doi:10.15446/abc.v20n1.40731.

Artículo de investigación

PURIFICACIÓN DEL ANTÍGENO 38 kDa DE Mycobacterium tuberculosis Y SU POTENCIAL USO EN DIAGNÓSTICO MEDIANTE INMUNOSENSORES PIEZOELÉCTRICOS

Mycobacterium tuberculosis 38 kDa Antigen Purification and Potential Diagnostic Use by Piezoelectric Immunosensors

Paula A. Marín¹, Luz E. Botero², Jaime A. Robledo², Ana M. Murillo², Robinson A. Torres¹, Yeison J. Montagut¹, Elizabeth Pabón³, Marisol Jaramillo⁴.

¹ Escuela de Ingeniería de Antioquia EIA. Universidad CES. Grupo de investigación GIBEC EIA-CES - Laboratorio de Biosensores. Calle 25 Sur n.#º42-73. Envigado, Colombia.
² Corporación para Investigaciones Biológicas CIB. Universidad Pontificia Bolivariana UPB. Grupo de investigación en Bacteriología y Micobacterias. Carrera 72 A n.° 78 B 141. Medellín, Colombia.
³ Universidad Nacional de Colombia, sede Medellín. Grupo de investigación Ciencia de Materiales Avanzados, Facultad de Ciencias. Calle 59A n.#º 63-20. Medellín, Colombia.
⁴ Escuela de Ingeniería de Antioquia EIA. Universidad Nacional de Colombia, sede Medellín. Grupo de investigación GIBEC EIA-CES - Laboratorio de Biosensores. Calle 25 Sur n.#º 42-73. Envigado, Colombia. ]]> For correspondence. pmarin@eia.edu.co

Received 8th November 2013, Returned for revision 12th September 2014, accepted 13th October 2014.

Citation / Citar este artículo como: Marín P.A, Botero L.E, Robledo J.A, Murillo A.M, Torres R.A, Montagut Y.J, Pabón E, Jaramillo M Purificación del antígeno 38kDa de Mycobacterium tuberculosis y su potencial uso en diagnóstico mediante inmunosensores piezoeléctricos. Acta biol. Colomb. 2015;20(1):129-139. doi: http://dx.doi.org/10.15446/abc.v20n1.40731.

RESUMEN

Un paso crucial en el desarrollo de un inmunosensor piezoeléctrico para la detección de tuberculosis (TB), es la selección y obtención de los inmunoreactivos empleados en el inmunoensayo y la estrategia para la biofuncionalización del transductor. Diversos estudios han reportado el uso del antígeno proteico 38kDa (Ag38kDa) de Mycobacterium tuberculosis (Mtb) como un buen biomarcador de la enfermedad y el cumplimiento de las características físicas y bioquímicas para ser inmovilizado por monocapas autoensambladas (SAMs), en la superficie del electrodo de oro de cristales piezoeléctricos. Un inmunosensor piezoeléctrico desarrollado a partir de un antígeno nativo purificado de Mtb podría ser un método alternativo simple para la detección de Mtb con ventajas de rapidez y reusabilidad, contribuyendo al control y el tratamiento oportuno de la enfermedad. En este estudio se presenta el proceso de purificación del Ag38kDa a partir de proteínas de secreción filtradas de cultivo (CFP) de Mtb para ser usado como inmunoreactivo con potencial aplicación en la detección de Mtb con inmunosensores piezoeléctricos. Se obtuvieron cristales funcionalizados mediante la técnica modificada de monocapas autoensambladas (SAMs), con el antígeno nativo purificado y CFP. Las superficies biofuncionalizadas fueron caracterizadas cualitativamente con microscopía de fuerza atómica (AFM) para validar las condiciones de optimización del protocolo de inmovilización con antígenos de secreción de Mtb. Estos cristales modificados pueden ser acoplados a un sistema de caracterización de un inmunosensor piezoeléctrico para la detección de Mtb mediante un inmunoensayo competitivo directo.

Palabras clave: AFM, antígeno 38kDa, biosensores, inmunoensayos, inmovilización, microbalanza de cristal de cuarzo.

