<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0120-9965</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Agronomía Colombiana]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Agron. colomb.]]></abbrev-journal-title>
<issn>0120-9965</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Agronomía]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0120-99652007000200019</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Mecanismos de adaptación de maíz asociado a Glomus spp. en suelos con bajo fósforo disponible]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mechanisms of maize adaptation associated with Glomus spp. in soils with low phosphorus availability]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Roveda]]></surname>
<given-names><![CDATA[Gabriel]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Polo]]></surname>
<given-names><![CDATA[Cristina]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica) Centro de Investigación Tibaitatá ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Mosquera Cundinamarca]]></addr-line>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,Pontificia Universidad Javeriana  ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[ ]]></addr-line>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>07</month>
<year>2007</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>07</month>
<year>2007</year>
</pub-date>
<volume>25</volume>
<numero>2</numero>
<fpage>349</fpage>
<lpage>356</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0120-99652007000200019&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0120-99652007000200019&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0120-99652007000200019&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[La deficiencia de fósforo es uno de los mayores limitantes para la productividad agrícola en el trópico. Esta investigación está orientada a estudiar los mecanismos de adaptación de maíz asociado a Glomus spp. La investigación se realizó bajo condiciones controladas en los laboratorios del Corpoica. El diseño experimental utilizado fue bloques completos al azar, con seis tratamientos y seis repeticiones: tres tratamientos con 1, 40 y 100 mg·kg-1 de P en el suelo y los anteriores niveles de P más Glomus spp. Los resultados experimentales confirman una disminución en área foliar y materia seca relacionadas con bajo P en suelo, 20 días de la emergencia. Como mecanismos de adaptación a las deficiencias de P, las plántulas traslocan carbohidratos a la raíz en detrimento de las hojas, esto modifica el balance de la materia seca. Este mecanismo fue evidente a 10 días después del estrés. Plantas asociadas a Glomus presentaron mayores tasas de crecimiento, nutrición mineral (N, P, K, Ca, Mg, S) y concentración de azúcares en tejido, debido al papel P en la síntesis de carbohidratos. Plantas micorrizadas aumentaron los niveles de proteínas en tejido, con 1 y 40 mg·kg-1 de P en suelo. Los resultados sugieren que Glomus spp. contribuye con la síntesis de proteínas de estrés en planta, por déficit de P en el suelo. El estrés conduce a la expresión diferencial de la información genética, produciendo cambios en la síntesis de nuevas proteínas, llamadas micorrizinas, las cuales posiblemente dotan a las plantas con la capacidad de adaptación al estrés.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Phosphorus deficiency is a major limitation to agricultural productivity in tropical regions. This research was addressed to study the mechanisms of maize adaptation in relation to Glomus spp. The research was conducted under controlled conditions in the laboratories of Corpoica, Colombia. The experimental design consisted in completely randomized blocks with six treatments and six replicates: three treatments with different levels of available phosphorus in soil (1, 40 y 100 mg·kg-1) and the other three with the same P levels plus Glomus spp. The experimental results confirmed a reduction in leaf area and dry matter related to low P levels in soil at 20 days after seedling emergence. As an adaptation mechanism for P deficiency, the seedlings transferred the carbohydrates to the roots at the expense of leaves, thus, modifying the balance of dry matter. This mechanism was evident 10 days after the stress application. Plants associated with Glomus spp. had the highest growth rates, mineral nutrition (N, K. P, Ca, Mg, and S), and sugar concentration in tissue, due to the importance of P in the synthesis of carbohydrates. Plants associated with mycorrhizal fungus increased the protein levels in tissue when amended with 1 and 40 mg·kg-1 of P in soil. The results suggest that Glomus spp. contributed to the synthesis of stress proteins because of soil phosphorus deficiency. The stress allows the differential expression of genetic information in the synthesis of new proteins called mycorrhizines, which are probably involved in the adaptation mechanisms of plants to stress.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[suelos tropicales]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[deficiencia de fósforo]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[micorrizas]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[síntesis de proteínas]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[tropical soils]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[phosphorous deficiency]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[mycorrhizal fungus]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[protein synthesis]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="4">Mecanismos de adaptaci&oacute;n de ma&iacute;z asociado a <i>Glomus spp.</i>    en suelos con bajo f&oacute;sforo disponible </font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>    <center><font size="3">Mechanisms of maize adaptation associated with <i>Glomus spp.</i>  in soils with low phosphorus availability </font></center></b>     <p>&nbsp;</p>     <p>Gabriel Roveda<sup>1</sup> y Cristina Polo<sup>2</sup></p>     <p>1 Investigador, Corporaci&oacute;n Colombiana de Investigaci&oacute;n Agropecuaria (Corpoica), Centro de Investigaci&oacute;n Tibaitat&aacute;, v&iacute;a Mosquera (Cundinamarca).    <a href="mailto:groveda@corpoica.org.co">groveda@corpoica.org.co</a> / <a href="mailto:groveda@gmail.com">groveda@gmail.com</a>    <br>  2 Microbi&oacute;loga, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Fecha de recepci&oacute;n: mayo 22 de 2007. Aceptado para publicaci&oacute;n: octubre 1 de 2007</p> <hr size="1">     <p>RESUMEN</p>     <p>La deficiencia de f&oacute;sforo es uno de los mayores limitantes para    la productividad agr&iacute;cola en el tr&oacute;pico. Esta investigaci&oacute;n    est&aacute; orientada a estudiar los mecanismos de adaptaci&oacute;n de    ma&iacute;z asociado a <i>Glomus spp.</i> La investigaci&oacute;n se realiz&oacute; bajo    condiciones controladas en los laboratorios del Corpoica. El    dise&ntilde;o experimental utilizado fue bloques completos al azar,    con seis tratamientos y seis repeticiones: tres tratamientos con    1, 40 y 100 mg&middot;kg<sup>-1</sup> de P en el suelo y los anteriores niveles de    P m&aacute;s <i>Glomus spp.