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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Fiebres hemorrágicas por Arenavirus en Latinoamérica]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Hemorrhagic fever Arenaviruses in Latin America]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Viral hemorrhagic fevers caused by Arenaviruses include endemic viruses in Africa (Lassa fever) and lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV) of worldwide distribution, and the New World Arenavirus or Tacaribe Complex, which includes endemic viruses in the Americas (Junin, Machupo, Guanarito, Sabia, Pichinde, among others). The natural hosts are rodents and human infection occurs through contact with urine and excrements. The clinical manifestations are initially indistinguishable from other viral hemorrhagic fevers caused by bacteria, parasites and other viruses, constituting a public health problem. So it requires a differential diagnosis using serological and molecular techniques..]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="2"></font> <font face="Verdana" size="2"> <b>ART&Iacute;CULO DE REVISI&Oacute;N/ REVIEW ARTICLE     <br> REVISI&Oacute;N B&Aacute;SICA/BASIC REVIEW</b>     <p align="center"><font size="4"><b>Fiebres hemorr&aacute;gicas por Arenavirus en Latinoam&eacute;rica</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>Hemorrhagic fever Arenaviruses in Latin America</b></font></p>     <p><b>Ella Soto, Salim Mattar<sup><a href="#1" name="n1">1</a></sup></b></p>     <p><a href="#n1" name="1"><sup>1</sup></a> Ph.D, Universidad de C&oacute;rdoba, Instituto de Investigaciones Biol&oacute;gicas del Tr&oacute;pico. Maestr&iacute;a en Microbiolog&iacute;a Tropical. Monter&iacute;a, C&oacute;rdoba (Colombia). <a href="mailto:mattarsalim@hotmail.com">mattarsalim@hotmail.com</a></p>     <p><b>Correspondencia:</b> Universidad de C&oacute;rdoba, Instituto de Investigaciones Biologicas del Tr&oacute;pico, carrera 6<sup>a</sup> N&deg; 76 - 103 Monter&iacute;a, C&oacute;rdoba (Colombia).</p> Fecha de recepci&oacute;n: 9 de mayo de 2010     <br> Fecha de aceptaci&oacute;n: 15 de agosto de   2010 <hr>     <p align="left"><b>Resumen</b></p>     <p><i>Las fiebres hemorr&aacute;gicas virales producidas por Arenavirus incluyen a los virus end&eacute;micos en &Aacute;frica (Lassa) y el virus de la coriomeningitis linfoc&iacute;tica (LCMV), de distribuci&oacute;n mundial, y los Arenavirus del Nuevo Mundo o Complejo Tacaribe, que incluye a los virus end&eacute;micos en las Am&eacute;ricas (Jun&iacute;n, Machupo, Guanarito, Sabi&aacute;, Pichinde, entre otros). Los hu&eacute;spedes naturales son los roedores y la infecci&oacute;n en humanos se produce por el contacto con la orina y excretas. Las manifestaciones cl&iacute;nicas inicialmente son indistinguibles de otras fiebres hemorr&aacute;gicas producidas por bacterias, par&aacute;sitos y otros virus, constituy&eacute;ndose esto en un problema de salud p&uacute;blica, por lo que se requiere realizar el diagn&oacute;stico diferencial utilizando t&eacute;cnicas serol&oacute;gicas y moleculares.</i></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Palabras clave: </b>Fiebres hemorr&aacute;gicas virales, Arenavirus, virus Jun&iacute;n, virus Guanarito, virus de Lassa, virus de la coriomeningitis linfoc&iacute;tica.</p> <hr>     <p align="left"><b>Abstract</b></p>     <p><i>Viral hemorrhagic fevers caused by Arenaviruses include endemic viruses in Africa (Lassa fever) and lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV) of worldwide distribution, and the New World Arenavirus or Tacaribe Complex, which includes endemic viruses in the Americas (Junin, Machupo, Guanarito, Sabia, Pichinde, among others). The natural hosts are rodents and human infection occurs through contact with urine and excrements. The clinical manifestations are initially indistinguishable from other viral hemorrhagic fevers caused by bacteria, parasites and other viruses, constituting a public health problem. So it requires a differential diagnosis using serological and molecular techniques.. </i></p>     <p><b>Key words: </b>Viral hemorrhagic fevers, Arenavirus, Junin virus, Guanarito virus, Lassa virus, lymphocytic choriomeningitis virus.</p> <hr> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>Las fiebres hemorr&aacute;gicas virales por Arena-virus describen un s&iacute;ndrome caracterizado por la presencia de fiebre y sistema vascular afectado, acompa&ntilde;ado de hemorragias y sangrado que pone en peligro la vida del paciente. Son causadas por un grupo de virus tipo arn y su mantenimiento depende del roedor hu&eacute;sped; de esta forma, el virus est&aacute; geogr&aacute;ficamente delimitado a la zona donde viven sus reservorios. Inicialmente los Arenavirus producen una infecci&oacute;n aguda con una sintomatolog&iacute;a inespec&iacute;fica, la cual se vuelve m&aacute;s caracter&iacute;stica en las fases tard&iacute;as de la enfermedad, cuando se produce un fallo org&aacute;nico que puede conducir a la muerte. Las fiebres hemorr&aacute;gicas virales poseen altas tasas de mortalidad, son dif&iacute;ciles de diagnosticar y distinguir cl&iacute;nicamente de otras fiebres hemorr&aacute;gicas bacterianas, parasitarias y virales, y requieren de un diagn&oacute;stico de laboratorio eficaz y espec&iacute;fico para tratar adecuadamente al paciente y disminuir el riesgo de transmisi&oacute;n. Actualmente se desconocen muchos aspectos sobre el origen, la patogenia, el tratamiento y el control de estas enfermedades en Colombia y Latinoam&eacute;rica, y su diagn&oacute;stico es confuso y muchas veces queda sin definir.</p>     <p>El objetivo de esta revisi&oacute;n es mostrar la importancia de las fiebres hemorr&aacute;gicas producidas porArenavirus y estudiar la ecolog&iacute;a m&eacute;dica de sus vectores.