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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de grupos funcionales (ciclo del C, N, P) y actividad de la fosfatasa ácida en dos suelos agrícolas del departamento de Boyacá (Colombia)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Microbial community of agricultural soils is a component with multiple functions that are essential for soil fertility. This research was undertaken in order to study bacteria populations participating in the biogeochemical cycles of C, N, and P, with the purpose of evaluating their presence in the cultivation systems and determining possible interactions among these groups in the rhizosphere and total soil. In a similar way, determination of the enzymatic activity of the acid phosphatase was done. The evaluation of the functional groups was carried out by recount in plate and estimation of the acid phosphatase activity using the method of Tabatabai and Bremner (1969, 1977). The phosphate solubilizing bacteria were present in smaller proportion than functional groups of the cycle of C and, in two soils, maintained population sizes similar to that of free-living nitrogen fixing bacteria in rhizosphere and total soil. According to the results obtained in these agricultural soils, the difference in the proportion of microorganisms between rhizosphere and surrounding soil can vary because of the fertilizer additions. Also, it was determined that activity of the acid phosphatase in these two soils could be affected by such factors as percentage organic matter, bacterial biomass, and phosphorus availability.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[fosfatasa ácida]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right"><b>SUELOS, FERTILIZACI&Oacute;N Y MANEJO DE AGUAS </b></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="4">Evaluaci&oacute;n de grupos funcionales (ciclo del C, N, P) y actividad   de la fosfatasa &aacute;cida en dos suelos agr&iacute;colas del departamento de   Boyac&aacute; (Colombia)</font></center></b></p>       <p>&nbsp; </p>       <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Evaluation of functional groups (cycles of C, N, P) and activity of the acid   phosphatase in two agricultural soils of Department of Boyac&aacute; (Colombia)</font></center></b></p>        <p>&nbsp; </p>     <p><b>Martha Viviana Torres<sup>1</sup> y Luz Marina Lizarazo<sup>2</sup></b></p>     <p><sup><b>1</b></sup> Bi&oacute;loga, Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia (UPTC), Tunja.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  e-mail: <a href="mailtovitoce@starmedia.com">vitoce@starmedia.com</a></p>     <p><sup><b>2</b></sup> Profesora asociada, Facultad de Ciencias B&aacute;sicas, Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia (UPTC), Tunja.    <br>  e-mail: <a href="mailtolulizarazo@tunja.uptc.edu.co">lulizarazo@tunja.uptc.edu.co</a></p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1">     <p><b>Resumen: </b></p>     <p>La comunidad microbiana de los suelos   agr&iacute;colas es un componente con m&uacute;ltiples funciones   esenciales en la fertilidad del suelo. En este trabajo   se hace un estudio de las poblaciones de bacterias   implicadas en los ciclos biogeoqu&iacute;micos del C, N   y P, con el fin de evaluar su presencia en cultivos   de cebolla (Allium ampeloprasum) y papa (Solanum tuberosum),   as&iacute; como tambi&eacute;n, de determinar posibles   interacciones entre estos grupos, tanto en la rizosfera   como el suelo total. Adem&aacute;s, se realiz&oacute; la determinaci&oacute;n   de la actividad enzim&aacute;tica de la fosfatasa &aacute;cida. La evaluaci&oacute;n de los grupos funcionales se realiz&oacute; mediante recuento en placa y la actividad de la fosfatasa &aacute;cida, utilizando el m&eacute;todo de Tabatabai y Bremner (1969, 1977). Se encontr&oacute; un mayor n&uacute;mero de unidades formadoras de colonia (ufc) en el suelo correspondiente al cultivo de cebolla. Las bacterias solubilizadoras de P se encuentran en menor proporci&oacute;n que los grupos funcionales del ciclo del C y mantienen tama&ntilde;os poblacionales similares a las bacterias fijadoras de N, tanto en rizosfera como en suelo total en las dos muestras de suelo. Seg&uacute;n los resultados, la diferencia en la proporci&oacute;n de microorganismos entre rizosfera y el suelo circundante puede variar por las labores de adici&oacute;n de fertilizantes. Adicionalmente, se determin&oacute; que la actividad de la fosfatasa &aacute;cida pudo estar afectada por factores como el porcentaje de materia org&aacute;nica, la biomasa bacteriana y la disponibilidad de P.</p>     <p>   <b>Palabras claves adicionales:</b> fosfatasa &aacute;cida,   celul&iacute;ticas, amilol&iacute;ticas, proteol&iacute;ticas, bacterias libres   fijadoras de nitr&oacute;geno, solubilizadoras de f&oacute;sforo </p>       <p>&nbsp;</p> <hr size="1">     <p><b>Abstract:</b></p>     <p>Microbial community of agricultural soils   is a component with multiple functions that are essential   for soil fertility. This research was undertaken   in order to study bacteria populations participating   in the biogeochemical cycles of C, N, and P, with the   purpose of evaluating their presence in the cultivation   systems and determining possible interactions among   these groups in the rhizosphere and total soil. In a   similar way, determination of the enzymatic activity   of the acid phosphatase was done. The evaluation of   the functional groups was carried out by recount in   plate and estimation of the acid phosphatase activity   using the method of Tabatabai and Bremner (1969,   1977). The phosphate solubilizing bacteria were present   in smaller proportion than functional groups of   the cycle of C and, in two soils, maintained population   sizes similar to that of free-living nitrogen fixing   bacteria in rhizosphere and total soil. According to   the results obtained in these agricultural soils, the difference   in the proportion of microorganisms between   rhizosphere and surrounding soil can vary because of   the fertilizer additions. Also, it was determined that activity   of the acid phosphatase in these two soils could   be affected by such factors as percentage organic matter,   bacterial biomass, and phosphorus availability.