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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto del uso del suelo sobre hongos solubilizadores de fosfato y bacterias diazotróficas en el páramo de Guerrero (Cundinamarca)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The effect of land use on phosphate solubilising fungi and diazotrophic bacteria on the bleak uplands of páramo of Guerrero, Cundinamarca department]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The effect of land use on phosphate-solubilising fungi (PSF) and nitrogen-fixing bacteria (NFB) populations was investigated. The soils selected were that from two potato crop varieties &#91;'Parda Pastusa' (p) and 'Pastusa Suprema' (s)&#93;, agricultural soil at present lying fallow (d) and soil from beneath forested areas (b). Active fungi (14 genera) and sterile chlamydospore -and basidiomycete-like mycelia were isolated by washing the soil. Mucorales presented low incidence in cultivated soil, except for Mucor racemosus. Circinella, Mucor and Zygorrhynchus genera were predominant in forest (b) soil. The most efficient calcium phosphate solubilisation assessed in liquid medium was registered for Trichocladium canadiense, Mucor sp1 and Penicillium sp2 isolated from (d) and (b), (>15% P- solubilisation). No correlation was found between fungal biomass and P solubilising efficiency; however, there was negative correlation with pH. Qualitative differences were found between land use and PSF, while significant differences were registered between NFB and bacterial populations. Azospirillum, Beijerinckia, Pseudomonas and Derxia dizotrophic bacterial species were isolated. The study revealed the functional groups' sensitive response to the microorganisms being evaluated, according to land use.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p align="center"><b><font size="4">Efecto del uso del suelo sobre hongos solubilizadores de fosfato y bacterias diazotr&oacute;ficas en el p&aacute;ramo de Guerrero (Cundinamarca)</font></b></p>      <p align="center"><b><font size="3">The effect of land use on phosphate solubilising fungi and diazotrophic bacteria on the bleak uplands of p&aacute;ramo of Guerrero, Cundinamarca department</font></b></p>      <p>Claudia Moratto<sup>1</sup>, Luis Joel Mart&iacute;nez<sup>2</sup>, Hernando Valencia<sup>3</sup> y Jimena S&aacute;nchez<sup>4</sup></p>     <p><sup>1</sup> Microbi&oacute;loga industrial, Programa de maestr&iacute;a en Microbiolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. e-mail: <a href="mailto:ccmorattos@unal.edu.co">ccmorattos@unal.edu.co</a>    <br> <sup>2</sup> Profesor asociado, Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. e-mail: <a href="mailto:ljmartinezm@unal.edu.co">ljmartinezm@unal.edu.co</a>    <br> <sup>3</sup> Profesor asociado, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. e-mail: <a href="mailto:havalenciaz@unal.edu.co">havalenciaz@unal.edu.co</a>    <br> <sup>4</sup> Profesora asistente, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. e-mail: <a href="mailto:jsanchezn@unal.edu.co">jsanchezn@unal.edu.co</a></p>      <p>Fecha de recepci&oacute;n: 29 de julio de 2005. Aceptado para publicaci&oacute;n: 21 de noviembre de 2005</p>  <hr size="1">      <p><b>Resumen</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se determin&oacute; el efecto del uso del suelo sobre las poblaciones de hongos solubilizadores de fosfato (HSF) y bacterias fijadoras biol&oacute;gicas de nitr&oacute;geno (BFN), aislando y caracterizando especies de estos grupos bajo cuatro condiciones de uso diferentes: cultivos de papa 'Parda Pastusa' (p), cultivo de papa 'Pastusa Suprema' (s), suelos cultivados con papa actualmente en descanso (d) y suelos de bosque (b). Se aislaron hongos en estado activo, mediante la t&eacute;cnica de lavado del suelo (14 g&eacute;neros), micelios est&eacute;riles, con clamidosporas y tipo basidiomycete. Se present&oacute; baja incidencia de mucorales en suelos cultivados y en descanso, a excepci&oacute;n de <i>Mucor racemosus</i>. En (d) predominaron especies de los g&eacute;neros <i>Circinella</i>, <i>Mucor</i> y <i>Zygorrhynchus</i>, evidenci&aacute;ndose la selecci&oacute;n de hongos por efecto de uso del suelo. La determinaci&oacute;n cuantitativa de la actividad solubilizadora evaluada en medio l&iacute;quido, registr&oacute; porcentajes altos en los hongos <i>Trichocladium canadense</i>, <i>Mucor sp1</i> y <i>Penicillium sp2</i>, aislados de (d) y (b), los cuales solubilizaron m&aacute;s de 15% del fosfato. No hubo relaci&oacute;n entre el f&oacute;sforo solubilizado y la biomasa, pero s&iacute; entre &eacute;ste y el pH. En las BFN se comprob&oacute; el efecto significativo de la condici&oacute;n de uso del suelo sobre los recuentos de sus poblaciones. Se identificaron cuatro morfotipos aislados de (d), dos de (p), tres de (s) y tres morfotipos de (b), correspondientes a especies de los g&eacute;neros <i>Azospirillum</i>, <i>Beijerinckia</i>, <i>Pseudomonas</i> y <i>Derxia</i>. Se evidenci&oacute; una respuesta sensible al uso del suelo por parte de los grupos funcionales estudiados.</p>     <p><b>Palabras claves adicionales:</b> microorganismos del suelo, micelio activo, bioindicadores de calidad del suelo.</p> <hr size="1">     <p><b>Abstract</b></p>     <p>The effect of land use on phosphate-solubilising fungi (PSF) and nitrogen-fixing bacteria (NFB) populations was investigated. The soils selected were that from two potato crop varieties &#91;'<i>Parda Pastusa</i>' (p) and '<i>Pastusa Suprema</i>' (s)&#93;, agricultural soil at present lying fallow (d) and soil from beneath forested areas (b). Active fungi (14 genera) and sterile chlamydospore -and basidiomycete-like mycelia were isolated by washing the soil. Mucorales presented low incidence in cultivated soil, except for <i>Mucor racemosus</i>. <i>Circinella</i>, <i>Mucor</i> and <i>Zygorrhynchus</i> genera were predominant in forest (b) soil. The most efficient calcium phosphate solubilisation assessed in liquid medium was registered for <i>Trichocladium canadiense</i>, <i>Mucor sp1</i> and <i>Penicillium sp2</i> isolated from (d) and (b), (&gt;15% P- solubilisation). No correlation was found between fungal biomass and P solubilising efficiency; however, there was negative correlation with pH. Qualitative differences were found between land use and PSF, while significant differences were registered between NFB and bacterial populations. <i>Azospirillum</i>, <i>Beijerinckia</i>, <i>Pseudomonas</i> and <i>Derxia</i> dizotrophic bacterial species were isolated. The study revealed the functional groups' sensitive response to the microorganisms being evaluated, according to land use.</p>     <p><b>Additional key words:</b> soil microorganisms, active mycelium, soil quality bioindicators.</p> <hr size="1">      <p><b><font size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>     <p>EN COLOMBIA, LOS BOSQUES ALTOANDINOS y los p&aacute;ramos ubicados en la alta monta&ntilde;a tropical juegan un papel importante como generadores, reguladores y almacenadores del recurso h&iacute;drico, por su riqueza paisaj&iacute;stica, el albergue de gran n&uacute;mero de especies animales y vegetales end&eacute;micas, as&iacute; como de la microbiota asociada al suelo, que es la base del sustento para el establecimiento y desarrollo de las comunidades vegetales all&iacute; encontradas (Casta&ntilde;o, 2002; Garc&iacute;a <i>et al.