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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EVALUACIÓN COMPORTAMENTAL DEL TRASPLANTE DE hMSC-GFP+ EN UN MODELO EXPERIMENTAL DE HEMIPARKINSON EN RATA WISTAR]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Behavioral Evaluation of hMSC-GFP+ Transplantation in an Hemiparkinson Experimental Model in Wistar Rat]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[ABSTRACT The effect of hMSCs-GFP+ transplantation was evaluated in an experimental model of Parkinson's disease (PD) in 27 Wistar rats, or in three experimental groups: control (CON n=7), injured (LES n = 10) and transplanted (LES+T n = 10). In order to evaluate the influence of the transplantation on the motor behavior, one month after the injury, rotation behavior induced by apomorphine, neurological test, transversal bar and SNpc cells positive to TH were developed. Using the Anova test, there was a decrease in the number of turns in transplanted animals (p=0,005) as well as in the neurological test (p=0,0004) and in the transverse bar that lead to this group in an intermediate position regarding LES and CON groups. There is a possible recovery of the transplantation-mediated nigroestriatal pathway of hMSC-GFP +.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="Verdana" size="2">      <p>DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.15446/abc.v22n2.59703" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/abc.v22n2.59703</a></p>      <p align="center"><font size="4"><b>EVALUACI&Oacute;N COMPORTAMENTAL DEL TRASPLANTE DE hMSC-GFP+ EN UN MODELO EXPERIMENTAL DE HEMIPARKINSON EN RATA WISTAR</b></font></p>      <P align="center"><font size="3"><b>Behavioral Evaluation of hMSC-GFP+ Transplantation in an Hemiparkinson Experimental Model in Wistar Rat</b></font></p>      <p>J&eacute;ssica Paola ALC&Aacute;ZAR ARZUZA<sup>1</sup>, Andrea Julieth BAYONA ARCINIEGAS<sup>1</sup>, Lina Mar&iacute;a DE LOS REYES<sup>1</sup>, Liliana Francis TURNER<sup>1</sup>.</p>      <p><sup>1</sup> Grupo Modelos Experimentales para las Ciencias Zoohumanas (GME-CZH), Departamento de Biolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Universidad del Tolima, Bloque 12. Ibagu&eacute;, Colombia.</p>      <p><b><i>For correspondence. </i></b><a href="mailto:jpalcazara@ut.edu.co">jpalcazara@ut.edu.co</a></p>      <P align="center"><b>Received: </b>22<sup>nd</sup> August 2016, <b>Returned for revision: </b>20<sup>th</sup> February 2017, <b>Accepted: </b>23<sup>th</sup> March 2017.</p>      <P align="center"><b>Associate Editor: </b>Argel Aguilar-Valles.</p>      <p><b>Citation/Citar este art&iacute;culo como: </b>Alc&aacute;zar Arzuza JP, Bayona Arciniegas AJ, de Los Reyes LM, Turner LF. Evaluaci&oacute;n comportamental del trasplante de hMSC-GFP+ en un modelo experimental de hemiparkinson en rata Wistar. Acta biol. Colomb. 2017;22(2):127-136. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.15446/abc.v22n2.59703" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/abc.v22n2.59703</a></p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESUMEN</b></p>      <p>Se evalu&oacute; el efecto del trasplante de hMSC-GFP+ en un modelo experimental de Enfermedad de Parkinson (EP) en 27 ratas Wistar con tres grupos experimentales: control: animales sin cirug&iacute;a, (CON n=7), lesionado: animales lesionados intracerebralmente con 6-OHDA a nivel de SNpc (LES n = 10) y trasplantado: animales LES con trasplante de hMSC-GFP+ intraestriatalmente (LES-T n = 10). Con el fin de evaluar la influencia del trasplante en el comportamiento motor, un mes despu&eacute;s de la lesi&oacute;n, se desarroll&oacute; una bater&iacute;a comportamental compuesta por Test Neurol&oacute;gico (compuesto tambi&eacute;n por Pole Test y Test de Barra transversal, adem&aacute;s, de inmunofluorescencia para c&eacute;lulas de SNpc con TH). Utilizando el test de Anova, se demostr&oacute; una disminuci&oacute;n en el n&uacute;mero de giros en animales trasplantados (<i>p</i>=0,005), as&iacute; como en el test neurol&oacute;gico (<i>p</i>=0,0004) y en el Test de barra transversal, que colocan a este grupo en una posici&oacute;n intermedia con respecto a LES y CON. Existe una posible recuperaci&oacute;n de la v&iacute;a nigroestriatal mediada por el trasplante de hMSC-GFP+.</p>      <p><b>Palabras clave: </b>terapia celular, c&eacute;lulas madre mesenquimales, deterioro motor, enfermedad de Parkinson, rata Wistar.</p>  <hr>      <p><b>ABSTRACT</b></p>      <p>The effect of hMSCs-GFP+ transplantation was evaluated in an experimental model of Parkinson's disease (PD) in 27 Wistar rats, or in three experimental groups: control (CON n=7), injured (LES n = 10) and transplanted (LES+T n = 10). In order to evaluate the influence of the transplantation on the motor behavior, one month after the injury, rotation behavior induced by apomorphine, neurological test, transversal bar and SNpc cells positive to TH were developed. Using the Anova test, there was a decrease in the number of turns in transplanted animals (<i>p</i>=0,005) as well as in the neurological test (<i>p</i>=0,0004) and in the transverse bar that lead to this group in an intermediate position regarding LES and CON groups. There is a possible recovery of the transplantation-mediated nigroestriatal pathway of hMSC-GFP +.</p>      <p><b>Keywords: </b>cell Therapy, mesenchymal stem cells, motor impairment, Parkinson disease, Wistar rat.</p>  <hr>      <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>      <p>La Enfermedad de Parkinson (EP) es un desorden neurodegenerativo que afecta alrededor de seis millones de personas de edad avanzada en el mundo, por lo que se espera que la incidencia aumente a medida que las causas de mortalidad se reducen (Maranis <i>et al., </i>2011; Crabtree y Zhang, 2012). La EP se caracteriza por manifestaciones motoras como temblor, rigidez, bradicinesia, trastornos de la marcha y del equilibrio (Poletti <i>et al., </i>2011) y m&uacute;ltiples s&iacute;ntomas no motores como son trastornos cognitivos, del estado de &aacute;nimo, gastrointestinales, auton&oacute;micos, del sue&ntilde;o, etc. (Wang <i>et al., </i>2002; Da Cunha <i>et al., </i>2006; Ardayfio <i>et al., </i>2008, Aarsland <i>et al., </i>2010; Aarsland, 2015). En la actualidad, los tratamientos en uso farmacol&oacute;gico con L-DOPA as&iacute; como la estimulaci&oacute;n cerebral profunda mejoran los s&iacute;ntomas parkinsonianos pero no reparan la v&iacute;a dopamin&eacute;rgica o previenen su degeneraci&oacute;n (Tronci <i>et al., </i>2012). De esta manera, las nuevas terapias con enfoques nuevos como por ejemplo el trasplante celular, promete restaurar la funci&oacute;n dopamin&eacute;rgica (Bouchez <i>et al., </i>2008). La terapia celular implica el empleo de c&eacute;lulas y sus productos para el diagn&oacute;stico, tratamiento o paliaci&oacute;n de una enfermedad tomando en cuenta que las c&eacute;lulas se consideran un insumo o su equivalente a un f&aacute;rmaco (Benitez, 2011). En este sentido, el uso cl&iacute;nico de las C&eacute;lulas Madre Mesenquimales para la regeneraci&oacute;n de tejido, modulaci&oacute;n inmunol&oacute;gica, o trasplante ha alcanzado dimensiones de consideraci&oacute;n importante y discusi&oacute;n para cient&iacute;ficos y comunidades cl&iacute;nicas (Martin <i>et al., </i>2016). A pesar de la incidencia y prevalencia en la poblaci&oacute;n de la EP, a&uacute;n es imprecisa la forma en como se desarrolla la EP, para tal efecto, los modelos animales de EP, se han originado