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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Factores y mecanismos relacionados con la dormancia en tubérculos de papa. Una revisión]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[At harvest, and for a definite period, potato tubers (Solanum tuberosum L.) remain dormant. Defined as a period in which there is no visible bud growth, this condition is induced at the beginning of tuberization. Plant hormones are involved in all phases of dormancy. Although Abscisic Acid (ABA) and ethylene are necessary for its induction, only the former is needed for its maintenance. The levels of this hormone increase during tuber formation, remain steady during dormancy, and go down with active bud growth. The first of these processes depends on high levels of Gibberellic Acid (GA), while the interruption of dormancy is determined by an enhanced sensitivity to cytokinins. Once dormancy has been stopped, bud growth regulation is related to changes in Indole Acetic Acid (IAA) and GA levels. Starting from a symplastically isolated, dormant apical meristem, the (symplastic) flow that controls sugar allocation has been observed to contribute to both tuber induction and dormancy breakdown. The latter is associated to the symplastic connection between the apical meristem and the tuber&#39;s floem, and to a symplastic unloading into the bud region, all of which favors the active growth of the new buds.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">        <p align="center"><font size="4"><b>Factores y mecanismos relacionados con la dormancia en tub&eacute;rculos de papa. Una revisi&oacute;n</b></font></p> &nbsp;     <p align="center"><font size="3"><b>Factors and mechanisms related to tuber dormancy in potato: an overview</b></font></p> &nbsp;     <p>Luis Ernesto Rodr&iacute;guez<sup>1, 2</sup> y Liz Patricia Moreno<sup>1</sup></p>     <p>1 Departamento de Agronom&iacute;a, Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute; (Colombia).    <br> 2 Autor de correspondencia. <a href="mailto:lerodriguezmo@unal.edu.co">lerodriguezmo@unal.edu.co</a>; <a href="mailto:lpmorenof@unal.edu.co">lpmorenof@unal.edu.co</a></p>     <p>Fecha de recepci&oacute;n: 18 de febrero de 2010. Aceptado para publicaci&oacute;n: 28 de julio de 2010</p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>Los tub&eacute;rculos de la papa (<i>Solanum tuberosum</i> L.), al momento de la cosecha y por un tiempo determinado, se encuentran en estado dormante. La dormancia se induce con el inicio de la tuberizaci&oacute;n y se define como un per&iacute;odo en el cual no ocurre ning&uacute;n crecimiento visible de los brotes. Las hormonas vegetales est&aacute;n involucradas en todas las fases de progresi&oacute;n de la dormancia. Si bien el &aacute;cido absc&iacute;sico (ABA) y el etileno son necesarios para su inducci&oacute;n, s&oacute;lo el primero se requiere para su mantenimiento. Los niveles de ABA se incrementan durante la formaci&oacute;n de los tub&eacute;rculos, se mantienen constantes durante la dormancia y disminuyen con el crecimiento activo de los brotes. Un incremento en los niveles del &aacute;cido giber&eacute;lico (AG) es necesario para inducir la formaci&oacute;n del tub&eacute;rculo, mientras que una sensibilidad mayor a las citoquininas es determinante para la p&eacute;rdida de la dormancia. Cambios en los contenidos de &aacute;cido indol ac&eacute;tico (AIA) y AG, est&aacute;n relacionados con la regulaci&oacute;n del crecimiento del brote una vez se rompe la dormancia. Se ha comprobado que un factor importante, que contribuye tanto a la inducci&oacute;n de la tuberizaci&oacute;n como a la p&eacute;rdida de la dormancia, es el flujo simpl&aacute;stico que controla la asignaci&oacute;n de az&uacute;cares, el cual se inicia con un meristemo apical dormante aislado simpl&aacute;sticamente. La p&eacute;rdida de dormancia se asocia con la conexi&oacute;n simpl&aacute;stica del meristemo del brote con la red de floema del tub&eacute;rculo, y con una descarga simpl&aacute;stica en la regi&oacute;n de la yema, todo lo cual favorece el crecimiento activo de los nuevos brotes.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> hormonas, poscosecha, dormancia, propagaci&oacute;n.</p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>At harvest, and for a definite period, potato tubers (<i>Solanum tuberosum</i> L.) remain dormant. Defined as a period in which there is no visible bud growth, this condition is induced at the beginning of tuberization. Plant hormones are involved in all phases of dormancy. Although Abscisic Acid (ABA) and ethylene are necessary for its induction, only the former is needed for its maintenance. The levels of this hormone increase during tuber formation, remain steady during dormancy, and go down with active bud growth. The first of these processes depends on high levels of Gibberellic Acid (GA), while the interruption of dormancy is determined by an enhanced sensitivity to cytokinins. Once dormancy has been stopped, bud growth regulation is related to changes in Indole Acetic Acid (IAA) and GA levels. Starting from a symplastically isolated, dormant apical meristem, the (symplastic) flow that controls sugar allocation has been observed to contribute to both tuber induction and dormancy breakdown. The latter is associated to the symplastic connection between the apical meristem and the tuber's floem, and to a symplastic unloading into the bud region, all of which favors the active growth of the new buds.</p>     <p><b>Key words:</b> hormones, postharvest, tuber, dormancy, propagation.</p> <hr size="1"> &nbsp;     <p><font size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p>A diferencia de otros productos vegetales, la papa (<i>Solanum tuberosum</i> L.) se almacena completamente hidratada, caracter&iacute;stica que dificulta su transporte y la convierte en un producto altamente perecedero. Las p&eacute;rdidas anuales de estos tub&eacute;rculos en poscosecha fluct&uacute;an entre el 10 y 15%, siendo la brotaci&oacute;n prematura uno de los factores m&aacute;s limitantes (Firman y Allen, 2007). En los pa&iacute;ses andinos, los problemas asociados con p&eacute;rdidas durante el almacenamiento son menores, debido a que la oferta del producto es permanente todo el a&ntilde;o.</p>     <p>Seg&uacute;n Lang <i>et al.</i> (1987), durante el ciclo de vida los tub&eacute;rculos de la papa pueden presentar tres tipos de dormancia: endodormancia, paradormancia y ecodormancia. Inmediatamente despu&eacute;s de la formaci&oacute;n del tub&eacute;rculo, y por un periodo de tiempo determinado despu&eacute;s de la cosecha, los meristemos de las yemas presentan endodormancia y no brotan. Durante un almacenamiento prolongado, los tub&eacute;rculos pierden la endodormancia e inician la brotaci&oacute;n. Por lo general, el brote apical se torna dominante e inhibe el crecimiento de los otros brotes, los cuales contin&uacute;an en estado paradormante. Cuando los tub&eacute;rculos son almacenados a temperaturas inferiores a 3&deg;C no brotan, independientemente del grado de avance fisiol&oacute;gico de la dormancia, presentando un estado de ecodormancia (Suttle, 2007).