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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Producción enzimática de ésteres etílicos del aceite de ricino]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Biodiesel synthesis through transesterificación of castor oil with ethanol using n-hexane as a solvent and a lipozyme TL IM commercial lipase as a biocatalyst was studied. The effect of ethanol molar relation to oil (3:1-10:1), temperature of reaction (35-65&deg;C), initial enzymatic charge (5-20% p/p) and amount of water (0-10% p/p) was investigated. The maximum percentage of bio-diesel (ethyl-esters) was obtained at a temperature of 35&deg;C, a 5:1 ethanol to oil molar ratio, an initial enzymatic charge of 15 % p/p and an initial water concentration of 2% p/p, both of them based on the castor oil weight. A simplified model was proposed to describe the enzymatic kinetics of castor oil transesterification with ethanol, based on the ping-pong Bi Bi mechanism with competitive inhibition for alcohol. The kinetic parameters of the model were estimated graphically and parametrically; a good approach among the results foreseen by the model and experimental data was found at low ethanol concentration (40-80 mol Kg-1).]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Aceite de ricino]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="Verdana" size="4"> <b>Producci&oacute;n enzim&aacute;tica de &eacute;steres et&iacute;licos del aceite de ricino</b></font></p>      <p align="center"><font face="Verdana" size="4"> <b>Enzymatic production of ethyl esters from castor oil</b></font></p>      <p> <font face="Verdana" size="2"> <i>Claudia Delgado* , Veselina Pashova</i></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">Universidad Nacional de Colombia Sede Medell&iacute;n, Facultad de Minas, Escuela de Procesos y Energ&iacute;a, Carrera 80 N&deg;. 234-65, Bloque M3, Medell&iacute;n, Colombia</font></p>  <hr noshade size="1">      <p><font face="Verdana" size="3"> <b>Resumen</b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">Se estudi&oacute; la s&iacute;ntesis de biodiesel mediante la transesterificaci&oacute;n de aceite de ricino con etanol, usando n-hexano como solvente y una lipasa comercial Lipozyme TL IM como biocatalizador. Se investig&oacute; el efecto de la relaci&oacute;n molar etanol:aceite (3:1-10:1), temperatura de reacci&oacute;n (35-65&deg;C), carga enzim&aacute;tica (5-20 % p/p) y cantidad de agua (0-10 % p/p). La m&aacute;xima conversi&oacute;n de biodiesel (etil-&eacute;steres) se obtuvo a una temperatura de 35&deg;C, una relaci&oacute;n molar etanol a aceite de 5:1, una carga enzim&aacute;tica inicial de 15 % p/p y una concentraci&oacute;n inicial de agua de 2% p/p, ambos con base en el peso aceite de ricino. Para describir la cin&eacute;tica enzim&aacute;tica de la transesterificaci&oacute;n del aceite de ricino con etanol se propuso un modelo simplificado, basado en el mecanismo Ping- Pong Bi Bi con inhibici&oacute;n competitiva por el alcohol. Los par&aacute;metros cin&eacute;ticos del modelo se estimaron gr&aacute;fica y param&eacute;tricamente; a bajas concentraciones de etanol (40-80 mol Kg<sup>-1</sup>) se encontr&oacute; una buena aproximaci&oacute;n entre los resultados predichos por el modelo y los datos experimentales.</font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b><i>Palabras clave: </i></b>Aceite de ricino, biodiesel, transesterificaci&oacute;n, lipasa, mecanismo Ping-Pong Bi Bi</font></p>  <hr noshade size="1">      <p><font face="Verdana" size="3"> <b>Abstract</b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">Biodiesel synthesis through transesterificaci&oacute;n of castor oil with ethanol using n-hexane as a solvent and a lipozyme TL IM commercial lipase as a biocatalyst was studied. The effect of ethanol molar relation to oil (3:1-10:1), temperature of reaction (35-65&deg;C), initial enzymatic charge (5-20% p/p) and amount of water (0-10% p/p) was investigated. The maximum percentage of bio-diesel (ethyl-esters) was obtained at a temperature of 35&deg;C, a 5:1 ethanol to oil molar ratio, an initial enzymatic charge of 15 % p/p and an initial water concentration of 2% p/p, both of them based on the castor oil weight. A simplified model was proposed to describe the enzymatic kinetics of castor oil transesterification with ethanol, based on the ping-pong Bi Bi mechanism with competitive inhibition for alcohol. The kinetic parameters of the model were estimated graphically and parametrically; a good approach among the results foreseen by the model and experimental data was found at low ethanol concentration (40-80 mol Kg<sup>-1</sup>).</font></p>        <p><font face="Verdana" size="2"><b>Keywords:</b>Castor oil, biodiesel, transesterification, lipase, Ping- Pong Bi Bi mechanism</font></p>  <hr noshade size="1">      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">La disminuci&oacute;n de las reservas de petr&oacute;leo y la crisis medioambiental relacionada con la emisi&oacute;n de gases ocasionada por el uso de combustibles f&oacute;siles, ha generado la necesidad de buscar fuentes de energ&iacute;a renovable, para lo cual los biocombustibles son una buena alternativa. El t&eacute;rmino Biodiesel hace referencia espec&iacute;fica a mezclas de mono-alquil &eacute;steres de &aacute;cidos grasos (preferiblemente metil y etil &eacute;steres) [1]. El proceso qu&iacute;mico convencional para su producci&oacute;n es la transesterificaci&oacute;n usando catalizadores &aacute;lcali (NaOH, KOH) o &aacute;cidos (H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub>, HCL) [2-5]. Hay varios problemas asociados con dicho proceso, como es la dificultad en la recuperaci&oacute;n del glicerol, excesivo costo energ&eacute;tico y la necesidad de remover el catalizador del producto [4,6]. Los m&eacute;todos enzim&aacute;ticos pueden superar estos problemas mediante condiciones moderadas de reacci&oacute;n y la no producci&oacute;n de residuos qu&iacute;micos [6-14].    <br>    <br>  Existen estudios sobre el efecto de diferentes variables en el proceso de transesterificaci&oacute;n enzim&aacute;tica en la obtenci&oacute;n de biodiesel. Varios autores coinciden en que la producci&oacute;n de alquil-&eacute;steres aumenta cuando la relaci&oacute;n molar alcohol:aceite se incrementa hasta cierto punto (3:1-5:1). Una vez superada esta relaci&oacute;n, la producci&oacute;n disminuye [12,15-17]. Por otro lado la temperatura, tambi&eacute;n tiene un efecto significativo sobre la velocidad de reacci&oacute;n, ya que con el aumento de la misma (25-65&deg;C), la velocidad de reacci&oacute;n se incrementa, sin embargo &eacute;sta disminuye abruptamente cuando la enzima comienza a desnaturalizarse [12,16,18,19].Otros autores [1,2,12] coinciden en que la temperatura &oacute;ptima de operaci&oacute;n de lipasas de diferentes fuentes <i>(C.antarctica, C. rugosa, P.cepacia, P. fluorescens, R.miehei, T.lanuginosa)</i> est&aacute; muy cercana a 40 &deg;C. En cuanto al efecto de la carga enzim&aacute;tica, se ha reportado que en un rango entre 20-25% p/p con base en el peso de aceite, se obtiene la mayor conversi&oacute;n de alquil &eacute;steres e incrementos adicionales no evidencian ning&uacute;n aumento [16,17,20]. Por otro lado, se ha demostrado que la adici&oacute;n de una peque&ntilde;a al&iacute;cuota de agua a la mezcla de reacci&oacute;n catalizada por una enzima incrementa la velocidad de s&iacute;ntesis de &eacute;steres de &aacute;cidos grasos [7]. No obstante varios estudios demuestran que la ausencia de agua tambi&eacute;n favorece el proceso de transesterificaci&oacute;n [16]. Para el dise&ntilde;o de reactores, sistemas de control y optimizaci&oacute;n de procesos, la informaci&oacute;n cin&eacute;tica sobre velocidad de formaci&oacute;n de productos y el efecto de los cambios en las condiciones de operaci&oacute;n son esenciales. En muchos estudios cin&eacute;ticos sobre esterificaciones de &aacute;cidos grasos catalizados con lipasas, utilizando alcoholes de cadena corta, se observaron la inhibici&oacute;n por el alcohol y fueron descritos por el modelo cin&eacute;tico Ping- Pong Bi Bi con inhibici&oacute;n competitiva [21-23]. Sin embargo, cuando el sustrato es triglic&eacute;rido, el agua se reemplaza en el modelo con mono- glic&eacute;rido, di-glic&eacute;rido o glicerol. Basados en este mecanismo, diferentes autores proponen modelos cin&eacute;ticos que tienen en cuenta la inhibici&oacute;n del alcohol, o el alcohol y el aceite para el proceso de transesterificaci&oacute;n enzim&aacute;tica para la obtenci&oacute;n de biodiesel [6,24-25]. Nuevas rutas para la producci&oacute;n de biodiesel (interesterificaci&oacute;nes, transesterificaci&oacute;n usando fluidos supercr&iacute;ticos) tambi&eacute;n han considerado el mecanismo Ping- Pong Bi Bi como el modelo que mejor describe el proceso [17,26].    <br>    <br>  Finalmente, org&aacute;nicos son usados en la s&iacute;ntesis enzim&aacute;tica de biodiesel para incrementar la estabilidad operacional de la lipasa y para aumentar la velocidad de transesterificaci&oacute;n a trav&eacute;s de la mutua mejora de la solubilidad del triglic&eacute;rido hidrof&oacute;bico y el alcohol hidrof&iacute;lico sin intervenir en la reacci&oacute;n [27,28]. Se ha encontrado que en la s&iacute;ntesis enzim&aacute;tica de biodiesel, las enzimas muestran alta actividad en solventes hidrof&oacute;bicos (Log P &gt; 2), entre ellos: isoctano (Log P=4,7), n-heptano (Log P=4), n-hexano (Log P=3,5) y ciclohexano (Log P = 3,1).    <br>    <br>  Si bien el efecto de variables de proceso como temperatura, relaci&oacute;n molar alcohol a aceite, carga enzim&aacute;tica y cantidad de agua para la transesterificaci&oacute;n enzim&aacute;tica ha sido estudiado para diferentes aceites y alcoholes, es poca la informaci&oacute;n que existe sobre la transesterificaci&oacute;n de aceite de ricino con etanol usando enzima como catalizador [16,17]. As&iacute; mismo, para este caso de estudio en particular, no se encuentra reporte de un modelo cin&eacute;tico completo, por tal raz&oacute;n el objetivo del presente trabajo es determinar las mejores condiciones de reacci&oacute;n (temperatura, relaci&oacute;n molar etanol a aceite, cantidad de catalizador y cantidad de agua) para la producci&oacute;n enzim&aacute;tica de etil-&eacute;steres de aceite de ricino en n-hexano como medio de reacci&oacute;n, as&iacute; como plantear un modelo cin&eacute;tico tipo Ping Pong Bi Bi.</font></p>       <p><font face="Verdana" size="3"> <b>Experimentaci&oacute;n</b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><i><b>Materiales</b></i></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">El aceite de ricino utilizado fue suministrado por la empresa ANDERCOL S.A. Se usaron alcohol et&iacute;lico y n-hexano con un grado de pureza del 96% p/p, suministrados por Filtraci&oacute;n y An&aacute;lisis Ltda. COLDANZIMAS Ltda. proporcion&oacute; la lipasa Lipozyme TL IM con actividad declarada de aproximadamente 250 IUN/gr.