CARACTERIZACIÓN DE BACTERIAS DIAZOTRÓFICAS ASIMBIÓTICAS ASOCIADAS AL EUCALIPTO (Eucalyptussp.) EN CODAZZI, CESAR (COLOMBIA)

Characterization of Diazotrophic Bacteria Non-Symbiotic Associated with Eucalyptus (Eucalyptussp.) in Codazzi, Cesar (Colombia)

DOLLY MELISSA OBANDO CASTELLANOS¹, LUDY BEATRIZ BURGOS ZABALA², DIEGO MAURICIO RIVERA BOTÍA¹, MARIA FERNANDA RUBIANO GARRIDO¹, M.Sc.; VERA LÚCIA DIVAN BALDANI³, Ph. D.; RUTH REBECA BONILLA BUITRAGO¹, M.Sc.

¹ Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria, Centro de Biotecnología y Bioindustria. Grupo de Investigación Sistemas Agropecuarios Sostenibles, Laboratorio Microbiología de Suelos. Bogotá, D.C., Colombia. dobando@corpoica.org.co ² Ingeniera de Producción Biotecnológica. Universidad Francisco de Paula Santander. Cúcuta, Colombia. ludy854@hotmail.com ³ Embrapa Agrobiología, Laboratorio de Gramíneas, Seropédica, Brasil. verabaldani@cnpab.embrapa.br

Presentado 1 de abril de 2010, aceptado16 de septiembre de 2010, correcciones 4 de octubre de 2010.

RESUMEN

Se evaluó el efecto de las épocas climáticas (lluvia y sequía) y del estrato de la muestra (suelo rizosférico, raíces y hojas) sobre la población de los géneros Azotobacter, Beijerinckia, Derxia, Azospirillum, Herbaspirillum, Gluconacetobacter y Burkholderia en el Eucalipto (Eucalyptus sp.). Así mismo, se evalúo su capacidad en la producción de compuestos indólicos como promotores del crecimiento vegetal y su actividad de reducción de acetileno como indicador de la fijación biológica de nitrógeno. Los resultados no registraron diferencias estadísticas significativas en el test de Tukey (P ≤ 0.05) en la población con respecto a la época climática. Con respecto al estrato de muestra, los aislamientos tentativos de Herbaspirillum sp. y Azospirillum sp. presentaron diferencias significativas en suelo rizosférico y raíces. Se obtuvieron 44 aislamientos de los cuales se agruparon por caracterización fenotípica como: 14 presuntivos de Beijerinckia sp., 12 de Azotobacter sp., ocho de Derxia sp., cuatro de Herbarpirillum sp., cinco de Azospirillum sp., uno de Gluconacetobacter sp. y uno de Burkholderia sp. Por su alto potencial fueron seleccionados y criopreservados los aislamientos C27, C26 y C25, las cuales presentaron los mejores valores de eficiencia in vitro, superando valores de producción de las cepas de referencia utilizadas (A. chroococcum (AC1) y A. brasilense (SP7)).

Palabras clave: fijación biológica de nitrógeno, compuestos indólicos, promoción del crecimiento vegetal.

ABSTRACT

Key words: Biological nitrogen fixation, indolic compounds, plant growth promotion.

INTRODUCCIÓN

Los sistemas silvopastoriles son sistemas de producción pecuaria en donde las leñosas perennes (árboles o arbustos) interactúan con los componentes tradicionales (forrajeras herbáceas y animales) bajo un sistema de manejo integral. Estos sistemas reúnen la producción comercial de madera junto con la ganadería, siendo una alternativa viable para el buen uso de la tierra y el cuidado de la misma. Los árboles pueden ser de vegetación natural o plantada con fines maderables, para productos industriales, o como árboles multipropósito en apoyo específico para la producción animal (Castellano et al., 1989). El Eucalipto (Eucalyptus sp.), es una especie arbórea adaptada para las prácticas silvopastoriles, porque tiene copas estrechas que permiten la penetración de una cantidad razonable de luz directa o difusa hasta el nivel del suelo permitiendo el crecimiento de plantas forrajeras apropiado, proporciona sombra a los animales protegiéndolos durante la época de sequía y además establece barreras contra el viento que evitan la erosión de los suelos por arrastre del mismo, entre otros (Couto, 1994; Dell, 1995).

