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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Recubrimientos de quitosano/fosfato de calcio obtenidos por electrodeposición sobre una aleación de titanio]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Calcium phosphate coatings in orthopedic implants Ti6AL4V are known to accelerate bone growth and improve the fixation of bone. Electrolytic deposition of bioactive compounds has provided greater advantages than the coatings obtained by conventional methods. The electrolytic method has facilitated the ability to add chitosan to the solution of calcium and phosphate ions and fix this compound, functionally and structurally. In this way, composites of calcium phosphate-chitosan on a substrate Ti6Al4V ELI has been obtained by cathodic electrodeposition, which are morphologically and chemically characterized by SEM-EDX, XRD and FTIR, showing the chemical structure and associations between calcium phosphate and chitosan. Furthermore, the impact of the current density, electrodeposition time and the concentration of chitosan solution on the polarization resistance of coated substrates obtained were evaluated by EIS. Equivalent circuits were used to model the physicochemical behavior of the coatings from an electrochemical view point.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Recubrimientos bioactivos]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="Verdana" size="4"> <b>Recubrimientos de quitosano/fosfato de calcio obtenidos por electrodeposici&oacute;n sobre una aleaci&oacute;n de titanio</b></font></p>      <p align="center"><font face="Verdana" size="4"> <b>Chitosan/calcium phosphate coating obtained by electrodeposition on titanium alloy</b></font></p>       <p> <font face="Verdana" size="2"> <i>Dar&iacute;o Yesid Peña Ballesteros<sup>*</sup> Hugo Armando Estupiñ&aacute;n Dur&aacute;n, Elcy Mar&iacute;a C&oacute;rdoba Tutta, Ricardo Mart&iacute;nez, Custodio V&aacute;squez Quintero</i></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">universidad Industrial de Santander, Grupo de Investigaciones en Corrosi&oacute;n, Kil&oacute;metro 7, v&iacute;a Refugio üIS. Guatiguar&aacute;, Piedecuesta, Santander, Colombia</font></p>   <hr noshade size="1">      <p><font face="Verdana" size="3"> <b>Resumen</b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">Los recubrimientos de fosfato de calcio en Ti6AL4V como implantes ortop&eacute;dicos son conocidos por acelerar el crecimiento &oacute;seo y mejorar la fijación del hueso. La deposici&oacute;n electrol&iacute;tica de estos compuestos bioactivos ha presentado mayores ventajas que los recubrimientos obtenidos por m&eacute;todos convencionales. Este m&eacute;todo electrol&iacute;tico ha facilitado la posibilidad de adicionar quitosano a la soluci&oacute;n de iones calcio y fosfato y fijar este compuesto, funcional y estructuralmente. De esta forma se han obtenido, compuestos de fosfatos de calcio-quitosano sobre un substrato de Ti6Al4V ELI por electrodeposici&oacute;n cat&oacute;dica, los cuales se han caracterizado morfol&oacute;gica y qu&iacute;micamente, mediante SEM-EDX, DRX y FTIR, para determinar la estructura y asociaciones qu&iacute;micas entre los fosfatos de calcio y el quitosano. Adem&aacute;s, se evalu&oacute; por EIE, la incidencia de la densidad de corriente, el tiempo de electrodeposición y la concentraci&oacute;n de quitosano en soluci&oacute;n sobre la resistencia a la polarizaci&oacute;n de los sustratos recubiertos. Se emplearon circuitos equivalentes para modelar el comportamiento fisicoqu&iacute;mico de los recubrimientos desde un punto de vista electroqu&iacute;mico.</font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Recubrimientos bioactivos, hidroxiapatita (HA), quitosano, EIS, electroqu&iacute;mica</font></p>  <hr noshade size="1">      <p><font face="Verdana" size="3"> <b>Abstract</b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"> Calcium phosphate coatings in orthopedic implants Ti6AL4V are known to accelerate bone growth and improve the fixation of bone. Electrolytic deposition of bioactive compounds has provided greater advantages than the coatings obtained by conventional methods. The electrolytic method has facilitated the ability to add chitosan to the solution of calcium and phosphate ions and fix this compound, functionally and structurally. In this way, composites of calcium phosphate-chitosan on a substrate Ti6Al4V ELI has been obtained by cathodic electrodeposition, which are morphologically and chemically characterized by SEM-EDX, XRD and FTIR, showing the chemical structure and associations between calcium phosphate and chitosan. Furthermore, the impact of the current density, electrodeposition time and the concentration of chitosan solution on the polarization resistance of coated substrates obtained were evaluated by EIS. Equivalent circuits were used to model the physicochemical behavior of the coatings from an electrochemical view point.