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   <b>Additional keywords: </b>acid phosphatase, celulolitics,   amilolitics, proteolitics, free-living nitrogen fixing   bacteria, solubilizers of phosphorus</p>       <p>&nbsp;</p> <hr size="1">     <p><b><font face="verdana" size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>     <p>   EL SUELO ES UN RECURSO NATURAL sin est&aacute;ndares de calidad   definidos; por su variabilidad, es dif&iacute;cil establecer   alguna medida f&iacute;sica, qu&iacute;mica o biol&oacute;gica que pueda ser   considerada lo suficientemente adecuada para reflejar   la calidad, pues es necesario considerar todos los factores   que pueden condicionar su funcionamiento, dificult&aacute;ndose   as&iacute; la regulaci&oacute;n de la calidad de este recurso.   Es necesario entonces medir aquellas propiedades del   suelo que sean especialmente sensibles a los cambios generados   por las pr&aacute;cticas de manejo y cuyos valores reflejar&iacute;an la calidad del recurso (Bandick y Dick, 1999).</p>     <p>   Seg&uacute;n las diferencias en la exudaci&oacute;n de las ra&iacute;ces y   de la rizodeposici&oacute;n en diferentes zonas de la ra&iacute;z, las   comunidades microbianas de la rizosfera pueden variar   en su estructura o en relaci&oacute;n al tipo de suelo, especies   de plantas, estado nutricional, edad, estr&eacute;s, enfermedad y otros factores ambientales (Osorio y P&eacute;rez, 2001).</p>     <p>   Las propiedades biol&oacute;gicas del suelo, como la biomasa,   la actividad de microorganismos y la actividad enzim&aacute;tica,   entre otras, podr&iacute;an constituir una herramienta   valiosa para establecer la calidad biol&oacute;gica de un suelo,   siendo estas propiedades dependientes de la din&aacute;mica   de la materia org&aacute;nica, las pr&aacute;cticas de manejo y los cambios ambientales (Bandick y Dick, 1999).</p>     <p>   En este sentido se pueden utilizar grupos funcionales   de organismos como bioindicadores para evaluar disturbios   en el suelo o la fertilidad a nivel biol&oacute;gico (Andrade,   2004b). Los grupos funcionales considerados en   este estudio son aqu&eacute;llos que participan directa o indirectamente   en los ciclos de los nutrientes y en la recirculaci&oacute;n   de la materia org&aacute;nica, teniendo en cuenta que &eacute;stos interaccionan entre s&iacute;, con las plantas y los dem&aacute;s factores f&iacute;sicos y qu&iacute;micos del suelo.</p>     <p>   La actividad enzim&aacute;tica en los suelos cultivados tambi&eacute;n   est&aacute; relacionada con las pr&aacute;cticas de cultivo y   puede asociarse de una manera directa con la disponibilidad   de los nutrientes del suelo, debido a que &eacute;stas   juegan un papel importante en cada uno de los ciclos   biogeoqu&iacute;micos de elementos requeridos para el crecimiento de las plantas.</p>     <p>   Las fosfatasas detectadas en el suelo constituyen un   grupo de enzimas de gran importancia en la din&aacute;mica   de uno de los nutrientes m&aacute;s importantes para las plantas,   como lo es el f&oacute;sforo (P), pues participan en la mineralizaci&oacute;n   del P org&aacute;nico, constatando su importancia si   se tiene en cuenta que cerca de 90% del P del suelo esta presente en forma org&aacute;nica (Portilla et al., 1998).</p>     <p>   Ahora bien, la disponibilidad de este elemento para las   plantas tambi&eacute;n se puede relacionar con otra variable biol&oacute;gica   importante como es la poblaci&oacute;n de microorganismos   solubilizadores del P, pues mediante la liberaci&oacute;n de   enzimas y &aacute;cidos org&aacute;nicos liberan formas de este elemento asimilables para las plantas (Osorio y P&eacute;rez, 2001).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   El objetivo de este estudio fue medir algunas variables   biol&oacute;gicas del suelo, como la actividad de la enzima fosfomonoesterasa &aacute;cida, la poblaci&oacute;n de bacterias solubilizadores del P y otros grupos funcionales del suelo, tales como amilol&iacute;ticos, proteol&iacute;ticos, celulol&iacute;ticos y fijadores libres de N, en dos suelos cultivados con cebolla y papa (rizosfera y suelo total); con el fin de establecer las diferencias que se puedan presentar en estas variables en dos suelos agr&iacute;colas.</p>     <p> <b><font face="verdana" size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>     <p>   El estudio se hizo en condiciones de campo y laboratorio.   El trabajo de campo se llev&oacute; a cabo en un cultivo   de cebolla junca (Allium ampeloprasum) y otro de papa   (Solanum tuberosum), con una extensi&oacute;n aproximada de   2 ha cada uno. En cada cultivo se tomaron 24 muestras,   utilizando transectos en zig-zag, con una distancia   de puntos de muestreo de 1,5 m, seg&uacute;n metodolog&iacute;a de   Cr&eacute;ptin y Johnson (2000). Las muestras, de aproximadamente   1 kg, fueron tomadas tanto en rizosfera (12   muestras) como en suelo total (12 muestras), se llevaron   al laboratorio y se preservaron a 4 &ordm;C hasta su an&aacute;lisis, que no fue posterior a 48 h.