DOI: http://dx.doi.org/10.18273/revmed.v29n2-2016010

Acinetobacter baumannii: patógeno
multirresistente emergente

Ruben Dario Rodriguez Buenahora^*
Daniel Enrique Bustillo Zarate^**
Diana Carolina Caicedo Sanchez^***
Diana Cristina Cadena Sarmiento^****
Cristhyam Castellanos Gomez ^*****

Correspondencia: Dr. Ruben Dario Rodriguez Buenahora. Dirección: Calle 45 No. 22-107, el poblado. Giron. Santander. Colombia. Correo electrónico: rudar31@hotmail.com
Artículo recibido el 28 de Noviembre de 2015 y aceptado para publicación el 30 de Marzo de 2016.

RESUMEN

Introduccion: Acinetobacter baumannii es un bacilo Gram negativo oportunista, clasificado por la Sociedad Americana de Enfermedades Infecciosas como uno de los seis más importantes microorganismos multirresistentes alrededor del mundo. En Colombia, según informes del Ministerio de Salud y Protección Social, dentro de los microorganismos multirresistente aislados en unidades de cuidados intensivos del país en el año 2014, A. baumannii representó el 3,1%. Objetivo: revisar los aspectos relevantes en la epidemiología, hábitat natural, factores de riesgo y virulencia para la infección por A. baumannii, sus manifestaciones clínicas y diferentes mecanismos de resistencia frente a múltiples fármacos, las estrategias de manejo actual y en desarrollo para enfrentar este microorganismo y mecanismos encaminados a prevenir y controlar la aparicion del mismo. Metodologia de búsqueda: se realizó una búsqueda en las bases de datos LILACS, PubMed, SciELO, Imbiomed, Cochrane, Clinicalkey, Biblioteca Virtual en Salud, de 890 articulos se seleccionaron 254. Resultados: las especies de Acinetobacter pueden ser aisladas de objetos animados e inanimados. Crecen en casi todas las muestras de suelos y agua fresca. En el medio hospitalario, estos microorganismos han sido aislados de humidificadores, equipos de ventilación, hojas de laringoscopio, cortinas, piel del personal de salud, colchones, cojines y otros equipos. Sus factores de virulencia no han sido dilucidados en totalidad, entre ellos se encuentran proteína de membrana externa OmpaA, lipopolisacáridos y polisacáridos capsulares, vesículas de membrana externa, fosfolipasa C y D y alteración de las proteínas de unión de penicilina. Las manifestaciones clínicas son variadas, principalmente en entorno asociado a cuidado de la salud. Sus mecanismo de resistencia son múltiples, los cuales se agrupan en tres categorías: enzimas inactivadoras de antimicrobianos, limitación del acceso a las dianas bacterianas y mutaciones que alteran las dianas o funciones celulares. Los carbapenémicos aún son considerados como agentes de elección para las infecciones graves por A. Baumannii, con opciones terapeuticas adicionales como sulbactam, tobramicina, amikacina, tigeciclina, minociclina, doxiciclina y colistina. Investigadores han reportado interrupción de la transmisión de A. baumannii posterior al reforzamiento de medidas para prevención y control de infecciones, tales como higiene de manos, uso de métodos de barrera (tapabocas, guantes, entre otros) y exhaustiva limpieza y desinfección del ambiente hospitalario. En otros casos la transmisión es más difícil de interrumpir, requiriendo aislamiento de pacientes, asignación de personal asistencial para vigilancia, cultivos de vigilancia activa y cierre de las unidades. Conclusiones: consideramos primordial el manejo de los pacientes de acuerdo a la localización de la infección y el patrón de resistencia presente en las cepas de la unidad en particular. Es importante la creación de protocolos institucionales con escalones terapéuticos, considerando el sitio de la infección, gravedad del paciente, sensibilidad de la cepa propia de cada institución y el uso previo de antibióticos. MÉD.UIS. 2016;29(2):113-35.

Palabras clave: Acinetobacter Baumannii. Bacterias Gramnegativas. Epidemiologia. Factores de riesgo. Farmacorresistencia bacteriana. Virulencia.

ABSTRACT

Introduction: Acinetobacter baumannii is an opportunistic gram-negative bacillus, classified by the American Society of Infectious Diseases as one of the six major multiresistant microorganisms worldwide. In Colombia, according to reports from the Ministry of Health and Social Protection, within the MDR microorganisms isolated in intensive care units in the country in 2014, A. baumannii accounted for 3.1%. Objective: to review the relevant aspects of the epidemiology, natural habitat and virulence risk factors for infection by A. baumannii, its clinical manifestations and different mechanisms of multidrug resistance, current management strategies and developing to address this microorganism and mechanisms to prevent and control the appearance of it. Methodology: search in the LILACS, PubMed, SciELO, Imbiomed, Cochrane, ClinicalKey, Virtual Health Library of 890 data items were selected 254. Results: Acinetobacter species can be isolated from animate and inanimate objects. They grow in almost any soil samples and fresh water. In the hospital environment, these microorganisms have been isolated from humidifiers, ventilation equipment, laryngoscope blades, curtains, skin health personnel, mattresses, cushions and other equipment. Virulence factors have not been elucidated at all, including OmpaA outer membrane protein, lipopolysaccharides and capsular polysaccharides, outer membrane vesicles, phospholipase C and D and alteration of penicillin binding proteins are. The clinical manifestations are varied, mainly in environment associated with health care. Its mechanism of resistance are many, which are grouped into three categories: antimicrobial-inactivating enzymes, limiting access to bacterial and mutations that alter cell functions targets or targets. Carbapenems are still regarded as agents of choice for serious infections by A. baumannii, with additional therapeutic options such as sulbactam, tobramycin, amikacin, tigecycline, minocycline, doxycycline and colistin. Researchers have reported outage of A. Baumannii after the strengthening of measures for prevention and control of infections, such as hand hygiene, use of barrier methods (masks, gloves, etc.) and thorough cleaning and disinfection of the hospital environment. In other cases the transfer is more difficult to terminate, requiring isolation of patients, caregivers allocation for surveillance, active surveillance cultures and closing units. Conclusions: in the primary treatment of patients according to the location of the infection and the resistance pattern present in the strains of the particular unit. It is important to create institutional protocols for therapeutic steps, considering the site of infection, severity of the patient's own strain sensitivity of each institution and previous use of antibiotics. MÉD.UIS. 2016;29(2):113-35.

KEYWORDS: Acinetobacter baumannii. Gram-negative Bacteria. Epidemiology. Risk factors. Drug Resistance Bacterial. Virulence.

¿Cómo citar este artículo?: Rodríguez RD, Bustillo DE, Caicedo DC, Cadena DC, Castellanos C. Acinetobacter baumannii: patógeno multirresistente emergente. MÉD.UIS. 2016;29(2):113-35.

INTRODUCCIÓN

La resistencia a los antimicrobianos en bacilos gram negativos es un reto diario en el entorno hospitalario. De hecho, son responsables del 45% al 70% de la neumonía asociada a ventilación mecánica¹, el 20% al 30% de las infecciones del torrente sanguíneo relacionadas con el catéter, y comúnmente causa de sepsis adquirida en sitio de herida quirúrgica o infección de vías urinarias². En estas situaciones, la temprana administración de un adecuado cubrimiento antibiótico es crucial para la evolución del paciente, principalmente cuando los criterios de sepsis severa están presentes³.

