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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[PRODUCCIÓN DE BIODIESEL A PARTIR DE MICROALGAS: PARÁMETROS DEL CULTIVO QUE AFECTAN LA PRODUCCIÓN DE LÍPIDOS]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The microalgae have the capacity to mitigate CO2 emissions and to produce lipids, which are considered with potential to obtain third-generation biofuel. This review provides updated information of the influence of culture conditions on the lipids production with high productivity and profile suitable for the biodiesel production. This document presents a compilation of research conclusions over the last 13 years around the world. In the literature consulted, the authors conclude that although the behavior of microalgae at physiological stress conditions, varies between species; the nutrients limitation, especially nitrogen and phosphorus, associated with heterotrophic growth or high irradiances in phototrophy are considered the most efficient strategies to increase the lipid content in microalgae, particularly triglycerides (consisting of saturated and monounsaturated fatty acids), which are excellent for the production of biodiesel. Also, it is reported that the lipid content increase and the number of unsaturated fatty acids decrease with the addition of small amounts of CO2 and harvesting the biomass it the stationary phase of growth.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <P align="center" ><font size="4">PRODUCCI&Oacute;N DE BIODIESEL A PARTIR DE MICROALGAS:    PAR&Aacute;METROS DEL CULTIVO QUE AFECTAN    LA PRODUCCI&Oacute;N DE L&Iacute;PIDOS  </font></p>      <P align="center">Biodiesel Production from Microalgae:    Cultivation Parameters that Affect Lipid Production </p>      <p>MARTHA TRINIDAD ARIAS PE&Ntilde;ARANDA<Sup>1</Sup>, M.Sc.; ALFREDO DE JES&Uacute;S    MART&Iacute;NEZ ROLD&Aacute;N<Sup>1</Sup>, M.Sc.; ROSA OLIVIA CA&Ntilde;IZARES    VILLANUEVA<Sup>1</Sup>, Ph. D.</p>           <p><Sup>1 </Sup>Departamento de Biotecnolog&iacute;a y Bioingenier&iacute;a, Centro de    Investigaci&oacute;n y de Estudios Avanzados del I.P.N., Ciudad de M&eacute;xico,    D.F., M&eacute;xico.    Autor de correspondencia: Rosa Olivia Ca&ntilde;izares Villanueva.    <a href="mailto:rcanizar@cinvestav.mx">rcanizar@cinvestav.mx</a>. Tel.: 52 5 557 473 800, ext.: 4342.    Fax: 52 5 557 473 800, ext.: 3315. </p>        <p>Presentado 3 de septiembre de 2012, aceptado 19 de noviembre de 2012, correcciones 22 de enero de 2013. </p>  <hr size="1">      <p><b>RESUMEN</b></p>      <p>Las microalgas poseen la capacidad para mitigar las emisiones de CO<Sub>2</Sub> y producir l&iacute;pidos, por lo que se consideran con potencial para la obtenci&oacute;n de biocombustibles de tercera generaci&oacute;n. La presente revisi&oacute;n proporciona informaci&oacute;n actualizada de la influencia de las condiciones de cultivo, sobre la obtenci&oacute;n de l&iacute;pidos con una productividad elevada y perfil adecuado para la producci&oacute;n de biodiesel, se proporciona una s&iacute;ntesis de resultados de investigaciones realizadas en los &uacute;ltimos 13 a&ntilde;os en diversas partes del mundo. En la literatura consultada, los autores concluyen que aunque el comportamiento de las microalgas ante condiciones de estr&eacute;s fisiol&oacute;gico es variable entre especies; la limitaci&oacute;n de nutrientes especialmente nitr&oacute;geno y f&oacute;sforo, asociado al crecimiento heterotr&oacute;fico o a altas intensidades luminosas en fototrof&iacute;a se consideran como las estrategias m&aacute;s eficientes para incrementar el contenido de l&iacute;pidos en las microalgas, en particular de triglic&eacute;ridos constituidos por &aacute;cidos grasos saturados y monoinsaturados, ideales para la producci&oacute;n de biodiesel. De igual forma, se&ntilde;alan que la presencia de peque&ntilde;as cantidades de CO<Sub>2</Sub> y la cosecha de la biomasa en la fase estacionaria de crecimiento, incrementan el contenido de l&iacute;pidos y disminuyen el n&uacute;mero de insaturaciones de los &aacute;cidos grasos que lo conforman. </p>      <p>Palabras clave: biocombustibles, microalgas, l&iacute;pidos, &aacute;cidos grasos. </p> <hr size="1">      <p><b>ABSTRACT</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>The microalgae have the capacity to mitigate CO<Sub>2</Sub> emissions and to produce lipids, which are considered with potential to obtain third-generation biofuel. This review provides updated information of the influence of culture conditions on the lipids production with high productivity and profile suitable for the biodiesel production. This document presents a compilation of research conclusions over the last 13 years around the world. In the literature consulted, the authors conclude that although the behavior of microalgae at physiological stress conditions, varies between species; the nutrients limitation, especially nitrogen and phosphorus, associated with heterotrophic growth or high irradiances in phototrophy are considered the most efficient strategies to increase the lipid content in microalgae, particularly triglycerides (consisting of saturated and monounsaturated fatty acids), which are excellent for the production of biodiesel. Also, it is reported that the lipid content increase and the number of unsaturated fatty acids decrease with the addition of small amounts of CO<Sub>2</Sub> and harvesting the biomass it the stationary phase of growth. </p>      <p>Keywords: biofuels, microalgae, lipids, fatty acids. </p>  <hr size="1">       <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>      <p>En la actualidad existe una tendencia internacional hacia la b&uacute;squeda de combustibles m&aacute;s limpios y nuevas fuentes de energ&iacute;a de baja emisi&oacute;n de carbono, como la energ&iacute;a solar, la t&eacute;rmica, la fotovoltaica, la hidroel&eacute;ctrica, la geot&eacute;rmica, la e&oacute;lica y los biocombustibles, entre otras; las cuales est&aacute;n siendo evaluadas y se encuentran en diferentes fases de estudio y aplicaci&oacute;n, cada una con sus propias ventajas y problemas. En este escenario, se espera que los biocombustibles l&iacute;quidos, biodiesel y bioetanol puedan sustituir al gas&oacute;leo y la gasolina respectivamente (Posten y Schaub, 2009), promuevan nuevas fuentes de empleo en las zonas rurales, reduzcan las emisiones de gases efecto invernadero y aumenten la seguridad de abastecimiento energ&eacute;tico (Mata <i>et al.</i>, 2010). El biodiesel es un combustible sustituto del gas&oacute;leo o diesel de petr&oacute;leo, compuesto por una mezcla de &eacute;steres alqu&iacute;licos de &aacute;cidos grasos (FAME) de cadena larga (C<Sub>14</Sub>- C<Sub>22</Sub>), obtenidos por transesterificaci&oacute;n de aceites vegetales, grasas animales, aceites usados o l&iacute;pidos de microalgas (Miao y Wu, 2006; Demirbas, 2009). El uso del biodiesel como combustible puede ser puro (100 % o B100) o mezclado con diesel derivado del petr&oacute;leo (BXX - donde XX indica el porcentaje de biodiesel en la mezcla) y suele emplearse en cualquier motor diesel con poca o ninguna modificaci&oacute;n y no requiere nueva infraestructura de abastecimiento (Demirbas, 2009). El uso de biodiesel como recurso energ&eacute;tico resulta atractivo porque se deriva de una fuente renovable que podr&iacute;a ser suministrada de manera sostenible (Huang <i>et al.</i>, 2010), por lo que disminuye la dependencia al petr&oacute;leo y presenta diferentes ventajas frente al diesel como que es biodegradable y menos t&oacute;xico (Miao y Wu, 2006; Xue <i>et al.</i>, 2006), adem&aacute;s no contiene compuestos arom&aacute;ticos, tiene un perfil m&aacute;s favorable de gases de combusti&oacute;n (tal como una baja emisi&oacute;n de mon&oacute;xido de carbono, azufre, part&iacute;culas en suspensi&oacute;n e hidrocarburos sin quemar) (Halek <i>et al.</i>, 2009; Widjaja <i>et al.</i>, 2009; Huang <i>et al.</i>, 2010); su punto de ignici&oacute;n es relativamente alto (150 &deg;C) lo que lo hace menos vol&aacute;til y m&aacute;s seguro de transportar o manejar; su n&uacute;mero de cetano es mayor; lo que otorga ventajas al proceso de combusti&oacute;n; posee propiedades lubricantes que reducen el desgaste de los motores y extiende su vida &uacute;til (Huang <i>et al.</i>, 2010). Sin embargo, las emisiones de &oacute;xidos de nitr&oacute;geno pueden aumentar y el uso de biodiesel puro (B100) puede generar problemas de arranque en fr&iacute;o, por lo que el tanque de combustible requerir&iacute;a calefacci&oacute;n en climas con temperaturas bajas y la substituci&oacute;n de algunos materiales empleados en mangueras, juntas, etc. por elast&oacute;meros compatibles con el biodiesel (Rosillo, 2006).      <p>El biodiesel ha ido ganando popularidad mundial como fuente de energ&iacute;a renovable debido a sus ventajas econ&oacute;micas, ambientales y sociales. Los cinco principales productores de biodiesel en el mundo son Estados Unidos, Alemania, Francia, Argentina y Brasil. Se espera que con los incentivos de los gobiernos para aumentar la producci&oacute;n y consumo de combustibles renovables, la producci&oacute;n mundial de biodiesel se incremente de 21,4 billones de litros en el 2011 a 45,3 billones de litros en el 2020 (Global Data, 2010).      <p>Aunque desde hace m&aacute;s de veinte a&ntilde;os se han venido realizando investigaciones para obtener biodiesel a partir de aceite microalgal (Nagle y Lemke, 1990), en la &uacute;ltima d&eacute;cada este tema ha ganado mucha fuerza, especialmente en el sector privado y acad&eacute;mico. En el entorno laboratorio, investigadores de todo el mundo han demostrado el potencial de varias especies de microalgas como materia prima para producir biodiesel, se destaca el trabajo financiado por el Departamento de Energ&iacute;a de los Estados Unidos, sobre especies acu&aacute;ticas, realizado de 1978 a 1996 por el Laboratorio Nacional de Energ&iacute;a Renovable (NREL por sus siglas en ingl&eacute;s) con el objetivo de producir biodiesel a partir de aceite de microalgas cultivadas en estanques, utilizando como fuente de carbono el CO<Sub>2</Sub> liberado en centrales termoel&eacute;ctricas. En dicha investigaci&oacute;n se lograron avances importantes en la manipulaci&oacute;n del metabolismo de las algas y en la ingenier&iacute;a de los sistemas de producci&oacute; n (Sheehan <i>et al.</i>, 1998). Estos y otros resultados han despertado el inter&eacute;s de algunas compa&ntilde;&iacute;as por invertir en la b&uacute;squeda de estrategias de cultivo de especies de microalgas denominadas oleaginosas para producir biocombustibles para diferentes usos. Estas empresas se encuentran ubicadas en Estados Unidos (78 %), Europa (13 %) y el resto del mundo (9 %) (Singh y Gu, 2010).      <p>Mientras que algunas compa&ntilde;&iacute;as como Solazyme (<a href="http://www.solazyme.com" class="s7" target="_blank">www.solazyme.com</a>), Aurora Algae (<a href="http://www.aurorainc.com" class="s7" target="_blank">www.aurorainc.com</a>), Bionavitas (<a href="http://www.bionavitas.com" class="s7" target="_blank">www.bionavitas.com</a>), Seambiotic (<a href="http://www.seambiotic.com" class="s7" target="_blank">www.seambiotic.com</a>) y Solix (<a href="http://www.solixbiofuels.com" class="s7" target="_blank">www.solixbiofuels.com</a>) se han enfocado en la b&uacute;squeda de estrategias de cultivo para mejorar la productividad de los l&iacute;pidos en las microalgas, otras como OriginOil (<a href="http://www.originoil.com" class="s7" target="_blank">http://www.originoil.com</a>) est&aacute;n interesadas en encontrar m&eacute;todos de cosecha de la biomasa, extracci&oacute;n del aceite o en los procesos para producir el combustible, incluso para aviones como Algae.Tec Ltd. (<a href="http://algaetec.com.au" class="s7" target="_blank">http://algaetec.com.au</a>), Dynamic Fuels (<a href="http://www.dynamicfuelsllc.com" class="s7" target="_blank">www.dynamicfuelsllc.com</a>), Solazyme (<a href="http://solazyme.com" class="s7" target="_blank">http://solazyme.com</a>), General Atomics (<a href="http://www.ga.com" class="s7" target="_blank">http://www.ga.com</a>); la gran mayor&iacute;a trabajando bajo el concepto de biorefiner&iacute;a para aprovechar de manera integral la biomasa y minimizar costos. </p>     <p>Actualmente en el mundo se est&aacute;n invirtiendo muchos recursos para investigaci&oacute;n, dirigida a minimizar los costos de la materia prima para la obtenci&oacute;n de biodiesel (Li <i>et al.