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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[VARIACIÓN DEL CONTENIDO DE AZÚCARES TOTALES Y AZÚCARES REDUCTORES EN EL MUSGO Pleurozium schreberi (HYLOCOMIACEAE) BAJO CONDICIONES DE DÉFICIT HÍDRICO]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Variation in Total Sugars and Reductive Sugars in the Moss Pleurozium schreberi (HYLOCOMIACEAE) Under Water Deficit Conditions]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The structural simplicity of the bryophytes exposed them easily to water stress, forcing them to have physiological and biochemical mechanisms that enable them to survive. This study evaluated the variation of total soluble sugars and reducing sugars in relation to relative water content, in Pleurozium schreberi when faced with low water content in the Páramo de Chingaza (Colombia) and under simulated conditions of water deficit in the laboratory. We found that total sugars increase when the plant is dehydrated and returned to their normal content when re-hydrated moss, this could be interpreted as a possible mechanism of osmotic adjustment and osmoprotection of the cell content and cellular structure. Reducing sugars showed no significant variation, showing that monosaccharides do not have a protective role during dehydration.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <P align="center"><font size="4">VARIACI&Oacute;N  DEL  CONTENIDO DE AZ&Uacute;CARES TOTALES Y AZ&Uacute;CARES REDUCTORES EN EL MUSGO <i>Pleurozium schreberi </i>(HYLOCOMIACEAE) BAJO CONDICIONES DE D&Eacute;FICIT H&Iacute;DRICO</font></p>     <p align="center"> Variation in Total Sugars and Reductive Sugars in the Moss <i>Pleurozium schreberi </i>(HYLOCOMIACEAE) Under Water Deficit Conditions</p>      <p>LUIS CARLOS MONTENEGRO RUIZ<sup>1</sup>, Ph. D.; LUZ MARINA MELGAREJO MU&Ntilde;OZ<sup>2</sup>; Ph. D.     <p> <sup>1</sup>Departamento de Biolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;. <a href="mailto:lcmontenegror@unal.edu.co">lcmontenegror@unal.edu.co</a>.    <br> <sup>2</sup>Departamento de Biolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;. <a href="mailto:lmmelgarejom@unal.edu.co">lmmelgarejom@unal.edu.co</a></p>       <p>Correspondencia: <a href="mailto:lcmontenegror@unal.edu.co" class="a" target="_blank">lcmontenegror@unal.edu.co</a></p>      <p>Presentado el 13 de junio de 2012, aceptado el 9 de octubre de 2012, correcciones el 19 de septiembre de 2012.</p> <hr size="1">      <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>Los bri&oacute;fitos por su simplicidad estructural se ven expuestos a estr&eacute;s h&iacute;drico con facilidad, por lo que presentan mecanismos fisiol&oacute;gicos y bioqu&iacute;micos que les permita sobrevivir. En el presente trabajo se evalu&oacute; la variaci&oacute;n del contenido de az&uacute;cares totales solubles y az&uacute;cares reductores en relaci&oacute;n con el contenido h&iacute;drico relativo, en <i>Pleurozium schreberi </i>cuando se enfrenta a contenidos h&iacute;dricos bajos en el P&aacute;ramo de Chingaza (Colombia) y bajo condiciones simuladas de d&eacute;ficit h&iacute;drico en laboratorio. Se encontr&oacute; que los az&uacute;cares totales aumentan cuando la planta se deshidrata y vuelve a su contenido normal cuando el musgo se rehidra, esto puede ser interpretado como un posible mecanismo de ajuste osm&oacute;tico de la c&eacute;lula y osmoprotecci&oacute;n del contenido celular y de la estructura celular. Los az&uacute;cares reductores no presentaron variaci&oacute;n significativa, mostrando que los monosac&aacute;ridos no tienen una funci&oacute;n protectora durante la deshidrataci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Palabras clave: estr&eacute;s h&iacute;drico, musgos, osmoprotecci&oacute;n, p&aacute;ramo.</p> <hr size="1">      <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>The structural simplicity of the bryophytes exposed them easily to water stress, forcing them to have physiological and biochemical mechanisms that enable them to survive. This study evaluated the variation of total soluble sugars and reducing sugars in relation to relative water content, in <i>Pleurozium schreberi </i>when faced with low water content in the P&aacute;ramo de Chingaza (Colombia) and under simulated conditions of water deficit in the laboratory. We found that total sugars increase when the plant is dehydrated and returned to their normal content when re-hydrated moss, this could be interpreted as a possible mechanism of osmotic adjustment and osmoprotection of the cell content and cellular structure. Reducing sugars showed no significant variation, showing that monosaccharides do not have a protective role during dehydration.