</font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Keywords:</b> Bioactive coatings, hydroxyapatite (HA), chitosan, EIS, electrochemical</font></p>  <hr noshade size="1">      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font>      <p><font face="Verdana" size="2">El desarrollo de t&eacute;cnicas de modificaci&oacute;n superficial en el campo de los biomateriales, ha permitido producir recubrimientos sobre sustratos de aleaciones de titanio, resistentes al desgaste y a la corrosi&oacute;n por fluidos corporales, sin interferir en sus excelentes propiedades mec&aacute;nicas. Los principales m&eacute;todos usados para tal fin son: sol-gel, plasma spray y la deposici&oacute;n electroqu&iacute;mica de recubrimientos, Por lo general, estos recubrimientos est&aacute;n compuestos de hidroxiapatita HAP (Ca<sub>10</sub>(PO<sub>4</sub>)<sub>6</sub>(OH)<sub>2</sub>), ya que el principal componente mineral de tejido óseo es este compuesto, con lo cual se puede obtener una mayor oseointegraci&oacute;n entre el hueso y la pr&oacute;tesis implantada.    <br>    <br> Mediante el m&eacute;todo de electrodeposici&oacute;n de hidroxiapatita a partir de precursores i&oacute;nicos en soluci&oacute;n, se obtienen recubrimientos bastante homog&eacute;neos sobre piezas de formas complicadas. Esta t&eacute;cnica se basa en el uso de los siguientes elementos: una celda electrol&iacute;tica, un c&aacute;todo y un &aacute;nodo, un electrolito que act&uacute;a como conductor i&oacute;nico, el cual contiene los elementos que se quieren depositar y una fuente de potencia externa, a la cual estar&aacute;n unidos los electrodos por medio de conductores el&eacute;ctricos, generando la diferencia de potencial necesaria para llevar a cabo la deposici&oacute;n de los recubrimientos.    <br>    <br> Por medio de esta t&eacute;cnica, se han obtenido diversos recubrimientos, generalmente a base de fosfatos de calcio con adecuadas propiedades qu&iacute;micas superficiales y de biocompatibilidad [1,2]. No obstante, se ha hecho necesaria la introducci&oacute;n en los recubrimientos, de algunos elementos bioactivos, tales como polisac&aacute;ridos, entre los cuales, se encuentra el quitosano, el cual, ha mostrado que puede mejorar la proliferaci&oacute;n celular sobre la superficie de los recubrimientos. El quitosano es un polisac&aacute;rido semidegradable de origen natural conocido por, inducir una mayor oseointegraci&oacute;n de las pr&oacute;tesis [3]. En la actualidad, la tendencia es la utilizaci&oacute;n de implantes recubiertos con materiales de origen natural, por dos razones principales: primero, porque tales materiales promueven una mejor y m&aacute;s r&aacute;pida cicatrizaci&oacute;n, exhibiendo una mayor compatibilidad con el tejido humano. En segundo lugar, porque estos materiales al biodegradarse, no generan productos t&oacute;xicos al cuerpo humano. En este sentido, el quitosano ha sido combinado con varias formas de fosfatos de calcio con el objetivo de mejorar la reacci&oacute;n de integraci&oacute;n del implante y evitar el rechazo por la generaci&oacute;n de productos citot&oacute;xicos, generando una mejor regeneraci&oacute;n del hueso [3,4].    <br>    <br> El titanio es usado como un biomaterial, debido principalmente a que tiene la habilidad de permitir una unión &iacute;ntima entre el implante y el tejido &oacute;seo, adem&aacute;s, sus propiedades superficiales, relacionadas con la formaci&oacute;n y configuraci&oacute;n de &oacute;xidos, pueden ser variadas en un rango relativamente amplio [5]. Otro aspecto, que hace del titanio uno de los materiales m&aacute;s importantes para la aplicaci&oacute;n en implantes biom&eacute;dicos y dentales, es principalmente su excelente resistencia a la corrosi&oacute;n en muchos ambientes acuosos, debido a la formaci&oacute;n espont&aacute;nea de una capa pasiva, la cual es muy protectora [6].    <br>    <br> Yokogawa et al, obtuvieron recubrimientos de fosfatos de calcio sobre derivados ricos en f&oacute;sforo con quit&iacute;n/'quitosano, los cuales fueron tratados con Ca(OH)<sub>2</sub> y posteriormente sumergidos en SBF. El enriquecimiento en f&oacute;sforo indujo a la formaci&oacute;n de capas delgadas, formadas a partir de la hidr&oacute;lisis parcial del grupo funcional PO4, las cuales estimularon el crecimiento de monocapas de fosfatos de calcio sobre la superficie, despu&eacute;s de pocos d&iacute;as de inmersi&oacute;n en SBF. Tambi&eacute;n, con cultivos celulares, evaluaron la biocompatibilidad de los recubrimientos, obteniendo buenos resultados en estas propiedades [7]. Muzzarelli et al, depositaron pel&iacute;culas de quitosano a partir de una soluci&oacute;n de acetato de quitosano, sobre una capa compuesta de hidroxiapatita y un vidrio bioactivo, por plasma spray sobre un sustrato de Ti6Al4V. Los resultados mostraron, proliferaci&oacute;n celular positiva, y oseointegraci&oacute;n [8]. Di Martino et al, revisaron el empleo del quitosano en la ingenier&iacute;a de tejidos, teniendo en cuenta, el grado de desacetilaci&oacute;n, el peso molecular del quitosano sobre la hidrofilicidad y las propiedades mec&aacute;nicas biodegradaci&oacute;n y biocompatibilidad de estructuras de quitosano, resaltando que el quitosano con mayor grado de desacetilaci&oacute;n y peso molecular es el m&aacute;s adecuado para aplicaciones en ingenier&iacute;a de tejidos [9]. Seol et al, utilizaron esponjas porosas de quitosano fabricadas por liofilizaci&oacute;n para evaluar el crecimiento de c&eacute;lulas osteobl&aacute;sticas. La densidad celular, la actividad de la fosfatasa alcalina y la deposici&oacute;n de calcio fueron monitoreadas por un periodo de 56 d&iacute;as. Los resultados mostraron que las esponjas de quitosano pueden ser utilizadas como un material de soporte efectivo para la formaci&oacute;n in Vitro de hueso, en ingenier&iacute;a de tejidos [10]. Wang et al. electrodepositaron y caracterizaron recubrimientos de fosfatos de calcio y quitosano sobre un sustrato de Ti6Al4V. Observaron que el quitosano disminuye el espesor y la rugosidad del recubrimiento. Con ensayos in vitro, obtuvieron una aceptable proliferaci&oacute;n celular [11]. Pang et al, obtuvieron dep&oacute;sitos cat&oacute;dicos, relativamente uniformes de hidroxiapatita y quitosano, de aproximadamente, 50µm de espesor, sobre sustratos de platino, aceros inoxidables y grafito. El m&eacute;todo de deposici&oacute;n se bas&oacute; en la fijaci&oacute;n electroqu&iacute;mica del quitosano y en la deposici&oacute;n electrofor&eacute;tica de las part&iacute;culas de hidroxiapatita. Resultados de los ensayos electroqu&iacute;micos mostraron un incremento en los valores de resistencia a la polarizaci&oacute;n, relacionados con el car&aacute;cter protector del recubrimiento obtenido [12]. Wang et al, estudiaron la cin&eacute;tica de crecimiento de recubrimientos compuestos de fosfatos de calcio depositados electrol&iacute;ticamente. Igualmente estudiaron el efecto de la densidad de corriente de deposici&oacute;n de quitosano, sobre la formaci&oacute;n de los recubrimientos y notaron que el incremento de la densidad de corriente acelera el proceso de deposici&oacute;n y aumenta la cantidad de quitosano en el recubrimiento [13]. Tuzlakoglu et al, estudiaron la obtenci&oacute;n, por m&eacute;todos biomim&eacute;ticos de capas de apatitas tipo &oacute;seas sobre fibras de quitosano, determinando la influencia de estos recubrimientos sobre la respuesta de c&eacute;lulas osteobl&oacute;sticas [14].    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <br> En este trabajo se ha estudiado la estructura, morfolog&iacute;a, composici&oacute;n y configuraci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica y estabilidad electroqu&iacute;mica de recubrimientos de HAP con quitosano,  por medio de FTIR, DSC, SEM-EDX, Tafel y EIS. Adem&aacute;s, se examinaron los cambios que se generan en estas propiedades a partir de las reacciones de mineralizaci&oacute;n, cuando los recubrimientos son sometidos a inmersi&oacute;n en SBF. </font></p>    <br>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">Probetas cil&iacute;ndricas de Ti6Al4V de 12 mm de di&aacute;metro y 3 mm de espesor, fueron empleadas como sustratos para la obtenci&oacute;n de los recubrimientos de quitosano/fosfato de calcio. Polvos de quitosano con un porcentaje de desacetilaci&oacute;n >= 75%, fueron empleados para este fin. Se realiz&oacute; la caracterizaci&oacute;n del sustrato seleccionado por medio de un an&aacute;lisis qu&iacute;mico elemental por la t&eacute;cnica de espectrometr&iacute;a de fluorescencia de rayos X de energ&iacute;a dispersa. De igual manera, se realizaron an&aacute;lisis termogravim&eacute;tricos (TGA) y an&aacute;lisis por calorimetr&iacute;a de barrido diferencial (DSC).    <br>    <br> Las probetas fueron pulidas hasta papel abrasivo # 600, limpiadas ultras&oacute;nicamente con acetona y atacadas qu&iacute;micamente en una mezcla 1:1:1 de HCl, H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> y H<sub>2</sub>O. Las soluciones de deposici&oacute;n fueron preparadas con 1% en peso de quitosano disuelto en 1% en volumen de &aacute;cido ac&eacute;tico, adicionando posteriormente, a soluciones supersaturadas de fosfatos de calcio, controlando un pH entre 8,3 y 8,6 a una temperatura de 60°C y una agitaci&oacute;n de 600 rpm. El proceso se llev&oacute; a cabo por deposici&oacute;n cat&oacute;dica en forma galvanost&aacute;tica, empleando un electrodo de grafito como &aacute;nodo y los sustratos de Ti6Al4V como c&aacute;todos, conectados a una fuente de potencia regulada. Luego de este proceso, las muestras fueron retiradas, enjuagadas con agua destilada y secadas con aire caliente por diez minutos. El proceso de electrodeposici&oacute;n de la hidroxiapatita a partir de soluciones supersaturadas de fosfatos de calcio, seg&uacute;n Kuo [15], consiste, b&aacute;sicamente en cuatro etapas:    <br>    <br> </font></p>       <p><font face="Verdana" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<li> Reducci&oacute;n del O<sub>2</sub>: </li>      <p><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02e01.gif"><a name="ecuacion1"></a></p>      <li>Reducci&oacute;n del H<sub>2</sub> PO<sub>4-</sub>  y el HPO4<sup>-2</sup>: </li>     <p><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02e02.gif"><a name="ecuacion2y3"></a></p>      <li>Reducci&oacute;n del H<sub>2</sub>O:</li>     <p><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02e03.gif"><a name="ecuacion4"></a></p>      <li><i>Migraci&oacute;n de los iones</i> Ca+<sup>2</sup> hacia la superficie del c&aacute;todo para reaccionar con los iones 2PO<sub>4</sub><sup>-3</sup> y OH<sup>-</sup> para formar la HA (Ca<sub>10</sub>(PO<sub>4</sub>)<sub>6</sub>(OH )<sub>2</sub>).</li> </p></font>      <p><font face="Verdana" size="2">El proceso de electrodeposici&oacute;n del quitosano se basa en tres etapas:      <br>    <br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<li>Protonaci&oacute;n en soluci&oacute;n &aacute;cida: etapa en la cual, el grupo amino presente en la unidad b&aacute;sica de quitosano es cargado positivamente con los iones H<sup>+</sup> presentes en la soluci&oacute;n &aacute;cida en la cual se encuentra disuelto. </li>      <p><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02e04.gif"><a name="ecuacion5"></a></p>      <li>Reacci&oacute;n cat&oacute;dica: reacci&oacute;n de reducci&oacute;n de las mol&eacute;culas de H<sub>2</sub>O sobre la superficie del c&aacute;todo para producir evoluci&oacute;n de hidr&oacute;geno y grupos OH</sup>-</sup>, los cuales aumentan el pH alrededor del c&aacute;todo.</li>      <p><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02e05.gif"><a name="ecuacion6"></a></p>      <li>Neutralizaci&oacute;n del quitosano cargado positivamente y la formaci&oacute;n de un dep&oacute;sito insoluble sobre el sustrato cat&oacute;dico.</li>      <p><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02e06.gif"><a name="ecuacion7"></a></p>  Se realizaron ensayos para evaluar la morfolog&iacute;a, composici&oacute;n, estructura qu&iacute;mica, mediante SEM- EDX, FT-IR y DRX. Ensayos electroqu&iacute;micos fueron realizados en un fluido corporal simulado, formulado por Kokubo et al [16], el cual consiste de un fluido inorg&aacute;nico sin c&eacute;lulas, con concentraciones i&oacute;nicas similares a las existentes en el fluido fisiológico humano, principalmente con iones calcio y f&oacute;sforo, con el fin de simular la formaci&oacute;n de la matriz extracelular apat&iacute;tica, durante la fijaci&oacute;n, crecimiento y diferenciamiento celular.</p></font>       <br>    <p><font face="Verdana" size="3"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"> En la tabla 1 se presentan los resultados obtenidos de composici&oacute;n por espectrometr&iacute;a de fluorescencia de rayos X de energ&iacute;a dispersa y los correspondientes valores de composici&oacute;n qu&iacute;mica para la aleaci&oacute;n de Ti6Al4V ELI reportados en la norma ASTM F136 [17]. </font></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Tabla 1</b> Composici&oacute;n qu&iacute;mica del Ti6Al4V</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02t01.gif"><a name="tabla1"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2">Los resultados obtenidos muestran que el material corresponde qu&iacute;micamente con la aleaci&oacute;n Ti6Al4V ELI ASTM F136. Empleando un tiempo de electrodeposici&oacute;n de 4 horas, una densidad de corriente de 200 mA/cm2 y una variaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de quitosano entre 0,05 y 0,25 g/L; se obtuvieron los resultados de Difracci&oacute;n de Rayos X (DRX), mostrados en la figura 1.