Tasas de resistencia alarmantes han sido reportadas alrededor del mundo, restringida casi exclusivamente al entorno hospitalario hasta comienzo del presente siglo, este problema se ha registrado en forma creciente en pacientes en ambientes asociados al cuidado de la salud^4,5, e incluso infecciones adquiridas en la comunidad⁶. Las bacterias de la familia Enterobactereaceas y los bacilos Gram negativos no fermentadores, Pseudomona spp., Acinetobacter baumannii y Stenotrophomonas malthopilia, representan la mayor parte del problema⁷. Esta resistencia puede ser el resultado de la síntesis de enzimas inactivadoras del antibiótico o debido a mecanismos no enzimáticos⁸. Ambos pueden ser expresados intrínsecamente por una determinada especie (cromosómico) o adquirido de un subconjunto de cepas especiales (selección clonal) que los desarrolla como consecuencia de mutaciones de genes cromosómicos que conllevan a un aumento de la expresión de mecanismos de resistencia intrínsecos, por ejemplo enzimas inactivadoras del antibiótico, bombas de flujo, entre otros; o por transferencia horizontal de elementos genéticos móviles que transportan los genes de resistencia, principalmente plásmidos, que puede conferir un fenotipo de resistencia a múltiples fármacos⁸.

A. baumannii es un bacilo Gram negativo oportunista, responsable del 2% al 10% de las infecciones hospitalarias causadas por bacterias Gram negativas⁹. Es clasificado por la Sociedad Americana de Enfermedades Infecciosas como uno de los seis más importantes microorganismos multirresistentes alrededor del mundo¹⁰. El género Acinetobacter ha sufrido muchos cambios taxonómicos en los últimos años, y la especie A. baumannii no fue designada formalmente hasta el año 1986¹¹. La infección por esta bacteria tiene una alta incidencia entre individuos inmunocomprometidos, particularmente con estancia hospitalaria prolongada, igual o mayor a 90 días¹². Sobreviven en ambientes acuáticos¹³, colonizan la piel y han sido aisladas de secreciones bronquiales y orofaríngeas en individuos infectados¹⁴.

La Organización Mundial de la Salud ha designado recientemente la resistencia a los antimicrobianos como una de los tres problemas más importantes que enfrenta la salud humana¹⁵. Los más importantes patógenos multirresistentes han sido agrupados en el acrónimo ESKAPE, encontrando el Enterococcus faecium, Staphylococus aureus, Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii, Pseudomona aeruginosa y Enterobacter sp.¹⁶. En este artículo se tiene como objetivo revisar los aspectos relevantes en la epidemiologia, hábitat natural, factores de riesgo y virulencia para la infección por A. baumannii, sus manifestaciones clínicas y diferentes mecanismos de resistencia frente a múltiples fármacos, las estrategias de manejo actual y el desarrollo para enfrentar este microorganismo y mecanismos encaminados a prevenir y controlar la aparicion del mismo.

Se realizó una búsqueda en las bases de datos de LILACS, PubMed, SciELO, Imbiomed, Cochrane, Clinicalkey, Biblioteca Virtual en Salud (BVS). Se utilizó como palabras clave Acinetobacter baumannii, epidemiología, factores de riesgo, hábitat, farmacorresistencia bacteriana, virulencia, quinolonas, polimixina, colistina, carbapenémicos, β-láctamicos, tetraciclina, aminoglicósidos. Se decidió usar estas palabras teniendo en cuenta los objetivos del artículo; se eligieron artículos publicados entre los años 2000-2015, se seleccionaron artículos publicados en inglés y español o traducidos a estos idiomas publicados en revistas indexadas a estas bases de datos. Se seleccionaron artículos de trabajos originales, revisiones de tema, metanálisis, estudios observacionales de magnitud suficiente, preferentemente multicéntricos y estudios controlados aleatorizados. Se evaluaron manualmente los artículos, se excluyeron estudios realizados fuera del intervalo de tiempo mencionado, a excepción de artículos de referencia para definiciones, clasificaciones y soporte histórico. Se contó con 890 referencias en total, seleccionando sólo los artículos que se encuentran referenciados en este trabajo teniendo en cuenta el objetivo de la publicación, el tipo de artículo, el impacto que estos generaron y el aporte para enriquecer este trabajo (Ver Figura 1).

RESULTADOS

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA DE A. BAUMANNII

El microbiólogo holandés Beijerinck fue el primero en describir este microorganismo que denominó Micrococcus calcoaceticus, el cual aisló del suelo¹⁷. La designación del género actual, Acinetobacter (del griego "akinetos", es decir, no móviles), fue propuesto inicialmente por Brisou y Prevot¹⁸ en 1954 para diferenciar los microorganismos móviles de los inmóviles dentro del género Achromobacter, el reconocimiento oficial del género Acinetobacter fue dado en 1971 por el Subcomité de Taxonomía de Moraxella y bacterias afines en 1971¹⁹.

El género Acinetobacter actualmente comprende cocobacilos Gram negativos, estrictamente aeróbicos, no fermentadores, inmóviles, no esporulados, catalasa positivos, oxidasa negativos, con un contenido de ADN G + C de 39% a 47%20. Con los estudios de hibridación ADN-ADN realizados por Bouvet y Grimnot¹¹ en 1986 se referenciaron 12 especies, el género ahora consta de 26 especies nombradas y nueve especies genómicas²¹. Cuatro especies de Acinetobacter, A. calcoaceticus, A. baumannii, Acinetobacter especie genómica 3 o A. pitii y Acinetobacter especie genómica 13TU o A. nosocomialis, tienen fenotipo similar que los hace difícil de diferenciar, denominándose frecuentemente como complejo A. baumannii-calcoaceticus²². Esta designación puede ser engañosa ya que la especie A. calcoaceticus no ha sido implicada en enfermedad clínica, mientras las otras tres especies del complejo son quizás las especies clínicamente más significativas en infección adquirida en la comunidad y nosocomial; la especie A. calcoaceticus es la que ha dado nombre al complejo, siendo a su vez benigna, por lo cual no es apropiado el uso de esta denominación en el contexto clinico²¹.

Los organismos pertenecientes a este género son a menudo difícil de decolorar, identificándose a menudo como gram positivos. Crecen bien en medios sólidos que son usados en forma rutinaria en laboratorios de microbiología clínica, tales como agar sangre de carnero o agar de soja tríptico. Forman suaves, a veces mucoides, colonias de color blanco grisáceo; las colonias del complejo A. baumannii-calcoaceticus se asemejan a las de las Enterobacterias, con un diámetro de colonia de 1.5 a 3 mm, mientras la mayoría de las otras especies de Acinetobacter producen colonias más pequeñas y translúcidas²¹.

No existe una prueba metabólica definitiva que permita distinguir Acinetobacter de otras bacterias Gram-negativas no fermentadores. Un método que se utiliza a menudo para identificarla a nivel de género se basa en la capacidad de la cepa mutante A. baylyi BD413 trpE27 de ser transformado por cualquier especie de Acinetobacter de un fenotipo tipo ADN crudo a ADN salvaje, es decir, el ensayo de transformación de Juni17. Mientras que para la identificación a nivel de especie, las 28 pruebas fenotípicas disponibles han demostrado ser 95,6% efectivas en la identificación de Acinetobacter derivados de la piel humana. Sin embargo, las pruebas fenotípicas solo han demostrado ser ineficaces en la identificación de las cepas genómicas de Acinetobacter descubiertas más recientemente²³. Métodos de diagnóstico moleculares más avanzadas han sido desarrollados para la identificación de Acinetobacter a nivel de especies, éstas incluyen: análisis amplificado del gen de restriccion 16S ARNr²⁴, análisis de alta resolución de huellas digitales por polimorfismo de la longitud de los fragmentos amplificados ²⁵, ribotipificación²⁶, espaciador huellas digitales ARNt27, análisis de restricción de la secuencia del espaciador intergenico 16S-23S ARNr²⁸, análisis de secuencia de la región espaciadora del gen 16S-23S ARNr²⁹ y secuenciación del gen rpoB (ARN polimerasa subunidad β)³⁰.

