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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Accidente bothrópico en Colombia: estudio multicéntrico de la eficacia seguridad de Antivipmyn-Tri®, un antiveneno polivalente producido en México]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Colombia is a country with two whole IgG antivenom producers, but the expectancy of all the market are not fulfilled by different technical reasons. Objectives: To evaluate the efficacy and safety of a F(ab´)2 polyvalent antivenom produced in Mexico and of a new dosage regimen for Bothrops bites in Colombia. Methods: A clinical trial, including serum venom and antivenom measurements (ELISA), was performed during 9 months in 53 patients. Results: forty four patients were bitten by Bothrops asper in Antioquia and Chocó and 9 by B. atrox in Amazonas; on admission, all of them had nonclottable blood, 30 (56.6%) presented local and 24 (45.3%) systemic bleeding. The final envenoming grade was mild in 13 (24.5%), moderate in 30 (56.6%) and severe in 10 patients (18.9%). At the antivenom doses used in this study (5 vials for mild / moderate and 10 for severe envenoming), Antivipmyn Tri ® was 100% efficient to decrease significantly serum venom concentrations within the first treatment hour, and to stop local and systemic bleeding within 6-12 hours, 96.2% efficient to restore blood coagulation within 24 hours and 100% within 48 hours. Two patients (3.8%) had recurrence of coagulopathy without bleeding, and there were 12 recurrences of antigenaemia without clinical relevance. Ten (18.9%) patients suffered early mild adverse reactions to fabotherapy. There were no deaths and four patients (7.5%) presented sequelae. Conclusion: at the doses used in this study, Antivipmyn Tri® was efficient and safe for the treatment of Bothrops bites in Colombia.]]></p></abstract>
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<body><![CDATA[<li> Hospital Antonio Roldán Betancur, Apartadó,       Antioquia, Colombia.</li>       <li> Hospital San Antonio, Tarazá,       Antioquia, Colombia.</li>    </ol>       <p >Responsable de la correspondencia:       R Rafael afael Otero, Programa de Ofidismo / Escorpionismo,       Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, AA 1226, Medellín, Colombia.       Telefax:  (574) 2631914.    <br> Direcciones electrónicas: <a href="mailto:rafaotero@une.net.co">rafaotero@une.net.co</a></p>       <p >Recibido: abril 30 de 2007</p>       <p>Aceptado: junio 04 de 2007</p>   <hr>       <p ><b>RESUMEN</b></p>       <p ><b>Introducción:</b> Colombia       es un país con dos productores de antivenenos de IgG, pero hay un mercado insatisfecho por diferentes razones       técnicas.</p>       <p ><b>Objetivos:</b> evaluar       la eficacia y la seguridad de un antiveneno F(ab´)2 polivalente (Antivipmyn-Tri<sup>&#174;</sup>) producido en México, y un nuevo esquema de       dosis en accidente bothrópico en Colombia.</p> 	       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Métodos:</b> se realizaron durante       9 meses un ensayo clínico-terapéutico y cuantificaciones de veneno y antiveneno       sérico (ELISA) en 53 pacientes.</p>       <p ><b>Resultados:</b> cuarenta       y cuatro pacientes fueron mordidos por <em>Bothrops asper</em> en Antioquia y Chocó y       9 por <em>B. atrox</em> en Amazonas; todos tenían sangre incoagulable al       ingreso, 30 (56,6%) con sangrado local y 24 (45,3%) con sangrado sistémico.       El grado final de envenenamiento fue leve en 13 (24,5%), moderado en 30       (56,6%) y grave en 10 pacientes (18,9%). A las dosis recomendadas de 5       frascos para los casos leves o moderados y 10 para los graves, Antivipmyn-Tri<sup>&#174;</sup>  	  fue 100% eficaz para disminuir significativamente       las concentraciones séricas de veneno en la primera hora de tratamiento       y para detener el sangrado en las primeras 6-12 horas, 96,2% eficaz para       normalizar la coagulación en 24 horas y 100% en 48 horas. Hubo 2 casos       (3,8%) de recurrencia de coagulopatía sin sangrado       y 12 recurrencias de antigenemia sin implicaciones       clínicas. Diez pacientes (18,9%) presentaron reacciones tempranas adversas       (leves) a la faboterapia. No hubo muertes, y       cuatro pacientes (7,5%) tuvieron secuelas.