</p>     <p>Keywords: Moss, osmoprotection, p&aacute;ramo, water stress.</p>  <hr size="1">      <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>Proctor y Pence, 2002 y Oliver <i>et al.</i>, 2005, indican que la tolerancia a la deshidrataci&oacute;n es la capacidad que tiene un organismo de perder el contenido h&iacute;drico interno en equilibrio con el ambiente y luego recuperar su metabolismo normal cuando se rehidrata. Los bri&oacute;fitos (musgos, hep&aacute;ticas y antoceros) han desarrollado una capacidad extraordinaria de tolerar la deshidrataci&oacute;n, a pesar de ser plantas estructuralmente menos complejas que las plantas vasculares. Por ejemplo, el musgo <i>Tortula ruralis </i>que se conoce como altamente tolerante, puede ser almacenado con un contenido de agua del 5 % y potenciales h&iacute;dricos inferiores a -150 MPa, y despu&eacute;s de ser rehidratado recupera r&aacute;pidamente sus funciones metab&oacute;licas. Adem&aacute;s, hay varios registros en herbarios mundiales de especies que han sobrevivido prolongados per&iacute;odos de tiempo sin agua, por ejemplo, <i>Grimmia pulvinata </i>alcanz&oacute; 80 a&ntilde;os (Proctor, 2000).</p>      <p> <i>Pleurozium schreberi </i> (Brid) Mitt, es un musgo poiquiloh&iacute;drico, puede ganar y perder agua r&aacute;pidamente y no hay control sobre la p&eacute;rdida de agua debido a la falta de cut&iacute;cula y sistemas internos de transporte del l&iacute;quido. Esto obliga al musgo a tener un sistema de tolerancia a la deshidrataci&oacute;n que le permita sobrevivir en per&iacute;odos de escasez de agua (Anic&iacute;c et al. 2009).</p>     <p>En las plantas sometidas a estr&eacute;s por d&eacute;ficit h&iacute;drico, el mecanismo m&aacute;s importante de defensa es la disminuci&oacute;n del potencial osm&oacute;tico, por acumulaci&oacute;n de iones inorg&aacute;nicos o por aumento en los niveles de solutos org&aacute;nicos (osmorreguladores o solutos compatibles); dicho proceso denominado ajuste osm&oacute;tico busca impedir la p&eacute;rdida de turgencia en las c&eacute;lulas, evitando detener funciones asociadas a la fotos&iacute;ntesis, al crecimiento celular, etc. (Reigosa y Pedrol, 2004).</p>     <p>De acuerdo con Romero <i>et al.</i>, 2004, los osmorreguladores o solutos compatibles son definidos como osmolitos org&aacute;nicos responsables del balance osm&oacute;tico, que son compatibles con el mecanismo celular. Se localizan en el citoplasma y permiten disminuir el potencial osm&oacute;tico de la c&eacute;lula, sin interferir con las funciones metab&oacute;licas, a pesar de alcanzar concentraciones altas. Por lo general son mol&eacute;culas de bajo peso molecular, altamente solubles en agua y con una gran cubierta h&iacute;drica en soluci&oacute;n. El mecanismo de ajuste osm&oacute;tico mediante osmolitos se ha seleccionado a lo largo de la evoluci&oacute;n porque permite la adaptaci&oacute;n al estr&eacute;s h&iacute;drico temporal de forma m&aacute;s flexible, y minimiza los cambios adaptativos necesarios en las prote&iacute;nas para funcionar en soluciones intracelulares m&aacute;s concentradas, porque su acumulaci&oacute;n no perturba la fisiolog&iacute;a celular. Los osmorreguladores, bajo diferentes condiciones de estr&eacute;s, tambi&eacute;n pueden actuar estabilizando prote&iacute;nas y membranas celulares, y captando radicales libres. Dicha habilidad les ha permitido ser llamados osmoprotectores. En estado anhidro los grupos OH- de algunos de ellos remplazan el agua en la formaci&oacute;n de puentes de hidr&oacute;geno con los residuos polares de prote&iacute;nas y fosfol&iacute;pidos (Romero <i>et al.