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>CARACTER&Iacute;STICAS BIOL&Oacute;GICAS DE LOS ARENAVIRUS</b></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p><i>Arenaviridae </i>se caracterizan morfol&oacute;gicamente por ser part&iacute;culas esf&eacute;ricas con un di&aacute;metro promedio entre 110 y 130 nan&oacute;metros, est&aacute;nrecubiertos por una membrana lip&iacute;dica que contiene proyecciones glucoprot&eacute;icas en su superficie. Poseen part&iacute;culas granulosas que son ribosomas adquiridos de las c&eacute;lulas que los hospedan; por esta caracter&iacute;stica microsc&oacute;pica se les denomin&oacute; &quot;arena&quot;. Su genoma est&aacute; compuesto por arn monocatenario y formado por dos segmentos lineales: un segmento largo (L), que codifica la polimerasa viral, un segmento corto (S), que codifica a la nucleoprote&iacute;na (NP) y dos glucoprote&iacute;nas (GP1 y GP2). Estos segmentos de arn son de cadena simple y existen en forma esf&eacute;rica dentro del viri&oacute;n. <i>Arenaviridae </i>incluye 23 especies virales y dentro del g&eacute;nero se encuentran los causantes de fiebres hemorr&aacute;gicas en el hombre (virus Lassa, Machupo, Guanarito, Jun&iacute;n y Sabi&aacute;).</p>     <p>Los Arenavirus se clasifican en dos grupos antig&eacute;nicos diferentes:</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los del Viejo Mundo, que incluyen a los virus end&eacute;micos en &Aacute;frica (Lassa) y el virus de la coriomeningitis linfoc&iacute;tica (lcmv) de distribuci&oacute;n mundial, y los Arenavirus del Nuevo Mundo o Complejo Tacaribe, que incluye a los virus end&eacute;micos en las Am&eacute;ricas (Jun&iacute;n, Machupo, Guanarito, Sabi&aacute;, Pichinde, entre otros) (1,2).</p>     <p>Los Arenavirus se transmiten entre los roedores a trav&eacute;s de la orina, causando en ellos infecci&oacute;n cr&oacute;nica. El hombre se infecta cuando entra en contacto con el virus excretado por el roedor, y por ello su distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica coincide con la distribuci&oacute;n del roedor espec&iacute;fico <a href="#t1">(tabla 1</a>).</p>     <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/sun/v26n2/v26n2a12-1.jpg"></a></p>     <p><b>Patog&eacute;nesis y respuesta inmune.</b></p>     <p> Los mecanismos por los cuales se produce la enfermedad y su control en el humano, para todos los Arenavirus, son en gran parte desconocidos.</p>     <p>Investigaciones realizadas en pacientes con fiebre hemorr&aacute;gica argentina (FHA) y con fiebre de Lassa han revelado la ausencia de inmunocomplejos circulantes, de activaci&oacute;n del sistema del complemento y dep&oacute;sito de inmunoglobulinas y C3 en los &oacute;rganos de los pacientes, lo que ha llevado a concluir que la patog&eacute;nesis de la infecci&oacute;n por Arenavirus se atribuye al da&ntilde;o directo del virus sobre el sistema sangu&iacute;neo. Los estudios cl&iacute;nicos experimentales demuestran que los Arenavirus se multiplican en las c&eacute;lulas del tejido linfoide, causando viremia prolongada, produciendo un efecto citop&aacute;tico directo en macr&oacute;fagos y leucocitos polimorfonucleares, lo que resulta en activaci&oacute;n de los factores plasm&aacute;ticos y alteraci&oacute;n de la permeabilidad capilar. Otros mecanismos pueden contribuir a la patog&eacute;nesis de la enfermedad; por ejemplo, en pacientes con fiebre hemorr&aacute;gica venezolana (fhv) y fiebre hemorr&aacute;gica argentina (fha), se encuentran altos niveles de interfer&oacute;n alfa, lo cual demuestra una correlaci&oacute;n entre estos t&iacute;tulos y la evoluci&oacute;n de la enfermedad, pero sin establecerse a&uacute;n el papel que desempe&ntilde;a el da&ntilde;o tisular (3-4).</p>     <p>Probablemente los Arenavirus son capaces de ocasionar inmunosupresi&oacute;n en los roedores infectados, lo que facilita su cronificaci&oacute;n y contribuye a la patogenicidad en los humanos. El mecanismo exacto por el que se produce la hemorragia y el aumento de la permeabilidad vascular no es del todo conocido, pero se han observado cambios histopatol&oacute;gicos m&iacute;nimos en los tejidos del hospedador, y no existe evidencia de la implicaci&oacute;n de las c&eacute;lulas inflamatorias. Por otro lado, se ha demostrado que la invasi&oacute;n directa del endotelio vascular por el virus y la secreci&oacute;n de citoquinas por parte de los macr&oacute;fagos pueden ser en parte responsables de algunos de los cambios circulatorios que se producen y se han asociado a un peor pron&oacute;stico (1).</p>     <p><b>Virus de la coriomeningitis linfoc&iacute;tica </b><b>(LCMV).</b></p>     <p>Es el prototipo de la familia <i>Arena-viridae, </i>por haber sido el primero de estos agentes aislado en 1933 durante la epidemia de encefalitis de San Luis (EE.UU.). El lmvc es el Arenavirus de m&aacute;s amplia distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica, comprendiendo Am&eacute;rica, Europa, Asia, &Aacute;frica y Ocean&iacute;a, continentes todos en los que se ha dispersado su reservorio: el roedor <i>Mus domesticus. </i>La actividad del virus lcm fue notificada por primera vez en Argentina a comienzos de la d&eacute;cada de los setenta en seres humanos y roedores por la presencia de anticuerpos, confirm&aacute;ndose su actividad por el aislamiento de una cepa del virus lcm en la provincia de C&oacute;rdoba (6,7). Estudios posteriores detectaron anticuerpos en roedores, en seres humanos y aislaron otras cepas a partir del roedor <i>Mus domesticus </i>en dos casos de enfermedad humana (8,9). Estos hallazgos tuvieron lugar en &aacute;reas urbanas y rurales de las provincias de C&oacute;rdoba, Santa Fe y Buenos Aires; no obstante, la distribuci&oacute;n del virus se supone mucho mayor. Aunque se estima que la mayor&iacute;a de los casos humanos son inaparentes, es importante incorporar el estudio de lcmv al diagn&oacute;stico diferencial en los s&iacute;ndromes neurol&oacute;gicos y en enfermedades febriles indiferenciadas (10,11).