a partir de esta idea y se han empleado en una variedad de manipulaciones gen&eacute;ticas y/o de insultos t&oacute;xicos ex&oacute;genos o end&oacute;genos para recapitular la sintomatolog&iacute;a y/o neuropatolog&iacute;a de EP (Da Cunha <i>et al., </i>2006; Meredith y Kang, 2006). Uno de los modelos m&aacute;s utilizados en los estudios (tanto b&aacute;sicos como aplicados de la EP)es el de lesi&oacute;n de la sustancia negra (SN) utilizando, la 6-hidroxidopamina (6-OHDA) espec&iacute;fica para neuronas dopamin&eacute;rgicas que al ser inyectada estereot&aacute;xicamante en la Sustancia nigra <i>pars compacta </i>(SNpc) es capaz de destruir selectivamente las neuronas dopamin&eacute;rgicas (Masaaki <i>et al., </i>2010; Blum <i>et al., </i>2001; Bov&eacute; <i>et al., </i>2005). La lesi&oacute;n unilateral de la SNpc provoca un d&eacute;ficit cr&oacute;nico y laterizaci&oacute;n de la conducta de los animales, los que presentar&aacute;n actividad rotatoria espont&aacute;nea, que se ve incrementada con el uso de agonista dopamin&eacute;rgicos y la indiferencia sensorimotora a los est&iacute;mulos aplicados en el hemicuerpo contralateral al hemisferio lesionado (Brederlau <i>et al., </i>2006; Deierborg <i>et al., </i>2008 Boronat-Garc&iacute;a <i>et al., </i>2016). En cuanto a la terapia celular, Luo <i>et al. </i>(2009), concluyen que las CMM trasplantadas intraestriatalmente en un modelo murino de MPTP mejora el comportamiento, no por reemplazo celular sino por reparar mecanismos o por su acci&oacute;n antiinflamatoria. Por otro lado, Glavaski-Joksimovic y Bohn (2013), mencionan que las CM derivadas de m&eacute;dula &oacute;sea trasplantadas en el estriado ejercen neuroprotecci&oacute;n en contra de la neurodegeneraci&oacute;n y mejora la funci&oacute;n motora en ratas lesionadas con 6-OHDA. En un ensayo realizado en humanos, se concluy&oacute; que &eacute;stas c&eacute;lulas exhiben potencial para diferenciarse a varios precursores dopamin&eacute;rgicos y en trasplante en modelos animales, induce mejora comportamental en ratas hemiparkinsonizadas (Venkataramana <i>et al., </i>2010). Varios Test se han usado para calificar modelos en ratones como lo son: actividad locomotora, rotarod, longitud de zancada, test de la rejilla y Pole test. (Taylor <i>et al., </i>2010), o la prueba de habilidades motoras de las extremidades anteriores (Pavon-Fuentes <i>et al., </i>2004). Sin embargo, estos test, eval&uacute;an el estado motriz del animal representado en el desempe&ntilde;o de la prueba basado en el uso de extremidades anteriores o posteriores, sin ver el modelo experimental como un conjunto complejo de se&ntilde;ales comportamentales que involucran todas las extremidades y la cola como un todo. Teniendo en cuenta lo mencionado con anterioridad, este trabajo pretende evaluar si el trasplante de C&eacute;lulas madre Mesenquimales positivas a GFP (hMSC-GFP+) tiene un efecto sobre el deterioro motor en un modelo de Hemiparkinson en rata Wistar mediante el uso de una bater&iacute;a comportamental compuesta por: test sensoriomotor, pole test y barra trasversal.</p>      <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>      <p>Se utilizaron 27 ratas Wistar macho de 200 y 250 g de peso corporal, que fueron mantenidas en cajas tipo T-4 en la proporci&oacute;n de cinco animales por caja, con un ambiente convencional controlado (humedad relativa de 60 +/- 5 %, temperatura de 21&deg; +/- 1&deg; C, fotoperiodo de 12:12 luz/oscuridad), en el bioterio de Experimentaci&oacute;n de la Universidad del Tolima (BEA-UT), en la ciudad de Ibagu&eacute;. Recibieron una alimentaci&oacute;n controlada 15 g/d&iacute;a/animal (Concentrado Labdiet para Ratas y ratones) y agua <i>ad-libitum </i>acorde a los principios Rectores Internacionales aplicables a las investigaciones biom&eacute;dicas con animales del Consejo de Organizaciones Internacionales de las Ciencias (Comit&eacute; consultivo de investigaciones m&eacute;dicas de OMS, 1985), a la ley 84 de 1989 sobre protecci&oacute;n animal en Colombia y la Resoluci&oacute;n 8430 de 1993. La investigaci&oacute;n se revis&oacute; y aprob&oacute; por el Comit&eacute; de Bio&eacute;tica de la Universidad del Tolima.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Dise&ntilde;o experimental</b></p>      <p>Para comprobar el estado sensorial de los animales se realiz&oacute; un test neurol&oacute;gico a cada individuo, solo se tuvieron en cuenta, aquellos que ejecutaran la prueba con una eficiencia del 100 %. Se distribuyeron aleatoriamente 27 ratas Wistar as&iacute;: grupo LES: animales lesionados a nivel de SNpc, a trav&eacute;s de una inyecci&oacute;n esterot&aacute;xica intracerebral con 6-OHDA (n = 10), grupo LES+T: animales lesionados a nivel de SNpc a trav&eacute;s de una inyecci&oacute;n esterot&aacute;xica intracerebral de 6-OHDA y quince d&iacute;as despu&eacute;s de comprobada la eficacia de la lesi&oacute;n a trav&eacute;s de prueba de rotaci&oacute;n inducida por agonistas dopamin&eacute;rgicos, recibieron el trasplante de c&eacute;lulas madre mesenquimales humanas (n = 10) y grupo CON: animales intactos (n=7).</p>      <p><i>Inducci&oacute;n al Modelo de Hemiparkinsonismo con 6-OHDA. </i>Las ratas fueron anestesiadas utilizando un coctel de Ketamina (Gabrica&reg;, Colombia) (80 mg/kg de peso) y Xilacina (Virbac&reg;, Colombia) (5mg/kg de peso) y dispuestas en el aparato estereot&aacute;xico (Stoelting&reg; Modelo: 51500; M&eacute;xico D.F.) en posici&oacute;n c&uacute;bito prono. Los animales recibieron una inyecci&oacute;n intracerebral unilateral (hemisferio derecho) de 6-OHDA (Sigma Aldrich, U.S.) (neurotoxina dopamin&eacute;rgica) a una concentraci&oacute;n de 8jjg/3jil de soluci&oacute;n salina(0,2 mg/ ml) de &aacute;cido asc&oacute;rbico (Sigma Aldrich, U.S.), mediante una jeringuilla Hamilton (Hamilton&reg;, U.S.) de 10 jl, fueron inyectados 3 jl de la neurotoxina a una velocidad de flujo de 1 jl/min, en las coordenadas AP (antero-posterior)= 4,4 mm posterior de Bregma, ML (medio-lateral) = 1,2 mm a la derecha de la l&iacute;nea media y DV (dorso-ventral) = 7,8 mm por debajo de la duramadre. Despu&eacute;s de la inyecci&oacute;n la aguja se mantuvo <i>in situ </i>cinco minutos antes de que fuera extra&iacute;da amablemente para evitar el reflujo.</p>      <p><i>Aplicaci&oacute;n del trasplante. L&iacute;nea celular MSCh-GFP+. </i>Las c&eacute;lulas MSCh (c&eacute;lulas madre mesenchimales humanas) utilizadas para la terapia de reemplazo celular, fueron donadas por el centro Colombiano de Fertilidad y Esterilidad (CECOLFES), obtenidas de un donante sano, previa aprobaci&oacute;n por el Comit&eacute; Institucional de &Eacute;tica, fueron transfectadas con la prote&iacute;na verde fluorescente (Green Fluorescent Protein-GFP-por sus siglas en ingl&eacute;s) utilizando la tecnolog&iacute;a lentivirus. Pre y post traducci&oacute;n lentivirus, se estudi&oacute; y caracteriz&oacute; la morfolog&iacute;a de MSC inmunofenotipo, cariotipo, as&iacute; como a la diferenciaci&oacute;n a los linajes osteog&eacute;nico, adipog&eacute;nicoa, y neurog&eacute;nico). Las c&eacute;lulas se mantuvieron en DMEM bajo en glucosa (Sigma Aldrich, U.S.), 10 % suero fetal bovino (SFB) (Sigma Aldrich, U.S) y 1 %de penicilina /estreptomicina (Ambos reactivos, Thermo Fisher Scientific). Para la preparaci&oacute;n de la suspensi&oacute;n celular, las c&eacute;lulas en cultivo fueron sometidas a una digesti&oacute;n enzim&aacute;tica con tripsina 0,25 %/1mM EDTA. Esta suspensi&oacute;n, se resuspendi&oacute; en 500uL de medio DMEM sin SFB y se incubaron hasta el trasplante, se realiz&oacute; el recuento celular en una c&aacute;mara de Neubauer mediante el test de azul trip&aacute;n (Thermo Fisher Scientific, U.S.).