</i>, 2004). Los disac&aacute;ridos cumplen dos importantes papeles en la protecci&oacute;n de membranas: reducci&oacute;n de la temperatura de transici&oacute;n de la fase de secado de membrana (<i>Tm</i>) y formaci&oacute;n de una "vitrificaci&oacute;n del citoplasma" con una alta temperatura de fusi&oacute;n. Aunque ambas caracter&iacute;sticas son necesarias, no son suficientes para la protecci&oacute;n de membranas en per&iacute;odos de deshidrataci&oacute;n e hidrataci&oacute;n. Cuando las membranas est&aacute;n deshidratadas pero hay presencia de estos disac&aacute;ridos, el modelo sugiere que las mol&eacute;culas de az&uacute;car detienen el colapso de los l&iacute;pidos a trav&eacute;s de una interacci&oacute;n con las cabezas de los fosfol&iacute;pidos, de ese modo previenen la elevaci&oacute;n de <i>Tm </i>durante la deshidrataci&oacute;n. La segunda caracter&iacute;stica es la vitrificaci&oacute;n a bajos contenidos h&iacute;dricos, los carbohidratos forman un material amorfo que previene los procesos de deterioro tales como fusi&oacute;n de membranas (Oliver <i>et al.</i>, 2002).</p>     <p>La sacarosa, (a-D-glucopiranosil(1-2)-b-D-fructofuran&oacute;sido), es el az&uacute;car osmolito m&aacute;s importante en los bri&oacute;fitos (Smirnoff, 1992). En general, se acepta que los disac&aacute;ridos (y otros az&uacute;cares) tienen un papel esencial en la tolerancia a la deshidrataci&oacute;n, pero otros factores deben ser importante (Proctor y Tuba, 2002).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En los p&aacute;ramos h&uacute;medos del tr&oacute;pico colombiano se presentan prolongados per&iacute;odos de lluvia que hacen que los musgos en la mayor parte del a&ntilde;o no tengan que enfrentarse a problemas de estr&eacute;s h&iacute;drico, sin embargo durante la &eacute;poca seca los bri&oacute;fitos son los m&aacute;s afectados entre las plantas porque se enfrentan a escasez total de agua, cambios de temperatura diarios que pueden ir de -1 &deg;C en horas de la noche hasta 30 &deg;C al medio d&iacute;a, altas radiaciones principalmente UV y vientos fuertes. Por la condici&oacute;n poiquiloh&iacute;drica de estas especies alcanzan potenciales h&iacute;dricos muy bajos (Montenegro <i>et al. </i>2005).</p>     <p>En el presente trabajo se estudia la variaci&oacute;n de az&uacute;cares totales y az&uacute;cares reductores en relaci&oacute;n con el contenido h&iacute;drico de <i>P. schreberi </i>durante &eacute;poca seca en el P&aacute;ramo de Chingaza y bajo condiciones de d&eacute;ficit h&iacute;drico simuladas en laboratorio.</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p>La fase de campo se desarroll&oacute; en los meses de enero yfebrero de 2007 en el P&aacute;ramo de Chingaza, sector de las lagunas de Buitrago, 4&deg;45'19,73" N 73&deg;49'52,22" O, a 3592 msnm. Se realizaron tres muestreos en campo durante la &eacute;poca seca (<a href="#Tabla 1">Tabla 1</a>).</p>     <p align="center"><a name="Tabla 1"><img src="img/revistas/abc/v17n3/v17n3a10t1.jpg"></a></p>     <p>MATERIAL  VEGETAL</p>     <p>Para las mediciones en p&aacute;ramo se seleccionaron cinco poblaciones de <i>P. schreberi </i>dentro de la asociaci&oacute;n frailejonal-pajonal, bajo las mismas condiciones microclim&aacute;ticas. Se tomaron muestras de &aacute;pices cada dos horas iniciando a las 5:00 a. m. Se muestre&oacute; durante 36 horas en la temporada de inicio, 24 horas en la temporada de mediados y 26 horas para la temporada final de la &eacute;poca seca. El material vegetal utilizado para determinar contenido h&iacute;drico se almacen&oacute; en tubos de ensayo con cierre herm&eacute;tico para evitar p&eacute;rdida o ganancia de agua y se procesaron en laboratorio. Los &aacute;pices para an&aacute;lisis bioqu&iacute;micos se almacenaron en envases herm&eacute;ticos, se congelaron inmediatamente y permanecieron a -70 &deg;C hasta su utilizaci&oacute;n. Para las mediciones bajo condiciones de laboratorio se colectaron muestras en cinco poblaciones de <i>P. schreberi </i>en el mismo sector donde se hizo el muestreo de campo y se transportaron al laboratorio en Bogot&aacute;, donde se colocaron bajo condiciones controladas en cuarto de cultivo: fotoper&iacute;odo 12 horas luz/12 horas oscuridad, temperatura de 18 &deg;C, irradiaci&oacute;n de 27,75 &micro;mol m<sup>-2</sup> s<sup>-1</sup>, humedad relativa de 90 % y tuvieron agua permanentemente durante dos meses para mantener las plantas en condiciones &oacute;ptimas.</p>      <p>EXPOSICI&Oacute;N A D&Eacute;FICIT H&Iacute;DRICO EN CONDICIONES CONTROLADAS</p>      <p>Bajo las condiciones del cuarto de cultivo a los musgos se les retir&oacute; el exceso de agua con papel absorbente y se colocaron sobre camas de silicagel en bandejas transparentes con tapa y cierre herm&eacute;tico para simular condiciones de d&eacute;ficit h&iacute;drico, se dejaron deshidratar por 24 horas y se rehidrataron al finalizar este per&iacute;odo. Se tomaron muestras para contenido h&iacute;drico y pruebas bioqu&iacute;micas cada dos horas, iniciando a las 5:00 a. m. con el musgo hidratado y durante el tiempo de deshidrataci&oacute;n. Posteriormente la rehidrataci&oacute;n se hizo con agua a las 5:00 a. m. del d&iacute;a siguiente, y se tomaron medidas en el momento de la rehidrataci&oacute;n y adicionales dos y 12 horas despu&eacute;s de la rehidrataci&oacute;n.