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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Comparación de los métodos de inmunoensayo enzimático automatizado (VIDAS) y PCR para la detección de Salmonella spp. en expendios de la ciudad de Santa Marta (Colombia)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objectives: To compare the methods of the automated Immunodiagnostic Assay System and the Polymerase Chain Reaction (PCR) to detect Salmonella spp. In food sold in the city of Santa Marta -Colombia. Materials and methods: The standardization of the PCR for detecting Salmonella spp was previously reported by us within 12 hours. The determinations were carried out with the help of the Public Health Laboratory of Magdalena, Colombia. 65 samples of food were studied: beef 14(21.5%), sausages 18(27.7%), chicken 7(10.8%), fish 3(4.6%), flours 13(20%), dairy products 5(7.7%) sauces 4(6.2%) y salads 1(1.5%) in the city of Santa Marta - Colombia between September and November 2010. A microbiological analysis was done on the 65 samples to determine Salmonella spp. in the Public Health Laboratory of Magdalena according to protocol of automated Vitek Immunodiagnostic Assay System. An aliquot of no selective pre-enrichment was sent to the molecular biology laboratory of Cooperativa de Colombia University to be analyzed for PCR. Results: The results show that the food analyzed in the public health laboratory presented Salmonella spp. only in sausages 5/65 (7.7%), while these samples analyzed using PCR showed Salmonella spp. in 36/65 (55.4%). Conclusions: The results indicate that PCR can be applied to get faster and better results to do regular epidemiological studies.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Salmonella]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[vigilancia epidemiológica]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[Epidemiological Surveillance]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>Art&iacute;culo original / <i>ORIGINAL ARTICLE</i></p>  <font size="4">    <p align="center"><b>Comparaci&oacute;n de los m&eacute;todos de inmunoensayo enzim&aacute;tico automatizado (VIDAS) y PCR para la detecci&oacute;n de <i>Salmonella spp. </i>en expendios de la ciudad de Santa Marta (Colombia)</b></p></font> <font size="3">    <p align="center">Comparison between the Vitek immunodiagnostic Assay System and PCR for the detection of <i>Salmonella spp. </i>in foods</p></font>     <p>Libardo Acosta<a name="n1"></a><a href="#n_1"><sup>1</sup></a>, Jair Pinedo<a name="n2"></a><a href="#n_2"><sup>2</sup></a>, Enio Hern&aacute;ndez<a name="n3"></a><a href="#n_3"><sup>3</sup></a>, Jos&eacute; Villarreal<a name="n4"></a><a href="#n_4"><sup>4</sup></a></p>     <p><b>Correspondencia: </b>Universidad Cooperativa de Colombia, Programa de Medicina. Troncal del Caribe, km1, v&iacute;a Mamatoco. Santa Marta (Magdalena). <a href="mailto:joseluisvillarrealcamacho@hotmail.com">joseluisvillarrealcamacho@hotmail.com</a></p>     <p><b>Fecha de recepci&oacute;n:</b> 21 de marzo de 2013    <br> <b>Fecha de aceptaci&oacute;n:</b> 17 de mayo de 2013</p> <hr>     <p><b>Resumen</b></p>     <p><i><b>Objetivo:</b> comparar los m&eacute;todos de inmunoensayo enzim&aacute;tico automatizado vidas, (Vitek Immunodiagnostic Assay System), y el an&aacute;lisis molecular por Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa (pcr) para detectar Salmonella spp en expendios de la ciudad de Santa Marta (Colombia).</i></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Materiales y m&eacute;todos: </i></b><i>Previamente se report&oacute; la estandarizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de pcr para la detecci&oacute;n de Salmonella spp. en un lapso de 12 horas. En colaboraci&oacute;n con el Labo ratorio de Salud P&uacute;blica del departamento del Magdalena se procedi&oacute; a tomar un total de 65 muestras de alimentos para an&aacute;lisis de vigilancia rutinaria, discriminados as&iacute;: carne de res: 14 (21.5 %), embutidos: 18 (27.7 %), pollo: 7(10.8 %), pescado: 3(4.6 %), harinas: 13 (20 %), l&aacute;cteos: 5 (7.7 %) salsas: 4(6.2 %) y ensalada: 1(1.5 %), en la ciudad de Santa Marta entre septiembre y noviembre de 2010. Las 65 muestras fueron sometidas a an&aacute;lisis microbiol&oacute;gico para la determinaci&oacute;n de Salmonella spp. en el Laboratorio de Salud P&uacute;blica del departamento del Magdalena siguiendo el protocolo del vidas. Una al&iacute;cuota de 1 mL del preenriquecimiento no selectivo fue enviada refrigerada al laboratorio de biolog&iacute;a molecular de la Universidad Cooperativa de Colombia para ser analizada por pcr.