</p>     <p>A pesar de los enormes progresos realizados en la &uacute;ltima d&eacute;cada, el conocimiento primario de los procesos que controlan la dormancia de este tub&eacute;rculo es incipiente. Se ha generado conocimiento reciente acerca de los efectos del estado de dormancia del tub&eacute;rculo sobre la expresi&oacute;n de genes, niveles de prote&iacute;na, actividad enzim&aacute;tica y contenido hormonal. Sin embargo, los procesos fundamentales que controlan la transici&oacute;n entre la detenci&oacute;n del ciclo celular (depresi&oacute;n metab&oacute;lica) y la reanudaci&oacute;n del crecimiento de los meristemos y su actividad metab&oacute;lica contin&uacute;an sin conocerse por completo (Suttle, 2007).</p>     <p>En Colombia, el nombre de papa criolla (<i>Solanum tuberosum</i> Grupo Phureja) corresponde a los morfot&iacute;pos que presentan tub&eacute;rculos con color de piel y carne amarillo (fenotipo yema de huevo) (Rodr&iacute;guez <i>et al.</i>, 2009). Aunque ocupa un lugar privilegiado por su aceptaci&oacute;n y caracter&iacute;sticas organol&eacute;pticas, la ausencia de un periodo de dormancia limita su uso a nivel dom&eacute;stico e industrial, debido a la alta perecibilidad que resulta de una r&aacute;pida brotaci&oacute;n. A su vez, esto determina que la comercializaci&oacute;n y el procesamiento se deban realizar en el menor tiempo posible (Bonilla <i>et al.</i>, 2009).</p>     <p>Las investigaciones que permitan comprender algunos de los factores relacionados con la ausencia de dormancia en los tub&eacute;rculos de la papa criolla son de gran importancia para fitomejoradores y productores de papa para consumo en fresco, procesada y como semilla, en la medida en que constituyen herramientas para mejorar la competitividad y generar nuevas opciones para el desarrollo del sector agr&iacute;cola de Colombia.</p>     <p>En este art&iacute;culo se revisan algunos mecanismos relacionados con el periodo de dormancia de los tub&eacute;rculos de la papa y los factores asociados que hasta ahora se han relacionado con su inducci&oacute;n o finalizaci&oacute;n. Entre estos factores se mencionan las hormonas, que desempe&ntilde;an un papel esencial en la regulaci&oacute;n de la dormancia, especialmente en las fases de inducci&oacute;n y progresi&oacute;n. Finalmente se revisa el papel del metabolismo de los az&uacute;cares, tanto en la inducci&oacute;n de la formaci&oacute;n de los tub&eacute;rculos, como en el progreso y la p&eacute;rdida de la dormancia.</p> &nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">Caracter&iacute;sticas generales de la dormancia</font></b></p>     <p>En la papa, los procesos de tuberizaci&oacute;n y dormancia tienen una estrecha vinculaci&oacute;n biol&oacute;gica (Claassens, 2002, Lulai, 2004; Vreugdenil, 2004). La inducci&oacute;n y el mantenimiento de la dormancia inician con la tuberizaci&oacute;n (Claassens, 2002; Nambara y Marion-Poll, 2005; Hancock <i>et al.</i>, 2008) y se pierden gradualmente despu&eacute;s de la cosecha, durante el almacenamiento (Suttle, 2007; Campbell <i>et al.</i>, 2008; Suttle y Destefano-Beltr&aacute;n, 2008). El periodo de dormancia est&aacute; regulado por una red compleja de reacciones metab&oacute;licas que ocurren en el citosol y en los plastidios, con evidencias que sugieren que la regulaci&oacute;n de la s&iacute;ntesis est&aacute; determinada por el estado metab&oacute;lico celular, factores gen&eacute;ticos y ambientales (Baguma <i>et al.</i>, 2003; Mukerjea y Robyt, 2005). Se considera que el fen&oacute;meno de dormancia o detenci&oacute;n del metabolismo (desarrollo) es una estrategia que favorece la supervivencia del tub&eacute;rculo en condiciones de estr&eacute;s ambiental (Suttle, 2007).</p>     <p>La dormancia del tub&eacute;rculo est&aacute; definida como la ausencia de crecimiento visible de los brotes (Suttle, 2007). La dormancia total se induce con la tuberizaci&oacute;n y se prolonga hasta el inicio de la brotaci&oacute;n, aunque, com&uacute;nmente y para fines pr&aacute;cticos, se utiliza el t&eacute;rmino dormancia en poscosecha, la cual empieza en el momento de la separaci&oacute;n del tub&eacute;rculo de la planta madre (Malagamba, 1997). En muchos estudios la duraci&oacute;n del periodo de dormancia del tub&eacute;rculo se ha medido utilizando la fecha de cosecha como punto de inicio. Sin embargo, en condiciones de campo, la fecha de cosecha puede variar de acuerdo con otros par&aacute;metros no relacionados, como fecha de siembra, clima y condiciones de campo (Suttle, 2007).</p>     <p>La tuberizaci&oacute;n se induce por se&ntilde;ales ambientales como d&iacute;as cortos, bajas temperaturas y mayor contenido de humedad en el suelo (Lulai, 2004; Cenzano <i>et al.</i>, 2007). Las fluctuaciones en la longitud del d&iacute;a se perciben en las hojas y determinan la floraci&oacute;n, y mediante se&ntilde;ales a los estolones v&iacute;a floema (Yu <i>et al.</i>, 2007), inducen la formaci&oacute;n de los tub&eacute;rculos (Rodr&iacute;guez-Falc&oacute;n <i>et al.</i>, 2007). La se&ntilde;al para la inducci&oacute;n de la tuberizaci&oacute;n se produce en las hojas a trav&eacute;s del fitocromo. A ra&iacute;z de esto, el &aacute;cido giber&eacute;lico (AG) activa una se&ntilde;al transmisible a la regi&oacute;n subapical del estol&oacute;n, la cual cambia la orientaci&oacute;n de la divisi&oacute;n celular, para producir expansi&oacute;n radial en lugar de crecimiento longitudinal (Hannapel <i>et al.</i>, 2004; Viola <i>et al.</i>, 2007; Cenzano <i>et al.</i>, 2007), mediante transporte apopl&aacute;stico hacia el meristemo apical y la regi&oacute;n subapical (Hancock <i>et al.</i>, 2008). Seguidamente se presenta una descarga de fotoasimilados en las c&eacute;lulas del par&eacute;nquima lateral, que causa un ensanchamiento de la regi&oacute;n subapical por la acumulaci&oacute;n de prote&iacute;nas y carbohidratos que son transformados en almidones permitiendo el desarrollo de los tub&eacute;rculos (Shewry, 2003; Cenzano <i>et al.</i>, 2007; Hancock <i>et al.</i>, 2008).</p>     <p>Viola <i>et al.</i> (2007) demostraron que la inducci&oacute;n de la tuberizaci&oacute;n y la elongaci&oacute;n del estol&oacute;n est&aacute;n asociadas con un cambio en la descarga del floema (de apopl&aacute;stica a simpl&aacute;stica) en la regi&oacute;n subapical anterior al meristemo. As&iacute;, la elongaci&oacute;n del estol&oacute;n se asocia con un meristemo apical activo que recibe un flujo simpl&aacute;stico continuo de metabolitos, y la tuberizaci&oacute;n con un meristemo apical dormante aislado simpl&aacute;sticamente hasta el inicio de la brotaci&oacute;n (Hancock <i>et al.</i>, 2008).</p>     <p>Una vez se induce la formaci&oacute;n del tub&eacute;rculo no hay divisi&oacute;n celular en el meristemo apical, permaneciendo las yemas inactivas, aunque las condiciones de humedad, temperatura y ox&iacute;geno en el medio sean &oacute;ptimas (Claassens, 2002; Prat, 2004; Suttle y Mornet, 2005; Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006; Destefano Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006a; Viola <i>et al.