</i> Los resultados experimentales confirman    una disminuci&oacute;n en &aacute;rea foliar y materia seca relacionadas con    bajo P en suelo, 20 d&iacute;as de la emergencia. Como mecanismos    de adaptaci&oacute;n a las deficiencias de P, las pl&aacute;ntulas traslocan    carbohidratos a la ra&iacute;z en detrimento de las hojas, esto modifica    el balance de la materia seca. Este mecanismo fue evidente a    10 d&iacute;as despu&eacute;s del estr&eacute;s. Plantas asociadas a Glomus presentaron    mayores tasas de crecimiento, nutrici&oacute;n mineral (N, P,    K, Ca, Mg, S) y concentraci&oacute;n de az&uacute;cares en tejido, debido    al papel P en la s&iacute;ntesis de carbohidratos. Plantas micorrizadas    aumentaron los niveles de prote&iacute;nas en tejido, con 1 y 40    mg&middot;kg<sup>-1</sup> de P en suelo. Los resultados sugieren que <i>Glomus    spp.</i> contribuye con la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas de estr&eacute;s en planta,    por d&eacute;ficit de P en el suelo. El estr&eacute;s conduce a la expresi&oacute;n    diferencial de la informaci&oacute;n gen&eacute;tica, produciendo cambios    en la s&iacute;ntesis de nuevas prote&iacute;nas, llamadas micorrizinas, las    cuales posiblemente dotan a las plantas con la capacidad de  adaptaci&oacute;n al estr&eacute;s.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> suelos tropicales, deficiencia de f&oacute;sforo, micorrizas,  s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>Phosphorus deficiency is a major limitation to agricultural    productivity in tropical regions. This research was addressed    to study the mechanisms of maize adaptation in relation to  <i>  Glomus spp.</i> The research was conducted under controlled    conditions in the laboratories of Corpoica, Colombia. The    experimental design consisted in completely randomized    blocks with six treatments and six replicates: three treatments    with different levels of available phosphorus in soil (1, 40 y    100 mg&middot;kg<sup>-1</sup>) and the other three with the same P levels plus    Glomus spp. The experimental results confirmed a reduction    in leaf area and dry matter related to low P levels in soil at 20    days after seedling emergence. As an adaptation mechanism    for P deficiency, the seedlings transferred the carbohydrates to    the roots at the expense of leaves, thus, modifying the balance    of dry matter. This mechanism was evident 10 days after the    stress application. Plants associated with <i>Glomus spp.</i> had the    highest growth rates, mineral nutrition (N, K. P, Ca, Mg, and    S), and sugar concentration in tissue, due to the importance    of P in the synthesis of carbohydrates. Plants associated with    mycorrhizal fungus increased the protein levels in tissue when    amended with 1 and 40 mg&middot;kg<sup>-1</sup> of P in soil. The results suggest    that Glomus spp. contributed to the synthesis of stress proteins    because of soil phosphorus deficiency. The stress allows the    differential expression of genetic information in the synthesis    of new proteins called mycorrhizines, which are probably  involved in the adaptation mechanisms of plants to stress.</p>     <p><b>Key words:</b> tropical soils, phosphorous deficiency, mycorrhizal  fungus, protein synthesis.</p> <hr size="1">     <p>&nbsp;</p>     <p><b><font size="3">Introducci&oacute;n </font></b></p>   Los ambientes tropicales se caracterizan por presentar severas    restricciones para el desarrollo agr&iacute;cola, como la baja    disponibilidad de nutrientes esenciales en el suelo. La deficiencia    de f&oacute;sforo inorg&aacute;nico en el suelo produce diversas    respuestas en plantas que dependen de la fuente, duraci&oacute;n    y severidad del estr&eacute;s, adem&aacute;s de la etapa de desarrollo de    la planta y del tipo de c&eacute;lula u &oacute;rgano involucrado. Estas    respuestas se expresan a diversos niveles de complejidad:    celular, metab&oacute;lico, morfol&oacute;gico, fisiol&oacute;gico, bioqu&iacute;mico    y molecular (Boucher <i>et al</i>., 1999; Mollier y Pellerin, 1999;    Pellerin y Mollier, 2001; Jain <i>et al</i>., 2007).    Investigaciones realizadas en plantas de ma&iacute;z demuestran    que niveles deficientes de f&oacute;sforo inorg&aacute;nico en el suelo    causan disminuci&oacute;n en el &aacute;rea foliar, como consecuencia    de una reducci&oacute;n en la oferta de carbohidratos, dado que    la mayor&iacute;a de estos compuestos son requeridos por la ra&iacute;z.  Este mecanismo de compensaci&oacute;n ocurre pocos d&iacute;as despu&eacute;s de la deficiencia de f&oacute;sforo (Atkinson, 1973; Fredeen  <i>et al</i>., 1989; Rao y Terry, 1989; Pellerin y Mollier, 2001). </p>     <p>Por otro lado, mayores niveles de f&oacute;sforo disponible en el  suelo incrementan el peso seco de la planta y promueven  el crecimiento radical debido a las mayores tasas en el  crecimiento de ra&iacute;ces centrales y laterales. Esta proliferaci&oacute;n  de ra&iacute;ces est&aacute; relacionada con una mayor elongaci&oacute;n  y producci&oacute;n de pelos radicales (Peck <i>et al</i>., 1988; Russo y  Pappelis, 1995).  En condiciones de estr&eacute;s, las plantas presentan cambios en  crecimiento y morfolog&iacute;a que se relacionan con alteraciones  en el metabolismo y en la composici&oacute;n bioqu&iacute;mica de las  plantas. Plantas en asocio con microorganismos del suelo  (micorrizas arbusculares) han desarrollado estrategias de  adaptaci&oacute;n, las cuales han sido el resultado de complejos  procesos evolutivos (Sanders, <i>et al</i>., 1996). Resultados experimentales  muestran c&oacute;mo plantas de ma&iacute;z micorrizadas,  acumulan az&uacute;cares al ser sometidas a temperaturas bajas,  sequ&iacute;a y niveles bajos de radiaci&oacute;n, esta condici&oacute;n mejora  la capacidad para soportar estr&eacute;s (Boucher <i>et al</i>., 1999). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los mecanismos de adaptaci&oacute;n al estr&eacute;s causan modificaciones  en la expresi&oacute;n de la informaci&oacute;n gen&eacute;tica, produciendo  cambios en los productos g&eacute;nicos, incluyendo  mRNA y prote&iacute;nas. Como respuesta se sintetizan prote&iacute;nas  espec&iacute;ficas, llamadas prote&iacute;nas de estr&eacute;s, las cuales posiblemente  dotan a las plantas con la capacidad de adaptaci&oacute;n  por medio de ajustes fisiol&oacute;gicos y bioqu&iacute;micos. La s&iacute;ntesis  de prote&iacute;nas en plantas puede ser espec&iacute;fica para un estr&eacute;s  particular, como aquellas que son inducidas por d&eacute;ficit  h&iacute;drico (Riccardi <i>et al</i>., 1998). Sin embargo, muchas de las  prote&iacute;nas son comunes y pueden ser sintetizadas bajo m&aacute;s  de un tipo de estr&eacute;s (Taiz y Zeiger, 1998).  Esta investigaci&oacute;n estuvo orientada a mejorar la comprensi&oacute;n  de los mecanismos de adaptaci&oacute;n de las plantas  de ma&iacute;z asociadas con <i>Glomus spp.