</i>, 2005). En la actualidad, el ecosistema de p&aacute;ramo ha sido un recurso sobre-explotado y desplazado por otros tipos de paisajes semiurbanos y agr&iacute;colas (Casta&ntilde;o, 2002).</p>     <p>Es vital conocer los cambios que ocurren en este eco-sistema por la acci&oacute;n antr&oacute;pica, para la adopci&oacute;n de medidas de protecci&oacute;n y recuperaci&oacute;n. Por esta raz&oacute;n, en los &uacute;ltimos a&ntilde;os ha crecido la necesidad de conocer el impacto que producen las pr&aacute;cticas agr&iacute;colas implementadas a lo largo de muchos a&ntilde;os, en especial con cultivos de papa, sobre la diversidad biol&oacute;gica presente en la regi&oacute;n paramuna.</p>     <p>La comunidad microbiana es el componente funcional m&aacute;s importante de la biota del suelo, ya que juega un papel importante en el flujo de energ&iacute;a, la transformaci&oacute;n de nutrientes y el ciclaje de elementos en el ambiente (Filip, 2002; Hoffman <i>et al.</i>, 2003). Las actividades de estos organismos son irremplazables en las transformaciones de la materia org&aacute;nica, pues la biomasa microbiana contribuye en la formaci&oacute;n del humus, la conservaci&oacute;n de la estructura del suelo y la biodegradaci&oacute;n de contaminantes (Hoffman <i>et al.</i>, 2003). Los microorganismos influyen directamente sobre la fertilidad y productividad de suelos agr&iacute;colas, en particular, con respecto a la disponibilidad de nutrientes, la supresi&oacute;n de enfermedades para las plantas nativas (Van Elsas <i>et al.</i>, 2002; Anderson, 2003), as&iacute; como la degradaci&oacute;n de diferentes plaguicidas, derivando de ellos energ&iacute;a y nutrientes para su metabolismo (Das <i>et al.</i>, 2003). Esto demuestra que un buen estatus de los microorganismos del suelo (alta cantidad, actividad y/o diversidad) es un prerrequisito de su buena calidad y fertilidad (Foissner, 1999; Hoffman <i>et al.</i>, 2003). Adem&aacute;s, el componente microbiol&oacute;gico del suelo es potencialmente uno de los indicadores biol&oacute;gicos sensibles utilizados para evidenciar disturbios o perturbaciones en &eacute;l (Pankhurst y Doube, 1997). En algunos casos, cambios en las poblaciones microbianas o en sus actividades pueden predecir modificaciones detectables en las propiedades f&iacute;sicas y qu&iacute;micas del suelo (Nielsen y Winding 2002).</p>     <p>Uno de los enfoques usados para estudiar la calidad de los suelos es medir funciones microbianas tales como las transformaciones espec&iacute;ficas de carbono, nitr&oacute;geno y f&oacute;sforo, puesto que afectan directamente la disponibilidad de nutrientes y, por tanto, pueden reflejar mejor los cambios en el funcionamiento del ecosistema y la calidad de los suelos (Pankhurst y Doube, 1997). Adem&aacute;s, las funciones, el tama&ntilde;o y la composici&oacute;n de las poblaciones microbianas han sido usados para ver los cambios en la biota en respuesta al uso del suelo y, por tanto, son indica-dores de su estado biol&oacute;gico (Pankhurst y Doube 1997).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Con base en lo anterior, se plante&oacute; esta investigaci&oacute;n, cuyo objetivo fue aislar, identificar y cuantificar hongos solubilizadores de fosfato (HSP) y bacterias fijadoras biol&oacute;gicas de N (BFN) y determinar el efecto del uso del suelo (cultivos de papa, suelos cultivados en descanso y bosque) sobre estos grupos funcionales de microorganismos.</p>       <p><b><font size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>       <p><b>&Aacute;rea de estudio</b></p>       <p>La investigaci&oacute;n se realiz&oacute; en el municipio de Zipaquir&aacute; (Cundinamarca), vereda P&aacute;ramo Guerrero Oriental, finca <i>Puente de tierra</i> (04&deg; 08' latitud norte, 74&deg; 02' longitud oeste), a una altitud de 3.373 msnm. El principal uso que se le da a estos suelos es el cultivo de papa, en rotaci&oacute;n con pastos; tambi&eacute;n se encuentran algunos relictos de bosques naturales. La toma de muestras se realiz&oacute; en: suelos cultivados con papa <i>Solanum tuberosum</i> variedad 'Parda Pastusa' (p) y variedad 'Pastusa Suprema' (s); suelos que se encuentran en descanso (d), utilizados durante 25 a&ntilde;os alternado cultivos de papa y pastos, y suelos de bosque (b). Los muestreos se realizaron en tres &eacute;pocas del a&ntilde;o (septiembre y noviembre de 2004 y enero de 2005). Los suelos (p) y (s) correspondieron a tres estados fonol&oacute;gicos diferentes (emergencia, floraci&oacute;n y cosecha), cuyas cosechas pertenecen al segundo per&iacute;odo de siembra luego del arado.</p>     <p>Los agroqu&iacute;micos empleados para ambos cultivos de papa incluyeron: Manzate<sup>&reg;</sup> (3 kg&middot; ha), Tamaron<sup>&reg;</sup> (900 mL&middot; ha<sup>-1</sup>), Cosmoin-d<sup>&reg;</sup> (750 mL&middot; ha<sup>-1</sup>), Cosmoquel-balance<sup>&reg;</sup> (1,5 kg&middot; ha<sup>-1</sup>), Lorsban<sup>&reg;</sup> (1,5 L&middot; ha<sup>-1</sup>), Carbofuran<sup>&reg;</sup> (1,5 L&middot; ha<sup>-1</sup>), Methavin<sup>&reg;</sup> (300 g&middot; ha), Cymoxanyl<sup>&reg;</sup> (1,5 kg&middot; ha<sup>-1</sup>), Validacin<sup>&reg;</sup> (1,5 L&middot; ha<sup>-1</sup>), Sandofan<sup>&reg;</sup> (1,5 kg&middot; ha<sup>-1</sup>) y Rhodax<sup>&reg;</sup> (2 kg&middot; ha<sup>-1</sup>). En el caso de la varie-dad 'Pastusa Suprema', se realizaron tres aplicaciones y para la variedad 'Parda Pastusa', siete.</p>     <p>En los suelos en descanso predomina <i>Calamagrostis sp.</i> y en suelos de bosque se encuentran especies de <i>Weinmannia</i>, <i>Hypericum</i>, <i>Hesperomeles</i>, <i>Diplostephium</i>, entre otras.</p>     <p><b>Toma de muestras</b></p>     <p>En los suelos con cultivos el muestreo se realiz&oacute; en forma aleatoria, tomando 10 plantas al azar, tres puntos por cada planta. Las muestras fueron tomadas en la base de las plantas, cubriendo el &aacute;rea cercana a la ra&iacute;z en los primeros 15 cm del suelo (n = 3), seg&uacute;n Valencia (2005). En los sitios en descanso y de bosque, se realiz&oacute; un muestreo tipo extensivo al azar, en tres transectos de aproximadamente 2 x 2 m, tomando cinco submuestras de 20 g de los primeros 15 cm de suelo. Todas las submuestras se mezclaron para obtener una muestra integrada de 300-400 g de cada tipo de uso de suelo (n = 3). A todas las muestras de suelo se les midi&oacute; el pH en campo con un potenci&oacute;metro digital. Adicionalmente, se les determin&oacute; la textura por el m&eacute;todo de Bouyoucos y el contenido de C org&aacute;nico por el m&eacute;todo de Walkley-Black, a partir del cual se calcul&oacute; el porcentaje de materia org&aacute;nica y de N total; la capacidad de intercambio cationico se determin&oacute; por el m&eacute;todo de Bray II mediante desplazamiento con NaCl y P, seg&uacute;n la metodolog&iacute;a del laboratorio de Agua y Suelos de la Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia (<a href="#tab1">tabla 1</a>).</p>     <p>    <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a15tab1.jpg"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El pH fue extremadamente &aacute;cido, muy fuertemente &aacute;cido y fuertemente &aacute;cido para los suelos de bosque, en descanso y de cultivos, respectivamente. Por otro lado, los suelos (d) y (b) presentaron una textura franca y franca arcillosa, respectivamente, mientras que en los suelos cultivados (p) y (s) fue franca arenosa. El porcentaje de materia org&aacute;nica (MO) indic&oacute; contenidos altos en todos los tipos de uso, ya que superaron el 10%. De igual modo, en el porcentaje de N total se registraron valores altos en todos los suelos con diferente uso. El estimativo conceptual de la capacidad de intercambio cati&oacute;nico fue alto (&gt;20 meq&middot; 100 g<sup>-1</sup> de suelo) para todos los suelos. El P disponible present&oacute; los valores m&aacute;s altos en los cultivos de papa 'Parda Pastusa' y 'Parda Suprema' (99,5 y 65,6 ppm, respectivamente) por efecto de la fertilizaci&oacute;n y para los suelos en descanso y bosque fue 16,0 y 5,9 ppm, respectivamente.