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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[APLICACIÓN DE SALES DE TETRAZOLIO DE NUEVA GENERACIÓN (XTT) PARA LA ESTIMACIÓN DE LA DENSIDAD DE MICROORGANISMOS DEGRADADORES DE HIDROCARBUROS EMPLEANDO LA TÉCNICA DEL NÚMERO MÁS PROBABLE]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Application of the New Generation Tetrazolium Salt (XTT) for the Enumeration of Hydrocarbon Degrading Microorganisms Using the Most Probable Number Method]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of this study was to evaluate the performance of two tetrazolium indicators: a traditional one: INT and a new generation one: XTT, for the estimation of hydrocarbon (HC) degrading microorganism s density using the Most Probable Number Technique (MPN). Ninety six composite soil samples were taken and analyzed from Ecorregión Cafetera Colombiana. Degrading microorganisms were recovered in minimum salt medium with saturated HC atmosphere. Degrading HC capacity of the microorganisms was confirmed by successive subcultures in the same medium using diesel as only carbon source. Counts obtained with the two salts were not significantly different (Student t test, p < 0,05) but XTT allowed an easier visualization of positive wells due to product solubility of the reduce product. A greater percentage of isolates was obtained using XTT (67%), which suggests that salt type is relevant for recovering of these microorganisms. Additionally, cell detection limit, optimal conditions of XTT concentration and incubation times for detection of activity were evaluated. This evaluation was performed by means of microplate format for hydrocarbon degrading microorganisms using Acinetobacter sp. An inhibitory effect was observed in the recovering of cultivable cells when XTT concentrations increased from 0,5 mM to 2 mM. Incubation time favored this recovering. Detection limit of this technique was established at 10² UFC/ml. Production of the XTT-formazan was positively related with initial cell concentration and negatively with incubation time.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <P align="center"><font size="4">APLICACI&Oacute;N DE SALES DE TETRAZOLIO DE NUEVA GENERACI&Oacute;N (XTT) PARA LA ESTIMACI&Oacute;N DE LA DENSIDAD DE MICROORGANISMOS DEGRADADORES DE HIDROCARBUROS EMPLEANDO LA T&Eacute;CNICA DEL N&Uacute;MERO M&Aacute;S PROBABLE </font></P >     <p align="center"    >Application of the New Generation Tetrazolium Salt (XTT) for the Enumeration of Hydrocarbon Degrading Microorganisms Using the Most Probable Number Method </p >     <P   >VICTORIA EUGENIA VALLEJO<Sup>1,2</Sup>, M.Sc.; HABIB YANINE<Sup>1</Sup>, FABIO AUGUSTO ROLD&Aacute;N.<Sup>1</Sup> Ph. D.</P>      <p><Sup>1</Sup>Centro de Investigaciones y Estudios en Biodiversidad y Recursos Gen&eacute;ticos &ndash; CIEBREG. Laboratorio de Unidad de Saneamiento y Biotecnolog&iacute;a Ambiental &ndash; USBA, Facultad de Ciencias. Pontificia Universidad Javeriana. Carrera 7 # 43-82, Bogot&aacute; D.C., Colombia. <Sup>2</Sup>Correspondencia: <a href="mailto:vvallejo@javeriana.edu.co">vvallejo@javeriana.edu.co</a> </P>      <P>Presentado 6 de agosto de 2009, aceptado 28 de enero de 2010, correcciones 1 de septiembre de 2010. </P>  <hr size="1">      <p>RESUMEN </p>      <P   >El presente estudio evalu&oacute; el desempe&ntilde;o de dos sales de tetrazolio, una tradicional: INT y una de nueva generaci&oacute;n: XTT, para estimar la densidad de microorganismos degradadores de hidrocarburos (HCs) en suelos empleando la t&eacute;cnica del N&uacute;mero M&aacute;s Probable (NMP). Se analizaron 96 muestras de suelo provenientes de la Ecorregi&oacute;n Cafetera de Colombia. Los microorganismos fueron recuperados en agar m&iacute;nimo de sales en atm&oacute;sfera saturada de HCs y la capacidad degradadora fue confirmada por repiques sucesivos utilizando diesel como fuente de carbono. No se observaron diferencias significativas en los recuentos de microorganismos degradadores obtenidos con las dos sales (t de Student, p < 0,05), pero el XTT permiti&oacute; mejor visualizaci&oacute;n de los pozos positivos dada la solubilidad del producto reducido, mientras que el INT produjo precipitaci&oacute;n, debido al formaz&aacute;n insoluble generado, dificultando su lectura. Se obtuvo un mayor porcentaje de aislamientos empleando XTT (67%), lo cual podr&iacute;a indicar que el tipo de sal es determinante en la viabilidad de estas bacterias. Adicionalmente, se evalu&oacute; el l&iacute;mite de detecci&oacute;n celular, las condiciones &oacute;ptimas de concentraci&oacute;n de XTT y el tiempo de incubaci&oacute;n necesario para la detecci&oacute;n de actividad degradadora utilizando la cepa <I>Acinetobacter </I>sp. El aumento en la concentraci&oacute;n de XTT de 0,5 mM a 2 mM y el tiempo de incubaci&oacute;n tuvieron un efecto inhibitorio y favorable respectivamente, en la recuperaci&oacute;n de c&eacute;lulas viables, adicionalmente, l&iacute;mite de detecci&oacute;n de la t&eacute;cnica fue de 10<Sup>2 </Sup>UFC/ml. </P >     <P   >Palabras clave: INT, XTT, NMP, microorganismos degradadores de hidrocarburos, sales de tetrazolio. </P ><hr size="1">     <p    >ABSTRACT </p >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >The objective of this study was to evaluate the performance of two tetrazolium indicators: a traditional one: INT and a new generation one: XTT, for the estimation of hydrocarbon (HC) degrading microorganism s density using the Most Probable Number Technique (MPN). Ninety six composite soil samples were taken and analyzed from Ecorregi&oacute;n Cafetera Colombiana. Degrading microorganisms were recovered in minimum salt medium with saturated HC atmosphere. Degrading HC capacity of the microorganisms was confirmed by successive subcultures in the same medium using diesel as only carbon source. Counts obtained with the two salts were not significantly different (Student t test, p < 0,05) but XTT allowed an easier visualization of positive