</i> al crecer en suelos con  deficiencias de f&oacute;sforo inorg&aacute;nico, a trav&eacute;s del estudio  de los cambios morfol&oacute;gicos, fisiol&oacute;gicos y bioqu&iacute;micos,  entre los que se destacan la determinaci&oacute;n de az&uacute;cares y  prote&iacute;nas de estr&eacute;s. </p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b><font size="3">Materiales y m&eacute;todos </font></b></p>     <p><b>Dise&ntilde;o experimental </b>    <br> La investigaci&oacute;n se realiz&oacute; bajo condiciones controladas  en los laboratorios e invernaderos del Centro de Investigaciones  Tibaitat&aacute; de Corpoica. El dise&ntilde;o experimental  usado fue bloques completos al azar, con seis tratamientos  y seis repeticiones, de la siguiente manera: tres tratamientos  con diferentes niveles de f&oacute;sforo disponible en el suelo  1, 40 y 100 mg&middot;kg<sup>-1</sup> y tres tratamientos con las anteriores  concentraciones de f&oacute;sforo en el suelo, m&aacute;s la aplicaci&oacute;n  de micorrizas arbusculares del g&eacute;nero <i>Glomus spp.</i> </p>     <p><b>Preparaci&oacute;n del sustrato e inoculante </b>    <br> El sustrato utilizado consisti&oacute; en una mezcla de suelo y  cascarilla quemada, en una proporci&oacute;n 3:1 (V:V), respectivamente.  El in&oacute;culo empleado en este ensayo se obtuvo  del Banco de Germoplasma del Programa Nacional de  Recursos Biof&iacute;sicos de Corpoica, Tibaitat&aacute;, el cual tiene una  presentaci&oacute;n s&oacute;lida que consiste en una mezcla de suelo,  ra&iacute;ces colonizadas, hifas y esporas. </p>     <p><b>Siembra e inoculaci&oacute;n </b>    <br> Se plantaron semillas pregerminadas del h&iacute;brido Corpoica  Turipan&aacute; H-112, en materas pl&aacute;sticas con capacidad de 2 kg,  previamente desinfectadas con una soluci&oacute;n de hipoclorito  de sodio al 5% y enjuagadas con abundante agua est&eacute;ril.  El sustrato homogenizado fue fertilizado con superfosfato  triple hasta alcanzar las siguientes concentraciones 1, 40 y  100 mg&middot;kg<sup>-1</sup> de f&oacute;sforo disponible en el suelo, mientras que  los tratamientos inoculados conten&iacute;an aproximadamente  200 esporas de <i>Glomus spp.</i> por matero, donde se sembr&oacute;  a raz&oacute;n de una semilla por matero. </p>     <p><b>Condiciones experimentales y manejo agron&oacute;mico </b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Las plantas crecieron bajo invernadero a una temperatura  promedio de 20,3 &deg;C, con temperaturas m&aacute;ximas de 28,31  &deg;C y m&iacute;nimas de 13,8 &deg;C y una humedad media relativa  promedio de 74%. Las aplicaciones de riego (agua est&eacute;ril)  fueron controladas con el fin de evitar el encharcamiento y  de mantener la humedad cercana a la capacidad de campo.  Adicionalmente, se aplicaron fertilizantes en forma de soluciones  nutritivas, para garantizar cubrir los requerimientos  nutricionales del ma&iacute;z. La soluci&oacute;n nutritiva utilizada fue la  propuesta de Mollier y Pellerin (1999) para ma&iacute;z, que consiste  en una mezcla de elementos esenciales, exceptuando el  f&oacute;sforo, el cual se adicion&oacute; en forma de superfosfato triple,  seg&uacute;n el tratamiento. La soluci&oacute;n nutritiva fue aplicada  con una frecuencia aproximada de 48 horas, en una dosis  de 30 mL por matera. </p>     <p><b>Sistema de muestreo y variables analizadas </b>    <br> Se realizaron dos muestreos destructivos a los 20 y 30 d&iacute;as  despu&eacute;s de la emergencia (dde), para variables a nivel morfol&oacute;gico  y bioqu&iacute;mico, de la siguiente manera. Variables  morfol&oacute;gicas: n&uacute;mero de hojas, &aacute;rea foliar total (usando  el medidor de &aacute;rea foliar Leaf Area Meter CI-202), peso  fresco y seco de hojas y ra&iacute;z, a una temperatura de 65 &deg;C  durante 72 horas. Variables bioqu&iacute;micas: se determinaronlas concentraciones de nutrientes, az&uacute;cares y prote&iacute;nas en  tejido vegetal. Los nutrientes analizados fueron: f&oacute;sforo  y nitr&oacute;geno, seg&uacute;n la metodolog&iacute;a de Calder&oacute;n y Pavlova  (2001). La cuantificaci&oacute;n de f&oacute;sforo se realiz&oacute; por colorimetr&iacute;a  y la concentraci&oacute;n de nitr&oacute;geno se determin&oacute; por  el m&eacute;todo de Kjeldahl, teniendo en cuenta la metodolog&iacute;a  de AOAC. Mientras que la extracci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de  az&uacute;cares totales se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de Somogyi-Nelson.  Finalmente, las prote&iacute;nas totales se determinaron por  Bradford e identificaci&oacute;n por electroforesis SDS PAGE.  A nivel simbi&oacute;tico se determin&oacute; el porcentaje de colonizaci&oacute;n  de micorrizas usando el m&eacute;todo de Trouvelot  <i>et al</i>. (1986), que cuantifica la frecuencia de micorrizaci&oacute;n  (%F), es decir, el n&uacute;mero de ra&iacute;ces colonizadas  con relaci&oacute;n al total de ra&iacute;ces por planta e intensidad de  micorrizaci&oacute;n (%M), que indica el porcentaje de colonizaci&oacute;n  por ra&iacute;z; estas variables se analizaron a los 30  d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra y se refieren al sistema radical  en sus totalidad.</p>      <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico </b>    <br> El procesamiento estad&iacute;stico se realiz&oacute; utilizando la versi&oacute;n  8 de Statistical Analisys System (SAS) y consisti&oacute; en un  an&aacute;lisis de varianza (Anova) con niveles de significancia de  (P &lt; 0,05 y P &lt; 0,01), posteriormente se aplic&oacute; la prueba  de rangos m&uacute;ltiples de Duncan a cada una de las variables  estudiadas con un nivel de significancia de (P &lt; 0,05).  Finalmente, para el estudio de las interacciones entre los  factores gradiente de f&oacute;sforo y micorrizaci&oacute;n se utilizaron  contrastes ortogonales. </p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b><font size="3">Resultados y discusi&oacute;n </font></b></p>     <p>Los resultados experimentales de las tablas 1, 2, 3 y 4  muestran los valores promedios de las variables analizadas  de acuerdo con la fuente de variaci&oacute;n (disponibilidad de  f&oacute;sforo en el suelo y efecto de la inoculaci&oacute;n con micorrizas  arbusculares) y el nivel de significancia seg&uacute;n el an&aacute;lisis de  varianza Anova, la prueba de rangos m&uacute;ltiples de Duncan  y contrastes ortogonales. </p>      <p>Los resultados confirman un disminuci&oacute;n en el &aacute;rea foliar  relacionada con la baja disponibilidad de f&oacute;sforo en el suelo,  en ambos muestreos (20 y 30 dde). Esta disminuci&oacute;n del  &aacute;rea foliar se relaciona con reducciones en la acumulaci&oacute;n  de materia seca, tanto en hojas como en ra&iacute;z, lo que sugiere  que plantas de ma&iacute;z, bajo condiciones de estr&eacute;s por f&oacute;sforo,  reducen el crecimiento vegetal debido al decrecimiento del  P inorg&aacute;nico en las hojas (Usuda y Shimogawara, 1995). La  mayor &aacute;rea foliar y acumulaci&oacute;n de materia seca, en hojas  y en ra&iacute;z ocurre en plantas bajo la mayor concentraci&oacute;n de  f&oacute;sforo disponible en el suelo (100 m&middot;kg<sup>-1</sup>), con relaci&oacute;n a  la concentraci&oacute;n media de 40 mg&middot;kg<sup>-1</sup> de f&oacute;sforo, y estas  a su vez con el testigo con solo 1 mg&middot;kg<sup>-1</sup> de f&oacute;sforo en el  suelo. Estas diferencias fueron altamente significativas (P  &lt; 0,01) seg&uacute;n la Anova y la prueba de rangos m&uacute;ltiples de  Duncan (p &lt; 0,05). Es importante destacar que ambos  factores fueron analizados por separado, debido a que no  se detectaron diferencias en su interacci&oacute;n (<a href="#tab1">tabla 1</a>).