Actualmente, el establecimiento y la difícil adaptación de especies arbóreas del Eucalipto en sistemas silvopastoriles en el Caribe seco ha generado altas tasas de mortalidad de las mismas, debido a que las plántulas no se establecen en las condiciones de trasplante a campo, representando cuantiosas pérdidas económicas para su producción. Teniendo en cuenta lo anterior, se crea la necesidad de mejorar las condiciones de nutrición, vigorosidad en la etapa de vivero y por ende su fácil adaptación en campo de estas plántulas, mediante prácticas biotecnológicas sostenibles que garanticen el buen desarrollo de las mismas. Una alternativa viable que contribuye a mejorar esta problemática es la utilización de bacterias fijadoras de nitrógeno. La presencia de estos microorganismos benéficos asociados a cultivos de interés agrícola es de vital importancia, debido a que establece y acelera procesos bioquímicos que influyen sobre el crecimiento y desarrollo de las mismas, lo que está asociado con un incremento de elementos químicos disponibles y la producción de sustancias de crecimiento o de control de patógenos (Barea et al., 2005). El objetivo de esta investigación fue aislar y caracterizar bacterias fijadoras de nitrógeno asimbióticas asociadas al Eucalipto (Eucalyptus sp.), con el propósito de seleccionar cepas diazotróficas promisorias eficientes, que contribuyan con el crecimiento, desarrollo y establecimiento de esta especie forestal en condiciones de vivero.

MATERIALES Y MÉTODOS

DETERMINACIÓN DEL EFECTO DE LAS ÉPOCAS DE LLUVIA Y SEQUÍA SOBRE LAS POBLACIONES DE ALGUNAS BACTERIAS DIAZOTRÓFICAS EN EL EUCALIPTO (Eucalyptussp.)

Se tomaron muestras de suelo rizosférico, raíces y hojas del Eucalipto en época de lluvia y sequía en la Estación Experimental Motilonia de Corpoica. A partir de ésta se realizaron las diluciones seriadas hasta 10-6 en tubos con 9 mL de solución salina al 0,85% de NaCl. Se inocularon 0,1 mL de cada dilución por triplicado, en viales de 5 mL de medio semisólido NFb, JNFb, LGI, LGI-P y JMV para el recuento de Azospirillum spp., Herbaspirillum spp., Azospirillum amazonense, Gluconacetobacter diazotrophicus y Burkhloderia spp. respectivamente (Döbereiner et al., 1995). Para el aislamiento de Azotobacter spp. se realizó la técnica de siembra de gránulos de suelo en medio Ashby (Fenglerowa, 1965; Novo, 1993).

Las hojas y raíces del Eucalipto se lavaron con agua destilada, se cortaron en fragmentos de aproximadamente 1-2 cm de largo y se pesó 1 g de este material vegetal. De igual forma, se desarrolló el protocolo de desinfección y se realizó la técnica de diluciones seriadas ya descrita anteriormente. Las diluciones fueron inoculadas de igual forma que la muestra de suelo rizosférico (Döbereiner et al., 1995).

Los frascos con medio semisólido inoculados se incubaron durante cinco días a 32 ºC y se cuantificaron las bacterias diazotróficas mediante el método del Número Más Probable (NMP) de acuerdo a las metodologías descritas por Döbereineret al.,1995. Para el recuento de Azotobacter sp., se realizó la técnica de recuento en placa, sembrando las diluciones seriadas de suelo rizosférico sobre el medio de cultivo sólido LG (Döbereiner et al., 1995). El análisis de la información se proceso mediante la prueba de comparación de Tukey con 5% de probabilidad utilizando el programa estadístico SPSS Versión 17.0.