wells due to product solubility of the reduce product. A greater percentage of isolates was obtained using XTT (67%), which suggests that salt type is relevant for recovering of these microorganisms. Additionally, cell detection limit, optimal conditions of XTT concentration and incubation times for detection of activity were evaluated. This evaluation was performed by means of microplate format for hydrocarbon degrading microorganisms using <I>Acinetobacter </I>sp. An inhibitory effect was observed in the recovering of cultivable cells when XTT concentrations increased from 0,5 mM to 2 mM. Incubation time favored this recovering. Detection limit of this technique was established at 10<Sup>2 </Sup>UFC/ml. Production of the XTT-formazan was positively related with initial cell concentration and negatively with incubation time. </P >     <P   >Key words: INT, XTT, MPN, hydrocarbon degrading microorganisms, tetrazolium salts. </P ><hr size="1">     <p    >INTRODUCCI&Oacute;N </p >     <P   >La biorremediaci&oacute;n es el proceso en el cual se emplean organismos para resolver problemas de contaminaci&oacute;n ambiental, tales como la presencia de hidrocarburos totales de petr&oacute;leo (TPHs) en ecosistemas marinos y terrestres. Este proceso se basa en la biodegradaci&oacute;n, que es el fen&oacute;meno mediante el cual contaminantes como los hidrocarburos (HCs) se mineralizan hasta CO2 y agua al ser utilizados por los microorganismos como fuente de carbono y energ&iacute;a (Hamme <I>et al.</I>, 2003).</P >     <P   > La estructura y composici&oacute;n de las comunidades microbianas presentes en ambientes naturales son las que determinan la velocidad a la cual se puede llevar a cabo el proceso de biodegradaci&oacute;n (Gaskin y Bentham, 2005). Es por esto, que la estimaci&oacute;n de la densidad bacteriana ha sido importante para describir, caracterizar y comparar la diversidad de comunidades bacterianas capaces de degradar diferentes tipos de HCs en distintos ambientes (Maila <I>et al.</I>, 2006). La identificaci&oacute;n de estos microorganismos ha sido relevante en biotecnolog&iacute;a debido a su posible aplicaci&oacute;n en el desarrollo de estrategias de biorremediaci&oacute;n como la bioaumentaci&oacute;n. </P >     <P   >Uno de los m&eacute;todos m&aacute;s empleados en el monitoreo de los procesos de biorremediaci&oacute;n de TPHs es la cuantificaci&oacute;n de estas bacterias degradadoras de HCs. Numerosos estudios han utilizado la t&eacute;cnica de N&uacute;mero M&aacute;s Probable (NMP) para estimar la densidad de microorganismos degradadores de HCs en sedimentos y muestras de suelo (Brown y Braddock, 1990; Rold&aacute;n, 2002; Maldonado, 2004, Vallejo <I>et al.</I>, 2005; Gaskin y Bentham, 2005). Esta t&eacute;cnica se convierte en un procedimiento alternativo al m&eacute;todo de recuento en placa para la determinaci&oacute;n de microorganismos viables. Con la t&eacute;cnica del NMP se han comparado el so de diferentes fuentes de HCs (p.e., kerosene, diesel, hidrocarburos polic&iacute;clicos arom&aacute;ticos-PAHs y crudo) en placas de 24, 60 y 96 pozos. Adicionalmente, se han empleado diferentes formas para visualizar la actividad metab&oacute;lica de los microorganismos, como C<Sup>14 </Sup>radioactivo, pruebas de reducci&oacute;n con sales de tetrazolio o simplemente la aparici&oacute;n de turbidez en las diluciones (Wrenn y Venosa, 1996 y Haines <I>et al.</I>, 1996). </P >     <P   >Las sales de tetrazolio permiten medir la actividad respiratoria asociada a la cadena transportadora de electrones. Estas sales presentan la ventaja de ser reducidas por la mayor&iacute;a de los sistemas de deshidrogenasas, y de requerir cortos periodos de tiempo para su reducci&oacute;n y consecuente cambio de color (Gabrielson <I>et al.</I>, 2002). Una de las sales m&aacute;s empleadas en estudios de biorremediaci&oacute;n ha sido el INT (2-(4-iodofenil)-3-(4-dinitrofenil)-5-feniltetrazolio cloruro), que facilita la visualizaci&oacute;n de la actividad microbiana a pesar de utilizar sustratos insolubles como los HCs. El INT compite con el O2 en la cadena transportadora de electrones y en su forma reducida (INT-formaz&aacute;n) genera un precipitado rosado-rojo (Haines <I>et al.</I>, 1996; Wrenn y Venosa, 1996). Sin embargo, el empleo de esta sal ha generado inconvenientes relacionados con la interpretaci&oacute;n de los resultados, debido principalmente a la generaci&oacute;n de formaz&aacute;n insoluble, lo cual podr&iacute;a subestimar la actividad del sistema transportador de electrones o causar un aumento en la lisis de las c&eacute;lulas bacterianas debido a un excesivo dep&oacute;sito de cristales intracelulares. Por esta raz&oacute;n se han desarrollado sales solubles o tambi&eacute;n llamadas de nueva generaci&oacute;n como el XTT (2,3-bis(2-metoxi-4-nitro-5-sulfofenil)-2H-tetrazolio-5-carboxanilida), MTS y WST-1 (McCluskey <I>et al.</I>, 2005).</P >     <P   > Las sales solubles incorporan en sus estructuras grupos sulfonatos, por lo cual el formaz&aacute;n que se genera es soluble en agua y se difunde f&aacute;cilmente en las c&eacute;lulas facilitando su cuantificaci&oacute;n y visualizaci&oacute;n (Bensaid <I>et al.</I>, 2000). Las investigaciones realizadas con este tipo de sales se han enfocado en su empleo como posibles indicadores de viabilidad/proliferaci&oacute;n y/o ensayos de citotoxicidad en c&eacute;lulas eucariotas (Goodwin<I>et al.</I>, 1995 y Berridge <I>et al.</I>, 1996). Otros estudios se han enfocado en determinar la concentraci&oacute;n &oacute;ptima o concentraci&oacute;n a la cual no se generan efectos t&oacute;xicos en algunos procariotas, y en evaluar la actividad respiratoria de microorganismos como <I>Pseudomonas putida, Escherichia coli, Bacillus subtilis </I>y <I>Pseudomonas fluorescens </I>en lodos activados y aguas subterr&aacute;neas (Roslev y King, 1993; Hatzinger <I>et al.</I>, 2003 y McCluskey <I>et al.