</i>, 2007), algunos estudios recientes se han inclinado en el uso de semillas de jatropha y karanja y de microalgas como fuente de l&iacute;pidos, sin embargo, para que cualquiera de ellas pueda sustituir eventualmente los combustibles f&oacute;siles debe tener caracter&iacute;sticas como ser competitiva en cuanto a su precio con respecto a los combustibles derivados del petr&oacute;leo, requerir poca cantidad de suelo y agua, que contribuya a mejorar la calidad del aire (por ejemplo, que en su proceso de producci&oacute;n se utilice CO<Sub>2</Sub>), que exista en cantidad suficiente para que dicha producci&oacute;n tenga un impacto significativo en la demanda y que proporcione una ganancia neta de energ&iacute;a sobre la demandada para producirlo (Demirbas, 2009; Meng <i>et al.</i>, 2009). Un aspecto de vital importancia es que el biocombustible obtenido cumpla con las especificaciones de calidad internacionales (ASTM D6751; EN 14214). El uso de microalgas podr&iacute;a cumplir estas condiciones, y por lo tanto, contribuir de manera significativa a la resoluci&oacute;n de la demanda de energ&iacute;a primaria y al mismo tiempo, proporcionar beneficios ambientales a trav&eacute;s de la captura de CO<Sub>2</Sub> (Wang <i>et al.</i>, 2008; Brennan y Owende, 2010). Las ventajas del uso de microalgas para la obtenci&oacute;n de biodiesel ya han sido demostradas, sin embargo, a&uacute;n no se ha definido una cepa ideal, dada la diversidad de factores que influyen en la productividad de los l&iacute;pidos y por ende en el costo de producci&oacute;n del biodiesel. En esta revisi&oacute;n se muestran de manera cronol&oacute;gica los esfuerzos que se han venido invirtiendo en los &uacute;ltimos 20 a&ntilde;os para determinar la influencia de algunos par&aacute;metros del cultivo de microalgas sobre la productividad de los l&iacute;pidos y el perfil de &aacute;cidos grasos que los componen. </p>      <p>MICROALGAS COMO FUENTE DE L&Iacute;PIDOS PARA LA OBTENCI&Oacute;N DE BIODIESEL </p>      <p>El inter&eacute;s en las microalgas para la producci&oacute;n de biodiesel se debe a su alto contenido de l&iacute;pidos en algunas especies y al hecho de que la s&iacute;ntesis de estos, especialmente de triglic&eacute;ridos (TG) no polares (que son el mejor sustrato para la producci&oacute;n de biodiesel), puede ser manipulada por cambios de las condiciones de cultivo. Adicionalmente, las microalgas poseen algunas ventajas sobre otras materias primas disponibles, entre las que se pueden mencionar: </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&ndash; Mayor eficiencia fotosint&eacute;tica que las plantas superiores (Meng <i>et al.</i>, 2009; Posten y Schaub, 2009), logrando convertir entre el 3 y el 8 % de la energ&iacute;a solar en biomasa, mientras que el rendimiento observado en las plantas es de aproximadamente un 0,5 % (Lardon <i>et al.</i>, 2009). </p>       <p>&ndash; Tasa de crecimiento elevada, duplicando su biomasa en aproximadamente 24 horas (Meng <i>et al.</i>, 2009). </p>          <p>&ndash; Periodos de cosecha muy cortos (menores a diez d&iacute;as dependiendo del proceso), lo que permite m&uacute;ltiples o continuas cosechas a diferencia de las plantas que se cosechan una o dos veces por a&ntilde;o (Vyas <i>et al.</i>, 2010). </p>       <p>&ndash; C&aacute;lculos te&oacute;ricos estiman que las microalgas tienen el potencial para producir mayor cantidad de biomasa y de aceite por hect&aacute;rea que cualquier planta oleaginosa (Chisti, 2007; Mata <i>et al.</i>, 2010). </p>       <p>&ndash; F&aacute;cil cultivo, crecen casi en cualquier lugar y solo necesitan luz del sol y algunos nutrientes. Pueden cultivarse en zonas &aacute;ridas y semi&aacute;ridas, donde no pueden desarrollarse cultivos agr&iacute;colas, pueden utilizar agua no potable y su cultivo no requiere la adici&oacute;n de herbicidas o pesticidas (Avagyan, 2008). </p>       <p>&ndash; Capaces de fijar grandes cantidades de CO<Sub>2</Sub> (Amin, 2009; Sydney <i>et al.</i>, 2010), su demanda estequiom&eacute;trica de CO<Sub>2</Sub> es de aproximadamente 1,7 kg de CO<Sub>2</Sub>/kg de biomasa seca (Packer, 2009; Posten y Schaub, 2009; Rodolfi <i>et al.</i>, 2009), lo que permitir&iacute;a acoplar su producci&oacute;n a una corriente de gases de combusti&oacute;n industrial para disminuir el efecto invernadero y contribuir al restablecimiento del equilibrio t&eacute;rmico del planeta (Lim y Teong, 2010). </p>          <p>&ndash; Capacidad para utilizar los nutrientes de aguas residuales en su crecimiento (especialmente nitr&oacute;geno y f&oacute;sforo) (Xue <i>et al.</i>, 2006; Kim <i>et al.</i>, 2007; Chinnasamy <i>et al.</i>, 2010; Xin <i>et al.</i>, 2010a, Xin <i>et al.</i>, 2010b), podr&iacute;a disminuir el costo del medio de cultivo y evitar la descarga de estos nutrientes a cuerpos de agua. </p>     <p>&ndash; La biomasa residual, posterior a la extracci&oacute;n de los l&iacute;pidos, encuentra aplicaci&oacute;n en las industrias alimentaria, farmac&eacute;utica, agropecuaria e incluso en la producci&oacute;n de alcoholes combustibles y en la generaci&oacute;n de energ&iacute;a (Wang <i>et al.</i>, 2008; Zamalloa <i>et al.</i>, 2012) </p>     <p>Aun cuando las microalgas tienen tasas de crecimiento superiores y su fotos&iacute;ntesis es m&aacute;s eficiente que la de las plantas terrestres (Chisti, 2007; Li <i>et al.</i>, 2008; Liu <i>et al.</i>, 2008), un obst&aacute;culo importante para la producci&oacute;n de su aceite es el costo relativamente elevado, lo cual se espera superar con el avance tecnol&oacute;gico. El principal reto para el desarrollo de un proceso de producci&oacute;n de biodiesel a partir de aceite de microalgas es la obtenci&oacute;n de los l&iacute;pidos a un costo competitivo, esto puede lograrse a trav&eacute;s de la selecci&oacute;n de las mejores cepas y condiciones de cultivo que permitan alcanzar la m&aacute;xima productividad de l&iacute;pidos con un perfil de &aacute;cidos grasos que otorgue calidad al biodiesel; la comercializaci&oacute;n de diferentes subproductos como la torta de biomasa residual y la glicerina del proceso de transesterificaci&oacute;n; y la disminuci&oacute;n de los costos de cosecha, extracci&oacute;n de l&iacute;pidos y su conversi&oacute;n a biodiesel (Demirbas, 2003; Brennan y Owende, 2010). Un factor importante para el &eacute;xito global de la producci&oacute;n de biocombustibles, es la selecci&oacute;n de la cepa de microalga, por lo que esta debe hacerse de acuerdo a factores como la productividad de los l&iacute;pidos, expresada como cantidad de l&iacute;pidos por unidad de volumen y de tiempo (g de l&iacute;pidos/l.d) y su capacidad de adaptarse a ambientes extremos (temperatura, salinidad, pH, etc.) (Brennan y Owende, 2010). </p>     <p>Las microalgas bajo condiciones normales de cultivo presentan un contenido de l&iacute;pidos que por lo general varia entre el 20 y el 50 % de su peso seco, sin embargo cuando son sometidas a situaciones de estr&eacute;s, frecuentemente incrementan su fracci&oacute;n lip&iacute;dica, por lo que se han reportado valores en rangos m&aacute;s amplios como se se&ntilde;ala en la <a href="#tabla 1">Tabla 1</a>. Las especies predominantes de microalgas para la obtenci&oacute;n de l&iacute;pidos y su posterior conversi&oacute;n a biodiesel se encuentran dentro del grupo de las algas verdes. De acuerdo al Instituto de Investigaci&oacute;n en Energ&iacute;a Solar (SERI por sus siglas en ingl&eacute;s), las especies m&aacute;s prometedoras son <i><i>Nannochloropsis</i> salina </i>y <i>Dunaliella salina </i>por su elevada concentraci&oacute;n de &aacute;cidos grasos. De igual forma, el NREL en Estados Unidos report&oacute; que <i>Dunaliella</i>, <i>Scenedesmus </i>y <i>Chlorella </i>son los g&eacute;neros m&aacute;s populares que se han cultivado con &eacute;xito a escala comercial para la obtenci&oacute;n de biodiesel (Sheehan <i>et al.</i>, 1998). En la <a href="#tabla 1">tabla 1</a> se presenta el porcentaje en peso de l&iacute;pidos de algunas microalgas y se pueden apreciar diferencias significativas entre g&eacute;neros y especies. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="tabla 1"><img src="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a4t1.jpg"></a></p>      <p>Aun cuando bajo condiciones de estr&eacute;s algunas microalgas pueden alcanzar contenidos de l&iacute;pidos superiores al 40 %, la calidad del biodiesel es considerablemente afectada por la composici&oacute;n de los &aacute;cidos grasos de los l&iacute;pidos (Knothe, 2008). No todos los l&iacute;pidos resultan satisfactorios para la obtenci&oacute;n de biodiesel, por ejemplo, los l&iacute;pidos producidos por <i>Botryococcus braunii </i>son en su mayor&iacute;a grandes mol&eacute;culas de hidrocarburos que resultan ideales para la producci&oacute;n de biocombustibles l&iacute;quidos por medio de licuefacci&oacute;n o pir&oacute;lisis, pero no pueden ser utilizados para la producci&oacute;n de biodiesel por transesterificaci&oacute;n. Los triglic&eacute;ridos ricos en &aacute;cidos grasos poliinsaturados son menos deseables para la producci&oacute;n de biodiesel, pues disminuyen el n&uacute;mero de cetano y la estabilidad a la oxidaci&oacute;n del combustible; mientras que triglic&eacute;ridos ricos en &aacute;cidos grasos saturados y monoinsaturados en el intervalo de C16 C20, especialmente en &aacute;cido oleico resultan ideales para la producci&oacute;n de biodiesel (Imahara <i>et al.</i>, 2006; Meng <i>et al.</i>, 2009, Ramos <i>et al.</i>, 2009). Hasta el momento no se conoce una cepa de microalga capaz de satisfacer al mismo tiempo todos los requisitos que permitan considerarla como materia prima &oacute;ptima para la producci&oacute;n de biocombustibles. En este sentido, es pertinente la identificaci&oacute;n de una cepa adecuada de microalga para cultivo masivo y conocer su respuesta a diferentes condiciones de cultivo. En la producci&oacute;n comercial de microalgas resulta clave la adaptaci&oacute;n de la cepa a su medio ambiente local, de tal forma que esta sea capaz de resistir tanto las condiciones ambientales como a los invasores locales, lo que constituye una clara ventaja de las cepas aut&oacute;ctonas sobre cepas introducidas, por tanto el aislamiento y caracterizaci&oacute;n de cepas locales para la producci&oacute;n de biocombustibles debe ser considerado. </p>      <p>ETAPAS PARA LA PRODUCCI&Oacute;N DE BIODIESEL A PARTIR DE MICROALGAS </p>     <p>El proceso de producci&oacute;n de biodiesel a partir de microalgas (<a href="#Fig.1">Fig. 1</a>), se inicia con el cultivo de la cepa para la obtenci&oacute;n de biomasa con una alta productividad de l&iacute;pidos, seguido de la separaci&oacute;n de la biomasa del medio de cultivo y posterior extracci&oacute;n de los l&iacute;pidos para finalmente obtener el biodiesel por una reacci&oacute;n de transesterificaci&oacute;n, de forma similar a como se produce a partir de cualquier aceite vegetal.</p>     <p align="center"><a name="Fig.1"><img src="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a4f1.jpg"></a></p>      <p>CULTIVO DE MICROALGAS </p>      <p>En general, las microalgas dependen para su crecimiento de un suministro de carbono y de una fuente de luz para realizar la fotos&iacute;ntesis. Sin embargo, como respuesta a cambios en las condiciones ambientales, pueden poner en funcionamiento diversos tipos de metabolismo (fotoautotr&oacute;fico, heterotr&oacute;fico, mixotr&oacute;fico, fotoheterotr&oacute;fico). Al considerar el empleo de microalgas para la producci&oacute;n de biodiesel, es importante definir cuantitativamente la influencia de factores que intervienen en su crecimiento y que favorecen la producci&oacute;n de l&iacute;pidos, as&iacute; como su interrelaci&oacute;n para poder manipularlos en la obtenci&oacute;n de biomasa con determinadas caracter&iacute;sticas. Est&aacute; demostrado que tanto el contenido de l&iacute;pidos como el perfil de &aacute;cidos grasos de las microalgas var&iacute;a no solo entre especies sino tambi&eacute;n en funci&oacute;n de las condiciones del cultivo (Miao y Wu, 2006; Hu <i>et al.