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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EVALUACIÓN DEL EFECTO DEL HIDROCARBURO FENANTRENO SOBRE EL CRECIMIENTO DE Chlorella vulgaris (CHLORELLACEAE)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The effects of the polycyclic aromatic hydrocarbon phenanthrene on the growth of Chlorella vulgaris alga were evaluated under laboratory conditions. The algae were exposed during 72 h to different concentrations of phenanthrene (0, 1, 10, 100, 1000 and 10000 µg/l). The alga density was daily determined by a Neubauer chamber. The average growth average, total biomass and inhibition percentage of the biomass were also determined. In addition, the content of chlorophyll a was determined at the beginning and the end of the experiment. The assays were carried out in glass bottles of 0,4 l using the complex NPK (REMITAL® m - 17-6-18) at 1 g/l as an organic fertilizing. The results showed that phenanthrene inhibited progressively the alga growth being the lowest cellular growth observed in the medium with the highest phenanthrene concentration, reaching an inhibition percentage of 59 %. In the other treatments, the daily growth rate was relatively constant. The chlorophyll a concentration evaluated by spectrophotometry was not affected by the phenanthrene concentration. In conclusion, the growth of the alga C. vulgaris was affected negatively by the exposure to nominal concentrations of the polycyclic aromatic hydrocarbon phenanthrene higher than 1 µg/l.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <P align="center" ><font size="4">EVALUACI&Oacute;N DEL EFECTO DEL HIDROCARBURO FENANTRENO SOBRE EL CRECIMIENTO DE <i>Chlorella vulgaris </i>(CHLORELLACEAE)  </i></font></p>      <P align="center">Effect of the Hydrocarbon Phenanthrene on <i>Chlorella vulgaris </i>(Chlorellaceae) Growth </p>      <p>ANG&Eacute;LICA OTEROPATERNINA<Sup>1</Sup>, M.Sc.; PABLO E. CRUZCASALLAS<Sup>1</Sup>, Ph. D.; YOHANA M. VELASCOSANTAMAR&Iacute;A<Sup>1</Sup>, Ph. D.</p>      <p><Sup>1</Sup>Grupo de Investigaci&oacute;n sobre Reproducci&oacute;n y Toxicolog&iacute;a de    Organismos Acu&aacute;ticos GRITOX, Facultad de Ciencias Agropecuarias    y Recursos Naturales, Universidad de los Llanos, km 12, v&iacute;a Puerto    L&oacute;pez, Villavicencio, Colombia.    Autor de correspondencia: Yohana Velasco Santamar&iacute;a.    <a href="mailto:ymvelascos@unillanos.edu.co">ymvelascos@unillanos.edu.co</a>. Tel.: +57 8 6 616 800, ext. 158. </p>      <p>Presentado 25 de septiembre de 2012, aceptado 20 de noviembre de 2012, correcciones 7 de febrero de 2013. </p>  <hr size="1">      <p><b>RESUMEN</b></p>      <p>Se evalu&oacute; el efecto del hidrocarburo polic&iacute;clico arom&aacute;tico fenantreno sobre el crecimiento de la microalga <i>Chlorella vulgaris </i>bajo condiciones de laboratorio. Las microalgas fueron expuestas a diferentes concentraciones de fenantreno (0, 1, 10, 100, 1000 y 10000 &micro;g/l). El tiempo de exposici&oacute;n fue de 72 h, determin&aacute;ndose diariamente la densidad algal mediante recuento en c&aacute;mara de Neubauer. Se determin&oacute; la tasa promedio de crecimiento, la biomasa total y el porcentaje de inhibici&oacute;n de la biomasa. Tambi&eacute;n se evalu&oacute; el contenido de clorofila <i>a</i>, al inicio y final del experimento. Los ensayos fueron realizados en recipientes de vidrio de 0,4 l, utilizando como medio de cultivo fertilizante inorg&aacute;nico del complejo NPK (REMITAL&reg; m &ndash; 17-6-18) a raz&oacute;n de 1 g/l. Los resultados mostraron que el fenantreno inhibi&oacute; progresivamente el crecimiento de la microalga, observ&aacute;ndose el menor crecimiento celular en el medio con la mayor concentraci&oacute;n de fenantreno, el cual alcanz&oacute; un porcentaje de inhibici&oacute;n del crecimiento del 59 %. Las tasas de crecimiento diario se mantuvieron relativamente constantes en los dem&aacute;s tratamientos. La concentraci&oacute;n de clorofila <i>a</i>, medida mediante espectrofotometr&iacute;a, no se afect&oacute; por las diferentes concentraciones del hidrocarburo. En conclusi&oacute;n, el crecimiento de la microalga <i>C. vulgaris </i>puede afectarse negativamente por la exposici&oacute;n a concentraciones nominales superiores a 1 &micro;g/l de fenantreno. </p>      <p>Palabras clave: biomasa, clorofila, hidrocarburo, microalgas, toxicidad.  </p> <hr size="1">      <p><b>ABSTRACT</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>The effects of the polycyclic aromatic hydrocarbon phenanthrene on the growth of <i>Chlorella vulgaris </i>alga were evaluated under laboratory conditions. The algae were </p>     <p>exposed during 72 h to different concentrations of phenanthrene (0, 1, 10, 100, 1000 and 10000 &micro;g/l). The alga density was daily determined by a Neubauer chamber. The average growth average, total biomass and inhibition percentage of the biomass were also determined. In addition, the content of chlorophyll <i>a </i>was determined at the beginning and the end of the experiment. The assays were carried out in glass bottles of 0,4 l using the complex NPK (REMITAL&reg; m &ndash; 17-6-18) at 1 g/l as an organic fertilizing. The results showed that phenanthrene inhibited progressively the alga growth being the lowest cellular growth observed in the medium with the highest phenanthrene concentration, reaching an inhibition percentage of 59 %. In the other treatments, the daily growth rate was relatively