</p>       <p ><b>Conclusión:</b> a       las dosis utilizadas en este estudio, Antivipmyn-Tri<sup>&#174;</sup>  	  fue eficaz y seguro para el tratamiento del       envenenamiento bothrópico en Colombia.</p>       <p ><b>PALABRAS CLAVE</b></p>       <p >BOTHROPS ASPER    <br>   BOTHROPS ATROX    <br>   COLOMBIA    <br>   ENVENENAMIENTO BOTHRÓPICO    <br>   FABOTERAPIA</p>       <p ><b>SUMMARY</b></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p ><b>Introduction: </b>Colombia is a country       with two whole IgG antivenom producers,       but the expectancy of all the market are not fulfilled by different technical       reasons.</p>       <p ><b>Objectives: </b>To evaluate the efficacy       and safety of a F(ab´)2 polyvalent antivenom produced       in Mexico and of a new dosage regimen for <em>Bothrops</em> bites in Colombia.</p>       <p ><b>Methods: </b>A clinical trial, including       serum venom and antivenom measurements (ELISA),       was performed during 9 months in 53 patients.</p>       <p ><b>Results: </b>forty four       patients were bitten by <em>Bothrops asper</em> in Antioquia and Chocó and       9 by <em>B. atrox</em> in Amazonas; on admission, all of them had nonclottable blood,       30 (56.6%) presented local and 24 (45.3%) systemic bleeding. The final       envenoming grade was mild in 13 (24.5%), moderate in 30 (56.6%) and severe       in 10 patients (18.9%). At the antivenom doses       used in this study (5 vials for mild / moderate and 10 for severe envenoming), Antivipmyn Tri 	  <sup>&#174; </sup>was 100% efficient to decrease significantly serum venom concentrations within       the first treatment hour, and to stop local and systemic bleeding within       6-12 hours, 96.2% efficient to restore blood coagulation within 24 hours       and 100% within 48 hours. Two patients (3.8%) had recurrence of coagulopathy without       bleeding, and there were 12 recurrences of antigenaemia without       clinical relevance. Ten (18.9%) patients suffered early mild adverse reactions       to fabotherapy. There were no deaths and four       patients (7.5%) presented sequelae.</p>       <p ><b>Conclusion: </b>at the doses used in       this study, Antivipmyn Tri<sup>&#174; </sup>was efficient and safe for the treatment of  <em>Bothrops</em> bites in Colombia.</p>       <p ><b>KEY WORDS</b></p>       <p >BOTHROPS ATROX    <br>   BOTHROPIC ENVENOMING    <br>   BOTHROPS ASPER    <br>   COLOMBIA    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   FABOTHERAPY</p>       <p ><b>INTRODUCCIÓN</b></p>       <p >El accidente ofídico es       un serio problema de salud pública en un país tropical como Colombia. A       pesar del subregistro que resulta de los pacientes tratados por la       medicina tradicional, en la década de 1990 a 1999 se informaron en promedio       cada año 2.675 mordeduras por serpientes (Registro SIS-12, Ministerio de       Salud de Colombia, 1990-1998). El 90-95% son producidas por serpientes       de los géneros <em>Bothrops</em>, <em>Porthidium</em>, <em>Bothriopsis</em>, <em>Bothriechis</em>  	  y <em>Bothrocophias</em>, principalmente en       Antioquia, Chocó y Amazonas, donde se registran anualmente cerca de 800       casos (120 de ellos en Amazonas), con una mortalidad del 3-8,9% y secuelas       en el 6-9,9%, según estudios recientes.<sup>1-4 </sup> 	  <em>Bothrops asper</em>, especie ampliamente distribuida hasta 1.200 msnm,       es responsable del 50-70% de estos accidentes en Antioquia y Chocó;  	  <em>B. atrox</em> es a su vez la especie       causante del 95% de las mordeduras en el territorio amazónico.