En los Estados Unidos, se reporta que entre las infecciones asociadas al cuidado de la salud causadas por A. baumannii, las del torrente sanguíneo y la neumonía asociada a ventilador mecánico son la más prevalentes con el 2% y 6%, respectivamente³¹, en Europa, se reporta como el noveno patógeno más común en infecciones hospitalarias del torrente sanguíneo³² y en Latinoamérica alcanza el 5,3% de todos los aislados de bacteriemias nosocomiales³³. De acuerdo a lo establecido por el reporte global³⁴ y para Latinoamerica³⁵ de SENTRY, programa de vigilancia internacional que inició en 1997 para monitorizar la incidencia y la susceptibilidad antimicrobiana de los patógenos causantes de infecciones adquiridas en la comunidad y nosocomial, las tasas de resistencia a carbapenémicos son más elevadas en Latinoamérica a comparación de Estados Unidos y Europa, se estableció que Acinetobacter sp. fue el microorganismo más prevalente y presentó las mayores tasas de resistencia bacteriana en Latinoamérica (10%) a comparación de otras regiones evaluadas, en las cuales se observó resistencia alrededor del 5%. De acuerdo al programa de vigilancia MYSTIC, programa de recolección de información de test de susceptibilidad anual a meropenem, las tasas de resistencia al meropenem, imipenem, ceftazidima, piperacilina-tazobactam, ciprofloxacina y gentamicina en América Latina parecen estar entre las más altas en el mundo³⁶. Por ejemplo, solo el 71% de las cepas aisladas fueron sensibles a meropenem o imipenem en una evaluación de un programa de vigilancia en el período 2002-2004³⁶ y en un estudio de vigilancia realizado en Argentina, Brasil, Chile y Colombia en el periodo 1997-2001, las tasas de resistencia fueron más altas en Argentina, pero ningún país estuvo exento de cepas resistentes a múltiples fármacos³⁷. Una variedad de carbapenemasas se han identificado en A. baumannii aislados en América Latina, incluyendo IMP-1 e IMP-6 en Brasil^38,39, OXA-23 en Brasil y Colombia^40,41 y OXA- 58 en Argentina⁴².

En Colombia, según informes del Ministerio de Salud y Protección Social, dentro de los microorganismos multirresistentes aislados en Unidades de Cuidados Intensivos (UCI) del país en el año 2014, A. baumannii representó el 3,1%, con altos porcentajes de resistencia frente a los Carbapenémicos; sin embargo, comparando los datos con los reportados en el año 2013, se observó una ligera disminución en el porcentaje de resistencia a esta familia de antibióticos oscilando entre 46,4% y 54,7%. También se observó incremento en la resistencia frente a colistina en relación a lo reportado el año 2013⁴³. De acuerdo con el centro internacional de entrenamiento e investigación medica, a traves de su grupo para el estudio de la resistencia nosocomial en Colombia, en un estudio de vigilancia fenotípica y molecular de la resistencia antimicrobiana de bacilos gram negativos aislados durante el periodo de enero de 2009 a diciembre de 2012 en UCI de 23 clínicas y hospitales en Colombia, se estableció que los bacilos gram negativos continuan siendo los microorganismos más frecuentemente aislados, representando A. baumannii el 19.3%. En este periodo de tiempo A. baumannii conservó un perfil fenotípico de multirresistencia, presentando un incremento en la resistencia a carbapenémicos a lo largo de los años, la OXA-23 fue la carbapenemasa más frecuentemente detectada en el país⁴⁴.

Debido a la predilección de A. baumannii por colonizar e infectar pacientes en estado crítico, que a menudo tienen un mal pronóstico independientemente de complicaciones infecciosas secundarias, ha sido difícil determinar el verdadero impacto clínico de este patógeno, existiendo controversia en la literatura^45,46. La mortalidad asociada por A. baumannii se determina entre el 26% al 68%^46,47; sin embargo, es muy difícil determinar en estos pacientes la mortalidad atribuible a la infección independientemente de la gravedad de sus enfermedades subyacentes. Estudios recientes concluyeron que la infección o la colonización por Acinetobacter se asocia a un incremento de la mortalidad^47,48, pero muchos de estos estudios estaban limitados por el pequeño tamaño de la muestra, las diferencias metodológicas, y la dificultad para controlar de forma adecuada la gravedad de la enfermedad de base del paciente. Otros estudios que controlaron de forma rigurosa la gravedad de la enfermedad no encontraron que la infección por Acinetobacter fuera un factor independiente de mortalidad⁴⁶. Por lo cual se puede considerar que la infección por Acinetobacter es un marcador de aumento de la mortalidad en pacientes con enfermedad subyacente grave más que un predictor independiente de mortalidad⁴⁷.

El control y el manejo de las infecciones hospitalarias se han convertido en un problema fundamental para la atención en salud. Las infecciones adquiridas en los hospitales incrementan la morbilidad, la mortalidad y la estancia hospitalaria, además causan un enorme impacto en los costos. Por ejemplo, se considera que el aumento promedio en los Estados Unidos por cada una de estas infecciones supera los US$ 15.000⁴⁹. La infección por Acinetobacter se asocia con un incremento en la morbilidad y una prolongación de la estancia hospitalaria. Un estudio retrospectivo mostró que los pacientes con bacteriemia por Acinetobacter presentaban una prolongación del tiempo de requerimiento de ventilación mecánica y de estancia en UCI en 5 días, en comparación con pacientes críticamente enfermos pero sin bacteremia por este microorganismo⁵⁰. La infección por Acinetobacter multirresistente ha demostrado prolongar en forma significativa la duración de la estancia en UCI, en promedio 6 días, y la media de estancia hospitalaria global en promedio en 18 días⁴⁶.

Las especies de Acinetobacter se consideran microorganismos poco virulentos, salvo en pacientes críticamente enfermos o inmunocomprometidos, por lo que se asocian más a menudo con infecciones nosocomiales que comunitarias⁵¹. Sin embargo, en regiones tropicales existen reportes, de neumonía adquirida en la comunidad ocasionada por A. baumannii, que comúnmente se presentan en meses húmedos y cálidos^52,53. Entre los factores de riesgo que predisponen a los pacientes a la colonización o infección por cepas de A. baumannii multirresistente se encuentran los factores dependientes del hospedero como enfermedad grave, infección o sepsis previa, cirugía mayor reciente, traumatismo, quemaduras, y factores externos como la estancia hospitalaria prolongada, ingreso prolongado en UCI, ingreso en un servicio donde A. baumannii sea endémico, exposición a equipo médico contaminado, ventilación mecánica, uso de dispositivos intravasculares, sonda vesical, tubos de drenaje^54-56; así mismo se ha asociado el uso previo de antimicrobianos con la colonización e infección por Acinetobacter, situación que refuerza la necesidad de un uso prudente de los antimicrobianos^54,57,58.

HÁBITAT NATURAL

Las especies de Acinetobacter pueden ser aisladas de objetos animados e inanimados, crecen en casi todas las muestras de suelos y agua fresca⁵¹. En el medio hospitalario, estos microorganismos han sido aislados de humidificadores, equipos de ventilación, hojas de laringoscopio, cortinas, piel del personal de salud, colchones, cojines y otros equipos^52,59,60. Se ha reportado una supervivencia en superficies secas mayor a siete días para A. lwoffi y mayor a 25 días para A. baumannii. A. calcoaceticus sobrevive hasta 13 días en superficies de formica⁶¹. La persistencia de las especies de Acinetobacter en las superficies medioambientales es su característica más distintiva entre los patógenos nosocomiales, explicando su mayor patogenicidad entre pacientes hospitalizados⁶¹. No todas las especies del género Acinetobacter tienen su hábitat natural en el medio ambiente; aunque un estudio sistemático para investigar la presencia natural de los distintas especies de Acinetobacter en el medio ambiente no ha sido realizado⁶².