</p>     <p>CONTENIDO H&Iacute;DRICO RELATIVO (CHR)</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para el contenido h&iacute;drico relativo (Hern&aacute;ndez <i>et al. </i>1999), se determin&oacute; el peso fresco (pf), el peso en turgencia (pt) y el peso seco (ps) de cada muestra, y se expres&oacute; como porcentaje seg&uacute;n la siguiente f&oacute;rmula:</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/abc/v17n3/v17n3a10e1.jpg"></a></p>      <p>EXTRACCI&Oacute;N DE AZ&Uacute;CARES</p>     <p>Para la extracci&oacute;n de los az&uacute;cares el material vegetal fue liofilizado, luego se pesaron 0,02 g por cada muestra y se maceraron en nitr&oacute;geno l&iacute;quido. Se adicion&oacute; como soluci&oacute;n de extracci&oacute;n 2 ml de buffer acetato de sodio 50 mM pH 5,0 y se agit&oacute; durante 30 minutos a 4 &deg;C. Se centrifug&oacute; a 6000 rpm durante 30 min a 4 &deg;C. Se tom&oacute; el sobrenadante y se utiliz&oacute; para la determinaci&oacute;n de az&uacute;cares totales solubles y az&uacute;cares reductores.</p>     <p>DETERMINACI&Oacute;N  DE  AZ&Uacute;CARES  TOTALES  SOLUBLES</p>     <p>El contenido de az&uacute;cares totales solubles se determin&oacute; utilizando el m&eacute;todo de Dubois <i>et al.</i>, 1956, adecuado por Moreno <i>et al. </i>, 2010, utilizando glucosa como patr&oacute;n (1.01 mg/mL) y leyendo absorbancia a 490 nm en un espectrofot&oacute;metro BIO-RAD Smartspec 3000. La mezcla de reacci&oacute;n conten&iacute;a extracto de la muestra de an&aacute;lisis, fenol (80 % p/v) y &aacute;cido sulf&uacute;rico al 99 %. Para las muestras de p&aacute;ramo y laboratorio se utiliz&oacute; un espectrofot&oacute;metro BIO-RAD Smartspec 3000.</p>     <p>DETERMINACI&Oacute;N DE AZ&Uacute;CARES REDUCTORES</p>     <p>Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de Somogyi-Nelson (Somogyi, 1952; Nelson, 1944), adecuado por Moreno <i>et al.</i>, 2010. La mezcla de reacci&oacute;n conten&iacute;a el extracto de la muestra de an&aacute;lisis, los reactivos de Somogyi I, Somogyi II, Nelson y agua dd, se ley&oacute; absorbancia a 660 nm, se utiliz&oacute; un espectrofot&oacute;metro BIO-RAD Smartspec 3000. Se utiliz&oacute; glucosa como patr&oacute;n (1,0 mg/mL). Para las muestras de p&aacute;ramo y laboratorio se utiliz&oacute; un espectrofot&oacute;metro BIO-RAD Smartspec 3000.</p>     <p>AN&Aacute;LISIS ESTAD&Iacute;STICO</p>     <p>Los datos se analizaron bajo un dise&ntilde;o experimental completamente al azar, con cinco r&eacute;plicas (cada una de las poblaciones) tanto para las muestras colectadas en campo como para las trabajadas bajo condiciones controladas en cuarto de cultivo. Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza para comparar las tres temporadas en p&aacute;ramo (inicio, mediados y final de la &eacute;poca seca), an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal y regresi&oacute;n polinomial para az&uacute;cares totales y az&uacute;cares reductores en funci&oacute;n del CHR para determinar la relaci&oacute;n y el modelo. El nivel de significancia fue del 95 % y se utiliz&oacute; el programa estad&iacute;stico "Statistix 9".</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESULTADOS</b></p>     <p>VARIACI&Oacute;N EN EL  CONTENIDO DE AZ&Uacute;CARES  TOTALES SOLUBLES</p>     <p>Al inicio de la &eacute;poca seca (<a href="#Fig.1">Fig. 1A</a>) cuando la planta se encontraba hidratada (horas de la madrugada), el contenido de az&uacute;cares totales solubles fue en promedio de 700 &micro;g de az&uacute;car g ps<sup>-1</sup>, aumentando hasta 1100 &micro;g de az&uacute;car g ps<sup>-1</sup> en promedio, cuando el musgo tuvo los CHR m&aacute;s bajos. En la segunda temporada (<a href="#Fig.1">Fig. 1B</a>) cuando el p&aacute;ramo present&oacute; d&iacute;as sin niebla, altas temperaturas durante el d&iacute;a y humedad relativa promedio inferior al 50 %, se encontr&oacute; que los contenidos de az&uacute;cares totales solubles fueron inferiores a la temporada