</p>     <p><b>Mecanismo de transmisi&oacute;n del </b><b>LCMV. </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La historia natural de los Arenavirus est&aacute; caracterizada porque generalmente infectan a un n&uacute;mero limitado de especies de peque&ntilde;os roedores, los que act&uacute;an como reservorios y habitan en &aacute;reas geogr&aacute;ficas bien definidas. La &uacute;nica excepci&oacute;n es el lcmv de distribuci&oacute;n mundial, que encuentra su reservorio en el <i>Mus domesticus </i>(12,13). Los roedores se infectan cr&oacute;nicamente y liberan virus en las secreciones orofaringeas, orina y materia fecal. Existen evidencias de que la inhalaci&oacute;n del virus ser&iacute;a la principal v&iacute;a de transmisi&oacute;n para el hombre, aunque no se descartan otras v&iacute;as de entrada, como las mucosas, ingesti&oacute;n o peque&ntilde;as escoriaciones de la piel (figura 1). Adem&aacute;s del rat&oacute;n dom&eacute;stico, en los &uacute;ltimos a&ntilde;os, el h&aacute;mster sirio est&aacute; ganando importancia como fuente de infecci&oacute;n para el hombre. Se han producido peque&ntilde;os brotes de infecciones en personas que participaron en trabajos de investigaci&oacute;n biom&eacute;dica en los que utilizaron h&aacute;msters. Entre 1968 y 1971 se detectaron infecciones en el oeste de Alemania, las cuales fueron diagnosticadas por la detecci&oacute;n de anticuerpos contra el LCMV en personas que poco antes de su enfermedad hab&iacute;an estado en contacto con mascotas h&aacute;msters (11).</p>     <p>Los episodios en EE.UU. y Alemania se&ntilde;alan la importancia de los h&aacute;msters como fuente de infecci&oacute;n por LCMV; mientras que este animal no es un verdadero portador a lo largo de la vida, puede circular y excretar el virus por periodos de 2 o 3 meses despu&eacute;s de su infecci&oacute;n (14).</p>     <p>En 1969 en Argentina, provincia de C&oacute;rdoba, del cerebro y sangre de un <i>Mus musculus </i>campestre se aisl&oacute; un virus letal para el rat&oacute;n albino suizo adulto, con un periodo de incubaci&oacute;n de unos 6 d&iacute;as, al cabo de los cuales aparecieron las convulsiones y la muerte. Este agente, denominado Cba An 13065, dio reacciones id&eacute;nticas a las de la cepa del lcmv. El aislamiento de esta cepa y la evidencia serol&oacute;gica de su actividad en <i>Mus musculus </i>se&ntilde;ala la presencia de unArenavirus diferente del virus Jun&iacute;n en zonas end&eacute;micas de fiebre hemorr&aacute;gica argentina. Hay otras especies animales a partir las cuales el virus ha sido aislado en la naturaleza, como los monos, los cobayos y los perros. El papel que juegan &eacute;stas en la difusi&oacute;n del virus al hombre es indeterminado y parece ser poco importante (15).</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>CARACTER&Iacute;STICAS CLINICAS DEL LCMV</b></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>La infecci&oacute;n en humanos evoluciona por lo general subcl&iacute;nicamente, con aparici&oacute;n de anticuerpos en sangre. Cuando se manifiesta cl&iacute;nicamente puede presentar tres formas: a) enfermedad febril no diferenciada, de sintomatolog&iacute;a gripal, b) meningitis as&eacute;ptica y c) meningoencefalitis. La enfermedad comienza con un cuadro febril, mialgias, dolor retro-ocular, decaimiento y anorexia. Puede haber artralgias, artritis, parotiditis u orquitis. La remisi&oacute;n se produce en una semana o aparece la meningitis as&eacute;ptica. Rara vez progresa hacia una encefalitis, la cual puede ser fatal. Las pruebas de laboratorio muestran leucopenia y trombocitopenia, como en la fha, y elevaci&oacute;n de ldh y tgo. El lcr, en los casos con compromiso neurol&oacute;gico, puede presentar recuentos celulares entre 100 y 1.000 linfocitos y glucosa normal o baja. La infecci&oacute;n prenatal se adquiere por v&iacute;a transplacentaria y est&aacute; asociada a la aparici&oacute;n de hidrocefalia y otras alteraciones cong&eacute;nitas (14,15).</p>     <p><b>Fiebre de Lassa.</b></p>     <p>La enfermedad fue observada por primera vez en 1969, en una enfermera misionera de una localidad en el nordeste de Nigeria; despu&eacute;s de su admisi&oacute;n al hospital se desarrollaron dos casos m&aacute;s en contacto con enfermeras de ese hospital. Debido a las circunstancias que rodean a este brote y el hecho de que dos de las tres personas afectadas murieron, la enfermedad fue considerada grave. La fiebre de Lassa es end&eacute;mica en Nigeria, Sierra Leona, Liberia y Guinea; y se estima que produce aproximadamente unas 5.000 muertes al a&ntilde;o. La fiebre de Lassa ha originado ocasionalmente casos importados en Europa, Estados Unidos, Jap&oacute;n y Canad&aacute; (16,17).</p>     <p>El &uacute;nico reservorio conocido para el virus de Lassa es <i>Mastomys sp, </i>uno de los roedores semidom&eacute;sticos m&aacute;s frecuentes en &Aacute;frica. La enfermedad sigue el patr&oacute;n estacional con los mayores picos de incidencia durante la estaci&oacute;n seca (enero a marzo), aunque en las zonas end&eacute;micas se presentan casos durante todo el a&ntilde;o (18,19). Se han observado dos tipos de brote: el primero asociado a hospitales que se desarrolla como resultado de la exposici&oacute;n con pacientes, visitantes y personal medico; el segundo tipo es la infecci&oacute;n que se adquiere en el hogar u otros entornos comunitarios.</p>     <p><b>Mecanismo de transmisi&oacute;n del virus Lassa.</b></p>     <p>El modo de transmisi&oacute;n al hombre se da por contacto directo con los roedores y sus excreciones y secreciones; al comer la carne cruda de los roedores, por contacto con alimentos y bebidas contaminadas por los roedores y tambi&eacute;n podr&iacute;a ser por el aire. La propagaci&oacute;n del virus tambi&eacute;n se da en el entorno hospitalario ya sea de persona a persona, contacto con el aire, contacto directo, la distribuci&oacute;n de alimentos, bebidas, instrumentos cl&iacute;nicos, objetos y utensilios (20,21).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Caracter&iacute;sticas cl&iacute;nicas del virus Lassa.