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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad insecticida de extractos vegetales sobre larvas de Aedes aegypti, Diptera: Culicidae]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Given the increasingly frequent occurrence of resistance of Ae. aegypti to conventional insecticides, it becomes necessary to study plant extracts that can be used as alternative for control. Objective: To establish the insecticidal activity of metanolic extracts of Gliricidia sepium, Sapindus saponaria and Annona muricata against third instar Ae. aegypti larvae. Materials and methods: A percolation with methanol of macerated plant species to obtain total extracts was performed and then using dilutions of each extract was proceeded to perform bioassays on third stage larvae of Ae. aegypti, strains Rockefeller and wildtype. PROBIT analysis was performed to determine the median lethal concentration (LC50) of the extracts tested. Results: LC50 values found for each of extract are: A. muricata, 6,48 ppm (CI 95 %: 5,88 - 7,27); S. saponaria, 601,81 ppm (CI 95 %: 498,41 - 690,74); G. sepium, 1 328,91 ppm (CI 95 %: 1 201,45 - 1 448,70), Rockefeller strain. A. muricata, 7,26 ppm (CI 95 %: 6,65 - 8,05); S. saponaria, 658,64 ppm (CI 95 %: 591,48 -730,05); G. sepium, 1 532,89 ppm (CI 95 %: 1 408,15 - 1 660,70), for wildtype strain. Conclusion: The results are promising for the control of immature stages of Ae. aegypti]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">      <p align="right"><b>Art&iacute;culos de investigaci&oacute;n cient&iacute;fica o tecnol&oacute;gica</b></p>     <p align="center"><font size="4"><b>Actividad insecticida de extractos vegetales sobre larvas de <i>Aedes aegypti, Diptera: Culicidae </i></b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>Insecticidal activity of vegetal extracts against <i>Aedes aegypti larvae, Diptera: Culicidae. </i></b></font></p>     <p align="center">SANTIAGO AMARILES-BARRERA<sup>1</sup>, CARLOS MARIO GARC&Iacute;A-PAJ&Oacute;N<sup>2</sup>, GABRIEL PARRA-HENAO<sup>3</sup></p>     <p><sup>1</sup>Bi&oacute;logo. Grupo Biolog&iacute;a CES-EIA, Universidad CES, Medell&iacute;n, Colombia. Laboratorio  de Entomolog&iacute;a, Instituto Colombiano de Medicina Tropical. Medell&iacute;n-Colombia.    <br> <sup>2</sup>Ingeniero Qu&iacute;mico. PhD. Laboratorio de Productos Naturales, Universidad Nacional de Colombia. Colombia.    <br> <sup>3</sup>Bi&oacute;logo. PhD. Laboratorio de Entomolog&iacute;a, Instituto Colombiano de Medicina Tropical. Colombia.</p> <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b><i>Introducci&oacute;n: </i></b><i>ante la aparici&oacute;n cada vez m&aacute;s frecuente de resistencia de Aedes aegypti a los insecticidas tradicionales, se hace necesario el estudio de extractos vegetales que puedan ser usados como alternativas de control. </i></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Objetivo: </i></b><i>determinar la actividad insecticida de extractos metan&oacute;licos de Gliricidia sepium, Sapindus saponaria y Annona muricata sobre larvas de tercer estad&iacute;o de Ae. aegypti.  </i></p>     <p><b><i>Materiales y m&eacute;todos: </i></b><i>mediante percolaci&oacute;n metan&oacute;lica de macerados de las especies vegetales se obtuvieron extractos totales y mediante diluciones de cada extracto se realizaron bioensayos sobre larvas de tercer estadio de Ae. aegypti, cepas Rockefeller y Silvestre. Se realiz&oacute; an&aacute;lisis PROBIT para la determinar la concentraci&oacute;n letal media (LC50) de los extractos evaluados.  </i></p>     <p><b><i>Resultados: </i></b><i>los valores de LC50 hallados para cada uno de los extractos vegetales fueron: A.muricata, 6,48 ppm (IC 95 %: 5,88-7,27); S.saponaria, 601,81 ppm (IC 95 %: 498,41- 690,74); G. sepium, 1328,91 ppm (IC 95 %: 1 201,45-1 448,70), para la cepa Rockefeller. A. muricata, 7,26 ppm (IC 95 %: 6,65-8,05); S. saponaria, 658,64 ppm (IC 95 %: 591,48-730,05); G. sepium, 1 532,89 ppm (IC 95 %: 1 408,15-1 660,70), para la cepa silvestre. </i></p>     <p><b><i>Conclusi&oacute;n: </i></b><i>Los resultados obtenidos son promisorios para el control de estadios inmaduros de Ae. aegypti. </i></p>     <p><b>PALABRAS CLAVE</b></p>     <p><i>Ae. aegypti, Bioensayos, Control vectorial, Dengue, Extractos vegetales </i>.</p> <hr>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p><b>Introduction: </b>Given the increasingly frequent occurrence of resistance of Ae. aegypti to conventional insecticides, it becomes necessary to study plant extracts that can be used as alternative for control.</p>     <p><b>Objective: </b>To establish the insecticidal activity of metanolic extracts of Gliricidia sepium, Sapindus saponaria and Annona muricata against third instar Ae. aegypti larvae.</p>     <p><b>Materials and methods: </b>A percolation with methanol of macerated plant species to obtain total extracts was performed and then using dilutions of each extract was proceeded to perform bioassays on third stage larvae of Ae. aegypti, strains Rockefeller and wildtype. PROBIT analysis was performed to determine the median lethal concentration (LC50) of the extracts tested.