</font></p>       <p><font face="Verdana" size="2"><i><b>M&eacute;todos</b></i></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">La mezcla de reactivos entre la cantidad estipulada de aceite y etanol, en presencia de la cantidad seleccionada de enzima usando como medio de reacci&oacute;n n-hexano, tuvo lugar en un bal&oacute;n de tres bocas de 250 mL. La reacci&oacute;n de transesterificaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo durante 7 horas a agitaci&oacute;n y temperatura constante, y adaptado a un sistema de condensaci&oacute;n para evitar p&eacute;rdidas. Una vez transcurrido el tiempo, la reacci&oacute;n se detuvo, interrumpiendo la agitaci&oacute;n y el calentamiento, y sometiendo la mezcla a un cambio fuerte en temperatura (aproximadamente 5 oC) durante 5 minutos. A continuaci&oacute;n, la mezcla reaccionante se separ&oacute; mediante la t&eacute;cnica de decantaci&oacute;n. Los productos del proceso: el biodiesel y el glicerol se separaron y el glicerol por su densidad se deposit&oacute; en la parte inferior del embudo. El lavado y el secado posterior del biodiesel se procesaron de acuerdo al m&eacute;todo propuesto por Zapata et al. [29]. La muestra obtenida se almacen&oacute;, para luego ser analizada en el cromat&oacute;grafo de gases. En todas las pruebas se emple&oacute; una cantidad constante de 10 gr de aceite de ricino y n-hexano 1:10 (p/v) con base en el peso de aceite. El efecto de la temperatura, relaci&oacute;n molar etanol:aceite, carga enzim&aacute;tica y concentraci&oacute;n de agua en el proceso de transesterificaci&oacute;n se estudi&oacute; variando cada vez una variable en el rango escogido (<a href="#tabla1">Tabla 1</a>) [17,30-32], y el resto de las condiciones se mantuvieron fijas seg&uacute;n el caso: relaci&oacute;n molar etanol a aceite 3:1, carga enzim&aacute;tica 20% p/p con base en el peso de aceite de ricino, condiciones anh&iacute;dridas y 55&deg;C. Para la cuantificaci&oacute;n de etil- &eacute;steres producidos se consideraron los tres &aacute;cidos con mayor porcentaje en el aceite de ricino: &aacute;cido ricinoleico, linoleico y oleico [33].</font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"> <b>Tabla 1</b> intervalo de estudio de las variables</font></p>      <p align="center"><img src="img/revistas/rfiua/n53/n53a01t01.gif" ><a name="tabla1"></a></p>        <p><font face="Verdana" size="2"><i><b>An&aacute;lisis de las Muestras</b></i></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">El an&aacute;lisis cuantitativo de los etil-&eacute;steres de aceite de ricino se llev&oacute; a cabo en un cromat&oacute;grafo VARIAN 3800 equipado con un detector FID (Flame Ionization Detector), columnas capilares e inyecci&oacute;n <i>on column</i>. Se cuantific&oacute; por el m&eacute;todo de patr&oacute;n interno (metil enantato) siguiendo la norma internacional UNE (EN 14103:2003), es de anotar que las normas empleadas se utilizan para la cuantificaci&oacute;n de Metil-&eacute;steres de &aacute;cidos grasos pero, presentaron una excelente alternativa de cuantificaci&oacute;n de los Etil-&eacute;steres del aceite de higuerilla. Las condiciones del m&eacute;todo cromatogr&aacute;fico empleado fueron las siguientes: cromat&oacute;grafo de gases VARIAN 3800, columna cromatogr&aacute;fica BPX70 SGE FORTE de 30 metros de longitud, Inyecci&oacute;n <i>On column</i>, detector de ionizaci&oacute;n de llama (FID), gas de arrastre Helio (3 ml/min), temperatura del inyector: 230 &deg;C, temperatura del detector: 300 &deg;C, volumen de Inyecci&oacute;n 1 &micro;L. Programa de temperatura del horno: temperatura inicial 50 &deg;C por 2 min., rampa 1: 10&deg;C/min. hasta 85 &deg;C por 0 min., rampa 2: 15 &deg;C/min. hasta 260 &deg;C por 1,83 min., tiempo total 18,5 min.</font></p>      <p><font face="Verdana" size="3"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b><i>Efecto de la Carga de Enzima</i></b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">La cantidad de etil-&eacute;ster se incrementa cuando la carga de lipasa aumenta hasta un 10-15%, punto en el cual, la cantidad de etil-ester obtenido es de 66-68% p/p respectivamente (<a href="#figura1">figura 1a</a>). Posteriores incrementos no muestran ning&uacute;n aumento en la obtenci&oacute;n de etil-&eacute;steres, esto debido a que en el punto de saturaci&oacute;n todo sustrato est&aacute; enlazado a una enzima, por tanto, mol&eacute;culas de enzima adicionales no encuentran sustrato que le sirva como reactante [17,34-35)]. Varios autores han reportado resultados similares a los nuestros, demostrando que a una carga enzim&aacute;tica inicial de 20% p/p con respecto al aceite se obtiene la m&aacute;xima conversi&oacute;n del proceso [16, 17], as&iacute; mismo en algunos casos se muestra una disminuci&oacute;n del rendimiento del producto con el incremento de la misma [34-35].</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><b><i>Efecto de la relaci&oacute;n molar etanol a aceite</i></b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">El rendimiento de etil-&eacute;steres de aceite de ricino incrementa hasta una relaci&oacute;n molar 5:1 punto en la cual la cantidad de etil-&eacute;ster obtenido es 80% p/p (<a href="#figura1">figura 1b</a>). Inicialmente, a medida que el exceso de alcohol aumenta, se favorece la reacci&oacute;n incrementando la cantidad de etil- &eacute;steres obtenidos, no obstante, a altas relaciones, &eacute;sta cantidad disminuye, lo cual puede atribuirse a que el exceso de alcohol distorsiona la capa esencial de agua y as&iacute; desestabiliza la enzima, demostrando por tanto su efecto inhibitorio [17,15,36]. As&iacute; mismo, el exceso de alcohol podr&iacute;a obstaculizar la frecuencia de interacci&oacute;n entre el sustrato y la lipasa [37]. Esto podr&iacute;a deberse a que a altas concentraciones de sustrato, la viscosidad de la mezcla reaccionante que rodea a la mol&eacute;cula de enzima podr&iacute;a incrementarse, generando as&iacute; un mezclado ineficiente de reactantes y por consiguiente la reducci&oacute;n en la velocidad de reacci&oacute;n [38]. La relaci&oacute;n molar etanol a aceite que favoreci&oacute; la producci&oacute;n de etil-&eacute;steres en nuestro estudio es consistente con otras investigaciones [12,15-17].