</i></p>     <p><i><b>Resultados: </b>Los resultados muestran que los alimentos analizados en el Laboratorio de Salud P&uacute;blica del departamento del Magdalena con vidas presentaron Salmonella spp. &uacute;nicamente en c&aacute;rnicos: 5/65 (7.7 %), mientras que esas mismas muestras analizadas por pcr mostraban la presencia de Salmonella spp. en 36/65 (55.4 %).</i></p>      <p><b><i>Conclusiones: </i></b><i>Los resultados indican que la pcr puede ser aplicada para realizar vigilancia epidemiol&oacute;gica y obtener resultados cualitativos confiables en menor tiempo.</i></p>     <p><b>Palabras clave: </b><i>Salmonella, </i>pcr, vigilancia epidemiol&oacute;gica.</p> <hr>     <p><b>Abstract</b></p>     <p><i><b>Objectives:</b> To compare the methods of the automated Immunodiagnostic Assay System and the Polymerase Chain Reaction (PCR) to detect Salmonella spp. In food sold in the city of Santa Marta -Colombia. </i></p>     <p><i><b>Materials and methods:</b> The standardization of the PCR for detecting Salmonella spp was previously reported by us within 12 hours. The determinations were carried out with the help of the Public Health Laboratory of Magdalena, Colombia. 65 samples of food were studied: beef 14(21.5%), sausages 18(27.7%), chicken 7(10.8%), fish 3(4.6%), flours 13(20%), dairy products 5(7.7%) sauces 4(6.2%) y salads 1(1.5%) in the city of Santa Marta - Colombia between September and November 2010. A microbiological analysis was done on the 65 samples to determine Salmonella spp. in the Public Health Laboratory of Magdalena according to protocol of automated Vitek Immunodiagnostic Assay System. An aliquot of no selective pre-enrichment was sent to the molecular biology laboratory of Cooperativa de Colombia University to be analyzed for PCR. </i></p>     <p><b><i>Results: </i></b><i>The results show that the food analyzed in the public health laboratory presented Salmonella spp. only in sausages 5/65 (7.7%), while these samples analyzed using PCR showed Salmonella spp. in 36/65 (55.4%).</i></p>     <p><b><i>Conclusions: </i></b><i>The results indicate that PCR can be applied to get faster and better results to do regular epidemiological studies.</i></p>     <p><b>Key words: </b>Salmonella, PCR Epidemiological Surveillance.</p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Introducci&oacute;n</b></p>     <p>De <i>Salmonella </i>se lleva a cabo en dos medios diferenciales usados simult&aacute;neamente. La Association of Official Analytical Chemist (AOAC) (4) describe los pasos que se deben seguir para obtener buenos resultados, los cuales pueden demorar entre 4 a 5 d&iacute;as. Sin embargo, la recuperaci&oacute;n de <i>Salmonella spp. </i>se dificulta porque: primero, no es detectable en alimentos que tienen un bajo n&uacute;mero de c&eacute;lulas (5), y segundo, los m&eacute;todos tradicionales para la recuperaci&oacute;n del microorganismo, aislamiento en medios selectivos, posterior identificaci&oacute;n bioqu&iacute;mica y caracterizaci&oacute;n serol&oacute;gica tienen baja especificidad, sensibilidad y consumen mucho tiempo. La implementaci&oacute;n de t&eacute;cnicas como la (PCR), la hibridaci&oacute;n, el uso de biochips y de enzimas de restricci&oacute;n, entre otras, ha facilitado el diagn&oacute;stico microbiol&oacute;gico molecu-</p>     <p>La <i>Salmonella </i>es uno de los principales agentes causantes de intoxicaciones alimentarias a nivel mundial (1). Dicha bacteria es cada vez m&aacute;s resistente a los antibi&oacute;ticos comunes, se multiplica a bajas temperaturas y responde efectivamente a los cambios del medio (2) y puede colonizar a la mayor&iacute;a de los animales, incluyendo aves, reptiles, ganado, roedores y el ser humano (3). Los m&eacute;todos microbiol&oacute;gicos tradicionales para la detecci&oacute;n de <i>Salmonella </i>no est&aacute;n encaminados al conteo de esta bacteria, debido a que es considerada una t&eacute;cnica cuyo resultado se expresa cualitativamente, determinando su presencia o ausencia en diferentes matrices, pues la identificaci&oacute;n o confirmaci&oacute;n de las colonias presuntivas larvas de pat&oacute;genos en alimentos. Actualmente se ha extendido la implementaci&oacute;n de estas nuevas tecnolog&iacute;as despu&eacute;s de una etapa previa de enriquecimiento de la muestra, lo cual ha demostrado una alta probabilidad de detectar un bajo n&uacute;mero de c&eacute;lulas (6).