Un estudio epidemiológico realizado por Seifert et al.²³ encontró que el 43% de los individuos no hospitalizados estaban colonizados por especies del género Acinetobacter. Las especies aisladas con mayor frecuencia fueron A. lwoffii (58%), A. johnsonii (20%), A. Junii (10%), y Acinetobacter especie genómica 3 (6%). En un estudio similar realizado por Berlau et al.⁶³ se aisló especies de Acinetobacter en el 44% de portadores asintomaticos, siendo las especies mas prevalentes A. lwoffii (61%), Acinetobacter especies genómica 15BJ (12%), A. radioresistens (8%) y Acinetobacter especie genómica 3 (5%). De cauerdo a los resultados obtenidos en el estudio de Buxton et al.⁶⁴ un tercio de los trabajadores sanitarios presentaron colonización transitoria por A. calcoaceticus en sus manos; la faringe, vagina y recto fueron sitios excepcionales de colonización. Existen informes de aislamientos ocasionales de A. baumannii apartir de mamíferos, piojos y verduras, aunque hay controversia si estas cepas, que son poco frecuentes en los animales, sean el resultado de contaminación del medio ambiente por reservorios primarios del ambiente hospitalario o son reservorios naturales alternativos de esta especie⁶⁵.

FACTORES DE VIRULENCIA

Otro factor de virulencia en estudio es el Lipopolisacárido (LPS) que contiene la fracción de lípido A, el núcleo de hidratos de carbono y el antígeno O. En un estudio realizado por Luke et al.⁶⁹ se investigó el papel del LPS en la patogénesis de la bacteria, mediante el empleo de una cepa mutante que carecía de la glucotransferasa del LPS tipo B que produjo un LPS con solamente dos residuos de carbohidratos unidos al lípido A. Este mutante mostró menor resistencia al suero humano y menor supervivencia en modelos de ratas con infección de tejidos blandos, a comparación con la cepa no manipulada, lo que indica el papel de los residuos de hidratos de carbono de los LPS en la patogénesis. La proteina CD14 presente en la membrana plasmática de las células del hospedero, desempeña un papel importante en la erradicación de A. baumannii desde el pulmón, mediante la interacción con el LPS, lo que sugiere un rol de estos en la activación la respuesta inmune⁷⁰.

Fregolino et al.⁷¹ reportaron las estructuras de los polisacáridos capsulares de dos cepas aisladas de A. baumannii, revelando un aminopolisacárido lineal conformado por tres residuos de carbohidratos en una cepa y una pentasacárido ramificado en la otra. Además del LPS, los polisacáridos capsulares también han sido identificados como factor de patogenicidad en A. baumannii. En un estudio realizado por Russo et al.⁷² donde se usaron mutantes en el gen ptk o epsA, condujo a la producción de cápsulas bacterianas alteradas, observándose menor crecimiento en suero humano y liquído ascítico, al compararlas con cepas silvestres. Ademas, se desmostró en un modelo de infección de tejidos blandos en ratas, que las cepas con la capsula alterada fueron completamente eliminadas a las 24 horas posinfección, mientras que cepas silvestres persistieron en una cantidad mayor a 10⁷ bacterias/ml en el mismo tiempo. Por lo que se plantea que los polisacáridos capsulares desempeñan un papel importante en la protección de las bacterias de la respuesta inmune innata del huésped.

Las vesículas de membrana externa están constituida por componentes de la membrana externa, proteínas periplásmicas, fosfolípidos y LPS, estas han sido implicadas tambien en la virulencia del A. baumannii, favoreciendo la entrada de factores de virulencia en las células del hospedero, la transferencia horizontal de los genes y la protección de las bacterias a la respuesta inmune^73,74. Un análisis proteómico de estas vesículas identificó la presencia de las proteínas OmpA, proteasas y hemolisinas, de tal forma que las vesículas facilitarían la entrada al interior de las células eucariotas de la OmpA y de esta forma se induciría la muerte celular, como fue desmostrado por los estudios de Jin et al.⁷⁵ quienes estableceieron que la exposición de células eucariotas a las vesículas de membrana externa de una cepa deficiente de OmpA no producía muerte celular.

Las fosfolipasas bacterianas son enzimas lipolíticas que catalizan la escisión de fosfolipidos, la alteración de genes de la fosfolipasa D presentes en A. baumannii reduce su capacidad de supervivencia en el suero humano y la capacidad para invadir las células epiteliales. Se considera que estas enzimas contribuyen en la patogénesis, favoreciendo la lisis de la células del huésped, mediante la escisión de los fosfolipidos presentes en la membrana celular y degradación de los fosfolipidos presentes en las barreras mucosas, favoreciendo la entrada del patógeno⁷⁶. En un estudio realizado por Camarena et al.⁷⁷ se observó que la inactivación de uno los genes responsaables de la Fosfolipasa C conllevó a la disminución de la habilidad del patógeno para inducir muerte celular en las células epiteliales del huésped a comparación con cepas no manipuladas.

Las Proteínas de Unión a Penicilina (PBP) generalmente se asocian con la unión y la inactivación de los antibióticos β-lactámicos. Sin embargo, las proteinas PBP también participan en las etapas finales de la biosíntesis de la capa de peptidoglicano y por tanto contribuyen a la estabilidad de la célula bacteriana⁷⁸. En un estudio realizado por Russo et al.⁷² donde se usó una cepa mutante en el gen pbpG, que codifica PBP7/8, mostró un crecimiento reducido en liquido ascítico y suero humano. Un análisis por microscopía electrónica de estas cepas mutantes y silvestres mostró una diferencia en la morfología bacteriana, apoyando la idea de que la falta de PBP7/8 puede afectar a la estabilidad celular, posiblemente a través de efectos sobre la capa de peptidoglicano.

MANIFESTACIONES CLÍNICAS

La neumonía asociada a ventilador es comúnmente vinculada a infección por A. baumannii⁷⁹. Largos periodos de hospitalización, tiempo prolongado de ventilación mecánica y uso previo de antibióticos son los factores de riesgo reconocidos. Se han descrito brotes nosocomiales por manos de profesionales de la salud colonizadas y pobre higiene personal²¹. Ventiladores contaminados y equipo de cuidado respiratorio son también otras fuentes de transmisión y factores de riesgo para esta patología⁸⁰. En grandes estudios de vigilancia realizados en Estados Unidos, entre 5% y 10% de los casos de neumonía adquiridas en UCI se debieron a A. baumannii⁸¹.

Han sido reportados casos de neumonía adquirida en la comunidad en regiones tropicales de Australia y Asia^82,83. Se caracteriza por un curso clínico fulminante, secundario a bacteriemia, con tasas de mortalidad del 40% al 60%⁸³. Aunque es muy poco frecuente la aparición de enfermedad por este microorganismo en personas inmunocompetentes, se observó en estos casos un historial de excesivo consumo de alcohol, y se asoció como probable fuente de infección la presencia de este microorganismo como parte de la flora de la faringe⁸².

Se ha observado que A. baumannii puede en forma ocasional causar infecciones de piel y tejido blando fuera de la población militar, en un estudio realizado por Gaynes et al.⁸¹ este microorganismo fue responsable del 2,1% de las infecciones en piel y tejidos blandos adquiridas en UCI. Es un patógeno bien conocido en unidades de quemados y puede ser difícil de erradicar en este tipo de pacientes⁸⁵, en un estudio retrospectivo realizado por Sebeny et al.¹⁴ donde observaron 57 pacientes con lesiones de guerra, mostro que ocho casos fueron infectados con Acinetobacter, todos eran varones, de edades entre 13 y 55 años, de nacionalidad estadounidense e iraquí. Todos los pacientes tuvieron una presentación clínica similar, celulitis con una característica apariencia de "piel de naranja", con posterior evolución a formación de ampollas en la superficie de la piel. La tasa de mortalidad que se encontró fue de 12,5%. A. baumannii es una causa ocasional de infección de vías urinarias, en el estudio realizado por Gaynes et al.⁸¹ fue responsable del 1,6% de las mismas adquiridas en UCI, asociada a infección o colonización por catéter vesical. La meningitis por A. baumannii es una entidad cada vez más importante, predomina a nivel nosocomial posterior a procedimientos neuroquirúrgicos^86-88, la presencia de un drenaje ventricular externo se convierte en el principal factor de riesgo para esta patología. La tasa de mortalidad puede llegar hasta el 70%, aunque es motivo de controversia⁸⁶.