</p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="#tab1"><img src="img/revistas/agc/v25n2/v25n2a19tab1"></a></center></p>     <p>Adicionalmente se evalu&oacute; el &iacute;ndice ra&iacute;z/parte a&eacute;rea de  la planta, con el prop&oacute;sito de determinar el balance en  el crecimiento vegetal a trav&eacute;s de la distribuci&oacute;n de la  materia seca. Los resultados muestran diferencias significativas  (P &lt; 0,01) entre tratamientos de acuerdo al  Anova, debido a la disponibilidad de f&oacute;sforo en el suelo,  pero no debido a la inoculaci&oacute;n con <i>Glomus spp.</i>, tanto  a los 20 como a los 30 d&iacute;as despu&eacute;s de la emergencia. La  relaci&oacute;n fue inversa, entre el &iacute;ndice y la concentraci&oacute;n de  f&oacute;sforo en el suelo. Los mayores valores se obtuvieron a  m&aacute;s bajas concentraciones de f&oacute;sforo. Este mecanismo de  compensaci&oacute;n ocurri&oacute; pocos d&iacute;as despu&eacute;s de la deficiencia  de f&oacute;sforo en la planta, debido a que una gran cantidad  de carbohidratos son traslocados a la ra&iacute;z en detrimento  de las hojas, resultado que ha sido reportado por otros  investigadores (Atkinson, 1973; Fredeen <i>et al</i>., 1989; Rao  y Terry, 1989; Pellerin y Mollier, 2001). Sin embargo,  es importante destacar que esta situaci&oacute;n solo persiste  m&aacute;ximo durante 10 d&iacute;as, dado que cuando las plantas  fueron evaluadas a los 30 dde, el efecto desaparece y ocurre  una mayor acumulaci&oacute;n de la materia seca en ra&iacute;ces  con relaci&oacute;n a la parte a&eacute;rea de la planta; es decir, que el  balance del crecimiento de la planta cambia nuevamente,  posiblemente por el agotamiento que sufre la planta como  consecuencia de la disminuci&oacute;n del f&oacute;sforo disponible. </p>     <p>La asociaci&oacute;n ma&iacute;z con micorrizas arbusculares, del g&eacute;nero  <i>Glomus</i>, muestra mayores &iacute;ndices de crecimiento en plantas,  expresados en biomasa (materia seca y &aacute;rea foliar), como  consecuencia de una mejor nutrici&oacute;n mineral por parte  del hospedero, especialmente relacionada con el f&oacute;sforo,  que indujo a un est&iacute;mulo en el crecimiento vegetal. Estas  diferencias fueron significativas seg&uacute;n el an&aacute;lisis de varianza  y la prueba de rangos m&uacute;ltiples de Duncan (P &lt; 0,05).  Plantas de ma&iacute;z micorrizadas presentan mayores concentraciones  de az&uacute;cares totales y reductores, que aquellas no  micorrizadas. Estas diferencias estuvieron incrementadas  con los niveles de f&oacute;sforo disponible en el suelo, especialmente  en los az&uacute;cares totales, donde los niveles m&aacute;s altos  de f&oacute;sforo disponible (100 mg&middot;kg<sup>-1</sup>) fueron superiores al nivel intermedio (40 mg&middot;kg<sup>-1</sup>), y estos a su vez al testigo (1  mg&middot;kg<sup>-1</sup>), de acuerdo con la prueba de rangos m&uacute;ltiples de  Duncan (<a href="#tab2">tabla 2</a>).  Estos resultados muestran que tanto la concentraci&oacute;n de  f&oacute;sforo como la asociaci&oacute;n simbi&oacute;tica con micorrizas contribuyen  con la concentraci&oacute;n de az&uacute;cares, debido al rol del  f&oacute;sforo en la s&iacute;ntesis de carbohidratos en plantas. As&iacute;, los  resultados concuerdan con los reportados por Boucher <i>et  al</i>. (1999), quienes encontraron mayores concentraciones  de az&uacute;car en plantas colonizadas por <i>Glomus vermiforme</i>.  De forma similar, plantas de ma&iacute;z bajo estr&eacute;s por sequ&iacute;a,  asociadas con Glomus intraradices, presentan mayores  concentraciones de az&uacute;car que las plantas no micorrizadas;  esto puede ser el resultado de un incremento de la  tasa fotosint&eacute;tica o de una reducci&oacute;n de la degradaci&oacute;n de  clorofila (Boucher <i>et al</i>., 1999).</p>      <p>    <center><a name="#tab2"><img src="img/revistas/agc/v25n2/v25n2a19tab2"></a></center></p>     <p>A nivel bioqu&iacute;mico se analizaron las concentraciones de  prote&iacute;nas en diferentes tejidos de la planta. Los resultados  muestran diferencias significativas seg&uacute;n la Anova entre  tratamientos, en la concentraci&oacute;n de prote&iacute;na foliar, pero  no en la prote&iacute;na radical. Los cambios en la concentraci&oacute;n  de prote&iacute;nas en tejido estuvieron determinados por  una combinaci&oacute;n entre el f&oacute;sforo disponible en el suelo  y la inoculaci&oacute;n con micorrizas de g&eacute;nero <i>Glomus</i>, de la  siguiente manera: plantas bajo condiciones de estr&eacute;s por  f&oacute;sforo (1 mg&middot;kg<sup>-1</sup>) presentan mayor concentraci&oacute;n de  prote&iacute;na foliar, que plantas no estresadas (100 mg&middot;kg<sup>-1</sup>);  mientras que plantas de ma&iacute;z micorrizadas incrementan  la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas con respecto a plantas no micorrizadas. </p>     <p>Estos resultados permiten suponer que la asociaci&oacute;n  simbi&oacute;tica con <i>Glomus spp.</i> contribuye con la s&iacute;ntesis de  prote&iacute;nas de estr&eacute;s, las cuales forman parte de la respuesta  al d&eacute;ficit de f&oacute;sforo en el suelo. De esta forma, el estr&eacute;s por  deficiencia de f&oacute;sforo, conduce a la expresi&oacute;n diferencial  de la informaci&oacute;n gen&eacute;tica, produciendo cambios en los  productos g&eacute;nicos, incluyendo mRNA y prote&iacute;nas (Usuda  y Shimogawara, 1995). Es as&iacute; como aumenta la s&iacute;ntesis  de nuevas prote&iacute;nas en plantas estresadas y disminuye el  nivel de centenares de prote&iacute;nas existentes. Estas prote&iacute;nas  espec&iacute;ficas de estr&eacute;s, posiblemente dotan a las plantas  con la capacidad de adaptarse al estr&eacute;s medioambiental  por medio de ajustes fisiol&oacute;gicos y bioqu&iacute;micos (Usuda  y Shimogawara, 1995). Seg&uacute;n Boucher <i>et al</i>. (1999), altas  concentraciones de prote&iacute;nas en ma&iacute;z han sido asociadas  con un rol adaptativo de las micorrizas arbusculares en la  reducci&oacute;n de la degradaci&oacute;n proteica bajo condiciones de  estr&eacute;s y a la producci&oacute;n de prote&iacute;nas llamadas micorrizinas,  las cuales pueden ser inducidas por la asociaci&oacute;n con  Glomus spp., en respuesta a la infecci&oacute;n con el hongo, pero  su funci&oacute;n espec&iacute;fica a&uacute;n se desconoce.  