</font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b><i>Efecto de la temperatura</i></b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">La m&aacute;xima cantidad de etil-&eacute;steres de aceite de ricino se obtuvo en un intervalo de temperatura entre 35 y 55 &deg;C (<a href="#figura1">figura 1c</a>). Resultados similares se reportaron [18-19] con un intervalo &oacute;ptimo de operaci&oacute;n de 30-55 &deg;C y 30-40 &deg;C respectivamente. As&iacute; mismo [17] en el proceso de obtenci&oacute;n de etil &eacute;steres del aceite de ricino usando fluidos supercr&iacute;ticos, encuentran que la m&aacute;xima conversi&oacute;n del proceso se obtiene a 45 &deg;C usando Novozym 435, lo cual est&aacute; dentro del rango &oacute;ptimo encontrado en nuestro estudio La cantidad de etil-&eacute;ster disminuye despu&eacute;s de 60 &deg;C, debido a que m&aacute;s all&aacute; de la temperatura cr&iacute;tica, la lipasa se desactiva, adem&aacute;s, la vibraci&oacute;n y el movimiento de la mol&eacute;cula de enzima ocasionado por las altas temperaturas, pudieron haber afectado los enlaces de hidr&oacute;geno. As&iacute; mismo, otros enlaces en la estructura de la lipasa pudieron desdoblarse y haber alterado su estructura terciaria o cuaternaria. Como consecuencia, el poder catal&iacute;tico de la lipasa pudo verse reducido debido al proceso de desnaturalizaci&oacute;n.</font></p>      <p align="center"><img src="img/revistas/rfiua/n53/n53a01i01.gif" ><a name="figura1"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"> <b>Figura 1 </b> (a) Efecto de la concentraci&oacute;n de lipasa, (b) Efecto de la relaci&oacute;n molar etanol a aceite (c), Efecto de la temperatura (d), Efecto de la concentraci&oacute;n de agua en la producci&oacute;n de etil- &eacute;steres</font></p>       <p><font face="Verdana" size="2"><b><i>Efecto de la concentraci&oacute;n de agua</i></b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">La cantidad de etil &eacute;steres obtenidos es mayor a bajas concentraciones de agua (2%) (Figura 1d), a medida que su concentraci&oacute;n aumenta, el porcentaje de conversi&oacute;n de etil-&eacute;steres disminuye. Esto posiblemente debido a que a medida que el contenido de agua incrementa, la hidr&oacute;lisis empieza a competir con la transesterificaci&oacute;n, ocasionando un desplazamiento del equilibrio en sentido de la reacci&oacute;n de hidr&oacute;lisis [7,12 ,39- 42], o debido a una probable inactivaci&oacute;n enzim&aacute;tica ocasionada por la adici&oacute;n de agua en exceso. No obstante, la hidrataci&oacute;n de la enzima provee la flexibilidad necesaria para cambios conformacionales durante el proceso catal&iacute;tico [39], as&iacute;, la concentraci&oacute;n de agua que favoreci&oacute; la producci&oacute;n de etil-&eacute;steres en nuestro caso de estudio fue 2% p/p con base en el peso de aceite de ricino. Un resultado similar fue reportado por [43], en el cual con un contenido de agua de 2% basado en el peso de aceite, se obtuvo la m&aacute;xima conversi&oacute;n del proceso (97%) para la transesterificaci&oacute;n de aceite de soya y etanol, usando Novozym 435 en terc-amil alcohol.</font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b><i>Cin&eacute;tica de la reacci&oacute;n de transesterificaci&oacute;n</i></b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">Diferentes estudios cin&eacute;ticos sobre s&iacute;ntesis de &eacute;steres catalizados con lipasas han considerado la transesterificaci&oacute;n directa de alcoholes de cadena corta con un triglic&eacute;rido y han sido descritos por el mecanismo cin&eacute;tico Ping Pong Bi-Bi [6, 17,24-25]. Para la reacci&oacute;n de transesterificaci&oacute;n considerada en este estudio se obtendr&iacute;a un mecanismo complejo debido a la presencia de tres reacciones consecutivas de triglic&eacute;ridos a productos, no obstante bajo ciertas consideraciones, el mecanismo puede simplificarse a una &uacute;nica etapa: una mol&eacute;cula de triglic&eacute;rido convierte en tres mol&eacute;culas de &eacute;ster [44] Una justificaci&oacute;n a esta simplificaci&oacute;n es que se producen bajas cantidades de mono y di- glic&eacute;ridos (un m&aacute;ximo de 15 y 7 % de mono y di- glic&eacute;ridos respectivamente) durante la reacci&oacute;n [45] as&iacute; mismo debido a que los productos finales en la reacci&oacute;n de transesterificaci&oacute;n completa son los etil-&eacute;steres y glicerina, se han propuesto modelos en los que se ignoran reacciones intermedias de mono y di-glic&eacute;ridos y se plantea una &uacute;nica etapa de reacci&oacute;n [44].    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <br>  Para reacciones de esterificaci&oacute;n y transesterificaci&oacute;n la presencia de alcohol inhibe la actividad de la enzima [6,45,28,46]. La cin&eacute;tica de reacci&oacute;n en este caso puede ser explicada por el mecanismo de reacci&oacute;n Ping-Pong Bi Bi, ampliamente utilizado para este tipo de reacciones. Bajo estas consideraciones la ecuaci&oacute;n del mecanismo es la siguiente [47]:</font></p>      <p><img src="img/revistas/rfiua/n53/n53a01e01.gif" ><a name="ecuacion1"></a></p>       <p><font face="Verdana" size="2">En donde [<i>Trigli</i>] y [<i>EtOH</i>] son las concentraciones iniciales de aceite de ricino y etanol respectivamente, <i>Km<sub>Trigli</sub></i> y <i>Km<sub>ET</sub></i> son las constantes aparentes de Michaelis para el aceite de ricino y etanol, <i>Ki<sub>EtOH</sub></i> es la constante aparente de inhibici&oacute;n de etanol y <i>V</i> max es la m&aacute;xima velocidad inicial de reacci&oacute;n.    <br>    <br>   El efecto de la concentraci&oacute;n de los dos sustratos (aceite y etanol) sobre la velocidad de reacci&oacute;n, se investig&oacute; para proponer una ecuaci&oacute;n de velocidad. La relaci&oacute;n molar de los sustratos se vari&oacute; de 40-130 mol.Kg<sup>-1</sup> y 7-13 mol.Kg<sup>-1</sup> para el etanol y aceite de ricino respectivamente. Se obtuvieron diferentes curvas de reacci&oacute;n para el rango de concentraci&oacute;n de sustrato estudiado, la <a href="#figura2">figura 2</a> muestra una de las curvas obtenidas, la cual es &uacute;til para la determinaci&oacute;n velocidad inicial, en cada caso, &eacute;sta se determin&oacute; como la pendiente a tiempo cero de la curva de reacci&oacute;n haciendo uso del Programa Matlab 2007.    <br>    <br>   Una vez determinada la velocidad inicial se construy&oacute; la <a href="#figura3">figura 3</a>, a partir de la cual, las constantes aparentes de Michaelis, necesarias para plantear un modelo completo tipo Ping Pong Bi-Bi fueron determinadas. Los par&aacute;metros cin&eacute;ticos <i>Vmax, Km<sub>Trigli</sub> , Km<sub>ET</sub>, Ki<sub>EtOH</sub></i> , encontrados gr&aacute;ficamente se presentan en la <a href="#tabla2">tabla 2</a>.</font></p>      <p align="center"><img src="img/revistas/rfiua/n53/n53a01i02.gif" ><a name="figura2"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"> <b>Figura 2 </b> % etil-&eacute;ster vs. Tiempo. 10 g. de aceite, n-hexano 1:10 p/v con base en el peso de aceite, carga enzim&aacute;tica 20 % (p/p), 0% de agua (p/p) T= 55 &deg;C, t= 7 horas</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/rfiua/n53/n53a01i03.gif" ><a name="figura3"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"> <b>Figura 3 </b>Representaci&oacute;n <i>Lineaweaver-Burk</i> del rec&iacute;proco de la velocidad inicial vs. El rec&iacute;proco de la concentraci&oacute;n de aceite de ricino a concentraciones Ajas de etanol. n-hexano 1:10 p/v con base en el peso de aceite, 20% enzima (p/p), 0 % Agua, 55 &deg;C, 200 rpm</font></p>        <p><font face="Verdana" size="2"> <b> Tabla 2 </b>Par&aacute;metros cin&eacute;ticos para el mecanismo Ping Pong Bi Bi en la transesterificaci&oacute;n del aceite de ricino con etanol usando <i>Lipozym TL </i>IM</font></p>      <p align="center"><img src="img/revistas/rfiua/n53/n53a01t02.gif" ><a name="tabla2"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2">Se corrobora la inhibici&oacute;n ocasionada por el etanol (<a href="#figura3">figura 3</a>), ya que la velocidad inicial disminuye con el incremento de la concentraci&oacute;n de etanol, lo cual refleja su efecto inhibitorio, as&iacute; mismo, a bajas concentraciones de la misma (40-80 mol Kg<sup>-1</sup>), el comportamiento de los datos tiende a ser lineal, pero a altas concentraciones tienen una curvatura hacia arriba. Este comportamiento es la confirmaci&oacute;n de la inhibici&oacute;n ocasionada por el etanol. Un efecto parecido con el anh&iacute;drido ac&eacute;tico ha sido observado por [6]. Por otro lado a bajas concentraciones de etanol la pendiente de las l&iacute;neas tiende a ser paralela, mientras que a altas concentraciones la pendiente parece aumentar. Este es un comportamiento t&iacute;pico del mecanismo Ping-Pong Bi Bi [48].    <br>    <br>  Debido a que la forma gr&aacute;fica de determinaci&oacute;n de los par&aacute;metros es inexacta, se realiz&oacute; la identificaci&oacute;n param&eacute;trica del modelo, usando nlinfit del Programa Matlab 2007.    <br>    <br>   El programa tuvo como entradas las concentraciones de etanol (40-130 mol.Kg<sup>-1</sup>) las concentraciones de aceite (7-13 mol.Kg.<sup>-1</sup>) y las velocidades iniciales experimentales correspondientes a cada concentraci&oacute;n de etanol, sin embargo, present&oacute; problemas de convergencia y m&iacute;nimos locales. Por tanto en lugar de encontrar un &uacute;nico juego de par&aacute;metros <i>K<sub>Alcohol</sub>, K<sub>Trigli</sub>, K<sub>Etanol</sub> y V</i> max v&aacute;lidos para el rango de concentraci&oacute;n de etanol estudiado (40-130 mol.Kg<sup>-1</sup>), se obtuvo par&aacute;metros cin&eacute;ticos espec&iacute;ficos a cada concentraci&oacute;n de etanol estudiada (<a href="#tabla2">Tabla 2</a>).    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  A bajas concentraciones (40-80 mol Kg<sup>-1</sup>) de etanol los resultados predichos por el modelo se ajustan satisfactoriamente a los resultados experimentales (<a href="#figura4">figura 4</a>). Solo cuando la concentraci&oacute;n de sustrato (aceite de ricino) sobrepasa 0,1055 mol.Kg<sup>-1</sup>, las velocidades calculadas por el modelo son mucho menores a las experimentales. Este hecho se pudo deber a que la presencia de productos intermedios o secundarios durante la reacci&oacute;n no se tuvieron en cuenta en el modelo, o debido a que no se tuvo en cuenta la constate aparente de inhibici&oacute;n del aceite de ricino. No obstante y debido que para este proceso en particular no se cuenta con suficiente informaci&oacute;n sobre el modelo cin&eacute;tico, se deja abierta la posibilidad de estudiar la de inhibici&oacute;n ocasionada por los dos sustratos en el proceso.    <br>    <br>  El an&aacute;lisis de los residuales es una forma eficaz de descubrir diversos tipos de inadecuaci&oacute;n del modelo, adem&aacute;s es una forma de darle validez. La <a href="#figura5">figura 5</a> muestra la distribuci&oacute;n de los residuales estandarizados para una concentraci&oacute;n fija de etanol (39,5256 mol Kg<sup>-1</sup>). Los residuales se distribuyen en forma de embudo, lo cual implica s&iacute;ntomas de heterosedasticidad, indicando as&iacute; que la varianza es una funci&oacute;n en este caso decreciente de la velocidad inicial. La posible causa de heterocedasticidad se pudo deber a la omisi&oacute;n de variables relevantes en el modelo, el empleo de variables no relativizadas o a que las variables explicativas tienen gran dispersi&oacute;n respecto a su propia media [49].