</I>, 2005). </P >     <P   >A pesar de las numerosas ventajas que presentan las sales de tetrazolio para la evaluaci&oacute;n de actividad metab&oacute;lica son escasos los estudios no solo en Colombia si no tambi&eacute;n a nivel mundial que han comparado la efectividad del uso de sales solubles e insolubles para la estimaci&oacute;n de la densidad de microorganismos degradadores de hidrocarburos empleando t&eacute;cnicas como el NMP. El objetivo del presente estudio fue comparar el desempe&ntilde;o de dos sales de tetrazolio para la estimaci&oacute;n de la densidad de microorganismos degradadores de HCs en suelos provenientes de la Ecorregi&oacute;n Cafetera, teniendo en cuenta criterios operativos y la viabilidad de los microorganismos. El presente estudio proporciona una oportunidad &uacute;nica de evaluar y estandarizar la t&eacute;cnica del NMP empleando una sal de nueva generaci&oacute;n (XTT), y de compararla con una sal tradicional (INT), la cual ha sido empleada en numerosos estudios de biorremediaci&oacute;n, para determinar actividad microbiana activa de microorganismos degradadores de HCs. Es as&iacute;, como se determin&oacute; cu&aacute;l de las sales permit&iacute;an recuperar una mayor densidad de bacterias degradadoras, lo cual es fundamental en el desarrollo y estandarizaci&oacute;n de t&eacute;cnicas dependientes de cultivo. Estos resultados permitir&aacute;n el empleo del NMP en posteriores estudios de diversidad de este grupo funcional, el cual, adem&aacute;s de cumplir un papel fundamental en el ciclaje de carbono, puede ser utilizado en posteriores estudios biotecnol&oacute;gicos. </P >     <p    >MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </p >      ]]></body>
<body><![CDATA[<p    >&Aacute;REA DE ESTUDIO </p >     <P    >El estudio se realiz&oacute; en la Ecorregi&oacute;n Cafetera de Colombia en los departamentos de Valle, Risaralda y Quind&iacute;o. Se tomaron como unidades macro del muestreo las dos ventanas correspondientes a la cuenca del r&iacute;o La Vieja y Ot&uacute;n en dicha Ecorregi&oacute;n. Estas ventanas fueron seleccionadas con criterios de heterogeneidad espacial, gradiente altitudinal y estructuras de paisaje de acuerdo a estudios previos realizados por el CIEBREG (Centro de Investigaciones y Estudios en Biodiversidad y Recursos Gen&eacute;ticos). Una vez definidas las ventanas, se tomaron como siguiente nivel de muestreo los sistemas productivos que correspond&iacute;an a conjuntos de propiedades que reflejan un tipo particular de aprovechamiento y/o uso del suelo. En cada sistema productivo se identificaron las coberturas vegetales (bosque secundario, guadual, cultivo de caf&eacute; asociado a pl&aacute;tano, monocultivo de cebolla, pastizal para ganader&iacute;a y plantaciones forestales) m&aacute;s representativas y con al menos diez a&ntilde;os de establecimiento Las muestras de suelo fueron colectadas en 16 fincas, ocho en cada cuenca hidrogr&aacute;fica. </P >     <p    >TOMA DE MUESTRA </p >     <P    >En cada una de las coberturas de las dos cuencas se delimitaron tres cuadrantes representativos (2,5 m x 2,5 m), ubicados al menos a 30 m de los bordes de la cobertura. En cada cuadrante se tomaron cinco submuestras (v&eacute;rtices y centro) para formar una muestra compuesta (~15 cm de profundidad) utilizando un barreno de torsi&oacute;n. Se tomaron 500 g de muestra, las cuales se depositaron en bolsas <I>whirlpack </I>resellables, est&eacute;riles, debidamente rotuladas (fecha, hora, tipo de cobertura, nombre de la finca y n&uacute;mero de cuadrante) y se conservaron en refrigeraci&oacute;n a 4 &deg;C hasta su an&aacute;lisis. Se realiz&oacute; un evento de muestreo en junio y otro en septiembre de 2006, tom&aacute;ndose en total 96 muestras compuestas de suelo. </P >     <p    >EXTRACCION DE LOS MICROORGANISMOS DEL SUELO </p >     <P    >Se diluyeron 10 g de suelo en 90 ml de soluci&oacute;n salina est&eacute;ril previamente filtrada por una membrana de acetato de celulosa de 0,22 &micro;m. La mezcla fue agitada durante 15 min a 160 rpm en una plataforma de agitaci&oacute;n orbital (LaTorre, 2007). A partir de esta diluci&oacute;n se realizaron diluciones seriadas con base 10 hasta 10<Sup>-6</Sup>, las cuales ser&iacute;an empleadas posteriormente en la t&eacute;cnica de NMP. </P >     <P    >T&Eacute;CNICA DEL NMP (INT/XTT) PARA MICROORGANISMOS DEGRADADORES DE HCS </P >     <P   >El recuento de microorganismos degradadores de HCs se realiz&oacute; mediante el m&eacute;todo de NMP en placas de 96 pozos, empleando los indicadores INT y XTT (Polysciences, Warrington PA) (Hainnes <I>et al.</I>, 1996; Wrenn y Venosa, 1996., Roslev y King, 1993; Hatzinguer <I>et al.</I>, 2003 y McCluskey <I>et al.</I>, 2005). El medio empleado para el desarrollo de la t&eacute;cnica fue Bushnell-Haas (BH) (KH2PO4(0,01%), K2HPO4 (0.01%), FeCl3.H2O (0,005%), NH4NO3(0,01%), CaCl2 (0,002%), MgSO4.7H2O(0,02%)), 5&micro;l de diesel comercial previamente filtrado como fuente &uacute;nica de carbono y 20 &micro;l de cada diluci&oacute;n del suelo; se realizaron cinco repeticiones por diluci&oacute;n. Despu&eacute;s de incubaci&oacute;n por 15 d&iacute;as a 22&plusmn;1,2 &ordm;C se a&ntilde;adieron los dos indicadores (50 &micro;l de cada uno) preparados a las siguientes concentraciones: INT: 5,9 mM y XTT: 2 mM. Las placas fueron incubadas a 22&plusmn;3 &deg;C en agitaci&oacute;n orbital a 150 rpm y protegidas de la luz durante 16 a 18 h, condiciones que incrementan la generaci&oacute;n de formaz&aacute;n y la solubilidad de esta sal (Hatzinger <I>et al.</I>, 2003; McCluskey <I>et al.</I>, 2005). Despu&eacute;s de este tiempo los pozos que mostraron coloraci&oacute;n rosado-rojo (INT) y naranja (XTT) fueron considerados como positivos. Una combinaci&oacute;n de pozos positivos/negativos de las cinco diluciones realizadas se analiz&oacute; en el programa Most Probable Number Calculator (EPA v4.04, 1996). Los resultados fueron expresados como NMP/gps. </P >     <p   >AISLAMIENTO Y RECUPERACI&Oacute;N DE BACTERIAS DEGRADADORAS DE HCS </p >     <P   >Las bacterias degradadoras fueron aisladas de los pozos positivos de las diluciones m&aacute;s altas obtenidas con el NMP (Wrenn y Venosa, 1996; Margesin <I>et al.