ABSTRACT

The selection and procurance of the immunoreagents used in the immunoassay and biofunctionalisation transducer strategy, are a key in the piezoelectric immunosensor development for the detection of tuberculosis (TB). Many have reported the use of 38kDa protein antigen (Ag38kDa) from Mycobacterium tuberculosis (Mtb) such as good biomarker of TB disease and compliance with physical and biochemical characteristics to be immobilized by self-assembled monolayers (SAMs), in the gold electrode of piezoelectrics crystals surfaces. A piezoelectric immunosensor developed from purified native antigens of Mtb may be an alternative simple method for detection of Mtb with speed and reusable advantages, contributing to the control and early treatment of disease. In this paper, the purification process of Ag38kDa Mtb from secretory proteins filtered culture (CFP) from Mtb is presented as an immunoreactive with potential application in the detection of Mtb by piezoelectric immunosensors. Functionalized crystals were obtained by using the modified self-assembled monolayers (SAMs) technique, with purified native antigen and CFP. The functionalized surfaces were qualitatively characterized using atomic force microscopy (AFM) in order to validate the immobilization protocol optimal conditions for secretion antigens from Mtb. These modified crystals may be coupled to piezoelectric immunosensor characterization system for detecting of Mtb by a direct competition immunoassay.

Keywords: AFM, antigen 38kDa, biosensors, immunoassay, immobilization, quartz crystal microbalance.

INTRODUCCIÓN

En vista de las limitaciones de los métodos convencionales, en los últimos años se han desarrollado métodos alternativos de detección, con el objetivo de mejorar el diagnóstico como es el caso de los inmunoensayos. Los principales retos a los que se enfrentan este tipo de pruebas, están relacionados con la sensibilidad y la especificidad que pueden ofrecer, en parte, porque muchos de ellos son ensayos desarrollados a partir de reactivos de naturaleza recombinante o de baja especificidad por el biomarcador que se quiere detectar. Esto ha motivado el desarrollo de técnicas de purificación y el aislamiento de antígenos del patógeno que son buenos candidatos de biomarcadores para la detección de la enfermedad o monitoreo de la efectividad del tratamiento, entre los cuales se encuentran los antígenos de secreción de Mtb (Bala et al., 2002; Devi et al., 2002). Uno de los antígenos de secreción más estudiados, es el antígeno 38kDa (más conocido como b (pab), antígeno 5, antígeno 78, antígeno 38, lipoglicoproteína 38kDa Pst1), que es una lipoglicoproteína de unión a fosfato de liberación lenta al ambiente extracelular, que se ha demostrado es el constituyente mayoritario del sobrenadante de cultivo de esta micobacteria en el medio sintético Sauton's y uno de los antígenos inmunodominantes (Attallah et al., 2003; Steingart et al., 2009).

En respuesta a estos desafíos, han surgido nuevas tecnologías con uso potencial en diagnóstico como los biosensores. Un biosensor es un dispositivo que utiliza mediadores bioquímicos (bioreceptores) inmovilizados sobre la superficie de un transductor, para detectar la presencia de compuestos químicos o analitos de interés por medio de señales eléctricas, térmicas u ópticas (Montoya et al., 2008). Un biosensor que emplea un anticuerpo o antígeno como elemento de reconocimiento biológico, inmovilizado sobre la superficie del electrodo de oro de un cristal piezoeléctrico (biofuncionalización), es conocido como inmunosensor piezoeléctrico, en el cual el cristal piezoeléctrico esta configurado como un microbalanza de cuarzo (QCM, del inglés Quartz Crystal Microbalance). Estos transductores biofuncionalizados se pueden acoplar a un sistema de caracterización de señales, donde pequeños cambios en la masa detectada en la superficie del cristal, ocasionadas por las interacciones antígeno-anticuerpo, darán lugar a cambios en la frecuencia de resonancia o fase de la señal con la que se interroga el transductor, estableciendo una relación inequívoca entre las variaciones de la concentración del analito y los cambios de la señal (Bizet et al., 1995; Fengjiao y Zhang, 2002; Montoya et al., 2008).

Siguiendo este modelo, se pueden emplear antígenos de secreción de los microorganismos purificados en el laboratorio, para la biofuncionalización del electrodo de oro del cristal piezoeléctrico, el cual, acoplado a un sistema de caracterización de QCM, podrían ser empleados para la detección de Mtb. Un dispositivo de estas características, que combine las ventajas de un inmunoensayo con la fácil implementación de los biosensores, podría constituirse como un método alternativo para el diagnóstico de TB, facilitando la detección temprana y favoreciendo el tratamiento eficaz. (Montoya et al., 2008; Jaramillo et al., 2013)

En este trabajo se presenta el proceso de purificación del antígeno 38kDa nativo (Ag38kDa) a partir de proteínas de secreción filtradas de cultivo (CFP) de Mtb. Tanto las proteínas de secreción filtradas de cultivo, como el antígeno purificado, se emplearon para la inmovilización de cristales piezoeléctricos. Las superficies biofuncionalizadas se caracterizaron cualitativamente empleando microscopía de fuerza atómica (AFM), con el fin de encontrar características morfológicas deseables que permitieran establecer su uso potencial para la detección de un antígeno nativo de Mtb mediante un inmunosensor piezoeléctrico.