</i>, 2007; Campbell <i>et al.</i>, 2008). Luego de la separaci&oacute;n del tub&eacute;rculo de la planta, el floema del tub&eacute;rculo acumula sacarosa v&iacute;a apopl&aacute;stica y hay transporte activo de asimilados por toda la red de floema (Hancock <i>et al.</i>, 2008), dando como resultado la p&eacute;rdida gradual de la dormancia (Claassens, 2002; Law y Suttle, 2005; Suttle y Mornet 2005; Suttle <i>et al.</i>, 2005; Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2005; Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006a). As&iacute;, el tub&eacute;rculo cumple una doble funci&oacute;n al desempe&ntilde;arse como &oacute;rgano de almacenamiento y de propagaci&oacute;n (Agrawal <i>et al.</i>, 2008).</p>     <p>Una vez se interrumpe la dormancia, las se&ntilde;ales de iniciaci&oacute;n del crecimiento del brote inducen divisi&oacute;n celular y alargamiento, a semejanza de lo que ocurre en el estol&oacute;n antes de la tuberizaci&oacute;n (Lulai, 2004). Como los solutos est&aacute;n disponibles nuevamente, la conexi&oacute;n simpl&aacute;stica del tub&eacute;rculo se restablece (Hancock <i>et al.</i>, 2008), trayendo consigo un flujo simpl&aacute;stico de metabolitos y mol&eacute;culas de se&ntilde;alizaci&oacute;n que se difunden libremente en la zona meristem&aacute;tica (Viola <i>et al.</i>, 2007; Hancock <i>et al.</i>, 2008). Teniendo en cuenta la regulaci&oacute;n hormonal, la expresi&oacute;n de los genes y el metabolismo de los carbohidratos, Vreugdenil (2004) plantea que los mecanismos operativos que regulan la tuberizaci&oacute;n y el crecimiento de los brotes despu&eacute;s de la dormancia son similares y no deben considerarse como procesos opuestos e individuales.</p>     <p>Generalmente se considera que la dormancia se pierde cuando un tub&eacute;rculo contiene uno o m&aacute;s brotes con una longitud mayor de dos mil&iacute;metros (Viola <i>et al.</i>, 2007). Sin embargo, no es evidente si el crecimiento est&aacute; controlado dentro de los brotes (endodormancia) o por el resto del tub&eacute;rculo (paradormancia) (Viola <i>et al.</i>, 2007).</p>     <p>La longitud del periodo de dormancia depende del genotipo, las condiciones ambientales pre y poscosecha, la madurez del tub&eacute;rculo al momento de la cosecha y los da&ntilde;os mec&aacute;nicos presentados durante el crecimiento y el almacenamiento (Malagamba, 1997; Sonnewald, 2001; Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006; Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006a). En precosecha, los principales factores asociados a la reducci&oacute;n del periodo de dormancia son de naturaleza ed&aacute;fica y corresponden a: temperaturas altas, bajo contenido de humedad y baja fertilidad. En poscosecha dichos factores son: temperatura de almacenamiento (mayor a 10&deg;C), cantidad y tipo de luz, sanidad y manejo de los tub&eacute;rculos (Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006). La regulaci&oacute;n de estos procesos es importante para mantener tub&eacute;rculos de buena calidad y brotes vigorosos en los tub&eacute;rculos-semilla (Lulai, 2004), debido a que los productores de papa para semilla requieren m&eacute;todos seguros y eficaces para terminar la dormancia del tub&eacute;rculo y estimular prematuramente el establecimiento de nuevos cultivos (Suttle, 2004a; Alexopoulos <i>et al.</i>, 2007). </p>     <p>La p&eacute;rdida de la dormancia y el inicio del crecimiento del brote est&aacute;n acompa&ntilde;ados por numerosos cambios bioqu&iacute;micos, muchos de los cuales son perjudiciales para la calidad nutricional y el procesamiento de la papa (Claassens, 2002; Suttle, 2004b; Suttle y Mornet, 2005) y generan p&eacute;rdidas econ&oacute;micas considerables para productores y procesadores (Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006; Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006a; Campbell <i>et al.</i>, 2008; Suttle, 2009). </p> &nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">Control hormonal de la dormancia</font></b></p>     <p>En estos tub&eacute;rculos, las hormonas end&oacute;genas desempe&ntilde;an un papel esencial en la regulaci&oacute;n de la dormancia, especialmente en las fases de inducci&oacute;n y progresi&oacute;n (Suttle, 2004b; Suttle y Destefano-Beltr&aacute;n, 2008; Suttle y Destefano-Beltr&aacute;n, 2009; Sorce <i>et al.</i>, 2009). El periodo de dormancia del tub&eacute;rculo est&aacute; regulado por las concentraciones relativas de inhibidores y promotores de crecimiento, lo cual hace compleja la interpretaci&oacute;n de la interacci&oacute;n hormonal. A esto se suma el hecho de que los tejidos de los tub&eacute;rculos presentan sensibilidad diferencial a las hormonas, la cual adem&aacute;s cambia seg&uacute;n la edad fisiol&oacute;gica y el tiempo transcurrido despu&eacute;s de la cosecha (Viola <i>et al.</i>, 2007; Suttle, 2007). Auxinas, giberelinas (GA), citoquininas, &aacute;cido absc&iacute;sico (ABA), etileno y jasmonato han sido relacionados con el ciclo de vida del tub&eacute;rculo (Hannapel <i>et al.</i>, 2004). </p>     <p>El ABA y el etileno se consideran inhibidores del crecimiento, mientras las giberelinas y las citoquininas act&uacute;an como promotoras del desarrollo de los brotes (Sonnewald, 2001). El ABA es necesario para la iniciaci&oacute;n y el mantenimiento de la dormancia, mientras que las citoquininas est&aacute;n implicadas en el cese de la misma (Suttle, 2003; Suttle, 2004b; Destefano-Beltr&aacute;n y Suttle, 2004; Suttle y Destefano-Beltr&aacute;n, 2008).</p>     <p><b>&Aacute;cido absc&iacute;sico</b>    <br> El ABA es la hormona que regula el desarrollo y la supervivencia de las plantas en condiciones de estr&eacute;s (Lee <i>et al.</i>, 2006) y se considera el principal regulador del inicio y mantenimiento de la dormancia en tub&eacute;rculos de papa (Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006; Suttle y Destefano-Beltr&aacute;n, 2009). Sin embargo, los mecanismos que regulan el contenido de ABA durante la dormancia, as&iacute; como los lugares de s&iacute;ntesis y catabolismo a&uacute;n son desconocidos (Suttle <i>et al.</i>, 2005; Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2005; Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006a; Suttle y Destefano-Beltr&aacute;n, 2009).</p>     <p>El ABA se mueve v&iacute;a apoplasto, por el xilema, desde la ra&iacute;z hasta las hojas, donde su movimiento se da &uacute;nicamente por v&iacute;a simpl&aacute;stica (Hartung <i>et al.</i>, 2002). Para el mantenimiento de la dormancia se requiere la presencia continua de ABA, la cual resulta de un equilibrio din&aacute;mico entre su bios&iacute;ntesis y degradaci&oacute;n. La intensificaci&oacute;n de esta &uacute;ltima favorece progresivamente la p&eacute;rdida de la dormancia (Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006a). El ABA es un sesquiterpeno que determina una serie de eventos fisiol&oacute;gicos durante la formaci&oacute;n de los tub&eacute;rculos-semilla, como la acumulaci&oacute;n de compuestos de reserva, la prevenci&oacute;n de la brotaci&oacute;n precoz, la tolerancia a la deshidrataci&oacute;n y la inducci&oacute;n y el desarrollo de la dormancia (Kermode, 2005; Jim&eacute;nez <i>et al.