anterior, igualmente se observaron valores promedio de 600 &micro;g de az&uacute;car g ps<sup>-1</sup> en las horas del medio d&iacute;a y tarde cuando la radiaci&oacute;n y temperatura son altas y la humedad relativa es baja. Hacia finales de la &eacute;poca seca (<a href="#Fig.1">Fig. 1C</a>) el musgo llevaba varios d&iacute;as en d&eacute;ficit h&iacute;drico y los contenidos de az&uacute;car durante el d&iacute;a fueron similares a los encontrados en la temporada anterior, present&aacute;ndose tambi&eacute;n un aumento en horas del medio d&iacute;a. Sin embargo, el contenido de az&uacute;cares totales aument&oacute; considerablemente hacia la hora 7:00 del segundo d&iacute;a de muestreo, cuando se pre- sentaron lluvias alcanzando valores de 1100 &micro;g de az&uacute;car g ps<sup>-1</sup>: en esta &uacute;ltima temporada se present&oacute; una regresi&oacute;n altamente significativa (<a href="#Tabla 2">Tabla 2</a>) entre el contenido de az&uacute;car y el CHR, mostrando la mista tendencia.</p>     <p align="center"><a name="Fig.1"><img src="img/revistas/abc/v17n3/v17n3a10f1.jpg"></a></p>     <p align="center"><a name="Tabla 2"><img src="img/revistas/abc/v17n3/v17n3a10t2.jpg"></a></p>     <p>En el laboratorio los musgos permanecieron varias semanas en condiciones ideales de crecimiento presentando contenidos de az&uacute;cares totales en promedio de 600 &micro;g de az&uacute;car g p<sup>-1</sup> inferiores a los presentados por la planta hidratada en p&aacute;ramo. Sin embargo, con la deshidrataci&oacute;n r&aacute;pida no se present&oacute; una variaci&oacute;n significativa en el contenido de az&uacute;cares totales solo un peque&ntilde;o aumento a las 12 horas de estar con CHR bajos llegando a 700 &micro;g de az&uacute;car g ps<sup>-1</sup>. Tampoco hubo aumento con la rehidrataci&oacute;n (<a href="#Fig.2">Figura 2</a>).</p>     <p align="center"><a name="Fig.2"><img src="img/revistas/abc/v17n3/v17n3a10f2.jpg"></a></p>      <p>VARIACI&Oacute;N EN EL CONTENIDO DE AZ&Uacute;CARES REDUCTORES</p>     <p>Al inicio y a mediados de la &eacute;poca seca (<a href="#Fig.3">Figura 3A y 3B</a>, respectivamente) la variaci&oacute;n de az&uacute;cares reductores no fue significativa a trav&eacute;s de todo el d&iacute;a, en promedio el contenido para la primera temporada fue de 300 &micro;g de az&uacute;car g ps<sup>-1</sup> y para la segunda de 220 &micro;g de az&uacute;car g ps<sup>-1</sup>; las regresiones lineales no fueron significativas (<a href="#Tabla 3">Tabla 3</a>). En la tercera temporada durante las horas m&aacute;s secas el promedio de az&uacute;cares reductores fue similar al encontrado a mediados de la &eacute;poca seca; sin embargo, aument&oacute; considerablemente cuando el musgo empez&oacute; a aumentar su contenido h&iacute;drico y en horas de la ma&ntilde;ana cuando se activa la fotos&iacute;ntesis llegando a valores promedio de 450 &micro;g de az&uacute;car g ps<sup>-1</sup> (<a href="#Fig.3">Fig. 3C</a>).</p>     <p align="center"><a name="Fig.3"><img src="img/revistas/abc/v17n3/v17n3a10f3.jpg"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="Tabla 3"><img src="img/revistas/abc/v17n3/v17n3a10t3.jpg"></a></p>      <p>En el experimento bajo condiciones controladas de laboratorio tampoco se present&oacute; una variaci&oacute;n significativa en el contenido de az&uacute;cares reductores durante el ciclo de deshidrataci&oacute;n-rehidrataci&oacute;n (<a href="#Fig.4">Fig. 4</a>), manteniendo un contenido promedio de 300 &micro;g de az&uacute;car g ps<sup>-1</sup>.</p>     <p align="center"><a name="Fig.4"><img src="img/revistas/abc/v17n3/v17n3a10f4.jpg"></a></p>      <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p>De acuerdo a lo observado en az&uacute;cares totales solubles, <i>P. schreberi </i>presenta un sistema de protecci&oacute;n contra estr&eacute;s h&iacute;drico utilizando polisac&aacute;ridos para realizar el ajuste osm&oacute;tico y equilibrar la c&eacute;lula a las condiciones secas del medio, posiblemente bajando el potencial h&iacute;drico, porque se han registrado en estudios con el musgo <i>Tortula ruralis </i>que el potencial h&iacute;drico puede descender a valor inferiores a -70 MPa (Oliver <i>et al.