</p>      <p><i>Trasplante intracerebral de c&eacute;lulas madre mesenquimales humanas. </i>Los animales fueron anestesiados con una soluci&oacute;n conjunta de Ketamina (Gabrica&reg;, Colombia) (80 mg/kg de peso) y Xilacina (Virbac&reg;, Colombia) (5mg/kg de peso) y colocados en el aparato estereot&aacute;xico (Stoelting&reg; Modelo: 51500; M&eacute;xico D.F.). Recibieron 2jl de la suspensi&oacute;n celular de MSCh-GFP+, con una concentraci&oacute;n de 100.000 en dos puntos esterot&aacute;xicos (50.000 cel/uL/punto esterot&aacute;xico) en la regi&oacute;n estariatal: (1): AP= 1 mm posterior a Bregma, ML= 3,0 mm a la derecha de la l&iacute;nea media y DV=4,5 mm por debajo de la duramadre; y (2): AP= 1 mm posterior a Bregma; ML= 3,0 mm a la derecha de la l&iacute;nea media y DV= 5,0 mm por debajo de la duramadre, respectivamente. El tiempo de cirug&iacute;a no sobrepaso los 45 minutos posteriores a la preparaci&oacute;n de la suspensi&oacute;n celular.</p>      <p><i>Calidad del Trasplante. </i>Se realiz&oacute; una expansi&oacute;n de la colonia MSCh-GFP+ donadas, la cual permiti&oacute; trasplantar en cada animal 2(jl en suspensi&oacute;n celular con una concentraci&oacute;n de 100 x 10<sup>6</sup> (50.000 cel/uL) en la regi&oacute;n estriatal, el proceso del trasplante siempre mantuvo el mismo numero de c&eacute;lulas, puesto que la suspenci&oacute;n celular se preparaba simultaneamente al momento de realizar el trasplante en cada animal.</p>      <p><b>Pruebas comportamentales</b></p>      <p><i>Actividad rotatoria. </i>Para evaluar la lesi&oacute;n se llev&oacute; a cabo la prueba de actividad rotatoria inducida por inyecci&oacute;n intraperitoneal de apomorfina (Sigma Aldrich, U.S.), (0,5 mg/kg de peso) (Mendez y Finn, 1975; Issy <i>et al., </i>2015), 15 d&iacute;as despu&eacute;s de producida la lesi&oacute;n y un mes despu&eacute;s del trasplante. La conducta rotatoria se evalu&oacute; registrando el n&uacute;mero de vueltas completas (360&deg;) contralateral al hemisferio lesionado durante 90 minutos luego de la inyecci&oacute;n de apomorfina.</p>      <p><i>Test neurol&oacute;gico. </i>Consiste en una serie de pruebas que permiten determinar el estado del sistema nervioso central (Bures y Buresova, 1983), se realizan con el fin de determinar la condici&oacute;n sensoriomotriz de los animales para la ejecuci&oacute;n de un experimento. Las pruebas que se realizaron fueron las siguientes: 1. Reflejo de Flexi&oacute;n: se apoya el animal en una superficie plana y cerca de los l&iacute;mites al vac&iacute;o y se retira una de las extremidades para observar la calidad de la reacci&oacute;n flexi&oacute;n y retracci&oacute;n de la extremidad y de apoyo sobre la superficie. 2. Reacci&oacute;n de apoyo o localizaci&oacute;n por contacto: se acerca al animal desde un plano horizontal a una base plana o mesa y se observa si estira sus extremidades anteriores para hacer contacto con ellas antes que con otra parte del cuerpo. 3. Reflejo de correcci&oacute;n de posici&oacute;n: Se coloca el animal boca arriba sobre una superficie plana. Se espera que el animal asuma inmediatamente la posici&oacute;n correcta (boca abajo y sobre sus cuatro patas). Esto tambi&eacute;n debe suceder, cuando es sostenido incorrectamente por regi&oacute;n lumbosacral y la parte superior del cuerpo que est&aacute; libre (cabeza, extremidades superiores). Cuando por el contrario la cabeza del animal es sujetada, las extremidades libres, deber&aacute;n adoptar la posici&oacute;n correcta. 4. Localizaci&oacute;n visual. Cuando la rata se acerca al borde de una base o mesa desde un plano vertical (de altura), debe localizar la superficie por se&ntilde;ales visuales con las vibrisas. Posteriormente, estirar sus extremidades anteriores para posicionarse en direcci&oacute;n hacia el borde de la superficie. 5. Pole Test: Se ubica el animal sobre el extremo superior de un cilindro de aluminio con 1 m de largo x 60 cm de di&aacute;metro, forrado con tela gruesa durante un minuto. Se eval&uacute;a la correcci&oacute;n de postura del animal para descender de la barra y adem&aacute;s el uso de las cuatro extremidades y la cola.</p>      <p><i>Barra trasversal. </i>La prueba de la barra transversal fue realizada en condiciones apropiadas de silencio e iluminaci&oacute;n evaluando sus resultados por observaci&oacute;n directa. Las ratas fueron colocadas en el punto medio de una barra de 60 cm de longitud en cuyos extremos se alojaron plataformas de escape redondas de 15 cm de di&aacute;metro. Los sujetos experimentales se colocaron en una barra de 2,5 cm de di&aacute;metro. La barra se situ&oacute; a una altura de 60 cm del suelo e inmediatamente debajo de la misma fue colocada una caja de pl&aacute;stico con una toalla con el prop&oacute;sito de proteger a los animales de posibles golpes si ca&iacute;an de la barra. Cada ensayo tuvo una duraci&oacute;n de 1 min y durante este tiempo se cuantificaron las siguientes variables: tiempo que demora la rata en alcanzar una de las dos plataformas de escape (latencia de escape, LE); fallo para alcanzar una de las plataformas hasta caer de la barra (latencia de ca&iacute;da, LC); n&uacute;mero de errores cometidos por la rata durante la ejecuci&oacute;n de la prueba (n&uacute;mero de errores, NE).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El experimento completo se realiz&oacute; durante dos d&iacute;as consecutivos, efectu&aacute;ndose tres ensayos cada d&iacute;a. Las variables fueron computadas como el valor medio de los seis valores obtenidos contemplando todos los ensayos.</p>      <p><b>Estudios morfol&oacute;gicos</b></p>      <p>El procesamiento histol&oacute;gico de los tejidos cerebrales fue llevado a cabo en el laboratorio de Biotecnolog&iacute;a aplicada de la Universidad del Tolima, LABIOAUT. Para el an&aacute;lisis histol&oacute;gico, los animales se sacrificaron con sobredosis de Pentbarbital S&oacute;dico (Invet, Colombia) y se perfundieron por el m&eacute;todo de gravedad utilizando 250 ml de soluci&oacute;n salina 0,9 % y 250 ml de paraformaldeh&iacute;do al 4 % por cada animal; los cerebros fueron extra&iacute;dos y post fijados en paraformaldehido (Sigma Aldrich, U.S.), al 4 %, y sometidos a un gradiente ascendente de sacarosa (Sigma Aldrich, U.S) (7 %, 25 % y 30 %) a 4 &deg;C. Los tejidos extra&iacute;dos secriopreservaron a -20&deg;C hasta la realizaci&oacute;n de los cortes. Los cerebros fueron cortados en secciones coronales de 50 jm de grosor en un vibr&aacute;tomo Leica VT 1000S (Leica Microsystems, U.S.), previo al corte, se realiz&oacute; una marca en el hemisferio izquierdo (hemisferio intacto). Se escogieron cortes al nivel de -4,89 de bregma. El estudio de inmunofluorescencia se llev&oacute; a cabo al mes de producido el trasplante de MSCh-GFP+; y se evalu&oacute; la inmunoreactividad de Tirosina hidroxilasa (TH). Para el desarrollo de la inmunofluorescencia, las secciones coronales , fueron lavados tres veces con PB 0,1M por cinco minutos) y cloruro de amonio (N<sub>4</sub>HCl) 50mM durante diez minutos, esto, para evitar la autofluorescencia del tejido, se lavaron los tejidos con PB 0,1 M tres veces por cinco minutos y se adicion&oacute; la soluci&oacute;n de bloqueo 1 durante 20 minutos a 37 &deg;C, posteriormente se incubaron los tejidos con el anticuerpo primario TH (Sigma Aldrich, U.S) (1:300) por 48 horas a 4 &deg;C. Pasado este tiempo se lavaron los tejidos con PB 0,1M 3 veces por cinco min. Como anticuerpo secundario, fue usado el anticuerpo Goat anti-mouse IgG 594 (Thermo Fisher Scientific, U.S) (1:500) por dos horas a temperatura ambiente, luego los tejidos se lavaron con PB 0,1M cinco veces por cinco minutos y los cortes se organizaron en las placas con previamente tratadas con Poly-L-lisina (Thermo Fisher Scientific, U.S) (0,01 %) debidamente marcadas. Los cortes se fijaron con Fluoromount&reg; para su posterior observaci&oacute;n.