En la literatura se han encontrado un pequeño número de casos reportados de endocarditis por A. baumannii, la mayoría de ellos con el antecedente de reemplazo valvular^89-92. Acinetobacter sp. también puede producir endoftalmitis o queratitis, algunos casos relacionados con uso de lentes de contacto o posterior a cirugías oculares^93-95.

RESISTENCIA ANTIBIOTICA

Múltiples estudios han reportado altas tasas de resistencia antimicrobiana en Acinetobacter sp., sus patrones de resistencias varían según la especie aislada y la zona geográfica⁹⁶. En un estudio realizado por Seifert et al.⁹⁷ informaron que A. baumannii es generalmente más resistente que A. lwoffi y otras especies de Acinetobacter. Las especies de Acinetobacter pueden adquirir genes de resistencia procedentes de otros microorganismos, desarrollar a lo largo del tiempo mutaciones que ocasionan resistencia o, bajo presión antimicrobiana selectiva, determinadas subpoblaciones con resistencia preexistente emergen y se hacen dominantes. Estos tres procesos no son excluyentes y probablemente coexistan en las cepas de Acinetobacter resistentes.⁹⁸

Los mecanismos de resistencia se agrupan en tres categorías: Enzimas inactivadoras de antimicrobianos, limitación del acceso a las dianas bacterianas, y mutaciones que alteran las dianas o funciones celulares.⁹⁹ A continuación se detallaran los principales mecanismos de resistencia por grupo de antimicrobianos (Ver Tabla 1).

BETALACTÁMICOS

En A. baumannii el mecanismo de resistencia más importante a los antibióticos β-lactámicos es la degradación enzimática por β-lactamasas cromosomales o plasmidiales, aunque múltiples mecanismos actúan en concierto^100-101. Las β-lactamasas se dividen en cuatro grupos: clase A de Ambler (Penicilinasas), clase B de Ambler (Metaloenzimas), clase C de Ambler (Cefalosporinasas) y clase D de Ambler (Oxacilinasas)¹⁰².

Las β-lactamasas clase B, métalo-β-lactamasas, son enzimas dependientes de zinc cuya actividad es inhibida por el ácido etildiaminotetraacético, pero no por carbapenémicos o inhibidores de β-lactamasas como el acido clavulánico, tazobactam y sulbactam. Estas enzimas tienen la capacidad de hidrolizar todos los β-lactámicos, incluyendo los carbapenémicos, excepto el monobactámico aztreonam¹⁰⁷. Se ha identificado tres grupos, IMP^38,108-110, VIM^110-113 y SIM¹¹⁴. Las β-lactamasas clase C, también denominada Cefalosporinasas derivadas de Acinetobacter¹¹⁵, son codificadas cromosómicamente por todas las cepas de A. baumannii^115,116. Su presencia se correlaciona con resistencia a cefalosporinas de espectro extendido¹¹⁷. Cefepima y carbapenémicos parecen ser estables frente a estas enzimas¹¹⁵.

Las oxacilinasas (OXA), β-lactamasas de clase D, también se encuentran en especies de Acinetobacter; existen múltiples subtipos que tienen diversos patrones de hidrólisis pero, en general, las oxacilinasas hidrolizan débilmente a carbapenémicos, imipenem y meropenem y no hidrolizan cefalosporinas de espectro extendido ni aztreonam. Su acción hidrolítica es inhibida por ácido clavulánico⁹⁸. La primera enzima de tipo OXA fue identificada en 1985 en Edimburgo, Escocia¹¹⁸, este determinante de resistencia, inicialmente nombrada ARI-1, se encontró que era transferible, y el gen fue posteriormente secuenciado y nombrado blaOXA-23^119,120. OXA-27 y OXA-49 son enzimas estrechamente relacionadas y conforman el grupo del gen blaOXA-23 en A. Baumannii^121,122. El blaOXA-24 que codifica OXA-24, 25, 26 y 40^119,123,124 y el blaOXA-58^42,125,126 son otros 2 genes OXA descritos con actividad carbapenemasa. El gen blaOXA-58 y blaOXA-23 son codificados por plásmidos, lo que puede explicar su distribución generalizada^126-128. El gen blaOXA-51 que codifica OXA- 51, 64, 65, 66, 68, 69, 70, 71, 78, 79, 80 y 82 es el único que se manifiesta en forma natural en A. baumannii, de ahí su localización cromosómica^129-131.

En resistencia a β-lactámicos se han encontrado mecanismos no enzimáticos, entre los cuales se encuentran cambios en las proteínas de membrana externa OMPs^{100,101,132,133}, bombas de eflujo multifármaco¹³⁴ y alteraciones en la afinidad o expresión de las proteínas de unión a penicilina PBP^132,135. Poco se sabe acerca de las porinas de la membrana externa de A. baumannii, recientemente se estableció que la proteína 29 kDa, también conocida como CarO, se asocia con resistencia a imipenem y meropenem^133,136,137. Brotes clínicos de A. baumannii resistente a carbapenémicos debido a pérdida de porinas, incluyen reducción de expresión de 47-, 44- y 37-kDa OMPs en cepas endémicas de A. baumannii en Nueva York¹³⁸ y reducción de la expresión de 22- y 33-kDa OMPs en asociación con OXA-24 en España¹³⁹. Otros OMPs identificados relacionados con resistencia a β-lactámicos incluyen la proteína térmicamente modificable HMP-AB¹⁴⁰, que es homóloga a OmpA de Enterobacterias y OmpF de P. aeruginosa; proteínas 33 a 36 kDa¹⁴¹ que es homologa con OprD de P. aeruginosa; y OmpW¹⁴², que es homóloga a proteína OmpW que se encuentran en E. coli y P. aeruginosa.

En el estudio realizado por Fournier et al.¹⁴³ se observó que el genoma de cepas A. baumannii multirresistentes codifica una amplia gama de sistemas de bomba eflujo multifármaco. La bomba de tipo familiar AdeABC es la mejor estudiada hasta el momento y favorece resistencia a β-lactámicos, carbapenémicos, aminoglucósidos, eritromicina, cloramfenicol, tetraciclinas, fluoroquinolonas y trimetoprim.^134,144-147 AdeABC es cromosómicamente codificada y, normalmente, está regulado por un sistema de dos componentes, un sensor quinasa (AdeS) y su regulador de respuesta asociado¹⁴⁶.

AMINOGLUCOSIDOS

La resistencia a aminoglicósidos está mediada por tres mecanismos: alteración del sitio de acción ribosomal, reducción de la captura y modificación enzimática del antimicrobiano¹⁴⁸. De estos, el tercer mecanismo es el que da cuenta de la mayoría de cepas resistentes aisladas. Las enzimas modificadoras, tales como O-fosfotransferasas, O-nucleotidiltransferasas y N-acetiltransferasas, son codificadas primariamente por plásmidos y transposones que pueden jugar un importante rol en la diseminación de resistencia, aunque pueden también tener localización cromosomal¹⁴⁸. Más recientemente, la metilación del sitio 16S ARNr se ha descrito para A. baumannii en cepas procedentes de Japón, Corea y Estados Unidos^149-151. Este mecanismo de resistencia altera el sitio de unión del aminoglicósido y confiere alto nivel de resistencia a todos los aminoglicósidos clínicamente útiles, incluyendo gentamicina, tobramicina y amikacina¹⁵². Aparte de la bomba de eflujo AdeABC, que es menos efectiva para transportar amikacina y kanamicina debido a su naturaleza mas hidrófila a comparación de los β-lactámicos,¹⁴⁵ recientemente se ha descrito la bomba AdeM, que ofrece resistencia a aminoglucósidos como gentamicina y kanamicina¹⁵³.