</p>     <p>   Las &aacute;reas muestreadas est&aacute;n ubicadas en los municipios   de Sogamoso y Aquitania (Boyac&aacute;), pertenecen a la   provincia de Sugamuxi y son zonas que presentan una   alta actividad agr&iacute;cola. Sogamoso est&aacute; localizado a una   altitud de 2.400 msnm, con temperatura promedio de 17 &ordm;C, humedad relativa promedio de 71% y precipitaci&oacute;n promedio anual de 831 mm y Aquitania, a orillas del lago de Tota, a 3.046 msnm y con temperatura promedio de 12 &ordm;C, humedad relativa promedio multianual de 82% y precipitaci&oacute;n anual promedio de 910 mm.</p>     <p>   El an&aacute;lisis fisicoqu&iacute;mico de los suelos se realiz&oacute; en el   laboratorio de suelos de la Escuela de Agronom&iacute;a de la   UPTC, sede Tunja, utilizando para: textura, el m&eacute;todo   de Bouyoucos; pH, la relaci&oacute;n 1:1 suelo:agua; acidez intercambiable, con KCL 1N; porcentaje de materia org&aacute;nica   (MO), seg&uacute;n Walkley-Black; conductividad el&eacute;ctrica   (CE), por extracto de saturaci&oacute;n y conductiv&iacute;metro;   f&oacute;sforo disponible, por el m&eacute;todo de Bray II por colorimetr&iacute;a;   Ca, Mg, K y Na, por extracci&oacute;n con NH4 Ac   y absorci&oacute;n at&oacute;mica; Fe, Mn, Cu y Zn, por extracci&oacute;n   con DTPPA (siglas en ingl&eacute;s de &aacute;cido dietilen triamin pentametilenfosf&oacute;nico)   y absorci&oacute;n at&oacute;mica; B, con agua caliente y S, con fosfato monoc&aacute;lcico (<a href="#t1">tabla 1</a>).</p>     <p>    <center><a name="t1"><img src="img/revistas/agc/v24n2/v24n2a15t1.gif"></a></center></p>     <p>   <b>Determinaci&oacute;n de la actividad de la fosfatasa &aacute;cida</b></p>     <p>   Se coloc&oacute; 1 g de suelo en tubo, con 3 r&eacute;plicas y 1 tubo   control por muestra; a cada muestra se le adicionaron 1   mL de sustrato (soluci&oacute;n de p-nitrofenil fosfato) y 4 mL   de la soluci&oacute;n tamp&oacute;n modificada a pH 6,5. Esta mezcla   se incub&oacute; a 37 &ordm;C por 1 h. Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n,   a todos los tubos se les adicionaron 1 mL de CaCl<sub>2</sub> 0,5   M y 4 mL de NaOH 0,5 M. Se sirvi&oacute; 1 mL de sustrato a   los controles, posteriormente se filtr&oacute; la suspensi&oacute;n y se   midi&oacute; la absorbancia a 400 nm. En forma simult&aacute;nea,   se prepararon blancos a los que se les a&ntilde;adi&oacute; el sustrato   despu&eacute;s de la adici&oacute;n de CaCl<sub>2</sub> 0,5 M y NaOH 0,5 M.</p>     <p>  Se prepar&oacute; una soluci&oacute;n de trabajo de 20 &micro;g&middot; mL<sup>-1</sup> de   p-nitrofenol fosfato y con ella se hizo una curva de calibraci&oacute;n;   se obtuvieron patrones de 0, 20, 40, 60, 80 y 100 &micro;g de   p-nitrofenol, de acuerdo con el m&eacute;todo Tabatabai y Bremner   (1969), modificado por Tabatabai y Eivazi (1977).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   <b>Recuento de grupos funcionales de   microorganismos</b></p>     <p>   Se cuantificaron los grupos funcionales de microorganismos   relacionados con: el ciclo del P, las bacterias solubilizadoras   de P (SP); el del C, las bacterias celulol&iacute;ticas   (CL), amilol&iacute;ticas (AM) y proteol&iacute;ticas (PR) y el del N, las   bacterias libres fijadoras de N (FN) que utilizan la glucosa   como fuente de C.</p>     <p>   Para el recuento en placa se us&oacute; el medio de Silvestre-   Bradley et al. (1982) modificado con fosfato tric&aacute;lcico   a pH de 6,5-7,0 para las bacterias SP; medio de Wood   (1980) para las CL; medio de Pontecorvo et al. (1953)   para las AM; medio de Wood (1980) para las PR y medio   de Burk Wilson y Knight (1952) para las bacterias libres   FN que utilizan la glucosa como fuente de C.</p>     <p>   Las placas se incubaron a 28 &ordm;C y las unidades formadoras   de colonia (ufc) se contabilizaron luego de 3-5   d. Las ufc se expresaron por gramo de suelo seco. Las   colonias consideradas positivas para actividad de solubilizaci&oacute;n   de P, CL, AM, PR fueron aqu&eacute;llas que presentaron   un halo de degradaci&oacute;n. En el caso de las bacterias   libres FN se consideraron positivas todas las colonias que   crecieron en el medio de cultivo.</p>     <p>   <b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p>     <p>   Con los datos de ufc determinados por recuento en   placa de las muestras de rizosfera y suelo total, se   realiz&oacute; un an&aacute;lisis comparativo de las medias poblacionales   para cada grupo funcional mediante prueba   t-student para determinar si existen diferencias significativas   en el tama&ntilde;o de las poblaciones microbianas.   Adicionalmente, se realizaron pruebas de correlaci&oacute;n   entre bacterias SP y los dem&aacute;s grupos funcionales para   establecer interacciones.</p>     <p>   En cuanto a la actividad de la fosfatasa &aacute;cida, se realiz&oacute;   una comparaci&oacute;n de la actividad enzim&aacute;tica en   la rizosfera y el suelo total en cada uno de los suelos   estudiados y un an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n con los datos   de ufc de las bacterias solubilizadoras de P. Todos los   an&aacute;lisis se realizaron con la ayuda del programa estad&iacute;stico   Stat Graphics versi&oacute;n 4.0.</p>     <p>   <b><font face="verdana" size="3">Resultados y discusi&oacute;n</font></b></p>     <p>   <b>Actividad de la fosfatasa &aacute;cida</b></p>     <p>   En las muestras de suelo correspondientes al cultivo de   cebolla junca se observ&oacute; una mayor actividad enzim&aacute;tica.   Los valores de la enzima en estas muestras variaron   entre 27,2 y 36,1 &micro;g de p-nitrofenol por gramo de suelo para el total de las muestras, mientras que en las muestras   del suelo con cultivo de papa se obtuvieron valores   entre 8,7 y 20,6 &micro;g de p-nitrofenol por gramo de suelo.   