</b></p>     <p>El periodo de incubaci&oacute;n es de 6 a 14 d&iacute;as aproximadamente. La enfermedad tiene un comienzo insidioso, se presenta malestar general, astenia, cefalea, dolor de garganta, dolores musculares, dolores abdominales, p&eacute;rdida del apetito, n&aacute;useas, v&oacute;mitos y diarrea. Con la fiebre aparece somnolencia, visi&oacute;n borrosa, petequias, se presenta faringitis con manchas blancas en el paladar blando, faringe y pilares amigdalinos. La fiebre de Lassa se presenta con signos y s&iacute;ntomas indistinguibles de otras enfermedades febriles como la malaria y de otras fiebres hemorr&aacute;gicas como el &eacute;bola (22). En los casos graves, los pacientes suelen presentar edema facial, derrame pleural, hemorragia bucal, nasal, vaginal o del tracto gastrointestinal e hipotensi&oacute;n. Tambi&eacute;n puede presentarse proteinuria. En las &uacute;ltimas etapas se puede observar choque, convulsiones, temblores, desorientaci&oacute;n y coma. Se produce sordera en el 25% de los pacientes, de los cuales la mitad recuperan la funci&oacute;n auditiva al cabo de uno a tres meses (23).</p>     <p><b>Fiebre hemorr&aacute;gica argentina por el virus Jun&iacute;n. </b>La fiebre hemorr&aacute;gica argentina (fha) fue descrita como una nueva patolog&iacute;a a comienzos de los cincuentay hacia 1958 se report&oacute; como su agente etiol&oacute;gico al virus Jun&iacute;n. El rat&oacute;n de campo <i>Calomys musculinus </i>se ha identificado como el reservorio principal del virus Jun&iacute;n. La fiebre hemorr&aacute;gica argentina es predominante del &aacute;rea rural, afecta a los varones adultos con ocupaciones agr&iacute;colas, en particular en cosechas de ma&iacute;z en un 80%, en la cual de 1.000 casos analizados, el 63% oscilaba entre 20 y 49 a&ntilde;os de edad. La distribuci&oacute;n es geogr&aacute;fica y estacional. La zona endemo-epid&eacute;mica se reconoci&oacute; por primera vez en el noreste de la provincia de Buenos Aires; en 1958 su &aacute;rea se estim&oacute; 16.000 km<sup>2</sup> (24, 25).</p>     <p>Desde ese a&ntilde;o se ha extendido a la zona oeste y norte, incluyendo otros lugares adyacentes de dos provincias, C&oacute;rdoba y Santa Fe. En 1970 el &aacute;rea afectada se estim&oacute; en 80.000 km<sup>2 </sup>y en ella viv&iacute;a una poblaci&oacute;n de 800.000 personas (26). La enfermedad es marcadamente estacional, con brotes a comienzo y a finales de verano (febrero), alcanza un pico en oto&ntilde;o (mayo) y termina a principio del invierno. La distribuci&oacute;n estacional coincide con las labores agr&iacute;colas, especialmente las de ma&iacute;z, y con la afluencia de trabajadores agr&iacute;colas transitorios; adem&aacute;s, simult&aacute;neamente hay un aumento en la poblaci&oacute;n de roedores silvestres (27). Entre 1958 y 1970 se notificaron m&aacute;s de 12.000 casos presuntivos de fiebre hemorr&aacute;gica en la provincia de Buenos Aires y alrededor de 600 casos desde 1964 hasta 1970 en el sudeste de la provincia de C&oacute;rdoba; de los 1.671 casos que fueron notificados, s&oacute;lo 986 probaron mediante confirmaci&oacute;n virol&oacute;gica haber padecido la infecci&oacute;n por el virus Jun&iacute;n.</p>     <p><b>Mecanismo de transmisi&oacute;n del virus Jun&iacute;n.</b></p>     <p>Aunque se desconoce el mecanismo exacto de la transmisi&oacute;n del virus al ser humano, hay indicios de que su principal v&iacute;a de propagaci&oacute;n es por aerosol. Puede ser por el polvo en suspensi&oacute;n en el aire contaminado por excreciones o secreciones de los roedores, o por v&iacute;a oral a trav&eacute;s de la ingesti&oacute;n de alimentos y bebidas contaminadas. Tambi&eacute;n es posible que la enfermedad se adquiera a trav&eacute;s de abrasiones de la piel en el transcurso de las labores agr&iacute;colas durante la manipulaci&oacute;n de materiales contaminados con excretas de roedores (28,29).</p>     <p><b>Caracter&iacute;sticas cl&iacute;nicas del virus Jun&iacute;n. </b></p>     <p>La enfermedad presenta un s&iacute;ndrome que incluye manifestaciones de insuficiencia renal, cardiovascular y participaci&oacute;n hem&aacute;tica; as&iacute; como pronunciadas manifestaciones neurol&oacute;gicas. La enfermedad dura entre 7 y 14 d&iacute;as, es de comienzo insidioso y progresivo, con escalofr&iacute;os, astenia, malestar, dolor de cabeza, dolor retro-ocular, dolor muscular, v&oacute;mito, n&aacute;useas y anorexia. Adem&aacute;s, fiebre con temperaturas mayores de 38&deg;C, petequias en cara, cuello, t&oacute;rax y linfoadenopat&iacute;as (30). En los casos m&aacute;s graves hay alteraciones motoras y psicosensoriales, con lengua seca, hipotensi&oacute;n, oliguria, bradicardia relativa, y en el peor de los casos hemorragias en las enc&iacute;as, cavidades nasales, hematemesis, hematuria y melena. En los casos no mortales hay una marcada diuresis y una r&aacute;pida mejora en los d&iacute;as siguientes, sin embargo, la convalecencia se prolonga. Infecciones cl&iacute;nicamente inaparentes son muy raras (31).</p>     <p><b>Fiebre hemorr&aacute;gica venezolana (Guanarito).</b></p>     <p>La fiebre venezolana tiene una distribuci&oacute;n muy localizada al sur del estado de Portuguesa en Venezuela, y aunque se presentan casos durante todo el a&ntilde;o, parece que existe un pico estacional entre noviembre y enero. Los agricultores son los que tiene mayor riesgo de infecci&oacute;n (32). El virus Guanarito es mantenido en la naturaleza por el <i>Zygo-dontomys brevicauda, </i>rat&oacute;n de ca&ntilde;a de az&uacute;car, en el cual el virus establece una infecci&oacute;n aguda y persistente. La enfermedad afecta principalmente a agricultores de edades entre 14 y 45 a&ntilde;os, y el porcentaje actual de morbi-mortalidad en mujeres y ni&ntilde;os aumenta progresivamente (33). Se ha demostrado la existencia de 9 serotipos diferentes, siendo el 6 y el 9 los mas pat&oacute;genos y letales. Los estados considerados como zona end&eacute;mica son Portuguesa, Barinas y Gu&aacute;rico, mientras los estados de Apure y Cojedes son considerados &aacute;reas de alto riesgo (34).