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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Mecanismos de señalización por &#946;-catenina y su papel en la carcinogénesis]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The modification of signaling pathways is a common mechanism in the oncogénesis process of different types of tumor. An alteration in any protein of the pathway by genetic mutations or by epigenetic changes in its gene promoter could cause misregulation of the pathway and therefore lead to uncontrolled cell proliferation. The Wnt/&#946;-catenin signaling pathway is important in several processes, such as embryogenesis, organogenesis and homeostasis. &#946;-catenin protein acts as a co-activator of this pathway, and when it is translocated to the nucleus, it functions as a transcription factor. An imbalance in this pathway by mutations or epigenetic modifications of &#946;-catenin and/or other proteins, favors the accumulation of &#946;-catenin in the nucleus, leading to permanent activation of Wnt/&#946;-catenin signaling pathway. This event triggers the expression of genes encoding proteins involved in cell proliferation, differentiation and maintenance of stem cells. &#946;-catenin is also known to participate in cell-cell adhesion, mediating the interaction between Cadherin and Actin. Alterations in the complex &#946;-catenin-Cadherin-Actin lead to a loss of adhesion and a high invasive capacity of affected cells, mechanisms associated with invasiveness of tumor cells. This review describes the &#946;-catenin protein, and its role in the Wnt/&#946;-catenin signaling pathway, as well as in gene expression regulation and cellcell adhesion, and the alterations that can trigger an oncogenic process.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="2">     <p align="right"><b>REVISI&Oacute;N DE TEMA</b></p>      <p align="center"><b><font size="4" face="Verdana">Mecanismos de se&ntilde;alizaci&oacute;n por &beta;-catenina y su papel en la carcinog&eacute;nesis</font></b></p>      <p align="center"><font size="3" face="Verdana"> <b>&beta;-catenin signaling mechanisms and its role in carcinogenesis</b></font></p>      <p>CAROLINA MANTILLA,<sup>1</sup> IRIS SU&Aacute;REZ MELLADO,<sup>2</sup> ALEJANDRA DUQUE JARAMILLO,<sup>3</sup> MARIA CRISTINA NAVAS<sup>4 </sup></p>       <P><sup>1 </sup>Bi&oacute;loga, Grupo de Gastrohepatolog&iacute;a. Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia.    <br>   <sup>2 </sup>2 Bi&oacute;loga, MSc Ciencias B&aacute;sicas, Grupo de Gastrohepatolog&iacute;a. Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia.    <br> <sup>3 </sup>Bi&oacute;loga, joven investigadora, Grupo de Gastrohepatolog&iacute;a, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia.    <br>   <sup>4 </sup>MSc, PhD Virolog&iacute;a. Profesora Asociada, Departamento de Microbiolog&iacute;a y Parasitolog&iacute;a, Facultad de Medicina, Coordinadora Grupo Gastrohepatolog&iacute;a, Universidad de Antioquia. Medell&iacute;n, Colombia. <a href="mailto:maria.navas@udea.edu.co">maria.navas@udea.edu.co</a></p>  <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La alteraci&oacute;n de las v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n es un mecanismo com&uacute;n en la oncog&eacute;nesis de diferentes tipos de tumor. La modificaci&oacute;n de una de las prote&iacute;nas de la v&iacute;a por mutaciones o por modificaciones gen&eacute;ticas o epigen&eacute;ticas en el promotor del gen correspondiente podr&iacute;a generar una alteraci&oacute;n en la v&iacute;a, y por tanto condiciones para el crecimiento descontrolado caracter&iacute;stico del c&aacute;ncer.</p>      <p> La v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt/&beta;-catenina, donde &beta;-catenina act&uacute;a como coactivador, es muy importante en procesos de embriog&eacute;nesis, organog&eacute;nesis y homeostasis. La alteraci&oacute;n de Wnt/&beta;-catenina por mutaciones o modificaciones epigen&eacute;ticas de &beta;-catenina o de otras prote&iacute;nas facilita la acumulaci&oacute;n de &beta;-catenina en el n&uacute;cleo y genera una activaci&oacute;n permanente de esta v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n. Este evento desencadena la expresi&oacute;n de genes que codifican prote&iacute;nas que participan en proliferaci&oacute;n celular, diferenciaci&oacute;n y mantenimiento de c&eacute;lulas madre.</p>      <p> &beta;-catenina participa tambi&eacute;n en la adhesi&oacute;n c&eacute;lulac&eacute;lula, mediando la interacci&oacute;n entre cadherinas y actina. Alteraciones en el complejo &beta;-catenina-cadherina-actina lleva a la p&eacute;rdida de la adhesi&oacute;n y a una alta capacidad invasiva de las c&eacute;lulas afectadas, mecanismos asociados con la capacidad de met&aacute;stasis de las c&eacute;lulas tumorales.</p>       <p> En esta revisi&oacute;n se describe la prote&iacute;na &beta;-catenina y su   papel en la v&iacute;a Wnt/ &beta;-catenina, as&iacute; como en la regulaci&oacute;n   de la expresi&oacute;n g&eacute;nica y en el proceso de adhesi&oacute;n   c&eacute;lula-c&eacute;lula, y las alteraciones que pueden desencadenar   un proceso oncog&eacute;nico.</p>      <p><b>PALABRAS CLAVE</b></p>     <p>&beta;-catenina, CTNNB1, Adhesi&oacute;n celular, Wnt/&beta;-catenina, Carcinog&eacute;nesis.</p> <hr>      <p><b>ABSTRACT </b></p>      <p>The modification of signaling pathways is a common mechanism in the oncog&eacute;nesis process of different types of tumor. An alteration in any protein of the pathway by genetic mutations or by epigenetic changes in its gene promoter could cause misregulation of the pathway and therefore lead to uncontrolled cell proliferation.</p>      <p> The Wnt/&beta;-catenin signaling pathway is important in several processes, such as embryogenesis, organogenesis and homeostasis. &beta;-catenin protein acts as a co-activator of this pathway, and when it is translocated to the nucleus, it functions as a transcription factor. An imbalance in this pathway by mutations or epigenetic modifications of &beta;-catenin and/or other proteins, favors the accumulation of &beta;-catenin in the nucleus, leading to permanent activation of Wnt/&beta;-catenin signaling pathway. This event triggers the expression of genes encoding proteins involved in cell proliferation, differentiation and maintenance of stem cells.</p>      <p> &beta;-catenin is also known to participate in cell-cell adhesion, mediating the interaction between Cadherin and Actin. Alterations in the complex &beta;-catenin-Cadherin-Actin lead to a loss of adhesion and a high invasive capacity of affected cells, mechanisms associated with invasiveness of tumor cells. This review describes the &beta;-catenin protein, and its role in the Wnt/&beta;-catenin signaling pathway, as well as in gene expression regulation and cellcell adhesion, and the alterations that can trigger an oncogenic process.</p>    </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>KEY WORDS </b></p>      <p>&beta;-catenin, CTNNB1, Cell adhesion, Wnt/&beta;-catenin, Carcinogenesis.</p> <hr>       <p><b><font face="Verdana" size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>      <p>La v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt/&beta;-catenina regula procesos como la regeneraci&oacute;n de tejidos, la diferenciaci&oacute;n de c&eacute;lulas madre y la proliferaci&oacute;n celular. La alteraci&oacute;n de esta v&iacute;a ha sido descrita en diversos tipos de tumor como el c&aacute;ncer de col&oacute;n, c&aacute;ncer primario de h&iacute;gado, c&aacute;ncer de ovario y melanoma, entre otros.</p>      <p> La prote&iacute;na &beta;-catenina, codificada por el gen CTNNB1, es el principal componente de la v&iacute;a Wnt/&beta;-catenina. La regulaci&oacute;n de esta v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n est&aacute; basada en la presencia del ligando Wnt que produce la activaci&oacute;n; cuando la v&iacute;a est&aacute; activa se impide la degradaci&oacute;n de laprote&iacute;na &beta;-catenina por acci&oacute;n de un complejo de prote&iacute;nas conocido como complejo de destrucci&oacute;n, conformado por quinasas, la prote&iacute;na adenomatosis poliposis Coli (APC) y la prote&iacute;na axina. En ausencia del ligando Wnt la v&iacute;a no est&aacute; activa y, como consecuencia, la prote&iacute;na &beta;-catenina es fosforilada y posteriormente degradada en el proteasoma, impidiendo sus funciones como factor de transcripci&oacute;n y en la interacci&oacute;n c&eacute;lula-c&eacute;lula.</p>      <p> Esta prote&iacute;na participa adem&aacute;s en la adhesi&oacute;n celular mediada por cadherina, cuya desregulaci&oacute;n se ha asociado tambi&eacute;n con procesos oncog&eacute;nicos debido a la p&eacute;rdida de la adhesi&oacute;n celular y al aumento de la capacidad de invasi&oacute;n de las c&eacute;lulas tumorales.</p>      <p> Teniendo en cuenta la importancia de esta v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n en procesos como regeneraci&oacute;n de tejidos, diferenciaci&oacute;n de c&eacute;lulas madre y proliferaci&oacute;n celular, se realiz&oacute; una revisi&oacute;n de tema sobre los mecanismos de se&ntilde;alizaci&oacute;n y adhesi&oacute;n c&eacute;lula-c&eacute;lula mediados por &beta;-catenina y su papel en la carcinog&eacute;nesis. Para esto, se efectu&oacute; una b&uacute;squeda de literatura de trabajos originales y revisiones publicados entre 1992 y 2014 en la base de datos PubMed. La b&uacute;squeda se realiz&oacute; utilizando las palabras clave: Wnt/&beta;-catenin, signaling pathway, &beta;-catenin, cancer. Los autores escogieron los art&iacute;culos m&aacute;s relevantes seg&uacute;n su criterio para ser incluidos en esta revisi&oacute;n.