En ninguno de los casos se present&oacute; una diferencia significativa   de la actividad de la fosfatasa &aacute;cida entre las   muestras de rizosfera y de suelo total (<a href="#f1">figura 1</a>).</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="f1"><img src="img/revistas/agc/v24n2/v24n2a15f1.gif"></a></center></p>       <p>Como los procesos de mineralizaci&oacute;n y solubilizaci&oacute;n   determinan en gran medida la disponibilidad de P en el   suelo, se aplic&oacute; una prueba de correlaci&oacute;n lineal para establecer   si la actividad de la fosfatasa &aacute;cida (Fa) est&aacute; relacionada   con la poblaci&oacute;n de bacterias solubilizadoras de f&oacute;sforo   (SP), tanto en rizosfera como en suelo total. Los coeficientes   de correlaci&oacute;n encontrados entre SP y fosfatasa &aacute;cida (Fa)   no fueron estad&iacute;sticamente significativos y algunos de ellos   mostraron valores demasiado bajos para indicar una relaci&oacute;n   estrecha entre la actividad de la fosfatasa y la poblaci&oacute;n de solubilizadoras de P en el suelo (<a href="#t2">tabla 2</a>).</p>     <p>    <center><a name="t2"><img src="img/revistas/agc/v24n2/v24n2a15t2.gif"></a></center></p>     <p>La actividad de la fosfatasa &aacute;cida puede ser afectada   por varios factores ed&aacute;ficos. Falih y Warinwright (1996),   Martin (1984) y Weiss y Trespendorfer (1993), citados   por Hysek y Sarapatka (1998), encontraron que la actividad   de esta enzima es afectada por la adici&oacute;n de fuentes   de C al suelo, la presencia de cobertura vegetal y la macrofauna del suelo.</p>     <p>   Algunos de estos factores se evaluaron en este trabajo. Se   determin&oacute; el porcentaje de materia org&aacute;nica en los suelos   estudiados y se evalu&oacute; la actividad de la enzima en la rizosfera   de cada cultivo. El suelo correspondiente al cultivo de   cebolla present&oacute; un mayor porcentaje de materia org&aacute;nica   (5,54%) (tabla 1) y una mayor actividad de la enzima; este   resultado tambi&eacute;n coincide con un mayor n&uacute;mero de ufc   por gramo de suelo en esta muestra, tanto para rizosfera   como para suelo total (18,67&middot; 103 ufc&middot; g-1 de suelo). De   acuerdo con esto, es probable que una mayor actividad   de la fosfatasa &aacute;cida en el cultivo de cebolla est&eacute; asociada   a un mayor contenido de materia org&aacute;nica y a una mayor   cantidad de bacterias.</p>     <p>   Existe otro factor que puede incrementar la actividad de   las fosfatasas, seg&uacute;n Cruz (1994) y Hadley (1994), citados   por Portilla et al. (1998): la actividad de la fosfatasa &aacute;cida es   m&aacute;s alta en la superficie de la ra&iacute;z de la planta cuando existe   deficiencia de P y, en el caso de los suelos estudiados, el suelo   del cultivo de cebolla present&oacute; una deficiencia de P disponible   (4,61 ppm), coincidiendo tambi&eacute;n con una actividad alta   de la enzima. En contraste, el suelo del cultivo de papa corrobora   el efecto de los factores mencionados sobre la actividad   de la enzima. En este suelo, como se mencion&oacute; arriba   y como se puede observar en la tabla 1, se registr&oacute; una actividad   menor de la enzima, coincidiendo con un porcentaje   menor de materia org&aacute;nica (2,22%), una cantidad menor   de ufc en la totalidad de las muestras (10,92 &middot; 103 ufc&middot; g-1 de   suelo) y un valor m&aacute;s alto de P disponible (48,7 ppm).</p>     <p>   Al no encontrarse un coeficiente de correlaci&oacute;n lo suficientemente   considerable y estad&iacute;sticamente significativo   entre la actividad de la fosfatasa &aacute;cida y las bacterias solubilizadoras   de P, se puede deducir que, aunque estos dos   procesos determinen en gran medida la disponibilidad   de fosfatos en el suelo, uno no est&aacute; determinado por el   otro, es decir, que se pueden considerar de forma independiente   en este estudio.</p>     <p>   <b>Actividad microbiana</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Microorganismos solubilizadores de P (SP)</p>     <p>   Para el suelo del cultivo de cebolla junca, se encontraron   entre 0,5 y 22&middot; 10<sup>3</sup> ufc&middot; g<sup>-1</sup> de suelo, en la totalidad de las muestras. En las muestras de rizosfera se hallaron   entre 0,5 y 9,5&middot; 10<sup>3</sup> ufc&middot; g<sup>-1</sup>, mientras que en las muestras   de suelo total los valores fluctuaron entre 4 y 22&middot;   10<sup>3</sup> ufc&middot; g<sup>-1</sup> de suelo (<a href="#f2">figura 2</a>).</p>       <p>    <center><a name="f2"><img src="img/revistas/agc/v24n2/v24n2a15f2.gif"></a></center></p>     <p>En cuanto al suelo del cultivo de papa, se registraron   valores en la totalidad de la muestras entre 0,95 y 20,5&middot;   10<sup>3</sup> ufc&middot; g<sup>-1</sup> de suelo. En las muestras de rizosfera se encontraron   entre 3 y 20,5&middot; 10<sup>3</sup> ufc&middot; g<sup>-1</sup> de suelo, mientras   que en las muestras de suelo total se encontraron valores   entre 0,95 y 1,47&middot; 10<sup>3</sup>ufc&middot; g<sup>-1</sup> de suelo (<a href="#f3">figura 3</a>).   Para los datos de este suelo se encontraron diferencias   significativas en el n&uacute;mero de ufc entre las muestras de rizosfera y de suelo total.</p>     <p>    <center><a name="f3"><img src="img/revistas/agc/v24n2/v24n2a15f3.gif"></a></center></p>     <p>Los valores de ufc por gramo de suelo son superiores   a los registrados por Adame (1996), citado por Linares   (1999), quien indica que las bacterias solubilizadoras   de f&oacute;sforo (SP) existen efectivamente como parte de la   microflora nativa de los suelos y sus niveles poblacionales   fluct&uacute;an entre 1,7 y 1,58&middot; 103 ufc&middot; g<sup>-1   </sup> de suelo y de ra&iacute;z.