La identificaci&oacute;n de estas prote&iacute;nas llamadas micorrizinas se  inici&oacute; con el uso de electroforesis bidimensional, donde es  posible reconocer diferencias en los patrones electrofor&eacute;ticos entre plantas bajo estr&eacute;s por deficiencia de f&oacute;sforo y aquellas  no estresadas, as&iacute; como plantas micorrizadas con Glomus y  aquellas no micorrizadas. Estas evidencias corroboran que la  condici&oacute;n de estr&eacute;s conlleva a la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas de estr&eacute;s,  y como la asociaci&oacute;n de ma&iacute;z con <i>Glomus spp.</i> contribuye con  la s&iacute;ntesis de nuevas prote&iacute;nas como mecanismos de respuesta  de la planta al estr&eacute;s ambiental (Boucher <i>et al</i>., 1999)</p>      <p>Con relaci&oacute;n a la concentraci&oacute;n de nutrientes en tejido vegetal,  se observa que los mayores contenidos de f&oacute;sforo (P),  nitr&oacute;geno (N), potasio (K) y magnesio (Mg) se presentan  con los m&aacute;s altos niveles de f&oacute;sforo disponible en el suelo  (100 mg/kg), especialmente en presencia de <i>Glomus spp.</i>,  seguidos de la concentraci&oacute;n media (40 mg&middot;kg<sup>-1</sup>), mientras  que las menores concentraciones se encuentra en el testigo  (1 mg&middot;kg<sup>-1</sup>) (<a href="#tab3">tabla 3</a>).</p>     <p>    <center><a name="#tab3"><img src="img/revistas/agc/v25n2/v25n2a19tab3.gif"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Es importante destacar, que existe un efecto aditivo sobre    concentraci&oacute;n de K, N, S, P y Mg en planta, debido a las    aplicaciones de <i>Glomus spp.</i> para cada uno de los contenidos    de f&oacute;sforo en el suelo, de la siguiente manera: plantas con    niveles altos de f&oacute;sforo disponible (100 mg&middot;kg<sup>-1</sup>), asociadas    a MA muestran mayor concentraci&oacute;n de la mayor&iacute;a de    los nutrientes, excepto calcio comparadas con plantas no    micorrizadas con igual nivel de f&oacute;sforo en el suelo.    La mayor concentraci&oacute;n de nutrientes en tejido vegetal (N,    P, S, K y Mg) se presentan en pl&aacute;ntulas de ma&iacute;z que crecen    bajo la mayor concentraci&oacute;n de f&oacute;sforo disponible en el    suelo (100 mg&middot;kg<sup>-1</sup>), seguidas del nivel medio (40 mg&middot;kg<sup>-1</sup>) y    estas a su vez fueron superiores al testigo, con solo 1 mg.kg<sup>-1</sup> de f&oacute;sforo disponible en el suelo. De forma similar, plantas    asociadas con <i>Glomus spp.</i> presentan concentraciones    mayores de nutrientes en tejido vegetal a los 30 dde, con    relaci&oacute;n a plantas de ma&iacute;z no micorrizadas con <i>Glomus spp.</i> Con el prop&oacute;sito de analizar el efecto independiente de la    disponibilidad de f&oacute;sforo en el suelo y la inoculaci&oacute;n con <i>Glomus spp.</i>, se dise&ntilde;aron dos diagramas radiales de la    concentraci&oacute;n de nutrientes en pl&aacute;ntulas de ma&iacute;z a los 20    y 30 dde, que se presentan en las <a href="#fig1">figuras 1 y 2</a>.</p>     <p>    <center><a name="#fig1"><img src="img/revistas/agc/v25n2/v25n2a19fig1.gif"></a></center></p>     <p>    <center><a name="#fig2"><img src="img/revistas/agc/v25n2/v25n2a19fig2.gif"></a></center></p>      <p><a href="#fig1">La figura 1</a> representa la concentraci&oacute;n de nutrientes (N, P,  K, Ca, Mg y S) en tejido vegetal para cada uno de los tratamientos  en tres pol&iacute;gonos. De acuerdo con este diagrama  existe una relaci&oacute;n entre el tama&ntilde;o del pol&iacute;gono y el nivel  de P en el suelo, es as&iacute; que a bajas dosis de P en el suelo la  pl&aacute;ntulas de ma&iacute;z muestra menores concentraciones de  nutrientes (N, P, K, Ca y Mg) en tejido vegetal; mientras  que las dosis altas de P en el suelo (l&iacute;nea continua) se  presentan mayores concentraciones de nutrientes en tejido  vegetal (N, P, K y Mg), representadas en un pol&iacute;gono  mayor, y la dosis media de P en el suelo se relaciona con  un pol&iacute;gono de tama&ntilde;o intermedio.  De forma similar, la <a href="#fig2">figura 2</a> es un diagrama radial que  representa la concentraci&oacute;n de nutrientes en tejido vegetal  en plantas de ma&iacute;z con y sin inoculaci&oacute;n con <i>Glomus spp</i>.,  donde claramente se observa que el status nutricional de  las pl&aacute;ntulas inoculadas con <i>Glomus spp.</i> es mejor que  aquellas sin inoculaci&oacute;n. Estos resultados confirman el  papel del f&oacute;sforo en el suelo y de <i>Glomus spp.</i> en el estado nutricional de la pl&aacute;ntulas de ma&iacute;z a los 20 d&iacute;as despu&eacute;s  de la emergencia. </p>     <p>Finalmente se evalu&oacute; el efecto del f&oacute;sforo disponible y de la  inoculaci&oacute;n con Glomus spp. sobre varios indicadores de  micorrizaci&oacute;n en pl&aacute;ntulas de ma&iacute;z a los 30 dde, como se  observa en la <a href="#tab4">tabla 4</a>. Los resultados del an&aacute;lisis estad&iacute;stico  muestran diferencias significativas debidas a la concentraci&oacute;n  de f&oacute;sforo en el suelo, para las variables: frecuencia  de micorrizaci&oacute;n (%F), presencia de ves&iacute;culas y n&uacute;mero  de esporas por gramo de suelo, pero no en intensidad de  micorrizaci&oacute;n (%M), seg&uacute;n la Anova y las pruebas Duncan. Estos resultados indican que a menores concentraciones de    f&oacute;sforo disponible en el suelo existe un mayor n&uacute;mero de    plantas micorrizadas (%F), pero el porcentaje de colonizaci&oacute;n    por ra&iacute;z (%M) no cambi&oacute; significativamente a los    30 dde. Mientras la presencia de ves&iacute;culas se incrementa    con la concentraci&oacute;n de f&oacute;sforo el n&uacute;mero de esporas disminuye.    Estos resultados pueden ser explicados, dado que    la producci&oacute;n de ves&iacute;culas en plantas micorrizadas ocurre    como respuesta del simbionte a factores adversos, donde    altas concentraciones de f&oacute;sforo inhiben la asociaci&oacute;n simbi&oacute;tica;    mientras que el n&uacute;mero de esporas presentes en la    muestra representan aquellas esporas que no germinaron    y no las que son fruto de la esporulaci&oacute;n, debido a que este    proceso requiere de m&aacute;s tiempo una vez se ha colonizado    el tejido radical.    Para todas las variables relacionadas con micorrizaci&oacute;n se    pudo establecer que la inoculaci&oacute;n con <i>Glomus spp.</i> aumenta    significativamente la frecuencia (%F) y la intensidad de    micorrizaci&oacute;n (%M), la presencia e intensidad de ves&iacute;culas    (%V), as&iacute; como el n&uacute;mero de esporas por gramo de suelo,    seg&uacute;n la Anova y las pruebas Duncan. Los tratamientos    sin inoculaci&oacute;n con micorrizas se hicieron sobre suelo    no est&eacute;ril, raz&oacute;n por la cual presentan algunos niveles de    micorrizaci&oacute;n proveniente de esporas nativas. Estos resultados    confirman las diferencias entre tratamiento con o sin    inoculaci&oacute;n con <i>Glomus spp.