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Results: </b>LC50 values found for each of extract are: A. muricata, 6,48 ppm (CI 95 %: 5,88 - 7,27); S. saponaria, 601,81 ppm (CI 95 %: 498,41 - 690,74); G. sepium, 1 328,91 ppm (CI 95 %: 1 201,45 - 1 448,70), Rockefeller strain. A. muricata, 7,26 ppm (CI 95 %: 6,65 - 8,05); S. saponaria, 658,64 ppm (CI 95 %: 591,48 -730,05); G. sepium, 1 532,89 ppm (CI 95 %: 1 408,15 - 1 660,70), for wildtype strain.</p>     <p><b>Conclusion: </b>The results are promising for the control of immature stages of Ae. aegypti.</p>     <p><b>KEY WORDS</b></p>     <p><em>Ae. aegypti, Bioassay, Vector control, Dengue, Vegetal extracts</em>.</p> <hr>      <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>    El dengue es una enfermedad infecciosa que puede ser producida por cuatro serotipos diferentes del virus dengue y es transmitido por mosquitos Aedes (Stegomyia) aegypti (Linnaeus, 1762). Presenta una amplia distribuci&oacute;n en las regiones de clima tropical y subtropical del mundo, manifest&aacute;ndose principalmente en zonas semiurbanas y urbanas, en donde el mosquito Ae. aegypti es el principal vector (1). En Colombia esta especie se ha reportado en el 95 % de los municipios ubicados por debajo de 2 200 msnm (2).</p>     <p>Esta enfermedad representa un serio problema de salud p&uacute;blica en el pa&iacute;s debido a su alta incidencia en la poblaci&oacute;n. Desde finales del a&ntilde;o 2008 hasta inicios del 2010 el Sistema de Vigilancia en Salud P&uacute;blica de Colombia (SIVIGILA) report&oacute; un incremento del 616,9 %. En 2011, la tasa de morbilidad global de dengue fue de 128,2/100000 (dengue: 122,8/100 000 habitantes y dengue grave: 5,4/100000 habitantes) (3). En el pa&iacute;s circulan los cuatro serotipos, de los cuales, DENV-2 (44 %) y DENV-1 (41 %) son los m&aacute;s frecuentes (4).</p>     <p>Se estima que cerca de 25 millones de personas que habitan en zonas urbanas con transmisi&oacute;n end&eacute;mica de dengue est&aacute;n en riesgo de adquirir esta enfermedad. El dengue es una de las enfermedades infecciosas que mayor carga social y econ&oacute;mica impone a la poblaci&oacute;n en riesgo, representando un evento de especial inter&eacute;s en salud p&uacute;blica (1).</p>     <p>Debido que no hay un tratamiento espec&iacute;fico para esta enfermedad y a la ausencia de vacunas para realizar tratamientos a gran escala, seg&uacute;n la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS), actualmente el &uacute;nico m&eacute;todo de controlar o prevenir la transmisi&oacute;n de los virus del dengue consiste en la lucha contra los vectores por medio de insecticidas qu&iacute;micos, entre ellos los m&aacute;s usados en Colombia son los organofosforados y los piretroides tales como deltametrina, lambdacialotrina, ciflutrina, malation, para el control de adultos y temefos para control de larvas; y de la gesti&oacute;n del medio, mejorando las condiciones f&iacute;sicas de las viviendas para eliminar el h&aacute;bitat de los mosquitos (1,5,6).</p>     <p>El uso extendido e indiscriminado en Colombia de insecticidas de s&iacute;ntesis para el control de vectores ha favorecido la aparici&oacute;n, propagaci&oacute;n e incremento constante de resistencia a la mayor&iacute;a de insecticidas disponibles actualmente en el mercado por parte de Ae. aegypti (7,8). De otro lado, se ha encontrado un grave riesgo de contaminaci&oacute;n ambiental (9) destrucci&oacute;n de la fauna ben&eacute;fica (10,11) y el subsecuente desequilibrio en los diferentes ecosistemas (10).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Es evidente entonces la necesidad de desarrollar nuevas estrategias de control, diferentes a las planteadas actualmente, para disminuir as&iacute; la presi&oacute;n de los insecticidas de s&iacute;ntesis (7,8). Como m&eacute;todos alternativos para el control de los vectores se han evaluado en laboratorio y en campo el uso de controladores biol&oacute;gicos tales como depredadores, hongos entomopat&oacute;genos y extractos naturales de plantas, los cuales han demostrado ser efectivos controlando las poblaciones de mosquitos y evitando el desarrollo de resistencia (12-19).</p>     <p>Los insecticidas de origen bot&aacute;nico han sido usados tradicionalmente en las comunidades humanas en muchos lugares del mundo para el manejo de los insectos plaga (20). Hoy en d&iacute;a se ha encontrado que estos pueden ser utilizados como alternativas eficaces en los programas integrados de control de mosquitos vectores, con la ventaja de ser altamente espec&iacute;ficos, sin afectar la fauna ben&eacute;fica (21-24), f&aacute;cilmente biodegradables, de bajo costo (25,26), no requieren de metodolog&iacute;as complejas para la extracci&oacute;n de sus compuestos activos, son de disponibilidad inmediata y pueden ser preparados artesanalmente por medio de tratamientos caseros y ser aplicados inmediatamente sin la necesidad de instrumentos especializados (27).</p>     <p> En esta investigaci&oacute;n se presentan y analizan los resultados de evaluaciones realizadas bajo condiciones de laboratorio de la actividad insecticida efectiva de los extractos etan&oacute;licos de <i>Gliricidia sepium</i> (Jacquin. Kunth ex Walpers, 1842), Sapindus saponaria (Linnaeus, 1753) y <i>Annona muricata </i>(Linnaeus, 1753) sobre larvas de tercer instar de Ae. aegypti, usando la cepa Rockefeller como referencia para comprobar la efectividad de los extractos.