</p>     <p>   El suelo como h&aacute;bitat presenta muchas variables   que pueden influenciar las poblaciones microbianas,   de modo que &eacute;stas pueden presentar diferencias en   sus niveles poblacionales entre un suelo y otro e incluso   entre muestras de un mismo terreno. Sin embargo,   estudios realizados en diferentes suelos por Carniero   et al. (2004) y Barroti y Nahas (2000) indicaron que los   suelos agr&iacute;colas pueden presentar valores de ufc m&aacute;s   altos para SP que los suelos forestales y que uno de los   factores que m&aacute;s influye sobre este par&aacute;metro es el   pH del suelo modificado por la adici&oacute;n de fertilizantes   en los suelos agr&iacute;colas; esta aplicaci&oacute;n constante   de qu&iacute;micos en los suelos agr&iacute;colas no s&oacute;lo produce   un aumento en el pH sino tambi&eacute;n un aumento en   la disponibilidad de nutrientes, lo que puede favorecer   el crecimiento poblacional de las SP y otros grupos   bacterianos. Los valores en el pH de los suelos   muestreados no presentan diferencias significativas:   6,2 para suelo de cultivo de cebolla y 6,6 para suelo   de cultivo de papa; pero es importante resaltar que en   ambos casos tiende a la neutralidad, siendo &eacute;ste un   pH &oacute;ptimo para el crecimiento bacteriano y pueden   presentarse en este caso valores m&aacute;s altos de ufc de los   microorganismos SP.</p>     <p>   La disponibilidad del P es controlada por la mineralizaci&oacute;n   e inmovilizaci&oacute;n de la fracci&oacute;n org&aacute;nica y la   solubilizaci&oacute;n y la precipitaci&oacute;n de fosfatos en forma   inorg&aacute;nica (Silva, 1999). Por consiguiente, una mayor   presencia de bacterias SP en estos suelos puede ser favorable   para el desarrollo de las plantas, pues garantizar&iacute;a   una mayor disponibilidad de fosfatos asimilables.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Sin embargo, parad&oacute;jicamente la disponibilidad de P   en el cultivo de cebolla es muy baja, seg&uacute;n los datos   obtenidos mediante el an&aacute;lisis fisicoqu&iacute;mico del suelo   (tabla 1). Al parecer, aunque no existe reducci&oacute;n en la   poblaci&oacute;n de SP, la disponibilidad de estos microorganismos   no es tan buena como se esperar&iacute;a; probablemente   existen otros factores que pueden estar afectando la actividad   de estas bacterias y, por lo tanto, la disponibilidad   del P en esos suelos, tal como el grado de eficiencia   en la capacidad solubilizadora de la cepas.</p>     <p>Microorganismos del ciclo del C (celulol&iacute;ticos, proteol&iacute;ticos, amilol&iacute;ticos) y bacterias libres fijadoras de N</p>     <p>   En la rizosfera del cultivo de cebolla junca, los grupos   funcionales del ciclo del C presentaron un mayor n&uacute;mero   de ufc que las bacterias SP y las FN. La poblaci&oacute;n   de amilol&iacute;ticos (AM) vari&oacute; entre 20,5 y 83,5 &middot; 10<sup>3</sup> ufc&middot; g<sup>-1</sup>   de suelo, los proteol&iacute;ticos (PR) entre 4,5 y 15,5&middot; 10<sup>3</sup>   ufc&middot; g<sup>-1</sup> de suelo y los celulol&iacute;ticos (CL) entre 11,5 y 46&middot;   10<sup>3</sup> ufc&middot; g<sup>-1</sup> de suelo (<a href="#f4">figura 4</a>). En las muestras de suelo   total, las bacterias de los grupos funcionales del ciclo del   C siguieron presentando valores de ufc m&aacute;s altos que   las FN y las SP. En las muestras de la rizosfera de papa,   el grupo de bacterias con mayor n&uacute;mero de ufc fueron   las AM, seguidas de las poblaciones PR y de las bacterias   FN (<a href="#f5">figura 5</a>). Para las muestras de suelo, la abundancia   bacteriana fue m&aacute;s alta para el grupo de AM, seguidas   de las PR y las FN.</p>       <p>    <center><a name="f4"><img src="img/revistas/agc/v24n2/v24n2a15f4.gif"></a></center></p>       <p>    <center><a name="f5"><img src="img/revistas/agc/v24n2/v24n2a15f5.gif"></a></center></p>     <p>Con el fin de determinar la existencia de diferencias   significativas en el n&uacute;mero de ufc entre las muestras de   rizosfera y suelo total para cada grupo funcional, incluyendo   las bacterias SP, se realiz&oacute; una prueba t-student   para comparaci&oacute;n de medias. Tal como se observa en la   <a href="#t3">tabla 3</a>, esta prueba determin&oacute; que s&oacute;lo para las bacterias   PR en muestra de cultivo de cebolla, las bacterias SP   en cultivo de papa y las FN en cultivo de papa existen diferencias   estad&iacute;sticamente significativas entre muestras de rizosfera y suelo total.</p>     <p>    <center><a name="t3"><img src="img/revistas/agc/v24n2/v24n2a15t3.gif"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Mediante an&aacute;lisis de varianza se determinaron diferencias   estad&iacute;sticamente significativas en el n&uacute;mero de ufc por gramo de suelo entre cultivo de papa y cebolla.   Para establecer en cu&aacute;l de estos cultivos se presentaba   un mayor n&uacute;mero de ufc, se realiz&oacute; una prueba de rango   m&uacute;ltiple, que determin&oacute; que el suelo de cultivo de   cebolla presenta un mayor n&uacute;mero de ufc por gramo   de suelo, con un promedio de 18.675&middot; 103 ufc&middot; g-1 de   suelo.</p>     <p>   El conteo de grupos funcionales del ciclo del C (AM,   PR y CL), junto con bacterias FN de vida libre, permiti&oacute;   observar un mayor n&uacute;mero de ufc de los grupos del C,alcanzando valores de hasta 83,5&middot; 103 ufc&middot; g-1 de suelo   para el grupo de AM, que se constituye en el grupo   con mayor numero de ufc en los dos suelos, tanto en las   muestras de rizosfera como en las de suelo total (figuras   4 y 5).