2008; Tavares <I>et al.</I>, 2008). </P >     <P   >Sin embargo, esta primera barrera resulta insuficiente contra ciertos pat&oacute;genos de mayor agresividad, contra los cuales la planta exhibe defensas inducidas, que funcionan por medio de mecanismos directos, como la producci&oacute;n de prote&iacute;nas catab&oacute;licas o antidigestivas y qu&iacute;micos t&oacute;xicos o repelentes; y mecanismos indirectos a trav&eacute;s de la producci&oacute;n y liberaci&oacute;n de compuestos org&aacute;nicos vol&aacute;tiles para se&ntilde;alizar a los enemigos naturales del fitopat&oacute;geno que su presa se encuentra cerca (Chehab <I>et al.</I>, 2008). Algunos de estos son: la producci&oacute;n de especies ox&iacute;geno reactivas (ROS) como respuesta de hipersensibilidad que inducen la apoptosis en las c&eacute;lulas infectadas, &oacute;xido n&iacute;trico, reforzamiento de la pared celular, la acumulaci&oacute;n de fitoalexinas, taninos y compuestos fen&oacute;licos, se&ntilde;alizaci&oacute;n por &aacute;cido salic&iacute;lico y &aacute;cido jasm&oacute;nico, acumulaci&oacute;n de fitohormonas y la producci&oacute;n de las denominadas prote&iacute;nas relacionadas con patog&eacute;nesis (PR) (Chehab <I>et al.</I>, 2008; De Paula <I>et al.</I>, 2008; Odintsova <I>et al.</I>, 2008; Sels <I>et al.</I>, 2008; Tavares <I>et al.</I>, 2008). </P >     <P   >Se ha encontrado que las prote&iacute;nas PR se expresan en mayor proporci&oacute;n en tejidos vegetales parasitados con respecto a los sanos y que sus pesos oscilan entre 5 a 75 kDa. As&iacute;, las de pesos inferiores a 10 kDa se denominan p&eacute;ptidos PR, tambi&eacute;n conocidos como p&eacute;ptidos antimicrobianos (AMPs, por el t&eacute;rmino <I>ingl&eacute;s antimicrobial peptides</I>). Los AMPs son componentes de la inmunidad innata y una estrategia de defensa ampliamente usada, no solo por plantas, sino tambi&eacute;n por muchos otros organismos (De Oliveira y Moreira, 2009; Thevissen <I>et al.</I>, 2004; Thomma <I>et al.</I>, 2002). Se han descrito defensinas en hongos (Zhu, 2008; Mygind <I>et al.</I>, 2005), bacterias (Gao <I>et al.</I>, 2009; Zhu, 2007), moluscos (Gonz&aacute;lez <I>et al.</I>, 2007; Zhao <I>et al.</I>, 2007), artr&oacute;podos (Neira <I>et al.</I>, 2009; Saito <I>et al.</I>, 2009; Waniek <I>et al.</I>, 2009; Yamage <I>et al.</I>, 2009), nem&aacute;todos (Minaba <I>et al.</I>, 2009), peces (Casadei <I>et al. </I>2009; Falco <I>et al.</I>, 2008), aves (Kannan <I>et al.</I>, 2009; Soman <I>et al.</I>, 2009), reptiles (Stegemann <I>et al.</I>, 2009; Chattopadhyay <I>et al.</I>, 2006) y mam&iacute;feros (incluyendo al humano) (Chen <I>et al.</I>, 2010; Droin <I>et al.</I>, 2009; Sang y Blecha, 2009; Looft <I>et al.</I>, 2006) entre otros.</P >     <P   > Los AMPs no reconocen ant&iacute;genos espec&iacute;ficos, pero como ventaja, son producidos simplemente por la transcripci&oacute;n y traducci&oacute;n de un gen, se liberan relativamente r&aacute;pido luego de la infecci&oacute;n con un gasto reducido de energ&iacute;a y biomasa (Thomma <I>et al.</I>, 2002). Hacen parte de este grupo de prote&iacute;nas las beta-1,3-glucanasas, quitinasas, endoproteasas, peroxidasas, oxalato oxidasas, transferasas de l&iacute;pidos, tioninas y defensinas, entre otras (De Paula <I>et al.</I>, 2008; Sels <I>et al.</I>, 2008). En este documento se destacar&aacute; la importancia de las defensinas como un elemento importante en la resistencia vegetal a pat&oacute;genos. </P >     <p   >CARACTER&Iacute;STICAS GENERALES DE LAS DEFENSINAS DE PLANTAS </p >     <P   >Las defensinas pertenecen a una amplia familia de AMPs, y se descubrieron inicialmente en los macr&oacute;fagos y granulocitos de conejos, seguido de su identificaci&oacute;n en moscas. Son mol&eacute;culas muy comunes en la naturaleza, con una sorprendente conservaci&oacute;n estructural y funcional entre especies (De Oliveira y Moreira, 2009; Thevissen <I>et al.</I>, 2004; Thomma <I>et al.</I>, 2002). Tal es la cantidad y diversidad de este tipo de prote&iacute;nas que llev&oacute; a que Seebah <I>et al.</I>, 2007, desarrollaran una base de datos de defensinas (<I>Defensins Knowledgebase: </I><a href="http://defensins.bii.a-star.edu.sg/" target="_blank">http://defensins.bii.a-star.edu.sg/</a>) que incluye secuencias de prote&iacute;na y ADN, literatura, estudios aplicados y patentes, entre otros, descritos en una gran cantidad de organismos, con enlaces a los recursos relacionados en otros sitios como el <I>National Center for Biotechnology Information </I>(NCBI), <I>Protein Data Bank </I>(PDB) o <I>Swiss Prot</I>. En plantas, las defensinas se describieron inicialmente en semillas de trigo y cebada, y se clasificaron err&oacute;neamente como un subgrupo de las tioninas (gammationinas), debido a que estas dos clases de p&eacute;ptidos (defensinas y tioninas) comparten las caracter&iacute;sticas de tama&ntilde;o molecular (5 kDa), secuencia de amino&aacute;cidos y n&uacute;mero de ciste&iacute;nas que contienen (ocho); pero estudios posteriores las reclasificaron como un grupo separado, basados en su conformaci&oacute;n estructural, muy similar a defensinas descritas anteriormente en mam&iacute;feros e insectos, estabilizada por cuatro puentes disulfuro, nombradas tambi&eacute;n como familia de prote&iacute;nas PR-12 (De Oliveira y Moreira, 2009; Odintsova <I>et al.</I>, 2008; Sels <I>et al.</I>, 2008; Thomma <I>et al.</I>, 2002). </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >Se han identificado defensinas vegetales a partir de diferentes tejidos (semillas, tallo, ra&iacute;ces, hojas y flores) de plantas como el r&aacute;bano (<I>Raphanus sativus</I>), Dalia (<I>Dahlia merckii</I>), tabaco (<I>Nicotiana tabacum</I>), arabidopsis (<I>Arabidopsis thaliana</I>), ca&ntilde;a de az&uacute;car (<I>Saccharum officinarum</I>), ma&iacute;z (<I>Zea mays</I>), sorgo (<I>Sorghum vulgare</I>), entre otras (De Paula <I>et al.</I>, 2008; Sels <I>et al.</I>, 2008; Swathi <I>et al.</I>, 2008). M&aacute;s de 300 secuencias tipo defensina han sido identificadas en los genomas de <I>A. thaliana </I>y <I>Mendicago truncatula</I>, mientras que en arroz solo se han identificado 92; el <I>Institute for Genomic Research </I>identific&oacute; 1.100 genes de defensinas en 26 especies de plantas, lo que indica la necesidad de la redundancia para proteger a la planta contra una gran cantidad de pat&oacute;genos (Graham <I>et al.