</p>      <p><font size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></font></p>     <p>El trabajo se desarroll&oacute; en el laboratorio de Biolog&iacute;a de la Escuela de ingenier&iacute;a de Antioquia, sede Z&uacute;&ntilde;iga, el laboratorio de Qu&iacute;mica de los Productos Naturales y los Alimentos de la Escuela de Qu&iacute;mica de la Universidad Nacional de Colombia, sede Medell&iacute;n, y el Instituto Colombiano de Medicina Tropical - CES (ICMT- CES). Todos los solventes empleados fueron grado anal&iacute;tico y se redestilaron antes de ser utilizados.</p>     <p>Las evaluaciones de toxicidad en <i>Ae.aegypti</i> se realizaron sobre larvas de la cepa susceptible Rockefeller y una cepa silvestre de Medell&iacute;n. Las semillas de A. <i>muricata</i> se obtuvieron de frutos comerciales en la ciudad de Medell&iacute;n, las ra&iacute;ces de G. sepium se obtuvieron de &aacute;rboles ubicados en el municipio de Santa B&aacute;rbara, Antioquia y los frutos de S. saponaria se recolectaron en los predios de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n, procedentes de un &aacute;rbol sano.</p>     <p>Los extractos vegetales se prepararon a partir de 500 gramos del material vegetal seco y triturado de cada especie, el cual se someti&oacute; a extracci&oacute;n exhaustiva mediante percolaci&oacute;n con tres litros de metanol al 96 %; el extracto obtenido se filtr&oacute; y se destil&oacute; a presi&oacute;n reducida en un rotaevaporador a temperatura controlada de 40&deg;C. El material obtenido se recogi&oacute; en botellas de vidrio de color &aacute;mbar y se almacen&oacute; refrigerado a 4&deg;C para as&iacute; de evitar errores en los resultados por degradaci&oacute;n de los extractos por acci&oacute;n de la luz y el calor.</p>     <p>Para determinar la concentraci&oacute;n (partes por mill&oacute;n -ppm-) de los extractos se tom&oacute; de la soluci&oacute;n madre (extracto total) una muestra de 0,5000 gramos de cada extracto homogenizado, los cuales fueron adicionados a c&aacute;psulas de papel aluminio que previamente se hab&iacute;an pesado secas y vac&iacute;as en una balanza anal&iacute;tica (&plusmn;0,0001g). A cada c&aacute;psula se le adicionaron 0,5000 gramos del extracto homogenizado y se llev&oacute; a estufa a 90 &deg;C durante 10 minutos, una vez eliminado el solvente se volvi&oacute; a pesar. Las mediciones descritas se realizaron por triplicado para cada especie y se calcul&oacute; la concentraci&oacute;n promedio. Las evaluaciones de actividad biol&oacute;gica se llevaron a cabo con el volumen restante de cada extracto que hab&iacute;a sido refrigerado a 4&deg;C.</p>     <p>Se establecieron bioensayos para evaluar la toxicidad de los extractos utilizando un dise&ntilde;o completamente al azar. Para todos los bioensayos se usaron larvas de <i>Ae.aegypti</i> de tercer estad&iacute;o con el mismo tiempo en el estadio. Con el fin de evitar sesgos en los bioensayos, todas las larvas se obtuvieron a partir de huevos puestos a eclosionar simult&aacute;neamente para lograr homogeneidad fisiol&oacute;gica.</p>     <p>La muestras utilizadas en las evaluaciones de actividad se prepararon mediante diluci&oacute;n a partir del extracto metan&oacute;lico concentrado. Los extractos crudos usados en los bioensayos se aplicaron a concentraciones lo suficientemente altas para permitir detectar el efecto de los constituyentes menores. Las concentraciones usadas fluctuaron en el rango de 0 a 2 500 ppm. En el bioensayo de toxicidad sobre larvas de <i>Ae. aegypti</i> se realizaron cuatro repeticiones, estando conformada la unidad experimental por 80 larvas de tercer estad&iacute;o en copas de polipropileno de 30mL. Los conteos de mortalidad se realizaron a las 24 horas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico se utiliz&oacute; el paquete estad&iacute;stico Statgraphics Centurion XV &reg;. Los bioensayos de toxicidad se analizaron mediante el procedimiento PROBIT para la determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n letal media (LC50) de los extractos evaluados.</p>      <p><font size="3"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p>En el <a href="#c1">cuadro 1</a> y la <a href="#f1">figura 1</a> se presentan los datos de LC<sub>50</sub> obtenidos con los extractos metan&oacute;licos de las especies vegetales sobre las larvas de las cepas Rockefeller y silvestre de Ae. aegypti.</p>     <p>Los extractos evaluados produjeron mortalidad en las larvas de <i>Ae. aegypti</i> a las 24 horas. En la evaluaci&oacute;n de toxicidad para la cepa Rockefeller se observ&oacute; que el extracto de A. muricata es el m&aacute;s activo con una concentraci&oacute;n letal media de 6,48 ppm (IC 95 %: 5,88 - 7,27), seguido por el extracto de S. saponaria con una LC<sub>50</sub> de S. saponaria, 601,81 ppm (IC 95 %: 498,41- 690,74) y finalmente el extracto de G. sepium con una LC50 de 1 328,91 ppm (IC 95 %: 1 201,45 - 1 448,70), y para la cepa silvestre el extracto de A. <i>muricata</i> tambi&eacute;n demostr&oacute; ser el m&aacute;s activo con una concentraci&oacute;n letal media de 7,26 ppm (IC 95 %: 6,65 - 8,05), seguido por el extracto de S. <i>saponaria</i> con una LC<sub>50</sub> de 658,64 ppm (IC 95 %: 591,48 - 730,05) y finalmente el extracto de G. sepium con una LC50 de1 532,89 ppm (IC 95 %: 1 408,15 - 1 660,70).