constant. The chlorophyll <i>a </i>concentration evaluated by spectrophotometry was not affected by the phenanthrene concentration. In conclusion, the growth of the alga <i>C. vulgaris </i>was affected negatively by the exposure to nominal concentrations of the polycyclic aromatic hydrocarbon phenanthrene higher than 1 &micro;g/l. </p>     <p>Keywords: biomass, chlorophyll, hydrocarbon, microalgae, toxicity. </p>  <hr size="1">       <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>      <p>Durante las &uacute;ltimas d&eacute;cadas, las diferentes actividades antropog&eacute;nicas han generado un deterioro progresivo en los ambientes naturales, siendo los cuerpos de agua uno de los ecosistemas m&aacute;s afectados. Dentro de las fuentes de contaminaci&oacute;n, los desechos generados por la extracci&oacute;n de petr&oacute;leo, son causales potenciales de contaminaci&oacute;n ambiental (G&oacute;mez y Ram&iacute;rez, 2004). Colombia posee una alta riqueza petrolera y por ende una alta explotaci&oacute;n de este mineral; no obstante, son casi nulos los estudios orientados a determinar los efectos que compuestos derivados del petr&oacute;leo ocasionan en organismos acu&aacute;ticos. </p>     <p>Los hidrocarburos arom&aacute;ticos polic&iacute;clicos (HAPs) son compuestos generados durante la destilaci&oacute;n de la madera, el funcionamiento de las obras de gas, las refiner&iacute;as de petr&oacute;leo, el escurrimiento de pavimentos asf&aacute;lticos, las emisiones vehiculares, los derrames de petr&oacute;leo y la combusti&oacute;n incompleta de combustibles f&oacute;siles y de materia org&aacute;nica (Canet <i>et al.</i>, 2001; Tang <i>et al.</i>, 2005), los cuales se encuentran en el ambiente como mezclas complejas de diferentes sustancias qu&iacute;micas, generalmente constituidas por dos a diez anillos arom&aacute;ticos (Hylland, 2006). Estas sustancias son consideradas t&oacute;xicas para los organismos con efectos mutag&eacute;nicos, teratog&eacute;nicos y carcin&oacute;genos (Gelboin, 1980; Lehr y Jerina, 1997; Henkler <i>et al.</i>, 2012). El fenantreno es uno de los hidrocarburos m&aacute;s frecuentes en el ambiente (Shimada <i>et al.</i>, 2004; Nizetto <i>et al.</i>, 2008), clasificado por la <i>US Enviromental Protection Agency </i>(EPA) como un contaminante prioritario que contribuye con m&aacute;s del 49 % del total de HAPs en el ambiente, y considerado junto con el fluoranteno y pireno, como los principales hidrocarburos contaminantes atmosf&eacute;ricos (Orli ski, 2002; Shimada <i>et al.</i>, 2004). Al ser un hidrocarburo arom&aacute;tico peque&ntilde;o (tres anillos arom&aacute;ticos), el fenantreno se emplea frecuentemente para desarrollar estudios sobre el metabolismo de hidrocarburos arom&aacute;ticos polic&iacute;clicos con efecto carcinog&eacute;nico (Pelkonen y Nebert, 1982; Narro <i>et al.</i>, 1992). La toxicidad y letalidad de los HAPs se ha determinado para algunas especies de organismos terrestres y para una gran variedad de organismos acu&aacute;ticos, tales como cop&eacute;podos, anf&iacute;podos y otros organismos zooplanct&oacute;nicos, macroalgas, microalgas, gusanos de arena, cangrejos, camarones y algunas especies de peces como trucha (<i>Oncorhynchus mykiss</i>), Chinook salm&oacute;n (<i>O. tshawytscha</i>), catfish (<i>Ictalurus punctatus</i>) y salema (<i>Sarpa salpa</i>), eelpout (<i>Zoarces viviparous</i>), entre otras (Reynaud y Deschaux, 2006).</p>     <p> Los resultados de los monitoreos de la calidad de agua utilizada en los procesos de extracci&oacute;n de hidrocarburos, indican que en la regi&oacute;n de la Orinoquia colombiana los niveles de fenantreno pueden llegar hasta 134 &micro;g/l en el agua residual asociada a la producci&oacute;n. Sin embargo, una vez esta agua es sometida a los tratamientos establecidos en los campos petroleros, estas concentraciones de fenantreno bajan a valores no detectables (&lt;0,22 &micro;g/l), aunque en ocasiones se han reportado concentraciones cercanas a 7 &micro;g/l (datos no publicados). Uno de los factores que sustentan el uso de algas en los bioensayos es su abundancia en los ecosistemas acu&aacute;ticos. Si estos microorganismos se ven afectados por una sustancia t&oacute;xica, el ecosistema circundante percibe la falta de esa fuente de alimento (Wang y Zheng, 2008). Entre las microalgas utilizadas en ensayos de toxicidad encontramos las algas verdes como <i>Scenedesmus </i>sp., que ha sido utilizada como bioindicador para valorar los efectos del petr&oacute;leo o efluentes derivados de su extracci&oacute;n, reportando una disminuci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de clorofila <i>a</i>, en el porcentaje de materia seca, en la densidad celular o la tasa de crecimiento (Aguilar <i>et al.</i>, 2010; G&oacute;mez y Ram&iacute;rez, 2004). Por su parte, algas marinas expuestas a concentraciones de 5 a 1000 &micro;g/l de fenantreno han presentado disminuci&oacute;n en la tasa de crecimiento de manera proporcional a la concentraci&oacute;n (Echeveste <i>et al.</i>, 2010). <i>Chlorella vulgaris </i>se ha usado eficientemente para evaluar el efecto de HAPs, al respecto, se han observado efectos negativos en su estructura celular debido a la exposici&oacute;n a fluoranteno (Yu <i>et al.</i>, 2013), as&iacute; como da&ntilde;o oxidativo de las algas por exposici&oacute;n a concentraciones inferiores a 10 mg/l de naftaleno (Kong <i>et al.