</font></p>       <p align="center"><img src="img/revistas/rfiua/n53/n53a01i04.gif" ><a name="figura4"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"> <b>Figura 4 </b>Representaci&oacute;n <i>Lineaweaver-Burk</i> de la transesterificaci&oacute;n de aceite de ricino con etanol en n-hexano 1:10 p/v con base en el peso de aceite, 20% enzima (p/p), 0 % Agua, 55&deg;C, 200 rpm.La l&iacute;nea s&oacute;lida representa el valor correspondiente predicho por el modelo</font></p>       <p><font face="Verdana" size="3"> <b>Conclusiones</b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"> La mayor cantidad de etil-&eacute;steres en el proceso de transesterificaci&oacute;n enzim&aacute;tica del aceite de ricino con etanol usando n-hexano como medio de reacci&oacute;n se obtuvo a 35 &deg;C, una relaci&oacute;n molar etanol a aceite de 5:1, una carga enzim&aacute;tica de 15% p/p una concentraci&oacute;n de agua de 2 % p/p, los dos con base en el peso aceite de ricino. Hubo buena concordancia entre los resultados experimentales de velocidad inicial de reacci&oacute;n y los predichos por la ecuaci&oacute;n del modelo simplificado, basado en el mecanismo Ping Pong Bi Bi con inhibici&oacute;n competitiva del alcohol propuesto, a bajas concentraciones de etanol (40-80 mol Kg<sup>-1</sup>) para cada rango de concentraci&oacute;n estudiado. Una alternativa para mejorar el ajuste de los datos es investigar el efecto inhibitorio que presenta el aceite de ricino en posteriores estudios.</font></p>      <p align="center"><img src="img/revistas/rfiua/n53/n53a01i05.gif" ><a name="figura5"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"> <b>Figura 5 </b>Residuales estandarizados en funci&oacute;n de los valores predichos de velocidad inicial para una concentraci&oacute;n fija de etanol 39,5256 mol Kg<sup>-1</sup>, con 10 mL de aceite, 20% de enzima (%p/p), 0% agua (%p/p) a 55 &deg;C y 200 rpm</font></p>      <p><font face="Verdana" size="3"> <b>Referencias</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">1. M. M. Soumanou, U. T. Bornscheuer. "Improvement in lipase-catalyzed synthesis of fatty acid methyl ester from sunflower oil". <i>Enzyme Microb. Technol.</i> Vol. 33. 2003. pp. 97-103.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-6230201000030000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  2. H. Fukuda, A. Kondo, H. Noda. "Biodiesel Fuel Production by transesterification of Oils".<i> J. Biosci. Bioeng</i>. Vol. 92. 2001. pp. 405-416.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-6230201000030000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  3. A. Demirbas. "Biodiesel Production via Non-Catalytic SCF Method and Biodiesel Fuel Characteristics". <i>Energy Convers. Manage</i>. Vol. 47. 2006. pp. 2271-2282.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-6230201000030000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  4. F. Ma, M. Hanna. "Biodiesel Production: A Review". <i>Bioresour. Technol</i>. Vol. 70. 1990. pp.1-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-6230201000030000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  5. L. C. Meher, D. Vidya Sagar, S.N. Naik. "Technical Aspects of Biodiesel Production By Transesterification- A Review". <i>Renew. Sust. Energ. Rev.</i> Vol. 10. 2006. pp 248-268.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-6230201000030000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>  6. V. Dossat, D. Combes, A. Marty. "Lipase-Catalyzed Transesterification of High Oleic Sunflower oil". <i>Enzyme Microb. Technol</i>. Vol. 30. 2002. pp. 90-94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-6230201000030000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  7. S. Shah, S. Sharma, M. N. Gupta, "Biodiesel Preparation by Lipase-Catalyzed Tranesterification of Jatropha oil". <i>Energy Fuel</i>. Vol. 18. 2004. pp. 154-159.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-6230201000030000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  8. C. C. Lai, S. Zullaikah, S. R. Vali, Y. H. Ju. "Lipase- Catalyzed Production of Biodiesel from rice Bran oil". <i>J.Technol.Biotechnol</i>. Vol. 80. 2005. Pp. 331-337.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-6230201000030000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  9. W. Du, Y. Y. Xu, D. H. Liu, Z. B. Li. "Study on acyl Migration in immobilized Lipozyme TL-Catalyzed Transesterification of Soybean Oil for Biodiesel Production". J. <i>Mol. Catal. B: Enzym.</i> Vol. 37. 2005. pp. 68-71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-6230201000030000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  10. V. Athawale, N. Manjrekar, M. Athawale. "Lipase- Catalyzed Synthesis of Geranyl Methacrylate by Transesterification: Study of Reaction Parameters". <i>Tetraedron Letters</i>. Vol. 43. 2002. pp. 4797-4800.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-6230201000030000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>  11. A. Salis, M. Pinna, M. Monduzzi, V. Solinas. "Biodiesel Production from Triolein and Short chain alcohols though Biocatalysis".<i> J. Biotechnol</i>. Vol.119. 2005. pp. 291-299.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-6230201000030000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  12. H. Nouredinni, S. Gao, R. S. Philkana. "Immobilized Pseudomonas cepacia lipase for biodiesel fuel production from soybean oil". <i>Bioresour. Technol</i>. Vol. 96. 2005. pp. 769-777.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-6230201000030000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  13. J. V. Oliveira, D. Oliveira. "Kinetics of the Enzymatic alcoholysis of Palm Kernel oil in supercritical CO2". <i>Ind. Eng. Chem.</i> Vol. 39. 2000. pp. 4450-4454.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-6230201000030000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  14. G. Madras, C. Kolluru, R. Kumar. "Synthesis of Biodiesel in supercritical fluids". <i>Fuel</i>. Vol. 83. 2004. pp. 2029-2033.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-6230201000030000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  15. Y. Shimada, Y. Watanabe, A. Sugihara, Y. Tominaga. "Review Enzymatic Alcoholysis for biodiesel fuel production an application of the reaction to oil processing". <i>J. Mol. Catal. B: Enzym.