</i></p>        <p>    <center><a name="#tab4"><img src="img/revistas/agc/v25n2/v25n2a19tab4.gif"></a></center></p>       <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">Conclusiones </font></b></p>     <p>  De acuerdo con los resultados experimentales, bajas concentraciones    de f&oacute;sforo inorg&aacute;nico disponible en el suelo se    relacionan con una disminuci&oacute;n en el &aacute;rea foliar que afecta    el crecimiento de plantas de ma&iacute;z a los 20 y 30 dde. Situaci&oacute;n    que se refleja en la reducci&oacute;n de materia seca, tanto en    hojas como en ra&iacute;z, posiblemente debido a la disminuci&oacute;n    en la concentraci&oacute;n de f&oacute;sforo inorg&aacute;nico en hojas. Como    mecanismos de compensaci&oacute;n a las deficiencias de f&oacute;sforo    en el suelo, las pl&aacute;ntulas de ma&iacute;z traslocan carbohidratos a    la ra&iacute;z en detrimento de las hojas, cambiando el balance de    la planta en la distribuci&oacute;n de materia seca, expresado en el    &iacute;ndice ra&iacute;z : parte a&eacute;rea. Este mecanismo s&oacute;lo se presenta    en los primeros d&iacute;as despu&eacute;s de que la planta es sometida    a estr&eacute;s por f&oacute;sforo (&lt; 10 d&iacute;as); posteriormente, el balance    cambia nuevamente y la parte a&eacute;rea de la planta presenta    un r&aacute;pido incremento en materia seca superior al de la ra&iacute;z,    mostrando menores &iacute;ndices ra&iacute;z : parte a&eacute;rea.    Adicionalmente se observ&oacute; que plantas de ma&iacute;z asociadas    a micorrizas arbusculares, del g&eacute;nero <i>Glomus</i>, presentaron    mayores &iacute;ndices de crecimiento, expresados en biomasa    (materia seca y &aacute;rea foliar) debido al est&iacute;mulo al crecimiento    vegetal, como una consecuencia de una mejor nutrici&oacute;n    mineral por parte del hospedero, especialmente el f&oacute;sforo.  Este mayor crecimiento de la planta de ma&iacute;z micorrizada con respecto a no micorrizada est&aacute; relacionado con incrementos  en la concentraci&oacute;n de az&uacute;cares en tejido, debido al  rol del f&oacute;sforo en la s&iacute;ntesis de carbohidratos en plantas. </p>     <p>Al comparar la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas en tejidos foliares  y radicales, solo se observan diferencias significativas a  nivel de las hojas. La concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas aumenta  en plantas micorrizadas y no micorrizadas bajo estr&eacute;s  por f&oacute;sforo, debido a que la condici&oacute;n de estr&eacute;s conlleva a  una s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas de estr&eacute;s, como mecanismos de  respuesta de la planta al ambiente.  Adicionalmente, se observa que en plantas micorrizadas  aumenta la producci&oacute;n de prote&iacute;nas foliares con respecto  a que aquellas no micorrizadas bajo concentraciones bajas  y medias de f&oacute;sforo (1 y 40 mg&middot;kg<sup>-1</sup> de P). Estos resultados  permiten suponer que la asociaci&oacute;n simbi&oacute;tica con <i>Glomus  spp.</i> contribuye con la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas de estr&eacute;s, las  cuales forman parte de la respuesta al d&eacute;ficit de f&oacute;sforo  en el suelo. De esta forma, el estr&eacute;s por deficiencia de f&oacute;sforo,  conduce a la expresi&oacute;n diferencial de la informaci&oacute;n  gen&eacute;tica, produciendo cambios en los productos g&eacute;nicos,  incluyendo mRNA y prote&iacute;nas. Es as&iacute; como aumenta la  s&iacute;ntesis de nuevas prote&iacute;nas en plantas estresadas. Estas  prote&iacute;nas espec&iacute;ficas de estr&eacute;s, llamadas micorrizinas, posiblemente  dotan a las plantas con la capacidad de adaptarse  al estr&eacute;s medioambiental por medio de ajustes fisiol&oacute;gicos  y bioqu&iacute;micos. Seg&uacute;n Boucher <i>et al</i>. (1999), las micorrizinas  pueden ser inducidas por la asociaci&oacute;n MA, en respuesta a  la infecci&oacute;n con el hongo, pero su funci&oacute;n espec&iacute;fica a&uacute;n  se desconoce.</p>      <p>&nbsp;</p>     <p><b><font size="3">Literatura citada </font></b></p>     <!-- ref --><p>Atkinson, D. 1973. Some general effects of phosphorus deficiency on  growth and development. Plant Physiol. 72, 101-111. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-9965200700020001900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Boucher, A., Y. Dalpe y C. Charest. 1999. Effect of arbuscular mycorrhizal  colonization of four species of <i>Glomus</i> on physiological  responses of Maize. Plant Nutr. 2(4,5), 783-797.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-9965200700020001900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Calder&oacute;n, F y M. Pavlova. 2001. Metodolog&iacute;as de an&aacute;lisis foliar.  Calder&oacute;n Laboratorios Ltda., Bogot&aacute;. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-9965200700020001900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Ferreris G. N. y L. A., Couretot. 2006. Inoculaci&oacute;n con promotores de  crecimiento y uso de diferentes dosis de fertilizante fosforado  en ma&iacute;z en ambientes con baja disponibilidad de f&oacute;sforo en el  suelo. &Aacute;rea de Desarrollo Rural INTA, EA. Pergamino, Buenos  Aires. En: http://www.elsitioagricola.com/articulos/ferraris/  InoculacionconPromotoresdeCrecimientoenMaiz.pdf &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-9965200700020001900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Fredeen, A., IM. Rao, y N. Ferry. 1989. Influence of phosphorous  nutrition in Glycine max. Plant Physiol. 89, 225-230. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-9965200700020001900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Gianinazzi-Pearson, V. y C. Azc&oacute;n Aguilar. 1991. Fisiolog&iacute;a de las micorrizas  ves&iacute;culo-arbusculares. En: Olivares, J. y J .M. Barea (eds.).  Fijaci&oacute;n y movilizaci&oacute;n biol&oacute;gica de nutrientes. Vol. 2. Consejo  Superior de Investigaciones Cient&iacute;ficas, Madrid. pp. 175-202. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-9965200700020001900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Jain A., M.J. Vasconcelos, K.G. Raghothama y S.V Sahi. 2007.  Molecular mechanisms of plant adaptation to phosphate  deficiency. Plant Breeding Rev. 29, 359-419. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-9965200700020001900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Mollier, A. y S. Pellerin. 1999. Maize root system growth and development  as influenced by phosphorus deficiency. J. Expl. Bot.  50(333), 487-497. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-9965200700020001900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Peck, N. y G. MacDonald. 1989. Sweet corn plant responses to P and  K in the soil and to band applied monoammonium phosphate,  potassium sulphate and magnesium sulphate. J. Amer. Soc.  Hort. Sci. 114, 269-272. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-9965200700020001900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Peck, N., G. MacDonald y J. Barnard. 1988. Sweet corn seedling  responses to band applied nitrogen, phosphorus and soil and  potassium fertilizers. J.Amer.Soc.Hort.Sci. 113, 336-342. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-9965200700020001900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Pellerin, S. y A. Mollier. 2001. How to include mineral nutrition in  crop growth models? The example of phosphorus on maize:  Plant nutrition food security and sustainability of agro-ecosystems.  Kluwer Academic Publishers. pp. 110-111. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-9965200700020001900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Prystupa P., F. H. Guti&eacute;rrez Boem y G. Cernik. 2005. Generaci&oacute;n  del rendimiento en un cultivo de ma&iacute;z sujeto a deficiencias  de f&oacute;sforo. Informaciones Agron&oacute;micas No. 27. Facultad de  Agronom&iacute;a UBA, Buenos Aires. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-9965200700020001900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Rao, I.M. y N. Ferry. 1989. Leaf phosphorus status, photosynthesis,  and carbon partitioning in sugar beet. Plant Physiol. 90,  814-819. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-9965200700020001900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Riccardi, F., P. Gazeau, D. Vienne y M. Zivy. 1998. Protein Changes  in response to progressive water deficit in maize. Plant Physiol.  117, 1253-1263. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-9965200700020001900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Russo, V.M. y A.J. Pappelis. 1995. Senescence in sweet corn as influenced  by phosphorous nutrition. Plant Nutr. 18(4), 707-717. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-9965200700020001900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Sanders, I.R., J.P. Clapp y A. Wiemken. 1996. The genetic diversity of  arbuscular mycorrhizal fungi in natural ecosystems - a key to  understanding the ecology and functioning of the mycorrizal  symbiosis. New Phytologist 133(1), 123-134. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-9965200700020001900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Silveira A. 1992. Micorrizas. En: Microbiologia do solo. Sociedad  Brasileira de Ciencia do Solo, Campinas, pp. 257-282. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-9965200700020001900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Taiz y E. Zeiger, 1998. Plant physiology. 2nd edition. Sinauer Associates,  Sunderland, Massachusetts. pp. 725-756. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-9965200700020001900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Trouvelot A., J. L. Kough y V. Gianinazzi-Pearson. 1986. Measure  du taux de mycorrhization VA dun systeme radiculaire.  Recherche de methodes destimation ayand une signification  functionnelle. En: Mycorrhizae. Physiology and genetics.  Primer Simposio Europeo de Micorrizas. INRA, Par&iacute;s. pp.  626-630. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-9965200700020001900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Usuda H. y K. Shimogawara. 1995. Phosphate deficiency in maiz.  VI: Changes in the two-dimensional electrophoretic patterns  of soluble proteins form second leaf blades associated with  induced senescence. Plant Cell Physiol. 36(6), 1149-1155. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-9965200700020001900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Atkinson]]></surname>
<given-names><![CDATA[D.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Some general effects of phosphorus deficiency on growth and development]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Physiol.]]></source>
<year>1973</year>
<volume>72</volume>
<page-range>101-111</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Boucher]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dalpe]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Charest]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of arbuscular mycorrhizal colonization of four species of Glomus on physiological responses of Maize]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Nutr.]]></source>
<year>1999</year>
<volume>2</volume>
<numero>4,5</numero>
<issue>4,5</issue>
<page-range>783-797</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Calderón]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pavlova]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Metodologías de análisis foliar]]></source>
<year>2001</year>
<publisher-loc><![CDATA[Bogotá ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Calderón Laboratorios Ltda]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ferreris]]></surname>
<given-names><![CDATA[G. N.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Couretot]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Inoculación con promotores de crecimiento y uso de diferentes dosis de fertilizante fosforado en maíz en ambientes con baja disponibilidad de fósforo en el suelo.]]></source>
<year>2006</year>
<publisher-loc><![CDATA[Buenos Aires ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Área de Desarrollo Rural INTAEA. Pergamino]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Fredeen]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rao]]></surname>
<given-names><![CDATA[IM.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ferry]]></surname>
<given-names><![CDATA[N.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Influence of phosphorous nutrition in Glycine max.]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Physiol.]]></source>
<year>1989</year>
<volume>89</volume>
<page-range>225-230</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gianinazzi-Pearson]]></surname>
<given-names><![CDATA[V.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Azcón Aguilar]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Fisiología de las micorrizas vesículo-arbusculares]]></article-title>
<person-group person-group-type="editor">
<name>
<surname><![CDATA[Olivares]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barea]]></surname>
<given-names><![CDATA[.M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[.). Fijación y movilización biológica de nutrientes]]></source>
<year>1991</year>
<volume>Vol. 2</volume>
<page-range>175-202</page-range><publisher-loc><![CDATA[Madrid ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Consejo Superior de Investigaciones Científicas]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jain]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vasconcelos]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Raghothama]]></surname>
<given-names><![CDATA[K.G.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sahi]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.V]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Molecular mechanisms of plant adaptation to phosphate deficiency]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Breeding Rev.]]></source>