</font></p>      <p align="center"><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02i01.gif"><a name="figura1"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Figura 1</b> DRX de las muestras obtenidas a 200Ma, 4h y entre 0,05 y 0,25 g/L de quitosano</font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">Los patrones de DRX observados en la figura 1, muestran la presencia de hidroxiapatita y fosfato octac&aacute;lcico en las tres condiciones evaluadas. Se emple&oacute; el criterio del ancho del pico a la altura media (FWHM) de la curva de difracci&oacute;n, el cual relaciona el aumento de la cristalinidad, de una forma cualitativa y comparativa, mediante la medici&oacute;n de la altura media de la intensidad de la curva de difracci&oacute;n, con la disminuci&oacute;n del espesor de los cristales. En otras palabras aplicable a este an&aacute;lisis, cuando el ancho de la curva de difracci&oacute;n se incrementa, se disminuye la cristalinidad del dep&oacute;sito. En la figura 2 se muestra el an&aacute;lisis gr&aacute;fico propuesto.</font></p>      <p align="center"><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02i02.gif"><a name="figura2"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Figura 2</b> Comparaci&oacute;n de los anchos de picos medios de difracci&oacute;n en las diferentes composiciones de quitosano empleadas</font></p>       <p><font face="Verdana" size="2">Utilizando la reflexi&oacute;n de m&aacute;xima intensidad de la hidroxiapatita presentada en los difractogramas, entre 40,2° < 2&theta; < 40,8°, se observa una disminuci&oacute;n en la cristalinidad del recubrimiento cuando se incrementa la cantidad de quitosano en la soluci&oacute;n. Se realizaron an&aacute;lisis por infrarrojo FT-IR a una muestra de quitosano pura, e igualmente a muestras de recubrimiento de fosfato de calcio- quitosano con porcentajes de 0,05, 0,15 y 0,25 g/L del polisac&aacute;rido con el fin de determinar mediante el an&aacute;lisis de sus espectros, las bandas correspondientes a las tensiones de los grupos funcionales presentes, corroborando la presencia del pol&iacute;mero en los recubrimientos depositados. En la figura 3 se puede observar para el quitosano puro las bandas de intensidad media correspondientes a vibraciones de estiramiento de NH<sub>2</sub> ubicadas en la regi&oacute;n de 3500-3400 cm<sup>-1</sup> traslapadas con las bandas de vibraci&oacute;n de alargamiento del OH entre 3700 y 3000 cm-1, y la banda de absorci&oacute;n de intensidad media a alta, relativas a las vibraciones de deformaci&oacute;n del grupo amino a una frecuencia entre 1650-1580 cm-1. Bandas de alargamiento del CH<sub>2</sub> en la regi&oacute;n de 3000 a 2800 cm<sup>-1</sup>, y bandas de flexi&oacute;n del enlace C-OH en el rango de 1450-1300 cm<sup>-1</sup>. Tambi&eacute;n est&aacute;n presentes, bandas de absorci&oacute;n de intensidad media a d&eacute;bil para el enlace C-N de las aminas alif&aacute;ticas primarias en la regi&oacute;n de 1250 a 1020 cm<sub>-1</sub>. En los espectros de infrarrojo de los sustratos recubiertos a diferentes concentraciones de quitosano, se observan las bandas propias de las vibraciones correspondientes a los enlaces de NH&#094; lo cual confirma la presencia del pol&iacute;mero en los recubrimientos. Por otro lado, tambi&eacute;n se puede apreciar el pico correspondiente al enlace PO<sub>4</sub><sup>-3</sup> a 1030 cm<sub>-1</sub>, proveniente de los fosfatos de calcio presentes.</font></p>      <p align="center"><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02i03.gif"><a name="figura3"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Figura 3</b> Espectro FT-IR del quitosano puro y los recubrimientos obtenidos a los diferentes porcentajes de quitosano</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">La caracterizaci&oacute;n electroqu&iacute;mica se realiz&oacute; con el prop&oacute;sito de evaluar la estabilidad de los recubrimientos obtenidos a las diferentes concentraciones de quitosano en la soluci&oacute;n de electrodeposici&oacute;n. En la figura 4 se muestra la caracterizaci&oacute;n por la t&eacute;cnica de polarizaci&oacute;n potenciodin&aacute;mica a los diferentes recubrimientos. Se observan potenciales de corrosi&oacute;n en el rango entre -0,5 y -0,7 voltios, en el cual, la tendencia a la degradaci&oacute;n de los materiales obtenidos disminuye en el siguiente orden de concentraci&oacute;n de quitosano: 0,05 - 0,10 - 0,15 - 0,25 - 0,20 g/L de quitosano. De igual forma, se observ&oacute; esta tendencia con las densidades de corriente de corrosi&oacute;n, indicando un efecto importante entre la presencia y la cantidad de quitosa- no en el recubrimiento y la estabilidad y cin&eacute;tica de disoluci&oacute;n del material con el recubrimiento. Comportamientos similares de estabilidad, fueron observados con la diferentes concentraciones de quitosano empleadas, sin embargo, se presentan