A partir de la formación de película se realizó el repique en el medio de cultivo específico sólido con 20 mg L-1 de extracto de levadura como fuente de nitrógeno. Luego se repicaron e incubaron en medio de cultivo semisólido y posteriormente, se repicaron nuevamente en medio de cultivo Batata e incubado por tres días más a 32 °C. Las bacterias aisladas se agruparon siguiendo algunas características macroscópicas (forma, borde, pigmentación, superficie, consistencia, olor, entre otras) y características microscópicas de las colonias (morfología celular) (Texeira et al., 2005).

SELECCIÓN DE LAS CEPAS DIAZOTRÓFICAS EFICIENTES

Para la determinación de la eficiencia in vitro se utilizaron como controles positivos las cepas Azospirillum brasilense (Sp7) y Azotobacter chroococcum (AC1).

ACTIVIDAD DE FIJACIÓN BIOLÓGICA DE NITRÓGENO - ACTIVIDAD DE REDUCCIÓN DE ACETILENO (ARA)

Los cultivos bacterianos obtenidos se inocularon en frascos con capacidad de 10 mL con 3 mL de medio semisólido y se incubaron con tapón de algodón durante 24 horas a 32 ºC. Posteriormente, se reemplazó el tapón por uno de caucho y se selló herméticamente. Se sustituyó el 10% de la atmósfera del frasco de cultivo con acetileno y se incubó durante una hora a 32 ºC (Eckert et al., 2001; Valero, 2002). La concentración de etileno se midió inyectando 1 mL de la atmósfera del frasco de cultivo en un cromatógrafo de gases Perkin Elmer con detector de ionización de llama y una columna Poropak N 200/300 mesh de 6 pies y 3 mm de diámetro. El nitrógeno se utilizó como gas de arrastre en un flujo de 4,2 mL/min. con un tiempo de retención aproximado del etileno de 59 seg y para el acetileno de 1,20 min. La actividad de reducción de acetileno para cada aislamiento, se calculó según la altura del pico de etileno en el cromatograma extrapolando en la ecuación Log10Y = 1,351x + 0,736 (R² = 0,964), obtenida de la regresión lineal de la curva de calibración construida a partir de diluciones seriadas de etileno en concentraciones de 1, 1:10, 1:100, 1:1000 y 1:10000, en las mismas condiciones del cromatógrafo (Corpoica, 2009).

SÍNTESIS DE COMPUESTOS INDÓLICOS - PRODUCCIÓN DE ÁCIDO INDOLACÉTICO (AIA)

Se tomaron los cultivos bacterianos y se realizaron suspensiones celulares ajustadas al tubo N.º 5 del patrón de turbidez de Mc Farland. Así mismo, se cuantificó su concentración por recuento de unidades formadoras de colonias (UFC/mL) sobre agar semisólido. El recuento se realizó a las 72 horas y se ajustó la concentración celular con solución salina (0,85% NaCl) hasta obtener 1x10⁷ UFC/mL. Se inoculó al 2%, 30 mL de caldo Dygs y se incubó durante 48 horas a 32 ºC y 120 rpm. La biomasa obtenida se centrifugó a 8.000 rpm durante 10 min. Se descartó el sobrenadante y las células se suspendieron en 30 mL de buffer fosfato estéril 0,06 M. De esta suspensión celular se tomaron 100mL y se inocularon 50 mL de caldo BT modificado, sin solución de vitaminas y con una concentración de 20g/L de triptona como precursor del ácido indolacético y 0,2 g/L de NH4Cl como fuente de nitrógeno. Se incubaron en oscuridad y agitación de 120 rpm y 32 ºC durante 48 horas (Celis y Gallardo, 2007; Radwan et al., 2004a).