</p>     <p>El diagn&oacute;stico serol&oacute;gico es importante desde el punto de vista epidemiol&oacute;gico, debido a que permite distinguir o caracterizar las serovariedades prevalentes en distintas zonas geogr&aacute;ficas. Se fundamenta en la detecci&oacute;n de los ant&iacute;genos som&aacute;ticos de superficie y ant&iacute;genos flagelares, diferentes en cada serovariedad por el uso de anticuerpos que se unen de manera espec&iacute;fica a un ant&iacute;geno determinado. El VIDAS (Vitek Immunodiagnostic Assay System) detecta secuencial y autom&aacute;ticamente a Salmonella, bas&aacute;ndose en la especificidad y afinidad de un anticuerpo monoclonal, fijado a una fase estacionaria, por el ant&iacute;geno som&aacute;tico (O) y ant&iacute;geno flagelar (H) de este microorganismo. El 4-methyl-umbelliferyl phosphate es convertido por el conjugado enzim&aacute;tico en un producto fluorescente: 4-methyl-umbelliferone. La intensidad de la fluorescencia emitida es le&iacute;da y expresada como unidades de fluorescencia relativa (Rf). Valores por encina de 0.23 Rf son considerados como presuntivamente positivos para Salmonella (7).</p>     <p>El objetivo de este estudio fue comparar los m&eacute;todos de inmunoensayo enzim&aacute;tico automatizado y an&aacute;lisis molecular por PCR para la detecci&oacute;n de <i>Salmonella spp. </i>en expendios de la ciudad de Santa Marta.</p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>     <p><b>Recolecci&oacute;n de la muestra</b></p>     <p>En colaboraci&oacute;n con el Laboratorio de Salud P&uacute;blica del departamento del Magdalena se procedi&oacute; a tomar un total de 65 muestras de alimentos para an&aacute;lisis de vigilancia rutinaria, discriminados as&iacute;: carne de res: 14 (21.5 %), embutidos: 18 (27.7 %), pollo: 7 (10.8 %), pescado: 3 (4.6 %), harinas: 13 (20 %), l&aacute;cteos: 5 (7.7 %), salsas: 4 (6.2 %) y ensalada: 1 (1.5 %), en la ciudad de Santa Marta entre septiembre y noviembre de 2010.</p>     <p><b>Detecci&oacute;n de <i>Salmonella sp. </i>en alimentos</b></p>     <p><b><i>M&eacute;todo de inmunoensayo enzim&aacute;tico automatizado</i></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las 65 muestras fueron sometidas a an&aacute;lisis microbiol&oacute;gico para la determinaci&oacute;n de <i>Salmonella spp. </i>en el Laboratorio de Salud P&uacute;blica del departamento del Magdalena. 25 mL o 25 g de muestra fueron inoculados a 225 mL de agua peptonada e incubada a 37&deg;C durante 18 - 24 horas, siguiendo el protocolo del m&eacute;todo de inmunoensayo enzim&aacute;tico automatizado (VIDAS) (7). Una al&iacute;cuota de 1 mL del preenriquecimiento fue enviada refrigerada al laboratorio de biolog&iacute;a molecular de la Universidad Cooperativa de Colombia para ser analizada por PCR (figura 1).</p>     <p><b>An&aacute;lisis molecular <i>Extracci&oacute;n de ADN</i></b></p>     <p>Se aplic&oacute; el m&eacute;todo de fenol: cloroformo: alcohol isoam&iacute;lico; para esto se resuspendi&oacute; la biomasa en 600 &#956;L de tamp&oacute;n TE 1X m&aacute;s SDS a una concentraci&oacute;n final de 0.5 % P/V y 2 mg/mL de lisozima A. Esta mezcla se incub&oacute; durante 30 minutos a 37&deg;C. Para eliminar los p&eacute;ptidos y l&iacute;pidos residuales se adicionaron 80 &#956;L de una soluci&oacute;n NaCl 5M m&aacute;s 100 &#956;L de acetato de amonio 3 M y se incub&oacute; nuevamente durante 10 minutos a 65&deg;C. La suspensi&oacute;n resultante se trat&oacute; con una mezcla de fenol: cloroformo: alcohol isoam&iacute;lico 25:24:1. Una vez separadas las fases mediante centrifugaci&oacute;n, la fase acuosa fue tratada con etanol absoluto y el precipitado (ADN) fue lavado con etanol al 70 % V/V, secado a 56&deg;C por una hora y resuspendido en 20 uL de agua (8, 9).