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/cesm/v27n2/v27n2a07c1.jpg"><a name="c1"></a></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/cesm/v27n2/v27n2a07f1.jpg"><a name="f1"></a></p>      <p><font size="3"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p>Con la realizaci&oacute;n de los bioensayos se hall&oacute; que los tres extractos vegetales presentan una notoria actividad biol&oacute;gica en ambas cepas de <i>Ae. aegypti</i>. En estos resultados se puede evidenciar que la cepa Rockefeller tuvo una mayor sensibilidad a los metabolitos presentes en los extractos vegetales con concentraciones letales inferiores a las observadas en la cepa silvestre; de forma contraria la cepa silvestre present&oacute; una menor sensibilidad a los metabolitos en los extractos vegetales.</p>     <p>Esta diferencia puede deberse a la continua exposici&oacute;n que ha tenido la cepa silvestre de <i>Ae. aegypti</i> ante diferentes xenobi&oacute;ticos en el ambiente, entre ellos piretroides y organofosforados tales como deltametrina, lambdacialotrina, ciflutrina, malation y temefos que se han usado para el control tradicional en Colombia de <i>Ae. aegypti</i>.</p>     <p>Adicionalmente, la exposici&oacute;n ante el hidrocarbono arom&aacute;tico polic&iacute;clico benzo(a)pireno derivado de la combusti&oacute;n de combustibles f&oacute;siles y el herbicida glifosato, usado com&uacute;nmente en la agricultura (28-30), han causado que los mosquitos de la cepa silvestre desarrollen mecanismos de resistencia hacia piretroides, carbamatos y organofosforados (5,29,31).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En este estudio los bioensayos fueron realizados con extractos vegetales totales por lo que se puede pensar que algunos de los compuestos presentes en estos extractos vegetales pueden tener grupos funcionales similares a los de los organofosforados, piretroides y otros xenobi&oacute;ticos (32,33) ante los cuales la cepa silvestre de <i>Ae. aegypti</i> por haber estado expuesta anteriormente a insecticidas de s&iacute;ntesis, ha podido desarrollar mecanismos de resistencia hacia los extractos vegetales; aunque es algo inusual (34) y debido a esto se pudo presentar una menor sensibilidad hacia los extractos vegetales por parte de la cepa silvestre de <i>Ae. aegypti</i>.</p>     <p>Los compuestos reportados que presentan actividad biol&oacute;gica en las plantas del g&eacute;nero Annona son acetogeninas bistetrahidrofur&aacute;nicas y monotetrahidrofur&aacute;nicas. Espec&iacute;ficamente en las semillas de A. <i>muricata</i>, la acetogeninas, muricatacina y anonnacina han demostrado ser algunas de las mol&eacute;culas biol&oacute;gicamente m&aacute;s activas (35,36).</p>     <p>Sanabria et al., en 2009, reportaron efecto larvicida del extracto acuoso de A. muricata, siendo este altamente prometedor, debido a que, a partir de la concentraci&oacute;n m&aacute;s baja del 5 %, se demostr&oacute; su efecto letal sobre larvas de Ae. aegypti al tener una efectividad similar al larvicida comercial (temefos al 1 %) (37).</p>     <p>Parra-Henao et al., en 2007, hallaron actividad insecticida del extracto etan&oacute;lico de semillas de  A. muricata sobre larvas de cuarto estad&iacute;o de la cepa susceptible Rockefeller del mosquito Ae. aegypti, mostrando una concentraci&oacute;n letal media de 900 ppm sobre las larvas en un tiempo de exposici&oacute;n de 24 horas (38).</p>     <p>Robledo et al., en 2008, encontraron actividad insecticida eficaz de extractos etan&oacute;licos de semillas de A. muricata sobre ninfas de &uacute;ltimos estadios de Periplaneta americana de seis poblaciones del surocciodente colombiano (39).</p>     <p>Adicionalmente &aacute;lvarez et al., tambi&eacute;n en 2008, reportaron actividad de acetogeninas fraccionadas a partir de extractos hojas, ramas y semillas de Annona cherimolia y Annona montana sobre Oncopeltus fasciatus (Hemiptera: Lygaeidae) y observaron diferentes porcentajes de mortalidad al ser aplicados en el abdomen de los insectos (40).</p>     <p>Con respecto a la especie S. saponaria tambi&eacute;n se encontr&oacute; actividad insecticida. Los principales compuestos que tienen actividad insecticida de S. saponaria son las saponinas y sapogeninas triterp&eacute;nicas (41,42). En estudios sobre plantas con actividad biol&oacute;gica se hall&oacute; que el extracto etan&oacute;lico de frutos de S. saponaria ha demostrado generar alteraciones morfol&oacute;gicas y actividad insecticida sobre larvas de Ae. aegypti (43). Adicionalmente, se ha reportado que la mortalidad causada por el contacto directo del extracto de  S. saponaria en insectos de la especie Trialeurodes vaporariroum, es generada por convulsiones debido a disminuci&oacute;n en el consumo de ox&iacute;geno y ataxia (42,44).</p>     <p>De otro lado, en la especie G. sepium, Rastrelli et al., determinaron que los principales compuestos activos de la planta son pterocarpanos, isoflavonas y saponinas triterp&eacute;nicas (45), adem&aacute;s de la presencia de pinitol (46), hidrocarbonos y cumarinas (47). Nazliet et al., en 2008 demostraron que extractos etan&oacute;licos de G. sepium tienen actividad repelente en mosquitos adultos de la especie Ae. aegypti con un porcentaje de repelencia m&aacute;xima del 78 %, mientras que el aceite de citronela (Pelargonium citrosum) tuvo una repelencia de 74 %, el cu&aacute;l es el m&aacute;s usado comercialmente (48).