</p>     <p><b>Aislamiento de hongos del suelo y selecci&oacute;n de HSF a partir de micelio activo</b></p>     <p>Se aislaron hongos a partir de part&iacute;culas de suelo mediante la t&eacute;cnica de lavado del suelo que, seg&uacute;n Gams y Domsch (1967), permite el aislamiento de micelios adheridos a las part&iacute;culas en estado activo y no, a partir de esporas y/o prop&aacute;gulos, como es lo usual por el m&eacute;todo con diluciones de suelo. Las part&iacute;culas se pasaron con ayuda de pinzas est&eacute;riles a diferentes medios de cultivo; para el caso de hongos del suelo en estado de micelio activo, se utiliz&oacute; agar-harina de ma&iacute;z (Cabello y Arambarri, 2002), mientras que para el aislamiento de HSF el medio empleado fue el SRS (Sundara Rao y Sinha, 1963). Se colocaron cinco part&iacute;culas por cada caja de Petri, para un total de 50 part&iacute;culas por r&eacute;plica (n = 3) para cada medio de cultivo empleado. Se incubaron a temperatura ambiente durante 8 d, para proceder luego a la determinaci&oacute;n del porcentaje de colonizaci&oacute;n de part&iacute;culas. Las cepas aisladas se transfirieron a cajas que conten&iacute;an papa-dextrosa-agar (PDA), extracto de malta (AEM) y agar Czapeck (ACZ), para su purificaci&oacute;n e identificaci&oacute;n taxon&oacute;mica siguiendo las claves propuestas de Von Arx (1974) y Domsch <i>et al.</i> (1980).</p>     <p><b>Capacidad relativa de solubilizaci&oacute;n de fosfatos</b></p>     <p>Se determin&oacute; la eficiencia relativa de solubilizaci&oacute;n de los aislamientos sobre el medio original de aislamiento (SRS), seg&uacute;n Sundara Rao y Sinha (1963), en el que las colonias que desarrollan actividad solubilizadora se detectan mediante la formaci&oacute;n de halos de transparencia y/o la acidificaci&oacute;n del medio alrededor de ellas. Se tom&oacute; cada una de las cepas puras de HSP y se realiz&oacute; un repique (disco de 8 mm de di&aacute;metro) en medio SRS (n = 4). Se dej&oacute; incubar a temperatura ambiente, registrando a los 10 d el di&aacute;metro de la colonia y de los halos de solubilizaci&oacute;n. Se calcul&oacute; la relaci&oacute;n di&aacute;metro de solubilizaci&oacute;n por di&aacute;metro de la colonia por cien para determinar la eficiencia de solubilizaci&oacute;n (Lapeyre <i>et al.</i>, 1990).</p>     <p><b>Solubilizaci&oacute;n de Ca<sub>3</sub>(PO<sub>4</sub>)<sub>2</sub> en medio l&iacute;quido</b></p>     <p>Aquellas cepas de hongos que presentaron mayor halo de solubilizaci&oacute;n, se inocularon en medio SRS s&oacute;lido y se dejaron durante 7 d a temperatura ambiente. Posteriormente, se prepararon tubos con 45 mL de medio SRS l&iacute;quido con Ca<sub>3</sub>(PO<sub>4</sub>)<sub>2</sub> como fuente mineral de fosfato (poco soluble) y sin indicador de pH, manteni&eacute;ndose  una concentraci&oacute;n de P equivalente a 2,29 g&middot; L<sup>-1</sup> de P<sub>2</sub>O<sub>5</sub>. Estas al&iacute;cuotas fueron inoculadas con discos de micelio de 8 mm de di&aacute;metro de los hongos con 8 d de crecimiento en SRS s&oacute;lido, utilizando dos r&eacute;plicas para cada aislamiento (Narsian <i>et al.</i>, 1993). Se incubaron a temperatura ambiente durante 7 d con agitaci&oacute;n constante de 160 rpm. Los controles negativos se realizaron utilizando al&iacute;cuotas de 45 mL del medio sin in&oacute;culo, incubados bajo las mismas condiciones. Se tuvo un control positivo con un microorganismo de referencia (<i>Penicillium janthinellum</i>) utilizado como solubilizador de fosfato en un producto comercial (Fosfosol<sup>&reg;</sup>).</p>     <p>Luego del per&iacute;odo de incubaci&oacute;n, las muestras fueron centrifugadas a 7.000 rpm por 10 min. Se registr&oacute; el pH de cada muestra y se determin&oacute; el contenido de P disponible presente mediante un an&aacute;lisis espectrofotom&eacute;trico, utilizando el m&eacute;todo del molibdovanadato por medio de la prueba anal&iacute;tica Spectroquant<sup>&reg;</sup> F&oacute;sforo (VM) Merck. Finalmente, se determin&oacute; la biomasa alcanzada para cada hongo por diferencia de peso, a trav&eacute;s de filtraci&oacute;n al vac&iacute;o y secado a 95 &deg;C por 24 h (Cunningham y Kuiack, 1992).</p>     <p><b>Recuento de bacterias fijadoras de N</b></p>     <p>Las muestras se procesaron para el conteo de c&eacute;lulas viables por series de diluci&oacute;n y la siembra en placa con medio NFB (<i>Nitrogen Free Broth</i>) (n = 3), que permite el aislamiento selectivo de bacterias con el sistema enzim&aacute;tico de la nitrogenasa (D&ouml;bereiner, 1994). Se incubaron a temperatura ambiente durante 3-5 d. Se realizaron los recuentos y la descripci&oacute;n macro y microsc&oacute;pica de los aislamientos obtenidos de las diluciones m&aacute;s altas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para la caracterizaci&oacute;n de las cepas, se tomaron colonias puras a partir de medio s&oacute;lido para su identificaci&oacute;n, utilizando el sistema anal&iacute;tico de paneles de identificaci&oacute;n r&aacute;pida BBL Crystal<sup>&reg;</sup>. Adicionalmente, se realizaron pruebas bioqu&iacute;micas complementarias para todos los morfotipos, tales como: prueba de oxidasa; fermentaci&oacute;n de lactosa, glucosa, maltosa y sacarosa; reducci&oacute;n de nitratos; rojo de metilo (MR); prueba de Voges-Proskauer (VP), de citrato, de TSI (siglas en ingl&eacute;s de triple az&uacute;car hierro), de LIA (siglas en ingl&eacute;s de agarlisina-hierro), de SIM (siglas en ingl&eacute;s de medio selectivo inductor de brotes) e hidr&oacute;lisis de gelatina (Koneman, 2001). Para aquellos morfotipos que presuntamente pertenec&iacute;an al g&eacute;nero <i>Azospirillum</i>, se realiz&oacute; la descripci&oacute;n morfol&oacute;gica de colonias en medio rojo congo, seg&uacute;n Stanley <i>et al.</i> (1994).</p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p>     <p>Con ayuda del programa <i>Statgraphics</i> versi&oacute;n 5.0, se realizaron an&aacute;lisis de regresi&oacute;n simple para determinar la relaci&oacute;n entre el P solubilizado y la biomasa producida, as&iacute; como su relaci&oacute;n con el pH. Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza de una sola v&iacute;a, para ver si hab&iacute;a diferencias entre los hongos por su actividad solubilizadora, y la prueba de comparaciones m&uacute;ltiples de Duncan, para establecer cu&aacute;les eran los hongos con mayor o menor actividad solubilizadora. Para los recuentos de BFN se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza factorial, con el fin de ver el efecto del tipo de uso del suelo sobre sus poblaciones, y una prueba de comparaciones m&uacute;ltiples de Duncan, para establecer en qu&eacute; tipo de uso del suelo se present&oacute; el mayor o menor n&uacute;mero de BFN.</p>       <p><b><font size="3">Resultados y discusi&oacute;n</font></b></p>     <p>Se obtuvo un total de 1.096 aislamientos distribuidos entre los cuatro suelos con diferente uso, a partir de un total de 1.800 part&iacute;culas de suelo analizadas. El porcentaje de colonizaci&oacute;n por hongos en estado activo fue similar en los cuatro tipos de uso estudiados, con un rango entre 79% y 100% (<a href="#fig1">figura 1</a>).