</I>, 2003). Para su recuperaci&oacute;n se realiz&oacute; siembra por agotamiento en agar BH (descrito anteriormente, con 1% de agar bacteriol&oacute;gico 1%). Con el objetivo de simular una atm&oacute;sfera de HC&rsquo;s se colocaron discos de papel <I>Whatman </I>N.&ordm; 40 impregnados con diesel (20&micro;L) en la tapa de la caja de Petri y se incubaron las cajas a temperatura ambiente por cinco d&iacute;as. Para confirmar que las cepas seleccionadas pose&iacute;an la capacidad de degradar los HC&rsquo;s, se hicieron pases sucesivos cuatro veces bajo las mismas condiciones. Esta prueba se realiz&oacute; para evitar contaminaci&oacute;n cruzada con compuestos org&aacute;nicos. Finalmente las cepas fueron caracterizadas macro y microsc&oacute;picamente. </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p   >TIEMPO DE REDUCCI&Oacute;N A FORMAZ&Aacute;N CON XTT </p >     <P   >La generaci&oacute;n de formaz&aacute;n soluble fue monitoreada durante 24 h por medio de la producci&oacute;n de color (naranja) haciendo uso de un espectrofot&oacute;metro para placas Multiskan MCC/340 (Versi&oacute;n 2.33) a 492 nm. Durante este periodo se realizaron mediciones espectrofotom&eacute;tricas cada dos horas. </P >     <p   >EFECTO DE LA CONCENTRACI&Oacute;N DE XTT, CONCENTRACI&Oacute;N CELULAR Y TIEMPO DE INCUBACI&Oacute;N </p >     <P   >Debido a que algunos autores han reportado la toxicidad celular de las sales de tetrazolio (Bensaid, <I>et al.</I>, 2000, McCluskey <I>et al., </I>2005) es necesario determinar, adem&aacute;s de la concentraci&oacute;n &oacute;ptima de XTT, el tiempo de incubaci&oacute;n que permita una mayor recuperaci&oacute;n de organismos degradadores as&iacute; como la concentraci&oacute;n m&iacute;nima de c&eacute;lulas a la cual pueda ser detectada actividad (l&iacute;mite de detecci&oacute;n) cuando se utiliza esta sal para el recuento de NMP en placas de 96 pozos. </P >     <P   >Para ello se realiz&oacute; un montaje en microplacas de 96 pozos (esterilizadas con luz UV por una hora) y se adicionaron 20 &micro;l de diluci&oacute;n de c&eacute;lulas de la cepa <I>Acinetobacter </I>sp., PUJ-M-Bio-USBA-98 y 50 &micro;l de XTT. Para el ensayo se defini&oacute; un dise&ntilde;o factorial de tres factores (concentraci&oacute;n de XTT, concentraci&oacute;n de Unidades formadoras de colonia y tiempo de incubaci&oacute;n), con cuatro niveles por factor. Las diluciones de c&eacute;lulas evaluadas fueron 1x10<Sup>2</Sup>, 1x10<Sup>3</Sup>, 1x10<Sup>4 </Sup>y 1x10<Sup>5 </Sup>UFC/ml, equivalentes a 2, 20, 200 y 2.000 UFC/ pozo respectivamente (determinadas mediante una curva de calibraci&oacute;n que relacionaba absorbancia del cultivo y UFC/ml); las concentraciones de XTT evaluadas fueron 0,5, 1, 1,5 y 2 mM. Como control se mantuvieron las mismas condiciones anteriores excepto la adici&oacute;n de c&eacute;lulas. Las microplacas fueron selladas con papel <I>Press&rsquo;n Seal </I>para minimizar la volatilizaci&oacute;n del diesel y protegidas de la luz. Para maximizar la formaci&oacute;n de XTT-formaz&aacute;n las microplacas fueron puestas en agitaci&oacute;n a 130 rpm a 27&plusmn;2 &ordm;C durante 12, 14, 16 y 18 h. Cumplido cada periodo de incubaci&oacute;n se retir&oacute; una microplaca y se midi&oacute; la absorbancia de los pozos en lector Multiskan MCC/340 a 492 nm. Se estableci&oacute; como punto de corte para las lecturas positivas el valor promedio m&aacute;s siete desviaciones est&aacute;ndar de las lecturas de absorbancia de los controles; se tomaron como positivas todas las lecturas superiores a este valor. Para evaluar la recuperaci&oacute;n de microorganismos degradadores se realiz&oacute; en forma paralela una siembra en superficie en agar nutritivo (AN) de las diluciones mas altas correspondientes a la concentraci&oacute;n celular 1x10<Sup>3</Sup>UFC/ml, posteriormente, las cajas fueron incubadas a 22&plusmn;1.2 &ordm;C por 24h. </P >     <p    >AN&Aacute;LISIS ESTAD&Iacute;STICO </p >     <P    >El ajuste de los datos a una distribuci&oacute;n normal se determin&oacute; por medio de la prueba de de bondad de ajuste de Shapiro-Wilk (p<0.05) empleando el paquete estad&iacute;stico Statistix 8 (2003). Los datos fueron transformados cuando fue necesario empleando logaritmo con base 10. Se realizaron pruebas de hip&oacute;tesis de igualdad de medias utilizando an&aacute;lisis de varianza (ANAVA) por medio del paquete estad&iacute;stico SPSS 10.05 y pruebas de comparaci&oacute;n de pares de medias utilizando la prueba <I>t </I>de <I>Student</I>. Con el fin de validar la inspecci&oacute;n visual como medio para determinar los pozos positivos para actividad microbiana los resultados de la inspecci&oacute;n visual se compararon con los de espectrofotometr&iacute;a mediante la prueba de concordancia Kappa. La relaci&oacute;n entre la producci&oacute;n de formaz&aacute;n y las concentraciones iniciales de XTT y UFC/ml se determin&oacute; por medio de una correlaci&oacute;n lineal con la prueba <I>Rho </I>de Spearman. Todos los ensayos fueron realizados al menos por triplicado. El nivel de confianza para todas las pruebas fue del 95% (&alpha;=0,05). </P >     <p    >RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N </p >      <p    >COMPARACI&Oacute;N DE LAS DOS SALES DE TETRAZOLIO </p >     <P    >Debido a que no se observaron diferencias significativas entre los recuentos de degradadores para las diferentes coberturas vegetales evaluadas, as&iacute; como no se observaron diferencias de acuerdo al evento de muestreo utilizando las dos sales de tetrazolio, se muestra la <a href="#fig1">Figura 1</a> como un promedio de las 96 muestras de suelo (<I>t Student</I>, p < 0,05; n=96). Estos resultados podr&iacute;an indicar que cualquiera de las dos sales puede ser empleada para la determinaci&oacute;n de la densidad de degradadores. Sin embargo, como se observa en la <a href="#fig2">Figura 2</a> la precipitaci&oacute;n de la sal en los pozos con el INT muchas veces impidi&oacute; realizar lecturas adecuadas, las cuales estuvieron m&aacute;s sujetas a error y dependieron del criterio de cada investigador a la hora de tomar un pozo como positivo o negativo. Para el caso del XTT el color fue siempre uniforme proporcionando resultados m&aacute;s precisos y confiables. </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a6f1.