</i>, 2008; Converti <i>et al.</i>, 2009; Meng <i>et al.</i>, 2009; Mata <i>et al.</i>, 2010), del periodo de cosecha y la edad del cultivo (Mandal y Mallick, 2009; Widjaja <i>et al.</i>, 2009). Entre las condiciones de cultivo afectan factores abi&oacute;ticos como la concentraci&oacute;n de nutrientes, la calidad y cantidad de luz, la temperatura, el O<Sub>2</Sub>, el CO<Sub>2</Sub>, el pH, la salinidad y factores operacionales como mezclado y la edad del cultivo. En la <a href="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a4t2.jpg" target="_blank">tabla 2</a> se presenta el contenido y productividad de l&iacute;pidos de varias especies de microalgas bajo diversas condiciones de cultivo, en las siguientes secciones se discute en detalle el efecto de cada par&aacute;metro del cultivo sobre la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos y el perfil lip&iacute;dico. </p>         <p>EFECTO DE LA CONCENTRACI&Oacute;N DE NUTRIENTES</p>     <p>El nitr&oacute;geno ha sido demostrado como el principal regulador en el crecimiento y acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos (Rodolfi <i>et al.</i>, 2009 Yeh y Chang, 2012).  Cuando  un cultivo es expuesto a una intensidad luminosa adecuada, pero con limitaci&oacute;n de nutrientes, se disminuye la tasa de divisi&oacute;n celular (aunque se sigue convirtiendo energ&iacute;a solar en energ&iacute;a qu&iacute;mica), pero a menor velocidad y como mecanismo de supervivencia, entonces se desv&iacute;a el flujo de carbono fijado por la fotos&iacute;ntesis a s&iacute;ntesis de l&iacute;pidos o carbohidratos (Meng <i>et al.</i>, 2009; Pruvost <i>et al.</i>, 2009; Rodolfi <i>et al.</i>, 2009). Dado que la disminuci&oacute;n de nutrientes limita el crecimiento celular, al momento  de seleccionar las condiciones de cultivo que favorezcan la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos, es necesario maximizar su productividad volum&eacute;trica para cada cepa.</p>     <p> Las investigaciones realizadas para inducir la s&iacute;ntesis de l&iacute;pidos a peque&ntilde;a escala, concuerdan que bajo condiciones limitantes de nitr&oacute;geno se reduce el crecimiento, mientras que existe una gran variaci&oacute;n en el contenido de l&iacute;pidos y su perfil de &aacute;cidos grasos. Algunas especies del g&eacute;nero <i>Chlorella</i> acumulan almid&oacute;n en condiciones de deficiencia de nitr&oacute;geno, mientras que otras acumulan l&iacute;pidos predominantemente neutros (Illman <i>et al.</i>, 2000). Las microalgas son capaces de crecer y sintetizar l&iacute;pidos empleando diversas fuentes de nitr&oacute;geno, y se ha reportado al nitrato como la mejor fuente de nitr&oacute;geno para <i>Chlorella protothecoides</i> (Shen <i>et al.</i>, 2009, Shen <i>et al.</i>, 2010), <i>Dunaliella tertiolecta</i> (Chen <i>et al.</i>, 2011b) y <i>Neochloris oleoabundans</i> (Li <i>et al.</i>, 2008). Mientras que <i>Scenedesmus dimorphus</i> y <i>Scenedesmus rubescens</i> presentaron  mayor afinidad por urea y amonio,  respectivamente (Shen <i>et al.</i>,   2009; Lin y Lin, 2011) y en <i>Chlorella saccharophila</i> se observ&oacute; mejor crecimiento con peptona como fuente de nitr&oacute;geno que con nitrato y amonio (Isleten <i>et al.</i>, 2012).  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n  de nitr&oacute;geno en el medio de cultivo bajo condiciones fotoautotr&oacute;ficas permiti&oacute; que el contenido de l&iacute;pidos alcanzara valores cercanos o superiores al 40 % en varias especies de <i>Chlorella</i> (Illman <i>et al.</i>, 2000; Widjaja <i>et al.</i>,   2009; Yeh y Chang, 2012),  <i>Nannochloropsis</i> sp. (Rodolfi <i>et al.</i>, 2009; Pal <i>et al.</i>, 2011), <i>Nannochloris</i> sp. (Takagi <i>et al.</i>, 2000) y <i>Neochloris oleoabundans</i>  (Pruvost <i>et al.</i>, 2009),  y valores superiores al 20 % para <i>Tetraselmis suecica</i> (Rodolfi <i>et al.</i>, 2009), <i>Spirulina maxima</i> (Macedo y Alegre, 2001), y <i>Scenedesmus</i> sp. (Xin <i>et al.</i>, 2010a); en algunas especies asociada a una disminuci&oacute;n de la productividad lip&iacute;dica. Mientras que en otras especies como <i>Nannochloropsis</i> sp. en condiciones a la intemperie en fotobiorreactores (FBRs) de   110 litros (Rodolfi <i>et al.</i>, 2009),  <i>Chlorella  vulgaris</i> (Converti <i>et al.</i>, 2009),  <i>Nannochloris oculata</i>  y <i>Chlorella</i>  sp. (Hsieh y Wu, 2009; Praveenkumar <i>et al.</i>, 2012)  adem&aacute;s  de un aumento  en la contenido  de l&iacute;pidos, se observ&oacute; un aumento  en su productividad.  </p>      <p>Por el contrario, Rodolfi <i>et al.</i> (2009) observaron que la disminuci&oacute;n en el contenido de nitr&oacute;geno no afect&oacute; la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos de <i>Chlorella</i> sp. y <i>Scenedesmus</i> sp. Damiani <i>et al.</i>, 2010 reportaron para <i>Haematococcus  pluvialis</i> una disminuci&oacute;n en el contenido  de l&iacute;pidos al asociar bajas concentraciones de nitr&oacute;geno con una alta intensidad de luz. La limitaci&oacute;n combinada de nutrientes (N, K, P) favoreci&oacute; la acumulaci&oacute;n  de l&iacute;pidos en <i>Chlorella</i> sp. (Praveenkumar <i>et al.</i>, 2012) y algunas especies del g&eacute;nero <i>Scenedesmus</i>. Como se ha mencionado  el g&eacute;nero Scenedesmus en condiciones normales de cultivo posee un contenido  de l&iacute;pidos entre 9 % - 21 % (Mandal y Mallick, 2009; Xin <i>et al.</i>, 2010c; Arias <i>et al.</i>, 2011b; Lin <i>et al.</i>, 2012) y la limitaci&oacute;n combinada de nitrato y fosfato estimul&oacute; su acumulaci&oacute;n  hasta  un 53 % pero con bajas productividades de l&iacute;pidos (Mandal  y Mallick, 2009; Xin <i>et al.</i>, 2010c; Tan y Lin, 2011). De igual forma se ha reportado que la adici&oacute;n de hierro al medio de cultivo promueve la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos, como se observ&oacute; en <i>Chlorella vulgaris</i> (Liu <i>et al.</i>, 2008) y <i>Scenedesmus rubescens</i> (Lin <i>et al.</i>, 2012).</p>      <p>EFECTO DE LA FUENTE  DE CARBONO</p>     <p>Dependiendo del tipo de metabolismo utilizado por las microalgas para su crecimiento, la fuente de carbono  puede ser org&aacute;nica (glucosa, acetato,  glicerol, fructosa,  entre otras), o inorg&aacute;nica (CO<Sub>2</Sub>). Fotoautotr&oacute;ficamente, las microalgas utilizan la luz como fuente de energ&iacute;a y el CO<Sub>2</Sub> como fuente de carbono  para obtener  energ&iacute;a qu&iacute;mica a trav&eacute;s de la fotos&iacute;ntesis (Huang <i>et al.</i>, 2010); heterotr&oacute;ficamente, las microalgas en ausencia de luz utilizan solo compuestos  org&aacute;nicos como fuente de carbono y energ&iacute;a, (Chojnacka y Marquez, 2004); mixotr&oacute;ficamente, utilizan carbono  org&aacute;nico e inorg&aacute;nico como fuente de carbono y captan la energ&iacute;a de la luz y del carbono org&aacute;nico (Chen <i>et al.</i>, 2011a). La principal diferencia entre cultivos mixotr&oacute;ficos y fotoheterotr&oacute;ficos es que estos &uacute;ltimos requieren de luz para la incorporaci&oacute;n  del carbono  org&aacute;nico. Por lo tanto,  este tipo de cultivo necesita de luz y az&uacute;cares al mismo tiempo, la utilizaci&oacute;n de este tipo de cultivo para la producci&oacute;n  de l&iacute;pidos en microalgas es poco com&uacute;n.  </p>     <p>Las microalgas fotoaut&oacute;trofas pueden fijar CO<Sub>2</Sub> de tres fuentes diferentes: de la at- m&oacute;sfera, de los gases exhaustos de la industria o en forma de carbonatos solubles como Na<Sub>2</Sub>CO<Sub>3</Sub> y NaHCO<Sub>3</Sub> (Wang <i>et al.</i>, 2008). La concentraci&oacute;n  de CO<Sub>2</Sub> en la atm&oacute;sfera es de   0,03   - 0,06 % (0,36 mg/ml) y la mayor&iacute;a de las microalgas pueden tolerar niveles m&aacute;s   elevados de CO<Sub>2</Sub>, por lo general hasta 150 mg/ml, por lo que los gases de combusti&oacute;n de plantas de energ&iacute;a, que contienen hasta en 15 % de CO<Sub>2</Sub>, pueden ser alimentados al medio de cultivo de las microalgas (Brennan y Owende, 2010).   Las condiciones fotoautotr&oacute;ficas han sido las m&aacute;s utilizadas para el cultivo de microalgas con fines de obtenci&oacute;n de biodiesel y existe una gran variaci&oacute;n en el contenido de l&iacute;pidos obtenidos que va desde el 11 % al 63 %, dependiendo de la especie, generalmente asociado a la limitaci&oacute;n de nitr&oacute;geno, adici&oacute;n de CO<Sub>2</Sub> e incremento de la intensidad luminosa, para aumentar  el contenido  de l&iacute;pidos en la biomasa (<a href="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a4t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>).  </p>     <p>Diversos autores evaluaron el efecto del CO<Sub>2</Sub> sobre el crecimiento y contenido  celular de l&iacute;pidos de microalgas, estos mostraron  que la capacidad  de asimilar CO<Sub>2</Sub> varia con la especie y en algunas microalgas (Chiu <i>et al.</i>, 2008; Chiu <i>et al.</i>, 2009; Sforza <i>et al.</i>,   2012), altas concentraciones de CO<Sub>2</Sub> podr&iacute;an inhibir el crecimiento celular, mientras que la adici&oacute;n de un 2 % al medio de cultivo de <i>Chlorella</i> sp. y <i><i><i>Nannochloropsis</i> oculata</i> </i> (Chiu <i>et al.</i>, 2008; Chiu <i>et al.</i>, 2009) y de un 5 % al de <i>Chlorella protothecoides</i> (Sforza <i>et al.</i>, 2012), en condiciones limitadas de nitr&oacute;geno, estimul&oacute; la productividad de los l&iacute;pidos. De forma similar Tang <i>et al.</i>, 2011a, evaluaron la capacidad  de <i>Scenedesmus obliquus</i> y <i>Chlorella pyrenoidosa</i> para fijar CO<Sub>2</Sub> y acumular l&iacute;pidos en el intervalo de 0,03 % - 50 % de CO<Sub>2</Sub> y encontraron que las dos microalgas pueden crecer en todo el intervalo estudiado,  pero la mayor productividad de biomasa  se present&oacute;  a 5 % y 10 % de CO<Sub>2</Sub> para <i>S. obliquus</i> y <i>C. pyrenoidosa</i> respectivamente, adem&aacute;s  de que altos niveles de CO<Sub>2</Sub> (&gt; 30 %) favorecieron la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos.  </p>      <p>Algunas especies de microalgas presentan mayor velocidad de crecimiento (Azma <i>et al.</i>,   2011; Liu <i>et al.</i>, 2011) y productividad de l&iacute;pidos (Xiong <i>et al.</i>, 2008; Shen <i>et al.</i>, 2009; Shen   <i>et al.</i>, 2010; Azma <i>et al.</i>, 2011) en condiciones heterotr&oacute;ficas.  Entre las especies aptas para el cultivo heterotr&oacute;fico, <i>Chlorella</i> ha sido ampliamente estudiada, en especial <i>Chlorella</i> protothecoides ha mostrado a nivel laboratorio, en cultivos con glucosa y bajas concentraciones de nitr&oacute;geno, valores de l&iacute;pidos 3,4 veces mayores que en condiciones fotoautotr&oacute;ficas (Miao y Wu, 2004; Miao y Wu, 2006) y valores de productividad de l&iacute;pidos entre   654 mg/l.d y 3702 mg/l.d (Xu <i>et al.</i>, 2006; Xiong <i>et al.</i>, 2008; Shen <i>et al.</i>, 2009; Shen <i>et al.</i>,   2010).  </p>     <p>De igual forma, Liu <i>et al.</i>, 2011 reportaron que al cultivar c&eacute;lulas de <i>Chlorella zofingiensis </i>con 30 g/l de glucosa en la oscuridad,  se obtuvo un rendimiento mayor de biomasa  (411 %), l&iacute;pidos totales (98 %) y una productividad de l&iacute;pidos de 354 mg/l.d equivalente a 911 % comparado con c&eacute;lulas el cultivo fotoautotr&oacute;fico, predominando los l&iacute;pidos neutros, especialmente triglic&eacute;ridos.   De igual forma Azma <i>et al.</i> (2011), en un cultivo de Tetraselmis suecica creciendo en condiciones heterotr&oacute;ficas  con un medio de cultivo optimizado,  reportaron una concentraci&oacute;n celular de 28,88 g/l, tres veces superior a la obtenida en cultivo fotoautotr&oacute;fico (8,40 g/l) y el contenido de l&iacute;pidos se duplic&oacute; obteniendo una productividad de l&iacute;pidos de 2582 mg/l.d .   