<year>2007</year>
<volume>29</volume>
<page-range>359-419</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Mollier]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pellerin]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Maize root system growth and development as influenced by phosphorus deficiency]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Expl. Bot.]]></source>
<year>1999</year>
<volume>50</volume>
<numero>333</numero>
<issue>333</issue>
<page-range>487-497</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Peck]]></surname>
<given-names><![CDATA[N.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[MacDonald]]></surname>
<given-names><![CDATA[G.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Sweet corn plant responses to P and K in the soil and to band applied monoammonium phosphate, potassium sulphate and magnesium sulphate]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Amer. Soc. Hort. Sci.]]></source>
<year>1989</year>
<volume>114</volume>
<page-range>269-272</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Peck]]></surname>
<given-names><![CDATA[N.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[MacDonald]]></surname>
<given-names><![CDATA[G.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barnard]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Sweet corn seedling responses to band applied nitrogen, phosphorus and soil and potassium fertilizers]]></article-title>
<source><![CDATA[J.Amer.Soc.Hort.Sci.]]></source>
<year>1988</year>
<volume>113</volume>
<page-range>336-342</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Pellerin]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mollier]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[How to include mineral nutrition in crop growth models? The example of phosphorus on maize: Plant nutrition food security and sustainability of agro-ecosystems]]></source>
<year>2001</year>
<page-range>110-111</page-range><publisher-name><![CDATA[Kluwer Academic Publishers]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Prystupa]]></surname>
<given-names><![CDATA[P.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gutiérrez Boem]]></surname>
<given-names><![CDATA[F. H.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cernik]]></surname>
<given-names><![CDATA[G.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Generación del rendimiento en un cultivo de maíz sujeto a deficiencias de fósforo]]></source>
<year>2005</year>
<volume>27</volume>
<publisher-loc><![CDATA[Buenos Aires ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Facultad de Agronomía UBA]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rao]]></surname>
<given-names><![CDATA[I.M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ferry]]></surname>
<given-names><![CDATA[N.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Leaf phosphorus status, photosynthesis, and carbon partitioning in sugar beet]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Physiol.]]></source>
<year>1989</year>
<volume>90</volume>
<page-range>814-819</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Riccardi]]></surname>
<given-names><![CDATA[F.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gazeau]]></surname>
<given-names><![CDATA[P.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vienne]]></surname>
<given-names><![CDATA[D.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zivy]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Protein Changes in response to progressive water deficit in maize]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Physiol.]]></source>
<year>1998</year>
<volume>117</volume>
<page-range>1253-1263</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Russo]]></surname>
<given-names><![CDATA[V.M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pappelis]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Senescence in sweet corn as influenced by phosphorous nutrition]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Nutr.]]></source>
<year>1995</year>
<volume>18</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>707-717</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sanders]]></surname>
<given-names><![CDATA[I.R.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Clapp]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.P.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wiemken]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The genetic diversity of arbuscular mycorrhizal fungi in natural ecosystems - a key to understanding the ecology and functioning of the mycorrizal symbiosis]]></article-title>
<source><![CDATA[New Phytologist]]></source>
<year>1996</year>
<volume>133</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>123-134</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Silveira]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Micorrizas]]></article-title>
<source><![CDATA[Microbiologia do solo]]></source>
<year>1992</year>
<page-range>257-282</page-range><publisher-loc><![CDATA[Campinas ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Sociedad Brasileira de Ciencia do Solo]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Taiz]]></surname>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zeiger]]></surname>
<given-names><![CDATA[E.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Plant physiology]]></source>
<year>1998</year>
<edition>2nd edition</edition>
<page-range>725-756</page-range><publisher-loc><![CDATA[Sunderland^eMassachusetts Massachusetts]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Sinauer Associates]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<nlm-citation citation-type="confpro">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Trouvelot]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kough]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. L.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gianinazzi-Pearson]]></surname>
<given-names><![CDATA[V.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Measure du taux de mycorrhization VA dun systeme radiculaire: Recherche de methodes destimation ayand une signification functionnelle]]></article-title>
<source><![CDATA[Mycorrhizae: Physiology and genetics]]></source>
<year>1986</year>
<conf-name><![CDATA[ Primer Simposio Europeo de Micorrizas]]></conf-name>
<conf-loc>París </conf-loc>
<page-range>626-630</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Usuda]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Shimogawara]]></surname>
<given-names><![CDATA[K.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phosphate deficiency in maiz: VI: Changes in the two-dimensional electrophoretic patterns of soluble proteins form second leaf blades associated with induced senescence]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Cell Physiol.]]></source>
<year>1995</year>
<volume>36</volume>
<numero>6</numero>
<issue>6</issue>
<page-range>1149-1155</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