</i>, 2006). Ortiz y Fl&oacute;rez (2008) encontraron que en variedades del Grupo And&iacute;gena, el ABA participa en el proceso de tuberizaci&oacute;n, inhibiendo el crecimiento de las yemas y retardando la formaci&oacute;n de estolones. Aunque en el tub&eacute;rculo, el contenido de ABA disminuye progresivamente durante el almacenamiento, no se conoce una concentraci&oacute;n m&iacute;nima que induzca la p&eacute;rdida de la dormancia, lo que sugiere que otros reguladores de crecimiento est&aacute;n involucrados en su control (Alexopoulus <i>et al.</i>, 2007).</p>     <p>Sonnewald (2001) y Suttle <i>et al.</i> (2005) encontraron que el ABA se metaboliza activamente en los tejidos del tub&eacute;rculo, alcanza su nivel m&aacute;ximo despu&eacute;s de cosecha, y disminuye progresivamente durante el almacenamiento hasta la p&eacute;rdida de la dormancia (Biemelt <i>et al.</i>, 2002; Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2005). Lulai y Suttle (2005) y Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i> (2006a) hallaron que en tub&eacute;rculos almacenados las concentraciones de ABA aumentan despu&eacute;s de la cosecha, y se mantienen durante el almacenamiento. Estas concentraciones basales de ABA pueden ser importantes en la regulaci&oacute;n de procesos fisiol&oacute;gicos como la dormancia y la suberizaci&oacute;n de heridas en tub&eacute;rculos de papa (Suttle <i>et al.</i>, 2006; Destefano-Beltr&aacute;n <i>et al.</i>, 2006a; Lulai <i>et al.</i>, 2008). Estos resultados sugieren que el contenido de ABA durante la dormancia del tub&eacute;rculo est&aacute; controlado por un equilibrio entre su s&iacute;ntesis y degradaci&oacute;n.</p>      <p>La identificaci&oacute;n de genes que regulan el metabolismo del ABA ha mostrado que estos, a su vez, est&aacute;n regulados tanto a nivel transcripcional como pos-transcripcional. </p>     <p><b>Citoquininas</b>    <br> Evidencias recientes sugieren que un incremento en el contenido de citoquininas est&aacute; asociado a la finalizaci&oacute;n de la dormancia, mientras que un incremento en el contenido de giberelinas es importante para la iniciaci&oacute;n del crecimiento de los brotes (Suttle, 2003). Las citoquininas son conocidas por su capacidad para estimular la divisi&oacute;n celular, y se ha observado que su concentraci&oacute;n disminuye en tejidos vegetales que est&aacute;n saliendo de la fase G-1 del ciclo celular (Francis y Sorrell, 2001). La inhibici&oacute;n del crecimiento de los meristemos en tub&eacute;rculos dormantes se asocia a la detenci&oacute;n del proceso de divisi&oacute;n de las c&eacute;lulas meristem&aacute;ticas del brote en la fase G-1 del ciclo celular (Campbell <i>et al.</i>, 2005). Los niveles end&oacute;genos de citoquininas son relativamente bajos en tub&eacute;rculos altamente dormantes, los cuales adem&aacute;s no responden a su aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena (Suttle, 2004b). El aumento en el contenido y la sensibilidad a las citoquininas puede ser el factor principal que conduce a la p&eacute;rdida de la dormancia, mientras que cambios en el contenido de &aacute;cido indolacetico (AIA) y AG pueden influir directamente en la regulaci&oacute;n del crecimiento del brote (Suttle, 2004b).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las citoquininas end&oacute;genas son agentes naturales de rompimiento de la dormancia en tub&eacute;rculos de papa (Suttle, 2004b). Est&aacute;n presentes en todo el tub&eacute;rculo y se distribuyen uniformemente entre el tejido apical, lateral e internodal en estado de dormancia. La p&eacute;rdida de la dormancia coincide con un aumento leve en los niveles basales libres de citoquininas en los brotes apicales y el tejido adyacente. Adem&aacute;s de un incremento en el contenido de citoquinina, la progresi&oacute;n de la dormancia se caracteriza por una sensibilidad creciente del tub&eacute;rculo dormante a las citoquininas. Inmediatamente despu&eacute;s de la cosecha, y durante el almacenamiento temprano en poscosecha, los tub&eacute;rculos son insensibles a las citoquininas ex&oacute;genas (Turnbull y Hanke, 1985; Suttle, 2002). Ortiz y Fl&oacute;rez (2008) encontraron en<i> S. tuberosum</i> - Grupo And&iacute;gena - cultivar Criolla Colombia, que concentraciones bajas de ABA y altas de citoquinina pueden favorecer la ausencia del periodo de dormancia en este cultivar diploide.</p>     <p>El crecimiento de los brotes est&aacute; acompa&ntilde;ado por incrementos end&oacute;genos tanto de AIA como de GA. As&iacute;, aunque la progresi&oacute;n de la dormancia del tub&eacute;rculo y el crecimiento del brote requieren la s&iacute;ntesis y la acci&oacute;n concertada de muchas hormonas, el ABA y las citoquininas parecen ser las principales en la regulaci&oacute;n de la dormancia (Suttle, 2004b).</p>     <p><b>Auxinas</b>    <br> Las auxinas naturales y sint&eacute;ticas, como es el caso del AIA y su derivado sint&eacute;tico, inhiben el crecimiento de los brotes en tub&eacute;rculos dormantes (Suttle, 2004a), aunque la evidencia sobre su papel es controvertida. Sorce <i>et al.</i> (2009) encontraron que en yemas dormantes de tub&eacute;rculos reci&eacute;n cosechados, el AIA libre se acumula principalmente en el meristemo apical, hojas y primordios de yemas laterales, al igual que en los tejidos vasculares que rodean el meristemo apical, mientras que al final del periodo de almacenamiento, &uacute;nicamente el primordio de las yemas axilares en crecimiento present&oacute; niveles apreciables de auxinas. Esto indica que el AIA no es directamente responsable de la inhibici&oacute;n de la brotaci&oacute;n, aunque las auxinas podr&iacute;an acortar el periodo de dormancia.</p>     <p>Los datos reportados no apoyan el efecto del AIA y de otras auxinas end&oacute;genas en el control de la dormancia del tub&eacute;rculo, pero sugieren su papel en el crecimiento del brote. Esto es consistente con la hip&oacute;tesis de que las auxinas son reguladores esenciales de la progresi&oacute;n del ciclo celular en todos los tejidos de la planta (Francis y Sorrell, 2001). Como tal, se requerir&iacute;a un umbral de concentraci&oacute;n de AIA para el crecimiento del brote, pero no para la iniciaci&oacute;n del crecimiento (Suttle, 2004b). El AIA est&aacute; relacionado con la inducci&oacute;n de los brotes, pues su concentraci&oacute;n aumenta en las yemas de los tub&eacute;rculos durante la p&eacute;rdida de la dormancia, contrastando con lo observado para ABA (Sorce <i>et al.</i>, 2005). De acuerdo con evidencias recientes, hormonas como el AIA, que induce la brotaci&oacute;n, tienen un papel decisivo en el control de la dormancia del tub&eacute;rculo, a pesar de que las hip&oacute;tesis cl&aacute;sicas atribuyen mayor importancia al equilibrio entre reguladores que promueven la dormancia y promotores que regulan la brotaci&oacute;n (Sorce <i>et al.