</I>, 2008; Odintsova <I>et al.</I>, 2008). </P >     <P   >Los primeros aislamientos de defensinas de plantas se hicieron a partir de extractos de semillas de trigo y r&aacute;bano y posterior purificaci&oacute;n utilizando cromatograf&iacute;a (Sels <I>et al.</I>, 2008). En r&aacute;bano, por ejemplo, las defensinas representan el 0,5% del total de prote&iacute;nas de la semilla y el 30% de prote&iacute;nas liberadas luego de generar lesiones mec&aacute;nicamente, produciendo aproximadamente 1 &micro;g, cantidad suficiente para inhibir el crecimiento de hongos. As&iacute;, las defensinas contribuyen a la protecci&oacute;n de las semillas y embriones contra el ataque de pat&oacute;genos ed&aacute;ficos, incrementando su probabilidad de germinaci&oacute;n y supervivencia (De Oliveira y Moreira, 2009; Thomma <I>et al.</I>, 2002). En tejidos vegetativos, como el tallo, hojas, flores, frutos, etc., igualmente se ha evidenciado la expresi&oacute;n de AMPs, inducidos tras el ataque de un microorganismo pat&oacute;geno, y adem&aacute;s, algunos de forma constitutiva en bajas concentraciones, con una alta efectividad en el control de enfermedades vegetales infecciosas (De Oliveira y Moreira, 2009; Thomma <I>et al.</I>, 2002). La expresi&oacute;n de las defensinas en las plantas es, en algunos casos, espec&iacute;fica en cada tejido con variaci&oacute;n en los niveles de producci&oacute;n (Vijayan <I>et al.</I>, 2008). </P >     <P   >Para detectar las defensinas en tejidos vegetales se han empleado t&eacute;cnicas como inmunofluorescencia (Van Der Weerden <I>et al.</I>, 2008; Lobo <I>et al.</I>, 2007), cromatograf&iacute;as de exclusi&oacute;n por tama&ntilde;o seguida de intercambio i&oacute;nico sobre extractos vegetales (Kovaleva <I>et al.</I>, 2009; Odintsova <I>et al.</I>, 2008, Ria&ntilde;o y Zamora, 2005) aprovechando su bajo peso molecular y carga neta positiva, caracterizaci&oacute;n molecular por espectrometr&iacute;a de masas MALDI-TOF y Q-TOF (Kovaleva <I>et al.</I>, 2009; De Paula <I>et al.</I>, 2008; Odintsova <I>et al.</I>, 2008). Por otra parte, cuando lo que se desea descubrir son las secuencias codificantes de defensinas, las estrategias m&aacute;s empleadas por los investigadores del tema han sido: Northern y Southern blot (Van Den Heuvel <I>et al.</I>, 2001), screening de librer&iacute;as de cADN (Kovaleva <I>et al.</I>, 2009; Van Den Heuvel <I>et al.</I>, 2001) y la t&eacute;cnica de RT - PCR (transcripci&oacute;n reversa) seguido de clonaci&oacute;n, secuenciaci&oacute;n y expresi&oacute;n de los insertos (De Paula <I>et al.</I>, 2008; Solis <I>et al.</I>, 2007).</P >     <P   > Todos los genes de defensinas en las plantas tienen en com&uacute;n que codifican un polip&eacute;ptido que puede ser dividido en dos partes: un p&eacute;ptido se&ntilde;al amino terminal que dirige el p&eacute;ptido al espacio extracelular; y un segundo dominio que codifica el p&eacute;ptido maduro. Algunas defensinas de plantas con flores exhiben adem&aacute;s un dominio carboxiterminal (De Oliveira y Moreira, 2009; Aerts <I>et al.</I>, 2008). En la secuencia de ADN codificante de una defensina, generalmente entre la regi&oacute;n del p&eacute;ptido se&ntilde;al y la de defensina activa se encuentra un intr&oacute;n (Graham <I>et al.</I>, 2008). En el genoma vegetal, los genes tipo defensina suelen presentarse de forma individual o formando grupos (<I>clusters</I>) de aproximadamente 2 a 14 genes, en regiones de 100 kb, lo que puede evidenciar que se producen duplicaciones de los genes dentro del mismo cluster (Graham <I>et al.</I>, 2008). Su evoluci&oacute;n se ha dado por procesos de recombinaci&oacute;n heter&oacute;loga, duplicaci&oacute;n y selecci&oacute;n (Graham <I>et al.</I>, 2008). </P >     <P   >El p&eacute;ptido se&ntilde;al N-terminal generalmente es &aacute;cido, y dentro de sus funciones, adem&aacute;s de dirigir el p&eacute;ptido para su secreci&oacute;n, se encuentra el mitigar el efecto biol&oacute;gico de la defensina madura hasta cuando es necesario (De Oliveira y Moreira, 2009). El p&eacute;ptido maduro de las defensinas de plantas es b&aacute;sico, con un punto isoel&eacute;ctrico de 9 aproximadamente, su longitud comprende entre 45-55 residuos de amino&aacute;cidos, resultando en una mol&eacute;cula peque&ntilde;a con masa de 5 a 7 kDa. Tiene ocho residuos de ciste&iacute;na estrictamente conservados, involucrados en la formaci&oacute;n de cuatro puentes disulfuro, responsables de la estabilizaci&oacute;n de la estructura tridimensional del p&eacute;ptido, con un motivo estructural de alfa h&eacute;lice-beta l&aacute;mina estabilizado por ciste&iacute;na (CS &alpha;&beta;), el cual ha sido documentado para diferentes p&eacute;ptidos con actividad antimicrobiana como las defensinas de insectos y toxinas de escorpiones y ara&ntilde;as (De Oliveira y Moreira, 2009; Graham <I>et al.</I>, 2008; Jha <I>et al.</I>, 2009; De Paula <I>et al.</I>, 2008; Swathi <I>et al.</I>, 2008; Tavares <I>et al.</I>, 2008; Thevissen <I>et al.</I>, 2004; Thomma <I>et al.</I>, 2002). El dominio C-terminal, presente en algunas defensinas de flores, generalmente es &aacute;cido e hidrof&oacute;bico y tiene una longitud de 27-33 amino&aacute;cidos. Su funci&oacute;n a&uacute;n no es clara, pero su carga negativa neutraliza la carga del dominio defensina, lo que sugiere que bloquea su actividad t&oacute;xica durante el transporte celular y tambi&eacute;n contribuye en la se&ntilde;alizaci&oacute;n del p&eacute;ptido hacia la vacuola (De Oliveira y Moreira, 2009; Tavares <I>et al.</I>, 2008) </P >     <P   >Entre especies vegetales se observa una gran diversidad de secuencia de amino&aacute;cidos en las defensinas (a excepci&oacute;n de las ocho ciste&iacute;nas y el dominio p&eacute;ptido se&ntilde;al) (Graham <I>et al.