Aun cuando  el cultivo  heterotr&oacute;fico  podr&iacute;a  evitar  los problemas  asociados  con la limitaci&oacute;n de luz ocasionada por la alta densidad celular en fotobiorreactores grandes en cultivos fototr&oacute;ficos,  pocas especies pueden crecer heterotr&oacute;ficamente, adem&aacute;s de que este tipo de cultivo tiene varias limitaciones entre las que se pueden mencionar los problemas de contaminaci&oacute;n en cultivos abiertos y el costo del sustrato; por esta raz&oacute;n algunos estudios se han centrado en la b&uacute;squeda  de fuentes de carbono org&aacute;nico m&aacute;s econ&oacute;micas, como residuos org&aacute;nicos industriales o aguas residuales municipales. Xu <i>et al.</i> (2006),  utilizaron polvo de ma&iacute;z hidrolizado en lugar de glucosa para cultivar <i>Chlorella  protothecoides</i>, lo que result&oacute; en una alta producci&oacute;n  de biomasa (2 g/l.d), un contenido de l&iacute;pidos cuatro veces mayor que en condiciones fotoautotr&oacute;ficas (55,2 %) y una alta productividad de l&iacute;pidos (932 mg/l.d).  </p>     <p>El cultivo mixotr&oacute;fico tambi&eacute;n ha mostrado ser una buena estrategia para aumentar la productividad de l&iacute;pidos en algunas especies de <i>Chlorella</i> (Liang <i>et al.</i>, 2009; Cheirsilp y Torpee, 2012; Yeh y Chang, 2012) con el beneficio adicional de que se producen metabolitos fotosint&eacute;ticos como &beta; -caroteno, astaxantina y lute&iacute;na. Liang <i>et al.</i>, 2009 evaluaron la productividad de l&iacute;pidos de <i>Chlorella vulgaris</i> en condiciones fotoautotr&oacute;ficas, heterotr&oacute;ficas  y mixotr&oacute;ficas y encontraron que la velocidad de crecimiento en condiciones fotoautotr&oacute;ficas fue mucho menor comparada con el crecimiento heterotr&oacute;fico y la mayor productividad de l&iacute;pidos de 54&plusmn; 2 mg/l.d se obtuvo en condiciones mixotr&oacute;ficas con 1 % de glucosa y luz. Por otra parte, Yeh <i>et al.</i> (2012) evaluaron el crecimiento y contenido  de l&iacute;pidos de <i>Chlorella vulgaris</i> en cultivo fotoheterotr&oacute;fico con diferentes fuentes de carbono carbono (glucosa, fructosa, sacarosa, glicerol, acetato de sodio y &aacute;cido ac&eacute;tico) encontrando que con &aacute;cido ac&eacute;tico se obtuvo la mayor productividad de l&iacute;pidos de 78 mg/l.d con un contenido  de l&iacute;pidos del 50 %. </p>     <p>Recientemente Zheng <i>et al.</i>, 2012 reportaron las ventajas de utilizar c&eacute;lulas heter&oacute;trofas como in&oacute;culo de un cultivo fotoautotr&oacute;fico en estanques abiertos para la producci&oacute;n a gran escala de biomasa con alto contenido  de l&iacute;pidos de <i>Chlorella sorokiniana</i>; adicionalmente  compararon el desempe&ntilde;o  de cultivos  fotoautotr&oacute;ficos  y heterotr&oacute;ficos encontrando que la velocidad de crecimiento, la densidad  celular y la productividad fueron hasta 7,4 veces mayor bajo condiciones heterotr&oacute;ficas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>EFECTO DE LA LUZ</p>      <p>Un aspecto  importante a considerar en el cultivo de una especie microalgal, para la producci&oacute;n de biocombustibles, es s&iacute; la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos se ve afectada por la exposici&oacute;n del cultivo a diferentes reg&iacute;menes de luz; por lo que es necesario considerar su intensidad, su calidad espectral y la necesidad de establecer un fotoperiodo. La intensidad luminosa influye notablemente en la actividad fotosint&eacute;tica,  el contenido  de pigmentos y composici&oacute;n qu&iacute;mica de la microalga.  </p>     <p>Cultivos de Scenedesmus obliquus fueron inhibidos a valores superiores a 297,5 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s y presentaron  caracter&iacute;sticas similares, incluso en el perfil de &aacute;cidos grasos, a los cultivos heter&oacute;trofos,  tendencia que se hizo m&aacute;s evidente al incrementar la cantidad  de luz recibida (Gassan <i>et al.</i>, 2009); mientras que un aumento  en la intensidad de 2000 a 8000 lux (39 - 156 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s) favoreci&oacute; el crecimiento de la microalga marina <i>Chlorella</i> sp., pero el incremento  hasta  10000  lux (195 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s) lo disminuy&oacute; ligeramente, no as&iacute; para <i>Nannochloropsis</i> sp. que creci&oacute; en forma continua en todo el rango de luz evaluado (39 -   195 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s) mostrando una gran capacidad de aclimataci&oacute;n a la luz (Cheirsilp y Torpee,   2012). De igual forma, Simionato <i>et al.</i>, 2011 observaron tasas de crecimiento similares para <i><i><i>Nannochloropsis</i> gaditana</i></i> en una amplia gama de irradiaciones y solo se observaron diferencias bajo condiciones extremas; los cultivos expuestos a intensidades  de luz del orden  de 5 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s  crecieron lentamente  mientras  los cultivos  sometidos  a valores mayores de 1200 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s alcanzaron la fase estacionaria  r&aacute;pidamente y el n&uacute;mero de c&eacute;lulas al final fue inferior.  </p>     <p>Con respecto al contenido  de l&iacute;pidos, algunos reportes evidencian que la capacidad  de acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos se ve reforzada al aumentar la intensidad de luz en cultivos como en <i>Haematococcus  pluvialis</i> (Damiani <i>et al.</i>, 2010) y <i>Nannochloropsis</i> sp. (Rodolfi <i>et al.</i>, 2009). En contraste,  Cheirsilp y Torpee (2012) reportaron que mientras para obtener una alta concentraci&oacute;n  de biomasa de las microalgas marinas <i>Chlorella</i> sp. y <i>Nannochloropsis</i> sp., es necesario aumentar la intensidad de luz por encima de 117 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s, intensidades de luz menores de este valor son m&aacute;s favorables para la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos.  </p>     <p>Estudios realizados por Simionato <i>et al.</i> (2011)  con <i><i>Nannochloropsis</i> gaditana</i>, revelaron que su acumulaci&oacute;n ocurre durante la fase estacionaria y el grado de acumulaci&oacute;n fue muy similar para todas las irradiaciones (5 - 200 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s), aunque a valores mayores de 1200 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s la s&iacute;ntesis de l&iacute;pidos se inici&oacute; m&aacute;s temprano  y en las c&eacute;lulas con una iluminaci&oacute;n menor a 100 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos dur&oacute; m&aacute;s tiempo; concluyendo que la intensidad  de la luz por s&iacute; sola no parece inducir directamente  la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos, pero el exceso de iluminaci&oacute;n puede aumentar  el efecto de otros factores de estr&eacute;s. Tal fen&oacute;meno  tambi&eacute;n  fue observado  por Pal <i>et al.</i>,  2011  para <i>Nannochloropsis</i> sp., cuando el aumento  de la intensidad de luz fue asociado a una alta salinidad y por Cheirsilp y Torpee (2012) para las microalgas marinas <i>Chlorella</i> sp. y <i>Nannochloropsis</i> sp. al conseguir doblar el contenido  de l&iacute;pidos cuando  se cambi&oacute; de cultivo en lote a lote alimentado,  aumentando gradualmente  la intensidad de luz.</p>     <p>EFECTO DE LA TEMPERATURA</p>      <p>Las variaciones de temperatura provocan cambios en la velocidad de crecimiento, en el contenido  de l&iacute;pidos y en la composici&oacute;n de los &aacute;cidos grasos en la c&eacute;lula, adem&aacute;s de que los efectos son espec&iacute;ficos para cada especie. Algunas cepas marinas como <i>Nitzschia closterium</i> e <i>Isochrysis</i> sp., tuvieron un crecimiento muy lento a 35 &ordm;C, mientras que cul- tivos de Nitzschia closterium no crecieron a temperaturas superiores a 30 &ordm;C o inferiores a 20 &ordm;C y Nitzschia paleacea result&oacute; m&aacute;s tolerante a una temperatura de 10 &ordm;C (Renaud <i>et al.</i>, 1995). Estudios realizados por Converti <i>et al.</i>, 2009 mostraron  que en cultivos de <i><i><i>Nannochloropsis</i> oculata</i> </i> al modificar la temperatura de 25 a 20 &ordm;C el contenido de l&iacute;pidos disminuy&oacute; de 13,89 a 7,9 % pero al disminuir hasta 15 &ordm;C se increment&oacute; nuevamente hasta 14,92 sin embargo como la tasa de crecimiento se vio afectada por los cambios de temperatura, la productividad de los l&iacute;pidos no present&oacute; variaci&oacute;n, por el contrario el crecimiento de <i>Chlorella vulgaris</i> se vio afectado a temperaturas superiores a los 35 &ordm;C y una variaci&oacute;n en la temperatura de 30 a 25 &ordm;C permiti&oacute; un incremento en el contenido de l&iacute;pidos de 5,9 a 14,7 % y como la tasa de crecimiento no se vio afectada  a estas temperaturas, la productividad de los l&iacute;pidos aument&oacute;  de 8 a 20 mg/l.d.  </p>     <p>Raghavan <i>et al.</i>, 2008 evaluaron el efecto de la temperatura, el nivel de CO<Sub>2</Sub> y la salinidad sobre el crecimiento y composici&oacute;n de la diatomea  <i>Chaetoceros  calcitrans</i> y encontraron que el contenido de l&iacute;pidos fue mayor a temperaturas entre 20 y 25&ordm;C y que este no se afect&oacute; por la adici&oacute;n de CO<Sub>2</Sub> y que disminuy&oacute; al aumentar  la salinidad.</p>      <p>EFECTO DE LOS FACTORES OPERACIONALES</p>      <p>La agitaci&oacute;n de los cultivos de microalgas es necesaria para evitar la sedimentaci&oacute;n celular y para asegurar su exposici&oacute;n uniforme a la luz y a los nutrientes,  adem&aacute;s  de que favorece el intercambio de gases entre el medio de cultivo y el medio externo. Un mezclado inadecuado, reduce la productividad de biomasa  y puede ocurrir muerte celular y fermentaci&oacute;n del cultivo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>EFECTO DE LA FASE  DE CRECIMIENTO  Y LA EDAD DEL CULTIVO</p>     <p>Adem&aacute;s de los factores discutidos anteriormente, la fase de crecimiento en que se encuentra el cultivo y su edad, afectan tambi&eacute;n el contenido y composici&oacute;n de los &aacute;cidos grasos de la biomasa. Generalmente el contenido de l&iacute;pidos de las microalgas durante la fase exponencial de crecimiento es menor o igual a 15 % en base seca, porque estos compuestos  solo se acumulan  cuando  las c&eacute;lulas est&aacute;n bajo condiciones  de estr&eacute;s fisiol&oacute;gico, lo cual generalmente est&aacute; asociado a condiciones de limitaci&oacute;n de nutrientes (Li <i>et al.</i>, 2008). En cultivos de <i><i>Nannochloropsis</i> oculata</i> se encontr&oacute; que la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos al pasar de la fase logar&iacute;tmica a la estacionaria aument&oacute;  significativamente del   30,8 % al 50,4 % (Chiu <i>et al.</i>, 2009).</p>     <p> Se ha observado que el contenido  de l&iacute;pidos es mayor en la fase estacionaria de crecimiento que en la fase exponencial. Bigogno <i>et al.</i>, 2002 determinaron  en <i>Parietochloris incisa</i> un alto contenido  de triacilgliceroles (43 % del total de &aacute;cidos grasos) en la fase logar&iacute;tmica, el cual aument&oacute;  hasta 77 % en la fase estacionaria.   El tiempo de incubaci&oacute;n  del cultivo no solo afecta la acumulaci&oacute;n  de l&iacute;pidos en la microalga, sino que tambi&eacute;n genera un cambio gradual en la composici&oacute;n de ellos. En un estudio realizado con <i>Chlorella vulgaris</i> se observ&oacute; que un tiempo mayor de incubaci&oacute;n previo a la transferencia de las c&eacute;lulas a un medio sin nitr&oacute;geno produjo un mayor contenido de l&iacute;pidos y que un tiempo mayor de permanencia  en el medio sin nitr&oacute;geno increment&oacute; el contenido de l&iacute;pidos, especialmente de triglic&eacute;ridos, lo cual indica que es posible obtener  una mayor productividad de l&iacute;pidos variando no solo el tiempo de   incubaci&oacute;n inicial en un medio de cultivo sin modificaci&oacute;n sino tambi&eacute;n el tiempo en que la microalga permanece bajo condiciones de estr&eacute;s (Widjaja <i>et al.</i>, 2009).  </p>     <p>Estudios recientes sugieren un proceso para la producci&oacute;n de l&iacute;pidos de dos etapas, en la primera las c&eacute;lulas se cultivan con suficientes nutrientes,  seguido de su cultivo en condiciones limitadas de nutrientes (Rodolfi <i>et al.</i>, 2009; Widjaja <i>et al.</i>, 2009; Beal <i>et al.</i>,   2010; Ho <i>et al.</i>, 2010; Praveenkumar <i>et al.</i>, 2012) o el uso de condiciones de estr&eacute;s que incrementen el contenido espec&iacute;fico de l&iacute;pidos en cortos periodos de tiempo. Respecto a este &uacute;ltimo, diversos autores reportan  que para el caso del g&eacute;nero <i>Nannochloropsis</i> el incremento en la salinidad favorece la acumulaci&oacute;n  de l&iacute;pidos en menos de 72 horas (Martinez <i>et al.</i>, 2011; Pal <i>et al.</i>, 2011), lo que en un proceso a gran escala podr&iacute;a considerarse como un cultivo continuo.  </p>     <p>Al realizar un c&aacute;lculo del rendimiento de la biomasa  y de los l&iacute;pidos para una microalga, podr&iacute;amos  considerar lo publicado  por Torzillo <i>et al.</i>, 2010 para un cultivo de <i>Nannochloropsis</i> en condiciones  a la intemperie, quienes hallaron una productividad superficial m&aacute;xima de biomasa  de 5,8 g/m<Sup>2</Sup>.d y un contenido  de l&iacute;pidos de 43,4 % reportado por Martinez <i>et al.</i>, 2011 en condiciones  de estr&eacute;s por salinidad.  Considerando  300 d&iacute;as de operaci&oacute;n  de planta  se obtiene un rendimiento  de biomasa  de   17,4  t/ha.a  y un rendimiento  de aceite de 7,55  t/ha.a.  Si los datos  anteriores  se comparan  con el rendimiento  de aceite alcanzado  por  el cultivo  de palma  (<i>Elaeis guineensis</i>) de 3,5 t/ha.a (Bourgis <i>et al.</i>, 2011) se demuestra  te&oacute;ricamente  que con el empleo de las microalgas se podr&iacute;a producir la misma cantidad  de aceite empleando tan solo el 50 % del terreno necesario para hacerlo a partir de palma aceitera, adem&aacute;s de que podr&iacute;a ser un terreno no apto para la agricultura.</p>     <p>VARIACI&Oacute;N  DEL PERFIL LIP&Iacute;DICO CON LAS CONDICIONES DE CULTIVO</p>     <p>Debido a que las propiedades  del biodiesel se ven influidas por la calidad de los l&iacute;pidos a partir de los cuales se ha producido, para obtener biodiesel de calidad es necesario asegurarse que los l&iacute;pidos contengan &aacute;cidos grasos de cadena larga con un bajo grado de insaturaci&oacute;n (preferentemente  los &aacute;cidos palmitoleico (16:1), oleico (18:1) y mir&iacute;stico (14:0) que permitan disminuir las emisiones t&oacute;xicas y mejorar las propiedades  del biocombustible  (n&uacute;mero de cetano, estabilidad oxidativa) sin comprometer  sus caracter&iacute;sticas de flujo (punto de nube), viscosidad y lubricidad (Knothe, 2005; Chisti, 2007; Knothe, 2008; Schenk <i>et al.</i>, 2008). La norma EN 14214 limita el contenido  de &aacute;cido linol&eacute;nico (C18:3) y de los &aacute;cidos poliinsaturados con cuatro enlaces dobles o m&aacute;s, a   12 % y 1 % respectivamente.  </p>     <p>Los cultivos limitados en nitr&oacute;geno mostraron una tendencia generalizada a incrementar el contenido  de &aacute;cidos grasos saturados y monoinsaturados y disminuir los poliinsaturados, mientras que al aumentar  la concentraci&oacute;n  de este nutriente,  se observa un incremento en la proporci&oacute;n de &aacute;cidos grasos poliinsaturados. As&iacute;, <i>Nannochloropsis</i> sp. en un medio limitado en nitr&oacute;geno despu&eacute;s de cinco d&iacute;as present&oacute; un incremento en los &aacute;cidos grasos mir&iacute;stico (de 0,7 % a 2,9 %), palm&iacute;tico (de 4,8 % a 19,8 %), palmitoleico (de 3,9   % a 15,1 %) y oleico (de 0,7 % a 6,8 %) (Rodolfi <i>et al.</i>, 2009) y al evaluar el efecto de la salinidad, la intensidad de luz y la disponibilidad de nitr&oacute;geno Pal <i>et al.</i>, 2011, evidenciaron para la misma microalga la acumulaci&oacute;n de los &aacute;cidos grasos palm&iacute;tico y oleico en condiciones limitadas de nitr&oacute;geno sin importar el grado de luz o salinidad y en condiciones ricas en nitr&oacute;geno asociadas a alta intensidad de luz y salinidad; con una disminuci&oacute;n de los &aacute;cidos grasos poliinsaturados (linoleico, araquid&oacute;nico, eicosapentanoico).</p>     <p> Para <i>Chlorella vulgaris</i> , Yeh y Chang (2012) observaron que bajo condiciones fotoautotr&oacute;ficas y fotoheterotr&oacute;ficas, la disminuci&oacute;n del nitr&oacute;geno en el medio de cultivo tiene un importante papel en la acumulaci&oacute;n de los &aacute;cidos grasos palm&iacute;tico y oleico y la disminuci&oacute;n  los &aacute;cidos  grasos poliinsaturados.  En condiciones  mixotr&oacute;ficas <i>Chlorella vulgaris</i> present&oacute; un perfil de l&iacute;pidos compuesto  principalmente  por acido palm&iacute;tico y acido oleico (50 % - 62 %) independientemente de la concentraci&oacute;n  de nitr&oacute;geno en el medio. Para <i>Scenedesmus rubescens</i> la limitaci&oacute;n de nutrientes al aumentar  el tiempo de cultivo, claramente evidenci&oacute; un aumento  en el &aacute;cido oleico (de 16 % a 54 %) y la disminuci&oacute;n en los &aacute;cidos linoleico y linol&eacute;nico (Tan y Lin, 2011).  Resultados similares fueron reportados por Arias y Ca&ntilde;izares (2011) y Arias <i>et al.</i>, 2011a, para <i>Scenedesmus incrassatulus</i> al observar un aumento  del 78,8 % en el contenido  de acido palm&iacute;tico y de 133,4 % de &aacute;cido oleico al pasar de 6 a 11 d&iacute;as de cultivo.  </p>     <p>Para <i>Nannochloropsis</i> sp. se evidenci&oacute; un incremento en los &aacute;cidos grasos poliinsaturados (linoleico, araquid&oacute;nico, eicosapentanoico, docosahexaenoico) al aumentar  la concentraci&oacute;n de nitrato y fosfato en el medio (Hu y Gao, 2006), mientras el contenido de &aacute;cido eicosapentanoico se increment&oacute; en un medio rico solo en nitr&oacute;geno (Xu <i>et al.</i>, 2004).   En otros trabajos se estudi&oacute; el efecto combinado de la fuente de carbono (bicarbonato o acetato) y los niveles de radiaci&oacute;n en el crecimiento y perfil de &aacute;cidos grasos de la microalga marina Pavlova lutheri  y se encontr&oacute;  que el crecimiento y la composici&oacute;n lip&iacute;dica fueron m&aacute;s sensibles a las variaciones en la intensidad de luz que a la fuente de carbono; a una intensidad de luz de 20 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s el porcentaje de los &aacute;cidos grasos saturados fue de 25,8 % y 23,9 % con bicarbonato y acetato respectivamente y al aumentar la intensidad de luz a 340 &micro;E/m<Sup>2</Sup>.s los &aacute;cidos grasos saturados alcanzaron un valor de   29 % en el medio con bicarbonato y de 29,7 % el medio con acetato  (Guih&eacute;neuf <i>et al.</i>,   2009). As&iacute; mismo, en un cultivo de <i>Nannochloropsis</i> sp. un aumento  de la intensidad de luz produjo un incremento en la productividad de la biomasa y el contenido de &aacute;cidos grasos, especialmente saturados (mir&iacute;stico y palm&iacute;tico) y monoinsaturados (palmitoleico y oleico) (Rodolfi <i>et al.</i>, 2009).  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El f&oacute;sforo ha presentado un efecto similar al nitr&oacute;geno. Al inicio de un cultivo de <i>Nannochloropsis</i> sp. se presentaron  principalmente  l&iacute;pidos polares y esteroles y la disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n  de f&oacute;sforo en el medio de cultivo provoc&oacute; un aumento  en el contenido lip&iacute;dico de 13,2 % a 50,1 % de los cuales el 67 % fueron triglic&eacute;ridos, sin embargo no se present&oacute; un efecto ben&eacute;fico en la productividad de l&iacute;pidos debido al bajo crecimiento celular (Rodolfi <i>et al.</i>, 2009). Resultados similares fueron encontrados al crecer <i>Monodus subterraneus</i> en diferentes concentraciones  de fosfato, donde al disminuir su concentraci&oacute;n en el medio de cultivo se increment&oacute; el porcentaje  de l&iacute;pidos totales,  principalmente triglic&eacute;ridos (Khozin  y Cohen, 2006).</p>     <p> El efecto de la adici&oacute;n de CO<Sub>2</Sub> al medio de cultivo presenta variabilidad en las microalgas, por ejemplo, para la marina <i>Nannochloropsis</i> sp., la adici&oacute;n de 2 % de CO<Sub>2</Sub> estimul&oacute; la acumulaci&oacute;n de EPA (20:5n-3) (Hoshida <i>et al.</i>, 2005), para <i>Chlorella vulgaris</i>, se ha reportado que la disminuci&oacute;n del contenido de CO<Sub>2</Sub> en el medio de cultivo (de 2 % a 0,04 %) favorece la producci&oacute;n  de &aacute;cidos grasos con mayor grado de insaturaci&oacute;n  como el &aacute;cido &alpha;-linol&eacute;nico (Tsuzuki <i>et al.</i>, 1990). Para <i>Scenedesmus obliquus</i> y <i>Chlorella pyrenoidosa</i>, Tang <i>et al.</i>, 2011a, reportaron que independientemente del nivel de CO<Sub>2</Sub> los &aacute;cidos grasos mayoritarios son de 16 y 18 carbones y altos niveles de CO<Sub>2</Sub> (30 - 50 %) favorecieron la producci&oacute;n &aacute;cido linol&eacute;nico. El perfil lip&iacute;dico de <i>Scenedesmus obliquus</i> en medio rico en nutrientes con 10 % CO<Sub>2</Sub> est&aacute; compuesto  por 67 % de &aacute;cidos grasos de 16 y 18 carbones y la eliminaci&oacute;n de los nutrientes del medio de cultivo favoreci&oacute; su acumulaci&oacute;n  alcanzando cerca del 90 % del total de &aacute;cidos grasos con 31 % de &aacute;cido oleico despu&eacute;s de seis d&iacute;as de cultivo bajo condiciones deficientes de nutrientes (Ho <i>et al.</i>, 2010). Para <i>Chlorella protothecoides</i> Xiong <i>et al.</i>, 2008 reportaron los &aacute;cidos palm&iacute;tico, oleico y linoleico como los componentes principales del aceite microalgal, representando 80 % del contenido total de FAME. Generalmente, una baja intensidad  luminosa induce la formaci&oacute;n de l&iacute;pidos polares (fosfol&iacute;pidos y glucol&iacute;pidos), los cuales est&aacute;n funcional y estructuralmente asociados a la membrana celular. En contraste, las altas intensidades luminosas disminuyen el contenido de l&iacute;pidos polares y estimulan la producci&oacute;n de l&iacute;pidos de reserva, principalmente triglic&eacute;ridos (Solovchenko <i>et al.</i>, 2008).</p>     <p>Con respecto a la temperatura se ha observado una relaci&oacute;n inversa entre el porcentaje de &aacute;cidos grasos poliinsaturados (PUFA) (Renaud <i>et al.</i>, 1995; Jiang y Chen, 2000; Renaud <i>et al.</i>, 2002) debido a que la c&eacute;lula necesita mayor cantidad de PUFA para mantener la fluidez de la membrana  celular o a que las bajas temperaturas conducen a un alto nivel de ox&iacute;geno molecular intracelular, lo cual mejora la actividad de las enzimas desaturasa y elongasa que participan  en la bios&iacute;ntesis de PUFA (Jiang y Chen, 2000). Renaud <i>et al.</i>, 1995 y Renaud <i>et al.</i>, 2002 en sus investigaciones con <i>Isochrysis</i> sp., <i>Nitzschia closterium, Nitzschia paleacea</i>, y cuatro  especies de microalgas australianas  <i>Isochrysis</i> sp., <i>Rhodomonas</i> sp., <i>Cryptomonas</i> sp. y <i>Chaetoceros</i>  sp. encontraron altos niveles de PUFA a las temperaturas de crecimiento m&aacute;s bajas.</p>     <p><b>CONCLUSI&Oacute;N</b></p>     <p>A la luz de las investigaciones realizadas en las &uacute;ltimas dos d&eacute;cadas, el inter&eacute;s en el cultivo de microalgas como fuente potencial de l&iacute;pidos para la producci&oacute;n  de biodiesel de tercera generaci&oacute;n es global, tanto  en los pa&iacute;ses desarrollados  como en los de econom&iacute;as  emergentes.  En el ambiente  de laboratorio  las microalgas  han  mostrado potencial  debido  a su alto contenido  y productividad de l&iacute;pidos, por lo que su rendimiento de aceite es mayor comparado con el de las plantas oleaginosas. Sin embargo, a pesar de los resultados prometedores que se han obtenido, para producir comercialmente el biodiesel a partir de microalgas, es necesaria m&aacute;s investigaci&oacute;n para la producci&oacute;n masiva de las especies identificadas como potenciales,  por su alta productividad de l&iacute;pidos y su adecuado perfil de &aacute;cidos grasos.  </p>     <p>Debido a la gran variabilidad de las respuestas que presenta cada especie a determinadas condiciones de cultivo, no existe una cepa ideal, sin embargo las m&aacute;s estudiadas y con potencial reconocido pertenecen a los g&eacute;neros <i>Chlorella</i> , por su facilidad para crecer bajo condiciones autotr&oacute;ficas, heterotr&oacute;ficas y mixotr&oacute;ficas, en especial por su capacidad de desarrollarse en oscuridad total consumiendo una fuente org&aacute;nica de carbono, alcanzando  altas productividades de l&iacute;pidos; <i>Scenedesmus</i>, por su perfil lip&iacute;dico rico en   &aacute;cidos grasos saturados y monoinsaturados, su capacidad  para utilizar los nutrientes presentes en las aguas residuales y su tolerancia a concentraciones  elevadas de CO<Sub>2</Sub>; <i>Nannochloropsis</i>, por su capacidad  de adaptaci&oacute;n a altas intensidades  de luz y su acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos en periodos breves de tiempo,  en condiciones de alta salinidad; <i>Nannochloris, Dunaliella</i> y <i>Tetraselmis</i> por su alto contenido  de l&iacute;pidos y su tolerancia a altas concentraciones  de salinidad; <i>Neochloris</i>, por su alto contenido de l&iacute;pidos en condiciones de alta intensidad de luz.  </p>     <p>Debido a la gran variaci&oacute;n de la productividad y del perfil lip&iacute;dico de las microalgas en funci&oacute;n de las condiciones de cultivo, ser&iacute;a conveniente mezclar aceites producidos por diversos g&eacute;neros de microalgas, para asegurar el cumplimiento de las normas internacionales de calidad establecidas para el biodiesel.   Finalmente, independientemente de la especie seleccionada para obtener  l&iacute;pidos que eventualmente puedan  ser convertidos a biodiesel, el objetivo final es desarrollar un proceso rentable y econ&oacute;mico para estar en posibilidades de competir con los combustibles f&oacute;siles. Debido a esto, se ha sugerido establecer un proceso que permita la producci&oacute;n de biodiesel y el aprovechamiento de otros coproductos obtenidos  tanto  a partir de la biomasa como del proceso de transesterificaci&oacute;n.</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Se agradece al CINVESTAV - IPN por el soporte  t&eacute;cnico para el desarrollo de esta revisi&oacute;n y al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a, CONACYT-M&eacute;xico, por las becas otorgadas a Martha Arias Pe&ntilde;aranda  y Alfredo de Jes&uacute;s Mart&iacute;nez Rold&aacute;n para realizar el Doctorado en Ciencias, especialidad Biotecnolog&iacute;a en el CINVESTAV - IPN.</p>     <p><b>BIBLIOFRAF&Iacute;A</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>AMIN S. Review on biofuel oil and gas production processes from microalgae. Energ Convers Manage. 2009;50(7):1834-1840.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-548X201300010000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ARIAS MT, CA&Ntilde;IZARES VILLANUEVA RO. Evaluaci&oacute;n de la microalga Scenedesmus incrassatulus como  posible  fuente de l&iacute;pidos para  la obtenci&oacute;n  de biodiesel. En XIV Congreso Nacional de Biotecnolog&iacute;a y Bioingenier&iacute;a, Queretaro, M&eacute;xico. 2011. Disponible en:    URL: <a href="http://www.smbb.com.mx/congresos%20smbb/queretaro11/TRABAJOS/trabajos/IX/carteles/CIX-20.pdf " class="a" target="_blank">http://www.smbb.com.mx/congresos%20smbb/queretaro11/TRABAJOS/trabajos/IX/carteles/CIX-20.pdf </a>. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-548X201300010000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ARIAS MT, CRISTIANI E, MONTES MC, CA&Ntilde;IZARES RO. Efecto de la edad del cultivo  sobre  el contenido  de  l&iacute;pidos  y  el perfil de  &aacute;cidos  grasos  de  Scenedesmus incrassatulus  y su influencia en la producci&oacute;n  de biodiesel de calidad. Bol Soc Argent Bot. 2011a;46(supl.2):34.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-548X201300010000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ARIAS MT, CRISTIANI E, TORZILLO G, ESPARZA F, CA&Ntilde;IZARES RO. Comparaci&oacute;n de m&eacute;todos  para la extracci&oacute;n de l&iacute;pidos totales en la microalga Scenedesmus incrassatulus. Bol Soc Argent Bot. 2011b;46(supl.2):34-35.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-548X201300010000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> AVAGYAN AB. A contribution to global sustainable  development: inclusion of microalgae and their biomass in production and bio cycles. Clean Techn Environ Policy.   2008;10(4):313-317.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-548X201300010000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> AZMA M, MOHAMED MS, MOHAMAD R, RAHIM RA, ARIFF AB. Improvement of medium composition  for heterotrophic cultivation of green microalgae, Tetraselmis suecica, using response surface methodology. Biochem Eng J. 2011;53(2):187-195.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-548X201300010000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   BEAL CM, WEBBER ME, RUOFF RS, HEBNER RE. Lipid Analysis of Neochloris oleoabundans by Liquid State NMR, Biotechnol and Bioeng. 2010;106(4):573-583.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-548X201300010000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>BIGOGNO C, KHOZIN-GOLDBERG I, BOUSSIBA S, VONSHAK A, COHEN Z. Lipid and fatty acid composition  of the green oleaginous alga Parietochloris incisa, the richest plant source of arachidonic acid. Phytochemistry. 2002;60(5):497-503.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-548X201300010000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> BOURGIS  F,  KILARU   A,  CAO  X,   NGANDO-EBONGUE GF,  DRIRA   N, OHLROGGE JB, <i>et al.</i> Comparative transcriptome and metabolite  analysis of oil palm and date palm mesocarp that differ dramatically in carbon partitioning. P Natl Acad Sci USA. 2011;108(44):18186-18186.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-548X201300010000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> BRENNAN L, OWENDE P. Biofuels from microalgae-A review of technologies for production, processing, and extractions of biofuels and co-products, Renew Sust Energ Rev. 2010;14(2):557-577.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-548X201300010000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>CASTILLO LE, MART&Iacute;NEZ AJ, ARIAS MT, CA&Ntilde;IZARES RO. Identificaci&oacute;n de los par&aacute;metros de cultivo con mayor influencia en la productividad de l&iacute;pidos en Scenedesmus incrassatulus mediante  el uso del dise&ntilde;o de Plackett y Burmann. Bol Soc Argent Bot.   2011;46(supl.2):37.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-548X201300010000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>CHEIRSILP B, TORPEE S. Enhanced growth and lipid production of microalgae under mixotrophic culture condition:  Effect of light intensity, glucose concentration and fed-batch cultivation. Bioresour Technol. 2012;110:510-516.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-548X201300010000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> CHEN CY, YEH KL, AISYAH R, LEE DJ, CHANG JS. Cultivation, photobioreactor design and harvesting of microalgae for biodiesel production: A critical review. Bioresour Technol. 2011a;102(1):71-81.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-548X201300010000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> CHEN M, TANG H, MA H, HOLLAND TC, NG S. K.Y,  SALLEY  S. Effect of nutrients  on growth and lipid accumulation  in the green algae Dunaliella tertiolecta. Bioresour Technol. 2011b;102(2):1649-1655.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-548X201300010000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> CHINNASAMY S, BHATNAGAR A, HUNT RW, DAS KC. Microalgae cultivation in a wastewater dominated by carpet mill effluents for biofuel applications.  Bioresour Technol. 2010;101(9):3097-3105.   CHISTI Y. Biodiesel from microalgae. Biotechnol Adv. 2007;25:294-306.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-548X201300010000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-548X201300010000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>CHIU SY, KAO CY, CHEN CH, KUAN TC, ONG SC, LIN CS. Reduction of CO<Sub>2</Sub> by a high-density culture of <i>Chlorella</i> sp. in a semicontinuous photobioreactor. Bioresour Technol. 2008;99(9):3389-3396.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-548X201300010000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>CHIU SY, KAO CY, TSAI MT, ONG SC, CHEN CH, LIN CS. Lipid accumulation and CO<Sub>2</Sub> utilization of <i><i>Nannochloropsis</i> oculata</i> in response to CO<Sub>2</Sub> aeration.  Bioresour Technol. 2009;100(2):833-838.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-548X201300010000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> CHOJNACKA K, MARQUEZ ROCHA FJ. Kinetic and stoichiometric relationships of the  energy and  carbon  metabolism  in the  culture  of microalgae.  Biotechnol.   2004;3(1):21-34.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-548X201300010000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> CONVERTI A, CASAZZA A, ORTIZ E, PEREGO P, BORGHI M. Effect of temperature and nitrogen concentration on the growth and lipid content of <i><i>Nannochloropsis</i> oculata</i> and <i>Chlorella vulgaris</i> for biodiesel production. Chem Eng Process. 2009;48(6):1146-1151.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-548X201300010000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>DAMIANI MC, POPOVICH CA, CONSTENLA D, LEONARDI P. Lipid analysis in Haematococcus  pluvialis to assess its potential  use as a biodiesel feedstock. Bioresour Technol. 2010;101(11):3801-3807.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-548X201300010000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> DEMIRBAS A. Biodiesel fuels from vegetable oils via catalytic and non-catalytic supercritical alcohol transesterifications  and other methods:  a survey, Energ Convers   Manage. 2003;44(13):2093-2109.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-548X201300010000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>DEMIRBAS A. Progress and  recent trends  in biodiesel fuels. Energ Convers   Manage. 2009;50(1):14-34.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-548X201300010000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> GASSAN HG, MARTINEZ M, SANCHEZ S. Daily doses of light in relation to the growth of Scenedesmus obliquus in diluted three-phase  olive mill wastewater.  J Chem Technol Biotechnol. 2009;84(10):1550-1558.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-548X201300010000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> Global Data, Global Biodiesel Market Analysis and Forecasts to 2020. Accessed May 26, 2012 en <a href="http://www.markt-studie.de/168/d/2010/03/30/globaldata-global-biodiesel-market-analysis-and-forecasts-to-2020/" class="a" target="_blank">http://www.markt-studie.de/168/d/2010/03/30/globaldata-global-biodiesel-market-analysis-and-forecasts-to-2020/</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-548X201300010000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> GUIH&Eacute;NEUF F, MIMOUN V, ULMANN L, TREMBLIN G. Combined effects of irradiance level and carbon source on fatty acid and lipid class composition in the microalga Pavlova lutheri commonly used in mariculture. J Exp Mar Biol Ecol. 2009; 369(2):136-143.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-548X201300010000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>HALEK F, KAVOUSI A, BANIFATEMI M. Biodiesel as an alternative fuel for diesel engines. World Academy of Science Eng Technol. 2009;57:460-462.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-548X201300010000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>HERN&Aacute;NDEZ-REYES E, MART&Iacute;NEZ-ROLD&Aacute;N AJ, CA&Ntilde;IZARES VILLANUEVA RO. Contenido  de l&iacute;pidos de dos especies diferentes del g&eacute;nero Scenedesmus para la eventual producci&oacute;n de bioenerg&eacute;ticos. En: XIII Congreso Nacional de Biotecnolog&iacute;a y Bioingenier&iacute;a VII Simposio Internacional de Producci&oacute;n de Alcoholes y Levaduras. 