MATERIALES Y MÉTODOS

Obtención de proteínas de secreción filtradas de cultivo de Mtb

La purificación del Ag38kDa nativo de Mtb se llevó a cabo a partir de CFP de Mtb. Para la obtención de filtrados de cultivo se seleccionaron dos cepas de Mtb, un aislamiento del sublinaje LAM09 o aislamiento autóctono y la cepa de referencia de Mtb H37Rv, suministradas por la Corporación para Investigaciones Biológicas (CIB), con el objetivo de comparar entre ellas el rendimiento en la obtención de proteínas de secreción y la purificación del antígeno nativo de interés, bajo las mismas condiciones de cultivo. Mtb fue cultivado en medio líquido Sauton's modificado, como se describe en Parish y Stoker, 2001 y Cardoso et al., (2004) e incubada a 37 °C durante tres a cuatro semanas en agitación suave. Los bacilos se recuperaron por centrifugación a 3000 rpm durante 15 minutos a 4 °C para hacer los cultivos sucesivos. El sobrenadante (enriquecido con proteínas de secreción) se filtró en su totalidad usando membranas estériles de 0,45 µm (GVS Ref.: A004Fl01) y 0,20 µm (GVS Ref.: A002Dl01). Las proteínas presentes en el filtrado de cultivo se precipitaron con (NH₄)₂SO₄ (Merck, Ref. 1012175000) en gradiente de 50% y 80% de saturación. El material recuperado se dializó con solución tamponada de fosfatos (PBS 50 mM/25 mM) adicionando inhibidores de proteasas y se liofilizó para su almacenamiento y posterior uso. Para determinar la cantidad de proteínas totales recuperadas, el material liofilizado se resuspendió en agua ultrapura tipo 1 (MilliQ®) y se realizó cuantificación de proteínas utilizando el kit comercial (Qubit® Protein Assay Kits Invitrogen, Ref. Q32866), posteriormente se identificó el perfil de proteínas y su inmunoreactividad mediante SDS-PAGE y Western Blot (WB) como se describe en Coligan et al., (1995), determinando el rendimiento por cada lote y cepa en la cantidad de la proteína de 38kDa de interés. Todos los lotes de proteínas obtenidos por cepa se unificaron en lotes únicos, mediante una mezcla homogénea y conservando cadena de frío. Nuevamente lotes únicos se liofilizaron (Liofilizador Centricol Syclon 18) tras la adición de inhibidor de proteasas y se almacenaron a 4#ºC.

Purificación del antígeno 38kDa nativo de secreción a partir de un aislamiento autóctono de Mtb

El Ag38kDa se purificó a partir de CFP empleando cromatografía de afinidad (Aminolink® Immobilization Kit Pierce, Ref. 20381). Las columnas cromatográficas se prepararon siguiendo las recomendaciones del fabricante y se empleó para el acople con las perlas de agarosa una concentración de 0,89 mg/mL del anticuerpo monoclonal Myc31 (AcMoMyc31). Este anticuerpo monoclonal se obtuvo mediante la tecnología de hibridomas como se describe a continuación y su afinidad por el antígeno nativo en las muestras de CFP se evaluó un inmunoensayo de ELISA indirecto empleando 100 μL de CFP para tapizar los microplatos (Corning Ref: 3590).

Se inmunizaron cinco hembras BALB/c mediante inyección intraperitoneal con el antígeno proteico rAgMyc38kDa (MyBioSource MBS538250), de origen recombinante de Mtb. La fusión celular se llevó a cabo siguiendo el método propuesto por Nowinski et al., (1979). Las poblaciones celulares de linfocitos procedentes de ratones que respondieron al proceso de inmunización y de mieloma, se mezclaron en una proporción 5:1 (linfocito:mieloma) y se fusionaron mediante la adición de polietilenglicol (PEG) 1500. Se les añadió medio de selección suplementado con hipoxantina, aminopterina y timidina (HAT) y luego se sustituyó por el mismo medio sin aminopterina (HT). Entre ocho y diez días después de la fusión celular, los sobrenadantes de cultivo se analizaron mediante ELISA para detectar la presencia de anticuerpos capaces de reconocer al antígeno proteico recombinante de Mtb. Los hibridomas seleccionados se clonaron siguiendo el procedimiento de dilución límite utilizando medio HT. Los anticuerpos se purificaron directamente a partir de los sobrenadantes de cultivo mediante precipitación con (NH₄)₂SO₄ al 50% de saturación. Finalmente, los anticuerpos precipitados se almacenaron a 4 °C y se evaluaron finalmente mediante ELISA empleando CFP de Mtb, para seleccionar el anticuerpo con mayor afinidad por el Ag38kDa nativo presente en los antígenos totales. El anticuerpo monoclonal que presentó mayor afinidad por el antígeno recombinante comercial y el antígeno nativo fue el anticuerpo Myc31, su denominación específica fue dada de acuerdo al animal de procedencia, al número de hibridomas clonados y al nombre del antígeno con el cual se inmunizaron las ratonas (rAgMyc38kDa).