</p>      <p><b>Procesamiento estad&iacute;stico y an&aacute;lisis de los resultados</b></p>      <p>Los resultados se analizaron utilizando el software Statistica 10,1. Utilizando Anova no param&eacute;trica (Kruskal wallis) y, debido a la normalidad Newman Keuls como an&aacute;lisis pos hoc. El n&uacute;mero de c&eacute;lulas positivas a TH, N&uacute;mero de vueltas, Latencia de Escape, Latencia de Ca&iacute;da y N&uacute;mero de Errores fueron evaluados.</p>      <p><b>RESULTADOS</b></p>      <p><i>Rotaci&oacute;n. </i>Todos los animales lesionados mostraron actividad rotatoria inducida por apomorfina acorde con los criterios de inclusi&oacute;n. Un mes despu&eacute;s del trasplante con MSCh, las ratas pertenecientes a este grupo experimental, mostraron una diferencia estad&iacute;sticamente significativa en la conducta de rotaci&oacute;n inducida por apomorfina (<a href="#fig1">Fig. 1</a>). El Wilcoxon matched pair test revel&oacute; una diferencia significativa entre el n&uacute;mero de vueltas contralateral antes y despu&eacute;s del trasplante, Z=2,803 (p &lt; 0,01), lo que demostr&oacute; que el trasplante fue capaz de producir una mejor&iacute;a en la conducta de rotaciones inducida por la apomorfina en comparaci&oacute;n con el grupo lesionado.</p>      <p align="center"><a name="fig1"><img src="img/revistas/abc/v22n2/v22n2a01fig1.jpg"></a></p>      <p align="center"><a name="tab1"><img src="img/revistas/abc/v22n2/v22n2a01tab1.jpg"></a></p>      <p><i>Test Neurol&oacute;gico. </i>La respuesta de los grupos al test neurol&oacute;gico permiti&oacute; valorar la influencia de la lesi&oacute;n en el estado neurol&oacute;gico de los animales pre y post tratamiento, mostrando un soporte valioso que valor&oacute; la influencia de la lesi&oacute;n y posteriormente el trasplante; a continuaci&oacute;n se muestran las tablas de resultados de las pruebas desarrolladas a cada uno de los grupos.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Pole test. </i>Un mes despu&eacute;s del trasplante, los animales demostraron en esta prueba su recuperaci&oacute;n en cuanto a la correcci&oacute;n de posturay estrategias de descenso, al comprarlo con los grupos control intacto y animales lesionados. El Anova revel&oacute; para la variable, diferencia significativa entre los grupos, (<i>p</i>&lt;0,001) que se enfatiz&oacute; entre los grupos control y lesionado, mientras el grupo trasplantado ocup&oacute; una posici&oacute;n intermedia. (Ver <a href="#fig2">Fig. 2</a>).</p>      <p align="center"><a name="fig2"><img src="img/revistas/abc/v22n2/v22n2a01fig2.jpg"></a></p>      <p><i>Barra trasversal</i>. La prueba de Anova para la comparaci&oacute;n de grupos demostr&oacute; una diferencia significativa para la variable latencia de escape (LE), F<sub>(2, 25gl)</sub> = 7,45, p&lt;0,003. El grupo control intacto tuvo un desempe&ntilde;o superior al grupo LES+T, p&lt;0,002 y <i>p&lt;0,03 </i>respectivamente. Mientras que la latencia de ca&iacute;da (LC), no revel&oacute; diferencia entre grupos, si se observ&oacute; diferencia entre el n&uacute;mero de errores (NE) en la realizaci&oacute;n de la prueba entre los diferentes grupos, F<sub>(2, 25gl)</sub> = 2, <i>p</i>&lt;0.001. Los animales controles intactos y trasplantados tuvieron un comportamiento similar, alejado del desarrollado por el grupo de animales lesionados (<a href="#fig3">Figs 3a, 3b y 3c</a>).</p>      <p align="center"><a name="fig3"><img src="img/revistas/abc/v22n2/v22n2a01fig3.jpg"></a></p>      <p><i>Comprobaci&oacute;n del modelo de Hemiparkinsonismo. </i>La lesi&oacute;n unilateral en el hemisferio derecho por inyecci&oacute;n intracerebral de la neurotoxina 6-OHDA, produjo una p&eacute;rdida dr&aacute;stica <i>(p</i>&lt;0,001) de cuerpos celulares inmunoreactivos a la enzima TH alrededor del sitio de inyecci&oacute;n de la (<a href="#fig4">Fig. 4</a>).</p>      <p align="center"><a name="fig4"><img src="img/revistas/abc/v22n2/v22n2a01fig4.jpg"></a></p>      <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>      <p>En el presente estudio, se evalu&oacute; el efecto del trasplante intraestriatal de Celulas Madre Mesenquimales humanas (hMSC en ingl&eacute;s) transfectadas con GFP sobre la conducta motr&iacute;z de ratas con lesi&oacute;n neurot&oacute;xica unilateral por 6-OHDA unilateral en la sustancia negra evaluadas por una bater&iacute;a comportamental compuesta por Test neurol&oacute;gico, Pole Test y Barra Trasversal. Cabe resaltar que hMSC fueron transfectadas para estimar la posibilidad de diferenciaci&oacute;n a distintos linajes celulares del sistema nervioso y a su vez valorar si a trav&eacute;s de este mecanismo, se pudiera resarcir el da&ntilde;o causado a lo largo de la v&iacute;a nigroestrital, sin embargo, dentro de los resultados celulares encontrados, las hMSC-GFP+ se diferenciaron a solo a neuronas (datos no mostrados), y que los resultados que aqu&iacute; se muestran se refieren al efecto de este trasplante sobre la conducta motora inducida por la inyecci&oacute;n intranigral de 6-OHDA. En este sentido, los animales lesionados presentaron una marcada asimetr&iacute;a motora demostrada en la bater&iacute;a de pruebas comportamentales realizadas, sin embargo, hubo una significativa mejor&iacute;a en los animales que recibieron el trasplante y mediante an&aacute;lisis de inmunofluorescencia de la enzima tirosina hidroxilasa se observ&oacute; una degeneraci&oacute;n de las estructuras involucradas que cuando se analiza junto con los resultados comportamentales, est&aacute; asociada a la disfunci&oacute;n motriz. Las rotaciones inducidas por apomorfina se utilizaron en este trabajo como predictoras de la efectividad de la lesi&oacute;n y el trasplante, puesto el comportamiento rotatorio inducido por apomorfina, es equivalente a la depleci&oacute;n DA&eacute;rgica de m&aacute;s del 70 % en el lugar de la inyecci&oacute;n. (Xion <i>et al., </i>2010; Piennar <i>et al., </i>2012). De acuerdo con el m&eacute;todo de evaluaci&oacute;n usado, la t&eacute;cnica de lesi&oacute;n empleada di&oacute; lugar a diferentes grados de p&eacute;rdida de dopamina estriatal. El 100 % de los animales a los que se les inyect&oacute; la neurotoxina mostraron una conducta de giro que cumpl&iacute;a con los criterios de inclusi&oacute;n establecidos para este estudio (<a href="#fig1">Fig. 1</a>). La comprobaci&oacute;n de lesi&oacute;n completa de la v&iacute;a negroestriatal a trav&eacute;s de las siete vueltas contralaterales al hemisferio lesionado, tras la inyecci&oacute;n de apomorfina, est&aacute; de acuerdo con lo propuesto por Pav&oacute;n <i>et al. </i>(1998) y Blanco <i>et al. </i>(2010). Adem&aacute;s, esta prueba tambi&eacute;n demostr&oacute; que existe una mejor&iacute;a en los animales experimentales despu&eacute;s del trasplante al reducir el n&uacute;mero de vueltas por minutos en contraste con los datos que se hab&iacute;an recogido antes de realizar el procedimiento Boronat-Garc&iacute;a <i>et al. </i>(2016) y por Piennar <i>et al. </i>(2012). Finalmente, al comprobar histol&oacute;gicamente la lesi&oacute;n, se observ&oacute; que todos los animales seleccionados para incluirse en los grupos experimentales de trasplante, as&iacute; como los controles lesionados, mostraron una extensa p&eacute;rdida de neuronas dopamin&eacute;rgicas en la SN (<a href="#fig4">Fig. 4</a>). Aunque el sistema nervioso central puede mitigar, al menos parcialmente, la p&eacute;rdida neuronal en virtud de su plasticidad, las perturbaciones que sobrepasen ciertos l&iacute;mites tolerables ocasionan deficiencias funcionales irreversibles. Esta p&eacute;rdida ocasiona una intensa disminuci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de dopamina en las &aacute;reas de proyecci&oacute;n estriatal (caudado y putamen) y se considera fundamental en la generaci&oacute;n del defecto motor. Se observ&oacute; adem&aacute;s, una disminuci&oacute;n significativa en la conducta de giro inducida por apomorfina, en animales del grupo LES-T, (<a href="#fig1">Fig. 1</a>), mostrando la eficacia del trasplante. Estos resultados est&aacute;n en l&iacute;nea con los de otros autores que afirman que el trasplante de c&eacute;lulas madre mesenquimales mejora los trastornos conductuales en los animales lesionados con 6-OHDA (Lescaudron <i>et al., </i>2003; Pavon <i>et al., </i>2004), adem&aacute;s el trasplante de c&eacute;lulas madre mesenquimales reducen la gliosis producida por la lesion, posiblemente la inflamaci&oacute;n y la neurodegeneraci&oacute;n- en parte producida por la misma inflamaci&oacute;n- tambi&eacute;n se ve negativamente influenciada, como lo menciona Hoban <i>et al, </i>2015. Este hecho puede ser responsable, al menos en parte, de la recuperaci&oacute;n motora vista en el grupo experimental despu&eacute;s del trasplante. Por otro lado, la acci&oacute;n positiva del trasplante puede estar modulada tambi&eacute;n por la producci&oacute;n de diferentes factores neurotr&oacute;ficos por las c&eacute;lulas madre mesenquimales trasplantadas, que ejercen su acci&oacute;n sobre las c&eacute;lulas que est&aacute;n en v&iacute;a de muerte y/o que circundan los tejidos lesionados (Xion <i>et al., </i>2010; Levy <i>et al., </i>2016).</p>      <p>Estos factores potencian la supervivencia de las neuronas, favorecen su diferenciaci&oacute;n y funcionamiento e inducen a la formaci&oacute;n de sinapsis. En la literatura se han publicado datos referentes a la producci&oacute;n por parte de la c&eacute;lulas madre mesenquimales de factores neurotr&oacute;ficos, tales como el BDNF (del ingl&eacute;s Brain Derive Neurotrophic Factor) (Levy <i>et al., </i>2016); por tanto, este podr&iacute;a ser otro mecanismo a trav&eacute;s del cual se pueda explicar c&oacute;mo estas c&eacute;lulas revierten los efectos de la lesi&oacute;n producida por el 6-OHDA.</p>      <p>Para complementar la evaluaci&oacute;n del estado sensoriomotor de los sujetos pre y post-trasplante, se desarrollaron dos tests m&aacute;s, el primero de ellos es el Pole test, que valora los trastornos del movimiento relacionados con los ganglios basales en ratas y ratones, aqu&iacute; se observ&oacute; una diferencia significativa entre los animales hemiparkinsonizados y los animales trasplantados en relaci&oacute;n con los animales control (p=0,0442). Se conoce que la deficiencia dopamin&eacute;rgica representa un obst&aacute;culo para la aplicaci&oacute;n efectiva de la fuerza requerida para los movimientos coordinados de todo el cuerpo (Woodle <i>et al., </i>2008). en donde se incluyen alteraciones en el procesamiento de la informaci&oacute;n t&aacute;ctil en la etapa temprana de la EP y deterioro propioceptivo adem&aacute;s de da&ntilde;o en el control motor fino en EP, todos afectados directamente por la disfunci&oacute;n sensorial (Uylings <i>et al., </i>2003) y en los modelos de hemiparkinsonismo (Gerstenberger <i>et al., </i>2016). Los errores en el Pole test (ver <a href="#fig2">Fig. 2</a> der) representan la calidad de la respuesta motr&iacute;z evidenciada a trav&eacute;s de la integraci&oacute;n de los movimientos necesarios para la realizaci&oacute;n de una actividad cualquiera, desde la posici&oacute;n de la cabeza y la direcci&oacute;n de la mirada, hasta la simetr&iacute;a corporal y utilizaci&oacute;n de extremidades y de la cola (Matsura <i>et al., </i>1997), actividad que merece su &eacute;xito a la coordinaci&oacute;n funcional de los ganglios basales y la corteza motora que participan en la generaci&oacute;n de los movimientos cuando se utiliza la retroacci&oacute;n para el control posicional. Los animales que recibieron terapia celular, mejoraron en este par&aacute;metro. Al evaluar los errores cometidos por los animales de los diferentes grupos para realizar el pole test, se observ&oacute; que el grupo control fue el que desarroll&oacute; la prueba con mayor &eacute;xito <i>(p </i>=0,004), <i>(<img src="img/revistas/abc/v22n2/v22n2a01img1.jpg">= </i>0,86 SD&plusmn;1,21) pues utiliz&oacute; apropiadamente todas sus extremidades correctamente, incluyendo la cola como soporte para descender desde la cima del cilindro hasta la base del mismo, los animales hemiparkinsonizados por el contrario fueron los que presentaron mayor cantidad de errores <i>(<img src="img/revistas/abc/v22n2/v22n2a01img1.jpg">= </i>3,9 SD&plusmn;0,32) debido a su incapacidad de corregirposici&oacute;n demostrando su asimetr&iacute;a corporal, en contraste, los animales trasplantados mostraron una mejor&iacute;a significativa con respecto al grupo lesionado en la integraci&oacute;n de los movimientos necesarios y uso de sus extremidades y cola para la realizaci&oacute;n de esta actividad, resultados similares a lo reportado por Garrido (2004). La segunda prueba usada fue la barra transversal que permite observar y comparar el compromiso motor en los sujetos experimentales evaluados.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La Latencia de Escape (LE) refleja las posibilidades reales del animal para realizar movimientos compensatorios que le permiten alcanzar una de las dos plataformas. Caso contrario sucede al evaluar s la latencia de Ca&iacute;da (LC), que representa un indicador directo del deterioro sensoriomotor de la rata hemiparkinsonizada (Blanco, 2010). En los resultados obtenidos en este trabajo, se evidenci&oacute; que se evidenci&oacute; que las ratas hemiparkinsonizadas y las trasplantadas demoran m&aacute;s tiempo en comparaci&oacute;n con el grupo control <i>(p</i>&lt;0,001). Sin embargo, a pesar de no encontrar diferencias significativas entre los grupos LES y LES+T, existe una peque&ntilde;a diferencia en los tiempos obtenidos en ambos grupos, que se traducir&iacute;a en una leve mejora en los animales del grupo LES+T frente a los del grupo LES, suponiendo de esta manera que evaluaciones del trasplante al 2do, 3er y hasta 4to mes, podr&iacute;an arrojar diferencias m&aacute;s notables. Algunos autores han se&ntilde;alado que la deficiencia dopamin&eacute;rgica resulta en un incremento de la demora tanto para iniciar el movimiento como para cruzar la barra y alcanzar la plataforma, consistente con la acinesia y bradicinesia observada en modelos animales de EP (Allbutt y Henderson, 2007; Blanco, 2010). La disminuci&oacute;n de la LC obtenida en los animales trasplantados en relaci&oacute;n con los hemiparkinsonizados apunta a un mayor compromiso sensoriomotor en la planificaci&oacute;n y ejecuci&oacute;n de la tarea motora. Por otra parte la cuantificaci&oacute;n de los errores