</p>     <p><b><i>Desarrollo de la PCR</i></b></p>     <p>Se amplific&oacute; una regi&oacute;n del gen <i>InvA </i>de <i>Salmonella </i>de 284 pb con los oligonucle&oacute;tidos 139 (5' GTGAAATTATCGCCACGTTCGGGCAA 3') y 141 (5' TCATCGCACCGTCAAAGGAACC 3') (10). La PCR se llev&oacute; a cabo en un volumen final de 20 &#956;L, que conten&iacute;a tampon para PCR 1X (20 mM de Tris-HCl &#91;pH 8.4&#93; 50 mM de KCl), MgCl<sub>2</sub> (1 mM, 1.5 mM, 2 mM y 2.5 mM), dNTP 0.2 mM, 0.5 &#956;M de cada oligonucle&oacute;tido, 0.75 U de GoTaq ADN pol. (Promega&reg;, Madison WI 53711, USA), m&aacute;s 5 uL de ADN o muestra. El blanco conten&iacute;a la misma mezcla, excepto la muestra de ADN; como control positivo se emple&oacute; ADN de cepas puras de <i>Salmonella </i>ent&eacute;rica serovar <i>typhimurium </i>y como control negativo el ADN de <i>Klebsiella pneumoniae. </i>Los controles fueron incluidos en todos los experimentos. Se emple&oacute; un termociclador TC-3000 (Techne Inc. 3 Terri Lane Suite 10 Burlington NJ 08016 USA), programado de la siguiente manera: una desnaturalizaci&oacute;n inicial de 2' a 95&deg;C, seguidos de 30 ciclos compuestos por 1' a 95&deg;C, 1' a 59.9&deg;C, 1' a 72&deg;C y un paso final de extensi&oacute;n de 5' a 72&deg;C. 10 uL de cada producto de PCR y 5 uL del marcador de peso molecular HyperLadder IV<sup>TM</sup> (Bioline, USA Inc.) fueron cargados en gel de agarosa al 1 % durante 1.5 horas a 60 V, tincionado con bromuro de etidio a una concentraci&oacute;n final de 0.5 &#956;g/mL y fotografiado sobre iluminaci&oacute;n UV (11).</p>     <p><b>Resultados</b></p>     <p>Un total de 65 muestras de alimentos fueron tomadas en la ciudad de Santa Marta entre septiembre y noviembre de 2010, en colaboraci&oacute;n con el Laboratorio de Salud P&uacute;blica del departamento del Magdalena. Las muestras analizadas con el m&eacute;todo de inmunoensayo enzim&aacute;tico automatizado en dicho laboratorio presentaron <i>Salmonella sp. </i>&uacute;nicamente en el grupo de c&aacute;rnicos: 5 (7.7 %), los dem&aacute;s grupos de alimentos no presentaban <i>Salmonella sp. </i>(92.3 %).</p>     <p>Sin embargo, esas mismas muestras analizadas por PCR mostraban la presencia de <i>Salmonella sp. </i>en 36(55.4 %) diferentes tipos de alimentos: carne de res: 8 (12.3 %), embutidos: 10 (15.4 %), pollo: 4(6.2 %), pescado: 2 (3.1 %), harinas: 6 (9.2 %), l&aacute;cteos: 4(6.2 %), salsas: 1(1.5 %) y ensaladas: 1(1.5 %), como se observa en la <a href="img/revistas/sun/v29n2/v29n2a04f2.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>.</p>     <p><a href="img/revistas/sun/v29n2/v29n2a04f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>    <br> <a href="img/revistas/sun/v29n2/v29n2a04f2.jpg" target="_blank">Tabla 1</a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Discusi&oacute;n</b></p>     <p>Numerosas t&eacute;cnicas moleculares, como la hibridaci&oacute;n con sondas, el uso de biochips, enzimas de restricci&oacute;n y PCR, han sido aplicadas para la detecci&oacute;n y diagn&oacute;stico molecular de pat&oacute;genos como <i>Salmonella spp. </i>en alimentos. La m&aacute;s utilizada es la PCR y se ha evaluado la selectividad (12), la especificidad y la sensibilidad de esta frente a la prueba microbiol&oacute;gica, la cual es considerada como la <i>prueba de oro. </i>Entre septiembre y noviembre de 2010 se analizaron en Santa Marta 65 muestras de alimentos, de los cuales 36 (55.4 %) mostraban amplificaci&oacute;n de una banda de 284 pb correspondientes al gen <i>InvA, </i>lo cual indica la presencia de <i>Salmonella spp. </i>en carne de res: 8(12.3 %), embutidos: 10(15.4 %), pollo: 4(6.2 %) y pescado: 2(3.1 %), lo que indica que <i>Salmonella </i>se encuentra con mayor frecuencia en los c&aacute;rnicos, los cuales representaban el 64.6 % del total de las muestras analizadas.</p>     <p>En este trabajo tambi&eacute;n se analizaron varios grupos de alimentos, como harinas: 13(20 %), l&aacute;cteos: 5(7.7 %), salsas: 4(6.2 %) y ensaladas: 1(1.5 %), que representaban el 35.4 % de las muestras analizadas, y se encontr&oacute; <i>Salmonella </i>en 6 (9.2 %), 4(6.2 %), 1(1.5 %) y 1(1.5 %), respectivamente (<a href="img/revistas/sun/v29n2/v29n2a04f2.