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a6f2.jpg"></center></p>     <P   >Por esta raz&oacute;n, la comparaci&oacute;n de las dos se realiz&oacute; con base en criterios operativos como facilidad de preparaci&oacute;n de la sal y visualizaci&oacute;n, costos, uniformidad de color generado, porcentaje de recuperaci&oacute;n de bacterias y rapidez en la reducci&oacute;n de la sal. </P >     <P   >El empleo de estos indicadores permite establecer el uso de las tasas de respiraci&oacute;n como una medida &oacute;ptima para determinar la actividad microbiana y como indicador de la actividad del sistema transportador de electrones (McCluskey <I>et al.</I>, 2005). El uso de indicadores como el INT presenta el inconveniente de generar productos de formaz&aacute;n insolubles, lo cual requiere la adici&oacute;n de solventes org&aacute;nicos para su disoluci&oacute;n y/o extracci&oacute;n. Adem&aacute;s, la acumulaci&oacute;n de dep&oacute;sitos de formaz&aacute;n intracelular durante el an&aacute;lisis puede afectar y/o alterar la actividad celular (Roslev y King, 1993). Estudios recientes han demostrado la toxicidad de las sales de tetrazolio en la recuperaci&oacute;n de bacterias viables (Hatzinger <I>et al.</I>, 2003); por esta raz&oacute;n es importante evaluar y comparar distintas concentraciones para minimizar el efecto t&oacute;xico durante los ensayos (Margesin <I>et al.</I>, 2000). </P >     <P   >El INT ha sido ampliamente empleado como indicador de microorganismos viables en previos estudios en nuestro laboratorio (Vallejo <I>et al.</I>, 2004) debido principalmente a que requiere de cortos periodos de incubaci&oacute;n (entre 18-24 h) para su visualizaci&oacute;n en relaci&oacute;n a otras sales insolubles como el CTC, evitando adem&aacute;s, el empleo de sustratos radiactivos. Sin embargo, presenta algunas desventajas, observadas en este estudio como por ejemplo: despu&eacute;s de 20 horas de incubaci&oacute;n con la sal se observ&oacute; la formaci&oacute;n de un precipitado de color rojo insoluble, que dificulta la visualizaci&oacute;n e interpretaci&oacute;n de los pozos positivos. A diferencia del precipitado coloreado que se forma con el INT, el XTT gener&oacute; una sal soluble de color naranja uniforme, que s&oacute;lo var&iacute;a en intensidad. Esto facilit&oacute; el registro del n&uacute;mero de pozos positivos/negativos en la placa.</P >     <P   > La reducci&oacute;n biol&oacute;gica del XTT ha sido previamente correlacionada con la actividad de la cadena transportadora de electrones. Algunos autores han demostrado que el XTT provee informaci&oacute;n directa acerca de esta actividad despu&eacute;s de 90 min de incubaci&oacute;n (Bensaid <I>et al.</I>, 2005). Se ha establecido que la producci&oacute;n de formaz&aacute;n es dependiente de la tasa de crecimiento del cultivo bacteriano y que es altamente sensible a factores como temperatura y tiempo de incubaci&oacute;n, pH del medio, tipo de microorganismo y concentraci&oacute;n de la sal. A pHs bajos (< 5) se inhibe la reducci&oacute;n de INT a la correspondiente sal de formaz&aacute;n. Por lo tanto es importante considerar cada una de estas variables cuando se emplean estas sales como indicadoras de la actividad respiratoria de una comunidad bacteriana particular (Roslev y King, 1993; Griebe <I>et al.</I>, 1997). </P >     <p   >TIEMPO DE REDUCCI&Oacute;N DEL XTT A FORMAZ&Aacute;N SOLUBLE </p >     <P   >Durante el monitoreo de la reducci&oacute;n de XTT durante 24 h, se determin&oacute; que despu&eacute;s de 15 h de incubaci&oacute;n la concentraci&oacute;n de formaz&aacute;n se estabiliza, es decir que el empleo de sales de nueva generaci&oacute;n permitieron la visualizaci&oacute;n &oacute;ptima del producto en un tiempo inferior que el INT o CTC. Los resultados permiten sugerir 12-18 horas como tiempo &oacute;ptimo de incubaci&oacute;n empleando este tipo de indicador (<a href="#fig3">Fig. 3</a>). Es importante resaltar que este an&aacute;lisis fue independiente del tipo de suelo o cobertura analizada pues aunque se muestra solo una grafica para la cobertura de bosque, el an&aacute;lisis fue hecho para guadal y pastizal observ&aacute;ndose la misma tendencia de estabilizaci&oacute;n despu&eacute;s de 12 horas (datos no mostrados). </P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="fig3"></a><img src="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a6f3.jpg"></center></p>     <p   >AISLAMIENTO Y RECUPERACI&Oacute;N DE BACTERIAS DEGRADADORAS DE HCS </p >     <P   >A pesar de la toxicidad que han demostrado tener ciertas sales de tetrazolio sobre algunos grupos particulares de microorganismos, en el presente estudio se aislaron 173 cepas degradadoras. Sin embargo, 113 de las cepas fueron aisladas con XTT y 60 con INT, lo cual indica que el tipo de sal podr&iacute;a ser determinante en la recuperaci&oacute;n de algunos tipos de bacterias y concuerda con lo observado por Hatzinguer <I>et al. </I>(2003), quien report&oacute; que el XTT fue reducido por el 91% de los aislamientos usados para evaluar viabilidad celular y no present&oacute; toxicidad. La mayor cantidad de bacterias aisladas de las coberturas vegetales evaluadas corresponde a bacterias Gram positivas (62%). Algunos autores han reportado que los g&eacute;neros m&aacute;s representativos de este tipo de bacterias degradadoras corresponden a <I>Rhodococcus </I>sp., <I>Arthrobacter </I>sp., <I>Staphylococcus </I>sp., <I>Micrococcus </I>sp., <I>Corynebacterium </I>sp. y <I>Actinomicetes </I>sp. Estas bacterias han demostrado tener una alta capacidad degradadora, incluyendo compuestos de dif&iacute;cil degradaci&oacute;n como los PAH (hidrocarburos polic&iacute;clicos arom&aacute;ticos) (Gaskin y Bentham, 2005; La Rosa <I>et al.