2009. Disponible   en:   URL: <a href="http://www.smbb.com.mx/congresossmbb/acapulco09/TRABAJOS/AREA_IX/CIX-11.pdf" class="a" target="_blank">http://www.smbb.com.mx/congresossmbb/acapulco09/TRABAJOS/AREA_IX/CIX-11.pdf</a>.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-548X201300010000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>HO SH, CHEN WM, CHANG JS. Scenedesmus obliquus CNW-N as a potential candidate    for  CO<Sub>2</Sub> mitigation   and   biodiesel   production.   Bioresour   Technol.   2010;101(22):8725-8730.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-548X201300010000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>HOSHIDA H, OHIRA T, MINEMATSU A, AKADA  R, NISHIZAWA  Y.  Accumulation  of eicosapentaenoic acid in <i>Nannochloropsis</i> sp. in response to elevated CO<Sub>2</Sub> concentrations. J Appl Phycol. 2005;17(1):29-34.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-548X201300010000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> HSIEH C, WU W. Cultivation of microalgae for oil production with a cultivation strategy of urea limitation. Bioresour Technol. 2009;100(17):3921-3926.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-548X201300010000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> HU H, GAO K. Response of growth and fatty acid compositions of <i>Nannochloropsis</i> sp.  to  environmental  factors  under  elevated  CO<Sub>2</Sub> concentration,  Biotechnol  Lett.   2006;28(13):987-992.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-548X201300010000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>HU Q, SOMMERFELD M, JARCIS E, GHIRARDI M, POSEWITZ M, SEIBERT M, <i>et al.</i> Microalgal triacylglycerols as feedstocks for biofuels production: perspectives and advances. Plant J. 2008;54(4):621-639.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-548X201300010000400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> HUANG GH, CHEN F, WEI D, ZHANG X, CHEN G. Biodiesel production by microalgal biotechnology. Appl Energy. 2010;87(1):38-46.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-548X201300010000400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ILLMAN AM, SCRAGG AH, SHALES SW. Increase in <i>Chlorella</i> strains calorific values when grown in low nitrogen medium. Enzyme Microb Technol. 2000;27(8):631-635.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-548X201300010000400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>IMAHARA H, MINAMI E, SAKA S. Thermodynamic study on cloud point  of biodiesel with its fatty acid composition.  Fuel. 2006;85(12-13):1666-1670.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-548X201300010000400036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ISLETEN-HOSOGLU M, GULTEPE I, ELIBOL M. Optimization  of carbon  and nitrogen  sources for biomass  and  lipid production  by <i>Chlorella</i> saccharophila under heterotrophic conditions and development of Nile red fluorescence based method for quantification  of its neutral lipid content.  Biochem Eng J. 2012;61:11-19.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-548X201300010000400037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">JIANG  Y,  CHEN F. Effects of temperature  and  temperature  shift on  doco- sahexaenoic acid production by the marine microalga Crypthecodinium cohnii. J Am Oil Chem Soc. 2000;77(6):613-617.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-548X201300010000400038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> KHOZIN-GOLDBERG I, COHEN Z. The effect of phosphate starvation on the lipid and fatty acid composition of the fresh water eustigmatophyte Monodus subterraneus. Phytochemistry. 2006;67(7):696-701.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-548X201300010000400039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">KIM MK, PARK JW, PARK CS, KIM SJ, JEUNE KH, CHANG MU, <i>et al.</i> Enhanced production  of <i>Scenedesmus</i> spp.  green microalgae  using a new medium  containing fermented swine wastewater. Bioresour Technol. 2007;98(11):2220-2228.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-548X201300010000400040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> KNOTHE G. Dependence of biodiesel fuel properties on the structure of fatty acid alkyl esters. Fuel Process. Technol, 2005;86(10):1059-1070.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-548X201300010000400041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> KNOTHE G. â€˜â€˜Designerâ€™â€™ biodiesel: optimizing fatty ester composition to improve fuel properties. Energy Fuels. 2008;22(2):1358-1364.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-548X201300010000400042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> LARDON L, HELIAS A, SIALVE B, STEYER J, BERNARD O. Life-cycle assessment of biodiesel production from microalgae. Environ Sci Technol. 2009;43(17):6475-6481.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-548X201300010000400043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">LI X, XU H, WU Q. Large-scale biodiesel production from microalga <i>Chlorella</i> protothecoides   through heterotrophic cultivation in bioreactors. Biotechnol Bioeng. 2007;98(4):764-771.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-548X201300010000400044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">LI Y, HORSMAN M, WANG B, WU N, LAN C. Effects of nitrogen sources on cell growth and lipid accumulation  of green alga Neochloris oleoabundans.  Appl Microbiol Biotechnol. 2008;81(4):629-636.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-548X201300010000400045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">LIANG Y, SARKANY N, CUI Y. Biomass and lipid productivities of <i>Chlorella vulgaris</i> under autotrophic, heterotrophic and mixotrophic growth conditions. Biotechnol Lett.   2009;31(7):1043-1049.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-548X201300010000400046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">LIM S, TEONG LK. Recent trends, opportunities and challenges of biodiesel in   Malaysia: An overview. Renew Sust Energ Rev. 2010;14(3):938-954.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-548X201300010000400047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">LIN Q, GU N, LIN J. Effect of ferric ion on nitrogen consumption, biomass and oil accumulation of a Scenedesmus rubescens-like microalga. Bioresour Technol. 2012;112:242-247.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-548X201300010000400048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">LIN Q, LIN, J. Effects of nitrogen source and concentration on biomass and oil production of a Scenedesmus rubescens like microalga. Bioresour Technol. 2011;102(2):1615-1621.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-548X201300010000400049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">LIU J, HUANG J, SUN Z, ZHONG Y, JIANG Y, CHEN F. Differential lipid and fatty acid profiles of photoautotrophic and heterotrophic <i>Chlorella zofingiensis </i>: Assessment of algal oils for biodiesel production. Bioresour Technol. 2011;102(1):106-110.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0120-548X201300010000400050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">LIU ZY, WANG GC, ZHOU BC. Effect of iron on growth and lipid accumulation in <i>Chlorella vulgaris</i> . Bioresour Technol. 2008;99(11):4717-4722.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-548X201300010000400051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">MACEDO R, ALEGRE R. Influencia do teor de nitrogenio no cultivo de Spirulina m&aacute;xima em dois niveis de temperatura-Parte II: Producao  de lipidios. Ciencia Tecnol Aliment. 2001;21(2):183-186.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-548X201300010000400052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> MANDAL S, MALLICK N. Microalga Scenedesmus obliquus as a potential source for biodiesel production. Appl Microbiol Biotechnol, 2009;84:281-291.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-548X201300010000400053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">MART&Iacute;NEZ ROLD&Aacute;N   AJ,   PONCE-NOYOLA   MT,  ESPARZA GARC&Iacute;A   F, CRISTIANI URBINA E, TORZILLO G, CA&Ntilde;IZARES  VILLANUEVA RO. Efecto de la concentraci&oacute;n de NaCl sobre el crecimiento, consumo de nutrientes y contenido espec&iacute;fico de l&iacute;pidos en <i>Nannochloropsis</i> sp. Bol Soc Argent Bot. 2011;46(Supl.2):43-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-548X201300010000400054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> MATA TM, MARTINS AA, CAETANO NS. Microalgae for biodiesel production and other applications:  A review. Renew Sust Energ Rev. 2010;14(1):217-232.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-548X201300010000400055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   MENG X, YANG J, XU X, ZHANG L, NIE Q, XIAN M. Biodiesel production from oleaginous microorganisms. Renew Energ, 2009:34(1):1-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0120-548X201300010000400056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> MIAO X, WU Q. High yield bio-oil production from fast pyrolysis by metabolic controlling of <i>Chlorella</i> protothecoides. J Biotechnol. 2004;110(1):85-93.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0120-548X201300010000400057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> MIAO  X,  WU Q.  Biodiesel production  from  heterotrophic  microalgal  oil. Bioresour Technol. 2006;97(6):841-846.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0120-548X201300010000400058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> MOAZAMI N, ASHORI A, RANJBAR R, TANGESTANI M, EGHTESADI R, NEJAD AS. Large-scale  biodiesel production  using microalgae  biomass  of <i>Nannochloropsis</i>. Biomass Bioenergy. 2012; 39:449-453.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0120-548X201300010000400059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> NAGLE N, LEMKE P. Production of methyl fuel from microalgae. Appl Biochem   Biotechnol. 1990;4(1):355-361.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0120-548X201300010000400060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> PACKER M. Algal capture of carbon dioxide; biomass generation as a tool for greenhouse gas mitigation with reference to New Zealand energy strategy and policy. Energy Policy. 2009;37(9):3428-3437.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0120-548X201300010000400061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>PAL D, KHOZIN-GOLDBERG I, COHEN Z, BOUSSIBA S. The effect of light, salinity, and  nitrogen availability on lipid production by <i>Nannochloropsis</i> sp. Appl Microbiol Biotechnol. 2011;90(4):1429-1441.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0120-548X201300010000400062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> POPOVICH  CA, DAMIANI C, CONSTENLA D, MART&Iacute;NEZ  AM, FREIJE  H, GIOVANARDI M, <i>et al.</i> Neochloris oleoabundans grown in enriched natural  seawater for biodiesel feedstock: Evaluation of its growth and biochemical composition.  Bioresour Technol. 2012;114:287-293.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0120-548X201300010000400063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>POSTEN C, SCHAUB G. Microalgae and terrestrial biomass as source for fuels   - A process view. J Biotechnol. 2009;142(1):64-69.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0120-548X201300010000400064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> PRAVEENKUMAR  R, SHAMEERA  K,  MAHALAKSHMI  G, AKBARSHA  MA, THAJUDDIN N. Influence of nutrient deprivations on lipid accumulation in a dominant indigenous microalga <i>Chlorella</i> sp., BUM11008: Evaluation for biodiesel production. Biomass Bioenergy. 2012;37:60-66.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0120-548X201300010000400065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>PRUVOST J, VAN VOOREN G, COGNE G, LEGRAND J. Investigation of biomass and  lipids  production  with  Neochloris oleoabundans  in photobioreactor.  Bioresour Technol. 2009;100(23):5988-5995.