</i>, 2005). Es posible que el aumento de az&uacute;cares totales observado est&eacute; relacionado con el fen&oacute;meno de vitrificaci&oacute;n del citoplasma el cual depende principalmente del disac&aacute;rido sacarosa, porque en horas del medio d&iacute;a en las tres temporadas se registraron contenidos h&iacute;dricos inferiores al 20 %. La vitrificaci&oacute;n permite disminuir la velocidad de las reacciones qu&iacute;micas dentro de la c&eacute;lula y as&iacute; ayuda a preservar macromol&eacute;culas y la integridad de la membrana por per&iacute;odos prolongados de tiempo (Robinson <i>et al.</i>, 2000; Oliver <i>et al.</i>, 2005; Proctor <i>et al.</i>, 2007), aunque faltan estudios para entender este fen&oacute;meno en bri&oacute;fitos.</p>     <p>La funci&oacute;n de osmoprotectores se ha reportado para varios az&uacute;cares solubles entre ellos la sacarosa por su capacidad de formar puentes de hidr&oacute;geno con y entre macromol&eacute;culas estabilizando su estructura y la funcionalidad de las enzimas (Alpert, 2006; Oliver, 2009). As&iacute;, se puede asociar el incremento de az&uacute;cares totales solubles en <i>P. schreberi</i>, en el momento de la deshidrataci&oacute;n, con una posible funci&oacute;n de protecci&oacute;n de las membranas de los cloroplastos y las prote&iacute;nas constituyentes de los fotosistemas. Se ha observado en musgos tolerantes a la deshidrataci&oacute;n que los altos niveles de sacarosa tambi&eacute;n son usados como una fuente de energ&iacute;a almacenada que puede ser utilizada para ensamblar prote&iacute;nas y otras tareas, mientras se restauran los procesos fotosint&eacute;ticos (Robinson <i>et al.</i>, 2000; Brinda <i>et al.</i>, 2011,).</p>     <p>Esta capacidad de aumentar el contenido de az&uacute;cares totales solubles en <i>P. schreberi </i>se presenta cuando la deshidrataci&oacute;n es lenta porque en las pruebas de laboratorio donde se realiz&oacute; con s&iacute;licagel (r&aacute;pida) el aumento de los az&uacute;cares no fue tan importante como en el p&aacute;ramo. En varias investigaciones con musgos estresados se ha observado el efecto de la velocidad de deshidrataci&oacute;n, encontr&aacute;ndose que algunos de los sistemas de defensa (ajuste osm&oacute;tico, sistema antioxidante, etc.) act&uacute;an en mayor magnitud cuando los musgos disminuyen el CHR lentamente (Dhindsa, 1991). Esto tambi&eacute;n supone que estos az&uacute;cares no son una adaptaci&oacute;n constitutiva para sobrevivir al estr&eacute;s h&iacute;drico sino que se activan como consecuencia de la deshidrataci&oacute;n. Por otra parte, se apreci&oacute; una mayor concentraci&oacute;n de az&uacute;cares totales en los musgos expuestos a estr&eacute;s en p&aacute;ramo durante la primera temporada que en aquellos sometidos a estr&eacute;s en laboratorio, como una adaptaci&oacute;n de <i>P. schreberi </i>a aprovechar al m&aacute;ximo las rehidrataciones que se presentan en horas de la madrugada y poder realizar fotos&iacute;ntesis eficientemente con las primeras horas de luz para acumular az&uacute;cares para protecci&oacute;n y fuente de energ&iacute;a, que ser&aacute;n utilizadas en momentos de mayor d&eacute;ficit h&iacute;drico como lo fue la segunda temporada de la &eacute;poca seca.</p>     <p>Por lo general, se reconoce el papel esencial de los disac&aacute;ridos (y otros az&uacute;cares) en la tolerancia a la deshidrataci&oacute;n de los musgos, incluso en el musgo tolerante a la deshidrataci&oacute;n <i>Tortula ruralis </i>alcanzan a ser el 10 % del peso seco (Proctor <i>et al.</i>, 2007). Aumentos en el contenido de az&uacute;cares solubles durante el estr&eacute;s h&iacute;drico tambi&eacute;n han sido reportados para el musgo <i>Atrichum androgynum </i>(Mayaba <i>et al.</i>, 2001), as&iacute; como para el musgo <i>Physcomitrella patens </i>donde se report&oacute; un aumento en az&uacute;cares solubles de bajo peso molecular siendo el m&aacute;s importante la teanderosa (Nagao <i>et al.</i>, 2006).</p>      <p>Los contenidos de az&uacute;cares reductores no variaron durante los ciclos de deshidrataci&oacute;n-rehidrataci&oacute;n, por lo que se considera que no participan en la prevenci&oacute;n del da&ntilde;o por estr&eacute;s h&iacute;drico, adem&aacute;s en varios estudios se ha encontrado que los az&uacute;cares reductores desnaturalizan las prote&iacute;nas bajo d&eacute;ficit h&iacute;drico (Proctor y Tuba, 2002; Alpert 2006). En varias investigaciones con musgos tolerantes a la deshidrataci&oacute;n, entre ellos del g&eacute;nero <i>Tortula</i>, se ha encontrado que los az&uacute;cares reductores permanecen estables o disminuyen cuando se presenta la deshidrataci&oacute;n y que los contenidos de glucosa y fructosa son menos de un d&eacute;cimo del contenido de sacarosa (Smirnoff, 1992). Estas disminuciones en los contenidos de glucosa y fructosa se han observado en musgos tolerantes al congelamiento de la Ant&aacute;rtida como son <i>Schistidium antarctici</i>, <i>Ceratodon purpureus</i>, <i>Bryum pseudotriquetrum </i>y la hep&aacute;tica <i>Cephaloziella varians </i>(Brinda <i>et al.