</p>       <p>En esta revisi&oacute;n se describe la v&iacute;a Wnt/&beta;-   catenina, que funciona en respuesta al coactivador   transcripcional &beta;-catenina, y su papel en   la regulaci&oacute;n de la expresi&oacute;n de prote&iacute;nas claves   en la proliferaci&oacute;n celular y diferenciaci&oacute;n.   Adem&aacute;s se presentan las evidencias de desregulaci&oacute;n   de la v&iacute;a Wnt/ &beta;-catenina en carcinog&eacute;nesis,   en particular las alteraciones en el gen   CTNBB1. Adicionalmente, se describe el papel   de &beta;-catenina en la adhesi&oacute;n celular y la regulaci&oacute;n   de este proceso en c&aacute;ncer, para finalizar   con un recuento de los hallazgos m&aacute;s recientes   del papel de los miRNAs sobre las funciones   biol&oacute;gicas de la prote&iacute;na &beta;-catenina. </p>      <p><b>ESTRUCTURA DE LA PROTE&iacute;NA &beta;-CATENINA</b></p>      <p>&beta;-catenina fue originalmente identificada por su asociaci&oacute;n con el dominio citoplasm&aacute;tico de las cadherinas y su papel en la adhesi&oacute;n celular dependiente de Ca <sup>2+</sup>. Esta prote&iacute;na es un componente principal en la adhesi&oacute;n c&eacute;lula-c&eacute;lula por interacci&oacute;n con la prote&iacute;na cadherina (prote&iacute;nas de adhesi&oacute;n intercelular); adicionalmente, &beta;-catenina regula la expresi&oacute;n g&eacute;nica a trav&eacute;s de la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt/&beta;-catenina (1).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> &beta;-catenina se encuentra en dos complejos moleculares, que corresponden a estas dos funciones: el primero corresponde a &beta;-catenina como parte de complejos de alto peso molecular implicados en la adhesi&oacute;n celular mediada por E-cadherina; en la segunda funci&oacute;n, &beta;-catenina, se encuentra en estado monom&eacute;rico participando en la se&ntilde;alizaci&oacute;n de la v&iacute;a Wnt/&beta;-catenina (2). La coordinaci&oacute;n de estas dos v&iacute;as es fundamental para el control de los procesos como la formaci&oacute;n del eje y mesodermo en el embri&oacute;n, la diferenciaci&oacute;n de c&eacute;lulas madre y en procesos de patog&eacute;nesis como la carcinog&eacute;nesis (3).</p>       <p>&beta;-catenina es una prote&iacute;na de 92 kDa, codificada   por el gen CTNNB1 que se localiza en el cromosoma   3p22. Esta prote&iacute;na de 781 amino&aacute;cidos   consta de tres dominios, amino-terminal, carboxi-   terminal y central (4).</p>       <p>El dominio amino-terminal (N-terminal), de aproximadamente 150 amino&aacute;cidos, es la regi&oacute;n de uni&oacute;n a &alpha;-catenina, clave en la interacci&oacute;n c&eacute;lula-c&eacute;lula. En este dominio se localizan los sitios de fosforilaci&oacute;n de las quinasas en la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt/&beta;-catenina, la glic&oacute;geno sintasa quinasa 3&beta; (GSK3&beta;) y la case&iacute;na quinasa 1&alpha; (CK1&alpha;) (5). El dominio carboxi-terminal (C-terminal), de 100 amino&aacute;cidos aproximadamente, permite la interacci&oacute;n con prote&iacute;nas celulares para su papel como factor de transcripci&oacute;n de genes dependientes del factor de crecimiento de c&eacute;lulas T/ factor potenciador linfoide (Tcf/Lef) (6); genes como Cyclin D1, c-Myc y metaloproteinasas de matriz celular MMP-2, 3, 7, 9, 13.</p>      <p>El dominio central de 550 amino&aacute;cidos, est&aacute; formado por una secuencia de 42 amino&aacute;cidos que se repite 12 veces, dominio conocido como "repeticiones armadillo"; esta regi&oacute;n que presenta una estructura en h&eacute;lice, tiene como funci&oacute;n la interacci&oacute;n con prote&iacute;nas como E-cadherina, axina, APC y Tcf/Lef (<a href="#f1">figura 1</a>). Mediante cristalograf&iacute;a de rayos X se determin&oacute; que las 12 repeticiones armadillo forman una superh&eacute;lice y un surco largo cargado positivamente; este surco interact&uacute;a con residuos &aacute;cidos consecutivos comunes en cadherinas, APC y miembros de la familia TCF (7).</p>     <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/cesm/v29n1/v29n1a9f1.jpg"></p>      <p><b>&beta;-CATENINA EN LA V&iacute;A DE SE&ntilde;ALIZACI&oacute;N WNT/ &beta;-CATENINA</b></p>      <p>La v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt/&beta;-catenina juega un papel crucial en la regeneraci&oacute;n de tejidos y en el proceso de diferenciaci&oacute;n de c&eacute;lulas madre (8, 9). Esta v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n fue descrita por primera vez en Drosophila (mosca de la fruta) y fue denominada Wingless (del ingl&eacute;s: "sin alas"), pues alteraciones en esta v&iacute;a generan un defecto en el desarrollo de las alas y los halterios en la mosca. La v&iacute;a es indispensable para el correcto patr&oacute;n celular en el embri&oacute;n y el desarrollo de los discos imaginales de la larva, constituidos por c&eacute;lulas indiferenciadas que dar&aacute;n origen a las estructuras cuticulares de la mosca adulta como alas, antenas, entre otras (10). </p>      <p>Wnt-1 es el gen Wnt que m&aacute;s se ha estudiado   y corresponde a un proto-oncog&eacute;n. La primera   descripci&oacute;n se realiz&oacute; en c&eacute;lulas que presentaban   integraci&oacute;n del genoma del virus de tumor   mamario de rat&oacute;n (VTMR) cerca del promotor   del gen Wnt; la secuencia viral regula este gen   celular causando una sobreexpresi&oacute;n del ligando   Wnt y por tanto la activaci&oacute;n de la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n   (11).   </p>      <p>En c&eacute;lulas de mam&iacute;feros la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n   se activa cuando el ligando Wnt se une al receptor   Frizzled (Fz) y al receptor de lipoprote&iacute;nas   de baja densidad relacionados con la   prote&iacute;na 5/6 (LRP5/6); la interacci&oacute;n ligandoreceptores   produce la fosforilaci&oacute;n de LRP5/6   por actividad de las quinasas CK1 y GSK3&beta;, en   un dominio conservado proporcionando un sitio   &oacute;ptimo de uni&oacute;n para la prote&iacute;na axina. La   activaci&oacute;n de la v&iacute;a y el reclutamiento de axina   y prote&iacute;nas asociadas (GSK3&beta;, CK1&alpha;, APC)   a Fz-LRP5/6 en la membrana regulan de forma   negativa el denominado complejo de destrucci&oacute;n,   conformado por las prote&iacute;nas GSK3&beta;,   CK1&alpha;, APC y axina (12, 13). Este complejo tiene   como funci&oacute;n marcar la prote&iacute;na &beta;-catenina   para que sea degradada en el proteasoma y de   este manera impedir su actividad como factor   de transcripci&oacute;n.</p>      <p>Si el complejo de destrucci&oacute;n no cumple su   funci&oacute;n, se produce la acumulaci&oacute;n de la forma   estable de &beta;-catenina en el citoplasma, la   cual es traslocada al n&uacute;cleo para actuar como   factor de transcripci&oacute;n de genes que codifican   prote&iacute;nas involucradas en proliferaci&oacute;n celular,   diferenciaci&oacute;n y mantenimiento de c&eacute;lulas   madre, como c-myc (14), ciclina D (15) y Tcf-1   (16).   </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La axina proporciona sitios de uni&oacute;n a todas   las prote&iacute;nas del complejo de destrucci&oacute;n y   por esto se conoce como prote&iacute;na "andamio" o   scaffold (<a href="#f1">figura 1B</a>). La fosforilaci&oacute;n de axina por   GSK3&beta; aumenta la afinidad por las prote&iacute;nas del   complejo, mientras que en su estado hipofosforilado   la prote&iacute;na axina se degrada y se produce   la desestabilizaci&oacute;n del complejo (17, 18). Durante   la activaci&oacute;n de la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n, las   quinasas se reclutan en un dominio del correceptor   LRP5/6 (PPPSPXS) y como consecuencia   el complejo se desestabiliza.</p>        <p>Las quinasas GSK3&beta; y CK1&alpha; son las encargadas de fosforilar la prote&iacute;na &beta;-catenina en cuatro residuos del dominio N-terminal. Inicialmente CK1&alpha; fosforila el residuo Ser<sup>45</sup> y luego GSK3&beta; fosforila los residuos Th<sup>41</sup>, Ser<sup>37</sup> y Ser<sup>33</sup> (<a href="#f2">figura 2</a>) (1, 19). Esta modificaci&oacute;n es indispensable para la poliubiquitinaci&oacute;n y ulterior degradaci&oacute;n de &beta;-catenina en el proteasoma. Como se mencion&oacute; anteriormente, si la prote&iacute;na &beta;-catenina se degrada, no es traslocada al n&uacute;cleo y por ende no puede cumplir su funci&oacute;n como factor de transcripci&oacute;n (<a href="#f2">figura 2</a> - v&iacute;a inactiva).</p>     <p align="center"><a name="f2"></a><img src="img/revistas/cesm/v29n1/v29n1a10f2.jpg"></p>      <p>En el complejo de destrucci&oacute;n, la prote&iacute;na   APC se fosforila, generando un cambio conformacional   que facilita su uni&oacute;n a &beta;-catenina.   La interacci&oacute;n APC-&beta;-catenina permite la fosforilaci&oacute;n   de esta &uacute;ltima por las quinasas del   complejo. Adicionalmente, APC evita la defosforilaci&oacute;n   de &beta;-catenina mediada por la fosfotasa   2A (PP2A), protegiendo el sitio de reconocimiento   de &beta;-TrCP (del ingl&eacute;s, Beta-transducing   repeat containing protein), para mantener la uni&oacute;n   de &beta;-TrCP a la prote&iacute;na &beta;-catenina fosforilada y   para su posterior degradaci&oacute;n v&iacute;a proteosomal   (<a href="#f2">figura 2</a>).