</i>, 2010); no obstante, no se conocen reportes de toxicidad de fenantreno en <i>C. vulgaris</i>. <i>Chlorella vulgaris </i>es un alga verde unicelular, frecuentemente utilizada como bioindicador debido a su alta sensibilidad a sustancias t&oacute;xicas (Ma <i>et al.</i>, 2004) y a su facilidad de cultivo en el laboratorio. Adem&aacute;s, es muy sensible a los cambios en su entorno, presenta un ciclo de vida corto facilitando la evaluaci&oacute;n de los efectos t&oacute;xicos sobre varias generaciones. Sumado a esto, <i>C. vulgaris </i>ha sido identificada como el alga ideal para realizar pruebas de inhibici&oacute;n del crecimiento con bioensayos de duraci&oacute;n de 72 h, seg&uacute;n las normas de la Organizaci&oacute;n para la Cooperaci&oacute;n Econ&oacute;mica y el Desarrollo (OECD, 2011). El objetivo de este estudio fue evaluar el efecto del hidrocarburo arom&aacute;tico polic&iacute;clico fenantreno sobre el crecimiento de la microalga <i>C. vulgaris</i>, bajo condiciones de laboratorio en la Orinoquia Colombiana. </p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></p>     <p>LOCALIZACI&Oacute;N Y DESCRIPCI&Oacute;N DEL &Aacute;REA DE ESTUDIO </p>      <p>La investigaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo en el laboratorio de producci&oacute;n de alimento vivo del Instituto de Acuicultura de la Universidad de los Llanos, localizado a 12 km de la ciudad de Villavicencio, Colombia. La altura promedio es de 418 msnm, con una temperatura m&aacute;xima de 33,3 &deg;C y una temperatura m&iacute;nima promedio de 18,8 &ordm;C, precipitaci&oacute;n anual entre 1900 y 2300 mm y humedad relativa del 75 % (IDEAM, 2010). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>CULTIVO DE <i>Chlorella vulgaris </i></p>      <p>La cepa de microalga <i>C. vulgaris </i>fue obtenida del laboratorio de alimento vivo del Instituto de Acuicultura de la Universidad de los Llanos. El <i>stock </i>del cultivo se conserv&oacute; en recipientes de vidrio de 3 l, previamente esterilizados en autoclave (45 min a una temperatura de 121 &ordm;C, Tuttnauer&reg; 2540 MK, Holanda). Se utiliz&oacute; un medio de cultivo fertilizante inorg&aacute;nico del complejo NPK (REMITAL&reg; m &ndash; 17-6-18) a raz&oacute;n de 1 g/l, el cual ha mostrado los mejores resultados con respecto al crecimiento poblacional (Mu&ntilde;oz <i>et al.</i>, 2012). Las microalgas se mantuvieron bajo condiciones controladas de laboratorio con iluminaci&oacute;n blanca artificial constante de 72 W y una intensidad lum&iacute;nica de 2629 &plusmn; 300 lux (31,8 &plusmn; 3,6 &micro;mol m<Sup>-2</Sup>.s<Sup>-1</Sup>), temperatura de 18 &plusmn; 1 &ordm;C y aireaci&oacute;n permanente, manteni&eacute;ndose el cultivo hasta que alcanz&oacute; la fase exponencial. </p>      <p>ENSAYO PRELIMINAR </p>     <p>Teniendo en cuenta las caracter&iacute;sticas lipof&iacute;licas del fenantreno (98 % pureza, <i>SigmaAldrich</i>, Alemania), se realiz&oacute; un ensayo evaluando el uso de dos solventes: dimetilsulf&oacute;xido (DMSO v/v <i>Sigma Chemical Co., St. Louis, MO, USA</i>) y acetona (<i>Merck, Darmstadt</i>, Alemania). Para este fin, se evaluaron para los dos solventes concentraciones de 0,05 % a 1 % durante un periodo de 24 h, obteni&eacute;ndose el mejor resultado de solubilidad con acetona al 0,05 %, lo cual minimiz&oacute; los posibles efectos secundarios del solvente. </p>     <p>EXPOSICI&Oacute;N DE LAS ALGAS AL HIDROCARBURO FENANTRENO </p>     <p>Los ensayos se llevaron a cabo en recipientes de vidrio de 0,4 l esterilizados. Las condiciones de cultivo se mantuvieron constantes durante todo el periodo de exposici&oacute;n. Las microalgas fueron expuestas a las siguientes concentraciones de fenantreno (98 %, <i>Sigma Aldrich</i>): 0, 1, 10, 100, 1000 y 10000 &micro;g/l, considerando la concentraci&oacute;n de 0 % como el tratamiento control, adicionando &uacute;nicamente 0,05 % de acetona (solvente control). Los ensayos de exposici&oacute;n se realizaron dos veces con intervalo de 15 d&iacute;as y cada tratamiento tuvo cinco r&eacute;plicas, para un total de diez replicas. En cada unidad experimental (recipientes) se inocul&oacute; una concentraci&oacute;n algal inicial de 2,0 x 10<Sup>4</Sup>cel/ml de medio de cultivo. El tiempo de exposici&oacute;n fue de 72 h seg&uacute;n lo recomendado por la OECD (2011), determin&aacute;ndose diariamente la densidad algal mediante recuento en c&aacute;mara de Neubauer. De igual modo, se determinaron la tasa promedio de crecimiento, biomasa total y el porcentaje de inhibici&oacute;n de la biomasa (OECD, 2011), los cuales se describen a continuaci&oacute;n. </p>     <p>VARIABLES EVALUADAS </p>     <p>Densidad algal. La densidad algal fue determinada mediante recuento en c&aacute;mara de Neubauer bajo un microscopio &oacute;ptico (40x) (Nikon&reg; Eclipse E200, Jap&oacute;n). Para cada r&eacute;plica el conteo se realiz&oacute; por duplicado. Para disminuir el error del m&eacute;todo se calcul&oacute; el promedio de los recuentos y se utiliz&oacute; la f&oacute;rmula propuesta por Sipa&uacute;baTavares y Rocha (2003): </p>     <p align="center"><a name=""><img src="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a6e1.jpg"></a></p>      <p>Contenido de clorofila <i>a</i>. Por cada r&eacute;plica, 50 ml del medio con las micro algas fue filtrado y posteriormente el filtro fue transferido a tubos de ensayo protegidos de la luz, en   cuyo interior se hab&iacute;an adicionado previamente 10 ml de acetona al 90 %. Posteriormente,   el filtro fue macerado y las muestras