</i>, 2011).</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A la entidad financiadora del trabajo: Direcci&oacute;n de Investigaci&oacute;n Sede Bogot&aacute;, Universidad Nacional de Colombia. Al Sistema de Parques Naturales Nacionales, Parque Nacional Natural Chingaza por permitir el acceso para realizar la investigaci&oacute;n.</p>     <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>ALPERT P. Constraints of tolerance: why are desiccation-tolerant organisms so small or rare? J Evolution Biol. 2006;209:1575-1584.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-548X201200030001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>ANIC&Iacute;C   M,   TASIC   M,   FRONTASYEVA   MV,   TOMAS&Eacute;VIC   M,   RAJS&Iacute;C   S, STRELKOVA P, POPOVIC A, STEINNES E. Active biomonitoring with wet and dry moss: a case study in an urban area. Environ Che Lett. 2009;7(1):55-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-548X201200030001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>BRINDA J, FERNANDO C, TUBA Z, SLACK N, STARK L. Ecology of bryophytes in Mojave desert biological soil crusts: effects of elevated CO<sub>2</sub> on sex expression, stress tolerance, and productivity in the moss <i>Syntrichia caninervis </i>Mitt. Bryophyte Ecology and Climate Change. Cambridge University Press; 2011. p. 169-191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-548X201200030001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>DHINDSA R. Drought stress, enzymes of glutathione metabolism, oxidation injury and protein synthesis in <i>Tortula ruralis</i>. Physiology. 1991;95(2):648-651.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-548X201200030001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>DUBOIS M, GILLES K, HAMILTON J, RENERS P, SMITH F. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Anal Chem. 1956;28(3):350-356.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-548X201200030001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>HERNANDEZ C, GONZALEZ J, LOZADA A. Water relations of some mosses growing in pine forests of Tenerife. Lindbergia. 1999;24(1):15-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-548X201200030001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>MAYABA N, BECKETT R, CSINTALANJ Z, TUBA Z. ABA Increases the desiccation tolerance of photosynthesis in the afromontane understorey moss <i>Atrichum androgynum</i>. Ann  Bot.  2001;88(6):1093-1100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-548X201200030001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>MORENO L, CRESPO S, P&Eacute;REZ W, MELGAREJO LM. Pruebas bioqu&iacute;micas como herramientas para estudios en fisiolog&iacute;a. Cap&iacute;tulo 10, p. 187-248. En: Melgarejo LM, Editor. Experimentos en fisiolog&iacute;a vegetal. Departamento de Biolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia. Bogot&aacute;, Colombia; 2010. p. 187-205.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-548X201200030001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>MONTENEGRO LC, CHAPARRO M, BAR&Oacute;N A. Regulaci&oacute;n h&iacute;drica en cinco musgos del p&aacute;ramo de Chingaza. En: Estrategias adaptativas de plantas de p&aacute;ramo y del bosque altoandino en la cordillera Oriental de Colombia. Bonilla MA, editor. Universidad Nacional de Colombia; 2005. p. 3-24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-548X201200030001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>NAGAO M, OKU K, MINAMI A, MIZUNO K, SAKURAI M, ARAKAWA K, <i>et al. </i>Accumulation of theanderose in association with development of freezing tolerance in the moss physcomitrella patens. Phytochemistry. 2006;67(7):702-709.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-548X201200030001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>NELSON N. A photometric adaptation of Somogyi method for the determination of glucose. J Biol Chem. 1944;153:257-262.