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Mecanismo de transmisi&oacute;n del arenavirus Guanarito. </b></p>     <p>Una caracter&iacute;stica importante de los Arenavirus es que en sus hu&eacute;spedes naturales establecen una infecci&oacute;n cr&oacute;nica de por vida, que resulta en viremia persistente con la eliminaci&oacute;n del virus en forma continua, especialmente por orina, saliva y heces. El Arenavirus Guanarito es transmitido por el roedor <i>Zygodontomys brevicauda, </i>pero adem&aacute;s se ha encontrado que otras especies de roedores predominantes en la regi&oacute;n de los Llanos son susceptibles a la infecci&oacute;n por el virus Guanarito, demostrado por la presencia de anticuerpos en un peque&ntilde;o porcentaje de roedores de especies tales como: <i>Sigmodon alstoni, Rattus rattus, Proechimys guaire </i>y <i>Orizomys fulvences. </i>Por lo tanto, estas especies posiblemente son hu&eacute;spedes finales y tienen muy poca importancia en la transmisi&oacute;n del virus (35).</p>     <p><b>Caracter&iacute;sticas cl&iacute;nicas de la infecci&oacute;n por el virus Guanarito. </b></p>     <p>Se manifiesta con un cuadro febril insidioso con manifestaciones inespec&iacute;ficas, consider&aacute;ndose sospechoso; al tercer d&iacute;a de la evoluci&oacute;n del cuadro cl&iacute;nico el paciente presenta: fiebre, malestar general, cefaleas, artralgia, mialgias, v&oacute;mitos, diarrea, leucopenia y trombocitopenia con valores cercanos a lo normal. A partir del cuarto d&iacute;a aparecen: petequias, equimosis, leucopenia y trombocitopenias acentuadas, gingivorragia y/o epistaxis, dolor abdominal, principalmente en el epigastrio y en el hipocondrio derecho; tambi&eacute;n puede haber distenci&oacute;n abdominal. Se ve afectado el estado neurol&oacute;gico, irritaci&oacute;n, agitaci&oacute;n, agresividad y tambi&eacute;n puede haber temblor fino en las extremidades superiores. En los pacientes que cursan con una evoluci&oacute;n m&aacute;s severa se puede observar: sangrado por el sitio de la venopunci&oacute;n, tos, taquipnea, signos de dificultad respiratoria, hemorragias profusas por orificios naturales, hematemesis, melena, convulsiones t&oacute;nico-cl&oacute;nicas generalizadas,estupor, coma y se puede producir el fallecimiento del paciente (36).</p>     <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/sun/v26n2/v26n2a12-2.jpg"></a></p>     <p><b>Virus Pichind&eacute; de Colombia. </b>Es un virus del Complejo Tacaribe de los Arenavirus, que fue aislado en 1965 a partir de tejidos como h&iacute;gado, bazo y ri&ntilde;&oacute;n del roedor <i>Oryzomys albigularis </i>en un bosque en el valle Pichind&eacute; de Colombia (37). Este Arenavirus produce una infecci&oacute;n persistente en su hu&eacute;sped natural y no es pat&oacute;geno para el hombre. El virus Pichind&eacute; ha servido como modelo para estudiar las caracter&iacute;sticas patol&oacute;gicas y virales de los Arenavirus, el cual se basa en un pasaje adaptado de la cepa Arenavirus del Nuevo Mundo Pichind&eacute; (ADPIC), que es muy virulenta para los conejillos de Indias puros, y produce en ellos caracter&iacute;sticas similares a las fiebres hemorr&aacute;gicas en los humanos. No se ha documentado la actividad de Arenavirus en sus reservorios hu&eacute;spedes naturales, sin embargo, en pa&iacute;ses vecinos suramericanos se ha demostrado la infecci&oacute;n por estos agentes, causantes de las fiebres hemorr&aacute;gicas; es por esto que se justifica investigar Arenavirus aut&oacute;ctonos que permitan desarrollar m&eacute;todos diagn&oacute;sticos diferenciales con otras fiebres hemorr&aacute;gicas de origen desconocido mediante t&eacute;cnicas serol&oacute;gicas y moleculares (38).</p>     <p><b>Diagn&oacute;stico diferencial de las fiebres hemorr&aacute;gicas virales. </b>Puede establecerse utilizando los siguientes criterios: historia epidemiol&oacute;gica, signos y s&iacute;ntomas iniciales y alteraciones hematol&oacute;gicas. Se consideran diagn&oacute;sticos diferenciales otras fiebres hemorr&aacute;gicas, tales como: dengue, paludismo, fiebre amarilla, hepatitis B y C, leptospirosis, fiebre tifoidea, fiebre hemorr&aacute;gica con s&iacute;ndrome renal, hantavirus, mononucleosis infecciosa, ricketsias, borrelia, meningococo, discrasias sangu&iacute;neas, entre otras (40).</p>     <p><b>Diagn&oacute;stico de laboratorio de las infecciones por Arenavirus. </b>En primera instancia se deben realizar t&eacute;cnicas serol&oacute;gicas para la detecci&oacute;n de anticuerpos espec&iacute;ficos clase IgG en muestras de suero recolectadas en la fase convaleciente de la enfermedad. Se puede utilizar la t&eacute;cnica IFI cuantitativa o ELISA, para la detecci&oacute;n de anticuerpos espec&iacute;ficos tipo IgM e IgG. La detecci&oacute;n de IgM o la determinaci&oacute;n de un aumento de cuatro veces en el t&iacute;tulo de IgG son considerados criterios diagn&oacute;sticos de infecci&oacute;n aguda. Los ensayos para la detecci&oacute;n de IgM constituyen una de las herramientas m&aacute;s sensibles para la identificaci&oacute;n de la infecci&oacute;n aguda y son los de mayor especificidad (41). La t&eacute;cnica de neutralizaci&oacute;n por reducci&oacute;n en placas (PRNT) es el m&eacute;todo de elecci&oacute;n para diferenciar las distintas especies de Arenavirus <a href="#f3">(Figura 3</a>). La detecci&oacute;n viral de las muestras puede realizarse mediante cultivo celular o mediante RT-PCR. El aislamiento viral se puede realizar en c&eacute;lulas VERO a partir de sueros y exudados far&iacute;ngeos, obtenidos entre los 3 -10 d&iacute;as posteriores al inicio de la sintomatolog&iacute;a. Los Arenavirus tardan en crecer entre 1 a 10 d&iacute;as, y lo hacen sin producir efecto citop&aacute;tico aparente. El ARN viral puede detectarse mediante RT-PCR de suero, plasma, orina, exudados far&iacute;ngeos y varios tejidos. Esta t&eacute;cnica, adem&aacute;s de permitir la identificaci&oacute;n viral mediante secuenciaci&oacute;n, se prefiere actualmente sobre el cultivo por su mayor seguridad, especificidad y menor costo (42).