</p>      <p>En el n&uacute;cleo, APC facilita el reclutamiento   del represor transcripcional CtBP al complejo   &beta;-catenina/LEF-1, regulando de forma negativa   la transcripci&oacute;n de los genes blanco de la   se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt (20). Teniendo en cuenta las   propiedades de la prote&iacute;na APC, el gen que la   codifica es conocido como un gen supresor de   tumores, puesto que funciona como un regulador   negativo de la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt. A   finales de la d&eacute;cada de los 90 se describieron   mutaciones en el gen APC en casos de c&aacute;ncer   colorrectal (21).   </p>      <p>Cuando la v&iacute;a est&aacute; activada, la prote&iacute;na   &beta;-catenina, luego de ser traslocada al n&uacute;cleo,   forma un complejo con miembros de la familia   de prote&iacute;nas de uni&oacute;n al ADN: TCF-1/LEF-1, 3,   4, lo que produce el desplazamiento de la prote&iacute;na   "Groucho", un co-represor transcripcional;   &beta;-catenina tambi&eacute;n facilita el reclutamiento de   otras prote&iacute;nas que favorecen la transcripci&oacute;n   (co-activadores) como las acetilasas de histonas   CBP/p300 (22) (<a href="#f2">figura 2</a>). La formaci&oacute;n del complejo   &beta;-catenina-TCF1/LEF1 y el reclutamiento   de CBP/p300 regula positivamente la expresi&oacute;n   de genes que codifican prote&iacute;nas como Cyclin   D1, c-Myc y metaloproteasas de matriz celular   (MMP-2, 3, 7, 9, 13), entre otros (23).</p>      <p><b>&beta;-CATENINA EN LA ADHESI&oacute;N CELULAR</b></p>      <p>La organizaci&oacute;n espacial y funcional de las c&eacute;lulas en los tejidos se determina por la adhesi&oacute;n c&eacute;lula-c&eacute;lula. Esta interacci&oacute;n es esencial para la morfog&eacute;nesis y la polaridad apicobasal de las c&eacute;lulas y se establece por la formaci&oacute;n del complejo cadherina-catenina (24).</p>      <p> Las cadherinas son glicoprote&iacute;nas de 120 kDa que presentan tres grandes dominios: extracelular (N-terminal), transmembranal e intracelular (c-terminal), con funciones y propiedades diferentes. La regi&oacute;n extracelular de las cadherinas presenta cinco dominios que median la adhesi&oacute;n celular dependiente de calcio, por interacci&oacute;n con dominios extracelulares de cadherinas de las c&eacute;lulas vecinas que permite la formaci&oacute;n de un "cierre" o "cremallera" (molecular zipper).</p>      <p>La regi&oacute;n C-terminal de la cadherina o regi&oacute;n intracelular   es la responsable de la uni&oacute;n de esta   prote&iacute;na al citoesqueleto mediante la interacci&oacute;n   con &beta;-catenina y a-catenina. Esta interacci&oacute;n   permite estabilizar y reforzar la uni&oacute;n de los   dominios extracelulares de cadherina, que es   relativamente d&eacute;bil; esto se logra mediante la   uni&oacute;n entre los dominios citopl&aacute;smicos de las   prote&iacute;na cadherina y actina, componente principal   del citoesqueleto de la c&eacute;lula, lo que resulta   en el agrupamiento lateral de los dominios extracelulares   de la cadherina (25).</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Ahora bien, las cadherinas no est&aacute;n unidas a la prote&iacute;na actina en forma directa, sino a trav&eacute;s de su interacci&oacute;n con las prote&iacute;nas &beta;-catenina y &alpha;-catenina. Se ha demostrado que &alpha;-catenina se asocia con los filamentos de actina para permitir establecer la posterior uni&oacute;n con cadherina (26).</p>      <p> En este complejo tambi&eacute;n participa la prote&iacute;na   EPLIN (por las siglas en ingl&eacute;s, epithelial protein lost   in neoplasm). EPLIN es una prote&iacute;na que potencia   la uni&oacute;n y el agrupamiento de los filamentos de   actina, clave en el interacci&oacute;n estable del complejo   cadherina-catenina-Eplin y por tanto es un factor muy importante en la uni&oacute;n c&eacute;lula-c&eacute;lula   (27, 28).   </p>      <p>A este complejo macromolecular se une la prote&iacute;na   p120-catenina, miembro de la familia de   prote&iacute;nas con dominio &quot;armadillo&quot;. p120-catenina   juega un papel esencial en la estabilizaci&oacute;n   del complejo de adhesi&oacute;n celular, gracias   a que impide la internalizaci&oacute;n de la cadherina   (29). Adem&aacute;s p120-catenina cumple una funci&oacute;n   muy importante como factor de regulaci&oacute;n   de la GTPasa Rho, que participa en la din&aacute;mica   del citoesqueleto. En un modelo in vitro se demostr&oacute;   la funci&oacute;n de p120-catenina en la capacidad   para aumentar el &aacute;rea de contacto para   la uni&oacute;n c&eacute;lula-c&eacute;lula, mientras que &beta;-catenina   es un factor determinante en la adhesi&oacute;n celular   fuerte (30). Por otro lado, se ha demostrado que   la prote&iacute;na p120-catenina interacciona con otro   de los componentes del citoesqueleto, los microt&uacute;bulos.   Esta interacci&oacute;n ser&iacute;a mediada por   las prote&iacute;nas PLEKHA7 (por las siglas en ingl&eacute;s,   pleckstrin homology domain-containing) y Nezha (31,   32) (<a href="#f3">figura 3</a>).</p>      <p align="center"><a name="f3"></a><img src="img/revistas/cesm/v29n1/v29n1a10f3.jpg"></p>      <p>La fosforilaci&oacute;n de p120-catenina y &beta;-catenina es una modificaci&oacute;n frecuente en el proceso de adhesi&oacute;n c&eacute;lula-c&eacute;lula mediada por cadherinas. Datos experimentales indican que la presencia de &beta;-catenina en las uniones celulares est&aacute; controlada por su fosforilaci&oacute;n en el residuo Tyr-654; la modificaci&oacute;n de este amino&aacute;cido en la &uacute;ltima repetici&oacute;n &quot;armadillo&quot; de la prote&iacute;na &beta;-catenina disminuye la capacidad de uni&oacute;n a E-cadherina y por tanto afecta la formaci&oacute;n de las uniones adherentes (4).</p>      <p>Adem&aacute;s de su funci&oacute;n como puente en el complejo   cadherina/&beta;-catenina/a-catenina, la prote&iacute;na   &beta;-catenina es necesaria para facilitar el   transporte de cadherinas del aparato de Golgi   a la membrana plasm&aacute;tica (33). Tambi&eacute;n es   importante en la estabilizaci&oacute;n estructural de   las uniones celulares y en la interacci&oacute;n prote&iacute;na-   prote&iacute;na con otros factores como vinculina,   componente de la matriz extracelular (34).   </p>      <p>La modificaci&oacute;n de este complejo para desmontar   la uniones c&eacute;lula-c&eacute;lula hace parte de la fisiolog&iacute;a   celular; por ejemplo esta modificaci&oacute;n   es necesaria en la transici&oacute;n epitelial-mesenquimal,   en procesos de diferenciaci&oacute;n celular y de   migraci&oacute;n (35).</p>      <p>Sin embargo, alteraciones en el complejo de adhesi&oacute;n   c&eacute;lula-c&eacute;lula por mutaciones en el gen   CDH1, gen que codifica la prote&iacute;na E-cadherina,   han sido descritas para diferentes tipos de tumores,   como carcinoma lobular de mama, c&aacute;ncer   g&aacute;strico de tipo difuso y carcinoma hepatocelular   (36-38).   </p>      <p>Las alteraciones del complejo tambi&eacute;n pueden   ser consecuencia de cambios en la actividad del   promotor. En el carcinoma hepatocelular se ha   demostrado la hipermetilaci&oacute;n del promotor del   gen CDH1 y la subsecuente disminuci&oacute;n en el nivel   de expresi&oacute;n de la prote&iacute;na E-cadherina (39).</p>      <p> Un estudio reciente permiti&oacute; demostrar que en   la carcinog&eacute;nesis asociada a la infecci&oacute;n cr&oacute;nica   por el virus de la hepatitis C, la alteraci&oacute;n   epigen&eacute;tica del gen CDH1 estaba directamente   relacionada con la replicaci&oacute;n viral. En este   contexto la infecci&oacute;n por este virus ocasiona   un aumento en la actividad de las ADN metil   transferasas (DNMT), enzimas encargadas de la   metilaci&oacute;n del genoma celular. Una de las consecuencias   de esta actividad es la metilaci&oacute;n   del promotor del gen CDH1 en las c&eacute;lulas de   hepatoma Huh-7.5 y la ulterior interrupci&oacute;n en   la transcripci&oacute;n, traducci&oacute;n y expresi&oacute;n de la   prote&iacute;na E-cadherina (40).   </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Cambios en el nivel de expresi&oacute;n de la prote&iacute;na   E-cadherina debida a mutaciones o a modificaciones   epigen&eacute;ticas del promotor del gen correspondiente   entre otros, es uno de los eventos   del proceso multi-etapas de la carcinog&eacute;nesis   relacionados con met&aacute;stasis como resultado de   la migraci&oacute;n e invasi&oacute;n de las c&eacute;lulas tumorales   a otros tejidos. Esta propiedad de las c&eacute;lulas   tumorales est&aacute; directamente relacionada con la   p&eacute;rdida del complejo de adhesi&oacute;n celular.</p>      <p><b>REGULACI&oacute;N DE LA V&iacute;A SE&ntilde;ALIZACI&oacute;N WNT/&beta;- CATENINA EN C&aacute;NCER</b></p>      <p>La v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt funciona en respuesta a la presencia de &beta;-catenina, y es fundamental en el desarrollo embrionario y en la homeostasis tisular (23). Es altamente conservada a trav&eacute;s de la evoluci&oacute;n (41), lo que puede considerase una se&ntilde;al de su importancia. Mutaciones y cambios epigen&eacute;ticos en la v&iacute;a Wnt se han relacionado con defectos cong&eacute;nitos (42); adem&aacute;s, esta v&iacute;a est&aacute; alterada en diversos tipos de c&aacute;ncer, as&iacute; como en enfermedades &oacute;seas y cardiovasculares (42, 43). </p>      <p>Estudios recientes evidencian mecanismos de   alteraci&oacute;n de los componentes de la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n   Wnt/&beta;-catenina, diferente a la regulaci&oacute;n   del gen CTNNB1; estas alteraciones generan   hiperactivaci&oacute;n de la v&iacute;a Wnt, lo que puede   resultar en un proceso de carcinog&eacute;nesis.