</i>, 2009).</p>     <p><b>Giberelinas</b>    <br> El papel de las GA end&oacute;genas en la regulaci&oacute;n de la dormancia en tub&eacute;rculos de papa est&aacute; relacionado con cambios en los niveles end&oacute;genos durante la progresi&oacute;n natural de la dormancia (Suttle, 2004a). El incremento en el contenido end&oacute;geno de GA solo es evidente una vez se inicia el crecimiento de los brotes (Coleman <i>et al.</i>, 2001; Suttle, 2004b). Las giberelinas parecen tener poca importancia en la p&eacute;rdida de la dormancia, pero desempe&ntilde;an un papel fundamental sobre el control del crecimiento del brote (Viola <i>et al.</i>, 2007). La p&eacute;rdida de la dormancia se puede acelerar mediante la aplicaci&oacute;n de GA durante el crecimiento de los tub&eacute;rculos en la planta madre; sin embargo, la eficacia depende del grado de desarrollo de la planta y de la madurez de los tub&eacute;rculos en el momento de la aplicaci&oacute;n (Alexopoulos <i>et al.</i>, 2006).</p>     <p><b>Etileno</b>    <br> Los tub&eacute;rculos de la papa, al igual que otros &oacute;rganos de almacenamiento, producen cantidades limitadas de etileno (Suttle, 2003). La producci&oacute;n de etileno se incrementa inmediatamente despu&eacute;s de la cosecha y posteriormente baja (Cvikrova <i>et al.</i>, 1994). No es evidente si esta elevaci&oacute;n transitoria en la producci&oacute;n de etileno est&aacute; relacionada con la dormancia de los tub&eacute;rculos o con el estr&eacute;s causado por la cosecha (Suttle, 2004b). El efecto del etileno en la brotaci&oacute;n de los tub&eacute;rculos de papa se ha estudiado extensivamente. Rylski <i>et al.</i> (1974) y Suttle (2004b) demostraron que un tratamiento breve con etileno puede determinar la finalizaci&oacute;n prematura del periodo de dormancia del tub&eacute;rculo, mientras que un tratamiento continuo causa la inhibici&oacute;n del crecimiento del brote, con la acumulaci&oacute;n indeseable de los az&uacute;cares reductores (Prange <i>et al.</i>, 1998). Sin embargo, el efecto del etileno sobre la dormancia depende del momento y la duraci&oacute;n de la aplicaci&oacute;n (Alexoupulus <i>et al.</i>, 2007). El etileno y el ABA son conocidos por su acci&oacute;n sin&eacute;rgica y antag&oacute;nica en numerosos procesos de desarrollo. En tub&eacute;rculos de papa a&uacute;n no se han caracterizado la naturaleza ni el grado de interacci&oacute;n entre estas dos hormonas que promueven la dormancia (De Bruxelles y Roberts, 2001).</p>     <p>La producci&oacute;n de etileno aumenta cuando los tub&eacute;rculos salen de la dormancia e inician la brotaci&oacute;n. El significado fisiol&oacute;gico de este aumento no es claro, aunque se atribuye a un incremento en la respiraci&oacute;n. En ciertas condiciones se ha encontrado que el etileno acelera la salida de la dormancia. Su aumento puede estar relacionado con el papel del etileno end&oacute;geno en la terminaci&oacute;n de la dormancia, o con otros acontecimientos asociados al crecimiento temprano de los brotes (Suttle, 2003; Suttle, 2004b).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Jasmonatos y brasinosteroides</b>    <br> El desarrollo del tub&eacute;rculo es un proceso complejo que requiere la interacci&oacute;n de factores ambientales, bioqu&iacute;micos y gen&eacute;ticos. La evidencia de la acci&oacute;n de los jasmonatos en el desarrollo del tub&eacute;rculo tiene que ver con incrementos en las concentraciones internas, observados durante la formaci&oacute;n de los estolones (Cenzano <i>et al.</i>, 2007). Los jasmonatos est&aacute;n asociados con el inicio de la tuberizaci&oacute;n (Suttle, 2004b). La aplicaci&oacute;n de &aacute;cido jasm&oacute;nico (JA) incrementa el grosor del meristemo y reduce la longitud del primordio de la hoja en el &aacute;pice del estol&oacute;n, cuando est&aacute; en forma de gancho. En estolones hinchados, el tratamiento con JA causa una diferenciaci&oacute;n temprana del tejido vascular, especialmente de los elementos del xilema, y un alargamiento de los meristemos. El contenido end&oacute;geno de &aacute;cido jasm&oacute;nico se ha medido en tub&eacute;rculos en desarrollo y en brotes elongados (Abdala <i>et al.</i>, 2000), sin embargo, su papel en la dormancia a&uacute;n no ha sido determinado (Suttle, 2004b).</p>     <p>Los brasinosteroides (BS) son hormonas asociadas al crecimiento de las plantas, con un amplio espectro de actividad biol&oacute;gica, incluyendo la promoci&oacute;n e inhibici&oacute;n del crecimiento (Clouse y Sasse, 1998). Recientemente se ha demostrado que act&uacute;an sin&eacute;rgicamente con las auxinas (Prat, 2004). No obstante, aunque el tratamiento con brassinolide suprime la brotaci&oacute;n de los tub&eacute;rculos, tanto el efecto de las concentraciones internas de BS sobre la dormancia de los tub&eacute;rculos, como su posible efecto sobre el control de la misma son todav&iacute;a desconocidos (Suttle, 2007).</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">Otros compuestos</font></b></p>     <p>Los compuestos fen&oacute;licos son una clase diversa de productos naturales, muchos de los cuales tienen una actividad que inhibe el crecimiento. El peridermo de la papa es una fuente rica de fenoles. Estudios recientes han demostrado que la p&eacute;rdida de dormancia del tub&eacute;rculo est&aacute; acompa&ntilde;ada por una reducci&oacute;n en el contenido de &aacute;cido fen&oacute;lico y un incremento en los niveles de fenoles conjugados (Cvikrov&aacute; <i>et al.</i>, 1994). Aunque estos resultados sugieren que los compuestos fen&oacute;licos cumplen un papel en la regulaci&oacute;n de la dormancia del tub&eacute;rculo, no prueban su participaci&oacute;n en este proceso (Suttle, 2004b).</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">Dormancia y metabolismo de az&uacute;cares</font></b></p>     <p>El almid&oacute;n es el principal carbohidrato de reserva de la papa. Se sintetiza durante la formaci&oacute;n del tub&eacute;rculo y se degrada para proveer los carbohidratos necesarios para el crecimiento de los brotes (Claassens, 2002). Durante el ciclo de vida, el tub&eacute;rculo experimenta una transici&oacute;n funcional de vertedero acumulador de asimilados a fuente de asimilados para el desarrollo de los brotes (Viola <i>et al.</i>, 2007). En el desarrollo del tub&eacute;rculo, el par&eacute;nquima de almacenamiento convierte activamente asimilados solubles (sacarosa y amino&aacute;cidos) en reservas polim&eacute;ricas (almid&oacute;n y prote&iacute;na) (Fernie y Willmitzer, 2001). La tuberizaci&oacute;n se caracteriza por la inducci&oacute;n de descarga simpl&aacute;stica en la regi&oacute;n hinchada del estol&oacute;n, mientras que el brote apical constituye un dominio discreto de c&eacute;lulas aisladas simpl&aacute;sticamente del resto del tub&eacute;rculo. El cese del aislamiento simpl&aacute;stico del brote apical trae como consecuencia el inicio del crecimiento del mismo. Este cambio fisiol&oacute;gico est&aacute; relacionado con la acumulaci&oacute;n de carbohidratos y el posterior crecimiento del brote (Viola <i>et al.