</p>     <p>   Los valores de ufc para SP en relaci&oacute;n con los dem&aacute;s grupos   funcionales permiten observar que la poblaci&oacute;n de SP   es m&aacute;s reducida que los dem&aacute;s grupos de bacterias en las   dos muestras de suelo y mantiene tama&ntilde;os poblacionales   casi similares a los del grupo de FN, tal vez porque este grupo   presenta una correlaci&oacute;n positiva en los dos suelos, tanto   en rizosfera como en suelo total (<a href="#t4">tabla 4</a>).</p>       <p>    <center><a name="t4"><img src="img/revistas/agc/v24n2/v24n2a15t4.gif"></a></center></p>     <p>Con base en estos resultados se puede establecer cierto   grado de dominancia de los grupos funcionales correspondientes   al ciclo del C sobre los dem&aacute;s grupos   bacterianos cuantificados. Esta predominancia puede   estar quiz&aacute;s relacionada con la oferta de nutrientes proporcionadas   por el porcentaje de materia org&aacute;nica disponible en el suelo.</p>     <p>   La mayor abundancia poblacional de los grupos funcionales   del ciclo del C en estos suelos puede influir en   que la descomposici&oacute;n de los materiales org&aacute;nicos del   suelo sea efectiva y que las mol&eacute;culas complejas sean   r&aacute;pidamente degradadas, de forma tal que sus componentes est&eacute;n disponibles para otros grupos bacterianos.</p>     <p>   Al realizar una comparaci&oacute;n de las poblaciones entre   las muestras de rizosfera y de suelo total, se encontr&oacute;   que no todos los grupos funcionales presentaron   diferencias significativas. Con un valor t = 2,074, 22 grados de libertad y un nivel de confianza de 95%, se   encontr&oacute; una diferencia significativa entre el n&uacute;mero   de ufc en rizosfera y suelo total para PR (t = -2,821,   P = 0,05) en el suelo de cultivo de cebolla, as&iacute; como   para SP (t = 5,519, P = 0,05) y FN (t = 0,298, P = 0,05)   en suelo de cultivo de papa (tabla 3). Las ra&iacute;ces de las   plantas tienen una influencia directa en la composici&oacute;n   y en la densidad de la microbiota del suelo; este efecto   se conoce como efecto rizosf&eacute;rico y puede verse como   la relaci&oacute;n del n&uacute;mero de organismos en el suelo de la   rizosfera (R) sobre el n&uacute;mero de microorganismos en el   suelo alejado de las ra&iacute;ces (S). Generalmente la relaci&oacute;n   R/S est&aacute; entre 5 y 20 y hasta 100, es decir, las poblaciones   microbianas son hasta 100 veces mayores en la   rizosfera (Gray y Parkinson; Woldendorp, 1978 citado   en Atlas y Bartha, 2002). Sin embargo, es posible   que estas proporciones puedan cambiar, pues en este   trabajo las diferencias entre R y S para SP y los dem&aacute;s   grupos funcionales resultaron en su mayor&iacute;a ser poco   significativas (tabla 3). El hecho de que los suelos cultivados   est&eacute;n sometidos a las labores de labranza podr&iacute;a   determinar una variabilidad en sus propiedades f&iacute;sicas,   qu&iacute;micas y en la disponibilidad de nutrientes, que ya   no estar&iacute;an limitados a la zona de la rizosfera de las   plantas. Estas caracter&iacute;sticas de variabilidad podr&iacute;an   cambiar a su vez la proporcionalidad establecida en los microh&aacute;bitat del suelo (Carniero et al., 2004).</p>     <p>   Los coeficientes de correlaci&oacute;n encontrados entre SP y   los dem&aacute;s grupos funcionales no resultaron estad&iacute;sticamente significativos.</p>     <p>   Para las muestras de cultivo de cebolla se encontraron   los siguientes tipos de correlaciones: correlaci&oacute;n negativa   entre SP y AM en muestras de rizosfera y suelo total;   correlaci&oacute;n positiva entre SP y PR en muestras de rizosfera   y suelo total; correlaci&oacute;n positiva entre SP y CL en muestras de rizosfera y suelo total (tabla 4).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   En muestras de cultivo de papa se encontr&oacute;: correlaci&oacute;n   positiva entre SP y AM en muestras de rizosfera y   suelo total; correlaci&oacute;n positiva entre SP y PR en muestras   de rizosfera y negativa en muestras de suelo total;   con el grupo de CL no se estableci&oacute; ninguna relaci&oacute;n   en este suelo por ausencia de datos para este grupo bacteriano (tabla 4).</p>     <p>   En los dos suelos, tanto en las muestras de rizosfera   como de suelo total, se hall&oacute; una relaci&oacute;n positiva entre   SP y FN. Dentro de los valores del coeficiente de relaci&oacute;n   m&aacute;s altos estuvieron: los hallados entre SP y CL en la muestra de cultivo de cebolla, tanto en rizosfera como   en suelo total (r = +0,4285, p = 1,16; r = +0,378, p =   0,22); entre SP y PR en las muestras de suelo total del   cultivo de papa (r = -0,618, p = 0,31) y SP con FN en rizosfera (r = -0,8618, p = 0,78).</p>     <p>   El crecimiento vegetal est&aacute; directamente relacionado   con las comunidades de grupos funcionales, porque diversas   etapas de los ciclos de los nutrientes son mediadas   exclusivamente por microorganismos, y algunos de &eacute;stos pueden participar en uno o m&aacute;s ciclos biogeoqu&iacute;micos (Matsumoto et al., 2004). Seg&uacute;n esto, el recuento de bacterias y las relaciones encontradas entre SP y los dem&aacute;s grupos funcionales en estos suelos podr&iacute;an indicar el uso de bacterias SP como alternativa para suplir la deficiencia de P en los suelos agr&iacute;colas. Las relaciones negativas encontradas, aunque no son estad&iacute;sticamente significativas, muestran una posible relaci&oacute;n de competencia entre estos grupos bacterianos (tabla 4).