cometidos por los animales ofrece una visi&oacute;n m&aacute;s amplia del desarrollo de la prueba. En esta prueba, los animales del grupo CON mostraron un patr&oacute;n de locomoci&oacute;n con secuencias alternantes de acoplamiento diagonal, t&iacute;pico de animales cuadr&uacute;pedos (Blanco, 2010), las ratas hemiparkinsonizadas por el contrario mostraron incapacidad para usar las extremidades contralaterales a la lesi&oacute;n tanto para realizar ajustes posturales como movimientos de locomoci&oacute;n (Woodle y Schallert, 2004) (ver <a href="#fig2">Fig.2</a>). La literatura muestra que las implicaciones motoras producidas como consecuencias de la inyecci&oacute;n de &eacute;sta neurotoxina en Medial ForeBrain (MFB) (Sindhu <i>et al., </i>2005), Estriado (Blum <i>et al., </i>2001) y SNpc (Nezhadi <i>et al., </i>2016), producen p&eacute;rdidas significativas de habilidades motoras entre grupos control y grupos lesionados, como se manifest&oacute; anteriormente. La lesi&oacute;n en SNpc que fue realizada en este trabajo, interrumpe la comunicaci&oacute;n DA&eacute;rgica de &eacute;ste n&uacute;cleo hacia GB (Caudado- Putamen), que a su vez, est&aacute; involucrado en el desarrollo de la actividad motriz y recibe a su vez proyecciones de &aacute;reas motoras y sensoriomotoras del neo c&oacute;rtex. En este sentido, lesiones provocadas en esta regi&oacute;n, muestran efectos pronunciados en la iniciaci&oacute;n del movimiento y comportamiento motor (Pieruccini-Faria <i>et al., </i>2016). Estas dos pruebas sensoriomotoras son apropiadas, ya que no requiere extensas sesiones de entrenamiento ni privaci&oacute;n de alimentos como componente motivacional. Tambi&eacute;n se demostr&oacute; que despu&eacute;s del trasplante los animales mejoran en el empleo del uso de sus extremidades, por lo que con esta prueba se evidencia tambi&eacute;n el efecto positivo del trasplante (ver <a href="#fig2">Fig. 2</a>). De manera general, los resultados obtenidos est&aacute;n en concordancia con lo reportado por otros autores que ya han utilizado pruebas para medir el d&eacute;ficit motor producido por la lesi&oacute;n y la recuperaci&oacute;n de este tras un trasplante de c&eacute;lulas madre (Pav&oacute;n, 2004). Los mecanismos por medio de los cuales aparece la mejora comoprtamentalen estos animales, est&aacute;n muy relacionados con los explicados en la prueba de la conducta de Giro inducida por apomorfina. Desde el punto de vista histol&oacute;gico la inyecci&oacute;n unilateral de la 6-OHDA, genera una lesi&oacute;n en la que se denota muerte sustancial de las neuronas dopamin&eacute;rgicas de la sustancia nigra que est&aacute; en relaci&oacute;n con lo reportado por otras investigaciones (Debeir <i>et al., </i>2005; Yuan <i>et al., </i>2005; Scholtissen <i>et al., </i>2006; Bagga <i>et al., </i>2015; Boronat-Garc&iacute;a <i>et al., </i>2016). Estos resultados, finalmente esclarecen la capacidad de adaptaci&oacute;n de las c&eacute;lulas madre mesenquimales. En general, las MSC humanas y de rata pueden proliferar de manera estable in vitro, mientras que los de los monos y ratones son vulnerables a la manipulaci&oacute;n (Sloan <i>et al., </i>1990) y a las t&eacute;cnicas de trasplante empleadas En este trabajo, el grupo experimental con trasplante celular mostr&oacute; una disminuci&oacute;n sustancial en el comportamiento de rotaci&oacute;n inducido por apomorfina contrario a lo que mencionan Piennar <i>et al. </i>(2012), y en las pruebas de comportamiento no farmacol&oacute;gicas, tales como el pole test y la barra transversal. Los resultados obtenidos en este bioensayo, mostraron que los test propuestos permiten hacer una valoraci&oacute;n m&aacute;s sensible que resuelve en parte el entendimiento de los problemas de integraci&oacute;n, conectividad y migraci&oacute;n de estas c&eacute;lulas mostrados a trav&eacute;s de la ejecuci&oacute;n de tareas sensoriomotoras. Cabe resaltar que se hace necesaria la valoraci&oacute;n comportamental no solo al mes despu&eacute;s del trasplante sino que tambi&eacute;n, dos, tres y hasta cuatro meses despu&eacute;s, donde se pueda evaluar la capacidad del trasplante para regenerar v&iacute;as sin&aacute;pticas deterioradas en &eacute;sta y otras enfermedades.</p>      <p><b>CONCLUSIONES</b></p>      <p>Por medio de este estudio se demostr&oacute; que el trasplante de c&eacute;lulas madre mesenquimales GFP+ puede disminuir el da&ntilde;o funcional y asimetr&iacute;a motora, caracter&iacute;stica del modelo experimental en ratas hemiparkinsonizadas. Los resultados comportamentales mostraron en todas sus pruebas que hubo una mejor&iacute;a significativa en la habilidad para realizar actividad motora de los animales trasplantados con respecto a los hemiparkinsonizados, esto apunta a un mayor compromiso sensoriomotor en la ejecuci&oacute;n de las pruebas que el grupo experimental obtuvo gracias al trasplante. Adicionalmente es posible que el lado &quot;no lesionado&quot;, contralateral a la inyecci&oacute;n de 6-OHDA, sea insuficiente para compensar la deficiencia motora cuando la lesi&oacute;n es de gran extensi&oacute;n.</p>      <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>      <p>Este trabajo fue realizado con el apoyo de la Oficina Central de Investigaciones de la Universidad del Tolima.</p>      <p><b>CONFLICT OF INTEREST</b></p>      <p>The authors declare that they have no conflict of interest.</p>  <hr>      <p><b>REFERENCIAS</b></p>      <!-- ref --><p>Alheid G. F., Heimer L., Switzer R.S. Basal Ganglia. In: Paxinos G, editor. The Human Nervous System. Academic Press: San Diego; 1990. p. 483-582.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075992&pid=S0120-548X201700020000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Allbutt N. H., Henderson J. M. Use of the narrow beam test in the rat, 6- hydroxydopamine model of Parkinson's disease. J Neurosci methods. 2007;159(2):195-202. Doi:10.1016/j.jneumeth.2006.07.006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075994&pid=S0120-548X201700020000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Aarsland D., Kurz M. W. The epidemiology of dementia associated with Parkinson disease. J Neurol Sci. 2010;289(1-2):18-22. Doi:10.1016/j.jns.2009.08.034.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075996&pid=S0120-548X201700020000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Aarsland D. Cognitive impairment in Parkinson's disease and dementia with Lewy bodies. Parkinson Rel Disor.  2015;22(1):144-148. Doi:10.1016/j.parkreldis.2015.09.034.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=075998&pid=S0120-548X201700020000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Bagga V., Dunnet S. B., Fricker R. A. The 6-OHDA mouse model of Parkinson's disease-Terminal striatal lesions provide a superior measure of neuronal loss and replacement than median forebrain bundle lesions. Behav Brain Res. 2015;288:107-117. Doi:10.1016/j.bbr.2015.03.058.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076000&pid=S0120-548X201700020000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Baz&aacute;n E., Herranz A. S., Reimers D., Alonso R., D&iacute;az J. J., Lobo M., <i>et al. </i>LGF (&laquo;liver growth factor&raquo;) como factor de proliferaci&oacute;n, migraci&oacute;n y diferenciaci&oacute;n de las c&eacute;lulas madre neurales y su posible utilidad en enfermedad de Parkinson. Mapfre Medicina. 2015;16(4):237-247.