</i>, 2007). En la madurez, m&aacute;s del 70% de los carbohidratos de reserva del tub&eacute;rculo son almacenados como almid&oacute;n, convirti&eacute;ndose en solutos compatibles que son transportados para el sostenimiento de los brotes (Viola <i>et al.</i>, 2007).</p>     <p>La movilizaci&oacute;n y el transporte de carbohidratos y otros nutrientes, desde el par&eacute;nquima de almacenamiento hacia los brotes en crecimiento, es indispensable para la transici&oacute;n vertedero-fuente sufrida por el tub&eacute;rculo (Viola <i>et al.</i>, 2007), la cual puede estar antecedida de la activaci&oacute;n del vertedero (crecimiento del brote). Sin embargo, la p&eacute;rdida total de la dormancia se puede definir como el establecimiento de la relaci&oacute;n fuente-vertedero entre el brote (vertedero) y el par&eacute;nquima del almacenamiento (fuente).</p>     <p>En los d&iacute;as siguientes a la separaci&oacute;n del tub&eacute;rculo de la planta madre, dentro del mismo se presenta un cambio en el metabolismo de almacenamiento (s&iacute;ntesis de almid&oacute;n) y la movilizaci&oacute;n de las reservas, sugiriendo una transici&oacute;n fuente-vertedero que favorece el crecimiento de los brotes, los cuales inicialmente se encontraban aislados simpl&aacute;sticamente (Viola <i>et al.</i>, 2007).</p>     <p>Al evaluar el metabolismo de los carbohidratos durante el periodo de dormancia y brotaci&oacute;n, Claassens (2002) encontr&oacute; que durante la iniciaci&oacute;n de la primera hay s&iacute;ntesis de almid&oacute;n, mientras que al final de la misma predomina el desdoblamiento de esta mol&eacute;cula hacia sus mon&oacute;meros constituyentes, en este caso la sacarosa (Suttle, 2007). Se asume que este cambio funcional permite la difusi&oacute;n de sacarosa en el apoplasto de tub&eacute;rculos fuente, haciendo que quede disponible para la absorci&oacute;n en el floema y el transporte hacia los brotes (Viola <i>et al.</i>, 2007). Se puede concluir que los brotes de los tub&eacute;rculos dormantes son metab&oacute;licamente activos, aunque su crecimiento se ve limitado por el sustrato debido al aislamiento simpl&aacute;stico en que se encuentran, y por tanto favorecido por la reconexi&oacute;n simpl&aacute;stica. Esta reconexi&oacute;n se da por cambios en la descarga del floema, de la v&iacute;a apopl&aacute;stica a la simpl&aacute;stica, durante el desarrollo del tub&eacute;rculo. De all&iacute; la importancia del flujo plasmodesmatal en el ciclo de vida del tub&eacute;rculo de la papa.</p> &nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">Perspectivas futuras</font></b></p>     <p>Es necesario profundizar en el conocimiento de los factores asociados a la inducci&oacute;n de la tuberizaci&oacute;n, el desarrollo de los tub&eacute;rculos, el periodo de dormancia y la brotaci&oacute;n, el metabolismo de los az&uacute;cares y el almid&oacute;n, teniendo en cuenta su interacci&oacute;n compleja con las condiciones ambientales y la diversidad de mecanismos hormonales, enzim&aacute;ticos y moleculares que regulan este sistema en la zona ecuatorial.</p>     <p>En papa criolla es importante identificar los procesos bioqu&iacute;micos que regulan la bios&iacute;ntesis y la actividad de las hormonas durante la inducci&oacute;n y el desarrollo de los tub&eacute;rculos, para conocer los mecanismos responsables de esta actividad y poder explicar la raz&oacute;n de la ausencia del periodo de dormancia.</p>     <p>Es posible que en tub&eacute;rculos de papa criolla esta caracter&iacute;stica est&eacute; relacionada con un desbalance en el equilibrio ABA-citoquininas, debido a que en la fase final del desarrollo del follaje se sintetizan en mayor cantidad los inductores de la dormancia y la cosecha se realiza con el follaje verde antes de alcanzar su senescencia. </p>     <p>Adicionalmente, la ausencia de dormancia en los tub&eacute;rculos de la papa criolla podr&iacute;a estar asociada a la ausencia de aislamiento simpl&aacute;stico en el brote apical, lo que permite una r&aacute;pida conversi&oacute;n de carbohidratos almacenados en az&uacute;cares disponibles para el inicio de la brotaci&oacute;n, incluso antes de la senescencia del follaje, y esto trae como consecuencia la conectividad del floema, facilitando una r&aacute;pida brotaci&oacute;n. En la papa criolla a&uacute;n no se ha determinado si existe conectividad funcional entre floema y transporte simpl&aacute;stico durante el desarrollo de los brotes; tampoco se han establecido los mecanismos implicados en la regulaci&oacute;n de la descarga del floema. Este conocimiento permitir&iacute;a comprender los mecanismos asociados con el desarrollo y la madurez fisiol&oacute;gica de los tub&eacute;rculos en una planta con follaje fotosint&eacute;ticamente activo.</p>     <p>El desaf&iacute;o en el futuro es determinar cu&aacute;les factores ambientales, gen&eacute;ticos y hormonales controlan la tuberizaci&oacute;n y la progresi&oacute;n de la dormancia en los tub&eacute;rculos de la papa criolla, por ser un cultivo de inter&eacute;s estrat&eacute;gico para Colombia que, por efecto del termo-fotoperiodo, solo tuberiza en las condiciones de las monta&ntilde;as alto-andinas.</p>       <p><b>Literatura citada</b></p>     <!-- ref --><p>Abdala, G., G. Castro, O. Miersch y D. Pearce. 2000. Changes in jasmonate and gibberellins levels during development of potato plants (<i>Solanum tuberosum</i>). Plant Growth Regul. 36, 121-126.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-9965201000020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">Agrawal, L., S. Chakraborty, D.K. Jaiswal, S. Gupta, A. Datta y N. Chakraborty. 2008. Comparative proteomics of tuber induction, development and maturation reveal the complexity of tuberization process in potato (<i>Solanum tuberosum</i> L.). J. Proteome Res. 7(9), 3803-3817.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-9965201000020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Alexopoulos, A.A., K.A. Akoumianakis y H.C. Passam. 2006. Effect of plant growth regulators on the tuberisation and physiological age of potato (<i>Solanum tuberosum</i> L.) tubers grown from true potato seed. Can. J. Plant Sci. 86, 1217-1225.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-9965201000020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Alexopoulos, A.A., K.A. Akoumianakis, S.N. Vemmos y H.C. Passam. 2007. The effect of postharvest application of gibberellic acid and benzyl adenine on the duration of dormancy of potatoes produced by plants grown from TPS. Postharv. Biol.Technol. 46(1), 54-62.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-9965201000020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Baguma, Y., C. Sun, S. Ahlandsberg, J. Mutisya, S. Palmqvist, P. Rubaihayo, M. Magambo, T. Egwang, H. Larsson y C. Jansson. 2003. Expression patterns of the gene encoding starch branching enzyme II in the storage roots of cassava (Manihot esculenta Crantz). Plant Sci. 164, 833-839.