</p>     <p>    <center><a name="fig1"><img src="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a15fig1.jpg"></a></center></p>     <p>El medio agar-harina de ma&iacute;z sirve de sustrato a un espectro amplio de hongos. No se presentaron diferencias en el porcentaje de colonizaci&oacute;n de las part&iacute;culas lavadas, pero s&iacute;, en los morfotipos de hongos obtenidos con respecto al uso del suelo (<a href="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a15tab2.jpg" target="_blank">tabla 2</a>).</p>     <p>Se identificaron 14 g&eacute;neros de microhongos, adem&aacute;s de cinco en estado de micelio est&eacute;ril, un micelio con presencia abundante de clamidosporas y uno del tipo basidiomycete. Los suelos en descanso y de bosque presentaron el mayor n&uacute;mero de morfotipos de hongos (doce cada uno), con relaci&oacute;n a los suelos cultivados con las dos variedades de papa &#91;seis y ocho morfotipos para (p) y (s), respectivamente&#93; (<a href="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a15tab2.jpg" target="_blank">tabla 2</a>); esto puede deberse a que aqu&eacute;llos se hallan respectivamente en proceso de recuperaci&oacute;n y no intervenidos, situaci&oacute;n en la que se puede encontrar mayor cantidad de microorganismos funcionando de forma activa, mientras que en los suelos cultivados puede ocurrir la inhibici&oacute;n de ciertos grupos por efecto de los agroqu&iacute;micos empleados (Nielsen y Winding, 2002), evidenciada gracias a la t&eacute;cnica de aislamiento empleada. Wardle <i>et al.</i> (1994) tambi&eacute;n registraron una reducci&oacute;n de las poblaciones de hongos activos en suelos cultivados con aplicaci&oacute;n de plaguicidas y fertilizantes y una alta presencia de hongos en estados latentes, como prop&aacute;gulos de resistencia. En cuanto a los suelos cultivados, los de la variedad 'Parda Suprema' presentaron un ligero aumento en el n&uacute;mero de morfotipos aislados (seis) con respecto a los de la variedad 'Parda Pastusa' (ocho), posiblemente por la menor aplicaci&oacute;n de agroqu&iacute;micos en estos suelos.</p>     <p>En los aislamientos de los microhongos, <i>Mucor racemosus</i> present&oacute; una distribuci&oacute;n amplia, excepto en los suelos de bosque, de donde no se aisl&oacute;. Esta especie ha sido reportada habitando ambientes extremos y con diferentes grados de contaminaci&oacute;n; es un hongo t&iacute;pico del suelo y la fertilizaci&oacute;n con NPK estimula su crecimiento (Domsch <i>et al.</i>, 1980). Estos resultados ayudan a explicar el que se haya encontrado preferentemente en suelos de cultivo activo y en suelos en descanso.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En los suelos cultivados se encontraron aislamientos de <i>Cylindrocarpon</i>, g&eacute;nero que se caracteriza por presentar un alto n&uacute;mero de especies fitopat&oacute;genas que afectan cultivos de papa. De la misma forma, especies de los g&eacute;neros <i>Trichoderma</i> y <i>Gliocladium roseum</i>, ahora reclasificado como <i>Clonostachys rosea</i> (Schroers <i>et al.</i>, 1999), se aislaron de los suelos cultivados; estos hongos son micopar&aacute;sitos de muchos hongos pat&oacute;genos de plantas, aun de aqu&eacute;llos que afectan a la papa (Li <i>et al.</i>, 2002; Harman <i>et al.</i>, 2004). En el caso de especies de Trichoderma, los mecanismos cl&aacute;sicos para biocontrol, adem&aacute;s del micoparasitismo, incluyen antibiosis, competencia e inducci&oacute;n de respuestas de defensa en las plantas hospederas (Altomare <i>et al.</i>, 1999).</p>     <p>En los suelos en descanso se presentaron dos especies de <i>Trichocladium</i> y una de <i>Alternaria</i>, com&uacute;nmente reportados como hongos celulol&iacute;ticos, pero no se encontraron en los suelos de bosque y cultivos. Es probable que estas especies se seleccionaran, ya que su crecimiento es favorecido cuando las condiciones de uso se modifican. En contraste, otras cepas nativas, como <i>Mucor sp1</i> y sp2, ven reprimida su actividad y no logran permanecer en los suelos donde se implementan las pr&aacute;cticas del monocultivo de papa.</p>     <p>Respecto al micelio de basidiomycete, se ha encontrado que ciertas especies de macrobasidiomycetes son potencialmente m&aacute;s importantes en la determinaci&oacute;n de las tasas de descomposici&oacute;n y mineralizaci&oacute;n de nutrientes, adem&aacute;s de ser vulnerables a disturbios debidos, en especial, al estr&eacute;s por humedad y a las sales provenientes de fertilizaci&oacute;n (Lodge <i>et al.</i>, 1996); esto podr&iacute;a explicar el hecho de haberlo aislado &uacute;nicamente de los suelos de bosque.</p>     <p>En general, se presentaron especies exclusivas en los suelos con diferente uso. La t&eacute;cnica empleada de aislamiento a partir de su estado activo permiti&oacute; diferenciarlas de aquellas especies provenientes de prop&aacute;gulos obtenidos por t&eacute;cnicas de aislamiento a partir de diluciones. En los suelos con las dos variedades de papa ('Parda Pastusa' y 'Parda Suprema'), se aislaron <i>Trichoderma sp1</i>, micelio con clamidosporas y <i>Mucor racemosus</i>, que se encontr&oacute; adem&aacute;s en el suelo en descanso. Es de anotar que, tanto en el suelo en descanso como de bosque, los aislamientos registrados corresponden a especies o morfotipos exclusivos, con excepci&oacute;n de <i>Mucor racemosus</i>, como se indic&oacute; arriba. De otra parte, es importante se&ntilde;alar que los mucorales <i>Circinella sp.</i>, <i>Mucor sp1</i>, <i>Mucor sp2</i> y <i>Zygorrhynchus sp.</i>, presentes s&oacute;lo en suelos de bosque, pueden ser microorganismos de inter&eacute;s como indicadores de uso, dada su sensibilidad a los fungicidas. Los microhongos tipo micelio est&eacute;ril predominaron en el suelo en descanso, as&iacute; como dos especies de <i>Trichocladium</i> (<i>T. asperum</i> y<i> T. canadense</i>).</p>     <p><b>Capacidad relativa de solubilizaci&oacute;n</b></p>       <p>Los valores m&aacute;s altos del &iacute;ndice de solubilizaci&oacute;n se presentaron en las cepas de <i>Mucor sp1</i>, <i>Penicillium sp2</i>, aislamientos s2 y d5 y <i>Mucor racemosus</i> (<a href="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a15tab3.jpg" target="_blank">tabla 3</a>). En todos los aislamientos hubo acidificaci&oacute;n del medio de cultivo, evidenciado por el color del indicador de pH. Los aislamientos donde se presentaron los &iacute;ndices m&aacute;s bajos de solubilizaci&oacute;n fueron: <i>Alternaria sp</i>, seguido por <i>Trichoderma koningii</i>, <i>Trichocladium canadense</i> y <i>Penicillium sp4</i>. Estos valores superaron en algunos casos al mayor valor registrado por Valero (2003) para la bacteria <i>Pseudomonas sp.</i>, con un &iacute;ndice de solubilizaci&oacute;n de 2,04 en ensayos en cultivos de arroz evaluados con la misma metodolog&iacute;a.</p>     <p><b>Actividad solubilizadora de Ca<sub>3</sub>(PO<sub>4</sub>)<sub>2</sub> en medio l&iacute;quido</b></p>     <p>Los porcentajes m&aacute;s altos de P solubilizado se obtuvieron para los aislamientos d2, b2 y b6, correspondientes a <i>Trichocladium canadense</i>, <i>Mucor sp1</i> y <i>Penicillium sp2</i>, que solubilizaron m&aacute;s de 15% del P insoluble presente en el medio (<a href="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a15tab3.jpg" target="_blank">tabla 3</a>). <i>Trichocladium canadense</i> present&oacute; el porcentaje de solubilizaci&oacute;n m&aacute;s alto (17,4%), mientras que la especie<i> T. asperum</i> mostr&oacute; uno de los valores m&aacute;s bajos (3,47%).