</p>     <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/sun/v26n2/v26n2a12-3.jpg"></a></p>     <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/sun/v26n2/v26n2a12-4.jpg"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Tratamiento. </b>La ribavirina ha demostrado ser efectiva en algunos estadios de infecciones por virus Lassa en monos <i>Macacus rhesus </i>y seres humanos. La administraci&oacute;n de ribavirina por v&iacute;a intravenosa a pacientes con fiebre de Lassa en los primeros d&iacute;as de la enfermedad reduce el riesgo de morir desde un 55 a 5%. La dosis inicial es de 1 gr., seguida por 1 gr. diario, administrado en cuatro dosis por cuatro d&iacute;as, y luego 0.5 grs. diarios por seis d&iacute;as (43, 44). La ribavirina oral tambi&eacute;n ha sido efectiva pues reduce la tasa de mortalidad en pacientes con esta enfermedad. La ribavirina ha tenido actividad antiviral contra el virus Jun&iacute;n y Guanarito <i>in vitro, </i>as&iacute; como en el tratamiento de pacientes con FHA; recientemente se ha demostrado la efectividad antiviral de esta droga en el tratamiento de uno de los investigadores que se infect&oacute; en el laboratorio cuando trabajaba con el virus Sabi&aacute;. La administraci&oacute;n de ribavirina durante los primeros d&iacute;as de la aparici&oacute;n de los s&iacute;ntomas modific&oacute; el curso y la severidad de la enfermedad (44,45).</p>     <p><b>Vacunas. </b>La &uacute;nica vacuna existente para los Arenavirus causantes de fiebres hemorr&aacute;gicas es contra el virus Jun&iacute;n (FHA), cuya eficacia ha sido demostrada al disminuir dr&aacute;sticamente la mortalidad (46,47). La vacuna denominada Candid # 1&trade; es segura inmunog&eacute;nicamente y su eficacia en hombres de 15 a 65 a&ntilde;os de edad fue del 95.5%. La vacunaci&oacute;n frente a FHA est&aacute; regulada como medida de protecci&oacute;n para viajeros internacionales. Sin embargo, los ni&ntilde;os menores de 6 meses, mujeres embarazadas e inmunocomprometidos, as&iacute; como las personas que presenten alergia a las prote&iacute;nas del huevo o la gelatina, pueden ser excluidos de la vacunaci&oacute;n. La vacuna debe ser administrada al menos diez d&iacute;as antes del viaje y tiene una validez de 10 a&ntilde;os. Es de se&ntilde;alar que se han descrito casos de reacciones adversas debidas a la vacunaci&oacute;n, trat&aacute;ndose generalmente de reacciones leves, aunque se han descrito casos de reacciones graves a la vacunaci&oacute;n, present&aacute;ndose bien como enfermedad neurotr&oacute;pica o como enfermedad viscerotr&oacute;pica (48, 49).</p>     <p><b>Plasmaterapia. </b>Otra alternativa de tratamiento de la FHA es la transfusi&oacute;n de plasma con alto contenido de anticuerpos espec&iacute;ficos contra el virus Jun&iacute;n. Este procedimiento puede reducir la mortalidad en un 15-30% cuando se administra tempranamente, aunque presenta los riesgos propios de los hemoderivados y el 10% de los pacientes tratados pueden desarrollar el s&iacute;ndrome neurol&oacute;gico tard&iacute;o (50).</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>CONCLUSIONES</b></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>Las fiebres hemorr&aacute;gicas producidas por Arenavirus cursan con caracter&iacute;sticas cl&iacute;nicas similares, excepto la meningitis as&eacute;ptica producida por el virus de la coriomeningitis linfoc&iacute;tica, el diagn&oacute;stico de estas fiebres es inespec&iacute;fico si se tiene en cuenta que algunas bacterias intracelulares como la ricketsia, leptospira, fiebres parasitarias como malaria y algunas otras virales como dengue, de alta endemicidad en el Caribe colombiano, presentan s&iacute;ntomas y signos cl&iacute;nicos que se confunden con los de las fiebres hemorr&aacute;gicas producidas por los Arenavirus. En Colombia se aisl&oacute; el virus Pichind&eacute; del roedor reservorio natural <i>Oryzomys albigularis, </i>el cual no es pat&oacute;geno para los humanos, pero si tenemos en cuenta que en pa&iacute;ses suramericanos vecinos al nuestro, como Venezuela, se aislaron cepas pat&oacute;genas para humanos del virus Guanarito, en Bolivia el virus Machupo, en Argentina el virus Jun&iacute;n altamente pat&oacute;geno, es necesario que en Colombia se realicen investigaciones de ecolog&iacute;a medica, diagn&oacute;sticos serol&oacute;gicos y moleculares y se avance en programas de promoci&oacute;n, prevenci&oacute;n y en el posible desarrollo de vacunas.</p> </font>    <p><font size="2" face="Verdana"><b>Conflicto de inter&eacute;s: </b>Ninguno. <b>Financiaci&oacute;n: </b>Universidad de Cordoba.</font></p> <font face="Verdana" size="2"><hr> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>REFERENCIAS</b></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <!-- ref --><p>1.&nbsp;Crballal G, Videla CM, Merani MS. Epidemiology of Argentine hemorrhagic fever. Eur J Epidemiol 1988; 4( 2):259-274.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-5552201000020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2.&nbsp;Cummins D. Arenaviral Hemorrhagic fevers. Blood Rev 1991; 5(3):129-37.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-5552201000020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3.&nbsp;Peter JS. Arenaviridae: The viruses and their replication. In: Fields virology BN. Knipe DM, Howley PM et al, Eds. Philadelphia: Lippinccott- Raven publishers; 1996. p.1505-1519.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-5552201000020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4.&nbsp;Peter CJ. Hemorrhagic Fevers: How they wax and wane. In: Scheld WN, Armstrong D, Hughes JM. In Emerging infections. Washintong D.C.: Eds ASM Press; 1998. p.15-25.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-5552201000020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5.&nbsp;Tesh RB. Viral hemorrhagic fevers of South America. 2002; 22(3): 287-295.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-5552201000020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.&nbsp;Ged&uacute;ndez MI, LLed&oacute; L. Infecci&oacute;n por hantavirus y otros virus transmitidos por roedores. Enferm Infecc Microbiol Clin 2005; 23 (8):492-500.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-5552201000020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7.&nbsp;Ambrosio AM, Feuillade MR, Gamboa GS, Maiztegui JI. Prevalence of lymphocytic choriomeningitis virus infection in a human population of Argentina. Am J Trop Med Hyg 1994; 50(3):381-386.