</I>, 2008). Esta caracter&iacute;stica es una consecuencia probable del hecho que los AMPs son mol&eacute;culas que han evolucionado r&aacute;pidamente como necesidad de supervivencia ante la competici&oacute;n y especializaci&oacute;n de los pat&oacute;genos y la co-evoluci&oacute;n de hu&eacute;spedes y pat&oacute;genos (De Oliveira y Moreira, 2009). Varias estructuras terciarias experimentales, obtenidas por resonancia magn&eacute;tica nuclear o cristalograf&iacute;a de rayos x, de defensinas han sido descritas y almacenadas en la base de datos de prote&iacute;nas PDB (<a href="http://www.rcsb.org" target="_blank">www.rcsb.org</a>) presentando un modelo general conservado. Por ejemplo, el an&aacute;lisis de la estructura tridimensional, de la defensina Rs-AFP1 de <I>R. sativus</I>, ha permitido determinar que las defensinas de plantas tienen una distribuci&oacute;n globular compacta conformada por tres beta l&aacute;minas antiparalelas y una alfa h&eacute;lice, sostenidas por cuatro puentes disulfuro que enlazan la alfa h&eacute;lice y la beta l&aacute;mina 3 (<a href="#fig1">Fig. 1</a>) (De Oliveira y Moreira, 2009; Thomma <I>et al.</I>, 2002). </P >    <p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a3f1.jpg"></center>     <p   >ACTIVIDAD BIOL&Oacute;GICA </p >     <P   >En vegetales las defensinas est&aacute;n implicadas en la respuesta a estr&eacute;s abi&oacute;tico (por condiciones dif&iacute;ciles f&iacute;sicas o qu&iacute;micas del entorno) y bi&oacute;tico (tales como los que generan los hongos o las bacterias) (Graham <I>et al.</I>, 2008). Su actividad biol&oacute;gica va desde la inhibici&oacute;n de proteasas y amilasas, bloqueo de canales i&oacute;nicos e inhibici&oacute;n de la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas, hasta efectos citot&oacute;xicos sobre c&eacute;lulas vegetales y animales (Graham <I>et al.</I>, 2008; Odintsova <I>et al.</I>, 2008). Pueden inhibir el crecimiento de un amplio rango de microorganismos e insectos fitopat&oacute;genos, incluso han mostrado actividad antibi&oacute;tica sobre pat&oacute;genos humanos como <I>Candida albicans </I>y <I>Aspergillus </I>sp., lo que las hace buenas candidatas para su uso terap&eacute;utico (Graham <I>et al.</I>, 2008; Swathi <I>et al.</I>, 2008). </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >La primera actividad biol&oacute;gica reportada para las defensinas de plantas fue su habilidad para inhibir la traducci&oacute;n de prote&iacute;nas en un sistema extracelular, probablemente por fosforilaci&oacute;n de la subunidad alfa del factor 2 de iniciaci&oacute;n de cadena polipept&iacute;dica eucariota (eIF-2&alpha;) por activaci&oacute;n de la IF-2&alpha; quinasa, lo que interfiere en el correcto procesamiento del sistema de traducci&oacute;n en los pasos de iniciaci&oacute;n y elongaci&oacute;n (De Oliveira y Moreira, 2009). Se ha descrito que tienen actividad inhibidora de alfa-amilasas de insectos y mam&iacute;feros, lo que interfiere en la digesti&oacute;n de animales herb&iacute;voros, impidiendo la obtenci&oacute;n de energ&iacute;a derivada de la degradaci&oacute;n del almid&oacute;n y por consiguiente, generando disminuci&oacute;n en el crecimiento del individuo que consume la planta (De Oliveira y Moreira, 2009; Graham <I>et al.</I>, 2008; Odintsova <I>et al.</I>, 2008; Thomma <I>et al.</I>, 2002). Se ha propuesto que esta inhibici&oacute;n se debe al bloqueo del sitio activo de la alfa-amilasa por parte de alguno de los bucles (<I>loops</I>) de la defensina (De Oliveira y Moreira, 2009). Estos p&eacute;ptidos tambi&eacute;n inhiben proteasas con los mismos fines, aunque la forma exacta de inhibici&oacute;n a&uacute;n es incierta (De Oliveira y Moreira, 2009; Odintsova <I>et al.</I>, 2008). </P >     <P   >En cuanto a la actividad antimicrobiana de las defensinas, descrita desde 1990, se ha observado que principalmente se dirige a la inhibici&oacute;n de hongos, aunque esto tambi&eacute;n se ha descrito para bacterias grampositivas en menor proporci&oacute;n y con poca informaci&oacute;n respecto al modo de acci&oacute;n (Marqu&egrave;s <I>et al.</I>, 2009); sin embargo se especula que tiene relaci&oacute;n con la interacci&oacute;n de las defensinas, de carga positiva, con mol&eacute;culas de carga negativa en las membranas bacterianas, tales como el &aacute;cido teicoico, lipopolisac&aacute;ridos o fosfol&iacute;pidos (De Oliveira y Moreira, 2009; Odintsova <I>et al.</I>, 2008; Thomma <I>et al.</I>, 2002). El efecto m&aacute;s destacado de la actividad antimicrobiana de las defensinas es la inhibici&oacute;n del crecimiento en hongos filamentosos y levaduras (Aerts <I>et al.</I>, 2008; Sels <I>et al.</I>, 2008). Se ha observado que las defensinas son activas en hongos fitopat&oacute;genos como <I>Botrytis cinerea, Alternaria brassicola, A. longipes, Fusarium culmorum, Verticillium dahliae, Rhizoctonia solani, Neurospora crassa, Magnaporthe oryzae </I>y levaduras como <I>C. albicans </I>(Jha <I>et al.</I>, 2009; Sels <I>et al.</I>, 2008). En hongos, se han reportado valores de concentraci&oacute;n letal 50 (CL50) de defensinas en rangos muy variados, entre 1,5 a 500 &#65533;g/ml. Morfol&oacute;gicamente, las defensinas de plantas generan dos tipos de distorsiones sobre las hifas, lo que las clasifica en dos grupos: las defensinas morfog&eacute;nicas, que reducen la tasa de elongaci&oacute;n de la hifa y generan distorsiones morfol&oacute;gicas significativas, que incluyen incremento en las ramificaciones e inflamaci&oacute;n; y las defensinas no morfog&eacute;nicas, que a diferencia de las anteriores, reducen la tasa de elongaci&oacute;n de la hifa sin generar distorsiones morfol&oacute;gicas y algunas tienen efecto inhibitorio sobre bacterias (De Oliveira y Moreira, 2009; Aerts <I>et al.</I>, 2008; Thomma <I>et al.</I>, 2002). La acci&oacute;n de las defensinas sobre hongos produce un incremento en la toma de Ca<Sup>+2 </Sup>y expulsi&oacute;n de K<Sup>+</Sup>, cambios de potencial de membrana y alcalinizaci&oacute;n del medio, lo que afecta directamente el gradiente de Ca<Sup>+2</Sup>, factor fundamental en la elongaci&oacute;n de las hifas (De Oliveira y Moreira, 2009; Marqu&egrave;s <I>et al.</I>, 2009; Aerts <I>et al.</I>, 2008; Tavares <I>et al.