</p>     <p>Los aislamientos con menor capacidad solubilizadora de fosfato fueron p1, b4, d3 y s2, pertenecientes a los diferentes tipos de uso del suelo. Estos datos fueron confirmados con la prueba de Duncan, en la que este grupo de hongos result&oacute; con la menor actividad solubilizadora. De la misma forma, los porcentajes de solubilizaci&oacute;n obtenidos para todos los aislamientos fueron m&aacute;s bajos, respecto al control empleado (<i>Penicilliumn janthinellum</i>), pero mayores a los registrados por Cepeda <i>et al.</i> (2005) para hongos aislados en el p&aacute;ramo el Granizo, en donde el mayor porcentaje de solubilizaci&oacute;n fue para <i>Penicillium spinulosum</i> (16,35%) y el menor, para<i> Mucor circinelloides</i> (2,31%), evaluados con la misma metodolog&iacute;a.</p>     <p>La mayor eficiencia de solubilizaci&oacute;n fue encontrada en hongos aislados en suelos con uso en descanso y de bosque. Probablemente la aplicaci&oacute;n de fertilizantes inhibe la actividad solubilizadora de microhongos en cultivos de papa 'Parda Pastusa' y 'Parda suprema', en donde se registraron valores altos de P (&gt;40 ppm) en el suelo. En otras investigaciones, se ha encontrado que la actividad solubilizadora de fosfato en diferentes microorganismos es afectada por la presencia de fosfatos solubles en el medio (Mikanov&aacute; y Novakov&aacute;, 2002). Al respecto, Goldstein (1986) comprob&oacute; que el incremento de la concentraci&oacute;n de fosfato dic&aacute;lcico en el medio de cultivo genera represi&oacute;n de la solubilizaci&oacute;n de fosfatos minerales en<i> Erwinia herbicola</i>. Esta bacteria inhibe parcialmente su capacidad de solubilizaci&oacute;n a partir 1 mM de fosfato dic&aacute;lcico y completamente a una concentraci&oacute;n de 20 mM. Chhonkar y Subba-Rao (1967) determinaron la actividad solubilizadora de fosfato mineral de varios hongos en un medio que conten&iacute;a tambi&eacute;n una fuente de fosfato soluble (KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>), comprobando la inhibici&oacute;n de la solubilizaci&oacute;n con el fosfato soluble y una alta actividad solubilizadora en el medio sin esta fuente de fosfato. Este efecto inhibitorio<i> in vitro</i> de altas concentraciones de fosfatos disponibles sobre la actividad solubilizadora microbiana presenta analog&iacute;a en condiciones de campo. As&iacute;, las bajas concentraciones de P disponible encontrado en los suelos en descanso y de bosque (&lt;20 ppm) propician el crecimiento y la actividad solubilizadora de los hongos.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los altos valores de solubilizaci&oacute;n registrados para los aislamientos b2 y b6, correspondientes a <i>Mucor sp1</i> y <i>Penicillium sp2</i>, coinciden con los resultados obtenidos en medio s&oacute;lido. En contraste, los aislamientos s3, d2, d6, b1, b3 y b5, que corresponden a Penicillium sp4, <i>Trichocladium canadense</i>, <i>Alternaria sp.</i>, <i>Penicillium sp1</i>, <i>Mucor sp.</i> y <i>Humicola grisea</i>, presentaron porcentajes altos de solubilizaci&oacute;n en medio l&iacute;quido y los &iacute;ndices relativos de solubilizaci&oacute;n m&aacute;s bajos. De la misma forma, <i>Gliocladium catenulatum</i>, micelio de basidiomycete, micelio con clamidiosporas sp1, <i>Trichocladium asperum</i> y los aislamientos b4, p1, d3 y s2 presentaron &iacute;ndices relativamente altos en medio s&oacute;lido, aunque las eficiencias de solubilizaci&oacute;n fueron las m&aacute;s bajas. Esto coincide con resultados obtenidos por otros autores, en los que no siempre una evaluaci&oacute;n en medio s&oacute;lido concuerda con lo obtenido en medio l&iacute;quido (Whitelaw <i>et al.</i>, 1999). Estos mismos investigadores comprobaron que el m&eacute;todo cuantitativo es m&aacute;s sensible, lo que est&aacute; acorde con los resultados obtenidos en ensayos de eficiencia en pruebas de campo. Los aislamientos s3 y b6, correspondientes a especies de <i>Penicillium</i>, registraron valores altos del porcentaje de solubilizaci&oacute;n. Es bien conocida la capacidad solubilizadora de fosfato entre especies de este g&eacute;nero (Whitelaw <i>et al.</i>, 1999), con las que se han desarrollado biofertilizantes comerciales, como es el caso del Fosfosol <sup>&reg;</sup> en el pa&iacute;s.</p>     <p><b>Relaci&oacute;n de P soluble y biomasa producida por HSF despu&eacute;s de incubaci&oacute;n </b></p>     <p>El an&aacute;lisis de varianza demostr&oacute; que la biomasa producida no es estad&iacute;sticamente significativa (<i>P </i>&gt; 0,05). El an&aacute;lisis de regresi&oacute;n entre el logaritmo natural del P solubilizado y la biomasa mostr&oacute; una relaci&oacute;n baja entre las dos variables, puesto que la biomasa explica s&oacute;lo un 9,56% de la variabilidad en el P soluble. Los aislamientos que solubilizaron mayor cantidad de P en el medio (d2, b2, b6, b3 y s3) produjeron cantidades similares de biomasa, con respecto a cepas con menor capacidad solubilizadora y al control. El aislamiento b3, perteneciente a una especie de mucoral, si bien present&oacute; una baja producci&oacute;n de biomasa, su porcentaje de P solubilizado se encontr&oacute; entre los valores m&aacute;s altos (14,72%). Esto permiti&oacute; evidenciar el hecho de que una alta producci&oacute;n de biomasa no est&aacute; necesariamente acompa&ntilde;ada de una alta capacidad de solubilizaci&oacute;n de fosfatos.</p>     <p><b>Relaci&oacute;n de f&oacute;sforo soluble y pH</b></p>     <p>El an&aacute;lisis de varianza mostr&oacute; que el pH es significativo, con un 95% de confianza (<i>P</i> &lt; 0,05). El an&aacute;lisis de regresi&oacute;n para el P solubilizado (ppm) y el pH producido por las cepas de HSP luego del per&iacute;odo de incubaci&oacute;n estableci&oacute; que el pH explica un 54,9% del P solubilizado. El pH est&aacute; inversamente relacionado con el P solubilizado, como se observa en la <a href="#fig2">figura 2</a> (m = -88,6). En estas condiciones experimentales, una disminuci&oacute;n en 0,1 unidades del pH implica el aumento en 8,9 ppm del P solubilizado. As&iacute; mismo, las cepas que solubilizaron m&aacute;s P en el medio registraron valores de pH m&aacute;s bajos (4,4-4,6), como fue el caso de <i>Trichocladium canadense</i>, <i>Mucor sp1</i>, <i>Penicillium sp2</i>. Esto permite inferir que la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos es el principal mecanismo utilizado por estos microorganismos para la solubilizaci&oacute;n de fosfatos, como se registra en otros trabajos (Halstead y Mc Kerchner, 1975). La producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos por los microorganismos solubilizadores de fosfato, adem&aacute;s de ser una alternativa promisoria en la solubilizaci&oacute;n de fosfatos, puede emplearse con &eacute;xito en el tratamiento de contaminantes, en la extracci&oacute;n de varios metales provenientes de minerales que los contienen y tambi&eacute;n en el contexto de la fertilizaci&oacute;n mineral para incrementar la productividad de los cultivos (Vassilev <i>et al.</i>, 1995).</p>     <p>    <center><a name="fig2"><img src="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a15fig2.jpg"></a></center></p>     <p>El hecho de que ciertos microorganismos del suelo sean capaces de disolver formas no solubles de compuestos fosfatados, abre la posibilidad de inducir la solubilizaci&oacute;n microbiana de fosfatos en el suelo (Goenadi <i>et al.