</p>     <p>   Algunas de las relaciones encontradas en el presente   trabajo tambi&eacute;n fueron registradas en otros trabajos. Es   el caso de la correlaci&oacute;n positiva existente en SP y FN en   la rizosfera de especies vegetales forestales y encontrada   por Matsumoto et al. (2004), que ha sido relacionada directamente con el crecimiento de las plantas.</p>     <p>   Las correlaciones encontradas entre SP y los grupos   funcionales del ciclo del C son en su mayor&iacute;a positivas,   lo que puede estar relacionado con la funci&oacute;n de   degradaci&oacute;n de la materia org&aacute;nica por parte de las   bacterias PR, AM y CL, permitiendo as&iacute; la disponibilidad   de mol&eacute;culas m&aacute;s sencillas para ser utilizadas por   otros grupos bacterianos, como SP y FN. Sin embargo,   cuando alg&uacute;n grupo de bacterias alcanza tama&ntilde;os   poblacionales muy por encima de los dem&aacute;s, pueden   entrar en juego factores biol&oacute;gicos de car&aacute;cter interespec&iacute;fico,   como competencia por sustratos, espacios y   microh&aacute;bitat, que pueden afectar el crecimiento de los dem&aacute;s grupos funcionales.</p>     <p> <b><font face="verdana" size="3">Conclusiones</font></b></p>     <p>   Se encontr&oacute; un mayor n&uacute;mero de ufc en el suelo correspondiente   al cultivo de cebolla, posiblemente asociado   a un aumento en el pH y la disponibilidad de   nutrientes del suelo por aplicaci&oacute;n de fertilizantes. Las   bacterias SP no se encontraron en menor proporci&oacute;n   que los grupos funcionales del ciclo del C y mantuvieron   tama&ntilde;os poblacionales similares a las bacterias   FN, tanto en riz&oacute;sfera como en suelo total en los suelos   de ambos cultivos. Seg&uacute;n los resultados obtenidos, en   estos suelos agr&iacute;colas la diferencia en la proporci&oacute;n de   microorganismos entre rizosfera y el suelo circundante   podr&iacute;a variar por la disponibilidad de nutrientes determinada por la adici&oacute;n de fertilizantes.</p>     <p>   Se determin&oacute; que la actividad enzim&aacute;tica en estos dos   suelos podr&iacute;a estar afectada por factores como el porcentaje   de materia org&aacute;nica, la biomasa bacteriana y la disponibilidad de P.</p>     <p>   En ninguno de los suelos muestreados se hall&oacute; una   relaci&oacute;n significativa entre la actividad de la fosfatasa &aacute;cida y la poblaci&oacute;n de bacterias SP.</p>     <p>   <b><font face="verdana" size="3">Literatura citada</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Andrade, G. 2004a. Role of functional groups of microorganisms   on the rhizosphere microcosm dynamics. pp. 51-69. En: Varma,   A., L. Abbott, D. Werner y R. Hampp. Plant surface microbiology.   Springer-Verlag, Berlin.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-9965200600020001500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Andrade, G. 2004b. The functional groups of microorganism used   as bio-indicator on soil disturbance caused by biotech products   such as Bacillus thuringiensis and Bt transgenic plants. pp. 121-   132. En: Varma, A., L. Abbott, D. Werner y R. Hampp (eds.).   Plant surface microbiology. Springer-Verlag, Berlin.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-9965200600020001500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Atlas, R. y R. Bartha. 2002. Ecolog&iacute;a microbiana y microbiolog&iacute;a   ambiental. 4a edici&oacute;n. Pearson Educaci&oacute;n S.A., Madrid.   500 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-9965200600020001500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Bandinck, A.K. y R.P. Dick. 1999. Field management effects on soil   enzyme activities. Soil Biol. Biochem. 31(11), 1471-1479.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-9965200600020001500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Barroti, G. y E. Nahas. 2000. Popula&ccedil;ao microbiana total e solubilizadora   de fosfato em solo submetido a diferentes sistemas   de cultivo. Pesquisa Agropecuaria Brasileira 35(10),   1830-1838.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-9965200600020001500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Carniero, R., L. Mendes, P. Lovato, A. Carvalho y L. Vivaldi. 2004.   Indicadores biol&oacute;gicos asociados ao ciclo de f&oacute;sforo em solos   de cerrado sob plantio direto e plantio convencional. Pesquisa   Agropecuaria Brasilera 39(7), 661-669.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-9965200600020001500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Contreras, F., C. Rivero y J. Paolini. 1996. Efecto del uso de residuos   org&aacute;nicos y dos tipos de labranza sobre la actividad de la   fosfatasa &aacute;cida en un Alfisol. Revista Facultad de Agronom&iacute;a   (Maracay) 22,139-149.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-9965200600020001500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Cr&eacute;ptin, J. y R. Johnson. 2000. Soil sampling for environmental   assessment. Soil sampling and methods of analysis. Canadian   Society of Soil Science.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-9965200600020001500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Feijo, A. y H. Quintero. 2001. Relaci&oacute;n del uso de la tierra en agro   ecosistemas del neotr&oacute;pico con la diversidad del suelo. X Congreso   de la Sociedad Colombiana de la Ciencia del Suelo, Medell&iacute;n   (Colombia).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-9965200600020001500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Hysek, J. y B. Sarapatka. 1998. Ralationship between phosphatase   active bacteria and phosphatase activities in forest soils. Biol.   Fertil. Soil 26,112-115.