mantenidas bajo refrigeraci&oacute;n (4 &ordm;C) durante   24 h en una nevera convencional. Transcurrido este tiempo la absorbancia del sobrenadante   fue determinada a 665, 645 y 630 nm de longitud de onda (espectrofot&oacute;metro,   6405 UV/VIS de Jenway, Reino Unido), para as&iacute; calcular el contenido de clorofila a aplicando la f&oacute;rmula propuesta por Strickland y Parsons (1972):</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name=""><img src="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a6e2.jpg"></a></p>       <p>Donde:</p>      <p>Cl<i>a</i>: clorofila <i>a </i></p>       <p>C: resultado de la ecuaci&oacute;n de Strickland y Parsons </p>       <p>V: volumen de la muestra de agua filtrada (0,05l) </p>       <p>L: longitud de la boca de la cubeta (1cm) </p>       <p>S: volumen de acetona utilizado (0,01l) </p>       <p>Tasa promedio de crecimiento diario </p>       <p>Es el incremento logar&iacute;tmico de la biomasa durante la duraci&oacute;n del ensayo, para lo cual    se emple&oacute; la siguiente ecuaci&oacute;n : </p>     <p align="center"><a name=""><img src="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a6e3.jpg"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Donde: </p>     <p>&micro;<Sub>i-j</Sub> = promedio de la tasa de crecimiento especifico desde el tiempo i hasta j </p>     <p>X<Sub>i</Sub> = biomasa en el tiempo <i>i </i></p>     <p>X<Sub>f</Sub> = biomasa en el tiempo<i> f </i></p>     <p>El porcentaje de inhibici&oacute;n de la tasa de crecimiento. Se calcul&oacute; teniendo en cuenta la tasa espec&iacute;fica de crecimiento as&iacute;: </p>     <p align="center"><a name=""><img src="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a6e4.jpg"></a></p>      <p> %I<sub>T</sub> =por centaje de inhibici&oacute;n del promedio de la tasa especifica de crecimiento </p>     <p>&micro;<Sub>C</Sub> =promedio de la tasa especifica de crecimiento (&micro;) en el grupo control</p>      <p>&micro;<Sub>T</Sub> =promedio de la tasa especifica de crecimiento en el tratamiento.</p>     <p>La biomasa total. Se calcul&oacute; teniendo en cuenta la biomasa al final del periodo de ensayo (tres d&iacute;as) tanto del grupo control como de los tratamientos, menos la biomasa inicial de cada uno.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>B<Sub>T</Sub>=B<Sub>f</Sub>&ndash;B<Sub>i</Sub> </p>      <p>Porcentaje de inhibici&oacute;n de la biomasa % Iy. Fue calculado teniendo en cuenta la biomasa h&uacute;meda total, as&iacute;:</p>     <p align="center"><a name=""><img src="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a6e5.jpg"></a></p>      <p>Y<Sub>C</Sub> = valor medio de la biomasa en el grupo control </p>     <p>Y<Sub>T</Sub> = valor medio de la biomasa en el tratamiento</p>     <p> El porcentaje de inhibici&oacute;n de la tasa de crecimiento algal fue usado para calcular la concentraci&oacute;n efectiva 50 (CE<Sub>50</Sub>) y concentraci&oacute;n efectiva 20 (CE<Sub>20</Sub>). </p>      <p>AN&Aacute;LISIS ESTAD&Iacute;STICO </p>     <p>Se realiz&oacute; estad&iacute;stica descriptiva para expresar los resultados como media &plusmn; error est&aacute;ndar de la media (SEM). La homogeneidad de varianza y la normalidad de los datos fueron analizadas por medio de la prueba de Bartlett y la prueba de KolmogorovSmirnov, respectivamente. Para comparar las diferencias entre el grupo control y los tratamientos de fenantreno, las variables de densidad, la clorofila <i>a</i>, el TPCD y la biomasa total fueron sometidas a un an&aacute;lisis de varianza de una v&iacute;a (ANOVA), seguido de la prueba de Dunnett. En las variables de % ITC y % de inhibici&oacute;n se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza de una v&iacute;a (ANOVA) seguido del test de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple Tukey. Un valor de p &lt;0,05 fue utilizado como criterio para considerar diferencias estad&iacute;sticas significativas. La CE fue calculada por el m&eacute;todo de probit. Los datos fueron analizados con el <i>software </i>SAS versi&oacute;n 9.2 para Wndows (2002-2008 por SAS Institute Inc, Cary, NC, USA). </p>     <p><b>RESULTADOS </b></p>      <p>DENSIDAD CELULAR DE <i>C. vulgaris </i>EXPUESTA A FENANTRENO </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En la <a href="#Fig.1">figura 1</a> se ilustra el efecto del fenantreno sobre la densidad celular a lo largo de las 72 h de exposici&oacute;n. A partir de las 24 h de exposici&oacute;n, todas las concentraciones de fenantreno presentaron una densidad celular significativamente menor que el grupo control (p &lt; 0,05). El tratamiento control present&oacute; las mayores densidades con valores de 3,8 x 10<Sup>5 </Sup>&plusmn; 5833; 5,5x 10<Sup>5 </Sup>&plusmn; 20069 y 7,3 x 10<Sup>5 </Sup>&plusmn; 16436 cel/ml a las 24, 48 y 72 h de exposici&oacute;n, respectivamente, seguido de las concentraciones de fenantreno de 1 y 10  &micro;g/l con valores entre los 2,7 y 6,7 x 10<Sup>5 </Sup>cel/ml. Por otro lado, la concentraci&oacute;n de 10000 &micro;g/l, fue el tratamiento que present&oacute; la menor tasa de crecimiento durante el ensayo, con densidades de 2,3 x 10<Sup>5 </Sup>&plusmn; 5336; 2,9 x 10<Sup>5 </Sup>&plusmn; 11304 y 3,8 x 10<Sup>5 </Sup>&plusmn; 15366 cel/ ml a las 24, 48 y 72 h de exposici&oacute;n, respectivamente. </p>     <p align="center"><a name="Fig.1"><img src="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a6f1.jpg"></a></p>       <p>CONCENTRACI&Oacute;N DE CLOROFILA <i>a </i></p>      <p>La concentraci&oacute;n de clorofila <i>a </i>no se afect&oacute; por efecto de las diferentes concentraciones de fenantreno (<a href="#Fig.2">Fig. 2</a>). Aunque por tratamiento se observaron diferencias significativas entre las 0 y 72 h de exposici&oacute;n (p &lt; 0,05), para una misma hora no se presentaron diferencias significativas entre los tratamientos evaluados (p &gt; 0,05). A las 72 h, los valores de mayor y menor contenido de clorofila <i>a </i>se presentaron en las concentraciones de 1 &micro;g/l y 1000 &micro;g/l con valores promedios de 1,05 &plusmn; 0,14 &micro;g/l y 0,74 &plusmn; 0,15 &micro;g/l, respectivamente, aunque sin diferencias significativas. Por su parte, cuando la concentraci&oacute;n de clorofila <i>a </i>fue expresada en pg/c&eacute;lula no se observaron diferencias significativas entre tratamientos ni entre horas con valores de 2,02x10<Sup>-4 </Sup>&plusmn; 1,7 x10<Sup>-5 </Sup>y 9,19x10<Sup>-4 </Sup>&plusmn; 7,1 x10<Sup>-5</Sup>pg clorofila/c&eacute;lula a las 0 y 72 h, respectivamente. </p>     <p align="center"><a name="Fig.2"><img src="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a6f2.jpg"></a></p>       <p>VARIABLES DE CRECIMIENTO EVALUADAS </p>      <p>Para calcular las variables de crecimiento se tuvo en cuenta la densidad inicial a las cero horas, la cual tuvo una densidad 200,000 cel/ml en todos los tratamientos. En la <a href="#Fig.3">figura 3</a> se muestra una progresiva disminuci&oacute;n en el crecimiento de <i>C. vulgaris </i>en todos los tratamientos a lo largo del tiempo. Las algas expuestas a fenantreno presentaron una reducci&oacute;n significativa del crecimiento con respecto al control a las 24 h de exposici&oacute;n (reducci&oacute;n mayor al 38 %, p &lt;0,05). El crecimiento de las algas expuestas a 1 &micro;g/l de fenantreno fue similar al control despu&eacute;s de 48 h de exposici&oacute;n (p &gt;0,05). Despu&eacute;s de las 72 h de exposici&oacute;n, las algas expuestas a 100, 1000 y 1000 &micro;g/l presentaron una tasa de crecimiento significativamente menor con respecto al control (reducci&oacute;n mayor al 18 %, p &lt;0,05). </p>     <p align="center"><a name="Fig.3"><img src="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a6f3.jpg"></a></p>      <p>Los resultados de crecimiento e inhibici&oacute;n algal en <i>C. vulgaris </i>expuestas a fenantreno    son mostradas en la <a href="#Tabla 1">Tabla 1</a>. Las tasas de crecimiento diario y la biomasa total fueron    menores en las algas expuestas a las cinco concentraciones de fenantreno cuando com   parado con el control (p &lt; 0,05, <a href="#Tabla 1">Tabla 1</a>). La concentraci&oacute;n de 1000 y 10000 &micro;g/l afec   taron dr&aacute;sticamente el crecimiento algal, con una inhibici&oacute;n del crecimiento e inhibici&oacute;n    de la biomasa mayor al 29 % y 42 %, respectivamente (p &lt; 0,05). El porcentaje de inhi   bici&oacute;n se increment&oacute; a medida que aument&oacute; la concentraci&oacute;n de fenantreno en el    medio de cultivo (<a href="#Tabla 1">Tabla 1</a>).    Los resultados de las concentraciones efectivas para este ensayo fueron CE<Sup>20 </Sup>de 2587    &micro;g/l y la CE<Sub>50</Sub> de 11004 &micro;g/l.</p>     <p align="center"><a name="Tabla 1"><img src="img/revistas/abc/v18n1/v18n1a6t1.jpg"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>DISCUSI&Oacute;N </b></p>      <p>El presente estudio demostr&oacute; que fenantreno, un HAPs incluido en la lista de compuestos t&oacute;xicos prioritarios, genera un efecto t&oacute;xico en <i>C. vulgaris </i>durante exposiciones agudas con significativas alteraciones en la densidad celular, la biomasa y las tasas de crecimiento. Los HPAs son compuestos altamente estables en la naturaleza, conservando sus propiedades t&oacute;xicas, pudiendo ser retenido f&aacute;cilmente por adsorci&oacute;n a materiales particulados inertes o absorbido por organismos vivos, siendo por lo tanto clasificados por la US EPA y por la <i>Agency for Toxic Substances and Disease Registry </i>(USA) como sustancias que presentan un alto riesgo para la salud humana y animal. Aunque los HAPs se encuentran como mezclas complejas, conocer los efectos de manera individual a diversos niveles es importante para entender su din&aacute;mica y comportamiento en el ambiente (ATSDR, 1995). Los efectos t&oacute;xicos de los hidrocarburos derivados del petr&oacute;leo sobre el fitoplancton son generalmente determinados comparando las tasas de crecimiento y la actividad fotosint&eacute;tica de cultivos del fitoplancton expuestos a dichos hidrocarburos (Cortez-Mago <i>et al.</i>, 2007). Los resultados del presente estudio mostraron una disminuci&oacute;n en la biomasa y la tasa de crecimiento en las algas expuestas a las cinco concentraciones de fenantreno, siendo mayor el efecto negativo a medida que la concentraci&oacute;n de fenantreno aument&oacute;. Estos resultados son similares a los reportados por Qingxia <i>et al. </i>(2010), quienes evaluaron la toxicidad del HAPs naftaleno sobre la microalga marina <i>C. vulgaris</i>, a concentraciones de 5, 10, 50 y 100 mg/l en diferentes medios de cultivo con N y P y cuyos resultados mostraron una relaci&oacute;n negativa entre la tasa de crecimiento y la concentraci&oacute;n del hidrocarburo. Igualmente, se han reportado efectos negativos de los hidrocarburos sobre la tasa de crecimiento de <i>Prochlorococcus marina</i>, <i>Synechococcus </i>sp., <i>Micromonas pusilla</i>, <i>Chlorella </i>sp., <i>Phaeodactylum tricornutum </i>y <i>Thalassiosira </i>sp., expuestas a diferentes concentraciones de pireno y fenantreno (5, 10, 50, 100, 500 y 1000 &micro;g/l), con una disminuci&oacute;n en la tasa de crecimiento m&aacute;s acentuada a medida que aument&oacute; la concentraci&oacute;n de los hidrocarburos, hallazgos similares a lo observado en el presente estudio con fenantreno (Echeveste <i>et al.