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076002&pid=S0120-548X201700020000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Benitez G. Medicina regenerativa y terapia celular. Rev Mex Med Trans. 2011:4(2):70-77.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076004&pid=S0120-548X201700020000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Blanco Lezcano L., Lourdes Del C. L., Lic. Fern&aacute;ndez C, Serrano S&aacute;nchez T., Pav&oacute;n Fuentes N; Francis Turner, L. Aplicaci&oacute;n del test de la barra transversal modificado para evaluar ratas hemiparkinsonizadas. Acta biol. Colomb. 2010:15(2):189-202.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076006&pid=S0120-548X201700020000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Blum D, Torch S, Lambeng N, Nissou M, Benabid AL, Sadoul R, Verna JM. Molecular pathways involved in the neurotoxicity of 6-OHDA, dopamine and MPTP: contribution to the apoctotic theory in Parkinson's disease. Progress in Neurobiology. 2001:65:135-172. Doi:10.1016/S0301-0082(01)00003-X.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076008&pid=S0120-548X201700020000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Boronat-Garc&iacute;a A., Palomero-Rivero M., Guerra-Crespo M., Mill&aacute;n Aldaco D., Drucker-Dolin R. Intraestriatal Grafting of chromospheres: Survival and Functional Effects in the 6-OHDA Rat Model of Parkinson's Disease. <i>PLoS ONE. </i>2016;11(8):e0160854. Doi:10.1371/journal.pone.0160854.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076010&pid=S0120-548X201700020000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Bov&eacute; J., Prou D., Perier C., Przedborski S. Toxin induced models of Parkinson's disease. NueroRX. 2005;2:484-494. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1602/neurorx.2.3.484" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1602/neurorx.2.3.484</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076012&pid=S0120-548X201700020000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Bouchez G., Senseb&eacute; L., Vourc'h P., Garreau L., Bodard S., Rico A., <i>et al. </i>Partial recovery of dopaminergic mesenchymal stem cells in a rat model of Parkinson's disease. Neurochem inter. 2008;52(7):1332-1342. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.neuint.2008.02.003" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.neuint.2008.02.003</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076014&pid=S0120-548X201700020000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Brederlau A., Correia A., Anisimov S., Elmi M., Paul G., Roybon L., <i>et al. </i>Transplantation of human embryonic stem cell-derived cells to a rat model of parkinson's disease: effect <i>of in vitro </i>differentiation on graft survival and teratoma formation. Stem Cells. 2006;24:1433-1440. Doi:10.1634/stemcells.2005-0393.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076016&pid=S0120-548X201700020000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Bures J., Buresova O., Huston J. P. Techniques and basic experiments for the study of brain and behavior. 2nd ed. Amsterdam: Elsevier Science Publishers B. V. 1983.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076018&pid=S0120-548X201700020000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Crabtree D., Zhang J. Genetically engineered mouse model of Parkinson's disease. Brain Res Bull. 2012;88(1):13-32. Doi:10.1016/j.brainresbull.2011.07.019.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076020&pid=S0120-548X201700020000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Da Cunha C., Prediger R. D. S., Miyoshi E., Takahashi R. A rat model of the cognitive impairments in Parkinson's disease. Rev Mex Anal Cond. 2006;32(2):219-240.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076022&pid=S0120-548X201700020000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Debeir T., Ginestet L., Francois C., Laurens S., Martel J.C., Chopin P., Marien, <i>et al. </i>Effect of intraestriatal 6- OHDA lesion on dopaminergic innervations of the rat cortex and globus pallidus. Experimental Neurology. 2005;193:444-454. Doi:10.1016/j.expneurol.2005.01.007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076024&pid=S0120-548X201700020000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Deierborg T., Denis S., Laurent R., Vanessa H., Patrik B., Emerging restorative treatments for Parkinson's disease. Progress Neurobiol J. 2008;85(4):407-32. Doi: 10.1016/j.pneurobio.2008.05.001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076026&pid=S0120-548X201700020000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Gerstenberger J., Bauer A., Helmschrodt C., Richter A., Richter F. The novel adaptive rotating beam test unmasks sensorimotor impairments in a transgenic mouse model of Parkinson's disease. Behavioural Brain Res. 2016;102-110. Doi:10.1016/j.bbr.2016.02.017.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076028&pid=S0120-548X201700020000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Glavaski-Joksimovic A., Bohn, M. C. Mesenchymal stem cells and neuroregeneration in Parkinson's disease. Exp Neurol. 2013;247:25-28. Doi:10.1016/j.expneurol.2013.03.016.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076030&pid=S0120-548X201700020000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Issy A. C., Padovan-Neto F., Lazzarini M., Bortolanza M., Del-Bel E. Disturbance of sensorimotor filtering in the 6-OHDA rodent model of Parkinson's disease. Life Sciences. 2015;125:71-78. Doi:10.1016/j.lfs.2015.01.022.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076032&pid=S0120-548X201700020000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Lescaudron L., Unni D., Dunbar G. L. Autologous adult bone marrow stem cell transplantation in an animal model of Huntingto's Disease: Behavioral and morphological outcomes. International J Neuroscience. 2003;113:945-956. Doi:10.1080/00207450390207759.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076034&pid=S0120-548X201700020000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Levy M., Boulis N., Rao M., Svendsen C. N. Regenerative cellular therapies for neurologic diseases. Brain Res. 2016;1638(A):88-96. Doi:10.1016/j.brainres.2015.06.053.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076036&pid=S0120-548X201700020000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Maranis S., Tsouli S., Konitsiotis S. Treatment of motor symptoms in advanced Parkinson's disease: A practical approach. Progress Neuro-Psycopharmaco Biol Psyc. 2011;35:1795-1807. Doi:10.1016/j.pnpbp.2011.05.014.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076038&pid=S0120-548X201700020000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Mart&iacute;n I., De Bouer J., Sensebe L. A relativity concept in mesenchymal stromal cell manufacturing. Cytotherapy. 2016;18:613-620. Doi:10.1016/j.jcyt.2016.02.004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076040&pid=S0120-548X201700020000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Masaaki K., Dezawa M. Parkinson's Disease and Mesenchymal Stem Cells: Potential for Cell-Based Therapy. Hindawi Publishing Corporation Parkinson's Disease Volume 2012:9 Doi:10.1155/873706.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076042&pid=S0120-548X201700020000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Matsura K., Kabuto H., Makino H., Ogawa N. Pole test is a useful method for evaluating the mouse movement disorder caused by striatal dopamine depletion. Journal of Neuroscience Methods.1997;73(1):45-48. Doi:10.1016/S0165-0270(96)02211-X.