</p>     <p>A pesar de que la especie G. sepium tuvo una actividad insecticida eficaz, demostr&oacute; tener una concentraci&oacute;n letal media inferior a los valores encontrados en las especies A. muricata y S. saponaria, seg&uacute;n esto se recomienda utilizar solventes alternativos al metanol para realizar las percolaciones con ra&iacute;ces de G. sepium con el fin de extraer fracciones polares diferentes a las extra&iacute;das con el metanol.</p>     <p>Otro aspecto a tener en cuenta podr&iacute;a ser el uso de otras partes de la planta tales como hojas, en donde los metabolitos secundarios responsables de la actividad biol&oacute;gica pueden encontrarse en una mayor cantidad o menos opacados por metabolitos primarios. Sharma et al., en 1998, evaluaron la actividad larvicida de <i>G. sepium</i> sobre larvas de <i>Anopheles stephansi,</i> <i>Ae. aegypti</i> y <i>Culex quinquefasciatus</i> y encontraron que los extractos etan&oacute;licos de las hojas frescas de G. sepium causaron mortalidad en <i>Ae. aegypti</i> desde una concentraci&oacute;n de 250 ppm (49).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Observando los resultados de los extractos de las tres especies vegetales bajo las recomendaciones de la Agencia de Cooperaci&oacute;n T&eacute;cnica Alemana (GTZ), estos se pueden considerar promisorios para el control de larvas de <i>Ae. aegypti</i> debido a que los valores de LC<sub>50</sub> obtenidos en estas evaluaciones se encuentran por debajo de la concentraci&oacute;n m&aacute;xima (5 000 ppm) recomendada para condiciones de trabajo en laboratorio (50).</p>     <p>Debido a que todos los bioensayos fueron realizados con extractos vegetales totales en donde los compuestos activos principales est&aacute;n en una menor proporci&oacute;n y mezclados con otras sustancias que pueden tener una baja o nula actividad biol&oacute;gica tales como carbohidratos, carotenos, sales minerales, xantofilas, clorofilas, gluc&oacute;sidos y algunos l&iacute;pidos, se recomienda fraccionar los extractos vegetales totales para concentrar y purificar los metabolitos biol&oacute;gicamente activos, y de esta manera se podr&iacute;a dilucidar y clasificar estos compuestos.</p>     <p> Gracias a que los procedimientos para realizar percolaciones con extractos de origen bot&aacute;nico son de f&aacute;cil acceso y de bajo costo, los extractos vegetales en este estudio se realizaron de forma continua y sin contratiempos.</p>     <p>En conclusi&oacute;n se hall&oacute; que los resultados obtenidos son promisorios para el control de estadios inmaduros de <i>Ae. aegypti.</i> En este estudio se realizaron evaluaciones con las cepas Rockefeller y silvestre de Ae. aegypti, es necesario realizar evaluaciones adicionales con cepas de diferentes regiones del pa&iacute;s con el fin de verificar la efectividad de los extractos vegetales y poder estandarizar una concentraci&oacute;n letal media de los extractos vegetales sobre larvas de <i>Ae. aegypti</i> en Colombia.</p>     <p>Adicionalmente, se recomiendan realizar evaluaciones de los extractos vegetales en organismos no objetivos con la finalidad de determinar su eco toxicidad. Adem&aacute;s, por el hecho de tratarse de un experimento elaborado en su totalidad en laboratorio, la realizaci&oacute;n de bioensayos de los extractos vegetales en campo podr&iacute;a permitir determinar la eficacia, estabilidad e inocuidad de los mismos sobre el medio ambiente.</p>      <p><font size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p>A la Direcci&oacute;n de Investigaciones de la Universidad CES por el apoyo financiero a esta investigaci&oacute;n. A las bi&oacute;logas Ana Victoria G&oacute;mez Gonz&aacute;lez y Laura Mar&iacute;a Pinto Guti&eacute;rrez por facilitar elementos de laboratorio y apoyar el proceso experimental. Al Pecet de la U. de A. por suministrar huevos de la cepa Rockefeller de <i>Ae. aegypti</i> y al Laboratorio de Entomolog&iacute;a M&eacute;dica de la U. de A. por suministrar huevos de la cepa silvestre de <i>Ae .aegypti.</i></p>     <p><b>Conflicto de inter&eacute;s</b></p>     <p>Los autores declaramos que no existe conflicto de intereses en los resultados presentados en este art&iacute;culo.</p>      <p><b>Financiamiento</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Este trabajo se realiz&oacute; con el apoyo financiero de la Direcci&oacute;n de Investigaciones de la Universidad CES.</p> <hr>     <p><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p>1. 	OMS. Dengue y dengue hemorr&aacute;gico {Internet}. {cited 2011 Nov 4}. Available from: <a href="http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs117/es/ " target="_new">http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs117/es/</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-8705201300020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2. 	Rodr&iacute;guez G, Velandia C, Boshell J. Fiebre amarilla, la enfermedad y su control. Instituto Nacional de Salud; 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-8705201300020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3. 	Bello SL. COMPORTAMIENTO EPIDEMIOL&Oacute;GICO DEL DENGUE EN COLOMBIA A&Ntilde;O 2011. Inst Nac Salud. 