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-9965201000020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Biemelt, S., M. Hajirezaei,&nbsp;E. Hentschel y U.&nbsp;Sonnewal. 2002. Comparative analysis of abscisic acid content and starch degradation during storage of tubers harvested from different potato varieties. Biomed. Life Sci. 43, 371-382. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-9965201000020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Bonilla, M.E., F. Cardozo y A. Morales. 2009. Agenda prospectiva de investigaci&oacute;n y desarrollo tecnol&oacute;gico para la cadena productiva de la papa en Colombia con &eacute;nfasis en papa criolla. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, Bogot&aacute;.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-9965201000020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Campbell, M.A., L.A. Beers, L.L. Huckle y J.C. Suttle. 2005. Chemically forced and natural dormancy progression in potato tubers induces similar patterns of gene expression. American Society of Plant Biologists, Rockville, MD.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-9965201000020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Campbell, M.A., E. Segear, L. Beers, D.C. Knauber y J.C. Suttle. 2008. Dormancy in potato tuber meristems: chemically induced cessation in dormancy matches the natural process based on transcript profiles. Funct. Integr. Genom. 8, 317-328.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-9965201000020000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Claassens, M.M.J. 2002. Carbohydrate metabolism during potato tuber dormancy and sprouting. Tesis de doctorado. Wageningen University, Wageningen, The Netherlands.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-9965201000020000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Cenzano, A., G. Abdala y B. Hause. 2007. Cytochemical immuno-localization of allene oxide cyclase, a jasmonic acid biosynthetic enzyme, in developing potato stolons. J. Plant Physiol. 164(11), 1449-1456.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-9965201000020000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Coleman, W.K., D.J. Donnelly y S.E. Coleman. 2001. Potato microtubers as research tools: a review. Amer. J. Potato Res. 78, 47-55.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-9965201000020000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Clouse, S.D. y J.M. Sasse. 1998. Brassinosteroids: essential regulators of plant growth and development. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 49, 427-451.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-9965201000020000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Cvikrov&aacute;, D., L.S. Sukhova, J. Eder y N.P. Korableva. 1994. Possible involvemet of abscisic acid, ethylene and phenolic acids in potato tuber dormancy. Plant Physiol. Biochem. 32, 685-691.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-9965201000020000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    De Bruxelles, G.L. y M.R. Roberts. 2001. Signals regulating multiple responses to wounding and herbivores. Crit. Rev. Plant Sci. 20, 487-521.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-9965201000020000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Destefano-Beltr&aacute;n, L.J. y J.C. Suttle. 2004. Regulation of ABA biosynthesis during potato tuber dormancy: molecular characterization of a putative potato ABA2 gene. p. 123. En: Annual Meeting of the American Society of Plant Biologists (Plant Biology 2004). Lake Buena Vista, FL.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-9965201000020000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Destefano-Beltr&aacute;n, L.J., D.C. Knauber, L.L. Huckle y J.C. Suttle. 2005. Changes in ABA biosynthesis and metabolism-related gene expression during meristem dormancy in potato tubers. p. 34. En: Abstract Book Plant Sciences Institute &quot;Meristems 2005&quot;. Ames, IA.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-9965201000020000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Destefano-Beltr&aacute;n, L.J., D.C. Knauber, L.L. Huckle y J.C. Suttle. 2006. Chemically forced dormancy termination mimics natural dormancy progression in potato tuber meristemos by reducing ABA content and modifying expression of genes involved in regulating ABA synthesis and metabolism. J. Expt. Bot. 57(11), 2879-2886.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-9965201000020000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Destefano-Beltr&aacute;n, L.J., D.C. Knauber, L.L. Huckle y J.C. Suttle. 2006a. Effects of postharvest storage and dormancy status an ABA content, metabolism, and expression of genes involved in ABA biosynthesis and metabolism in potato tuber tissues. Plant Mol. Biol. 61(4-5), 687-697.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-9965201000020000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Fernie, A.R. y L. Willmitzer. 2001. Molecular and biochemical triggers of potato tuber development. Plant Physiol. 127, 1459-1465.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-9965201000020000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Firman D.M. y E.J. Allen. 2007. Agronomic practices. pp. 719-738. En: Vreugdenhil, D., J. Bradshaw, C. Gebhardt, F. Govers, D.K.L. MacKerron y H.A. Ross (eds.). Potato biology and biotechnology advances and perspectives. Elsevier, Amsterdam.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-9965201000020000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Francis, D. y D.A. Sorrell. 2001. The interface between the cell cycle and plant growth regulators: a mini review. Plant Growth Regul. 33, 1-12.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-9965201000020000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Hancock, R.D., A.G. Roberts y R. Viola. 2008. A role for symplastic gating in the control of the potato tuber life cycle. Plant Signal Behav. 3(1), 27-29.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-9965201000020000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Hannapel, D.J., H. Chen, F.M. Rosin, K. Banerjee y P.J. Davies. 2004. Molecular controls of tuberization. Amer. J. Potato Res. 81, 5-16.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-9965201000020000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Hartung, W., A. Sauter y E. Hose. 2002. Abscisic acid in the xylem: where does it come from, where does it go to. J. Exp. Bot. 53, 27-32.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-9965201000020000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Jim&eacute;nez, J.A., D. Rodr&iacute;guez, O. Lorenzo, G. Nicol&aacute;s y C. Nicol&aacute;s. 2006. Characterization of a protein kinase (FsPK4) with an acidic domain regulated by abscisic acid and specifically located in Fagus sylvatica L. seeds. J. Plant Physiol. 163, 761-769.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-9965201000020000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Kermode, A.R. 2005. Role of abscisic acid in seed dormancy. J. Plant Growth Regul. 24, 319-344.