</p>      <p>La p&eacute;rdida de expresi&oacute;n de algunos genes   que codifican prote&iacute;nas de la v&iacute;a Wnt est&aacute; relacionada   con la estabilizaci&oacute;n de la prote&iacute;na   &beta;-catenina, con la actividad continua de esta   prote&iacute;na como co-activador transcripcional y   con la activaci&oacute;n de la proliferaci&oacute;n debido a la   estimulaci&oacute;n constante de la v&iacute;a.</p>      <p>Es el caso del carcinoma colorrectal, en el cual   se ha descrito que en el 85 % de los casos se   presentan mutaciones en el gen APC; estas mutaciones   afectan su funci&oacute;n en el complejo de   destrucci&oacute;n de &beta;-catenina. Debido a esta alteraci&oacute;n   gen&eacute;tica se observa acumulaci&oacute;n citoplasm&aacute;tica   de &beta;-catenina en l&iacute;neas celulares de   c&aacute;ncer colorectal, adem&aacute;s de que la se&ntilde;alizaci&oacute;n   Wnt est&aacute; activada constitutivamente. Las   mutaciones en el gen APC est&aacute;n generalmente   dirigidas a alterar los dominios reguladores de   &beta;-catenina, aunque no necesariamente aquellos   de uni&oacute;n a esta prote&iacute;na (44).</p>      <p>Los sitios de uni&oacute;n a la prote&iacute;na axina son cr&iacute;ticos   para la prote&iacute;na APC y su rol en la v&iacute;a de   se&ntilde;alizaci&oacute;n, por lo cual la modificaci&oacute;n de   &eacute;stos altera los niveles de &beta;-catenina y puede   favorecer los procesos de carcinog&eacute;nesis (45).   La prote&iacute;na axina fue originalmente identificada   como un inhibidor de la se&ntilde;alizaci&oacute;n de Wnt   en embriones de rana de la especie Xenopus. Diversos   estudios in vitro e in vivo (Xenopus, Drosophila   y c&eacute;lulas de mam&iacute;feros) aportaron evidencias   del papel de la axina en la regulaci&oacute;n   de &beta;-catenina (46).   </p>      <p>Esta prote&iacute;na tambi&eacute;n se conoce como prote&iacute;na   &quot;andamio&quot; del complejo de destrucci&oacute;n, gracias   a que se une a las prote&iacute;nas APC, &beta;-catenina,   GSK3&beta; y Dishvelled (47). Se ha propuesto adem&aacute;s   que la prote&iacute;na axina facilita la fosforilaci&oacute;n   de &beta;-catenina y APC por acci&oacute;n de las quinasas   GSK3&beta; y CK1&alpha; (48). Es por esto que los genes   Axin1 y Axin2 son considerados como genes   supresores de tumores por la capacidad de la   prote&iacute;na axina de regular negativamente la se&ntilde;alizaci&oacute;n   Wnt.</p>      <p>Mutaciones en los genes Axin1 y Axin2 constituyen   un defecto gen&eacute;tico en la v&iacute;a de Wnt que   contribuye al c&aacute;ncer humano. Tambi&eacute;n han sido   descritos patrones de hipermetilaci&oacute;n de secuencias   promotoras en el gen APC y como se   mencion&oacute; anteriormente en el gen CDH-1, lo   que conlleva al silenciamiento de estos genes   y a la ausencia de las prote&iacute;nas correspondientes.   Como consecuencia de la ausencia de estas   prote&iacute;nas, se altera la formaci&oacute;n y eficiencia del   complejo de destrucci&oacute;n y por ende a la estabilizaci&oacute;n   y acumulaci&oacute;n intracelular de &beta;-catenina,   favoreciendo as&iacute; el desarrollo y progresi&oacute;n de   tumores (49, 50). </p>      <p>Otros factores de v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n diferentes   a Wnt tambi&eacute;n pueden estar involucrados   en la regulaci&oacute;n de &beta;-catenina mediante la fosforilaci&oacute;n   de esta prote&iacute;na o por la regulaci&oacute;n   de otros componentes corriente arriba de la   v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt/&beta;-catenina. En estudios   in vitro se ha demostrado la interacci&oacute;n   de &beta;-catenina con miembros de la familia del   receptor tirosina quinasa del factor de crecimiento   epidermal (EGFR), como el receptor   de crecimiento epidermal humano 2 (HER2); la   fosforilaci&oacute;n de &beta;-catenina mediada por estos   receptores modula la actividad transcripcional   de &beta;-catenina (51).   </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Tambi&eacute;n pueden participar en la regulaci&oacute;n de la   v&iacute;a Wnt las prote&iacute;nas codificadas por los genes   supresores de tumores p53 y PTEN (por las siglas   en ingl&eacute;s, phosphatase and tensin homolog). Por   ejemplo, la p&eacute;rdida de expresi&oacute;n de PTEN resulta   en la acumulaci&oacute;n de &beta;-catenina y en la activaci&oacute;n   transcripcional dependiente del TCF (52).   </p>      <p>Y aunque no es claro el mecanismo molecular, la   degradaci&oacute;n de &beta;-catenina puede ser regulada   positivamente por la prote&iacute;na p53; se sugiere un   mecanismo indirecto, dado que no se ha podido   demostrar la interacci&oacute;n prote&iacute;na-prote&iacute;na entre   p53 y &beta;-catenina. Esta regulaci&oacute;n por p53 controla   la acumulaci&oacute;n de &beta;-catenina, protegiendo   a la c&eacute;lula de posibles eventos oncog&eacute;nicos (53).</p>      <p>Recientemente se ha descrito la relaci&oacute;n de la   actividad de la telomerasa, subunidad enzim&aacute;tica   que controla la longitud de los tel&oacute;meros,   y la prote&iacute;na &beta;-catenina; el promotor del gen   TERT es directamente regulado por &beta;-catenina,   de tal manera que la acumulaci&oacute;n de la prote&iacute;na   &beta;-catenina, por mutaciones en el gen CTNNB1,   pueden provocar un aumento en la expresi&oacute;n   del gen TERT, una etapa importante en el proceso   de carcinog&eacute;nesis (54).</p>      <p><b>ALTERACI&Oacute;N GEN&Eacute;TICA DEL GEN CTNNB1 EN C&Aacute;NCER</b></p>      <p>En neoplasias caracterizadas por alteraci&oacute;n de la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt/ &beta;-catenina son frecuentes las mutaciones en el gen CTNNB1. Los cambios en la secuencia de este gen m&aacute;s reportados se localizan en el ex&oacute;n 3, que codifica parte del dominio N-terminal de la prote&iacute;na &beta;-catenina en el cual se ubican los residuos de serina y treonina, Ser<sup>45</sup>, Thr<sup>41</sup>, Ser<sup>37</sup> y Ser<sup>33</sup>, blanco de las quinasas GSK3&beta; y CK1&alpha; (55). Estas mutaciones producen cambios conformacionales en la prote&iacute;na que impiden su fosforilaci&oacute;n, lo cual resulta en la estabilizaci&oacute;n de &beta;-catenina y en su acumulaci&oacute;n citoplasm&aacute;tica, posterior traslocaci&oacute;n al n&uacute;cleo y en consecuencia, transcripci&oacute;n de los genes blanco de la v&iacute;a Wnt/&beta;-catenina (20, 23). Estas mutaciones en el ex&oacute;n 3 se han descrito en diferentes tipos de c&aacute;ncer incluyendo c&aacute;ncer de colon, de h&iacute;gado, de ovario, en melanoma y en tumores desmoides (<a href="#f1">figura 1A</a>) (20, 23).</p>      <p> El hepatoblastoma, c&aacute;ncer primario de h&iacute;gado,   que se presenta principalmente en ni&ntilde;os, es   una neoplasia que se caracteriza por una alta   frecuencia de mutaciones en el gen CTNNB1;   es as&iacute; como el 75 al 80 % de los casos de este   tumor presentan mutaciones en este gen y as&iacute;   como en el modelo murino de hepatoblastoma.   En otro c&aacute;ncer primario de h&iacute;gado, el carcinoma   hepatocelular, se han descrito mutaciones en el   ex&oacute;n 3 del gen CTNNB1 hasta en un 44 % en los   casos (56, 57). En un estudio reciente realizado   con muestras de tumores primarios de origen   desconocido, se demostr&oacute; que el 20.7% de los   tumores presentaban mutaciones en los exones   3, 4 y 5 del gen CTNNB1. Y en el 19.5% de los casos   estas mutaciones estaban relacionadas con   la activaci&oacute;n de la v&iacute;a y adem&aacute;s se demostr&oacute; una   asociaci&oacute;n significativa con mal pron&oacute;stico de   los pacientes (58).</p>      <p>Las mutaciones S45A, T41A, S37A, S33A aumentan   el nivel de capacidad transformante   de las c&eacute;lulas; adicionalmente tambi&eacute;n pueden   tener efecto tanto en la proliferaci&oacute;n como en   la migraci&oacute;n celular. En ensayos in vitro con c&eacute;lulas   MDCK, una l&iacute;nea celular no transformada   de c&eacute;lulas epiteliales con expresi&oacute;n de cadherina   y componentes de la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt   "wild type", se observ&oacute; que las mutaciones S37A   y S33A generan disminuci&oacute;n en la densidad celular,   mientras que las mutaciones T41A y S45A   aumentan el n&uacute;mero de c&eacute;lulas en la fase G<sub>0</sub> del   ciclo celular. Adicionalmente, en este modelo se   demostr&oacute; que la mutaci&oacute;n S45A aumenta la migraci&oacute;n   celular y los niveles de ARNm de ciclina   D1, un gen blanco de la activaci&oacute;n transcripcional   por &beta;-catenina (59).</p>      <p><b>REGULACI&Oacute;N DE LA ADHESI&Oacute;N CELULAR MEDIADA POR CADHERINAS EN C&Aacute;NCER</b></p>      <p>Las alteraciones del complejo cadherina-catenina se han relacionado con una p&eacute;rdida de la adhesi&oacute;n celular, lo que lleva al desarrollo de c&eacute;lula con gran capacidad invasiva (60, 61).