Posteriormente, se centrifugaron 10 mL del caldo microbiano a 8.000 rpm durante 10 min, se tomaron 2 mL del sobrenadante y se adicionaron 8 mL de reactivo de Salkowsky hasta obtener la coloración rosada (Confirmativa de presencia de compuestos indólicos). Se realizó la lectura de la absorbancia de las muestras a 535 nm en espectrofotómetro Spectronic 601 Milton Roy. La concentración de ácido indolacético (AIA) se calculó mediante la concentración de compuestos indólicos, utilizando la ecuación Y= 0,0033X - 0,0311 (R² = 0,9855) donde, Y = Absorbancia de la muestra a 535 nm y X = µM de AIA. Esta ecuación se obtuvo realizando regresión lineal a la curva de calibración construida a partir de diferentes concentraciones de ácido indolacético, AIA (25, 50, 100,150, 200, 250 y 300 µM) con la adición del reactivo de Salkowsky y leídas a 535 nm en el mismo espectrofotómetro (Kuss, 2006). Para calcular la concentración de AIA producido por mg de células, se determinó el peso seco de las células separadas de los 10 mL de muestra (Radwan et al., 2004b).

RESULTADOS Y DISCUSIONES

Los resultados obtenidos en el análisis de varianza muestran que la densidad poblacional es homogénea en las dos épocas climáticas analizadas; es decir, la ocurrencia de las bacterias diazotróficas pertenecientes a los géneros preliminarmente identificados: Azospirillum, Herbaspirillum, Burkholderia, Gluconacetobacter, Azotobacter, Beijerinckia y Derxia, aislados a partir de muestras de suelo rizosférico, raíces y hojas, no tuvo diferencias significativas (P≤0,05) en los periodos de lluvia y sequía, se infiere que no hay influencia de la época climática en el establecimiento de las bacterias diazotróficas.

Este comportamiento puede ser atribuido a características fisiológicas de los géneros diazotróficas, así como a la capacidad de modificar los patrones metabólicos propios de cada género cuando las condiciones edáficas se alteran, principalmente la disponibilidad de carbono y nitrógeno, contenido de humedad, tensión de oxígeno (Sadasivan y Neyra 1987).

Piñero et al., 1988, y Combe et al., 1994, señalan que la eficiencia fotosintética, las exigencias nutricionales y la resistencia a condiciones desfavorables, entre otras, son características que están ligadas a la especie de las plantas que pueden presentar influencia en la eficiencia de fijación de nitrógeno por las bacterias asociadas a éstas, igualmente la diversidad genética de éstas diazotróficas está relacionada con el genotipo de la planta.

EFECTO DEL ESTRATO DE MUESTRA SOBRE LA POBLACIÓN DE BACTERIAS DIAZOTRÓFICAS ASOCIADAS A Eucalyptus SP. EN CODAZZI (CESAR, COLOMBIA)

Las poblaciones de bacterias diazotróficas no presentaron diferencias estadísticamente significativas respecto al estrato de la planta del que fueron aisladas, con excepción del grupo tentativo de Herbaspirillum (Medio de cultivo JNFb) con el cual presentó una mayor población en la muestra de raíces (Tabla 1) y Azospirillum (Medio de cultivo NFb), que presentó una mayor población en las muestras de raíces y suelo rizosférico (Tabla 2).

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La presencia de Herbaspirillum sp. en las raíces confirma su condición de microorganismo endófito. No obstante, estudios realizados por Baldani et al., (1986) reportaron que H. seropedicae está estrechamente asociada con las raíces de arroz (Oryza sativa), maíz (Zea mays) y sorgo (Sorghum bicolor) contribuyendo notablemente en la fijación biológica de nitrógeno. Así mismo, Olivares et al., 1996, describió el aislamiento de H. seropedicae, a partir de raíces de Gandul (Cajanus cajan) demostrando que además de aislarse en especies gramíneas, también puede obtenerse a partir de raíces de especies leguminosas. Igualmente, respecto a H. seropedicae, Barraquio et al., 1997, determinaron que ésta coloniza las regiones subepidérmicas en las raíces del arroz. Posteriormente, Valverde et al., 2003, describen el aislamiento de Herbaspirillum lusitanum, especie endófita aislada de nódulos de fríjol (Phaseolus vulgaris) que tiene la característica única de comportarse como rizobio, al interactuar asociativamente con esta especie leguminosa y en este estudio muy posiblemente de forestales.