</i>, 2000), puesto que se ha visto que hongos que poseen actividad solubilizadora tambi&eacute;n participan en la promoci&oacute;n del crecimiento vegetal (Whitelaw <i>et al.</i>, 1998).</p>     <p><b>Recuento y aislamiento de bacterias diaz&oacute;trofas</b></p>     <p>El mayor recuento de bacterias fijadoras de N se obtuvo en los suelos de bosque, excepto para el primer muestreo, en el que se registr&oacute; el menor valor (<a href="#tab4">tabla 4</a>) por corresponder a una muestra del mantillo y no ed&aacute;fica. Se observ&oacute; un efecto estad&iacute;sticamente significativo del uso del suelo sobre los recuentos de poblaciones de bacterias diazotr&oacute;ficas, con el mayor valor para los suelos que se encuentran en descanso, con respecto a los cultivados.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="tab4"><img src="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a15tab4.jpg"></a></center></p>     <p>Estos &uacute;ltimos no presentaron diferencias significativas (<i>P</i> &gt; 0,05). En forma an&aacute;loga se ha comprobado un efecto significativo del uso del suelo sobre la abundancia de las poblaciones nativas de rizobios (Escobar, 2003).</p>     <p>Las muestras de suelo en el cultivo de papa 'Parda Pastusa' presentaron el menor n&uacute;mero de bacterias diazotr&oacute;ficas, debido posiblemente a la mayor aplicaci&oacute;n de agroqu&iacute;micos requeridos en esta variedad. Es conocida la inhibici&oacute;n de poblaciones de BFN en presencia de altas concentraciones de N combinado, como &uacute;rea, nitratos y amonio (Balows <i>et al.</i>, 1992). Por otro lado, se registraron los valores m&aacute;s altos de los recuentos de BFN en el tercer muestreo (cosecha), debido a que en esta &eacute;poca ya no se hace ninguna aplicaci&oacute;n a los cultivos.</p>     <p>Se sabe que factores ambientales, tales como disponibilidad de fuentes de C y energ&iacute;a, presencia de N fijado, pH y humedad, afectan la abundancia y distribuci&oacute;n de diaz&oacute;trofos. La fijaci&oacute;n de N por diaz&oacute;trofos de vida libre se favorece en ambientes en donde hay deficiencia de N asimilable (Balows <i>et al.</i>, 1992). Adicionalmente, los aislamientos de bacterias diazotr&oacute;ficas de los suelos en cultivo de papa pertenecen a g&eacute;neros conocidos por presentar gr&aacute;nulos de reserva. Se ha reportado que la acumulaci&oacute;n, degradaci&oacute;n y utilizaci&oacute;n de poli &Beta;-hidroxibutirato por parte de las bacterias en condiciones de estr&eacute;s es un mecanismo que favorece su establecimiento, proliferaci&oacute;n, supervivencia y competencia, especialmente en ambientes donde las fuentes de C y energ&iacute;a son limitadas (Park <i>et al.</i>, 2005).</p>     <p>Los suelos en descanso (d), donde los recuentos de BFN fueron altos, presentaron la mayor variedad de morfotipos (cuatro), en comparaci&oacute;n con los dem&aacute;s tipos de uso del suelo: en suelos cultivados, dos morfotipos en suelos (p) y tres morfotipos predominantes en suelos (s), y en suelos (b), tres morfotipos (<a href="#tab5">tabla 5</a>). Se sabe que la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica es una forma eficiente de incorporar N, con un papel importante en la actividad microbiana y, en consecuencia, en procesos de remediaci&oacute;n, recuperaci&oacute;n y fertilidad del suelo (Zahran, 2001; Bossuyt <i>et al.</i>, 2001).</p>     <p>    <center><a name="tab5"><img src="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a15tab5.jpg"></a></center></p>     <p>Los resultados de las pruebas bioqu&iacute;micas revelaron especies de los g&eacute;neros <i>Azospirillum</i>, <i>Beijerinckia</i>, <i>Pseudomonas</i> y <i>Derxia</i> (<a href="#tab5">tabla 5</a>). Estos g&eacute;neros han sido ampliamente reconocidos como BFN de vida libre (Balows, 1992).</p>     <p>Las especies del g&eacute;nero <i>Derxia</i>, encontradas en los suelos (s) y (d), est&aacute;n ampliamente distribuidas en suelos tropicales con alta humedad. En condiciones de p&aacute;ramo, los suelos presentan por lo general un contenido alto de humedad; este factor, junto con las condiciones de pH, favorecieron su presencia en estos suelos.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>De otro lado, especies del g&eacute;nero <i>Beijerinckia</i>, encontradas en los suelos (p) y (d), se caracterizan por habitar suelos muy &aacute;cidos de las regiones tropicales y sus requerimientos minerales est&aacute;n generalmente relacionados con el estado mineral de los suelos, estos microorganismos pueden ser usados como indicadores del contenido de hierro en suelos tropicales, puesto que pueden tolerar niveles extremadamente altos. En este caso los niveles de hierro fueron 180 ppm para (p) y 114 ppm para (d). Tambi&eacute;n soportan valores de pH bajos (5,5-4,0 y algunas veces hasta 3,0) (Ballows, 1992), lo que explica el hecho de encontrarlos tambi&eacute;n en los suelos de bosque.</p>     <p>En suelos cultivados y de bosque se encontraron cepas pertenecientes a <i>Pseudomonas</i>. Estos microorganismos han sido aislados de la riz&oacute;sfera de diversos cultivos de plantas (Park <i>et al.</i>, 2005). Adem&aacute;s, es bien conocida su versatilidad bioqu&iacute;mica, por la variedad de fuentes de C que pueden asimilar, permitiendo la colonizaci&oacute;n de varios ambientes (Madigan <i>et al.</i>, 1998).</p>     <p>En general, los resultados obtenidos demuestran que grupos funcionales de microorganismos, como son los HSF y las BFN, pueden ser susceptibles a las perturbaciones que ocurren con el cambio en el uso del suelo, reduciendo el n&uacute;mero de sus poblaciones y su diversidad en cuanto a morfotipos aislados. Se observ&oacute; que en suelos en descanso y de bosque, con relaci&oacute;n a los suelos de cultivos existen condiciones m&aacute;s favorables para el desarrollo de hongos, puesto que en los dos primeros se obtuvo mayor variedad de morfotipos, con predominancia de mucorales en los suelos de bosque. Estos suelos, de donde se originaron los sistemas agr&iacute;colas en estudio, mostraron morfotipos de hongos exclusivos, altas poblaciones de BFN y cepas de HSF con alta eficiencia de solubilizaci&oacute;n de fosfato.</p>     <p>La t&eacute;cnica de lavado del suelo empleada en este estudio, con la que se obtienen hongos a partir del estado de micelio activo, permiti&oacute; el aislamiento de especies y/o morfotipos exclusivos de hongos seg&uacute;n la condici&oacute;n de uso del suelo, diferenci&aacute;ndolos de aquellas especies provenientes de prop&aacute;gulos que se obtienen por aislamiento a partir de diluciones.</p>     <p>Nutrientes como el N y el P son limitantes del crecimiento vegetal; por esta raz&oacute;n, es fundamental el estudio y seguimiento de los grupos funcionales de microorganismos tratados en este trabajo, conjuntamente con los procesos fundamentales que ellos median, para poder dise&ntilde;ar estrategias que conduzcan al manejo sostenible de estos sistemas agr&iacute;colas, ya que la inhibici&oacute;n o disminuci&oacute;n de las poblaciones en cuesti&oacute;n afecta directamente la fertilidad y la productividad de los suelos.