unas diferencias en estas curvas, espec&iacute;ficamente en la regi&oacute;n cat&oacute;dica, debido a que, al aumentar la concentraci&oacute;n del polisac&aacute;rido, se pasa de un comportamiento m&aacute;s pasivo a uno m&aacute;s activo a partir de 0,15 g/L de quitosano. Sin embargo, esta hip&oacute;tesis da lugar a suposiciones err&oacute;neas, ya que la inestabilidad electroqu&iacute;mica y el aumento en la densidad de corriente de corrosi&oacute;n, pueden estar relacionados con un incremente en la bioactivi- dad del Ti6Al4V recubierto con fosfato de calcio y quitosano, lo cual corresponder&iacute;a a una deducci&oacute;n m&aacute;s l&oacute;gica. Esto se puede afirmar porque los rangos de potencial y de densidad de corriente entre las muestras con diferentes concentraciones de quitosano son muy pequeños, y estas pequeñas variaciones deberían estar m&aacute;s relacionadas a cambios de reactividad superficial producidos por la naturaleza reactiva de los compuestos que componen el recubrimiento, lo que puede beneficiar la reacci&oacute;n con el tejido &oacute;seo.</font></p>      <p align="center"><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02i04.gif"><a name="figura4"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Figura 4</b> Curvas de polarizaci&oacute;n potenciodin&aacute;micas a diferentes concentraciones de quitosano</font></p>       <p><font face="Verdana" size="2">Para determinar los par&aacute;metros electroqu&iacute;micos de los procesos far&aacute;dicos y no far&aacute;dicos que ocurren en la interfase sustrato-recubrimiento-electrolito, los cuales est&aacute;n relacionados con la bioactividad electroqu&iacute;mica, se realizaron ensayos de espectroscopia de impedancia electroqu&iacute;mica a las muestras obtenidas con las diferentes concentraciones de quitosano. En la figura 5 se presentan los espectros de Impedancia (Nyquist), correspondientes a los recubrimientos obtenidos con 0,1 y 0,2 g/L de quitosano. En la figura 5 se observa claramente la similitud en los comportamientos electroqu&iacute;micos, correspondientes a una y posiblemente, dos constantes de tiempo, las cuales disminuyen con la resistencia a la polarizaci&oacute;n, al aumentar la concentraci&oacute;n de quitosano, confirmando que se presenta un aumento en la reactividad del recubrimiento, al adicionar m&aacute;s cantidad de quitosano. Al mismo tiempo se corrobora el análisis realizado por DRX, en el cual, a mayores cantidades de quitosano se present&oacute; una menor cristalinidad. Los materiales de mayor car&aacute;cter cristalino suelen presentar un mejor ordenamiento at&oacute;mico-estructural presentando una energ&iacute;a libre superficial m&aacute;s baja, lo que implica que el material presenta menor tendencia a degradarse.</font></p>      <p align="center"><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02i05.gif"><a name="figura5"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Figura 5</b> Espectros de Nyquist de los recubrimientos de fosfato de calcio-quitosano, a diferentes concentraciones</font></p>       <p><font face="Verdana" size="2">En la figura 6 se muestran los espectros de Bode de los recubrimientos obtenidos a 0,1 y 0,2 g/L de quitosano, se observa la posible presencia de dos constantes de tiempo muy traslapadas definidas en el rango de frecuencia entre 0,1 y 10.000 Hertz. Las pequeñas disminuciones en el &aacute;ngulo de fase al aumentar la concentraci&oacute;n de quitosano, confirman una posible reacci&oacute;n de disoluci&oacute;n con un aumento en el pH local, un aumento en la conductividad cercana a la superficie del recubrimiento y en t&eacute;rminos generales, una mayor reactividad [18,19]. Estas dos constantes de tiempo fueron asumidas en un modelo de circuitos equivalentes propuesto, el cual permiti&oacute; simular el comportamiento electroqu&iacute;mico del sistema resistencia a la soluci&oacute;n, resistencia y capacitancia de la doble capa electroqu&iacute;mica en la interfase electrolito/recubrimiento y resistencia y capacitancia de la doble capa electroqu&iacute;mica en la interfase recubrimiento/metal. En la figura 7 se presenta el modelo propuesto. Capacitancias como elementos de fase constante, han sido em-pleados para representar las desviaciones en la transferencia de carga producidas por las irregularidades, tanto de la superficie del recubrimiento, como de la interfase metal/recubrimiento. Las dos constantes de tiempo descritas anteriormente, correspondientes a dos semiarcos traslapados en los espectros de impedancia, se representan en la figura 7 como dos sistemas RC en paralelo y estos a su vez, en serie con la resistencia del electrolito.