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-9965201000020000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Lang, G.A., G.C. Martin y R.L. Darnell. 1987. Ende-, para- and ecodormancy: physiological terminology and classification for dormancy research. HortScience 22, 371-377.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-9965201000020000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Law, R.D. y J.C. Suttle. 2005. Chromatin remodeling in plant cell culture: patterns of DNA methylation and histona H3 and H4 acetylation vary during growth of asynchronous potato cell suspensions. Plant Physiol. Biochem. 43, 527-534.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-9965201000020000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Lee, K.H., H.Y. Kim, H.L. Piao, S.M. Choi, F. Jiang, W. Hartung, I. Hwang, J.M. Kwak, I.J. Lee e I. Hwang. 2006. Activation of glucosidase via stress-induced polymerization rapidly increases active pools of abscisic acid. Cell 126(6), 1109-1120.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-9965201000020000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Lulai, E.C. 2004. Proceedings from the symposium: recent advances in the physiology of tuberization and dormancy. Amer. J. Potato Res. 81, 251-252.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-9965201000020000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Lulai, E.C. y J.C. Suttle. 2005. Potato tuber absisic acid: concentration dynamics and involvement in wound response. pp. 775-777. En: 16th Triennial Conference of the European Association for Potato Research, Bilbao, Espa&ntilde;a.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-9965201000020000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Lulai, E.C., J.C. Suttle y S.M. Pederson. 2008. Regulatory involvement of abscisic acid in potato tuber wound-healing. J. Exp. Bot. 59(6), 1175-1186.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-9965201000020000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Malagamba, P. 1997. Producci&oacute;n de tub&eacute;rculos-semillas de papa. Fisiolog&iacute;a y manejo de tub&eacute;rculos-semillas de papa. Fasc. 2.2-97. Centro Internacional de la Papa (CIP). Lima.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-9965201000020000800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Mukerjea, R. y J.F. Robyt. 2005. Starch biosynthesis: further evidence against the primer nonreducing-end mechanism and evidence for the reducing-end two-site insertion mechanism. Carbohydr. Res. 340(13), 2206-2211.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-9965201000020000800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Nambara, E. y A. Marion-Poll. 2005. Abscisic acid biosynthesis and catabolism. Annu. Rev. Plant Biol. 56, 165-185.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-9965201000020000800036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Ortiz, L.Y. y V.J. Fl&oacute;rez. 2008. Comparaci&oacute;n cuantitativa de &aacute;cido absc&iacute;sico y citoquininas en la tuberizaci&oacute;n de Solanun tuberosum L. y Solanum phureja Juz et Buk. Agron. Colomb. 26(1), 32-39.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-9965201000020000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Prat, S. 2004. Hormonal and day length control of potato tuberization. pp. 574-596. En: Davies, P.J. (ed.). Plant hormones: biosynthesis, signal transduction, action. Kluwer Academic Publ., Dordrecht, The Netherlands.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-9965201000020000800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Prange, R.K., W. Kalt, B.J. Daniels-Lake, C.L. Liew, J. Walsh, P. Dean, R. Coffin y R.T. Page. 1998. Alternatives to currently used potato sprout suppressants. Postharvest News and Information 8, 37-41.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-9965201000020000800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Rodr&iacute;guez-Falc&oacute;n, M., J. Bou y S. Prat. 2007. Seasonal control of tuberization in potato: conserved elements with the flowering response. Annu. Rev. Plant Biol. 57, 151-180.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-9965201000020000800040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Rodr&iacute;guez, L.E., C.E. &Ntilde;&uacute;stez y N. Estrada. 2009. Criolla Latina, Criolla Paisa y Criolla Colombia, cultivares de papa criolla para el departamento de Antioquia (Colombia). Agron. Colomb. 27(3), 289-303.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-9965201000020000800041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Rylski, I., L. Rappaport e Y.K. Prat. 1974. Dual effects of ethylene on potato dormancy and sprout growth. Plant Physiol. 53, 658-662.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-9965201000020000800042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Shewry, P.R. 2003. Tuber storage proteins. Ann. Bot. 91, 755-769.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-9965201000020000800043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Sorce, C., R. Lorenzi, B. Parisi y P. Ranalli. 2005. Physiological mechanisms involved in potato (<i>Solanum tuberosum</i>) tuber dormancy and the control of sprouting by chemical suppressants. Acta Hort. 684, 177-186.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-9965201000020000800044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Sorce, C., L. Lombardi, L. Giorgetti, B. Parisi, P. Ranalli y R. Lorenzi. 2009. Indoleacetic acid concentration and metabolism changes during bud development in tubers of two potato (<i>Solanum tuberosum</i>) cultivars. J. 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Role of metabolism in ABA homeostasis during potato tuber dormancy. Amer. J. Potato Res. 86(2), 159.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-9965201000020000800054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Suttle, J.C., E.C. Lulai y L.J. Destefano-Beltr&aacute;n. 2006. Effects of wounding on tuber ABA content and expression of genes involved in ABA biosynthesis and metabolism. p. 209. En: Potato Association of America/Solanacae 2006. 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Symplastic connection is required for bud outgrowth following dormancy in potato (<i>Solanum tuberosum</i> L.) tubers. Plant Cell Environ. 30, 973-983.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-9965201000020000800057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Vreugdenil, D. 2004. Comparing potato tuberization and sprouting: opposite phenomena? Amer. J. Potato Res. 81, 275-281.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-9965201000020000800058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="verdana" size="2">    Yu, Y.Y., C.C. Lashbrook y D.J. Hannapel. 2007. Tissue integrity and RNA quality of laser microdissected phloem of potato. Planta 226(3), 797-803.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-9965201000020000800059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>   </font> </p>      ]]></body><back>
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