</I>, 2006). </P >      <p    >EFECTO DE LA CONCENTRACI&Oacute;N DE XTT, CONCENTRACI&Oacute;N CELULAR Y TIEMPO DE INCUBACI&Oacute;N </p >     <P    >Con base en los resultados iniciales de recuento con XTT mediante la t&eacute;cnica de NMP se decidi&oacute; evaluar el efecto de factores como la concentraci&oacute;n de XTT, el tiempo de incubaci&oacute;n y los l&iacute;mites de detecci&oacute;n de la t&eacute;cnica en la recuperaci&oacute;n de bacterias degradadoras de HCs. Como se observa en la <a href="#fig3">Figura 3</a>, existe una tendencia a la obtenci&oacute;n de menores recuentos (UFC/ml) de <I>Acinetobacter </I>sp. a medida que aumenta la concentraci&oacute;n de XTT. Estas concentraciones resultaron ser significativamente diferentes para cada uno de los tiempos de incubaci&oacute;n (ANAVA, p&lt;0,05, n=24). Es importante mencionar que en la <a href="#fig4">Figura 4</a> y la <a href="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a6t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a> no se incluyeron los resultados para 2 mM de XTT dado que, aunque presentaban valores de absorbancia, mostraron recuentos de UFC/ml por debajo del nivel de detecci&oacute;n cuando se hizo la siembra a partir de los pozos con 1x10 <sup>3</sup> UFC/ml.</P >    <p>    <center><a name="fig4"></a><img src="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a6f4.jpg"></center></p>     <P    >Aunque estos resultados pueden indicar un efecto citot&oacute;xico de la concentraci&oacute;n y el tiempo de incubaci&oacute;n con XTT, los datos presentados aqu&iacute; no pueden ser concluyentes ya que no se incluy&oacute; un control de recuperaci&oacute;n (sin adici&oacute;n de XTT como sugiere Hatzinguer et al., 2003). Efectos inhibitorios similares son reportados por Roslev y King (1993), y Bensaid et al. (2000) pero a concentraciones de XTT superiores a 8 mM y 3 mM respectivamente, l&iacute;mites que pueden ser dependientes del tipo de organismo evaluado. Debemos aclarar que, dado que se tuvieron en cuenta las UFC y no la biomasa, se puede generar una inadecuada estimaci&oacute;n en los conteos e inconsistencias en los resultados de producci&oacute;n de formaz&aacute;n.</P >     <P    >Una fuente de error importante al realizar la t&eacute;cnica de recuento NMP en en placas de 96 pozos, es la inspecci&oacute;n visual de los pozos como positivos o negativos debido a la subjetividad inherente a este proceso. Seg&uacute;n la <a href="#tabla1">Tabla 1</a>, en que se muestran los &iacute;ndices de concordancia Kappa, a las 12 h de incubaci&oacute;n hay una consistencia entre los valores observados por inspecci&oacute;n visual y los que se obtienen a partir de la absorbancia. El hecho de que esta consistencia disminuya a niveles inaceptables al aumentar el tiempo de incubaci&oacute;n puede indicar que con el tiempo, peque&ntilde;os cambios detectados por el espectrofot&oacute;metro no son detectables visualmente.</P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="tabla1"></a><img src="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a6t1.jpg"></center></p>     <P    >Otro aspecto importante a tener en cuenta es que los valores promedio de las absorbancias fueron menores a la unidad (1,0) en todas las absorbancias (<a href="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a6t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>), lo cual indica que los tiempos de incubaci&oacute;n evaluados en este estudio son aceptables para la interpretaci&oacute;n de resultados, aunque sean inferiores a los tiempos de incubaci&oacute;n reportados por Roslev y King, 1993, y McCluskey et al., 2005. Sin embargo, estos investigadores utilizaron agentes acopladores de electrones como la fenazina metosulfato, que incrementa en ocho veces la tasa de reducci&oacute;n de las sales de tetrazolio.</P >     <P   >Se observaron diferencias entre la cantidad de XTT-formaz&aacute;n producido con distintas concentraciones iniciales de c&eacute;lulas (Tukey p=0,005, n=142), (<a href="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a6t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>) y una relaci&oacute;n lineal directa entre estos factores (<I>Rho </I>de Spearman, <I>Rho</I>=0,291, p< 0,005, n=142), (<a href="#tabla1">Tabla 1</a>) lo que concuerda con la relaci&oacute;n entre biomasa y producci&oacute;n de formaz&aacute;n reportada por Roslev y King (1993) y McCluskey <I>et al. </I>(2005). Sin embargo, estos factores no presentan un grado de relaci&oacute;n tan alto como el reportado por estos autores, debido posiblemente a que en nuestro estudio solamente se tuvieron en cuenta las c&eacute;lulas viables formadoras de colonia y no el peso seco (biomasa), que puede contener tambi&eacute;n membranas de c&eacute;lulas no viables o muertas capaces de reducir la sal de tetrazolio. Se observaron tambi&eacute;n diferencias en los valores de absorbancia entre concentraciones de XTT (Kruskall-Wallis, p=0.003, n=142), y una relaci&oacute;n lineal negativa entre la absorbancia y la concentraci&oacute;n de XTT (<I>Rho </I>de Spearman, <I>Rho</I>=-0,216, p=0,05, n=142) (<a href="#tabla1">Tabla 1</a>). Esta relaci&oacute;n podr&iacute;a indicar en parte los efectos inhibitorios observados por la sal, en contraposici&oacute;n a lo reportado por Roslev y King (1993), MacCluskey <I>et al. </I>(2005) y Hatzinger <I>et al. </I>(2003), quienes encontraron una relaci&oacute;n lineal positiva entre concentraciones de 0,5 mM y 3 mM, y de orden cero a concentraciones superiores a 5 mM. </P >     <P   >Como se observa en la <a href="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a6t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a> la absorbancia promedio para concentraciones bajas de XTT y UFC/ml es muy similar y en algunos casos superior a las obtenidas a concentraciones altas; as&iacute; podemos