</p>      <p>La estabilizaci&oacute;n de &beta;-catenina en c&eacute;lulas tumorales   juega un papel muy importante tanto en   el desarrollo como en la progresi&oacute;n del tumor,   con incremento de la habilidad metast&aacute;sica de &eacute;stas c&eacute;lulas; adem&aacute;s, ha sido asociada con una   mayor capacidad invasiva de las c&eacute;lulas tumorales   afectando el equilibrio celular, promoviendo   la proliferaci&oacute;n y diferenciaci&oacute;n tumoral en   c&aacute;ncer de colon, est&oacute;mago, es&oacute;fago, h&iacute;gado,   cuello, pulm&oacute;n y seno. Tanto la acumulaci&oacute;n de   &beta;-catenina como su localizaci&oacute;n nuclear est&aacute;n   relacionadas con un peor pron&oacute;stico del c&aacute;ncer   colorrectal (5).   </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se ha demostrado in vitro la capacidad de   &beta;-catenina en mantener el fenotipo maligno   en l&iacute;neas celulares de hepatoma y carcinoma   hepatocelular (HuH-7 y HepG2). Estas l&iacute;neas   celulares se caracterizan por la expresi&oacute;n de   &beta;-catenina mutada. La regulaci&oacute;n negativa de la   expresi&oacute;n de la prote&iacute;na por siRNA- &beta;-catenina,   produce una disminuci&oacute;n en la expresi&oacute;n de   genes blanco como c-myc y Ciclina D1, adem&aacute;s   de una disminuci&oacute;n en la proliferaci&oacute;n celular   (62).   </p>      <p>Estudios recientes en diferentes tipos tumorales   indican que las alteraciones en el gen CTNNB1   puede ser un evento temprano durante el desarrollo   del c&aacute;ncer de colon, g&aacute;strico, urogenital   y CHC. Adem&aacute;s, se ha evidenciado el papel de   estas mutaciones en la proliferaci&oacute;n celular y en   la inducci&oacute;n de apoptosis en c&eacute;lulas hep&aacute;ticas   transfectadas con el gen CTNNB1 mutado y en   ratones transg&eacute;nicos para la prote&iacute;na &beta;-catenina   mutada (63, 64).</p>      <p> La alteraci&oacute;n de la adhesi&oacute;n celular mediada   por E-cadherina se considera un paso clave en   la progresi&oacute;n hacia la fase de un tumor invasivo   (65). Los mecanismos responsables de estos   cambios en la adhesi&oacute;n incluyen mutaciones en   el gen CDH1, que alteran la capacidad de adhesi&oacute;n   de la prote&iacute;na (66), la hipermetilaci&oacute;n   del promotor de este gen (67) o una combinaci&oacute;n   de mutaciones en un alelo y silenciamiento   g&eacute;nico por metilaci&oacute;n del promotor del alelo   restante (37). Adicionalmente se ha descrito la   p&eacute;rdida de la expresi&oacute;n de E-cadherina debido a   su represi&oacute;n transcripcional (68-70).   </p>      <p>Varios factores de transcripci&oacute;n est&aacute;n implicados   en la represi&oacute;n del gen CDH1 como las prote&iacute;nas   de la familia &quot;dedos de zinc&quot; Slug / Snail,   F1/ZEB1, SIP-1, y el factor base &quot;h&eacute;lice-bucle-h&eacute;lice&quot;   E12/E47 (69, 71, 72). La represi&oacute;n transcripcional   del gen CDH1 y los subsecuentes cambios   morfol&oacute;gicos en las c&eacute;lulas ocurren durante la   transici&oacute;n epitelio mesenquimal en el desarrollo   embrionario, cuando las c&eacute;lulas epiteliales se diferencian   y durante la migraci&oacute;n de c&eacute;lulas de la   cresta neural del neuroectodermo (73).</p>      <p><b>miRNAs</b></p>      <p>Se ha reportado tambi&eacute;n la identificaci&oacute;n de la regulaci&oacute;n de la v&iacute;a Wnt/&beta;-catenina por microARNs (miRNAs, por sus siglas en ingl&eacute;s); los miRNAs son cadenas de &aacute;cido ribonucleico de 18 a 24 nucle&oacute;tidos de largo, no-codificantes, que participan en el silenciamiento del ARNm y la regulaci&oacute;n post-transcripcional de la expresi&oacute;n g&eacute;nica. Este mecanismo de silenciamiento es un potente regulador de la expresi&oacute;n g&eacute;nica y de procesos como la inflamaci&oacute;n y la oncog&eacute;nesis. El an&aacute;lisis de la expresi&oacute;n de miRNA en diferentes neoplasias ha permitido definir el perfil de miRNA caracter&iacute;stico de cada tumor y su importancia en el desarrollo, as&iacute; como la relaci&oacute;n de algunos factores de riesgo, miRNA y la neoplasia (74)</p>      <p>Una evidencia de la interacci&oacute;n de factor de riesgo   y miRNA fue aportada por un estudio reciente   en muestras de tejido hep&aacute;tico provenientes de   pacientes con infecci&oacute;n cr&oacute;nica por VHC y pacientes   con carcinoma hepatocelular asociado a   la infecci&oacute;n por VHC. El an&aacute;lisis de estas muestras   permiti&oacute; demostrar un aumento en el nivel   de expresi&oacute;n de miRNA-155, comparado con lo   observado en tejidos provenientes de pacientes   con esteato hepatitis no alcoh&oacute;lica (NASH, por   su sigla en ingl&eacute;s). Este hallazgo fue corroborado   por los resultados observados in vitro en   una l&iacute;nea de hepatoma humano infectada con   VHC, segunda evidencia de que miRNA-155 es regulado por la infecci&oacute;n por VHC. Este miRNA   promueve la proliferaci&oacute;n de hepatocitos e inhice   la apoptosis gracias a la activaci&oacute;n de la v&iacute;a   Wnt/&beta;-catenina, activaci&oacute;n que depende del silenciamiento   del gen APC.   </p>      <p>Como se describi&oacute; anteriormente, la prote&iacute;na APC   hace parte del complejo de destrucci&oacute;n, con las   prote&iacute;nas GSK3&beta;, CK1&alpha; y axina, clave en la regulaci&oacute;n   de &beta;-catenina y por tanto de esta v&iacute;a.   Adicionalmente, los autores demuestran la relaci&oacute;n   entre la respuesta inflamatoria y la oncog&eacute;nesis   en este modelo, dado que el miRNA-155   es regulado positivamente por la respuesta   inflamatoria consecuencia de la infecci&oacute;n por VHC   y esto conlleva a la activaci&oacute;n de la v&iacute;a Wnt lo que   promueve la hepato-oncog&eacute;nesis (75).</p>      <p>De otra parte se ha demostrado la regulaci&oacute;n   negativa del miRNA-432 en el carcinoma hepatocelular,   lo que est&aacute; asociado con la proliferaci&oacute;n   y tumorigenicidad de los hepatocitos.   Estos hallazgos fueron descritos en tejido hep&aacute;tico   proveniente de pacientes con diagn&oacute;stico   de carcinoma hepatocelular, comparado con el   nivel de mi-RNA en tejido hep&aacute;tico no tumoral   proveniente de los mismos pacientes. Los autores   demuestran adem&aacute;s en un modelo in vitro   que este miRNA-432 silencia los genes que codifican   las prote&iacute;nas LRP6, TRIM29 y Pygo2 que   hacen parte de esta v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n; y como   consecuencia, se inhibe la proliferaci&oacute;n celular.</p>      <p>La sobre expresi&oacute;n de estas tres prote&iacute;nas ha sido   descrita en diferentes tipos de tumor. De tal manera,   miRNA-432 representa un miRNA supresor   de tumores y un importante blanco terap&eacute;utico   para el manejo de neoplasias como el carcinoma   hepatocelular (76). En c&aacute;ncer ov&aacute;rico tambi&eacute;n se   ha demostrado una regulaci&oacute;n negativa de este   miRNA (77) . El miR-601 tambi&eacute;n se podr&iacute;a considerar   un miRNA supresor de tumores teniendo en   cuenta que la inhibici&oacute;n de este miR-610 activa   la v&iacute;a Wnt/&beta;-catenina, mediante la supresi&oacute;n de   LRP6 y TBL1X y promueve la proliferaci&oacute;n celular   y tumorigenicidad in vitro como in vivo (78).   En tejidos de carcinoma hepatocelular se ha demostrado   la regulaci&oacute;n negativa de miRNA-610 y   adem&aacute;s se ha relacionado con la progresi&oacute;n de la   enfermedad y mal pron&oacute;stico (78).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En c&eacute;lulas de c&aacute;ncer colorrectal se ha demostrado   que el miRNA-29c regula negativamente la v&iacute;a   Wnt/&beta;-catenina a trav&eacute;s de las prote&iacute;nas GNA13 y   PTP4A y esto genera una inhibici&oacute;n significativa   de la capacidad de migraci&oacute;n e invasi&oacute;n de las   c&eacute;lulas in vitro y de met&aacute;stasis in vivo. Tambi&eacute;n   se demostr&oacute; que miRNA-29c inhibe la transici&oacute;n   epitelial-mesenquimal de las c&eacute;lulas (79).</p>      <p>Al igual que la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n Wnt/&beta;-   catenina, el complejo Cadherina- &beta;-catenina es   regulado por miRNAs. El blanco del miRNA-9 es   el gen que codifica la prote&iacute;na E-cadherina; el   silenciamiento de este gen y por tanto de la prote&iacute;na   E-cadherina repercute en la estabilidad de   la prote&iacute;na &beta;-catenina en citoplasma y posterior   traslocaci&oacute;n a n&uacute;cleo. En muestras de carcinoma   de c&eacute;lulas escamosas se ha demostrado un   aumento en la expresi&oacute;n de miRNA-9, que se   asocia con la migraci&oacute;n celular debido a la regulaci&oacute;n   negativa de E-cadherina (80)</p>      <p><b><font face="Verdana" size="3">CONCLUSIONES</font></b></p>      <p>La v&iacute;a Wnt/ &beta;-catenina, que funciona en respuesta al coactivador transcripcional &beta;-catenina, tiene un papel fundamental en la regulaci&oacute;n de la expresi&oacute;n de prote&iacute;nas claves en el desarrollo embrionario, organog&eacute;nesis y homeostasis. Adem&aacute;s de participar en esta importante v&iacute;a, la prote&iacute;na &beta;-catenina tambi&eacute;n participa en la organizaci&oacute;n, morfog&eacute;nesis y polaridad apicobasal de las c&eacute;lulas, gracias a que hace parte del complejo de adhesi&oacute;n c&eacute;lula-c&eacute;lula cadherina- &beta;-catenina- &alpha;-catenina.