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-548X201200030001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>OLIVER M. Biochemical and molecular mechanisms of desiccation tolerance in bryophytes. In: Bryophyte Biology. Goffinet B, Shaw J, editors. Second Edition; 2009. p.  269-298.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-548X201200030001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>OLIVER M, VELTEN J, MISHLER B. Desiccation tolerance in bryophytes: a reflection of the primitive strategy for plant survival in dehydrating habitats? Integra. Comp  Biology.  2005;45(5):788-799.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-548X201200030001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>OLIVER A, HINCHA D, CROWE J. Looking beyond sugars: the role of amphiphilic solutes in preventing adventitious reactions in anhydrobiotes at low water contents. Comp Biochem Physiol. 2002;131(3):515-525.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-548X201200030001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>PROCTOR M. The bryophyte paradox: tolerance of desiccation, evasion of drought. Plant Ecol. 2000;151(1):41-49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-548X201200030001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>PROCTOR M, TUBA Z. Poikilohydry and homoihydry: antithesis or spectrum of possibilities? New Phytol. 2002;156(3):327-349.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-548X201200030001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>PROCTOR M, LIGRONE R, DUCKETT J. Desiccation tolerance in the moss <i>Polytrichum formosum</i>: physiological and fine-structural changes during desiccation and recovery. Ann Bot. 2007;99(6):75-93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-548X201200030001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>PROCTOR M, PENCE VC. Vegetative tissues: Bryophytes, vascular resurrection plants, and vegetative propogules. In: Desiccation and survival in plants: Drying without dying. Black M, Pritchard HW; 2002. p. 207-237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-548X201200030001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>REIGOSA M, PEDROL N. La ecofisiolog&iacute;a vegetal. En: La ecofisiolog&iacute;a vegetal, una ciencia de s&iacute;ntesis. Editorial Thomson; 2004. p. 1-58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-548X201200030001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>ROBINSON SA, WASLEY J, POPP M, LOVELOCK CE. Desiccation tolerance of three moss species from continental Antarctica. Aust J Plant Physiol. 2000;27:379-388.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-548X201200030001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>ROMERO  C,  ESPINOSA  A,  CUTANDA  M,  CORTINA  C,  HERN&Aacute;NDEZ  P, CULI&Aacute;&Ntilde;EZ A. La osmorregulaci&oacute;n: mecanismos y significado. En: La ecofisiolog&iacute;a vegetal, una ciencia de s&iacute;ntesis. Editorial Thomson; 2004. p. 603-620.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-548X201200030001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>SMIRNOFF N. The carbohydrates of bryophytes in relation to desiccation tolerance. J Bryol. 1992;17(2):185-191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-548X201200030001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>SOMOGYI M. Notes of sugar determination. J Biol Chem. 1952;195:19-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-548X201200030001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>      ]]></body><back>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Constraints of tolerance: why are desiccation-tolerant organisms so small or rare]]></article-title>
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<year>2006</year>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Active biomonitoring with wet and dry moss: a case study in an urban area]]></article-title>
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<year>2009</year>
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<source><![CDATA[Ecology of bryophytes in Mojave desert biological soil crusts: effects of elevated CO2 on sex expression, stress tolerance, and productivity in the moss Syntrichia caninervis Mitt]]></source>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Drought stress, enzymes of glutathione metabolism, oxidation injury and protein synthesis in Tortula ruralis]]></article-title>
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