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>).</p>     <p>Los primeros estudios para la detecci&oacute;n molecular de <i>Salmonella, </i>amplificando el gen <i>invA, </i>fueron realizados por Gal&aacute;n et al. en 1991 (13); desde entonces esta t&eacute;cnica ya se encuentra optimizada y estandarizada en pa&iacute;ses como Suecia (14), Sur&aacute;frica (15) y Brasil (16).</p>     <p>Al evaluar las 65 muestras analizadas con el m&eacute;todo de inmunoensayo enzim&aacute;tico automatizado en el Laboratorio de Salud P&uacute;blica del departamento del Magdalena presentaron <i>Salmonella spp. </i>&uacute;nicamente c&aacute;rnicos: 5 (7.7 %), conformados por 3 de 14 muestras de carne de res (4.6 %) y 2 de 7 muestras de pollo (3.1 %), mientras que esas mismas muestras analizadas por PCR mostraban la presencia de <i>Salmonella spp. </i>en 8 de 14 para un 12.3 % y 4 de 14 para un 6.2 %, respectivamente.</p>     <p>Estos resultados pueden ser explicados por que el m&eacute;todo molecular es capaz de detectar c&eacute;lulas viables y c&eacute;lulas injuriadas o no cultivables mediante la amplificaci&oacute;n de segmentos de su genoma (17), mientras que el m&eacute;todo de inmunoensayo enzim&aacute;tico automatizado est&aacute; basado en la especificidad y afinidad de un anticuerpo monoclonal, por el ant&iacute;geno som&aacute;tico (O) y ant&iacute;geno flagelar (H) de microorganismos viables. Otra desventaja del m&eacute;todo de inmunoensayo enzim&aacute;tico automatizado (VIDAS SLM<sup>TM</sup>) consiste en que los resultados positivos para <i>Salmonella </i>son presuntivos y necesitan ser confirmados por aislamiento e identificaci&oacute;n en medios no selectivos y posterior siembra en cultivos selectivos seg&uacute;n la metodolog&iacute;a microbiol&oacute;gica tradicional, debido a que tiene la capacidad de detectar <i>Salmonella spp. </i>en alimentos bas&aacute;ndose en la especificidad y afinidad de un anticuerpo monoclonal, por el ant&iacute;geno som&aacute;tico (O) y ant&iacute;geno flagelar (H) de este microorganismo.</p>     <p>Con el fin de mejorar los procesos de diagn&oacute;stico molecular para detectar <i>Salmonella spp. </i>por la t&eacute;cnica de PCR, o sus variantes, como la PCR m&uacute;ltiple (18, 19, 20) y la PCR en Tiempo Real (qPCR) (21), esta se ha combinado con otros m&eacute;todos, como la separaci&oacute;n inmunomagn&eacute;tica utilizando anticuerpos (22) o sondas fluorescentes (23, 24). Actualmente se ha extendido la implementa-ci&oacute;n de estas tecnolog&iacute;as para el diagn&oacute;stico de <i>Salmonella spp. </i>en alimentos, realizando antes de cada ensayo una etapa de enriquecimiento no selectivo de la muestra y una etapa de enriquecimiento selectivo en los medios Rappaport-Vassiliadis, BGA o XLD, que buscan incrementar la confiabilidad de sus resultados (16, 25) y demuestran una alta probabilidad de detectar un bajo n&uacute;mero de c&eacute;lulas. En este estudio se amplific&oacute; una banda de 284 pb, que corresponde a un segmento del gen InvA, que est&aacute; presente en todas las cepas invasivas de <i>Salmonella spp. </i>(13, 26). Previamente se report&oacute; la estandarizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de PCR para la detecci&oacute;n de <i>Salmonella spp. </i>en leche en polvo en un lapso de 12 horas, incluyendo un previo enriquecimiento no selectivo de seis horas antes de cada ensayo, y se encontr&oacute; un l&iacute;mite de detecci&oacute;n de hasta 2 UFC (11).</p>     <p>La cantidad y calidad del ADN extra&iacute;do es fundamental, pues la mayor dificultad al momento de realizar una PCR es la presencia de compuestos en las muestras que inhiben o afectan la eficiencia de la PCR (27). El 44.6 % de las muestras no mostr&oacute; presencia de <i>Salmonella spp, </i>lo cual puede ser explicado por la presencia de inhibidores de la PCR en los alimentos, ya que en todos los ensayos se incluyeron los respectivos controles, sin embargo, es necesario realizar estudios para identificar dichos compuestos. La positividad de la PCR depende de muchos factores intr&iacute;nsecos de su naturaleza, y los resultados num&eacute;ricos que se obtengan pueden depender de la prevalencia del microorganismo, de la presencia de cepas invasivas de <i>Salmonella spp. </i>en los alimentos estudiados (13) y de las caracter&iacute;sticas de las diferentes matrices analizadas.