En relación a Azospirillum sp., su capacidad de colonización en todas las estructuras de la planta ha sido descrita en diversas investigaciones Steenhoudt y Vanderleyden, 2000; Brasil et al., 2005; Brasil et al., 2006; Kuss, 2006, a pesar de que es considerada una rizobacteria y coloniza principalmente la zona de elongación de los pelos radiculares, también se ha encontrado en el interior de las raíces y en la parte aérea de varias especies vegetales (Brasil et al., 2005; Brasil et al., 2006; Kuss, 2006).

La presencia de esta bacteria en raíces y suelo rizosférico ha sido reportado en numerosos estudios que indican que la quimiotaxis a los exudados de la raíz es uno de los factores que influyen en la colonización de los microorganismos en la rizósfera Schmid, 1991. Tanto en A. lipoferum como en A. brasilense se ha demostrado una fuerte actividad quimiotáctica hacia diversos azúcares, ácidos orgánicos y aminoácidos Barak et al., 1982; Barak et al., 1983; Heinrich et al., 1985; Reinhold et al., 1985, así como hacia compuestos aromáticos López-De Victoria et al., 1993, y exudados radicales (Heinrich et al., 1985; Gafny et al., 1986).

Otros posibles factores de la presencia de esta bacteria en los dos estratos mencionados anteriormente, se atribuye a la capacidad de producir sideróforos por algunas cepas de A. brasilense Tapia-Hernández et al., 1992 lo cual pudiera ser de gran importancia durante la colonización del ambiente rizosférico y de la superficie de las raíces, al ejercer efectos antagónicos contra otros microorganismos rizosféricos, incluyendo fitopatógenos (Caballero, 2000).

Así mismo, diferentes estudios han mostrado que A. brasilense tiene la capacidad para adherirse a las raíces de plantas gramíneas como el mijo, pasto pangola Umali-García et al., 1980, trigo Jain et al., 1984, y maíz Gafny et al., 1986, así como a las raíces de plantas de otras familias que incluyen al algodón y tomate Lambrecht, 2000, e incluso a superficies inertes como poliestireno y arena (Levanony et al., 1991).

La capacidad de Azospirillum sp. para adherirse a las raíces en gramíneas, como en el caso del mijo, es significativamente mayor que la mostrada por otras bacterias de la comunidad rizosférica como Rhizobium sp., Azotobacter sp., Klebsiella sp. o Pseudomonas sp., e incluso que E. coli (Umali-García et al., 1980). Burdman et al., 2000, refieren en su investigación la posibilidad de que una proteína de la membrana externa de Azospirillum sp. participe en el proceso de adherencia a las raíces de las plantas. En diversos casos, se ha reportado la aparición de material fibrilar que contribuye al anclaje de Azospirillum sp., a las raíces de diversas plantas de interés agrícola (Umali-García et al., 1980; Levanony et al., 1991).

CARACTERIZACIÓN FENOTÍPICA DE LOS AISLAMIENTOS OBTENIDOS

Se seleccionaron 44 aislamientos de hojas, raíces y suelo asociados al Eucalipto. Se escogieron las colonias que presentaron características morfológicas propias de cada género diazotrófico en estudio (Tabla 3).

Al analizar la selección de géneros diazotróficos presuntivos asociados al Eucalipto, se evidenció preliminarmente que predominaron en las dos épocas climáticas las poblaciones bacterianas tentativas de los géneros Beijerinckia (diez aislamientos), Azotobacter (12 aislamientos) y Derxia (cinco aislamientos) los cuales fueron aislados principalmente de la raíz y rizósfera, lo cual permite inferir que las bacterias colonizaron de forma local o sistemática los tejidos radiculares del Eucalipto (Sturz et al., 2000).