</p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>     <p>Los autores expresan su agradecimiento al Instituto para el Desarrollo de la Ciencia y la Tecnolog&iacute;a Francisco Jos&eacute; de Caldas (Colciencias), el Servicio Nacional de Aprendizaje (Sena) y la Divisi&oacute;n de Investigaci&oacute;n sede Bogot&aacute; de la Universidad Nacional de Colombia (DIB) por el apoyo financiero de esta investigaci&oacute;n, parte del proyecto &quot;Modelo para evaluar la calidad de las tierras dedicadas al cultivo de la papa en Cundinamarca&quot;. Igualmente al laboratorio de Microbiolog&iacute;a del Suelo, Departamento de Biolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;, por la cofinanciaci&oacute;n de este proyecto.</p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Literatura citada</b></font></p>      <!-- ref --><p>Altomare, C., W.A. Norvell, T. Bj&ouml;rkman y G.E Harman. 1999. Solubilization of phosphates and micronutrients by the plantgrowth-promoting and biocontrol fungus <i>Trichoderma harzianum</i> Rifai 1295-22. Appl. Environ. Microbiol. 65 (7), 2926-2933.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-9965200500020001500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Anderson, T.H. 2003. Microbial eco-physiological indicators to asses soil quality. Agr. Ecosys. Environ. 98, 285-293.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-9965200500020001500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Balows, A., H.G. Truper, M. Dworkin, W. Harder y K.H. Schleifer. 1992. The prokaryotes. A handbook on the biology of bacteria: ecophysiology, isolation, identification, applications. 2nd edition. New York. 4126 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-9965200500020001500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Bossuyt, H., K. Denef, J. Six, S.D. Frey, R. Merckx y K. Paustian. 2001. Influence of microbial populations and residue quality on aggregate stability. Appl. Soil. Ecol. 16,195-208.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-9965200500020001500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Cabello, M. y A. Arambarr&iacute;. 2002. Diversity in soil fungi from undisturbed and disturbed <i>Celtis tala</i> Gill. ex Planch and <i>Scutia buxifolia</i> Reiss forests in the eastern Buenos Aires province (Argentina). Microbiol. Res. 157(2), 115-125.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-9965200500020001500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Casta&ntilde;o, C. (ed.). 2002. P&aacute;ramos y ecosistemas altoandinos de Colombia en condici&oacute;n <i>Hotspot</i> y <i>Global climatic tensor</i>. Instituto de Hidrolog&iacute;a, Meteorolog&iacute;a y Estudios Ambientales (Ideam). Bogot&aacute;. 387 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-9965200500020001500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Cepeda, M.L., A.M. Gamboa, H. Valencia y A. Lozano. 2005. Hongos solubilizadores de fosfatos minerales aislados de la riz&oacute;sfera de <i>Espeletia grandiflora</i> del p&aacute;ramo el Granizo. En: Bonilla, M.A. (ed). Estrategias adaptativas de plantas del p&aacute;ramo y del bosque altoandino en la cordillera Oriental de Colombia. Departamento de Biolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. 353 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-9965200500020001500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Chonkar, P.K. y N.S. Subba-Rao. 1967. Phosphate solubilization by fungi associated with legume root nodules. Can. J. Microbiol. 13, 749-753.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-9965200500020001500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Cunningham, J. y K. Kuiack. 1992. Production of citric and oxalic acids and solubilization of calciumphosphate by <i>Penicillium bilaii</i>. Appl. Environ. Microbiol. 58, 1451-1458.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-9965200500020001500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Das, A.C., A. Debnath y D. Mukherjee. 2003. Effect of the herbicides oxadiazon and oxyfluorfen on phosphates solubilizing microorganisms and their persistence in rice fields. Chemosphere 53, 217-221.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-9965200500020001500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Dobereiner, J. 1994. Isolation and identification of aerobic N2 fixing bacteria from soil and plants. pp.1-16. En: Methods in applied soil microbiology and biochemistry. Academic Press, London.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-9965200500020001500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Domsch K.H. y W. Gams. 1980. Compendium of soil fungi. Vol. 1, 2. Academic Press, London. 859 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-9965200500020001500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Escobar, L.F. 2003. Efecto del sistema de uso del suelo sobre la abundancia de poblaciones nativas de rizobios en la microcuenca Potrerillo, departamento del Cauca. Trabajo de grado. Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-9965200500020001500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</p>     <!-- ref --><p>Filip, Z. 2002. International approach to assessing soil quality by ecologically-related biological parameters. Agr. Ecosys. Environ. 88, 169-174.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-9965200500020001500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Foissner, W. 1999. Soil protozoa as bioindicator: pros and cons, methods, diversity, representative examples. Agr. Ecosys. Environ. 74, 95-112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-9965200500020001500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Gams, W. y K.H. Domsch. 1967. Beitr&auml;ge zur Anwendung der Bodenwaschtechnik f&uuml;r die Isolierung von Bodenpilzen mit selektiven Verfahren. Zentbl. Bakt. Parasit. Kde Abt. 1 Suppl. 1, 461-485.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-9965200500020001500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Garc&iacute;a, J.F., D.C. Garc&iacute;a y M. Correa. 2005. Incidencia de micorrizas arbusculares y ves&iacute;culo-arbusculares como estrategia adaptativa de plantas del p&aacute;ramo y del bosque altoandino. En: Bonilla, M.A. (ed.). Estrategias adaptativas de plantas del p&aacute;ramo y del bosque altoandino en la cordillera Oriental de Colombia. Departamento de Biolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. 353 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-9965200500020001500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Goenadi, D., H. Siswanto y Y. Sugiarto. 2000. Bioactivation of poorly soluble phosphate rocks with a phosphorus-solubilizing fungus. Soil Sci. Soc. Amer. J. 64, 927-932.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-9965200500020001500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Goldstein, A.H. 1986. Bacterial solubilization of mineral phosphates: historical perspective and future prospects. Amer. J. Alternat. Agric. 1, 51-57.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-9965200500020001500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Halstead, R.L. y R.B. McKercher. 1975. Biochemistry and cycling of phosphorus. En: Paul, E.A. y A.D. McLaren (eds.). Soil biochemistry. Vol. 4. Marcel Dekker, New York. pp. 50-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-9965200500020001500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Harman, G.E., C.R. Howell, A. Viterbo, I. Chet y M. Lorito. 2004. <i>Trichoderma</i> species opportunistic, avirulent plant symbionts. Nature Microbiol. Rev. 2, 43-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-9965200500020001500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Hoffman, J., J. Bezchlebov&aacute;, L. Dusek, L. Dolezal, I. Holoubek, P. Andel, A. Ansorgov&aacute; y S. Maly. 2003. Novel approach to monitoring of the soil biological quality. Environ. Intl. 28, 771-778.