</i>, 2010). Adicionalmente, estos autores reportaron que el tama&ntilde;o de las algas afecta la respuesta a sustancias t&oacute;xicas, siendo las algas m&aacute;s peque&ntilde;as las m&aacute;s sensibles, mientras que algas de mayor tama&ntilde;o como <i>Chlorella </i>sp., <i>M. pusilla </i>y <i>P. tricornutum</i>, presentaron efectos leves en sus poblaciones. </p>     <p>De igual manera, Pokora y Tukaj (2010), evaluaron los efectos de 0,25 mg/l de antraceno por un tiempo de exposici&oacute;n de 24 h en tres especies de <i>Desmodesmus </i>(<i>D. microspina,  </i><i>D. subspicatus</i> y <i>D. obliquus</i>), observando una disminuci&oacute;n en la tasa de crecimiento en las tres especies a partir de la sexta hora. Esta disminuci&oacute;n en la tasa de crecimiento junto con alteraciones en la tasa fotosint&eacute;tica se deben a que los hidrocarburos producen da&ntilde;os en la capa lipof&iacute;lica de la membrana celular, afectando su capacidad para controlar adecuadamente el transporte de iones dentro y fuera de la c&eacute;lula (Vila, 2003). Las algas fijan eficientemente nitr&oacute;geno y carbono, compuestos &iacute;ntimamente relacionados con el metabolismo oxiradical, por tanto, la producci&oacute;n de especies reactivas de ox&iacute;geno en estos organismos fotosint&eacute;ticos es parte fundamental de su sobrevivencia (Torres et al., 2008). Sumado a esto, el flujo de ox&iacute;geno y de iones en las mitocondrias y los cloroplastos es muy alto, lo que conlleva a que estas estructuras sean blanco potencial de estr&eacute;s oxidativo (Torres et al., 2008). Aunque en el presente estudio no se </i>determinaron marcadores de estr&eacute;s oxidativo, es posible que las concentraciones de fenantreno utilizadas hayan inducido un tipo de respuesta similar, reflej&aacute;ndose en la reducci&oacute;n de densidad celular, inhibici&oacute;n de biomasa y tasa de crecimiento a medida que la concentraci&oacute;n de fenantreno aument&oacute;. Estudios en plantas han demostrado que los HAPs son capaces de inducir la actividad de enzimas como superoxido dismutasa, catalasa, peroxidasa as&iacute; como peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica y alteraciones de las v&iacute;as metab&oacute;licas que regulan las especies reactivas de ox&iacute;geno (ROS), lo que conllevar&iacute;a a alteraciones en el sistema metab&oacute;lico algal y por tanto efectos negativos sobre el crecimiento y la integridad celular (Liu <i>et al.</i>, 2009; Weisman <i>et al.</i>, 2010). </p>     <p>En el presente estudio la cantidad de clorofila <i>a </i>no se vio afectada por las diferentes concentraciones de fenantreno, a pesar que se observ&oacute; una tendencia a disminuir con la mayor concentraci&oacute;n. Contrario a lo observado en el presente estudio, se ha reportado una disminuci&oacute;n de la cantidad de clorofila <i>a </i>cuando algas eucari&oacute;ticas (<i>Scenedesmus </i>y <i>Dunaliella tertiolecta</i>) fueron expuestas a hidrocarburos (Guerra Mart&iacute;nez <i>et al.</i>, 2004). Este corresponde a uno de los primeros estudios en reportar la concentraci&oacute;n efectiva de fenantreno en <i>C. vulgaris.</i> Investigaciones previas con esta alga reportan una CL50 de 2060 &micro;g/l de pireno, una concentraci&oacute;n menor a la observada en el presente estudio (CE50 11004 &micro;g/l), esta diferencia puede estar asociada al mayor n&uacute;mero de anillos arom&aacute;ticos que tiene el pireno y por tanto su toxicidad podr&iacute;a ser mayor que la del fenantreno (Echeveste <i>et al.</i>, 2010). Por otro lado, en algas peque&ntilde;as como <i>P. marina</i> y <i>Synechococcus </i>sp. se ha reportado una CL<Sub>50</Sub> muy por debajo de la observada en el presente estudio (77 y 40 &micro;g/l, respectivamente), cuya sensibilidad est&aacute; asociada a su reducido tama&ntilde;o celular (Echeveste <i>et al.</i>, 2010). Aunque la CE<Sub>20</Sub> y CE<Sub>50</Sub> de fenantreno en este estudio fueron relativamente altas, los resultados indican que por encima de la concentraci&oacute;n de 1 &micro;g/l se observan efectos negativos sobre el crecimiento en <i>C. vulgaris</i>. Los resultados de la presente investigaci&oacute;n demuestran que el crecimiento de la microalga <i>C. vulgaris </i>puede ser afectado negativamente por la exposici&oacute;n a concentraciones nominales mayores a 1 &micro;g/l del hidrocarburo polic&iacute;clico arom&aacute;tico fenantreno, una concentraci&oacute;n cercana a la detectada en aguas de producci&oacute;n asociada a la extracci&oacute;n petrolera. </p>      <p><b>AGRADECIMIENTOS </b></p>     <p>El presente trabajo fue financiado por el Instituto Colombiano de Petr&oacute;leo ICPEcopetrol S.A. y la Universidad de los Llanos (contrato n.&ordm; 008/08). Los autores agradecen al Grupo de Investigaci&oacute;n sobre Reproducci&oacute;n y Toxicolog&iacute;a de Organismos Acu&aacute;ticos del Instituto de Acuicultura de la Universidad de los Llanos por el apoyo log&iacute;stico ofrecido para la realizaci&oacute;n de los bioensayos. </p>     <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A </b></p>     <!