</p>     <p>Este trabajo es realizado por primera vez en la ciudad de Santa Marta, pues en 2006 Espinal et al. realizaron un estudio molecular en el que detectaron la presencia del gen de <i>invA </i>en cepas de <i>Salmonella spp. </i>aisladas de alimentos en diferentes ciudades del Caribe colombiano, sin embargo, Santa Marta no fue incluida en dicho estudio (28).</p>     <p>En conclusi&oacute;n, los resultados muestran que la metodolog&iacute;a molecular por PCR ofrece muchas ventajas: una alta sensibilidad y alta especificidad en la detecci&oacute;n de <i>Salmonella spp. </i>en alimentos (25), beneficios al sector salud al lograr un diagn&oacute;stico r&aacute;pido y preciso, una buena relaci&oacute;n costo-beneficio al sector productivo que le permite la liberaci&oacute;n de productos alimenticios al mercado con mayor rapidez y el ahorro de costos; ello justifica la implementaci&oacute;n de esta metodolog&iacute;a.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La mayor contribuci&oacute;n de este estudio fue demostrar que la aplicaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a molecular por PCR acompa&ntilde;ada de un breve preenriquecimiento no selectivo es capaz de detectar <i>Salmonella spp. </i>en alimentos, lo cual agiliza notoriamente el tiempo de detecci&oacute;n de un microorganismo de importancia en salud p&uacute;blica y sector productivo; asimismo, se propone la aplicaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a molecular por parte de los laboratorios de vigilancia epidemiol&oacute;gica para realizar controles sanitarios en esta regi&oacute;n del pa&iacute;s.</p>     <p><b>Agradecimientos: </b>Comit&eacute; Nacional para el Desarrollo de la Investigaci&oacute;n (CONADI), Universidad Cooperativa de Colombia.</p>     <p>Laboratorio de Salud P&uacute;blica Departamental del Magdalena.</p>     <p><b>Conflicto de intereses: </b>Ninguno.</p>     <p><b>Financiaci&oacute;n: </b>Universidad Cooperativa de Colombia.</p> <hr>     <p><b>Notas</b></p>     <p><a name="n_1"></a><a href="#n1"><sup>1</sup></a>Estudiante de medicina, Programa de Medicina Universidad Cooperativa de Colombia sede Santa Marta (Colombia).</p>     <p><a name="n_2"></a><a href="#n2"><sup>2</sup></a>Microbi&oacute;logo. Laboratorio de Salud P&uacute;blica Departamental del Magdalena (Colombia).</p>     <p><a name="n_3"></a><a href="#n3"><sup>3</sup></a>M&eacute;dico y Cirujano, docente investigador Universidad Cooperativa de Colombia sede Santa Marta (Colombia).</p>     <p><a name="n_4"></a><a href="#n4"><sup>4</sup></a>Microbi&oacute;logo, M Sc. Docente investigador. Universidad Cooperativa de Colombia sede Santa Marta (Colombia).</p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Referencias</b></p>     <!-- ref --><p>(1) Keddy K, Sooka A, Letsoalo M, Hoyland G, Chaignat C, Morrissey A et al. Sensitivity and specificity of typhoid fever rapid antibody tests for laboratory diagnosis at two sub-Saharan African sites. <i>Bull World Health Organ </i>2011; 89:640 - 7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-5552201300020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(2) Woo Y. Genetic diversity of multi-resistant <i>Salmonella enterica </i>serotype <i>typhimutium </i>isolates from animals and humans. <i>J Microbiol </i>2006 Feb; 44:106-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-5552201300020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(3) Herikstad H, Mortarjemi Y, Tauxe R. <i>Salmonella </i>surveillance: a global survey of public health serotyping. <i>Epidemiol Infect </i>2002 Sept; 129: 1-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-5552201300020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(4) Philip T, Feldsine, A, Lienau H, Stephanie C. Leung, Linda A. Mui, Florence Humbert, Marylene Bohnert, Kirsten Mooijman et al. Detection of Salmonella in fresh cheese, poultry products, and dried egg products by the ISO 6579 Salmonella Culture Procedure and the AOAC Official Method: Collaborative Study. <i>J AOAC Int </i>2003 March; 86: 275-95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-5552201300020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(5) Waage A, Vardund S, Lund T, Kapperud V. Detection of low numbers of Salmonella in enviromental water, sewage and food samples by a nested polymerase chain reaction assay. <i>J Appl Microbiol </i>1999 Sept; 87: 418-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-5552201300020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(6) Fricker C R. The isolation of salmonellas and campylobacters. <i>J Appl Bacteriol </i>1987 Aug; 63: 99-116.