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076044&pid=S0120-548X201700020000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Mendez J. S., Finn B. W. Use of 6-hydroxydopamine to create lesions in catecholamine neurons in rats. J Neurosur. 1975;42:166-173.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076046&pid=S0120-548X201700020000100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Nezhadi A., Sheibani V., Esmaeilpor K., Shabani M., Mahani S. Neurosteroid allopregnanolone attenuates cognitive dysfunctions in 6-OHDA-induced rat model of Parkinson's disease. Behav Brain Res. 2016;305:258-264. Doi:10.1016/j.bbr.2016.03.019.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076048&pid=S0120-548X201700020000100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Pav&oacute;n N., Vidal L., Alvarez P., Blanco L., Torres A., Rodr&iacute;guez A. Evaluaci&oacute;n conductual del modelo de lesi&oacute;n unilateral en ratas con 6-hidroxidopamina. Correlaci&oacute;n entre las rotaciones inducidas por d-anfetamina, apomorfina y la prueba de habilidades manuales. Revista Neurolog&iacute;a. 1998;26:915-918.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076050&pid=S0120-548X201700020000100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Pav&oacute;n Fuentes F., Blanco Lezcano L., Mart&iacute;nez Mart&iacute;n L., Castillo-D&iacute;az L., De La Cu&eacute;tara Bernal K., Garc&iacute;a Miniet, <i>et al. </i>Trasplante de c&eacute;lulas estromales en el modelo de lesi&oacute;n por 6-OHDA. Revista de Neurolog&iacute;a. 2004;39(4):326-334.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076052&pid=S0120-548X201700020000100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Paxinos G., Watson, C. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. 5<sup>th</sup> Edition. Elsevier Academic Press pag. 206.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076054&pid=S0120-548X201700020000100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Peter, H., Seviour, P., Iversen S. (1975). Amphetamine and apomorphine responses in the rat following 6-OHDA lesions of the nucleus accumbens septi and corpus striatum. Brain Research. 2005;94 3,5: 507-522.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076056&pid=S0120-548X201700020000100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Pienaar I., Lu B., Scharllert T. Closing the gap between clinic and cage: Sensori-motor and cognitive behavioural testing regimens in neurotoxin-induced animal models of Parkinson's disease. Neurosci Biobehav Rev. 2012;36(10):2305-2324. Doi: 10.1016/j.neubiorev.2012.07.009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076058&pid=S0120-548X201700020000100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Pieruccini-Faria F., Jones J.A., Almeida Q. J. Insight into dopamine-dependent planning d&eacute;ficits in Parkinson's disease: A sharing of cognitive &amp; Sensory Resources. Neurosci. 2016;318: 219-229. Doi:10.1016/j.neuroscience.2016.01.019.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076060&pid=S0120-548X201700020000100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Poletti M., Enrici I., Bonuccelli U., Adenzato M. Theory of Mind in Parkinson's disease. Behav Brain Res. 2011;219:342-350. Doi:10.1016/j.bbr.2011.01.010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076062&pid=S0120-548X201700020000100036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Sindhu K., Saravanan K., Mohanakumar K. Behavioural differences in a rotenone-induced hemiparkinsonian rat model developed following intranigral or median forebrain bundle infusion. Brain Res. 2005;1051(1-2):25-34. Doi: 10.1016/j.brainres.2005.05.051.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076064&pid=S0120-548X201700020000100037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Sloan D. J., Baker B., Puklavec M., Charlton H. The effects of site of transplantation and histocompatibility differences on the survival of neural tissue transplanted to the CNS of defined inbred rat strains. Prog Brain Restor. 1990; 82:141-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076066&pid=S0120-548X201700020000100038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Taylor T. N., Greene J. G., Miller G. W. Behavioural phenotying of mouse models of Parkinson's Disease. Behav Brain Res. 2010;211(1):1-10. Doi:10.1016/j.bbr.2010.03.004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076068&pid=S0120-548X201700020000100039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Tronci E., Shin E., Bj&ouml;rklund A. Amphetamine-induced rotation and L-DOPA induced dyskinesia in the rat 6-OHDA model: a correlation study. Neurosci Res. 2072;73(2):168-172. Doi:10.1016/j.neures.2012.03.004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076070&pid=S0120-548X201700020000100040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Uylings H., Groenewegen H. J., Kolb B. Do rats have a prefrontal cortex?. Behav Brain Res. 2003;146(1-2):3-17. Doi:10.1016/j.bbr.2003.09.028.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076072&pid=S0120-548X201700020000100041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Venkataramana N. K., Kumar S. K., Balaraju S., Radhakrishnan R. C., Bansal A., Dixit A., <i>et al. </i>Open-labeled study of unilateral autologous bone-marrow-derived mesenchymal stem cell transplantation in Parkinson's disease. Transl Res. 2010;155: 62-70. Doi:10.1016/j.trsl.2009.07.006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076074&pid=S0120-548X201700020000100042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Wang H., Wang Y., Cui S., Zhang T. Cognitive impairment in Parkinson's disease revealed by event-related potential N270. J Neurol Sci. 2002;194(1):49-53. Doi:10.1016/S0022-510X(01)00674-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076076&pid=S0120-548X201700020000100043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Warraich S., Allbutt H., Billing R., Radford J., Coster M., Kassiou M., <i>et al. </i>Evaluation of behavioural effects of a selective NMDA NR1A/2B receptor antagonist in the unilateral 6-OHDA lesion rat model. Brain Res Bull. 2009;78:85-90. Doi: 10.1016/j.brainresbull.2008.08.023.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076078&pid=S0120-548X201700020000100044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Woodle M., Kane J., Chang J., Cormack L., Schallert T. Enhanced function in the good forelimb of hemi-parkinsonian rats: compensatory adaptation for contralateral postural instability?. Exp Neurol. 2008;211:511-517. Doi:10.1016/j.expneurol.2008.02.024.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076080&pid=S0120-548X201700020000100045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Woodle M., Schallert T. The interplay between behaviour and neurodegeneration in rat models of Parkinson's disease and stroke. Rest Neurol Neurosc. 2004;22:153-161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076082&pid=S0120-548X201700020000100046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Xiong N., Cao X., Zhang Z., Huang J., Chen C., Zhang Z., Jia M., <i>et al. </i>Long-Term efficacy and safety of human umbilical cord mesenchymal stromal cells in rotenone-induced hemiparkinsonian rats. Biol Blood Marrow Transpl: J ASBMT. 2010;16(11):1519-1529. Doi:10.1016/j.bbmt.2010.06.004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=076084&pid=S0120-548X201700020000100047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>      ]]></body><back>
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