1 - 16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-8705201300020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>4. 	Restrepo BN, Piedrahita LD, Agudelo IY, Parra-Henao G, Osorio JE. Frequency and Clinical Features of Dengue Infection in a Schoolchildren Cohort from Medellin, Colombia. J Trop Med 2012;1-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-8705201300020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>5. 	Santacoloma L, Chaves B, Brochero HL. Susceptibilidad de Aedes aegypti a DDT, deltametrina y lambdacialotrina en Colombia. Rev Panam Salud Publica. 2010;27(1):66 - 73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-8705201300020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6. 	Ministerio de Salud. Gu&iacute;a Integral de Manejo de las Enfermedades Transmitidas por Vectores. Malaria, Dengue y Leishmaniasis. M&oacute;dulo 4. Santafe de Bogot&aacute;; 1996.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-8705201300020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>7. 	Ocampo CB, Salazar-Terreros MJ, Mina NJ, McAllister J, Brogdon W. Insecticide resistance status of Aedes aegypti in 10 localities in Colombia. Acta Trop. 2011 Apr;118(1):37-44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-8705201300020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 8. 	Fonseca-Gonz&aacute;lez I, C&aacute;rdenas R, Qui&ntilde;ones ML, McAllister J, Brogdon WG. Pyrethroid and organophosphates resistance in Anopheles (N.) nuneztovari Gabald&oacute;n populations from malaria endemic areas in Colombia. Parasitol Res. 2009 Oct;105(5):1399-409.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-8705201300020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 9. 	World Health Organization. Dengue: guidelines for diagnosis, treatment, prevention, and control. New ed. Geneva: World Health Organization; 2009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-8705201300020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>10. 	Rodr&iacute;guez M, Bisset J, Mila L, Calvo E, D&iacute;az C, Soca L. Niveles de resistencia a insecticidas y sus mecanismos en una cepa de Aedes aegypti de Santiago de Cuba. Rev Cubana Med Trop. 1999;51(2):83-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-8705201300020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11. 	Rojas J, Mazarri M, Sojo M, Garc&iacute;a G. Evaluaci&oacute;n de la efectividad de Bacillus sphaericus cepa 2362 sobre larvas de Anopheles nu&ntilde;eztovariz. M&eacute;rida, Venezuela. Invest Clin. 2001;42(2):131-46.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-8705201300020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12. 	Koldenkova L, Garc&iacute;a Avila I, Garc&eacute;s Fonseca J, Gonz&aacute;lez Broche R. The predatory capacity of the larvivorous fish Poecilia reticulata (Peters, 1985) (Cyprinodontiformes: Poecillidae) in a natural breeding-ground for the mosquito Culex quinquefasciatus Say, 1823. Rev Cubana Med Trop. 1988 Apr;40(1):21-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-8705201300020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>13. 	Garc&iacute;a I. Insectos acu&aacute;ticos biorreguladores de las larvas de mosquitos presentes en los cuerpos de agua de Santo Domingo, Rep&uacute;blica Dominicana. Rev Cubana Med Trop. 1993;45(3):213-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-8705201300020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>14. 	Garc&iacute;a Avila I, Vivar Guzm&aacute;n R, Quezada M&aacute;rquez J, Huam&aacute;n Mayta P. Insectos acu&aacute;ticos biorreguladores de larvas de mosquito presentes en los" Pantanos de Villa", Lima, Per&uacute;. Rev Cubana Med Trop. 1996;48(3):227-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-8705201300020000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>15. 	Rodr&iacute;guez J, Gonz&aacute;lez R. Evaluaci&oacute;n de la capacidad depredadora de Osteopilus septentrionales (Anura: Hylidae) sobre larvas de Culex quinquefasciatus (Diptera: Culicidae) en condiciones de laboratorio y de semicampo. Bol Malariol y San Amb. 2000;XL((1 y 2)):9-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-8705201300020000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>16. 	L&oacute;pes J, Arantes OMN, Cenci MA. Evaluation of a new formulation of Bacillus thuringiensis israelensis. Braz J Biol Rev Brasleira Biol. 2010 Nov;70(4):1109-13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-8705201300020000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>17. 	Paula AR, Carolino AT, Silva CP, Samuels RI. Susceptibility of adult female Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) to the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae is modified following blood feeding. Parasit Vectors. 2011;4(91):1-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-8705201300020000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>18. 	Garc&iacute;a-Mungu&iacute;a AM, Garza-Hern&aacute;ndez JA, Rebollar-Tellez EA, Rodr&iacute;guez-P&eacute;rez MA, Reyes-Villanueva F. Transmission of Beauveria bassiana from male to female Aedes aegypti mosquitoes. Parasit Vectors. 2011;4(24):1 - 6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-8705201300020000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>19. 	