QUINOLONAS
]]> Los mecanismos de resistencia relacionados con este grupo de antibióticos son mutaciones de la ADN girasa y la topo-isomerasa IV, blancos específicos de estos medicamentos¹⁵⁴. La ADN-girasa está compuesta de dos subunidades, codificadas por los genes gyr A y gyr B. La topo-isomerasa IV es estructuralmente similar a la ADN-girasa, sus dos subunidades están codificadas por los genes parC y parE. La resistencia en Acinetobacter sp. está mediada por mutaciones en los genes gyr A y par C¹⁵⁴. Similar a los aminoglucósidos, muchas quinolonas también son sustratos de bombas de eflujo multifármaco¹⁵⁵, incluyendo la bomba AdeABC¹⁴⁵ y la bomba AdeM¹⁴⁵.

TETRACICLINAS Y GLICILCICLINAS

La resistencia a las tetraciclinas y sus derivados puede ser mediada por bombas de eflujo o protección ribosomal¹⁵⁶. Bombas de eflujo especificas para Tetraciclinas incluyen las codificadas por los determinantes tet(A) a tet(E), encontradas con mayor frecuencia en organismos gramnegativos, y el tet(K) determinante encontrado en S. aureus. Se han encontrado tet(A) y tet(B) en A. Baumannii. Tet(A) confiere resistencia a la tetraciclina pero no minociclina^157-159. La protección ribosomal está mediada por los determinante tet (M) y tet (O)¹⁵⁹. Además de las bombas de eflujo específicos para tetraciclina, estos antibacterianos también son susceptibles de bombas de eflujo multifármacos, como la bomba AdeABC¹⁴⁵. Tigeciclina, una clase de antimicrobianos conocidos como glicilciclinas, es también un sustrato para este sistema bombas de eflujo^160,161.

POLIMIXINAS

A pesar de los recientes informes que demuestran el aumento de la resistencia in vitro de A. baumannii a las polimixinas, el mecanismo de resistencia se desconoce^162,163. Se ha demostrado en otros microorganismos que la reducción de la unión a los sitios diana en los lipopolisacáridos confiere resistencia en E. Coli, Salmonella sp. y P. aeruginosa^164,165. También se ha observado que cambios en las proteínas de membrana externa confieren resistencia en P. aeruginosa^166,167.

TRATAMIENTO ACTUAL

Hasta el momento, los carbapenémicos se han considerado como agentes de elección para las infecciones graves por A. Baumannii, sin embargo, aunque estos fármacos son todavía activos contra la gran mayoría de cepas de A. Baumannii alrededor del mundo, la utilidad clínica de esta clase de antimicrobianos es cada vez más amenazada por el surgimiento de mecanismos de resistencias, como se describió anteriormente.^159,145

Esta revisión considera A. baumannii Multirresistente (AB-MR) las cepas con resistencia a más de dos de los siguientes grupos de antibióticos: Cefalosporinas antipseudomónicas, cefepima y ceftazidima; carbapenémicos antipseudomónicos, meropenem e imipenem; fluoroquinolonas, ciprofloxacinay levofloxacino; aminoglucósidos, gentamicina, tobramicina y amikacina, o sulbactam^20,168. A. baumannii panrresistentes (AB-PR) son cepas resistentes a los antibióticos de primera línea nombrados anteriormente, incluidos carbapenémicos, y que regularmente son sólo susceptibles a polimixinas como colistina^169,170, aunque ya existen reportes de cepas resistentes a colistina^162,163 (Ver Figura 3).

Sulbactam es un inhibidor de β -lactamasas, opción en el manejo de infecciones por AB-MR, se ha documentado que además de tener actividad como inhibidor de β-lactamasas, posee cierta actividad antimicrobiana intrínseca contra A. baumannii. Los inhibidores de β-lactamasas son utilizados para proteger antimicrobianos β-lactámicos de la hidrólisis de enzimas bacterianas. Actualmente existen tres tipos de inhibidores: ácido clavulánico, sulbactam y tazobactam. Sulbactam tiene actividad contra Neisseria gonorrhoeae, Neisseria meningitidis, Burkholderia cepacia y Acinetobacter sp, los otros inhibidores de β-lactamasas tienen menor actividad que sulbactam frente a Acinetobacter sp. La actividad antibacteriana de sulbactam es consecuencia de su unión irreversible con PBP 2¹⁷¹. La presencia de un betalactámico, como la ampicilina, en combinación con el inhibidor de las ß-lactamasas, no parece producir sinergia^172,173.

Diferentes estudios clínicos han demostrado la eficacia de Sulbactam en infecciones leves a severas de A. baumannii. Urban et al.¹⁷⁴ observaron en su estudio que 9 de 10 pacientes con infección severa por A. baumannii y ventilación mecánica presentaron mejoría clínica con el uso de ampicilina-sulbactam a dosis 3g de ampicilina y 1.5g de sulbactam cada 6 u 8 horas intravenoso. En 2003, un estudio realizado en Israel reportó el uso de ampicilina/sulbactam en el manejo de AB-MR comparándolo con el estándar de cuidados en 94 pacientes con bacteriemia, comparados con el grupo estándar, el grupo de ampicilina/sulbactam no mostró diferencias significativas en la mortalidad global con un 40,5% versus 42,4%, respectivamente. En los pacientes más gravemente enfermos, ampicilina/sulbactam se asoció con mortalidad significativamente menor¹⁷⁵. Algunas series de casos han mostrado resultados alentadores en el tratamiento de meningitis nosocomial por AB-MR con ampicilina sulbactam, aunque existe aun controversia en su uso para esta patología^176,177. La dosis óptima de sulbactam para tratar infecciones graves por A. baumannii es desconocida, pero la mayoría de los autores recomiendan por lo menos 6 g/día divididos en dosis para pacientes con función renal normal. Se ha documentado dosificación de hasta 12 g/día para el tratamiento de neumonía adquirida en el hospital causada por AB-MR, sin mayores efectos adversos; sin embargo, los resultados fueron similares en los que recibieron 9 g/día¹⁷⁸. Aun está pendiente por aclarar si dosis más altas son más eficaces o reducen el riesgo de resistencia, o incluso si la ampicilina-sulbactam debe ser usada en combinación con otros agentes¹⁷⁹.

A pesar de la ausencia de ensayos clínicos controlados, los carbapenémicos imipenem, meropenem, o doripenem, siguen siendo una de las opciones terapéuticas más importantes para las infecciones graves causadas por AB-MR, puesto que tienen una excelente actividad y estabilidad bactericida frente a varias β-lactamasas. Desafortunadamente, el aumento de la resistencia a los carbapenémicos está creando desafíos terapéuticos, especialmente teniendo en cuenta que la mayoría de las cepas de A. baumannii que son resistente a los carbapenémicos también son resistentes a la mayoría de otros antibióticos, excepto las polimixinas o tigeciclina, los datos disponibles son de estudios in vitro, en animales y estudios observacionales^180,181. El programa de vigilancia MYSTIC ha documentado datos que sugieren que imipenem es más potente que meropenem para el tratamiento de infecciones por AB-MR¹⁸², las pruebas de sensibilidad de imipenem no predice la susceptibilidad a meropenem o viceversa¹⁸². Lesho et al.¹⁸³ describieron un caso mortal de neumonía por A. baumannii que fue tratado con meropenem, basados en susceptibilidad de la cepa a imipenem, sin embargo, posteriormente se demostró que la cepa era resistente a meropenem. El doripenem es un nuevo carbapenémico con actividad in vitro frente a A. baumannii; aunque no parece tener ventajas en comparación con imipenem y meropenem¹⁸⁴.

Dentro de los aminoglicosidos, amikacina y tobramicina son dos agentes que parecen conservar actividad contra A. baumannii, dadas sus características farmacocinéticas y farmacodinamicas generalmente se usan en combinación con otro antimicrobianos, excepto en infecciones de vías urinarias^47,185. Debido a sus perfiles de toxicidad a menudo se limita su uso, especialmente para tratamientos de largo tiempo. En un estudio realizado por Gounden et al.¹⁸⁶ se comparó la eficacia y toxicidad de la tobramicina frente a la colistina en el tratamiento de infección por A. baumannii, allí no encontraron diferencias estadísticamente significativas en mortalidad en unidades de cuidados intensivos, diferencias en aumento de creatinina sérica o tiempo de aclaramiento sérico.