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-9965200600020001500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Linares, N. 1999. Efecto de las bacterias solubilizadoras de f&oacute;sforo   en la producci&oacute;n del cultivo de arroz. Trabajo de grado. Facultad   de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;.   70 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-9965200600020001500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Madigan, M., J. Martinko y J. Parker. 2004. Brock biolog&iacute;a de los microorganismos.   4a edici&oacute;n. Prentice Hall Iberia, Madrid. 600 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-9965200600020001500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Matsumoto, L., A. Martines, M. Avanzi, U. Albino, C. Brasil, D. Saridakis,   L. Rampazo, W. Zangaro y G. Andrade. 2004. Interactions   among functional groups in the cycles of carbon, nitrogen   and phophorous in the rizosfhere of three succesional species of tropical woody trees. J. Appl. Soil Ecol. 10 (1016),1-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-9965200600020001500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Oberson, M., J.M. Besson, N. Maire y H. Sticher. 1996. Microbiological   processes in soil organic phosphorus transformations in   conventional and biological cropping systems. Biol. Fertil. Soil   21, 138-148.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-9965200600020001500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Osorio, N.W. y J.C. P&eacute;rez. 2001. Microbial solubilization of phosphates   in soil. A review. X Congreso de la Sociedad Colombiana   de la Ciencia del Suelo, Medell&iacute;n (Colombia).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-9965200600020001500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Pontecorvo, G., J.A. Roper, L.M. Hemons, K.D. MacDonalds y   A.W.J. Buffon. 1953. The genetics of Aspergillus nidulans. Adv.   Gen. 5, 141-238.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-9965200600020001500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Porras, C. 1994. Metabolismo de los nutrientes en las plantas. pp. 35-   42. En: Porras, C. y R. Silva-Lora. Fertilidad de suelos. Diagn&oacute;stico   y control. 2a edici&oacute;n. Editorial Guadalupe Ltda., Bogot&aacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-9965200600020001500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Portilla, C., E. Molina, G. Cruz-Flores, I. Ortiz y G. Manske. 1998.   Mycorrhizal arbuscular colonization, phosphatase activity and   root length as response to the phosphorus stress in wheat and   triticale cultivated in an andisol. Terra 16(1), 55-61.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-9965200600020001500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Silva-Lora, R. 1994. Factores que afectan la disponibilidad de nutrientes   para las plantas. p 20-28. En: Porras, C. y R. Silva-   Lora. Fertilidad de suelos. Diagn&oacute;stico y control. 2a edici&oacute;n.   Editorial Guadalupe Ltda., Bogot&aacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-9965200600020001500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Silva, J. 1999. The soil habitat. Principles and applications of soil   microbiology. Vol 2. Editorial Prince Hall, New Jersey. 400 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-9965200600020001500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Sylvester-Bradley, R., N. Akasawa, S. La Torranca, F. Magalh&atilde;es,   L.A Oliveira y R.M. Pereira. 1982. Levantamento quantitativo   de microrganismos solubilizadores de fosfatos na rizosfera de   gram&iacute;neas e leguminosas forrageiras na Amazonia. Acta Amazonica   12, 15-22&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-9965200600020001500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Tabatabai, M.A. y M.J. Bremner. 1969. Use of p-nitrophenylphosphate   for assay of soil phosphatase activity. Soil Biol.   Biochem. 1, 301-307.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-9965200600020001500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Tabatabai, M.A. y R. Eivazi. 1977. Phosphatases in soils. Soil Biol.   Biochem. 9,167-172.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-9965200600020001500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Vera, D., H. Prez y H. Valencia. 2002. Distribuci&oacute;n de hongos solubilizadores   de f&oacute;sforo de dos unidades fisiogr&aacute;ficas de Guaviare,   Colombia. Rev. Acta Biol&oacute;gica Colombiana 7(1), 23-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-9965200600020001500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Vera, D., H. P&eacute;rez y H. Valencia. 2002. Aislamiento de hongos solubilizadores   de fosfatos de la rizosfera de araz&aacute; (Eugenia stipitata,   Myrtaceae). Rev. Acta Biol&oacute;gica Colombiana 7(1), 33-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-9965200600020001500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Wood, P. 1980. Specify in the interactions of direct dyes with polysaccharides.   Carbohydrate Res. 85, 271-287&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-9965200600020001500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Wilson, P. y S.G. Knight. 1952. Experiments in bacterial physiology.   Burguess, USA.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-9965200600020001500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Wright, A. y K. Reddy. 2000. Phosphorous loading on extracellular   enzyme activity in everglades wetland soil. Appl. Environ. Microbiol.   67(4),1830-1838.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-9965200600020001500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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