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-9965200500020001500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Holt, J.G., N.R. Krieg, P.H.A. Sneath, J.T. Staley y S.T. Williams (eds.). 1994. Bergey&acute;s manual of determinative bacteriology. Ninth edition. William and Wilkins, Baltimore, MD. 787 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-9965200500020001500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Koneman, E.W. 2001. Diagn&oacute;stico microbiol&oacute;gico: texto y atlas a color. Quinta edici&oacute;n. Editorial M&eacute;dica Panamericana, Buenos Aires. 533 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-9965200500020001500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Lapeyre, R., J. Ranger y D. Vairelles. 1990. Phosphate-solubilizing activity of ectomycorrhizal fungi in vitro. Can. J. Microbiol. 69, 342-346.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0120-9965200500020001500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Li, G.Q., H.C. Huang, E.G. Kokko y S.N. Acharya. 2002. Ultrastructural study of mycoparasitism of <i>Gliocladium roseum</i> on <i>Botrytis cinerea</i>. Bot. Bull. Acad. Sin. 43, 211-218.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0120-9965200500020001500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Lodge, D.J., D.L. Hawksworth y B.J. Ritchie. 1996. Microbial diversity and tropical forest functioning. En: Orians, G.H., R. Dirzo y J.H. Cushman.(eds.). Biodiversity and ecosystem processes in tropical forests. Springer-Verlag, Berlin. pp. 69-100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0120-9965200500020001500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Madigan, M.T., J.M. Martinko y J. Parker. 1998. Brock biology of microorganisms. Prentice Hall Iberia, Madrid. 986 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0120-9965200500020001500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Mikanov&aacute;, O. y J. Novakov&aacute;. 2002. Evaluation of the P-solubilizing activity of soil microorganisms and its sensitivity to soluble phosphate. Rostl. Vyr. 48(9), 397-400.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0120-9965200500020001500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Narsian, V., J. Thakkar y H. Patel. 1993. Solubilization of natural rock phosphates and pure insoluble inorganic phosphates by <i>Aspergillus awamori</i>. Indian J. Expt. Biol. 31, 747-749.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0120-9965200500020001500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Nielsen, M.N y A. Winding. 2002. Microorganisms as indicators of soil health. Technical report (388). National Environmental Research Institute, Denmark. 84 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0120-9965200500020001500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Pankhurst, C. y B.M. Doube. 1997. Biological indicators of soil health. CAB International, Washington. 451 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0120-9965200500020001500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Park, M., C. Kim, J. Yang, H. Lee, W. Shin, S. Kim y T. Sa. 2005. Isolation and characterization of diazotrophic growth promoting bacteria from rhizosphere of agricultural crops of Korea. Microbiol. Res. 160, 127-133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0120-9965200500020001500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Schroers, H.J., G.J. Samuels, K.A. Seifert y W. Gams. 1999. Classification of the mycoparasite <i>Gliocladium roseum</i> in <i>Clonostachys</i> as <i>C. rosea</i>, its relationship to <i>Bionectria ochroleuca</i>, and notes on other <i>Gliocladium</i>-like fungi. Mycologia 91(2), 365-385.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0120-9965200500020001500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Steenhoudt, O. y J. Vanderleyden. 2000. Azospirillum, a free-living nitrogen-fixing bacterium closely associated with grasses: gene-tic, biochemical and ecological aspects. FEMS Microbiol. Rev. 24(488), 487-506.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0120-9965200500020001500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Sundara, R. y M. Sinha. 1963. Organisms phosphate solubilizers in soil. Soil Sci. Plant Nutr. 9(2), 45-49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0120-9965200500020001500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Valencia, H. 2005. Manual de pr&aacute;cticas en microbiolog&iacute;a. Departamento de Biolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. 140 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0120-9965200500020001500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Valero, V.N. 2003. Potencial biofertilizante de bacterias diazotrofas y solubilizadoras de fosfatos asociadas al cultivo de arroz (<i>Oryza sativa</i> L.). Tesis de maestr&iacute;a. Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0120-9965200500020001500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</p>     <!-- ref --><p>Van Elsas, J.D., P. Garbeva y J. Salles. 2002. Effects of agronomical measures on the microbial diversity of soils as related to the suppression of soil-borne plant pathogens. Biodegradation 13, 29-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0120-9965200500020001500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Vassilev, N., M. Baca, M. Vassileva, I. Franco y R. Azcon. 1995. Rock phosphate solubilization by <i>Aspergillus niger</i> grown on sugar-beat waste medium. Appl. Microbiol. Biotechnol. 44, 546-549.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0120-9965200500020001500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Von Arx, J.A. 1974. The genera of fungi sporulating in culture. AR Gantner Verlag y Strau&szlig; and Cramer GmbH, Leutershausen (Germany). 315 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0120-9965200500020001500041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Wardle, D.A., K.S. Nicholoson y A. Rahman. 1994. Influence of herbicide applications on the decomposition, microbial biomass, and microbial activity of pasture shoot and root litter. New Zealand J. Agr. Res. 37, 29-39.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0120-9965200500020001500042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Weber, O.B., L.M. Cruz, J.I. Baldani y J.D. Bereiner. 2001. <i>Herbaspirillum</i>-like bacteria in banana plants. Braz. J. Microbiol. 32(3), 201-205.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0120-9965200500020001500043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Whitelaw, M. 1998. Growth promotion of plants inoculated with phosphate solubilizing fungi. Soil Biol. Biochem. 33, 4-19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0120-9965200500020001500044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Whitelaw, M., T. Harden y K. Helyar. 1999. Phosphate solubilisation in solution culture by the soil fungus <i>Penicillium radicum</i>. Soil Biol. Biochem. 31, 655-665.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0120-9965200500020001500045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Zahran, H.H. 2001. Rhizobia from wild legumes: diversity, taxonomy, ecology, nitrogen fixation and biotechnology. J. Biotechnol. 91, 143-153.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0120-9965200500020001500046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>     ]]></body>
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