</i> Vol. 17. 2002. pp. 133-142.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-6230201000030000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>  16. D. Oliveira, M. Luccio, C. Faccio, C. Dalla Rosa, J.P. Bender, N. Lipke, S. Menoncin, C. Amroginski, V. Oliveira. "Optimization of enzymatic production of biodiesel from castor oil in organic solvent medium". <i>Appl. Biochem. Biotechnol.</i> Vol. 115. 2004. pp. 771-780.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-6230201000030000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  17. N. Mahesh, M. Girindar. "Synthesis of Biodiesel from Castor Oil and Linseed Oil in Supercritical Fluids". <i>Ind. Eng. Chem.</i> Vol. 46. 2007. pp. 1-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-6230201000030000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  18. M. Iso, B. Chen, M. Eguchi, T. Kudom, S. Shrestha. "Production of Biodiesel fuel from triglycerides and alcohol using immobilized lipase". <i>J. Mol. Catal. B: Enzym.</i> Vol. 16. 2001. pp. 53-58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-6230201000030000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  19. Y. Xu, W. Du, J. Zeng, D. Liu. "Conversion of soybean oil to Biodiesel fuel using lipozyme TL IM in a sovent- free medium". <i>Biocatal.Biotransform</i>. Vol. 22. 2004. pp. 45-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-6230201000030000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  20. Y. Chen, B. Xiao, J. Chang, Y. Fu, P. Lv, X. Wan. "Synthesis of Biodiesel from waste cooking oil using immobilized lipase in fixed bed reactor". <i>Energy Convers. Manage</i>. Vol. 50. 2009. pp. 668-673.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-6230201000030000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>  21. A. E. M. Jansen, B. J. Sjursnes, A. V. Vakurov, P. J. Halling. "Kinetics of lipase-catalyzed esterification in organic media: correct model and solvent effects on parameters". <i>Enzyme Microb. Technol.</i> Vol. 24. 1999. pp. 463-470.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-6230201000030000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  22. A. E. M. Janssen, A. M. Vaidya, P. J. Halling. "Substrate specifity and kinetics of Candida rugosa lipase in organic media". <i>Enzyme Microb. Technol.</i> Vol. 18. 1996. pp. 340-346.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-6230201000030000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  23. G. W. Zhou, G. Z. Li, J. Xu, W. Sheng. "Kinetics studies of lipse-catalyzed esterification in water- in oil microemulsions and the catalytic behavior of immobilized lipase in MGGs". <i>Colloids Surf</i>. A. Vol. 194. 2001. pp. 41-47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-6230201000030000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  24. S. Al-Zuhair, F. Wei Ling, L. Jun song. "Proposed kinetic mechanism of the production of the production of biodiesel from palm oil using lipase". <i>Process Biochem.</i> Vol. 42. 2007. pp 951-960.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-6230201000030000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  25. S. Al-Zuhair. "Production of Biodiesel by lipase- catalyzed transesterification of vegetable oil: a Kinetic Study". <i>Biotechnol. Progr.</i> Vol. 21. 2005. pp.1442-1448.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-6230201000030000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>  26. Y. Xu, W. Du, D. Liu. "Study on the kinetics of enzymatic interesterification of triglycerides for biodiesel production with methyl acetate as acyl acceptor". <i>J. Mol. Catal. B: Enzym.</i> Vol. 32. 2005. pp. 241-245.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-6230201000030000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  27. M. S. Antczak, A. Kubiak, T. Antczak, S. Bielecki. "Enzymatic Biodiesel Synthesis- Key Factors affecting efficiency of the process". <i>Renewable energy</i>. Vol. 34. 2009. pp.1185-1194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-6230201000030000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  28. M. Rizzi, P. Stylos, A. Riek. "A Kinetic study of immobilized lipase catalyzing the synthesis of isoamyl acetate by transesterification in n-hexane". <i>Enzyme Microb. Technol. Vol.</i> 14. 1992. pp. 709-714.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-6230201000030000100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  29. P. Zapata, R. Mendoza. "Obtenci&oacute;n de un Biocombustible mediante la Transesterificaci&oacute;n del Aceite de Palma con Metanol". Trabajo de Grado Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica. Universidad Nacional de Colombia. Medell&iacute;n. 2003. pp. 63-79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-6230201000030000100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  30. J. Dordick. "Enzymatic catalysis in monophasic organic solvents". <i>Enzyme Microb. Technol</i>. Vol. 11. 1989. pp. 194-211.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-6230201000030000100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>  31. D. Oliveira , T. Alves."Enzymatic alcoholysis of palm and palm kernel oil". <i>Appl. Biochem. Biotechnol</i>. Vol. 77. 1999. pp. 835-844.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-6230201000030000100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  32. D. Oliveira , T. Alves. "Kinetic Study Of Lipase- Catalysed Alcoholysis Of Palm Kernel Oil". <i>Appl. Biochem. Biotechnol.</i> Vol. 84. 2000. pp. 59-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-6230201000030000100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  33. D. S. Ogunniyi. "Castor Oil: a vital industrial raw material. Review paper". <i>Bioresour. Technol.</i> Vol. 97. 2006. pp. 1086-1091.