</I>, 2008). </P >     <P   >En general, los AMPs exhiben una organizaci&oacute;n anfip&aacute;tica con una cara hidrof&iacute;lica cargada positivamente. Se sugiere que la interacci&oacute;n entre un AMP y su microorganismo objetivo ocurre inicialmente por interacciones electrost&aacute;ticas entre los AMPs b&aacute;sicos y estructuras de carga opuesta presentes en la superficie del microorganismo; despu&eacute;s de esta interacci&oacute;n inicial, la regi&oacute;n hidrof&oacute;bica de los AMPs se insertan en la membrana por interacci&oacute;n hidrof&oacute;bica (De Oliveira y Moreira, 2009). La actividad de las defensinas es fuertemente influenciada por los iones presentes en el medio, ya que estos iones pueden llegar a competir por la uni&oacute;n a las mol&eacute;culas cargadas de la membrana, por ejemplo, se observa una disminuci&oacute;n de la capacidad fungicida si el medio es suplementado con iones o cationes met&aacute;licos, especialmente cationes divalentes como el Ca<Sup>+2 </Sup>y el <Sup>+2 </Sup>(De Oliveira y Moreira, 2009; Thomma <I>et al.</I>, 2002). Adem&aacute;s, se ha demostrado que algunos cationes como el K<Sup>+ </Sup>y el Mg<Sup>+2 </Sup>est&aacute;n relacionados con la generaci&oacute;n de cambios estructurales en la mol&eacute;cula de defensina que la inactivan (De Oliveira y Moreira, 2009; Aerts <I>et al.</I>, 2008). </P >     <P   >Aparte de la actividad inmune de las defensinas en las plantas, se ha encontrado tambi&eacute;n que contribuyen como mediadores de tolerancia al zinc, reducci&oacute;n del dehidroascorbato para producir &aacute;cido asc&oacute;rbico, y bloqueo canales i&oacute;nicos (De Oliveira y Moreira, 2009; Marqu&egrave;s <I>et al.</I>, 2009; Mirouze <I>et al.</I>, 2006). Tambi&eacute;n se ha evidenciado la expresi&oacute;n de estos p&eacute;ptidos como respuesta al estr&eacute;s por fr&iacute;o y por lesiones mec&aacute;nicas en las plantas (Graham <I>et al.</I>, 2008; Carvalho <I>et al.</I>, 2006). Incluso, gracias a an&aacute;lisis gen&oacute;micos, se han encontrado evidencias de que las defensinas podr&iacute;an estar involucradas en fen&oacute;menos de autoesterilidad, generando que las plantas no reconozcan su propio polen (Graham <I>et al.</I>, 2008). </P >     <P   >Existen receptores de defensinas en la membrana celular muy espec&iacute;ficos, que en el caso de las defensinas de planta con la membrana celular de los hongos, se plantea que son los esfingol&iacute;pidos, uno de los tres tipos de l&iacute;pidos m&aacute;s abundantes en las membranas eucariotas, junto con los esteroles y fosfoglicerol&iacute;pidos, que adem&aacute;s de su funci&oacute;n estructural, son importantes mol&eacute;culas se&ntilde;alizadoras para la regulaci&oacute;n, crecimiento y respuestas a estr&eacute;s en la c&eacute;lula (Aerts <I>et al.</I>, 2008; De Paula <I>et al.</I>, 2008; Jha <I>et al.</I>, 2009; Thevissen <I>et al.</I>, 2004). No todas las defensinas reconocen el mismo tipo de esfingol&iacute;pidos, por ejemplo, DmAMP1 de dalia (<I>Dahlia merckii</I>) reconoce la manosildiinositolfosforilceramida, en cambio, RsAFP2 de r&aacute;bano (<I>R. sativus</I>) reconoce glucosilceramidas (Aerts <I>et al., 2008). Aquellos hongos que carecen del esfingol&iacute;pido receptor por deficiencias en alguna de las enzimas involucradas en la v&iacute;a metab&oacute;lica de producci&oacute;n del mismo, presentan resistencia a las defensinas (Aerts et al., 2008; Thevissen et al., 2004). </I></P >     <P   >Pero si los esfingol&iacute;pidos son abundantes en las membranas eucariotas, &iquest;ser&iacute;a posible que las defensinas, adem&aacute;s de atacar c&eacute;lulas de hongos tambi&eacute;n tengan efecto citot&oacute;xico sobre c&eacute;lulas de mam&iacute;feros como el humano, o incluso de otras plantas? La respuesta es quizas. Aunque las defensinas reconocen espec&iacute;ficamente esfingol&iacute;pidos de membranas f&uacute;ngicas, que se encuentran co-localizados con ergosterol formando las denominadas -balsas lip&iacute;dicas- altamente enriquecidas con prote&iacute;nas de membrana ancladas a glicosilfosfatidilinositol (GPI) (Aerts et al., 2008), existe evidencia que avala posible actividad biol&oacute;gica sobre otros organismos, como es el caso de un cultivo de arroz modificado gen&eacute;ticamente con el gen codificante de la defensina BrD1 de Brassica rappa, lo cual le causo resistencia hacia el insecto-plaga Nilaparvata lugens (Choi et al., 2009). </I></P >     <p   >USOS DE LAS DEFENSINAS EN AGRONOM&Iacute;A </p >     <P   >En las d&eacute;cadas pasadas, para prevenir p&eacute;rdidas importantes en las cosechas de los cultivos, las plagas y pat&oacute;genos agr&iacute;colas se controlaban usando pesticidas qu&iacute;micos. Hoy en d&iacute;a es evidente que aquellas pr&aacute;cticas no son sostenibles en el tiempo, ya que generan resistencia en los pat&oacute;genos, son t&oacute;xicas para el ser humano y otras especies animales y contaminan el medio ambiente; motivo por el cual, la investigaci&oacute;n de nuevas estrategias para prevenir las p&eacute;rdidas en los cultivos es de vital importancia, lo que requiere la comprensi&oacute;n de los aspectos bioqu&iacute;micos de las interacciones entre las plantas y sus pat&oacute;genos (Pedras, 2008; Huang <I>et al.</I>, 2003). Ya en algunas especies vegetales de importancia econ&oacute;mica se ha ensayado el empleo de la ingenier&iacute;a gen&eacute;tica como opci&oacute;n para el control de enfermedades y depredadores sin recurrir al uso de compuestos qu&iacute;micos t&oacute;xicos. Tal es el caso de los cultivos Bt de arroz, ma&iacute;z, algod&oacute;n y vegetales, que al ser transformados con genes <I>cry </I>de la bacteria <I>Bacillus thuringiensis </I>desarrollan resistencia en campo a insectos plaga (Huang <I>et al.</I>, 2003). En pa&iacute;ses como China, la introducci&oacute;n de este tipo de cultivos modificados gen&eacute;ticamente ha demostrado reducir dram&aacute;ticamente el uso de pesticidas t&oacute;xicos en los cultivos, lo que a su vez, reduce el n&uacute;mero de casos de intoxicaciones con dichos productos, mejorando los niveles de salubridad en los agricultores y consumidores, y tambi&eacute;n contribuye en la descontaminaci&oacute;n del suelo (Huang <I>et al.</I>, 2003).