establecer que el l&iacute;mite de detecci&oacute;n de esta t&eacute;cnica es de 100 UFC/ml iniciales, lo que equivale a 2UFC/pozo, a&uacute;n utilizando una concentraci&oacute;n varios &oacute;rdenes de magnitud menor a la utilizada en nuestro laboratorio. </P >     <P   >En cuanto a tiempo de incubaci&oacute;n, un periodo de 12 h constituye la mejor opci&oacute;n ya que permite obtener una buena recuperaci&oacute;n de c&eacute;lulas, sin diferencias significativas con las obtenidas en periodos m&aacute;s extensos (<a href="img/revistas/abc/v15n3/v15n3a6t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). Adicionalmente, se observa una buena concordancia entre la inspecci&oacute;n visual y la espectrofotom&eacute;trica, as&iacute; como niveles altos de absorbancia, lo cual garantiza la reducci&oacute;n de falsos negativos debida a un posible uso de la sal o su producto reducido como sustrato por parte de los microorganismos. Adem&aacute;s, un periodo de 12 h permitir&aacute; no s&oacute;lo un ahorro en gastos operativos, sino la posibilidad de procesar un mayor numero de muestras de suelo en un d&iacute;a. </P >     <P   >Adicionalmente, mencionamos que el producto XTT-formaz&aacute;n result&oacute; ser estable a 4 &ordm;C hasta por una semana <I>vs. </I>El INT (dos d&iacute;as), lo cual constituye una ventaja cuando se desea verificar los resultados, evaluar la reproducibilidad entre operarios y analizar un gran n&uacute;mero de muestras de suelo por periodos m&aacute;s prolongados (> 2 d&iacute;as) con una cantidad de producto previamente preparada. Aunque en nuestro estudio s&oacute;lo se realizaron pruebas con una cepa especifica, los resultados son prometedores en t&eacute;rminos de un ahorro de tiempo y reactivos sin reducci&oacute;n significativa de la recuperaci&oacute;n celular. Sin embargo, vale la pena evaluar el desempe&ntilde;o de estas sales para otros tipos de bacterias degradadoras de HC, o incluso para diferentes consorcios. </P >     <p    >CONCLUSIONES </p >     <P   >Las dos sales de tetrazolio pueden ser utilizadas para la determinaci&oacute;n de la densidad de microorganismos degradadores de HC en muestras de suelo por la t&eacute;cnica de NMP en placas de 96 pozos. Sin embargo, aunque no se presentaron diferencias significativas en los recuentos obtenidos, el XTT permiti&oacute; una mayor recuperaci&oacute;n de bacterias degradadoras de HCs (> % de aislamientos viables) y present&oacute; adem&aacute;s la ventaja de ser soluble, de r&aacute;pida reducci&oacute;n (12 h), y f&aacute;cil visualizaci&oacute;n y preparaci&oacute;n frente al INT. Lo cual permite proponer el uso de esta sal (XTT) de nueva generaci&oacute;n como una verdadera alternativa para determinar actividad de microorganismos degradadores empleando la t&eacute;cnica del NMP. </P >     <P   >Por factores no determinados en este estudio el incremento en la concentraci&oacute;n de la sal de tetrazolio XTT ejerce un efecto inhibitorio en el crecimiento, lo cual resulta en una reducci&oacute;n de la recuperaci&oacute;n de c&eacute;lulas viables de <I>Acinetobacter </I>sp. Finalmente, la inspecci&oacute;n visual es un sistema fiable de valoraci&oacute;n de resultados para ensayos de recuento por NMP en microplacas en tiempos de incubaci&oacute;n que no superen las 12 h con la sal indicadora XTT. El l&iacute;mite de detecci&oacute;n de actividad bacteriana para ensayos de recuento de <I>Acinetobacter </I>sp. por NMP usando la sal indicadora XTT en formato de microplacas fue de 100 UFC/ml o 2 UFC/pozo.</P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P   > De manera general, un tiempo de incubaci&oacute;n de 12 h con la sal XTT para detecci&oacute;n de actividad de degradaci&oacute;n de hidrocarburos en formato de microplacas resulta adecuado en t&eacute;rminos de confiabilidad en la interpretaci&oacute;n de resultados, recuperaci&oacute;n de c&eacute;lulas viables y reducci&oacute;n de costos operativos. Se observ&oacute; que un incremento en la (XTT) caus&oacute; un efecto inhibitorio, evidenciado como una reducci&oacute;n en la absorbancia y menor recuperaci&oacute;n de bacterias degradadotas <I>vs. </I>El INT. Por otro lado, a una mayor concentraci&oacute;n celular inicial se produjo mayor absorbancia (crecimiento celular) durante el ensayo. </P >     <p    >AGRADECIMIENTOS </p >     <P   >Los autores agradecen a los entes financiadores, CIEBREG y COLCIENCIAS. Tambi&eacute;n, y muy especialmente, a la Vicerrector&iacute;a Acad&eacute;mica de la Pontificia Universidad Javeriana (PUJ). A Viviana Guti&eacute;rrez por su colaboraci&oacute;n en los an&aacute;lisis de laboratorio. </P >     <p    >BIBLIOGRAF&Iacute;A </p >     <!-- ref --><P   >BENSAID A, THIERIE J, PENNINCKX Y. The Use of the Tetrazolium Salt XTT for the Estimation of Biological Activity of Activated Sludge Cultivated under Steady-state and Transient Regimes. J Microbiol Meth. 2000;40(3):255-263. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-548X201000030000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >BERRIDGE M, TAN A, MCCOY K, WANG R. The Biochemical and Cellular Basis of Cell Proliferation Assays that Use Tetrazolium Salts. Biochemica. 1996;4:15-20. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-548X201000030000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >BROWN E, BRADDOCK J. Sheen Screen, a Miniaturized Most-Probable Number Method for Enumeration of Oil-Degrading Microorganisms. Appl Environ Microb. 1990;56:3895-3896. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-548X201000030000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >GABRIELSON J, HART M, JAREL&Ouml;V A, K&Uuml;HN I, MCKENZIE, M&Ouml;LLBY R. Evaluation of Redox Indicators and the Use of Digital Scanners and Spectrophotometer for Quantification of Microbial Growth in Microplates. J Microbiol Meth. 2002; 50(1):63-73. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-548X201000030000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >GASKIN S, BENTHAM R. Comparison of Enrichment Methods for the Isolation of Pyrene Degrading Bacteria. Int Biodeter Biodegr. 