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-5552201300020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(7) McMahon W, Schulte M, Johnson R. Evaluation of VIDAS&reg; Immuno-Concentration <i>Salmonella </i>(ICS)/VIDAS <i>Salmonella </i>(SLM) Immunoassay Method for Detection of <i>Salmonella </i>in Selected Foods (Method Modification 2001.09): Collaborative Study. <i>Journal of AOAC International, </i>2004 March 1; 87 (2): 390-394.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-5552201300020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(8) Ausubel F, Brent R, Kingston R. <i>Short protocols in molecular biology. </i>United States of America: John Wiley &amp; Sons; 2002. p. 2-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-5552201300020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(9) Sambrook J, MacCallum P, Russell D. <i>Purification of nucleic acid. Molecular cloning: A laboratory manual. </i>3<sup>a</sup> ed. New York, USA: Col Spring Harbor Laboratory Press; 2001. p. A8.9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-5552201300020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(10) Rahn K, De Grandis S, Clarke R, McEwen S, Gal&aacute;n J, Ginocchio C. Amplification of an <i>invA </i>gene sequence of <i>Salmonella typhimurium </i>by polymerase chain reaction as a specific method of detection of <i>Salmonella. Mol Cell Probes </i>1992; 6:271-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-5552201300020000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(11) Villarreal J, Soto Z, Pereira N, Varela P, Jaramillo R, Mendoza E, Villanueva D. Reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa para la detecci&oacute;n de <i>Salmonella spp. </i>en leche en polvo: Optimizaci&oacute;n del m&eacute;todo en 12 horas. <i>Salud Uninorte </i>2008, 24(2): 216-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-5552201300020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(12) Feldsine P, Abeyta C, Andrews W. AOAC International Methods Committee Guidelines for validation of qualitative and quantitative food microbiological official methods of analysis. <i>J AOAC Int </i>2002; 85: 1187- 1200.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-5552201300020000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(13) Gal&aacute;n J, Curtiss R III. Distribution of the invA, -B, -C, and -D genes of <i>Salmonella typhimurium </i>among other Salmonella serovar: invA mutants Salmonella typhi are deficient for entry into mammalians. <i>Infect Immun</i> 1991; 59:2901-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-5552201300020000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(14) Löfström CH, Knutsson R, Engdahl C, Radstrom P. Rapid and Specific Detection of <i>Salmonella </i>spp. in Animal Feed Samples by PCR after Culture Enrichment. <i>App. Environ. 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Detection of <i>salmonella </i>sp. from porcine origin: a comparison between a PCR method and standard microbiological techniques. <i>Braz J Microbiol </i>2005; 36: 373-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-5552201300020000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(17) Candrian Urs. Polymerase chain reaction in food microbiology. <i>J Microbiol Metho </i>1995; 23: 89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-5552201300020000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(18) Cardona-Castro N, S&aacute;nchez-Jim&eacute;nez M, Lavalett L, Mu&ntilde;oz N, Moreno J. Development and evaluation of a multiplex polymerase chain reaction assay to identify <i>Salmonella </i>serogroups and serotypes. <i>Diagn Microbiol Infect Dis </i>2009; 65(3): 327-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-5552201300020000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(19) Yuan