Biofuncionalización de cristales piezoeléctricos con antígenos de secreción de Mtb

Para la inmovilización de antígenos totales de secreción de Mtb y del Ag38kDa nativo purificado, se tomó como referencia el protocolo descrito por March et al., (2009). En este protocolo se empleó para la inmovilización 10 mg/ mL del conjugado del hapteno TCP (3, 5, 6-tricloro-2piridinol) nombrado como (BSA-TS1) (Manclús y Montoya, 1996), siendo en este caso la proteína BSA la molécula que se inmoviliza en el transductor. Teniendo en cuenta que las características físicas y bioquímicas entre la BSA (Bovin Serum Albumin) y el Ag38kDa de Mtb son diferentes y que de éstas depende una adecuada inmovilización sobre sustratos de oro empleando SAM, se realizaron dos modificaciones al protocolo guía para la optimización del proceso con proteínas de secreción de Mtb, a saber: 1) el uso de dos tipos de alcanotioles, uno de 16 carbonos, el ácido 16-mercaptohexadecanoico (MHA) y otro de ocho carbonos, el ácido α-lipoico o ácido tióctico (AT), para la formación de la primera monocapa en contacto con el oro y 2) el uso de dos concentraciones de proteína diferente para la inmovilización, 2,97 mg/mL que corresponde a la concentración de proteínas de secreción totales de CFP para la cepa LAM09 autóctona y una muestra concentrada de estas proteínas por ultrafiltración (filtros Amicon® Ultra 0.5) a 10 mg/mL, como lo indica el protocolo original.

El proceso de inmovilización de proteínas sobre sustratos de oro empleando SAM se llevó a cabo en varias etapas. La superficie de oro del cristal de cuarzo se lavó con solución piraña (H₂SO₄ concentrado y H₂O₂ al 30%, 3:1 v:v) durante cinco minutos a temperatura ambiente. El cristal se puso en agitación con una disolución 10 mM del alcanotiol seleccionado disuelto en etanol durante toda la noche. La activación del grupo carboxílico del alcanotiol en un reactivo intermedio (éster de N-hidroxi-succinimida), se llevó a cabo utilizando una mezcla de N-hidroxi-succinimida (NHS) 50 mM y clorhidrato de carbodiimida (EDC) 200 mM en agitación durante cuatro horas. La inmovilización de las proteínas se hizo adicionando 60 μL de la muestra sobre la superficie del electrodo, durante cuatro horas a temperatura ambiente. Finalmente, se añadió etanolamina al 10% en tampón borato durante una hora, con el fin de bloquear los sitios activos restantes en la superficie para evitar reacciones inespecíficas (March et al., 2009).

Caracterización topográfica de cristales piezoeléctricos mediante AFM

La estandarización de los parámetros de configuración requeridos, para la caracterización topográfica de superficies de oro biofuncionalizadas con SAM de proteínas mediante AFM, se llevó a cabo realizando estudios de caracterización previa empleando cristales de cuarzo biofuncionalizados con: Albumina de suero bovino (BSA) (Jaramillo et al., 2013), el conjugado del hapteno TCP, BSA-TS1 (Manclús y Montoya, 1996) y CFP de Mtb. En la Tabla 1 se resumen los mejores parámetros de configuración encontrados para un microscopio de fuerza atómica y las características que debe tener la sonda, para la exploración de superficies de oro biofuncionalizadas con antígenos proteicos mediante SAMs.