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0120-548X201300010000400066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> RAGHAVAN  G, HARIDEVI CK, GOPINATHAN  CP. Growth  and  proximate composition  of the Chaetoceros calcitrans f. pumilus under different temperature, salinity and carbon dioxide levels. Aquaculture Research. 2008;39(10):1053-1058.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0120-548X201300010000400067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> RAMOS MJ, FERN&Aacute;NDEZ CM, CASAS A, RODR&Iacute;GUEZ  L, P&Eacute;REZ A. Influence  of fatty acid composition  of raw materials on biodiesel properties.  Bioresour Technol.   2009;100(1):261-268.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0120-548X201300010000400068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>RENAUD SM, LUONG-VAN T, LAMBRINIDIS G, PARRY DL. Effect of temperature  on  growth,  chemical  composition  and  fatty  acid  composition  of tropical Australian microalgae grown in batch cultures. Aquaculture. 2002;211(1-4):195-214.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0120-548X201300010000400069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>RENAUD SM, ZHOU HC, PARRY DL, LOUNG-VAN T, WOO KC. Effect of temperature on the growth, total lipid content and fatty acid composition  of recently isolated tropical microalgae Isochrysis sp. Nitzschia closterium, Nitzschia paleacea, and commercial species Isochrysis sp. J Appl Phycol. 1995;7(6):595-602.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0120-548X201300010000400070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> RODOLFI L, CHINI G, BASSI N, PADOVANI G, BIONDI N, BONINI G, <i>et al.</i> Microalgae for oil: strain selection, induction  of lipid synthesis and  outdoor mass cultivation in a low-cost photobioreactor. Biotechnol Bioeng. 2009;102(1):100-112.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0120-548X201300010000400071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">ROSILLO-CALLE F. Biomass Energy -An Overview Landolf-Bornstein Group VIII. Advanced Materials and Technologies, Springer. 2006;3C:334-373.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0120-548X201300010000400072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">SANTOS AM, JANSSEN M, LAMERS PP, EVER WAC, WIJFFELS RH. Growth of oil accumulating  microalga Neochloris oleoabundans  under alkaline-saline conditions. Bioresour Technol. 2012;104:593-599.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0120-548X201300010000400073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> SCHENK PM, THOMAS-HALL SR, STEPHENS E, MARX UC, MUSSGNUG JH, POSTEN C, <i>et al.</i> Second generation biofuels: high-efficiency microalgae for biodiesel production. Bioenerg Res. 2008;1(1):20-43.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0120-548X201300010000400074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> SFORZA E, CIPRIANI R, MOROSINOTTO T, BERTUCCO A, GIACOMETTI G. Excess   CO<Sub>2</Sub> supply   inhibits  mixotrophic   growth  of <i>Chlorella</i> protothecoides   and <i>Nannochloropsis</i> salina. Bioresour Technol. 2012;104:523-529.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0120-548X201300010000400075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> SHEEHAN J, DUNAHAY T, BENEMANN J, ROESSLER P. A look back at the U.S. Department  of Energyâ€™s aquatic species program: biodiesel from algae. NREL/TP-580-   24190, National Renewable Energy Laboratory, USA. 1998;81-253.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0120-548X201300010000400076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">SHEN Y, PEI Z, YUAN W, MAO E. Effect of nitrogen and extraction method on algae lipid yield. Int J Agric  Biol Eng. 2009;2(1);51-57.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0120-548X201300010000400077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> SHEN Y, YUAN W, PEI Z, MAO E. Heterotrophic culture of <i>Chlorella</i> protothecoides   in  various   nitrogen   sources   for  lipid  production.   Appl  Biochem  Biotechnol.   2010;160(6):1674-1684.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0120-548X201300010000400078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">SIMIONATO D, SFORZA H, CARPINELLI E, BERTUCCO A, GIACOMETTI G, MOROSINOTTO T. Acclimation of <i><i>Nannochloropsis</i> gaditana</i> to different illumination regimes: Effects on lipids accumulation. Bioresour Technol. 2011;102(10):6026-6032.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0120-548X201300010000400079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">SINGH J, GU S. Commercialization potential of microalgae for biofuels production. Renew Sust Ener Rev. 2010;14(9):2596-2610.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S0120-548X201300010000400080&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> SOLOVCHENKO  AE, KHOZIN-GOLDBERG  I, DIDI-COHEN  S, COHEN Z, MERZLYAK MN. Effects of light intensity and nitrogen starvation on growth, total fatty acids and arachidonic  acid in the green microalga Parietochloris incisa. J Appl Phycol.   2008;20(3):245-251.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0120-548X201300010000400081&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> SYDNEY EB, STURM W, DE CARVALHO JC, THOMAZ-SOCCOL V, LARROCHE C, PANDEY A, <i>et al.</i> Potential carbon dioxide fixation by industrially important microalgae. Bioresour Technol. 2010;101(15):5892-5896.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0120-548X201300010000400082&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> TAKAGI  M, WATANABE  K,  YAMABERI  K,  YOSHIDA  T. Limited  feeding of potassium nitrate for intracellular lipid and triglyceride accumulation of Nannochloris sp. UTEX LB1999. Appl Microbiol Biotechnol. 2000;54(1):112-117.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0120-548X201300010000400083&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">TAN Y, LIN J. Biomass production and fatty acid profile of a Scenedesmus rubescenslike microalga. Bioresour Technol. 2011;102(21):10131-10135.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0120-548X201300010000400084&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">TANG D, HAN W, LI P, MIAO X, ZHONG J. CO<Sub>2</Sub> biofixation and fatty acid composition  of Scenedesmus obliquus and <i>Chlorella</i> pyrenoidosa in response to different CO<Sub>2</Sub> levels. Bioresour Technol. 2011a;102(3):3071-3076.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0120-548X201300010000400085&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1">TANG H, ABUNASSER N, GARCIA MED, CHEN M, SIMON KY, STEVEN KG, <i>et al.</i> Potential of microalgae oil from Dunaliella tertiolecta as a feedstock for biodiesel. Appl Energy. 2011b;88(10):3324-3330.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0120-548X201300010000400086&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="s1"> TORZILLO G, GIANNELLI L, MARTINEZ ROLDAN AJ, VERDONE N, DE FILIPPIS P, SCARSELLA M, <i>et al.</i> Microalgae culturing in thin-layer photobioreactors. Chen Eng Trans. 2010;20(45):265-270.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0120-548X201300010000400087&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   TSUZUKI M, OHNUMA E, SATO N, TAKAKU T, KAWAGUCHI A. Effects of CO<Sub>2</Sub>   Concentration during growth on fatty acid composition  in microalgae. Plant Physiol.   1990;93(3):851-856.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000170&pid=S0120-548X201300010000400088&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> VYAS  AP, VERMA JL,  SUBRAHMANYAM  N. A review on  FAME production processes. Fuel. 2010;89(1):1-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0120-548X201300010000400089&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> WANG B, LI  Y,  WU N, LAN C. CO<Sub>2</Sub> bio-mitigation  using microalgae.  Appl   Microbiol Biotechnol. 2008;79(5):707-718.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000172&pid=S0120-548X201300010000400090&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> WIDJAJA A, HIEN C, JU Y. Study of increasing lipid production from fresh water microalgae <i>Chlorella vulgaris</i> . J Taiwan Inst Chem Eng. 2009;40(1):13-20.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0120-548X201300010000400091&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>XIN L, HONG-YING H, JIA Y. Lipid accumulation and nutrient removal properties of a newly isolated freshwater microalga, <i>Scenedesmus</i> sp. LX1, growing in secondary effluent. New Biotechnol. 2010a;27(1):59-63.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000174&pid=S0120-548X201300010000400092&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>XIN L, HONG-YING H, KE G, JIA Y. Growth and nutrient removal properties of a freshwater microalga <i>Scenedesmus</i> sp. LX1 under different kinds of nitrogen sources. Ecol Eng. 2010b;36(4):379-381.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0120-548X201300010000400093&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> XIN L, HONG-YING H, KE G, YING-XUE S. Effects of different nitrogen and phosphorus concentrations on the growth, nutrient uptake, and lipid accumulation  of a freshwater microalga <i>Scenedesmus</i> sp. Bioresour Technol. 2010c;101(14):5494-54500.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000176&pid=S0120-548X201300010000400094&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>XIONG  W, LI  X,  XIANG J,  WU Q.  High-density  fermentation  of microalga <i>Chlorella</i> protothecoides in bioreactor  for microbio-diesel production. Appl Microbiol Biotechnol. 2008;78(1):29-36.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0120-548X201300010000400095&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>XU F, CAI Z, CONG W, OUYANG F. Growth and  fatty acid composition  of   Nannochhloropsis sp. grown mixotrophically  in fed - batch  culture.  Biotechnol Lett.   2004;26(17):1319-1322.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000178&pid=S0120-548X201300010000400096&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>XU H, MIAO X, WU Q. High quality biodiesel production from a microalga <i>Chlorella</i> protothecoides by heterotrophic growth in fermenters. J Biotechnol. 2006;126(4):499-507.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0120-548X201300010000400097&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> XUE F, ZHANG X, LUO H, TAN T. A new method for preparing raw material for biodiesel production. Process Biochem. 2006;41(7):1699-1702.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000180&pid=S0120-548X201300010000400098&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> YEH K-L, CHANG J-S. Effects of cultivation conditions and media composition on cell growth and lipid productivity of indigenous microalga <i>Chlorella vulgaris</i> ESP-31. Bioresour Technol. 2012;105:120-127.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0120-548X201300010000400099&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>YEH  KL,  CHEN CY,  CHANG JS.  pH-stat  photoheterotrophic  cultivation  of indigenous <i>Chlorella vulgaris</i> ESP-31 for biomass and lipid production using acetic acid as the carbon source. Biochem Eng J. 2012;64:1-7.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000182&pid=S0120-548X201300010000400100&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ZAMALLOA C, BOON N, VERSTRAETE W. Anaerobic digestibility of Scenedesmus obliquus and Phaeodactylum tricornutum under mesophilic and thermophilic conditions. Appl Energy. 2012;92:733-738.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S0120-548X201300010000400101&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> ZHENG Y,  CHI Z, LUCKER B, CHEN S. Two-stage heterotrophic  and  phototrophic  culture strategy for algal biomass and lipid production. Bioresour Technol.   2012;103(1):484-488.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000184&pid=S0120-548X201300010000400102&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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