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-5552201000020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8.&nbsp;Drosten C, Kummerer BM, Schmitz H, Gunter S. Molecular diagnostics of viral hemorrhagic fevers. Antiviral Res 2003; 57:61-87.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-5552201000020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9.&nbsp;Maiztegui JI, Sabattini Ms, Barrera Oro JG. Actividad del virus de la coriomeningitis linfocitaria (lcm) en el &aacute;rea end&eacute;mica de la fiebre hemorr&aacute;gica argentina (fha).I. Estudios serol&oacute;gicos en roedores capturados en la ciudad de Pergamino. Medicina (Buenos Aires) 1972; 32,131-137.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-5552201000020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10.&nbsp;Riera L, Castillo E, Saavedra MC, Priotto J, Sottosanti J, me Polop J, Ambrosio AM. Sero-logical study of the lymphochoriomeningitis virus (lcmv) in an inner city of Argentina. 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The Hamster as a Secondary Reservoir Host of Lymphocytic Choriomeningitis Virus. J Hyg 1976; 76 (2): 299-306.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-5552201000020001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13.&nbsp;Armstrong D, Fortner JG, Rowe WP, Parker JC. Meningitis due to lymphocytic choriome-ningitis virus endemic in a hamster colony. J Am Med Assoc 1969; 209:265-267.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-5552201000020001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14.&nbsp;Farmer TW, Haneway CA. Infections with the virus lymphocytic choriomeningitis. 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Clin Infect Dis 2001; 3(3): 370-374.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-5552201000020001200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17.&nbsp;Colebunders R, Mariege JL, Coche JC, Pirenne B, Kempinaire S, Hantson P et al. A Belgian traveler who acquired yellow fever in the Gambia. Clin infect Dis 2002; 35:113-116.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-5552201000020001200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18.&nbsp;Mahdy MS, Chiang W, McLaughlin B, Derksen K, Truxton BH, Neg K. Lassa fever: The first confirmed case imported into Canada. Can Dis Wkly Rep 1989;15:193-198.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-5552201000020001200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19.&nbsp;Ogbu O, Ajuluchukwu E, Uneke CJ. Lassa fever in west African sub-region: an overview. J Vector Borne Dis 2007; 44(1):1-11.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-5552201000020001200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20.&nbsp;Walker DH, McCormick JB, Johnson KM, Webb PA, Komba-Kono G, Elliott LH, Gardner JJ. Pathologic and virologic study of fatal Lassa fever in man. Am J Pathol 1982 June; 107(3): 349 -356.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-5552201000020001200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21.&nbsp;Carey DE, Kemp GE, White HA, Pinneo L, Addy RF, Fom ALMD, Stroh G, Casals J, Henderson BE. Lassa fever. Epidemiological aspects of the 1970 epidemic Jos Nigeria. Trans Roy Soc Trop Med Hyg 1972; 66(3): 402 - 408.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-5552201000020001200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22.&nbsp;Banatvala JB. Lassa fever. Br Med J. 1986; 293(6557): 1256-1257.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-5552201000020001200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23.&nbsp;McCormick JB, Fisher-Hoch SP. Lassa fever. Curr Top Microbiol Immunol. 2002; 262:75-109.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-5552201000020001200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24.&nbsp;McCormick J. B. Clinical, epidemiologic, and therapeutic aspects of Lassa fever. Med Microbiol Immunol (Berl) 1986; 175:153-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-5552201000020001200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25.&nbsp;Frame JD, Baldwin JM, Gocke DJ, Troup JM. Lassa fever, a new virus disease of man from west Africa. I. Clinical description and pathological findings. Am J Trop Med Hyg1970; 19: 670-676.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-5552201000020001200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26.&nbsp;Peters CJ. Emerging infections: lessons from the viral hemorrhagic fevers. Trans Am Clin Climatol Assoc 2006; 117:189-96.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-5552201000020001200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27.&nbsp;Mills JN, Ellis BA, Childs JE, McKee KT Jr, Maiztegui JI, Peters CJ, Ksiazek TG, Jarling PB. Prevalence of infection with Junin virus in rodent populations in the epidemic area of Argentine hemorrhagic fever. Am J Trop Med Hyg 1994; 51(5):554-62.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-5552201000020001200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28.&nbsp;Casals J. Arenaviruses. The Yale Journal of Biology and Medicine 1975; 48,115-140.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-5552201000020001200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29.&nbsp;Mills JN, Ellis BA, McKee KT Jr, Calderon GE, Maiztegui JI, Nelson GO, Ksiazek TG, Peters CJ, Childs JE. A longitudinal study of Junin virus activity in the rodent reservoir of Argentine hemorrhagic fever. Am J Trop Med Hyg 1992; 47(6): 749-63.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-5552201000020001200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30.&nbsp;Mills JN, Ellis BA, McKee KT Jr, Ksiazek TG, Oro JG, Maiztegui JI, Calderon GE, Peters CJ, Childs JE. Junin virus activity in rodents from endemic and nonendemic loci in central Argentina. Am J Trop Med Hyg 1991; 44 (6): 589-597.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-5552201000020001200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31.&nbsp;Charrel RN, de Lamballerie X. Arenaviruses other than Lassa virus. Antiviral Res 2003 Jan; 57(1-2):89-100.