RESULTADOS
Purificación del antígeno de secreción 38kDa

En cada una de estas muestras se identificó el perfil de proteínas mediante electroforesis SDS-PAGE al 12% y posterior coloración de plata metenamina (información no mostrada), comparando el perfil de pesos moleculares en cada una de las muestras por cepa. En los geles se observó un patrón de proteínas de peso molecular en un rango entre 19kDa y 200kDa, observándose que, para la muestra unificada correspondiente a los filtrados de cultivo de la cepa de Mtb H37Rv, se obtuvo en general una mayor cantidad de antígeno total enriquecido en proteínas de alto peso molecular, con respecto a al aislamiento LAM09. Estos resultados son consistentes con el perfil reportado por Espitia et al., (1989), en el análisis de proteínas de secreción de CFP de Mtb H37Rv, las cuales se encontraron en la región de peso molecular entre 19kDa y 120kDa. Para los dos lotes únicos de antígenos de CFP valorados, se observó una banda de peso molecular correspondiente con el antígeno nativo de secreción de interés en 38kDa.

Los geles de poliacrilamida se transfirieron a membranas de nitrocelulosa para la valoración de la inmunoreactividad del antígeno mediante WB, empleando el anticuerpo monoclonal Myc31 como anticuerpo primario. En la Figura 1., se puede observar una banda de reacción en 38kDa, sugiriendo que esta proteína es reconocida por el anticuerpo monoclonal. Además se observó, que el Ag38kDa proveniente de la cepa de Mtb H37Rv, fue reconocido por el anticuerpo monoclonal Myc31 hasta en una dilución de 1:100, indicando que esta cepa, no solo produce una mayor cantidad de proteínas de secreción, en el gel, sino una mayor cantidad del antígeno de secreción de 38kDa que el producido por el aislamiento LAM09, bajo las mismas condiciones de cultivo. En el gel se observan las diferentes bandas de reacción positiva con el anticuerpo, tanto en el antígeno concentrado como a diferentes diluciones.

Cromatografía de afinidad

Para la purificación del antígeno nativo de secreción de Mtb a partir de las muestras únicas de CFP de ambas cepas, se seleccionó el anticuerpo monoclonal Myc31 para el acople con las perlas de agarosa de la columna cromatográfica. Para la selección se empleó inmunoensayo tipo ELISA indirecto (no se muestran los resultados), donde se probaron los 12 anticuerpos monoclonales obtenidos, frente a las muestras únicas de CFP de cada cepa. El ensayo reveló que el AcMoMyc31 presentó mayor afinidad por el Ag38kDa presente en estas muestras de antígenos crudos de secreción.

Con la eficiencia de acoplamiento alcanzada durante el proceso de acople del anticuerpo a la columna cromatográfica del 48% y siguiendo el protocolo del fabricante para la purificación del antígeno empleando las columnas, se obtuvieron dos muestras de 500 μL del antígeno de secreción de Mtb enriquecida en Ag38kDa, con 54,62 µg/mL de proteína para el aislamiento LAM09 y 100,73 µg/mL para la cepa de Mtb H37Rv. Teniendo en cuenta la concentración de las muestras purificadas y la cantidad de proteínas CFP empleadas como materia prima -17,82 mg para el aislamiento LAM09 y 22,84 mg para la cepa de referencia H37Rv-, se obtuvo un rendimiento del proceso de cromatografía para la purificación del Ag38kDa nativo de 0,3% y 0,4% en la muestra proveniente de LAM09 y H37Rv respecto a las muestras iniciales del aislamiento (tabla 2). El nivel de pureza de las muestras se determinó mediante SDS-PAGE (Fig. 2A) y la reactividad de la proteína se valoró con WB (Fig. 2B). Como se observa en el gel, se obtuvo una mayor cantidad de Ag38kDa para la cepa de referencia H37Rv y en ambas muestras el antígeno fue reactivo frente al anticuerpo monoclonal Myc31.

Funcionalización con CFP de Mtb del aislamiento autóctono LAM09

Para todos los casos, se obtuvieron superficies con topografías superficiales similares, parecidas a pequeños islotes de puntos brillantes de forma piramidal distribuidos al azar, homogéneas en forma y tamaño y con orientación definida (Fig. 4A), lo que indica que para todas las combinaciones empleadas durante la inmovilización, estas características superficiales se satisfacen. Estos islotes observados, son comunes en la caracterización morfológica de superficies biofuncionalizadas mediante SAMs, sin embargo las formas visualizadas pueden variar de acuerdo a la molécula inmovilizada. Por ejemplo, en el caso de la funcionalización de sustratos con hemoglobina, empleando SAMs mixtas, estos puntos son circulares según Wang et al., (2010), pero cuando se emplean antígenos de patógenos, componentes de pared celular, partes de bacterias y virus o anticuerpos para la inmovilización, estos puntos pueden ser piramidales, como lo indican los resultados presentados por Owen et al., (2007) y como se observaron en este estudio donde se emplearon antígenos de Mtb para la funcionalización de electrodos de oro.