De otra parte, la mayoría de los grupos presenta aislamientos en períodos de lluvia y sequía, por lo cual se permite nuevamente inferir que la época climática no influyó significativamente en la población de bacterias diazotróficas de esta especie arbórea. Sin embargo, pudo presuntivamente alterar la densidad poblacional de las mismas, de acuerdo con el bajo número de aislamientos que preliminarmente fueron clasificados como Azospirillum sp. (cinco aislamientos), Herbaspirillum sp. (tres aislamientos), Gluconacetobacter sp. (un aislamiento) y Burkholderia sp. (un aislamiento).

PRUEBA DE ACTIVIDAD DE REDUCCIÓN DE ACETILENO (ARA)

Se presentaron diferencias estadísticas (P≤0,05) en las medias de ARA, en la actividad de reducción de acetileno en las cepas C27 (8,51x10⁸ nmol/mL.min), C25 (5,49x10⁸ nmol/mL.min) y la C26 (7,58x10⁸ nmol/mL.min) con respecto a las cepas de referencia utilizadas (AC1 y SP7) (Fig. 1).

Las bacterias diazotróficas más conocidas por su eficiencia forman parte de las familias Azotobacteriaceae, Spirillaceae y Bacillaceae. Del género Azotobacter se han descrito varias especies: Azotobacter chroococcum, A. vinelandii, A. agilis y A. paspali; las cuales han sido ampliamente estudiadas por su potencial como fijadoras de nitrógeno (Martínez-Viera 1986; Itzigsohn et al., 2000).

De acuerdo a los análisis obtenidos, la capacidad de fijación de nitrógeno varió significativamente en los aislamientos, lo cual se observó en la notable diferencia en los valores de eficiencia en la actividad de reducción entre los grupos, esto es debido probablemente a que el genotipo de las bacterias influye sobre la cantidad de nitrógeno fijado por las mismas (Eckert et al., 2001).

La cepa C27 correspondiente a la especie tentativa de Azotobacter vinelandii presentó la mayor reducción de acetileno (8,51x10⁸ nmol/mL.min), probablemente la constitución biológica de esta bacteria pudo influir en este proceso, debido a que Azotobacter vinelandii fija nitrógeno en condiciones de aerobiosis gracias a que posee un sistema bien integrado de protección de la enzima nitrogenada. Dicho sistema comprende: protección conformacional, protección respiratoria, autoprotección y otros cambios morfológicos y fisiológicos que le permiten crecer diazotróficamente en condiciones totalmente aeróbicas (Marchal y Vanderleyden. 2000).

Las cepas C25 y C26 (tentativas de Azotobacter chroococcum) presentaron valores estadísticamente significativos (P≤0.05) en la reducción del acetileno (7,41x10⁸ nmol/mL.min) y (7,58 x10⁸ nmol/mL.min), con respecto a los beneficios de la actividad fijadora de nitrógeno de Azotobacter chroococcum, Martínez et al., 1996, plantean que el efecto de esta especie sobre la germinación y crecimiento de plántulas de tomate (Lycopersicum esculentum) en suelos ferralíticos rojos, resulta igual para todas las variedades analizadas, sugiriendo la amplia adaptación y promoción del crecimiento vegetal de esta especie.

Se presentaron diferencias estadísticas (P≤0,05) en las medias de AIA en la producción de ácido indolacético producida por la cepa C27 (tentativa de Azotobacter vinelandii) de 49,57 µg AIA/mL, con respecto a las cepas de referencia utilizadas: Sp7 (40,17 µg AIA/mL) y AC1 (38,26 µg AIA/mL).