-- ref --><p>AGUILAR-LE&Oacute;N D, OTERO-PATERNINA AM, CRUZCASALLAS PE, VELASCO-SANTAMAR&Iacute;A YM. <i>Scenedesmus </i>sp.: microalga bioindicadora de toxicidad de efluentes de una campo petrolero en la Orinoquia colombiana. Universidad de los Llanos. En: XVI Jornada de Acuicultura. Villavicencio, Colombia; 2010. p. 14-18. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-548X201300010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ATSDR. Agency for Toxic Substances and Disease Registry, USA. Public Health Statement for Polycyclic Aromatic Hydrocarbons (PAHs). 1995. &#91;Citado, diciembre 10 de 2012&#93; Disponible en: URL: <a href="http://www.atsdr.cdc.gov/phs/phs.asp?id=120&amp;tid=25" class="a" target="_blank">http://www.atsdr.cdc.gov/phs/phs.asp?id=120&amp;tid=25</a>. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-548X201300010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>CANETR, BIRNSTINGL JG, MALCOLM DG, LOPEZ JM, BECK AJ. Biodegradation of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) by native microflora and combinations of white-rot fungi in a coal-tar contaminated soil. Bioresour Technol. 2001;76(2):113-117. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-548X201300010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>CORTEZ-MAGO R, GUEVARA M, V&Aacute;SQUEZ A, LLODEIROS-SEIJO C. Influencia del petr&oacute;leo crudo en el crecimiento de microalgas del nororiente de Venezuela. Bolet&iacute;n del Centro de Investigaciones Biol&oacute;gicas. Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela. 2007;41(4):471-483. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-548X201300010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ECHEVESTE P, AGUST&Iacute; S, DACHS J. Cell size dependent toxicity thresholds of polycyclic aromatic hydrocarbons to natural and cultured phytoplankton populations. Environ Pollut. 2010;158(1):299-307. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-548X201300010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>GELBOIN HV. Benzo&#91;a&#93; pyrene metabolism, activation, and carcinogenesis: role and regulation of mixed-function oxidases and related enzymes.Physiol Rev. 1980;60(4):1107-1167. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-548X201300010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>G&Oacute;MEZ LM, RAM&Iacute;REZ Z. Microalgas como biomonitores de contaminaci&oacute;n. Rev Cubana Qu&iacute;m. 2004;XVI(2):34-48. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-548X201300010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>GUERRA-MART&Iacute;NEZ S, MART&Iacute;NEZ E, R&Iacute;OS E, OLVERA R. Efecto t&oacute;xico del petr&oacute;leo crudo sobre Dunaliella tertiolecta. En: I Congreso Latinoamericano sobre Biotecnolog&iacute;a Algal. Universidad de Buenos Aires. Buenos Aires, Argentina; 2004. p. 89. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-548X201300010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>HENKLER F, STOLPMANN K, LUCH A. Exposure to Polycyclic Aromatic Hydrocarbons: Bulky DNA Adducts and Cellular Responses. En: Luch, A, Editor. Molecular, Clinical and Environmental Toxicology. Springer Basel; 2012. p. 107-131. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-548X201300010000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>HYLLAND K. Polycyclic aromatic hydrocarbon (PAH).Ecotoxicology in marine ecosystems. J Toxicol Environ Health Part A. 2006;69(1-2):109-123. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-548X201300010000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>IDEAM (Instituto de Hidrolog&iacute;a Meteorolog&iacute;a y Estudios Ambientales) &#91;Online&#93;. Colombia. Ministerio de Ambiente Vivienda y Desarrollo Territorial. &#91;Citado, junio 01 de 2010&#93;. Disponible en: URL: <a href="http://institucional.ideam.gov.co/jsp/index.jsf" class="a" target="_blank">http://institucional.ideam.gov.co/jsp/index.jsf</a>. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-548X201300010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>KONG Q, ZHUA L, SHENA X. The toxicity of naphthalene to marine <i>Chlorella vulgaris </i>under different nutrient conditions. J Hazard Mater. 2010;178(1-3):282-286. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-548X201300010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>LEHR RE, JERINA DM. Metabolic activations of polycyclic hydrocarbons. Arch Toxicol. 1977;39(1-2):1-6. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-548X201300010000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>LIU H, WEISMAN D, YE Y.-B, CUI B, HUANG Y.-H, COL&Oacute;N A, WANG Z.-H. An oxidative stress response to polycyclic aromatic hydrocarbon exposure is rapid and complex in <i>Arabidopsis thaliana</i>. Plant Sci. 2009;176(3):375-382. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-548X201300010000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>MA J, LIN F, ZHANG R, YU W, LU N. Differential sensitivity of two green algae, <i>Scenedesmus quadricauda </i>and <i>Chlorella vulgaris </i>to 14 pesticides adjuvants. Ecotoxicol Environ Saf. 2004;58(1):61-67. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-548X201300010000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>MU&Ntilde;OZ-PE&Ntilde;UELA M, RAM&Iacute;REZ-MERLANO JA, MEDINA-ROBLES VM, CRUZ-CASALLAS PE, VELASCO-SANTAMAR&Iacute;A YM. Efecto del medio de cultivo sobre el crecimiento y el contenido proteico de <i>Chlorella vulgaris</i>. 