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-6230201000030000100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  34. C. Torres, C. Otero. "Part III Direct Enzymatic esterification of lactic acid with fatty acids". <i>Enzyme Microb. Technol</i>. Vol. 29. 2001. pp. 3-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0120-6230201000030000100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  35. M. S. Radz, M. Basri, A. B. Salleh. "High performance enzymatic synthesis of oleyl oleate using immobilised lipase from Candida antarctica". <i>Electron. J. Biotechnol.</i> [online]. Vol. 8. 2005. <a href="http://www.ejbiotechnology.info/content/vol8/issue3/full/4/" target="_blank">http://www.ejbiotechnology.info/content/vol8/issue3/full/4/</a>. Consultada el 15 de enero de 2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0120-6230201000030000100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>  36. B. Selmi, D. Thomas. "Immobilized Lipase-Catalyzed Ethanolysis of sunflower oil in a Solvent Free M&eacute;dium". <i>J. Am. Oil Chem. Soc.</i> Vol. 75. 1998. pp. 691-695.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0120-6230201000030000100036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  37. P. Kanasawud, S. Phutrakul, S. Bloomer, P. Adlerceutz, B. Mattiasson. "Triglyceride interesterification by lipases III. Alcoholysis of pure triglycerides". <i>Enzyme Microb. Technol.</i> Vol. 14. 1992. pp. 959-965.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0120-6230201000030000100037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  38. M. Erbeldinger, X. Ni, P.J. Halling. "Enzymatic synthesis with mainly undissolved substrates at very high concentrations". <i>Enzyme Microb. Technol.</i> Vol. 23. 1998. pp. 141- 148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0120-6230201000030000100038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  39 T. Anthonsen, BJ. Sjursens. <i>"Importance of water activity for enzymes catalysis in non-aqueous organic systems"</i>. Ed. M.N. Gupta. New Dehli. India. 2000. pp. 14-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0120-6230201000030000100039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  40. E. Wehtje, P. Aldercrutz. "Lipase have similar water activity profiles in different reactions". <i>Biotechnology lett.</i> Vol. 19. 1997. pp. 537-540.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0120-6230201000030000100040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>  41. T. Yamane, Y. Kojima, T. Ichiryu, M. Nataga, S. Shimizu. "Intramolecular esterification by lipase powder in microaqueous benzene: effect of moisture content". <i>Biotechnol. Bioeng</i>, Vol. 34. 2004. .pp. 838-843.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0120-6230201000030000100041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  42. M. Kaieda, T. Samukawa, A. Kondo, H. Fukida. "Effect of methanol and water on production of biodiesel fuel from plant oil catalyzed by various lipases in a solvent-free system". <i>J. Biosci. Bioeng.</i> Vol. 91. 2001. pp. 12-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0120-6230201000030000100042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  43. Y. Zheng, J. Quan, S. Ning, L. Zhu, B. Jiang, Z. He. "Lipase-catalyzed transesterification of soybean oil for biodiesel production in tert-amyl alcohol". <i>World J. Microbiol. Biotechnol</i>. Vol. 25. 2009. pp. 41-46.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0120-6230201000030000100043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  44. D. Kusidiana, S. Saka. "Kinetics of transesterification in Rapeseed oil to biodiesel fuel as Treated in supercritical Methanol". <i>Fuel</i>. Vol. 80. 2001. pp. 693-698.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0120-6230201000030000100044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  45. A. Marty, W. Chulalaksananukul, R. M. Willemot, J.S. Codoret. "Kinetics of lipase-Catalyzed esterification in supercritical CO2 ". <i>Biotechnol. Bioeng</i>. Vol. 39. 1992. pp. 273-280. 2    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0120-6230201000030000100045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>  46. W. Chulalaksananukul, J. S. Codoret, D. Combes. "Geranyl acetate Synthesis by lipase Catalyzed Transesterification in Supercritical Carbon Dioxide". <i>Enzyme Microb. Technol</i>. Vol. 15. 1993. pp. 691-698.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0120-6230201000030000100046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  47. A. Marangoni. "Enzyme Kinetics: A modern Approach". Ed. John Wiley &amp; Sons Inc. New Jersey (USA). 2003. pp 90-94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0120-6230201000030000100047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  48. S. Hazarika, N. Dutta, "Transesterification of 2-o Benzylglycerol with Vinyl Acetate by immobilized Lipase: Study of Reaction and Deactivation Kinetics". <i>Org. Process Res</i>. Dev. Vol. 8. 2004. pp. 229-237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0120-6230201000030000100048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br>  49. R. Arce. "Conceptos B&aacute;sicos sobre la Heterocedasticidad en el modelo B&aacute;sico de Regresi&oacute;n lineal". <i>Departamento de Econom&iacute;a Aplicada.</i> Universidad de Madrid. Madrid. 2004. pp. 4-9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0120-6230201000030000100049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p><font face="verdana" size="2">  (Recibido el 4 de Marzo de 2008. Aceptado el 25 de febrero de 2010) </font></p>     <p><font face="verdana" size="2">   * Autor de correspondencia: tel&eacute;fono: + 57 + 4 + 571 83 38, fax: + 57 + 4 + 425 10 03, correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:delgmarcela@gmail.com">delgmarcela@gmail.com</a>. (C. Delgado)  </font></p>      ]]></body><back>
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