</font></p>      <p align="center"><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02i06.gif"><a name="figura6"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Figura 6</b> Espectro de Bode de los recubrimientos obtenidos a 0,1 y 0,2 g/L de quitosano</font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">En la figura 8 se muestra el an&aacute;lisis morfol&oacute;gico realizado por SEM en las muestras obtenidas con 0,1 y 0,2 g/L de quitosano. Se observa un aumento en las irregularidades superficiales al aumentar la cantidad de quitosano, corroborando la inestabilidad superficial observada en los ensayos de DRX y en los ensayos electroqu&iacute;micos. Estas irregularidades superficiales son primordiales en la intenci&oacute;n de contar con propiedades que mejoren la fijaci&oacute;n con el hueso en este tipo de recubrimientos.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02i07.gif"><a name="figura7"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Figura 7</b> Modelo de circuitos equivalentes propuesto para representar los procesos de doble capa electroqu&iacute;mica obtenidos en los ensayos de EIE</font></p>       <p align="center"><img src="/img/revistas/rfiua/n54/n54a02i08.gif"><a name="figura8"></a></p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Figura 8</b> SEM de las muestras obtenidas con 0,1 a) y 0,2 g/L b) de quitosano</font></p>         <br>    <p><font face="Verdana" size="3"><b>Conclusiones</b></font></p>      <p><font face="Verdana" size="2">Se obtuvieron recubrimientos de fosfato octa- c&aacute;lcico-hidroxiapatita-quitosano por un m&eacute;todo de electrodeposici&oacute;n cat&oacute;dica sobre sustratos de Ti6Al4V F136. Estos recubrimientos presentaron una estructura, cuya cristalinidad disminuy&oacute; al aumentar la cantidad de quitosano empleado en la soluci&oacute;n de electrodeposici&oacute;n. Los resultados de DRX confirmaron el efecto de la concentraci&oacute;n del polisac&aacute;rido sobre la variaci&oacute;n de la cristalinidad. Estas deducciones fueron corroboradas mediante los ensayos de polarizaci&oacute;n po- tenciodin&aacute;mica y espectroscop&iacute;a de Impedancia Electroqu&iacute;mica, los cuales mostraron una menor estabilidad electroqu&iacute;mica en los recubrimientos obtenidos con mayor cantidad de quitosano. Pequeñas diferencias en los resultados electroqu&iacute;-micos, hacen suponer que el mecanismo activo presentado en las muestras obtenidas con mayor cantidad de quitosano, se haya presentado por un aumento en la reactividad superficial, lo cual se puede relacionar con una mayor bioactividad.</font></p>       <br>    <p><font face="Verdana" size="3"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Los autores expresan sus agradecimientos a COLCIENCIAS por el financiamiento de esta investigaci&oacute;n. Proyecto con C&oacute;digo: 1102-40320771, Contrato 055-2008</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <p><font face="Verdana" size="3"><b>Referencias</b></font></p>      <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">1.	J. Wang, P. Layrolle, M. Stigter, K. de Groot. "Biomimetic and electrolytic calcium phosphate coatings on titanium alloy: physiochemical characteristics and cell attachment". Biomaterials. Vol. 25. 2004. pp. 583-592.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-6230201000040000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 2.	T. M. Sridhar, U. Kamachi Mudali, M. Subbaiyan. "Preparation and characterization of electrophoretically deposited hydroxyapatite coatings on type 316L stainless steel". Corrosion Science. Vol. 45. 2003. pp. 237-252.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-6230201000040000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 3.	R. Sastre, S. de Aza, J. San Rom&aacute;n. Biomateriales. CYTED. Faenza Editrice Ib&eacute;rica S. L. San Rom&aacute;n. 2003. pp. 109-128.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-6230201000040000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 4.	E. Lee, D. Shin, H. Kim, Y Koh, J. Jang. "Membrane of hybrid chitosan-silica xerogel for guided bone regeneration". Biomaterials. Vol. 30. 2009. pp. 743-750.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-6230201000040000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br> 5.	B. Finke, F. Luethen, K. Schroeder, P. D. Mueller, C. Bergemann, M. Frant, A. Ohl, B. J. Nebe. "The effect of positively charged plasma polymerization on initial osteoblastic focal adhesion on titanium surfaces". Biomaterials. Vol. 28. 2007. pp. 4521-4534.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-6230201000040000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 6.	Y. Li, I. Lee, F. Cui, S. Choi. "The biocompatibility of nanostractured calcium phosphate coated on micro-arc oxidized titanium". Biomaterials. Vol. 29. 