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Appl Microbiol Biotechnol. 1992;58(4):1351-1359. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-548X201300010000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>NIZETTO L, LOHMANN R, GIOIA R, JAHNKE A, TEMME C, DACHS J, HERCKES P, <i>et al. </i>PAHs in air and seawater along a north south Atlantic transect: trends, processes and possible sources. Environ Sci Technol. 2008;42(5):1580-1585. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-548X201300010000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>PELKONEN O, NEBERT D.W. Metabolism of polycyclic hydrocarbon: etiologic role in carcinogenesis. Pharmacol Rev. 1982;34(2):189-222. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-548X201300010000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>OECD. Organization for Economic Cooperation and Development. Freshwater alga and cyanobacteria Growth Inhibition Test. Guidelines for the testing of chemicals. 2011. p. 201. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-548X201300010000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>OECD. Organization for Economic Co-operation and Development. <i>Daphnia magna </i>Reproduction Test. Guidelines for testing of chemicals. 1998. p. 211. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-548X201300010000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ORLI SKI R. Multipoint moss passive samplers assessment of urban airborne polycyclic aromatic hydrocarbons: concentrations profile and distribution along Warsaw main streets. Chemosphere. 2002;48(2):181-186. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-548X201300010000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>POKORA W, TUKAJ Z. The combined effect of anthracene and cadmium on photosynthetic activity of three <i>Desmodesmus </i>(Chlorophyta) species. Ecotoxicol Environ Saf. 2010;73(3):1207-1213. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-548X201300010000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>REYNAUD S, DESCHAUX P. The effects of polycyclic aromatic hydrocarbons on the immune system of fish: A review. Aquat Toxicol. 2006;77(2):229-238. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-548X201300010000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>QINGXIA K, LIZHONG Z, XUEYOU S. The toxicity of naphthalene to marine <i>Chlorella vulgaris </i>under different nutrient conditions. J Hazard Mater. 2010;178(1-3):282-286. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-548X201300010000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>SHIMADA H, OGINUMA M, HARA A, IMAMURA Y. 9,10-Phenanthrenequinone, a component of diesel exhaust particles, inhibits the reduction of 4-benzoylpyridine and all-trans-retinal and mediates superoxide formation through its redox cycling in pig heart. Chem Res Toxicol. 2004;17(8):1145-1150. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-548X201300010000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>SIP&Aacute;UBA - TAVARES L, ROCHA O. Produ&ccedil;&atilde;o de pl&acirc;ncton (Fitopl&acirc;ncton e Zoopl&acirc;ncton) para alimenta&ccedil;&atilde;o de organismos aqu&aacute;ticos. S&atilde;o Carlos, RIMA; 2003. p. 45. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-548X201300010000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>STRICKLAND JHD, PARSONS TR. A practical handbook of seawater analysis. Bull Fish Res. 1972;167:189-190. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-548X201300010000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>TANG L, TANG XY, ZHU YG, ZHENG MH, MIAO QL. Contamination of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) in urban soils in Beijing, China. Environ Int. 2005;31(6):822-828. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-548X201300010000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>TORRES MA, BARROS MP, CAMPOS SCG, PINTO E, RAJAMANI S, SAYRE RT, COLEPICOLO P. Biochemical biomarkers in algae and marine pollution: A review. Ecotoxicol Environ Saf. 2008;71(1):1-15. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-548X201300010000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>VILA M. Efectos das mareas negras en organismos e comunicades vexetais. Asociaci&oacute;n de Ensinantes de Ciencias de Galicia. 2003;52:103-118. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-548X201300010000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>WANG L, ZHENG B. Toxic effects of fluoranthene and copper on marine diatom Phaeodactylum tricornutum. J Environ Sci. 2008;20(11):1363-1372. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-548X201300010000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>WEISMAN D, ALKIO M, COL&Oacute;NCARMONA A. Transcriptional responses to polycyclic aromatic hydrocarboninduced stress in <i>Arabidopsis thaliana </i>reveal the involvement of hormone and defense signaling pathways. BMC Plant Biol. 2010;10:59. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-548X201300010000600033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>YU F, GE F, ZHOU W, TAO N, LIANG Z, ZHU L. Subcellular distribution of fluoranthene in <i>Chlorella vulgaris </i>with the presence of cetyltrimethylammonium chloride. Chemosphere. 2013;90(3):929-935. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-548X201300010000600034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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