</P >     <P   > La actividad biol&oacute;gica que han mostrado las defensinas las hace unas mol&eacute;culas atractivas para uso en biotecnolog&iacute;a en las &aacute;reas de ingenier&iacute;a de prote&iacute;nas y producci&oacute;n de plantas transg&eacute;nicas de cultivos econ&oacute;micamente importantes en los cuales se necesita combatir plagas que los ataquen (De Oliveira y Moreira, 2009). Ya se han adelantado investigaciones en las cuales, al transformar plantas susceptibles a cierta enfermedad con un gen de defensina que ataque a su agente pat&oacute;geno se genera en ellas resistencia. Cabe destacar la transformaci&oacute;n gen&eacute;tica de cereales econ&oacute;micamente importantes como el arroz, al cual se le transfiri&oacute; el gen de defensina <I>Rs-AFP2 </I>de r&aacute;bano, confiri&eacute;ndole resistencia a <I>M. oryzae </I>y <I>R. solani </I>(Jha y Chattoo, 2009). La expresi&oacute;n de la defensina Dm-AMP1 de dalia en plantas de arroz (<I>Oryza sativa </I>L. sp. indica cv. <I>Pusa basmati</I>) las hace resistentes a la invasi&oacute;n de <I>R. solani </I>y <I>M. oryzae</I>, causantes de las enfermedades de tiz&oacute;n de la vaina y piricularia respectivamente (Jha <I>et al.</I>, 2009). Esta &uacute;ltima enfermedad tambi&eacute;n se ha logrado controlar transformando plantas de <I>O. sativa </I>cv. Sasanishiki con genes defesina de wasabi (<I>Wasabia japonica</I>), lo que las hace igualmente resistentes (Kanzaki <I>et al.</I>, 2002). La transformaci&oacute;n de man&iacute; y tabaco con el gen de la defensina de mostaza <I>BjD</I>, generaron protecci&oacute;n en hojas hacia <I>F. moniliforme </I>y <I>Phytophthora parasitica </I>pv. nicotianae en el tabaco, y contra <I>Pheaoisariopsis personata </I>y <I>Cercospora arachidicola </I>en man&iacute; (Swathi <I>et al.</I>,2008). Plantas de papaya (<I>Carica papaya</I>) transformadas con el gen de defensina DmAMP1 de dalia presentan resistencia al ataque por <I>P. palmivora </I>(Zhu <I>et al.</I>, 2007). Se ha logrado tambi&eacute;n la expresi&oacute;n de defensinas animales en plantas para conferir resistencia, por ejemplo, la defensina denominada -galerimicina- de la polilla grande de la cera (<I>Galleria mellonella</I>) expresada por plantas de tabaco (<I>N. tabacum </I>cv. Xanthi-nc), las hace resistentes a los hongos <I>Erysiphe cichoracearum </I>y <I>Sclerotinia minor</I>, causantes del o&iacute;dio o mildeo polvoso y el tiz&oacute;n o podredumbre respectivamente (Langen <I>et al.</I>, 2006). Al     transformar plantas de <I>A. thaliana </I>con el gen de la beta defensina 2 humana, se genera     en la planta resistencia al ataque por <I>B. cinerea </I>(Aerts <I>et al.</I>, 2007). El m&eacute;todo de trans     formaci&oacute;n m&aacute;s utilizado ha sido el mediado por <I>Agrobacterium tumefasciens </I>con promo     tores como el del virus del mosaico de la coliflor (CaMV35S), del citocromo c de arroz o Ubiquitina de ma&iacute;z (Ub1), de expresi&oacute;n constitutiva (Choi <I>et al.</I>, 2009; Jha y Chatoo, 2009; Zhu <I>et al.</I>, 2007).      <P   >Las defensinas pueden trabajar junto a otros compuestos antimicrobianos confiriendo o reforzando la resistencia, as&iacute; como se ven implicadas en adaptaciones a estr&eacute;s abi&oacute;tico     (Tavares <I>et al.</I>, 2008; Mirouze <I>et al.</I>, 2006), lo que significa que las defensinas no     solamente contribuyen a la defensa contra pat&oacute;genos en las plantas, sino que tambi&eacute;n     generan adaptaciones a condiciones dif&iacute;ciles, caracter&iacute;stica que las hace a&uacute;n m&aacute;s atractivas para utilizaci&oacute;n en mejoramiento de variedades vegetales.      ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >Recientemente, en nuestro laboratorio hemos acumulado evidencia experimental de la     presencia y significado biol&oacute;gico de las defensinas en una variedad colombiana de tomate     (S<I>olanum licopersicum </I>var. cerasiforme) resistente a la enfermedad de tiz&oacute;n tard&iacute;o (en ingl&eacute;s: <I>late blight</I>) causado por el hongo fitopat&oacute;geno <I>P. infestans </I>(Ria&ntilde;o y Zamora, 2005). Mediante an&aacute;lisis bioqu&iacute;micos, especialmente usando pruebas cromatogr&aacute;ficas, del l&iacute;quido     de lavado intercelular de esta variedad de tomate, nuestro grupo aisl&oacute; un p&eacute;ptido cati&oacute;nico de 5,2 kDa que present&oacute; actividad antif&uacute;ngica <I>in vitro </I>sobre <I>P. infestans </I>(Ria&ntilde;o y     Zamora, 2005). Adem&aacute;s, despu&eacute;s de infectar esta variedad resistente con el hongo fitopat&oacute;geno con posterior extracci&oacute;n de RNA mensajero y s&iacute;ntesis de cADN, conseguimos     identificar la expresi&oacute;n constitutiva de un fragmento de aproximadamente 160 pb mediante PCR utilizando oligonucle&oacute;tidos basados en secuencias de defensinas presentes en     otras solan&aacute;ceas (<a href="#fig2">Fig. 2</a>). Este hallazgo puede sentar bases para la generaci&oacute;n de resistencia al tiz&oacute;n tard&iacute;o en variedades susceptibles de tomate, utilizando la metodolog&iacute;a de     transg&eacute;nesis, como ya se mencion&oacute;, o para su expresi&oacute;n en otros sistemas &uacute;tiles para el     control de plagas. Los microorganismos tambi&eacute;n podr&iacute;an ser empleados en el control     de enfermedades vegetales transform&aacute;ndolos gen&eacute;ticamente con genes de defensinas,     bien para aplicaci&oacute;n directa o para producci&oacute;n de las prote&iacute;nas recombinantes en escalas     industriales. Por ejemplo, se ha logrado la expresi&oacute;n de defensinas vegetales en sistemas     microbianos tales como <I>Saccharomyces cerevisiae </I>(Jha <I>et al.</I>, 2009), <I>Pichia pastoris </I>(Chen <I>et al.</I>,     2004; Cabral <I>et al.</I>, 2003) y <I>Escherichia coli </I>(Kovalskaya y Hammond, 2009; Marqu&egrave;s <I>et al.</I>,     2009; De Paula <I>et al.</I>, 2008; Vijayan <I>et al.</I>, 2008; Da-Hui <I>et al.</I>, 2007), lo que sugiere que ser&iacute;a posible emplear genes codificantes de defensinas para transformar microorganismos que actualmente se usan como biocontroladores o biopesticidas, e incrementar su capacidad controladora de enfermedades. </P>     <p>    <center><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a3f2.jpg"></center></p>     <P   >Otra de las ventajas que ofrecen las defensinas es el hecho que una sola de ellas es capaz de inhibir varios hongos fitopat&oacute;genos. Como ejemplo podemos citar la defensina RsAFP2 de r&aacute;bano que inhibe hongos pat&oacute;genos como <I>Colletotrichum lindemuthianum, Fusarium culmorum, F. oxysporum, Nectria haematococca, B. cinerea, V. dahliae </I>y <I>Mycosphaerella fijiensis</I>, a concentraciones desde 1 a 3 &micro;g/ml (de Oliveira y Moreira, 2009). </P >     <p    >CONCLUSIONES </p >     <P   >A&uacute;n falta mucho por explorar en el campo de las defensinas, especialmente en el an&aacute;lisis de sus mecanismos de acci&oacute;n, lo que contribuir&iacute;a enormemente en el desarrollo de nuevos antibi&oacute;ticos y estrategias de control de fitopat&oacute;genos. Falta igualmente ampliar en el an&aacute;lisis estructuras tridimensionales, en una mayor cantidad de defensinas y la realizaci&oacute;n de mutag&eacute;nesis sitio-dirigida (Tavares <I>et al.