</p>      <p>La v&iacute;a Wnt/&beta;-catenina es altamente conservada a   nivel evolutivo, lo que demuestra su importancia   a nivel celular. La hiperactivaci&oacute;n de esta v&iacute;a se   ha asociado con la carcinog&eacute;nesis, debido a que la estabilizaci&oacute;n o no degradaci&oacute;n de &beta;-catenina   hace que act&uacute;e continuamente como regulador   de la transcripci&oacute;n y como activador de la proliferaci&oacute;n   celular. Diversos estudios han presentado   evidencias de desregulaci&oacute;n de la v&iacute;a Wnt/   &beta;-catenina en carcinog&eacute;nesis y las implicaciones   de la alteraci&oacute;n de otras de las prote&iacute;nas que hacen   parte de esta importante v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n   celular, como APC y axina. Uno de los mecanismos   m&aacute;s comunes de alteraci&oacute;n de esta v&iacute;a es la   acumulaci&oacute;n de mutaciones en el gen CTNNB1,   que codifica para &beta;-catenina, que generan cambios   en la secuencia de amino&aacute;cidos. Estas mutaciones   impiden la fosforilaci&oacute;n de la prote&iacute;na   y por tanto el control de la acumulaci&oacute;n de &eacute;sta   en el citoplasma y su posterior translocaci&oacute;n al   n&uacute;cleo. Por otro lado, algunas mutaciones en el   gen de &beta;-catenina causan un aumento en la capacidad   transformarte de las c&eacute;lulas, as&iacute; como   en la proliferaci&oacute;n y la migraci&oacute;n celular.   </p>      <p>Mutaciones que afecten a otras prote&iacute;nas de la   v&iacute;a, especialmente mutaciones de p&eacute;rdida de   funci&oacute;n en APC o axina, tambi&eacute;n contribuyen a   la hiperactividad de la v&iacute;a al impedir el correcto   funcionamiento del complejo de degradaci&oacute;n.   Finalmente, se ha encontrado que prote&iacute;nas   como p53 y PTEN pueden regular negativamente   a &beta;-catenina, a pesar de no ser parte de la v&iacute;a   Wnt/ &beta;-catenina.</p>      <p>Con respecto a la adhesi&oacute;n celular, la estabilizaci&oacute;n   de &beta;-catenina, que media la interacci&oacute;n   entre cadherinas y actina, se ha asociado con   mayor capacidad invasiva, proliferaci&oacute;n y diferenciaci&oacute;n   celular en varios tipos de tumores.</p>      <p>Finalmente, se han realizado varios estudios sobre   la desregulaci&oacute;n de miRNAs en c&aacute;ncer y su relaci&oacute;n   con la v&iacute;a de se<font size="2" face="Verdana">alizaci&oacute;n Wnt/&beta;-catenina   o la adhesi&oacute;n celular mediada por esta prote&iacute;na.</p>      <p>La exploraci&oacute;n de la v&iacute;a y de cada uno de los   procesos implicados en su desregulaci&oacute;n permitir&iacute;a   descifrar la clave del balance entre las   funciones &beta;-catenina en la adhesi&oacute;n celular y   como factor de transcripci&oacute;n, y de esta manera   definir blancos terap&eacute;uticos para el control de   neoplasias como c&aacute;ncer colorrectal y carcinoma   hepatocelular, en las cuales la alteraci&oacute;n de   Wnt/&beta;-catenina es un evento trascendental en el   proceso tumoral.</p>      <p><b><font face="Verdana" size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Esta publicaci&oacute;n hace parte del proyecto 111540820471 financiado por el Departamento Nacional de Ciencia Innovaci&oacute;n y Tecnolog&iacute;a, Colciencias, y del proyecto de Sostenibilidad de la Vicerrector&iacute;a de Investigaci&oacute;n de la Universidad de Antioquia.</p> <hr>      <p><b><font face="verdana" size="3">REFERENCIAS</font></b></p>      <!-- ref --><p>1. Fu Y, Zheng S, An N, Athanasopoulos T, Popplewell L, Liang A, et al. Beta-catenin as a potential key target for tumor suppression. Int J Cancer. 2011;129(7):1541-51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-8705201500010001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>2. Katanaev VL. The Wnt/Frizzled GPCR signaling   pathway. Biochemistry (Mosc).   2010;75(12):1428-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-8705201500010001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>3. Camilli TC, Weeraratna AT. Striking the target   in Wnt-y conditions: intervening in Wnt signaling   during cancer progression. Biochem   Pharmacol. 2010;80(5):702-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-8705201500010001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>4. Piedra J, Martinez D, Castano J, Miravet S,   Dunach M, de Herreros AG. Regulation   of beta-catenin structure and activity by   tyrosine phosphorylation. J Biol Chem.   2001;276(23):20436-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-8705201500010001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> 5. Akiyama T. Wnt/beta-catenin signaling. Cytokine   Growth Factor Rev. 2000;11(4):273-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-8705201500010001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>6. Cowin P, Rowlands TM, Hatsell SJ. Cadherins   and catenins in breast cancer. Curr Opin Cell   Biol. 2005;17(5):499-508.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-8705201500010001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>7. Huber AH, Nelson WJ, Weis WI. Three-dimensional structure of the armadillo repeat region of beta-catenin. Cell. 1997;90(5):871-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-8705201500010001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p> 8. MacDonald BT, Tamai K, He X. Wnt/beta-catenin   signaling: components, mechanisms,   and diseases. Dev Cell. 2009;17(1):9-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-8705201500010001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>9. Angers S, Moon RT. Proximal events in Wnt   signal transduction. Nat Rev Mol Cell Biol.   2009;10(7):468-77.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-8705201500010001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>10. Gumbiner BM. Signal transduction of betacatenin.   Curr Opin Cell Biol. 1995;7(5):634-   40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-8705201500010001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>11. Nusse R, Varmus HE. Wnt genes. Cell.   1992;69(7):1073-87.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-8705201500010001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>12. Korswagen HC, Herman MA, Clevers HC.   Distinct beta-catenins mediate adhesion   and signalling functions in C. elegans. Nature.   2000;406(6795):527-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-8705201500010001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>13. Mao J, Wang J, Liu B, Pan W, Farr GH, 3rd,   Flynn C, et al. Low-density lipoprotein   receptor-related protein-5 binds to Axin   and regulates the canonical Wnt signaling   pathway. Mol Cell. 2001;7(4):801-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-8705201500010001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>14. He TC, Sparks AB, Rago C, Hermeking H,   Zawel L, da Costa LT, et al. Identification   of c-MYC as a target of the APC pathway.   Science. 1998;281(5382):1509-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-8705201500010001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>15. Shtutman M, Zhurinsky J, Simcha I, Albanese   C, D'Amico M, Pestell R, et al. The cyclin   D1 gene is a target of the beta-catenin/   LEF-1 pathway. Proc Natl Acad Sci U S A.   1999;96(10):5522-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-8705201500010001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>16. Roose J, Huls G, van Beest M, Moerer P, van   der Horn K, Goldschmeding R, et al. Synergy   between tumor suppressor APC and   the beta-catenin-Tcf4 target Tcf1. Science.   1999;285(5435):1923-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-8705201500010001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>17. Takahashi Y, Nishikawa M, Takakura Y. Suppression   of tumor growth by intratumoral   injection of short hairpin RNA-expressing   plasmid DNA targeting beta-catenin or hypoxia-   inducible factor 1alpha. J Control Release.   2006;116(1):90-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-8705201500010001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>18. Luo W, Peterson A, Garcia BA, Coombs G,   Kofahl B, Heinrich R, et al. Protein phosphatase   1 regulates assembly and function of   the beta-catenin degradation complex.   EMBO J. 2007;26(6):1511-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0120-8705201500010001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>19. Taelman VF, Dobrowolski R, Plouhinec   JL, Fuentealba LC, Vorwald PP, Gumper   I, et al. Wnt signaling requires sequestration   of glycogen synthase kinase 3   inside multivesicular endosomes. Cell.   2010;143(7):1136-48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0120-8705201500010001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>20. Fodde R, Brabletz T. Wnt/beta-catenin   signaling in cancer stemness and malignant   behavior. Curr Opin Cell Biol.   2007;19(2):150-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0120-8705201500010001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>21. Bienz M. APC: the plot thickens. Curr Opin   Genet Dev. 1999;9(5):595-603.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0120-8705201500010001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>22. Tillhon M, Cazzalini O, Nardo T, Necchi D,   Sommatis S, Stivala LA, et al. p300/CBP acetyl   transferases interact with and acetylate   the nucleotide excision repair factor XPG.   DNA Repair (Amst). 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0120-8705201500010001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>23. Logan CY, Nusse R. The Wnt signaling   pathway in development and disease. Annu   Rev Cell Dev Biol. 2004;20:781-810.