Pohlit AM, Quinard ELJ, Nunomura SM, Tadei WP, Hidalgo A de F, Pinto AC da S, et al. Screening of plants found in the State of Amazonas, Brazil for activity against Aedes aegypti larvae. Acta Amaz. 2004;34:97 - 105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-8705201300020000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>20. 	Jacobson, Martin. Insecticides from plants: a review of the literature, 1941-1953 {Internet}. U.S. Dept. of Agriculture; 1958 {cited 2011 Sep 17}. Available from: <a href="http://naldr.nal.usda.gov/NALWeb/Agricola_Link.asp?Accession=CAT10310196" target="_new">http://naldr.nal.usda.gov/NALWeb/Agricola_Link.asp?Accession=CAT10310196</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-8705201300020000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21. 	Mehlhorn H, Schmahl G, Schmidt J. Extract of the seeds of the plant Vitex agnus castus proven to be highly efficacious as a repellent against ticks, fleas, mosquitoes and biting flies. Parasitol Res. 2005 Mar;95(5):363-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-8705201300020000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 22. 	Elango G, Bagavan A, Kamaraj C, Abduz Zahir A, Abdul Rahuman A. Oviposition-deterrent, ovicidal, and repellent activities of indigenous plant extracts against Anopheles subpictus Grassi (Diptera: Culicidae). Parasitol Res. 2009 Nov;105(6):1567-76.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-8705201300020000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>23. 	Rahuman AA, Bagavan A, Kamaraj C, Saravanan E, Zahir AA, Elango G. Efficacy of larvicidal botanical extracts against Culex quinquefasciatus Say (Diptera: Culicidae). Parasitol Res. 2009 Jun;104(6):1365-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-8705201300020000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>24. 	Enan E, Beigler M, Kende A. Insecticidal action of terpenes and phenols to cockroaches: effect on octopamine receptors. Paper presented at the International Symposium on Plant Protection, Gent, Belgium. 1998.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-8705201300020000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> 25. 	Dharmagadda VSS, Naik SN, Mittal PK, Vasudevan P. Larvicidal activity of Tagetes patula essential oil against three mosquito species. Bioresour Technol. 2005 Jul;96(11):1235-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-8705201300020000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>26. 	Cseke L. Nat Prod Plants. 2nd ed. Boca Raton FL: CRC/Taylor &amp; Francis; 2006. p. 143 -159.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-8705201300020000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>27. 	Parra-Henao G, Garc&iacute;a Paj&oacute;n CM, Cotes Torres JM. Actividad insecticida de extractos vegetales sobre Rhodnius prolixus y Rhodnius pallescens (Hemiptera: Reduviidae). Bol Mal Salud Amb. 2007;47(1):125 -137.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-8705201300020000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>28. 	Poupardin R, Reynaud S, Strode C, Ranson H, Vontas J, David J-P. Cross-induction of detoxification genes by environmental xenobiotics and insecticides in the mosquito Aedes aegypti: impact on larval tolerance to chemical insecticides. Insect Biochem Mol Biol. 2008 May;38(5):540-51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-8705201300020000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>29. 	Riaz MA, Poupardin R, Reynaud S, Strode C, Ranson H, David J-P. Impact of glyphosate and benzo{a}pyrene on the tolerance of mosquito larvae to chemical insecticides. Role of detoxification genes in response to xenobiotics. Aquat Toxicol Amst Neth. 2009 Jun 4;93(1):61-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-8705201300020000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>30. 	Johnson-Restrepo B, Olivero-Verbel J, Lu S, Guette-Fern&aacute;ndez J, Baldiris-Avila R, O'Byrne-Hoyos I, et al. Polycyclic aromatic hydrocarbons and their hydroxylated metabolites in fish bile and sediments from coastal waters of Colombia. Environ Pollut. 2008 Feb;151(3):452-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-8705201300020000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>31. 	Strode C, Wondji CS, David J-P, Hawkes NJ, Lumjuan N, Nelson DR, et al. Genomic analysis of detoxification genes in the mosquito Aedes aegypti. Insect Biochem Mol Biol. 2008 Jan;38(1):113-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-8705201300020000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>32. 	Mareggiani G. Manejo de insectos plaga mediante sustancias semioqu&iacute;micas de origen vegetal. Manejo Integrado Plagas Costa Rica. 2001;60:22-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-8705201300020000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>33. 	Shawkat MS, Majid R K. EXTRACTION OF PYRETHRINS FROM Chrysanthemum cinerariaefolium PETALS AND STUDY ITS ACTIVITY AGAINST BEETLE FLOUR Tribolium castanum. Iraqi J Sci. 2011;52(4):456-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0120-8705201300020000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>34. 	Burfield T, Reekie S-L. Mosquitoes, malaria and essential oils. Int J Aromather. 2005;15:30-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0120-8705201300020000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>35. 	