</I>, 2008). Es de resaltar que la estructura estabilizada por puentes disulfuro y carga cati&oacute;nica que presentan las defensinas, las hace unas mol&eacute;culas muy estables, caracter&iacute;stica fundamental para la elaboraci&oacute;n de productos biotecnol&oacute;gicos basados en ellas (Tavares <I>et al.</I>, 2008). Comprender en mayor medida los mecanismos de la inmunidad innata de las plantas en el contexto de los actuales desarrollos en ingenier&iacute;a gen&eacute;tica y de prote&iacute;nas, representa una herramienta poderosa para el desarrollo de nuevos cultivos con resistencia incrementada contra plagas, as&iacute; como nuevos productos farmac&eacute;uticos vegetales, que mitigar&iacute;an los problemas asociados con el cultivo, cosecha, almacenamiento y procesamiento de alimentos y dem&aacute;s productos vegetales, incrementando la producci&oacute;n agr&iacute;cola y la disponibilidad de alimentos (Tavares <I>et al.</I>, 2008). A la fecha se han hecho numerosos ensayos insertando genes defensina activos en plantas susceptibles a una enfermedad, resultando en la generaci&oacute;n de resistencia a la misma, pero a&uacute;n falta mayor informaci&oacute;n acerca de sus usos potenciales o posibles riesgos asociados a su baja especificidad, en la producci&oacute;n a gran escala de biocontroladores y biopesticidas, adem&aacute;s de la generaci&oacute;n de plantas resistentes disponibles comercialmente. </P >     <p    >BIBLIOGRAF&Iacute;A </p >     <!-- ref --><P    >AERTS AM, THEVISSEN K, BRESSELEERS SM, SELS J, WOUTERS P, CAMMUE BP, <I>et al</I>. <I>Arabidopsis thaliana </I>plants expressing human beta-defensin-2 are more resistant to fungal attack: functional homology between plant and human defensins. Plant Cell Rep. 2007;26(8):1391-1398. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000050&pid=S0120-548X201000030000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >AERTS AM, FRAN&Ccedil;OIS IEJA, CAMMUE BPA, THEVISSEN K. The mode of antifungal action of plant, insect and human defensins. Cell Mol Life Sci. 2008;65:2069-2079. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000051&pid=S0120-548X201000030000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >CABRAL KM, ALMEIDA MS, VALENTE AP, ALMEIDA FC, KURTENBACH E. Production of the active antifungal <I>Pisum sativum </I>defensin 1 (Psd1) in <I>Pichia pastoris</I>: overcoming the inefficiency of the STE13 protease. Protein Expr Purif. 2003;31:115-122. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000052&pid=S0120-548X201000030000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >CARVALHO AO, FILHO GA, FERREIRA BS, BRANCO AT, OKOROKOVA-FA&Ccedil;ANHA AL, GOMES VM. Cloning and characterization of a cDNA encoding a cowpea seed defensin and analysis of its expression. Protein Pept Lett. 2006;13(10):1029-1036. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0120-548X201000030000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >CASADEI E, WANG T, ZOU J, GONZ&Aacute;LEZ VECINO JL, WADSWORTH S, SECOMBES CJ. Characterization of three novel &#65533;-defensin antimicrobial peptides in rainbow trout (<I>Oncorhynchus mykiss</I>). Mol Immunol. 2009;46(16):3358-3366. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0120-548X201000030000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >CHATTOPADHYAY S, SINHA NK, BANERJEE S, ROY D, CHATTOPADHYAY D, ROY S. Small cationic protein from a marine turtle has beta-defensin-like fold and antibacterial and antiviral activity. Proteins. 2006;64(2):524-531. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-548X201000030000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >CHEHAB EW, KASPI R, SAVCHENKO T, ROWE H, NEGRE-ZAKHAROV F, KLIEBENSTEIN D, <I>et al</I>. Distinct Roles of Jasmonates and Aldehydes in Plant-Defense Responses. PLoS One. 2008;3(4):e1904. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-548X201000030000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >CHEN JJ, CHEN GH, HSU HC, LI SS, CHEN CS. Cloning and Functional Expression of a Mungbean Defensin VrD1 in Pichia pastoris. J Agric Food Chem. 2004;52:2256-2261. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-548X201000030000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >CHEN J, QI S, GUO R, YU B, CHEN D. Different messenger RNA expression for the antimicrobial peptides beta-defensins between Meishan and crossbred pigs. Mol Biol Rep. 2010;37(3):1633-1639. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-548X201000030000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >CHOI MS, KIM YH, PARK HM, SEO BY, JUNG JK, KIM ST, <I>et al</I>. Expression of BrD1, a Plant Defensin from <I>Brassica rapa</I>, Confers Resistance against Brown Planthopper (<I>Nilaparvata lugens</I>) in Transgenic Rices. 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Plant defensins - Prospects for the biological functions and biotechnological properties. Peptides. 2009;30:1007-1020. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-548X201000030000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >DE PAULA VS, RAZZERA G, MEDEIROS L, MIYAMOTO CA, ALMEIDA MS, KURTENBACH E, <I>et al</I>. Evolutionary relationship between defensins in the Poaceae family strengthened by the characterization of new sugarcane defensins. Plant Mol Biol. 2008;68:321-335. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-548X201000030000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >DROIN N, HENDRA JB, DUCOROY P, SOLARY E. Human defensins as cancer biomarkers and antitumour molecules. J Proteomics. 2009;72(6):918-927. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-548X201000030000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >FALCO A, CHICO V, MARROQU&Iacute; L, PEREZ L, COLL JM, ESTEPA A. Expression and antiviral activity of a beta-defensin-like peptide identified in the rainbow trout (<I>Oncorhynchus mykiss</I>) EST sequences. Mol Immunol. 2008;45(3):757-765. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-548X201000030000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >GAO B, RODR&Iacute;GUEZ MC, LANZ MENDOZA H, ZHU S. AdDLP, a bacterial defensin-like peptide, exhibits anti-<I>Plasmodium </I>activity. Biochem Biophys Res Commun. 2009;387(2):393-398. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-548X201000030000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >GONZALEZ M, GUEGUEN Y, DESSERRE G, DE LORGERIL J, ROMESTAND B, BACH&Egrave;RE E. Molecular characterization of two isoforms of defensin from hemocytes of the oyster <I>Crassostrea gigas</I>. Dev Comp Immunol. 2007;31(4):332-339. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-548X201000030000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >GRAHAM MA, SILVERSTEIN KAT, VANDENBOSCH KA. Defensin-like Genes: Genomic Perspectives on a Diverse Superfamily in Plants. Crop Sci. 2008;48:S3-S11. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-548X201000030000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >HUANG J, HU R, PRAY C, QIAO F, ROZELLE S. Biotechnology as an alternative to chemical pesticides: a case study of Bt cotton in China. Agric Econ Res. 2003;29:55-67. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-548X201000030000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >JHA S, CHATTOO BB. Expression of a plant defensin in rice confers resistance to fungal phytopathogens. Transgenic Res. 2010;19(3):373-384. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-548X201000030000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >JHA S, TANK HG, PRASAD BD, CHATTOO BB. Expression of Dm-AMP1 in rice confers resistance to <I>Magnaporthe oryzae </I>and <I>Rhizoctonia solani</I>. Transgenic Res. 2009;18:59-69. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-548X201000030000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >KANNAN L, LIYANAGE R, LAY JO JR, RATH NC. Evaluation of beta defensin 2 production by chicken heterophils using direct MALDI mass spectrometry. Mol Immunol. 2009;46(15):3151-3156. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-548X201000030000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >KANZAKI H, NIRASAWA S, SAITOH H, ITO M, NISHIHARA M, TERAUCHI R, <I>et al</I>. Overexpression of the wasabi defensin gene confers enhanced resistance to blast fungus (<I>Magnaporthe grisea</I>) in transgenic rice. Theor Appl Genet. 2002;105:809-814. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-548X201000030000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >KOVALEVA V, KIYAMOVA R, CRAMER R, KRYNYTSKYY H, GOUT I, FILONENKO V, <I>et al</I>. Purification and molecular cloning of antimicrobial peptides from Scots pine seedlings. Peptides. 2009;30(12):2136-2143. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-548X201000030000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >KOVALSKAYA N, HAMMOND RW. Expression and functional characterization of the plant antimicrobial snakin-1 and defensin recombinant proteins. Protein Expr Purif. 2009;63:12-17. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-548X201000030000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >LANGEN G, IMANI J, ALTINCICEK B, KIESERITZKY G, KOGEL KH, VILCINSKAS A. Transgenic expression of gallerimycin, a novel antifungal insect defensin from the greater wax moth <I>Galleria mellonella</I>, confers resistance to pathogenic fungi in tobacco. J Biol Chem. 2006;387:549-557. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-548X201000030000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >LOBO DS, PEREIRA IB, FRAGEL-MADEIRA L, MEDEIROS LN, CABRAL LM, FARIA J, <I>et al</I>. Antifungal <I>Pisum sativum </I>defensin 1 interacts with <I>Neurospora crassa </I>cyclin F related to the cell cycle. Biochemistry. 2007;46(4):987-996. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-548X201000030000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >LOOFT C, PAUL S, PHILIPP U, REGENHARD P, KUIPER H, DISTL O, <I>et al</I>. Sequence analysis of a 212 kb defensin gene cluster on ECA 27q17. Gene. 2006;376(2):192-198. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-548X201000030000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >MARQU&Egrave;S L, OOMEN RJFJ, AUMELAS A, LE JEAN M, BERTHOMIEU P. Production of an <I>Arabidopsis halleri </I>foliar defensin in Escherichia coli. J Appl Microbiol. 2009;106:1640-1648. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-548X201000030000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >MINABA M, UENO S, PILLAI A, KATO Y. Evolution of ASABF (<I>Ascaris suum </I>antibacterial factor-type antimicrobial peptides in nematodes: putative rearrangement of disulfide bonding patterns. Dev Comp Immunol. 2009;33(11):1147-1150. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-548X201000030000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >MIROUZE M, SELS J, RICHARD O, CZERNIC P, LOUBET S, JACQUIER A, <I>et al</I>. A putative novel role for plant defensins: a defensin from the zinc hyper-accumulating plant, <I>Arabidopsis halleri</I>, confers zinc tolerance. Plant J. 2006;47:329-342. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-548X201000030000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >MYGIND PH, FISCHER RL, SCHNORR KM, HANSEN MT, S&Ouml;NKSEN CP, LUDVIGSEN S, <I>et al</I>. Plectasin is a peptide antibiotic with therapeutic potential from a saprophytic fungus. Nature. 2005;437(7061):975-980. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-548X201000030000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >NEIRA OVIEDO M, RIBEIRO JM, HEYLAND A, VANEKERIS L, MOROZ T, LINSER PJ. The salivary transcriptome of <I>Anopheles gambiae </I>(Diptera: Culicidae) larvae: A microarray-based analysis. Insect Biochem Mol Biol. 2009;39(5-6):382-394. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-548X201000030000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >ODINTSOVA TI, ROGOZHIN EA, BARANOV Y, MUSOLYAMOV AK, YALPANI N, EGOROV TA, <I>et al</I>. Seed defensins of barnyard grass <I>Echinochloa crusgalli </I>(L.) Beauv. Biochimie. 