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0120-8705201500010001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>24. Yamada S, Pokutta S, Drees F, Weis WI,   Nelson WJ. Deconstructing the cadherin-   catenin-actin complex. Cell.   2005;123(5):889-901.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0120-8705201500010001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>25. Jamora C, Fuchs E. Intercellular adhesion,   signalling and the cytoskeleton. Nat Cell   Biol. 2002;4(4):E101-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0120-8705201500010001000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>26. Rimm DL, Koslov ER, Kebriaei P, Cianci CD, Morrow JS. Alpha 1(E)-catenin is an actinbinding and -bundling protein mediating the attachment of F-actin to the membrane adhesion complex. Proc Natl Acad Sci U S A. 1995;92(19):8813-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0120-8705201500010001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>27. Abe K, Takeichi M. EPLIN mediates linkage   of the cadherin catenin complex to F-actin   and stabilizes the circumferential actin belt.   Proc Natl Acad Sci U S A. 2008;105(1):13-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0120-8705201500010001000027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p> 28. Meng W, Takeichi M. Adherens junction:   molecular architecture and regulation.   Cold Spring Harb Perspect Biol.   2009;1(6):a002899.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0120-8705201500010001000028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>29. Chiasson CM, Wittich KB, Vincent PA, Faundez   V, Kowalczyk AP. p120-catenin inhibits   VE-cadherin internalization through a Rhoindependent   mechanism. Mol Biol Cell.   2009;20(7):1970-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0120-8705201500010001000029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>30. Oas RG, Nanes BA, Esimai CC, Vincent   PA, Garc&iacute;a AJ, Kowalczyk AP. p120-catenin   and &szlig;-catenin differentially regulate cadherin   adhesive function. Mol Biol Cell.   2013;24(6):704-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0120-8705201500010001000030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>31. Meng W, Mushika Y, Ichii T, Takeichi M. Anchorage   of microtubule minus ends to adherens   junctions regulates epithelial cell-cell   contacts. Cell. 2008;135(5):948-59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0120-8705201500010001000031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p> 32. Ishiyama N, Lee SH, Liu S, Li GY, Smith MJ,   Reichardt LF, et al. Dynamic and static interactions   between p120 catenin and E-cadherin   regulate the stability of cell-cell adhesion.   Cell. 2010;141(1):117-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0120-8705201500010001000032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>33. Miranda KC, Khromykh T, Christy P, Le TL,   Gottardi CJ, Yap AS, et al. A dileucine motif   targets E-cadherin to the basolateral   cell surface in Madin-Darby canine kidney   and LLC-PK1 epithelial cells. J Biol Chem.   2001;276(25):22565-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0120-8705201500010001000033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>34. Peng X, Cuff LE, Lawton CD, DeMali KA. Vinculin   regulates cell-surface E-cadherin expression   by binding to beta-catenin. J Cell   Sci. 2010;123(Pt 4):567-77.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0120-8705201500010001000034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>35. Conacci-Sorrell M, Simcha I, Ben-Yedidia T,   Blechman J, Savagner P, Ben-Ze'ev A. Autoregulation   of E-cadherin expression by   cadherin-cadherin interactions: the roles of   beta-catenin signaling, Slug, and MAPK. J   Cell Biol. 2003;163(4):847-57.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0120-8705201500010001000035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>36. Berx G, Becker KF, Hofler H, van Roy F. Mutations   of the human E-cadherin (CDH1) gene.   Hum Mutat. 1998;12(4):226-37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0120-8705201500010001000036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p> 37. Machado JC, Oliveira C, Carvalho R, Soares   P, Berx G, Caldas C, et al. E-cadherin gene   (CDH1) promoter methylation as the second   hit in sporadic diffuse gastric carcinoma.   Oncogene. 2001;20(12):1525-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0120-8705201500010001000037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>38. Tsuda H, Zhang WD, Shimosato Y, Yokota J,   Terada M, Sugimura T, et al. Allele loss on   chromosome 16 associated with progression   of human hepatocellular carcinoma. Proc   Natl Acad Sci U S A. 1990;87(17):6791-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0120-8705201500010001000038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>39. Kanai Y, Ushijima S, Hui AM, Ochiai A, Tsuda   H, Sakamoto M, et al. The E-cadherin gene   is silenced by CpG methylation in human   hepatocellular carcinomas. Int J Cancer.   1997;71(3):355-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0120-8705201500010001000039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> 40. Park J, Jang KL. Hepatitis C virus represses Ecadherin   expression via DNA methylation to   induce epithelial to mesenchymal transition   in human hepatocytes. Biochem Biophys   Res Commun. 2014;446(2):561-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S0120-8705201500010001000040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>41. Moon R. Wnt/&#946;-Catenin Pathway. Sci. STKE;   2008. p. cm1.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S0120-8705201500010001000041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>42. Clevers H. Wnt/beta-catenin signaling   in development and disease. Cell.   2006;127(3):469-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S0120-8705201500010001000042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>43. MacDonald BT, Yokota C, Tamai K, Zeng X, He X. Wnt signal amplification via activity, cooperativity, and regulation of multiple intracellular PPPSP motifs in the Wnt co-receptor LRP6. J Biol Chem. 2008;283(23):16115-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S0120-8705201500010001000043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>44. Polakis P. The oncogenic activation of beta-catenin.   Curr Opin Genet Dev. 1999;9(1):15-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S0120-8705201500010001000044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>45. Kawahara K, Morishita T, Nakamura T, Hamada   F, Toyoshima K, Akiyama T. Downregulation   of beta-catenin by the colorectal   tumor suppressor APC requires association   with Axin and beta-catenin. J Biol Chem.   2000;275(12):8369-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000193&pid=S0120-8705201500010001000045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>46. Farr GH, 3rd, Ferkey DM, Yost C, Pierce SB,   Weaver C, Kimelman D. Interaction among   GSK-3, GBP, axin, and APC in Xenopus axis   specification. J Cell Biol. 2000;148(4):691-702.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S0120-8705201500010001000046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>47. Peifer M, Polakis P. Wnt signaling in oncogenesis   and embryogenesis--a look outside the   nucleus. Science. 2000;287(5458):1606-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000197&pid=S0120-8705201500010001000047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>48. Ikeda S, Kishida S, Yamamoto H, Murai H,   Koyama S, Kikuchi A. Axin, a negative regulator   of the Wnt signaling pathway, forms   a complex with GSK-3beta and beta-catenin   and promotes GSK-3beta-dependent   phosphorylation of beta-catenin. EMBO J.   1998;17(5):1371-84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000199&pid=S0120-8705201500010001000048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>49. Kwon GY, Yoo BC, Koh KC, Cho JW, Park WS,   Park CK. Promoter methylation of E-cadherin   in hepatocellular carcinomas and dysplastic   nodules. J Korean Med Sci. 2005;20(2):242-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000201&pid=S0120-8705201500010001000049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>50. Katoh H, Shibata T, Kokubu A, Ojima H,   Fukayama M, Kanai Y, et al. Epigenetic instability   and chromosomal instability in   hepatocellular carcinoma. Am J Pathol.   2006;168(4):1375-84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000203&pid=S0120-8705201500010001000050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>51. Behari J. The Wnt/beta-catenin signaling   pathway in liver biology and disease. Expert   Rev Gastroenterol Hepatol. 2010;4(6):745-   56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000205&pid=S0120-8705201500010001000051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p> 52. Persad S, Troussard AA, McPhee TR, Mulholland   DJ, Dedhar S. Tumor suppressor PTEN   inhibits nuclear accumulation of beta-catenin   and T cell/lymphoid enhancer factor   1-mediated transcriptional activation. J Cell   Biol. 2001;153(6):1161-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000207&pid=S0120-8705201500010001000052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>53. Mei Y, Xie C, Xie W, Wu Z, Wu M. Siah-1S, a   novel splice variant of Siah-1 (seven in absentia   homolog), counteracts Siah-1-mediated   downregulation of beta-catenin. Oncogene.   2007;26(43):6319-31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000209&pid=S0120-8705201500010001000053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>54. Hoffmeyer K, Raggioli A, Rudloff S, Anton   R, Hierholzer A, Del Valle I, et al. Wnt/   beta-catenin signaling regulates telomerase   in stem cells and cancer cells. Science.   