2008. pp. 2025-2032.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-6230201000040000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 7.	K. Teraoka, T. Nonami, Y. Doi, H. Taoda, K. Naganuma, Y. Yokogawa, T. Kameyama. "Hydroxyapatite implantation on the surface of pure titanium for orthopedic implants". Materials Science and Engineering: C. Vol. 13. 2000. pp. 105-107.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-6230201000040000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 8.	R. A. Muzzarelli, G. Biagini, A. De Benedittis, P. Mengucci, G. Majni, G. Tosi. "Chitosan-Oxychitin Coating for Prostheric Materials". Carbohydrate Polymers. Vol. 45. 2001. pp. 35-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-6230201000040000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 9.	A. Di Martino, M. Sittinger, M. V. Risbud. "Chitosan: A versatile biopolymer for orthopedic tissue-engineering". Biomaterials. Vol. 26. 2005. pp. 5983-5990.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-6230201000040000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br> 10.	S. Yang-Jo, L. Jue-Yeon, P. Yoon-Jeong. "Chitosan sponges as tissue engineering scaffolds for bone formation". Biotechnology letters. Vol. 26. 2004. pp. 1037-1041.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-6230201000040000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 11.	J. Wang, J. Boer, K. De Groot. "Preparation and Characterization of Electrodeposited Calcium Phosphate/Chitosan Coating on Ti6Al4V Plates". Journal of Dental Research. Vol. 83. 2004. pp. 296-301.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-6230201000040000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 12.	X. Pang, I. Zhitomirsky. "Electrodeposition of Composite hydroxyapatite-chitosan films". Materials Chemistry and Physics. Vol. 9. 2005. pp. 245-251.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-6230201000040000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 13.	W. Jiawei. "Electrolytic deposition of calcium phosphate/chitosan coating on titanium alloy: growth kinetics and influence of current density, acetic acid, and chitosan". Journal of Biomedical Materials Research. Part A. Vol. 76. 2006. pp. 503-511.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-6230201000040000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 14.	K. Tuzlakoglu, R. L. Reis. "Formation of bone-like apatite layer on chitosan fiber mesh scaffold by a biomimetic spraying process". J. Mater Sci: Mater. Med. Vol. 18. 2007. pp. 1279-1286.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-6230201000040000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br> 15. M. C. Kuo, S. K. Yen. "The process of electrochemical deposited hydroxyapatite coatings on biomedical titanium at room temperature". Materials science & engineering C. Biomimetic and supramolecular Systems. Vol. 8. 2002. pp. 153-160.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-6230201000040000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 16. T. Kokubo, H. M. Kim. "Process of calcification on artificial materials". Zeitschrift für Kardiologie. Vol. 90. 2001. pp. 86-91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-6230201000040000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 17. ASTM, F136-08e1. Specification for wrought Ti6Al4V ELI alloy for surgical implant applications. ASTM International West Conshohocken. PA. 2008. DOI 10.1520/F036-08. www.ast.org    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-6230201000040000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 18. R. Souto. "Degradation characteristics of hydroxyapatyte coatings on arthopedic TiAlV in simulated physiological media investigated by electrochemical impedance spectroscopy". Biomaterials. Vol. 24. 2003. pp. 4213-4221.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-6230201000040000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    <!-- ref --><br> 19. M. Metikos-Hukovic, E. Tkal, A. Kwokal, J. Piljac. "An in Vitro study of Ti and Ti-alloys coated with sol-gel derived hydroxyapatite coatings". Surface and Coatings Technology. Vol. 165. 2003. pp. 40-50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-6230201000040000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <br>   (Recibido el 27 de agosto de 2009. Aceptado el 12 de abril de 2010)    <br>    <br> <sup>*</sup>Autor de correspondencia: tel&eacute;fono: + 57 + 4 + 634 40 00 ext. 2420, fax: + 57 + 4 + 632 04 71, correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:dypena@uis.edu.co">dypena@uis.edu.co</a> (D. Y. Peña)  </font></p>         ]]></body><back>
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