2005;56(2):80-85. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-548X201000030000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >GOODWIN C, HOLT S, DOWNES S, MARSHALL N. Microculture Tetrazolium Assays: a Comparison between Two New Tetrazolium Salts: XTT y MTS. J Microbiol Meth. 1995;179(1):95-103. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-548X201000030000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >GRIEBE T, SCHAULE G, WUERTZ S. Determination of Microbial Respiratory and Redox Activity in Activated Sludge. J Ind Microbiol Biot. 1997;19(2):118-122. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-548X201000030000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >HAINES J, WRENN B, HOLDER E, STROHMEIER K, HERRINGTON R, VENOSA A. 1996. Measurement of Hydrocarbon-Degrading Microbial Populations by a 96-Well Plate Most-Probable-Number Procedure. J Ind Microbiol Biot. 1996;16(1):36-41. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-548X201000030000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >HAMME J, SING A, WARD O. Recent Advances in Petroleum Microbiology. Microbiol Mol Biol R. 2003;67(4):503-549. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-548X201000030000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >HATZINGER P, PALMER P, SMITH R, PE&Ntilde;ARRIETA C, YOSHINARI T. Applicability of Tetrazolium Salts for the Measurement of Respiratory Activity and Viability of Groundwater Bacteria. J Microbiol Meth. 2003;52(1):47-58. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-548X201000030000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >JOHNSEN A, BENDIXEN K, KARLSON U. Detection of Microbial Growth on Polycyclic Aromatic Hydrocarbons in Microtiter Plates by Using the Respiration Indicator WST-1. Appl Environ Microb. 2002;68(6):2683-2689. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-548X201000030000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >LA ROSA G, DE CAROLIS E, SALI M, PAPACCHINI M, RICCARDI C, MANSI A, <I>et al</I>. Genetic Diversity of Bacterial Strains Isolated from Soils, Contaminated with Polycyclic Aromatic Hydrocarbons, by 16S rRNA Gene Sequencing and Amplified Fragment Length Polymorphism Fingerprint. Microbiol Res. 2006;161(2):150-157. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-548X201000030000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >LA TORRE N. Comparaci&oacute;n de medios de cultivo altos y bajos en nutrientes para la recuperaci&oacute;n de microorganismos heter&oacute;trofos totales en la Ecorregi&oacute;n Cafetera-Colombia. (Tesis de pregrado) Bogot&aacute;: Programa de Microbiolog&iacute;a Industrial, Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana; 2007. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-548X201000030000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >MACCLUSKEY C, QUINN J, MCGRATH J. An evaluation of Three New-generation Tetrazolium Salts for the Measurements of Respiratory Activity in Activate Sludge Microorganisms. Microb Ecol. 2005;49(3):379-387. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-548X201000030000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >MAILA M, RANDIMA P, DR&Oslash;NEN K, CLOETE T. Soil Microbial Communities: Influence of Geographic Location and Hydrocarbon Pollutants. Soil Biol Biochem. 2006;38(2):303-310. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-548X201000030000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >MALDONADO C. Evaluaci&oacute;n de la atenuaci&oacute;n natural de hidrocarburos del petr&oacute;leo utilizados como supresores de polvo en carreteras sin pavimentar. (trabajo de pregrado). Bogot&aacute;: Programas de Biolog&iacute;a y Microbiolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Universidad de Los Andes; 2004. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-548X201000030000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >MARGESIN R, ZIMMERBAUER A, SCHINNER F. Monitoring of Bioremediation by Soil Biological Activities. Chemosphere. 2000;40(4):339-346. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-548X201000030000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >MARGESIN R, LABB&Eacute; D, SCHINNER F, GREER C, WHYTE L. Characterization of Hydrocarbon-Degrading Microbial Populations in Contaminated and Pristine Alpine Soils. Appl Environ Microb. 2003;69(6):3085-3092. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-548X201000030000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >ROLD&Aacute;N, F. Evaluation of the Effects of Addition of Oxygen (O2) and Nitrate (NO3-) Terminal Electron Acceptors to the Enhanced in situ Bioremediation of an Oil Contaminated Salt Marsh. (tesis doctoral). New Hampshire: College of Engineering and Physical Sciences, New Hampshire University; 2002. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-548X201000030000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >ROSLEV P, KING G. Application of a Tetrazolium Salt with a Water Soluble Formazan as an Indicator of Viability in Respiring Bacteria. Appl Environ Microb. 1993;59(9):2891-2896. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-548X201000030000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >VALLEJO V, SALGADO L, ROLD&Aacute;N F. Evaluaci&oacute;n de la bioestimulaci&oacute;n en la biodegradaci&oacute;n de TPHs en suelos contaminados con petr&oacute;leo. Rev Colomb Biotec. 2005;7(2):67-78. </P >     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-548X201000030000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P    >WRENN B, VENOSA A. Selective Enumeration of Aromatic and Aliphatic Hydrocarbon Degrading Bacteria by Most Probable Number Procedure. Can J Microbiol. 1996;42(3):252-258. </P ></font>     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-548X201000030000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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