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-5552201000020001200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32.&nbsp;Tesh RB, Wilson ML, Salas R, De Manzione NM, Tovar D, Ksiazek TG, Peters CJ. Field studies on the epidemiology of Venezuelan hemorrhagic fever: implication of the cotton rat Sigmodon alstoni as the probable rodent reservoir. Am J Trop Med Hyg 1993; 49(2):227-35.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-5552201000020001200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Weaver S, Salas RA, de Manzione N, Fulhorst CF, Duno G, Utrera A. Mills JN, Ksiasek TG, Tovar D, Tesh RB. Guanarito virus( Arenaviridae) isolates from endemic and outlying localities in Venezuela sequence. Comparisons among and within strains isolated from Venezuela hemorrhagic Fever patients and rodents. Virology 2000; 266(1):189-195.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-5552201000020001200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Salas RA, De Manzione N, Tesh R. Venezuelan hemorrhagic fever: eight years of observation. Acta Cient&iacute;fica Venozolana 1998; 49 (Suppl 1):46-51.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-5552201000020001200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Manzione N, Salas RA, Paredes H, Godoy O, Rojas L, Araoz F, Fulhorst CF, Ksiazek TG, Mills JN, Ellis BA, Peters CJ, Tesh RB. Venezuelan hemorrhagic fever: clinical and epidemiological studies of 165 cases. Clin Infect Dis 1998; 26 (2): 308-313.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-5552201000020001200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Kenyon RH, Green DE, Maiztegui JI, Peters CJ. Viral strain dependent differences in experimental Argentine hemorrhagic fever (Jun&iacute;n virus) infection of guinea pigs. Intervirology 1988; 29(3):133-143.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-5552201000020001200036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Vezza AC, Bishop DH. Recombination between temperature- sensitives mutans of arenavirus pichinde. J Virology 1977; 24 (2): 712-715.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-5552201000020001200037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Aronson JF, Herzog NK, Jerelles TR. Pathological and Virological Features of Arenavirus Disease in Guinea Pigs 1994; 145 (1): 228-235.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-5552201000020001200038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39. Albretch T, Almond J, Alfa JM, Alton GG, Aly R, Asher D et al. Arenaviruses. Baron S, editor. Medical Microbiology. 4&ordf;ed. Galveston Texas; 1996.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-5552201000020001200039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40. Domingo C, Gascon Bustrenga J. Dengue and other hemorrhagic viral fevers. Enferm Infecc Microbiol Clin 2005; 23(10): 615-26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-5552201000020001200040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>41. Gonzalez JP, Emonet S, de Lamballerie X, Charrel R. Arenaviruses. Curr Top Microbiol Immunol 2007;315:253-88.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-5552201000020001200041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>42.&nbsp;Drosten C, Kummerer BM, Schmitz H, Gunter S. Molecular diagnostics of viral hemorrhagic fevers. Antiviral Res 2003; 57:61-87.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-5552201000020001200042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>43.&nbsp;Enria DA, Briggiler AM, S&aacute;nchez Z. Treatment of Argentine hemorrhagic fever. Antiviral Res 2008; 78(1): 132-139.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-5552201000020001200043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>44.&nbsp;McCormick JB, King IJ, Webb PA, Scribner C L,Craven R BJhonson K M et al. Lassa fever: effective therapy with rivabrin. N Engl J Med 1986; 314: 20-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-5552201000020001200044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>45.&nbsp;Jahrling PB, Hesse RA, Eddy GA, Johnson KM et al. Lassa virus infection of rhesus monkeys: pathogenesis and treatment with ribavirin. J Infect Dis 1980; 141:580-589.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-5552201000020001200045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>46.&nbsp;Barrera Oro JG, McKee KT Jr. Toward a vaccine against Argentine hemorrhagic fever. Bull PanAm Health Organ 1991;25(2):118-126.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-5552201000020001200046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>47.&nbsp;Maistegui JI, McKee KT, Barrera Oro JG, Harrison L H, Gibbs Ph, feuillade MR, Enria D A, Briggiler A M, Levis SC, Ambrosio A M, Halsey N A, Peters CJ et al. Protective efficacy of a live attenuated vaccine against Argentine hemorrhagic fever. AHF Study Group. J Infect Dis 1998; 177 (2): 277-283.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-5552201000020001200047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>48.&nbsp;Feuillade M R, Enria D A. An&aacute;lisis de la utilidad de la vacuna Candid 1 en la prevenci&oacute;n de la fiebre hemorr&aacute;gica argentina en ni&ntilde;os. Rev Panam Saude P&uacute;blica 2005;18(2):100-106.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-5552201000020001200048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>49.&nbsp;Ambrosio A M, Saavedra M, Riera L, Fassio RM. La producci&oacute;n nacional de vacuna a virus Jun&iacute;n atenuado (Candid#1) anti-fiebre hemorr&aacute;gica argentina. Acta Bioquim ClinLatinoam 2006; 40 (1): 5-17.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-5552201000020001200049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>50.&nbsp;Enria D, Briggiler AM, Fernandez NJ, Levis SC, Maiztegui JI. Importance of dose neutralizing antibodies in treatment of Argentine hemorrhagic fever with immune plasma. Lancet 1984; 2:255-256.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-5552201000020001200050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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