Y, Xu W, Zhai Z, Shi H, Luo Y, Chen Z, Huang K. Universal primer-multiplex PCR approach for simultaneous detection of <i>Escherichia coli, Listeria monocytogenes, </i>and <i>Salmonella spp. </i>in food samples. <i>J Food Sci </i>2009; 74(8): 446-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-5552201300020000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(20) Lavalett L, S&aacute;nchez M, Mu&ntilde;oz N, Moreno J, Cardona-Castro N. Development and validation of a multiplex polymerase chain reaction for molecular identification of Salmonella enterica serogroups B, C2, D and E. <i>Biomedica </i>2009; 29(2):244-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-5552201300020000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(21) Mu&ntilde;oz N, D&iacute;az-Osorio M, Moreno J, S&aacute;nchez-Jim&eacute;nez M, Cardona-Castro N. Development and evaluation of a multiplex realtime polymerase chain reaction procedure to clinically type prevalent Salmonella enterica serovars. <i>J Mol Diagn </i>2010; 12(2):220-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-5552201300020000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(22) Jen&iacute;kov&aacute; G, Pazlarov&aacute; J, Demnerov&aacute; K. Detection of <i>Salmonella </i>in food samples by the combination of immunomagnetic separation and PCR assay. <i>Int Microbiol </i>2000; 3: 225-29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-5552201300020000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(23) Hagren V, Von Lode P, Syrj&aacute;l&aacute; A, Soukka T, L&oacute;vgren T, Kojola H, Nurmi J. An automated PCR platform with homogeneous timeresolved fluorescence detection and dry chemistry assay kits. <i>Anal Biochem </i>2008; 374: 411-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-5552201300020000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(24) Hagren V, von Lode P, Syrj&aacute;l&aacute; A, Korpim&aacute;ki T, Tuomola M, Kauko O, Nurmi J. An 8hour system for Salmonella detection with immunomagnetic separation and homogeneous time-resolved fluorescence PCR. <i>Int J Food Microbiol </i>2008; 125: 158-61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-5552201300020000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(25) Schönenbrücher V, Mallinson E, Bülte M. A comparison of standard cultural methods for the detection of foodborne <i>Salmonella </i>species including three new chromogenic plating media. <i>Int J Food Microbiol </i>2008; 123: 61-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-5552201300020000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(26) Chiu C, Ou J. Rapid identification of <i>Salmonella </i>serovars in feces by specific detection of virulence genes, <i>InvA </i>and <i>spvC, </i>by an enrichment broth culture-multiplex PCR combination assay. <i>J Clin Microbiol </i>1996; 34:261922.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-5552201300020000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(27) Rossen L, Norskov P. Holmstrom K, Rasmussen Inhibition of PCR by components of food samples, microbial diagnostic assay and DNA-extraction solutions. <i>Int J Food Microbiol </i>1992; 17: 37-45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-5552201300020000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>(28) Espinal P, Prieto E, Otero V, M&aacute;ttar S. Presencia del gen de invasividad <i>InvA </i>en cepas de <i>Salmonella sp. </i>aisladas de alimentos del Caribe colombiano. <i>Rev Cubana Salud P&uacute;blica </i>2006; 32(2): 115-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-5552201300020000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>      ]]></body><back>
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<surname><![CDATA[Keddy]]></surname>
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<surname><![CDATA[Sooka]]></surname>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Sensitivity and specificity of typhoid fever rapid antibody tests for laboratory diagnosis at two sub-Saharan African sites]]></article-title>
<source><![CDATA[Bull World Health Organ]]></source>
<year>2011</year>
<numero>89</numero>
<issue>89</issue>
<page-range>640 - 7</page-range></nlm-citation>
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