Por otro lado, se encontró una mayor rigidez de la capa funcionalizada cuando se inmovilizó con el alcanotiol MHA a una concentración de 2,97 mg/mL de CFP proveniente del aislamiento LAM09 (Fig. 4), lo que indica una mayor densidad de moléculas fuertemente adheridas a la superficie del electrodo. Los parámetros analizados en este caso, son la fase (no se muestra) y la amplitud de la señal (Fig. 4B) proporcionada por el cantiléver durante la exploración de la superficie. A mayor desfase y menor amplitud, respecto a los obtenidos en las imágenes del electrodo de oro desnudo (Fig. 3B), existe mayor densidad de moléculas inmovilizadas sobre la superficie.

Estos resultados son consistentes con lo reportado en el trabajo de Baldrich et al., (2008), en el que se analizan los niveles de adsorción de anticuerpos anti-HRP sobre superficies de oro funcionalizadas mediante SAMs, a partir de mercaptotioles de diferente longitud. En su estudio, los autores encontraron que se obtiene un mayor nivel de adsorción de las biomoléculas cuando se inmovilizan sobre las SAMs formadas a partir de alcanotioles con cadenas carbonadas más largas.

Funcionalización con el antígeno de secreción purificado

Del proceso de purificación del Ag38kDa empleando cromatografía de afinidad, se obtuvo una muestra de proteína de secreción enriquecida en Ag38kDa nativo a una concentración de 54,62 µg/mL, proveniente del aislamiento autóctono LAM09. De este modo, para alcanzar la cantidad de proteína encontrada en el ensayo de estandarización del protocolo de inmovilización (2,97 mg/mL), la muestra purificada se concentró por ultrafiltración, obteniéndose una muestra de 60 μL a una concentración máxima de 819 µg/mL aproximadamente, la cual se empleó para la inmovilización de un cristal piezoeléctrico. Las imágenes de la caracterización topográfica con AFM se muestran en la (Fig. 5).

Contrario a lo obtenido en la caracterización de cristales funcionalizados con CFP, en este caso no se observaron islotes de puntos brillantes característicos, ni los cambios en la amplitud y fase esperados correspondientes con una biocapa rígida. Por tanto, se hizo necesario comparar estos resultados con las imágenes del electrodo de oro lavado con solución piraña (no se muestra imagen), que corresponde a la etapa inicial del proceso de inmovilización. Se encontró que la superficie de oro funcionalizada con la proteína de secreción enriquecida en el Ag38kDa, es similar a la imagen de la superficie del electrodo de oro lavado, en todos los parámetros obtenidos con el AFM, esto es, topografía, amplitud y fase, lo que podría indicar que para el área escaneada, no se encontraron moléculas inmovilizadas.

Para validar la inmovilización en este caso, se deben realizar estudios cuantitativos como la espectroscopia de fuerza con AFM empleando una sonda funcionalizada con un anticuerpo específico, como el desarrollado por Luppa et al., (2001) , en el cual se reportan las gráficas de fuerza vs distancia en diferentes puntos de una superficie de oro funcionalizadas mediante SAMs con BSA o mediante un sistema de caracterización de señales de un biosensor piezoeléctrico, para relacionar los cambios de frecuencia del sensor ocasionados por los cambios de masa en su superficie debidos a interacciones antígeno anticuerpo, tal y como se reporta en March et al., (2009).

DISCUSIÓN

Un paso crucial en el desarrollo de un inmunosensor piezoeléctrico comprende, la selección y obtención de los inmunoreactivos empleados en el ensayo de detección y la funcionalización del transductor piezoeléctrico mediante la inmovilización de uno de estos inmunoreactivos sobre la superficie del transductor.

En este estudio se seleccionó el Ag38kDa para funcionalizar el transductor de un inmunosensor piezoeléctrico con potencial aplicación en la detección de un antígeno nativo de Mtb. Tal y como lo reportan Walzl et al., (2008) y McNerney et al., (2012), el antígeno 38kDa es usado frecuentemente en el desarrollo de métodos de diagnóstico serológicos, ya que, el nivel de anticuerpos anti38kDa es mayor en los pacientes con tuberculosis activa y altas concentraciones de estos anticuerpos están asociadas con la enfermedad avanzada. Adicionalmente, cuando se aplica tratamiento con quimioterapia, estos niveles suelen aumentar, indicando la inmunodominancia del antígeno en las diferentes etapas del ciclo de vida del patógeno, el progreso de la enfermedad e incluso el avance del tratamiento. Sin embargo estudios desarrollados por Gennaro (2000) y Walzl et al., (2008), indican que la detección serológica de anticuerpos no es un método preciso para la detección de TB, debido a las variaciones individuales en la respuesta inmune frente a diferentes antígenos de la micobacteria, así como a la respuesta heterogénea frente al mismo antígeno entre diferentes poblaciones endémicas. Bajo esta premisa, los inmunoensayos para el diagnóstico de TB basados en la detección de antígenos del patógeno, puede ofrecer un diagnóstico certero, ya que no son afectados por las variaciones propias de la respuesta inmune.