2012;336(6088):1549-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000211&pid=S0120-8705201500010001000054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>55. Lee HS, Park MH, Yang SJ, Park KC, Kim   NS, Kim YS, et al. Novel candidate targets   of Wnt/beta-catenin signaling in hepatoma   cells. Life Sci. 2007;80(7):690-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000213&pid=S0120-8705201500010001000055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>56. Hsu HC, Jeng YM, Mao TL, Chu JS, Lai PL,   Peng SY. Beta-catenin mutations are associated   with a subset of low-stage hepatocellular   carcinoma negative for hepatitis   B virus and with favorable prognosis. Am J   Pathol. 2000;157(3):763-70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000215&pid=S0120-8705201500010001000056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>57. Laurent-Puig P, Legoix P, Bluteau O, Belghiti   J, Franco D, Binot F, et al. Genetic alterations   associated with hepatocellular   carcinomas define distinct pathways of   hepatocarcinogenesis. Gastroenterology.   2001;120(7):1763-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000217&pid=S0120-8705201500010001000057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>58. Pentheroudakis G, Kotteas EA, Kotoula V,   Papadopoulou K, Charalambous E, Cervantes   A, et al. Mutational profiling of the RAS,   PI3K, MET and b-catenin pathways in cancer   of unknown primary: a retrospective study ofthe Hellenic Cooperative Oncology Group. Clin Exp Metastasis. 2014;31(7):761-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000219&pid=S0120-8705201500010001000058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>59. Provost E, Yamamoto Y, Lizardi I, Stern J,   D'Aquila TG, Gaynor RB, et al. Functional   correlates of mutations in beta-catenin   exon 3 phosphorylation sites. J Biol Chem.   2003;278(34):31781-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000221&pid=S0120-8705201500010001000059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>60. Stepniak E, Radice GL, Vasioukhin V. Adhesive   and signaling functions of cadherins   and catenins in vertebrate development.   Cold Spring Harb Perspect Biol.   2009;1(5):a002949.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000223&pid=S0120-8705201500010001000060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>61. Yuan S, Shi Y, Tang SJ. Wnt Signaling in the   Pathogenesis of Multiple Sclerosis-Associated   Chronic Pain. J Neuroimmune Pharmacol.   2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000225&pid=S0120-8705201500010001000061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>62. Sangkhathat S, Kusafuka T, Miao J, Yoneda A,   Nara K, Yamamoto S, et al. In vitro RNA interference   against beta-catenin inhibits the   proliferation of pediatric hepatic tumors. Int   J Oncol. 2006;28(3):715-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000227&pid=S0120-8705201500010001000062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p> 63. Shang XZ, Zhu H, Lin K, Tu Z, Chen J, Nelson   DR, et al. Stabilized beta-catenin promotes   hepatocyte proliferation and inhibits   TNFalpha-induced apoptosis. Lab Invest.   2004;84(3):332-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000229&pid=S0120-8705201500010001000063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p> 64. Vanden Heuvel GB, Brantley JG, Alcalay NI,   Sharma M, Kemeny G, Warolin J, et al. Hepatomegaly   in transgenic mice expressing   the homeobox gene Cux-1. Mol Carcinog.   2005;43(1):18-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000231&pid=S0120-8705201500010001000064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>65. Christofori G, Semb H. The role of the celladhesion   molecule E-cadherin as a tumoursuppressor   gene. Trends Biochem Sci.   1999;24(2):73-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000233&pid=S0120-8705201500010001000065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>66. Hajra KM, Fearon ER. Cadherin and catenin   alterations in human cancer. Genes Chromosomes   Cancer. 2002;34(3):255-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000235&pid=S0120-8705201500010001000066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>67. Hennig G, Behrens J, Truss M, Frisch S, Reichmann   E, Birchmeier W. Progression of carcinoma   cells is associated with alterations   in chromatin structure and factor binding at   the E-cadherin promoter in vivo. Oncogene.   1995;11(3):475-84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000237&pid=S0120-8705201500010001000067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>68. Cano A, Perez-Moreno MA, Rodrigo I, Locascio   A, Blanco MJ, del Barrio MG, et   al. The transcription factor snail controls   epithelial-mesenchymal transitions by repressing   E-cadherin expression. Nat Cell   Biol. 2000;2(2):76-83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000239&pid=S0120-8705201500010001000068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>69. Comijn J, Berx G, Vermassen P, Verschueren   K, van Grunsven L, Bruyneel E, et al. The   two-handed E box binding zinc finger protein   SIP1 downregulates E-cadherin and induces   invasion. Mol Cell. 2001;7(6):1267-78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000241&pid=S0120-8705201500010001000069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>70. Hajra KM, Chen DY, Fearon ER. The SLUG zincfinger   protein represses E-cadherin in breast   cancer. Cancer Res. 2002;62(6):1613-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000243&pid=S0120-8705201500010001000070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p> 71. Nieto MA. The snail superfamily of zinc-finger   transcription factors. Nat Rev Mol Cell   Biol. 2002;3(3):155-66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000245&pid=S0120-8705201500010001000071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p> 72. Bolos V, Peinado H, Perez-Moreno MA, Fraga   MF, Esteller M, Cano A. The transcription   factor Slug represses E-cadherin expression   and induces epithelial to mesenchymal transitions:   a comparison with Snail and E47 repressors.   J Cell Sci. 2003;116(Pt 3):499-511.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000247&pid=S0120-8705201500010001000072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>73. Thiery JP. Epithelial-mesenchymal transitions   in tumour progression. Nat Rev Cancer.   2002;2(6):442-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000249&pid=S0120-8705201500010001000073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>74. Szabo G, Bala S. MicroRNAs in liver disease.   Nat Rev Gastroenterol Hepatol.   2013;10(9):542-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000251&pid=S0120-8705201500010001000074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>75. Zhang Y, Wei W, Cheng N, Wang K, Li B, Jiang   X, et al. Hepatitis C virus-induced up-regulation   of microRNA-155 promotes hepatocarcinogenesis by activating Wnt signaling.   Hepatology. 2012;56(5):1631-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000253&pid=S0120-8705201500010001000075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>76. Jiang N, Chen W-J, Zhang J-W, Xu C, Zeng   X-C, Zhang T, et al. Downregulation of miR-   432 activates Wnt/&#946;-catenin signaling and   promotes human hepatocellular carcinoma proliferation. Oncotarget; 2015. p. 7866-79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000255&pid=S0120-8705201500010001000076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p> 77. Kim YW, Kim EY, Jeon D, Liu JL, Kim HS, Choi   JW, et al. Differential microRNA expression   signatures and cell type-specific association   with Taxol resistance in ovarian cancer cells.   Drug Des Devel Ther. 2014;8:293-314.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000257&pid=S0120-8705201500010001000077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>78. Zeng X, Liu F, Yan R, Yi H, Zhang T, Wang G,   et al. Downregulation of miR-610 promotes   proliferation and tumorigenicity and activates   Wnt/&#946;-catenin signaling inhuman hepatocellular   carcinoma. Mol Cancer 2014.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000259&pid=S0120-8705201500010001000078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>79. Zhang JX, Mai SJ, Huang XX, Wang FW, Liao   YJ, Lin MC, et al. MiR-29c mediates epithelial-   to-mesenchymal transition in human   colorectal carcinoma metastasis via   PTP4A and GNA13 regulation of &#946;-catenin   signaling. Ann Oncol. 2014;25(11):2196-   204.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000261&pid=S0120-8705201500010001000079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>80. Song Y, Li J, Zhu Y, Dai Y, Zeng T, Liu L, et   al. MicroRNA-9 promotes tumor metastasis   via repressing E-cadherin in esophageal   squamous cell carcinoma. Oncotarget.   2014;5(22):11669-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000263&pid=S0120-8705201500010001000080&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <p> Recibido: junio 19 de 2012. Revisado: octubre 11 de 2012. Aceptado: octubre 16 de 2012</p>      <p>Forma de citar: Vivas CA, R&iacute;os JJ, Romero HA. P&oacute;lipos endometriales, fisiopatolog&iacute;a y factores de riesgo.  Rev CES Med 2012; 26(2): 175-184</p> </font>      ]]></body><back>
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