Minociclina y doxiciclina, que hacen parte del grupo de tetraciclinas, están disponibles por infusión intravenosa y la minociclina está aprobada por la FDA para uso en infecciones por Acinetobacter. La tetraciclina no puede ser utilizada como un marcador sustituto, debido a que muchos aislamientos resistentes a la tetraciclina pueden ser susceptibles a la minociclina¹⁸⁷. Son limitados los datos clínicos acerca del uso de minociclina y doxiciclina. Wood et al.¹⁸⁸ reportaron una pequeña serie de casos de neumonía asociada a ventilación mecánica por A. baumannii tratados con doxiciclina y minociclina, cinco pacientes tenían cepas resistentes a todos los antimicrobianos salvo minociclina y doxiciclina, seis pacientes se consideraron con mejoría clínica después del tratamiento. Los investigadores concluyeron que estas tetraciclinas podrían ser eficaces para tratar neumonía asociada a ventilación mecánica por AB-MR.

La tigeciclina es un antimicrobiano que hace parte de las glicilciclinas, tiene actividad bacteriostática frente a A. baumannii, es un derivado semisintético de la minociclina e inhibe la subunidad ribosómica 30S; su ventaja sobre antibióticos del grupo tetraciclinas es su capacidad de evadir los tradicionales mecanismos de resistencia específicos para tetraciclinas, bombas de eflujo tet (B) y determinantes tet (M) y tet (O) que proporcionan protección ribosomal, lo que le confiere un espectro de actividad más amplio¹⁸⁹. A pesar de la gran actividad in vitro mostrada por tigeciclina, los datos clínicos siguen siendo limitados, en 155 cepas de distintas colecciones internacionales de seguimiento de resistencia, tigeciclina fue activa en 98,7%¹⁹⁰. Respuestas clínicas favorables han sido reportadas en el tratamiento de infecciones graves¹⁹¹; sin embargo, debido a la movimiento rápido de la tigeciclina hacia los tejidos después de administración intravenosa, se recomienda evitar el uso de esta en infecciones del torrente sanguíneo por A. baumannii¹⁹². Ya se han detectado resistencias de alto a nivel para este antibiótico en algunas cepas, determinadas por la suprarregulación de bombas de eflujo mediadas cromosómicamente^193,194.

Las polimixinas fueron descubiertas en 1947, reconociéndose cinco componentes, polimixinas A - E¹⁹⁵. Sólo polimixina B y E han sido utilizadas en clínica. Colistín o polimixina E fue descrito por Koyama en 1949, sintetizado por el Bacillus polymyxa subespecie colistinus¹⁹⁶. Este agente se utilizó originalmente durante las décadas del sesenta y setenta, pero dada su nefro y neurotoxicidad su prescripción era infrecuente. Su uso ha ido aumentando últimamente gracias a su potente actividad frente a bacterias gram-negativas. La mayoría de los estudios clínicos que investigan el uso de polimixinas frente a microorganismos multiresistentes utilizan más bien colistín que polimixina B¹⁹⁷. Son bactericidas, con efecto concentración dependiente, actúan sobre la pared celular bacteriana alterando su permeabilidad, llevando a la muerte celular por lisis¹⁹⁶.

Los efectos adversos más frecuentes de colistín son nefrotoxicidad, neurotoxicidad reversible y bloqueo neuromuscular. A nivel renal puede causar un efecto tóxico directo que resulta en necrosis tubular aguda. Los efectos neurotóxicos incluyen ataxia, confusión, disturbios visuales, vértigo e inestabilidad vasomotora. Puede causar bloqueo neuromuscular generador de falla respiratoria¹⁹⁶.

Estudios observacionales han reportado tasas de curación o mejoría tras el tratamiento con colistina del 57-77% en pacientes gravemente enfermos con diversas infecciones por AB-MR, incluyendo neumonía, bacteriemia, sepsis, infección intraabdominal e infección del SNC^79,198,199. Aunque faltan datos farmacocinéticos de alta calidad, se ha demostrado que la colistina tiene una pobre penetración en liquido cefalorraquideo y tejido pulmonar. En este sentido cobra especial interés la posibilidad de administración de este antibiótico vía intratecal o intraventricular, así como su uso en nebulización^47,200.

En el boletín entregado en el año 2015 por el grupo para el control de la resistencia antimicrobiana en Bogotá, GREBO, en el cual se incluyeron instituciones de salud de ciudades colombianas como Bogotá, Manizales, Villavicencio, Ibagué, Tunja, Neiva y Valledupar, se estableció que la resistencia de A. baumannii a los carbapenémicos sigue siendo muy alta, (para meropenem 65,7% en 2013 y 69,2% en 2014), ampicilina sulbactam presentó una ligera disminución (46,1% en 2013 y 37% en 2014), y antibioticos de última linea como colisitina fue de 0% y tigeciclina 4,2%. Por lo cual consideraron que en muchas instituciones de salud es probable que el tratamiento empirico para una infeccion por este microorganismo requiera de entrada el uso de polimixina asociada a tigeciclina y un carbapenemico o amikacina segun el escenario clinico, cada institución deberá tomar las medidas necesarias según su perfil de susceptibilidad frente a este microorganismo para evitar el uso masivo de polimixinas, última opción terapeutica disponible para infecciones graves por este y otros microorganismos multirresistentes²¹⁰.

SINERGIA Y TERAPIA COMBINADA

El uso de la terapia de combinación para tratar microorganismos Gram negativos multiresistentes y panresistentes es un área de amplio interés actual²¹¹. Esta estrategia tiene como objetivo crear una combinación de dos agentes a los cuales el organismo no sea susceptible por pruebas de laboratorio. Además de tratar de mejorar la eficacia, la terapia de combinación también puede ayudar a prevenir la aparición de resistencia cuando al menos un agente es activo in vitro²¹².

La falta de ensayos clínicos controlados hace difícil evaluar el papel de la sinergia o la terapia combinada en el tratamiento de la infección por AB-MR y AB-PR. La mayoría de los datos disponibles proceden de series de casos, modelos animales o estudios in vitro; diferentes estudios han mostrado resultados contradictorios para las mismas combinaciones de antibióticos. Montero et al.²¹³ estudiaron un modelo de neumonía por A. baumannii multirresistente en ratones y encontraron que las combinaciones de rifampicina con imipenem, tobramicina o colistina, tenían las mayores tasas de curación. Un estudio clínico piloto posterior, sin embargo, alertó sobre el uso de rifampicina e imipenem para el tratamiento de infecciones por Acinetobacter resistente a carbapenémicos, debido a que los investigadores observaron una alta tasa de fallos terapéuticos y documentaron la aparición de resistencia a la rifampicina en un 70% de los pacientes tratados con este régimen²¹⁴. En un estudio realizado por Bernabeu et al.²¹⁵ la combinación de imipenem y amikacina resultó peor que el imipenem en monoterapia para el tratamiento de las neumonías causadas por Acinetobacter resistente a imipenem, a pesar de la sinergia demostrada in vitro para estos dos agentes. Los resultados de terapias de combinación de quinolonas son variados, en un estudio realizado por Ermertcan et al.²¹⁶ se observó una baja eficacia con el uso de ciprofloxacina en A. baumannii resistente a ciprofloxacina; en el estudio realizado por Joly-Guillou et al.²¹⁷ se observó falta de actividad reforzada de levofloxacino al ser combinada con imipenem o amikacina en un modelo de ratón con neumonía. Curiosamente, en el estudio realizado por Sander et al.²¹⁸ se observó actividad reforzada cuando aztreonam fue probado en combinación con otros β-lactámicos con un grupo de cepas de AB-MR.

