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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Utilizaci&oacute;n de macr&oacute;fagos espl&eacute;nicos humanos   como modelo para el estudio de la interacci&oacute;n   micobacteria-macr&oacute;fago</b> </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Julieta Henao P&eacute;rez<sup>1</sup>; Luis F. Garc&iacute;a<sup>2</sup>; Mauricio Rojas<sup>2</sup>;   Luis Fernando Barrera<sup>2</sup></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Grupo de Inmunolog&iacute;a Celular e Inmunogen&eacute;tica, Facultad de Medicina, Universidad   de Antioquia   </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1 Estudiante de maestr&iacute;a, Posgrado en Ciencias B&aacute;sicas Biom&eacute;dicas. <a href="mailto:jhp264@yahoo.com">jhp264@yahoo.com</a>  </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2 Profesor, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia <a href="mailto:jhp264@yahoo.com"></a> </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr noshade size="1" >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>INTRODUCCI&Oacute;N Y OBJETIVOS</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> La mayor parte de la aproximaci&oacute;n experimental para el estudio   de la interacci&oacute;n in vitro entre Mycobacterium tuberculosis &#40;Mtb&#41;   y macr&oacute;fagos humanos, se ha realizado utilizando macr&oacute;fagos derivados   de monocitos &#40;MDMs&#41;; sin embargo, muy pocos estudios han   utilizado macr&oacute;fagos tisulares. Nosotros estamos utilizando   macr&oacute;fagos espl&eacute;nicos obtenidos de donantes cadav&eacute;ricos con el fin   de evaluar la interacci&oacute;n Mtb-macr&oacute;fago. El objetivo de este estudio   es caracterizar fenot&iacute;pica y funcionalmente la poblaci&oacute;n de c&eacute;lulas   adherentes del bazo y su respuesta a la infecci&oacute;n con Mtb.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <b>METODOLOG&Iacute;A</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> La expresi&oacute;n ex vivo de los marcadores de superficie &#40;CD3,   CD14, CD19, CD36 HLA-DR, CR1, CR3, TLR-2&#41; en esplenocitos y en   c&eacute;lulas espl&eacute;nicas adherentes cultivadas por 96 horas, se ha caracterizado   por citometr&iacute;a de flujo. La fagocitosis de perlas de l&aacute;tex y Mtb   fue determinada por microscopia de luz. La tinci&oacute;n para esterasas no   espec&iacute;ficas &#40;NSE&#41; se realiz&oacute; utilizando un estuche comercial.   </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Hasta el momento se han podido analizar 15 bazos &#40;2 de   mujeres y 13 de hombres&#41;. La caracterizaci&oacute;n de los esplenocitos ha   arrojado los siguientes resultados: 39.2&#37; &#177; 16.7 corresponden a   c&eacute;lulas B &#40;HLA-DR<sup>&#43;</sup> y DR-&#41;, el 23.3&#37; &#177; 8.8 a c&eacute;lulas T &#40;CD3<sup>&#43;</sup>HLADR<sup>&#43;</sup>   y DR-&#41;, el 19.3&#37; &#177; 10.9 son CD14<sup>&#43;</sup> &#40;HLA-DR<sup>&#43;</sup> &#40;monocito/   macr&oacute;fago&#41;; dentro de esta &uacute;ltima poblaci&oacute;n celular, el 11.7&#37; &#177; 8.5   corresponden a c&eacute;lulas CD14<sup>&#43;</sup>TLR2<sup>&#43;</sup>. El resto de la poblaci&oacute;n celular   &#40;aproximadamente 25&#37;&#41; posee un fenotipo no caracterizado. Para   la obtenci&oacute;n de c&eacute;lulas adherentes, se han considerado variables tales   como tiempo de cultivo &#40;4-96h&#41;, tipo de pl&aacute;stico, concentraci&oacute;n y   densidad celular, porcentaje de suero &#40;PSH&#41; y m&eacute;todo de debridaci&oacute;n.   Los resultados indican que ninguna de estas variables tiene un mayor   peso sobre el porcentaje de c&eacute;lulas adherentes recuperadas &#40;0.1-   2.1&#37;&#41;, aunque el tiempo de cultivo parece jugar un papel m&aacute;s importante   que otras variables. El 100&#37; de las c&eacute;lulas adherentes son NSE<sup>&#43;</sup>   y exhiben una capacidad fagoc&iacute;tica modesta, la cual vari&oacute; dependiendo   de la raz&oacute;n part&iacute;cula:c&eacute;lula adherente &#40;17.9 &#37; &#177; 4.27 part&iacute;culas   de latex; 31.9&#37; &#177; 9.0 Mtb&#41;. Las c&eacute;lulas adherentes presentan el   siguiente fenotipo: 95&#37; son HLA-DR<sup>&#43;</sup>, 97.5&#37; CR3<sup>&#43;</sup>; son negativas   para CD3, CD19, y CR1. La expresi&oacute;n de CD14 y TLR-2 es baja y se   observa en algunos individuos. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>PALABRAS CLAVE</b>   </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>MACR&Oacute;FAGOS ESPL&Eacute;NICOS,    MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS</i> </font></p>      <p>&nbsp;</p>      ]]></body>
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