A diferencia de los trabajos desarrollados por Fengjiao et al., (2002) y Nagel et al., (2008), en los cuales se inmunoensayos directos inmovilizando anticuerpos, en el desarrollo de inmunosensores para la detección de antígenos o componentes de la pared de Mtb, los transductores funcionalizados en este estudio, podrían servir como plataforma para la detección de antígenos de Mtb bajo un formato de inmunoensayo directo competitivo. Esto representa una ventaja substancial en el aumento de la reusabilidad de estos dispositivos ya que, la inmovilización de anticuerpos requiere generalmente de un ligando adicional como la proteína A o G para lograr la unión covalente y orientación de los anticuerpos sobre la superficie del transductor, aumentando los costos del proceso de inmovilización convencional, con una pérdida acelerada de la capacidad reactiva de la interfaz biológica. Esto debido en parte, a la degradación del anticuerpo o pérdida del complejo anticuerpo – proteína A inmovilizada, por el uso de soluciones de lavado en los procesos de regeneración de la superficie. Contrario a cuando se emplean antígenos proteicos para la funcionalización como en la presente investigación, ya que estos pueden ser más resistentes a la degradación durante los lavados en la regeneración de la superficie que los anticuerpos y además no requieren el uso de un ligando adicional que podría incrementar los costos de la inmovilización, tal como la proteína A o G.

Actualmente otro inmunosensor piezoeléctrico para la detección de un biomarcador de TB está siendo desarrollado en Colombia por Jaramillo et al., (2013) empleando un formato directo competitivo. En esta propuesta se inmovilizó antígeno 38kDa recombinante de Mtb sobre la superficie del electrodo de oro de un transductor piezoeléctrico empleando SAMs. Los avances obtenidos en este trabajo dieron a conocer la necesidad de diseñar la interfaz biológica de estos dispositivos a partir de antígenos nativos purificados de la micobacteria, con el objetivo de aumentar la sensibilidad de la prueba de detección y proporcionar una fuente importante de inmunoreactivos, para el desarrollo de inmunoensayos estándar requeridos en la validación de estos dispositivos. Adicionalmente, es necesaria la optimización del protocolo de inmovilización propuesto por March et al., (2009) implementado en este trabajo, para la funcionalización del transductor piezoeléctrico específicamente con el antígeno 38kDa recombinante.

El proceso de obtención de proteínas de secreción filtradas de cultivo desarrollado, permitió la obtención de una cantidad importante de CFP debido a procesos de unificación y liofilización sucesivos que no habían sido reportados en otros trabajos. Con respecto al trabajo de Young et al., (1986), en el que se usó la técnica de cromatografía de afinidad para la purificación del Ag38kDa de CFP de Mtb, obteniendo una muestra purificada final de 8,80 µg/mL con un rendimiento del 0,7%, en nuestro caso se logró obtener una mayor cantidad y concentración del material eluido, antígeno proteico enriquecido en 38kDa, entre 54 µg/mL y 100 µg/mL, lo que representa un rendimiento entre 0,3% y 0,4%, con aproximadamente la misma cantidad de anticuerpo acoplado, indicando que, tanto el kit empleado como el protocolo de purificación desarrollado aumentaron la captura del analito. Este aumento en la cantidad y concentración de material eluido se debe en parte a que la muestra de CFP empleada como materia prima estaba muy concentrada y se consiguió un importante volumen de muestra inicial, además en el protocolo de purificación se incluyeron varios pasos de elución de la proteína con la posterior unificación y liofilización de este material. Sin embargo, el rendimiento obtenido del proceso de purificación en este estudio ha sido el más bajo reportado respecto a los trabajos de Young et al., (1986), Devi et al., (2002) con un rendimiento del 3% y Espitia et al., (1989) con un rendimiento del 1%. Este bajo rendimiento se debe a que no se realizaron procesos de prepurificación de la muestra de CFP para excluir proteínas de alto y bajo peso molecular, por lo cual la muestra estaba muy cruda y concentrada al inicio de la cromatografía, afectando negativamente el cálculo de rendimiento.