Debido a esta disparidad en resultados, la utilidad clínica de la sinergia in vitro sigue siendo dudosa, la mayoría de los resultados para la terapia combinada son comparables a las tasas de curación correspondientes a las terapias con colistina parenteral en monoterapia, y la gran variabilidad de los demás agentes que podemos usar limita la capacidad de extraer conclusiones respecto a la terapia combinada⁴⁷.

ESTRATEGIAS FUTURAS DE MANEJO

Debido a la amplia resistencia a los antibióticos presentada por A. baumannii, como se mencionó anteriormente, se están desarrollando alternativas de manejo^219,220, entre las cuales se encuentran:

BACTERIÓFAGOS
]]> Se están realizando estudios sobre terapia con bacteriófagos como alternativa de tratamiento para tratar de contrarrestar el fenómeno de resistencia a los antibióticos, debido a la alta especificidad de los fagos y su capacidad para trabajar con rapidez^221-223. En un estudio reciente realizado por Yang et al.²²⁴ se ha aislado y caracterizado el bacteriófago AB1 que ha demostrado ser eficaz contra A. baumannii y representa un nuevo potencial terapéutico.

TERAPIA DE TRANSFERENCIA DE GENES BACTERICIDAS

Se basa en el uso de células donantes atenuadas que introducen por conjugación genes bactericidas al microorganismo patógeno; dentro de los microorganismos atenuados, se han hecho estudios con E. coli atenuada, que transportan el plásmido con genes bactericidas que inhiben la síntesis de proteínas, estos genes se encuentran reprimidos en la bacteria donadora, pero se activan al ser entregados a la bacteria receptora. Un estudio realizado por Shankar et al.²²⁵ donde se usó este enfoque en quemadura de murinos, se demostró que los ratones tratados con dosis única de 1.010 Unidades formadoras de colonias de células donantes que contenían genes bactericidas tenían niveles más bajos de A. baumannii en las heridas por quemadura en comparación con los ratones no tratados.

RADIOINMUNOTERAPIA

Aun no ha sido usada como opción terapéutica antimicrobiana en clínica, aunque en teoría tiene la capacidad de seleccionar los microorganismo en forma rápida y eficiente como lo observado con las células cancerígenas²²⁰. Este método aprovecha la especificidad de las interacciones antígeno-anticuerpo para entregar radionucleotidos que emanan dosis de radiación citotóxica letales directamente a la célula diana, produciendo solo toxicidad hematológica transitoria en experimentación con animales. La radioinmunoterapia ha sido adaptada con éxito para el tratamiento de infecciones bacterianas²²⁶, fúngicas²²⁷ y virales²²⁸, debido a que varios estudios han demostrado el desarrollo de anticuerpos contra A. baumannii, este método apunta como una clara estrategia de manejo a futuro^229,230.

TERAPIA FOTODINÁMICA

Este método usa la combinación de fotosensibilizantes no tóxicos con oxigeno para producir especies reactivas de oxigeno que oxidan biomoléculas y conllevan a la destrucción celular²³¹. El uso de la terapia fotodinámica para tratar infecciones bacterianas localizadas generalmente implica la aplicación tópica de un fotosensibilizante en el tejido infectado, seguido por iluminación con luz infrarroja que es capaz de penetrar en el tejido²³². Usando esta técnica en modelos de heridas por quemaduras en murinos, se ha demostrado que es eficaz contra A. Baumannii²³³.

PREVENCIÓN

Múltiples factores trabajan en conjunto para mantener la presencia de especies de AB-MR y AB-PR en el ámbito de la atención de salud, entre los cuales se encontró la presencia de pacientes susceptibles, la presencia de los pacientes ya colonizados o infectados con el patógeno, presión selectiva por el uso de antimicrobianos, y el cumplimiento incompleto de los procedimientos para control de infecciones, esto último favorecido por la capacidad de este patógeno para sobrevivir en el ambiente, como se expuso anteriormente, y una probable resistencia a agentes desinfectantes que se encuentra en estudio²³⁶. Este patógeno se puede diseminar a través del aire a distancias cortas mediante gotitas de agua y a través de la descamación de la piel de pacientes que están colonizados, pero el modo de transmisión más común es a través de las manos del personal sanitario. Los pacientes que están colonizados o infectados por una cepa concreta de A. Baumannii pueden portar esta cepa en diferentes partes del cuerpo durante días e incluso semanas, y la colonización puede pasar inadvertida si la cepa epidémica no se aísla en muestras clínicas²³⁷.

Investigadores han reportado interrupción de la transmisión de A. baumannii posterior al reforzamiento de medidas para prevención y control de infecciones, tales como higiene de manos, uso de métodos de barrera y exhaustiva limpieza y desinfección del ambiente hospitalario^238-40. En otros casos la transmisión es más difícil de interrumpir, requiriendo aislamiento de pacientes, asignación de personal asistencial para vigilancia, cultivos de vigilancia activa y cierre de las unidades^241,242.

Además de la transmisión, se reporta aparición de resistencia por presión selectiva debido a terapia antimicrobiana de amplio espectro, entre los cuales se encuentran carbapenémicos²⁴³, cefalosporinas de tercera generación²⁴⁴ y fluoroquinolonas²⁴⁵. En muchas instituciones de salud endémicas, infecciones por AB-MR han demostrado perfiles epidemiológicos complejos y coexistencia de múltiples cepas. En un estudio realizado por Abbo et al.²⁴⁶ observaron 118 pacientes con infección por AB-MR en Israel, se encontró diez diferentes clones, así como pequeños grupos de pacientes con fuente común no identificada, a pesar de investigación con pruebas moleculares. Tipificación de cepas basados en métodos moleculares se puede utilizar para identificar brotes de infección y supervisar transmisión interinstitucional, regional e internacional de especies de Acinetobacter multirresistentes^247,248. Por ejemplo, durante un período de brote en los Países Bajos que afectó a ocho hospitales, se encontró una de las cepas en tres de esos centros y otra cepa en otros dos²⁴⁹. Hay datos similares que apoyan la diseminación interhospitalaria de cepas multirresistentes en determinadas zonas geográficas de República Checa, Reino Unido, Portugal y Estados Unidos²³⁷.

En los últimos años ha crecido la preocupación acerca del papel de la resistencia a los desinfectantes. Susceptibilidad reducida de S. aureus resistente a meticilina, frente S. aureus sensible a meticilina, a la clorhexidina y compuestos de amonio cuaternario han sido reportados²⁵⁰. Observaciones similares fueron hechas en bacterias gramnegativas como P. aeruginosa²⁵¹. Se ha especulado que la resistencia a desinfectantes puede contribuir a la aparición de brotes epidémicos por A. baumannii, aunque existe controversia. En un estudio realizado por Wisplinghoff et al.²⁵² se comparó la actividad in vitro de diversos desinfectantes, tales como propanol, mecetronium etilsulfato, yodo-polivinilpirrolidona, triclosán, y clorhexidina, contra cepas endémicas y esporádicas de A. baumannii. Llegaron a la conclusión que la resistencia a los desinfectantes probablemente no es un factor importante que favorezca la propagación de epidemias por A. baumannii, ya que todos los desinfectantes inhibieron el crecimiento de todas las cepas de A. baumannii cuando se usaron las concentraciones y tiempos de contacto recomendados por el fabricante. Sin embargo, con la mayoría de los desinfectantes probados, un importante número de bacterias permanecían viables cuando los tiempos de contacto fueron inferior a 30 segundos o cuando estos fueron diluidos, como ocurre frecuentemente en la práctica clínica. Algunas intervenciones de control de infecciones son apropiadas para prevenir y cotrolar brotes de A. baumannii, en forma ideal, deben realizarse estudios de casos y controles en la unidad para determinar que antibióticos aumentan el riesgo de aparición de cepas A. baumannii multiresistentes²⁰, ²⁵³. (Ver Figura 4)

CONCLUSIONES

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