Estadísticamente se presentaron diferencias significativas entre la cepa C27 y el resto del grupo, observándose que la media de producción de AIA para esta cepa fue superior en relación a todas las cepas diazotróficas analizadas en esta prueba (Fig. 2). Dentro de las especies que han sido reportados como las mayores productoras de AIA se encuentran Azospirillum brasilense (20-0 mg/mL), Azospirillum lipoferum (16-32 mg/mL), Rhizobium sp. (22 mg/mL), Xanthomonas sp. (22 mg/mL), Pseudomonas sp. (20-65 mg/mL), Azotobacter sp. (>22 mg/mL), Acinetobacter sp. (3-18 mg/mL), Bacillus sp. (30-40 mg/mL), Corynebacterium sp., y Flavobacterium spp., (20-30 mg/mL) (Taller y Wong 1989).

Se conoce que algunas especies del género Azotobacter penetran la corteza y producen fitohormonas como giberelinas, auxinas como ácido indolacético, citoquininas y ácido abscícico estimulando el crecimiento, la producción de raíces laterales y pelos radicales que a su vez favorecen la absorción de nutrimentos Freitas et al., 2002 e incrementan el rendimiento en gramíneas (Taller y Wong 1989; Bashan et al., 1986). De igual forma, resultados reportados por Bhattacharya et al., 1986, demuestran que en determinadas condiciones ambientales el efecto beneficioso de estas bacterias no se debe a la cantidad fijada, sino a la presencia de vitaminas y sustancias fisiológicamente activas que sintetizan, estimulando el crecimiento y vigorosidad de la planta hospedera.

Rodríguez y Blanco, 1992, realizaron un trabajo experimental en condiciones semicontroladas en viveros de café (Coffeea arabica), demostrando que con el uso de Azotobacter chroococcum había una mejor uniformidad en las posturas de este cultivo, así como un mayor vigor de las mismas, las cuales en el momento de la extracción del vivero hacia el campo presentaban un color uniforme en su sistema radicular, características de posturas sanas, vigorosas y con alto valor ecológico. En este sentido González, 1995, al analizar los resultados de la inoculación de ocho cepas de Azotobacter sp. sobre los parámetros de crecimiento y desarrollo de vitroplantas de piña (Anana comosa cv Cayena lisa), durante la fase de adaptación demostraron que en sentido general, todas las cepas estudiadas estimularon el crecimiento de las vitroplantas, con valores significativamente superiores al testigo, lo que permite acortar el periodo de adaptación de las mismas.

Según González y Llunch, 1992, la producción de estas sustancias por Azotobacter sp. se ve influenciada por el estado fisiológico de la bacteria y por la edad de los cultivos, habiéndose demostrado, que la presencia de nitrógeno combinado modifica la producción de auxinas y giberelinas. De igual forma, se ha reportado que la presencia de exudados radiculares de la planta incrementan considerablemente la producción de auxinas, giberelinas y citoquininas por Azotobacter chroococcum Mok y Mok, 2001. De acuerdo a lo anterior, se infiere que una mayor producción de exudados radiculares secretados por Eucalipto (Eucalyptus sp.), ha estimulado una mayor población de microorganismos del género Azotobacter sp. induciendo en estas bacterias una mayor producción de fitohormonas, especialmente del ácido indolacético.

CONCLUSIONES

Las conclusiones en las condiciones en las que se realizó el presente estudio son las siguientes: No se encontraron variaciones en el tamaño de la población de las especies diazotróficas tentativas de Azospirillum sp., Herbaspirillum sp., Burkholderia sp., Gluconacetobacter sp., Azotobacter sp., Beijerinckia sp. y Derxia sp., por efecto de épocas climáticas. Se presentaron diferencias estadísticamente significativas (P≤ 0,05) para el estrato de muestra, encontrándose las mayores poblaciones en las raíces para el caso de los aislamientos presuntivos de Herbaspirillum sp. y suelo rizosférico para Azospirillum sp. Se seleccionaron las cepas C27, C26 y C25 por su eficiencia in vitro en la pruebas de ARA y AIA.

Los autores agradecen a la Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria –Corpoica–, al Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural -MADR-, la Gobernación del Cesar y a la Cooperativa Lechera del Cesar -COOLESAR- por su financiación.

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