Rupprecht JK, Hui YH, McLaughlin JL. Annonaceous acetogenins: a review. J Nat Prod. 1990 Apr;53(2):237-78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0120-8705201300020000700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 36. 	Matthew J. Rieser, John F. Kozlowski, Karl V. Wood, Jerry L. McLaughlin. Muricatacin: A simple biologically active acetogenin derivative from the seeds of annona muricata (annonaceae). 1991;32(9):1137-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0120-8705201300020000700036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>37. 	Sanabria L, Segovia EA, Gonz&aacute;lez N, Alcaraz P, Vera N de Bilbao. Actividad larvicida de extractos vegetales acuosos en larvas de Aedes aegypti (primeros ensayos). Mem Inst Investig Cienc Salud. 2009 Diciembre;7(2):26-31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0120-8705201300020000700037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>38. 	Parra-Henao G, Garc&iacute;a Paj&oacute;n CM, Cotes Torres JM. Actividad insecticida de extractos vegetales sobre Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) vector del dengue en Colombia. CES Med. 2007;21(1):47-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0120-8705201300020000700038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>39. 	Robledo PC, Gonz&aacute;lez R, Jaramillo GI, Restrepo J. Evaluaci&oacute;n de la toxicidad de acetogeninas anon&aacute;ceas sobre ninfas de periplaneta americana L. (Dictyoptera:Blattidae). Bolet&iacute;n del museo de entomolog&iacute;a Universidad del Valle. 2008;9(1):54 -61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0120-8705201300020000700039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>40. 	Alvarez O, Ayala I, Moya P. Toxic effects of annonaceous acetogenins on Oncopeltus fasciatus. J Pest Sci. 2008;81:85-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0120-8705201300020000700040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>41. 	Herrera N, Correa E, Cardona D. Estructura y actividad de sapogeninas triterp&eacute;nicas. Scientia et technica. 2007;33:87 - 90.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0120-8705201300020000700041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>42. 	Porras MF, L&oacute;pez A. Effect of extracts from Sapindus saponaria on the glasshouse whitefly Trialeurodes vaporariorum (Hemiptera: Aleyrodidae). Rev Colomb Entomol. 2009;35(1):7 -11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0120-8705201300020000700042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 43. 	Ferreira C, Cavasin G M, Garcia da Silva H H. Study of the morphohistological modifications in larvae of Aedes aegypti (Diptera, Culicidae) submitted to the pure ethanolic extract of Sapindus saponaria Lin. (Sapindaceae). Revista de Patologia Tropical. 35(1):37 -57.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0120-8705201300020000700043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>44. 	Molina N. Uso de extractos bot&aacute;nicos en control de plagas y enfermedades. Manejo integrado de plagas. Boletin de Costa Rica. 2001;50:56-67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0120-8705201300020000700044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>45. 	Rastrelli L, Caceres A, De Simone F, Aquino R. Studies on the constituents of Gliricidia sepium (Leguminosae) leaves and roots: isolation and structure elucidation of new triterpenoid saponins and aromatic compounds. J Agric Food Chem. 1999 Apr;47(4):1537-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0120-8705201300020000700045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>46. 	Calle J, Rivera A, Joseph-Nathan P. Pinitol from the Leaves of Gliricidia sepium. Planta Med. 1987 Jun;53(3):303.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0120-8705201300020000700046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 47. 	Herath HMTB, Dassanayake RS, Priyadarshani AMA, De Silva S, Wannigama GP, Jamie J. Isoflavonoids and a pterocarpan from Gliricidia sepium. Phytochemistry. 1998;47:117-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0120-8705201300020000700047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>48. 	Nazli R, Akhter M, Ambreen S, Solangi AH, Sultana N. Insecticidal, nematicidal and antibacterial activities of Gliricidia sepium. Pak J Bot. 2008;40(6):2625-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0120-8705201300020000700048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>49. 	Sharma N, Qadry J, Subramanium B, Verghese T, Rahman S, Sharma S, et al. Larvicidal activity of gliricidia sepium against mosquito larvae of anopheles stephansi, aedes aegypti and culex quinquefasciatus. Pharmaceutical Biology. 1998;36(1):3-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0120-8705201300020000700049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>50. 	Hellpap C. Steps for developing botanical pesticides. Manuscrito G.T.Z; 1993.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0120-8705201300020000700050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>Recibido: agosto 14 de 2013 Revisado: octubre 28 de 2013 Aceptado: noviembre 3 de 2013</p> </font>      ]]></body><back>
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