2008;90:1667-1673. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-548X201000030000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >PEDRAS MSC. The Chemical Ecology of Crucifers and Their Fungal Pathogens: Boosting Plant Defenses and Inhibiting Pathogen Invasion. Chem Rec. 2008;8:109-115. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-548X201000030000300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >RIA&Ntilde;O LD, ZAMORA HM. Prote&iacute;nas antif&uacute;ngicas contra <I>P. infestans </I>en los espacios intercelulares de hojas de tomate (<I>Lycopersicon esculentum </I>cerasiforme) posibles defensinas de plantas. Revista Colombiana de Qu&iacute;mica. 2005;34(1):7-23. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-548X201000030000300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >SAITO Y, KONNAI S, YAMADA S, IMAMURA S, NISHIKADO H, ITO T, <I>et al</I>. Identification and characterization of antimicrobial peptide, defensin, in the taiga tick, <I>Ixodes persulcatus</I>. 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Defensins knowledgebase: a manually curated database and information source focused on the defensins family of antimicrobial peptides Nucleic Acids Res. 2007;35:D265-D268. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-548X201000030000300039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >SELS J, MATHYS J, DE CONINCK B, CAMMUE B, DE BOLLE M. Plant pathogenesis-related (PR) proteins: A focus on PR peptides. Plant Physiol Biochem. 2008;46:941-950. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-548X201000030000300040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >SOLIS J, MEDRANO G, GHISLAIN M. Inhibitory effect of a defensin gene from the Andean crop maca (<I>Lepidium meyenii</I>) against <I>Phytophthora infestans</I>. J Plant Physiol. 2007;164:1071-1082. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-548X201000030000300041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >SOMAN SS, ARATHY DS, SREEKUMAR E. Discovery of <I>Anas platyrhynchos </I>avian beta-defensin 2 (Apl_AvBD2) with antibacterial and chemotactic functions. Mol Immunol. 2009;46(10):2029-2038. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-548X201000030000300042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >STEGEMANN C, KOLOBOV A JR, LEONOVA YF, KNAPPE D, SHAMOVA O, OVCHINNIKOVA TV, <I>et al</I>. Isolation, purification and de novo sequencing of TBD-1, the first beta-defensin from leukocytes of reptiles. 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Biotechnological potential of antimicrobial peptides from flowers. Peptides 2008;29:1842-1851. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-548X201000030000300045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >THEVISSEN K, WARNECKE DC, FRAN&Ccedil;OIS IEJA, LEIPELT M, HEINZ E, OTT C, <I>et al</I>. Defensins from Insects and Plants Interact with Fungal Glucosylceramides. J Biol Chem. 2004;279(6):3900-3905. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-548X201000030000300046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >THOMMA BPHJ, CAMMUE BPA, THEVISSEN K. Plant defensins. Planta. 2002;216:193-202. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-548X201000030000300047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >VAN DEN HEUVEL KJ, HULZINK JM, BARENDSE GW, WULLEMS GJ. The expression of tgas118, encoding a defensin in <I>Lycopersicon esculentum</I>, is regulated by gibberellin. J Exp Bot. 2001;52(360):1427-1436. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-548X201000030000300048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >VAN DER WEERDEN NL, LAY FT, ANDERSON MA. The plant defensin, NaD1, enters the cytoplasm of <I>Fusarium oxysporum </I>hyphae. J Biol Chem. 2008;283(21):14445-14452. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-548X201000030000300049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >VIJAYAN S, GURUPRASAD L, KIRTI PB. Prokaryotic expression of a constitutively expressed <I>Tephrosia villosa </I>defensin and its potent antifungal activity. Appl Microbiol Biotechnol. 2008;80(6):1023-1032. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-548X201000030000300050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >WANIEK PJ, CASTRO HC, SATHLER PC, MICELI L, JANSEN AM, ARA&Uacute;JO CA. Two novel defensin-encoding genes of the Chagas disease vector <I>Triatoma brasiliensis </I>(Reduviidae, Triatominae): gene expression and peptide-structure modeling. J Insect Physiol. 2009;55(9):840-848. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-548X201000030000300051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >YAMAGE M, YOSHIYAMA M, GRAB DJ, KUBO M, IWASAKI T, KITANI H, <I>et al</I>. Characteristics of novel insect defensin-based membrane-disrupting trypanocidal peptides. Biosci Biotechnol Biochem. 2009;73(7):1520-1526. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-548X201000030000300052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >ZHAO J, SONG L, LI C, NI D, WU L, ZHU L, <I>et al</I>. Molecular cloning, expression of a big defensin gene from bay scallop <I>Argopecten irradians </I>and the antimicrobial activity of its recombinant protein. Mol Immunol. 2007Jan;44(4):360-368. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-548X201000030000300053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >ZHU S. Evidence for myxobacterial origin of eukaryotic defensins. Immunogenetics. 2007;59:949-954. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-548X201000030000300054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >ZHU S. Discovery of six families of fungal defensin-like   peptides provides insights into origin and evolution of the CS alfa-beta defensins. Mol Immunol. 2008;45:828-838. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-548X201000030000300055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >ZHU YJ, AGBAYANI R, MOORE PH. Ectopic expression of <I>Dahlia merckii </I>defensin <I>DmAMP1 </I>improves papaya resistance to <I>Phytophthora palmivora </I>by reducing pathogen vigor. 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