Con respecto a la optimización del protocolo de inmovilización se propusieron dos variantes importantes al trabajo de March et al., (2009), con el fin de ajustar las condiciones para la funcionalización de transductores piezoeléctricos empleando antígenos de secreción CFP. La optimización del proceso fue evaluada mediante caracterización topográfica con AFM, donde se encontró cualitativamente, que podía ser empleada una menor cantidad de proteína para la inmovilización, 3,4 veces menos, cuando se empleó un alcanotiol de cadena carbonada larga, para la formación de la primera monocapa en contacto con el oro. Esto representa un ahorro importante de antígeno para ser inmovilizado empleando SAMs en la funcionalización de cristales de 10MHz, además la caracterización topográfica de estas superficies aquí realizada, es un paso de validación importante que no fue tenido en cuenta en el trabajo de March et al., (2009) y otros autores (Ocampo et al., 2011), al momento de fijar la cantidad de proteína a inmovilizar, considerando importante únicamente, encontrar una intensidad de señal considerable con el inmunosensor, a expensas de un mayor gasto del inmunoreactivo en el proceso de inmovilización.

En este estudio no fue posible demostrar, mediante caracterización topográfica, características superficiales deseables en los transductores piezoeléctricos funcionalizados con las muestras purificadas de antígenos enriquecidas en Ag38kDa, siendo necesario un análisis cuantitativo para validar las condiciones de inmovilización empleadas, tal y como lo realizaron en su trabajo March et al., (2009), en el que se realizaron pruebas de señal máxima con el inmunosensor piezoeléctrico empleando un anticuerpo específico contra el conjugado inmovilizado, con lo cual pudieron verificar si la cantidad de conjugado inmovilizado era adecuada o no en términos de la intensidad de señal obtenida con la QCM. Implementado estas pruebas se podría concluir sobre la posibilidad de emplear las concentraciones de muestras enriquecidas en el Ag38kDa obtenidas en esta investigación, para la funcionalización de cristales piezoeléctricos mediante el protocolo de SAMs optimizado, significando una disminución considerable de la cantidad de antígeno proteico requerido para la inmovilización respecto al protocolo original.

Los resultados de esta investigación constituyen un aporte importante para el desarrollo de inmunosensores piezoeléctricos para la detección de patógenos infecciosos.

Se desarrolló un protocolo para la purificación de un antígeno nativo de secreción de Mtb, el cual, inmovilizado sobre la superficie del electrodo de oro de un transductor piezoeléctrico empleando SAM, podría ser usado para la detección de antígenos nativos de Mtb por medio de un inmunosensor piezoeléctrico. Con los métodos desarrollados en este estudio se obtuvieron dos muestras de antígenos de secreción enriquecida en Ag38kDa y se identificaron las variables críticas para aumentar el rendimiento de la cromatografía de afinidad, como una mayor concentración del anticuerpo específico acoplado con las perlas del gel y la prepurificación de las muestras de CFP para retirar proteínas de alto peso molecular.

Adicionalmente, con los ajustes realizados al protocolo de inmovilización empleando muestras de antígenos de secreción totales CFP y mediante estudios topográficos cualitativos con AFM, se logró demostrar que, con una tercera parte de la concentración requerida en el protocolo de referencia y el uso de un alcanotiol de cadena carbonada larga, se podían obtener cristales piezoeléctricos biofuncionalizados con monocapas de antígenos de secreción de Mtb, que presentaron características topográficas deseables como forma, homogeneidad, orientación y densidad, para ser empleadas como interfaz biológica en un inmunoensayo de detección con un inmunosensor piezoeléctrico.

Otro hallazgo importante está relacionado con el hecho de que las proteínas de secreción filtradas de cultivo CFP, pueden ser empleadas por si mismas para la funcionalización de transductores piezoeléctricos, vislumbrando la posibilidad de su uso en la interfaz sólida de estos transductores en el desarrollo de un inmunosensor para el diagnóstico de TB, cuando la sensibilidad del ensayo para la detección de antígenos en forma competitiva se vea comprometida.

AGRADECIMIENTOS

Los autores agradecen a la Escuela de Ingeniería de Antioquia EIA, Universidad CES, Colciencias proyecto 133352128657, Tecnoparque el Sena nodo Medellín y la Corporación para Investigaciones Biológicas CIB – Medellín–Colombia por apoyar esta investigación y al Instituto Interuniversitario de Investigación en Bioingeniería y Tecnología Orientada al ser Humano (I3BH), Universidad Politécnica de Valencia, Valencia–España, por permitir la estancia científica y el desarrollo de los inmunoensayos ELISA.

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