<sup>5</sup> Sus venenos inducen       intensos efectos locales (edema, hemorragia, formación de bulas, dermonecrosis y mionecrosis) y graves efectos sistémicos que ponen en peligro       la vida (desfibrinación, trombocitopenia, hemorragias       en otros órganos, nefrotoxicidad).<sup>1,4,6-9</sup></p>       <p >Transcurridos más de       100 años desde el descubrimiento de la seroterapia antivenenosa,       los antivenenos no han podido resolver todos los problemas originados por       los venenos de víboras, especialmente los efectos locales que son de rápida       instalación (4-15 minutos) y que causan secuelas por necrosis, con pérdida       de masa muscular, desfiguraciones y amputaciones, así como tampoco las       reacciones adversas inducidas por aquellos.<sup>10-14 </sup>Los antivenenos de tercera [F(ab´)2] y cuarta (Fab) generaciones (faboterápicos),       con partículas de menor tamaño y mayor volumen de distribución en los tejidos,       producen neutralización parcial de estos efectos, de la misma manera que       los de IgG total, mejor cuando todos se administran       muy pronto por vía intravenosa (IV).<sup>15-19</sup></p>       <p >En Colombia hay dos       productores de antivenenos de IgG, pero hay un mercado insatisfecho por diferentes razones       técnicas.3,9,19,20 El Instituto Bioclón de       México produce un antiveneno polivalente antibothrópico, anticrotálico y antilachésico  	  (Antivipmyn-Tri<sup>&#174;</sup>) digerido con pepsina (Fab2), a partir del plasma hiperinmune de caballos  	  inmunizados con una mezcla de los       venenos de <em>B. asper</em> de México, <em>Crotalus durissus</em> de Suramérica y  	  <em>Lachesis muta</em> de Centroamérica. Este antiveneno tiene menor concentración de proteínas e       impurezas (albúmina, agregados de proteínas) que los productos colombianos,       y buena eficacia neutralizante de los diferentes efectos inducidos <em>in vitro</em> y en ratones por  	  los venenos de <em>B. asper</em> y <em>P. nasutum</em> de Colombia.<sup>19,20</sup></p>       <p >Este proyecto de investigación       se realizó con el objetivo de evaluar la eficacia y seguridad de Antivipmyn-Tri<sup>&#174; </sup> 	  en mordeduras por <em>B. asper</em> y <em>B. atrox</em> en tres departamentos de  	  Colombia (Antioquia, Chocó y Amazonas). Así mismo,       para establecer la eficacia de un nuevo esquema de tratamiento utilizando       dosis de antiveneno polivalente mayores que las administradas en estudios       previos efectuados en el país.</p>       <p ><b>PACIENTES ACIENTES Y MÉTODOS</b></p>       <p ><b>Antiveneno</b></p>       <p >Se utilizó un antiveneno       polivalente liofilizado antibothrópico, anticrotálico y antilachésico (Antivipmyn-Tri<sup>&#174;</sup>)  	  digerido con pepsina [F(ab&#8217;)2], lote B-2G-02, con fecha de expiración 02 de julio de 2007,  	  producido por    el Instituto Bioclón de México a partir del plasma hiperinmune de       caballos inmunizados con los venenos de <em>B. asper</em> de México, <em>C. durissus</em> de  	  Suramérica y <em>L. muta</em> de Centroamérica. El producto final, que era estéril y estaba libre  	  de pirógenos   y de albúmina, tenía una concentración de proteínas<sup>21 </sup>de 1,86 g/dL.  	  La dosis efectiva 50% (DE50) neutralizante del       efecto letal de los venenos de <em>B. asper</em> de Antioquia / Chocó y       de <em>B. atrox</em> del Meta (especie que habita en la Amazonia y en la Orinoquia)       en ratones Swiss Webster (18-20 g), se determinó siguiendo       el método de Spearman-Karber<sup>22,23</sup> (<a href="#tabla1">Tabla Nº 1</a>). </p>       <p align="center" ><a name="tabla1"></a><img src="/img/revistas/iat/v20n3/a2i01.jpg"> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p >Antes de la iniciación       del estudio, el proyecto fue aprobado por los comités de ética médica de       la Universidad de Antioquia y de los hospitales participantes. Así mismo,       el proyecto y la importación del antiveneno requerido fueron aprobados       por la Comisión Revisora de Medicamentos del Invima, acta 25 de agosto       28 de 2002.</p>       <p ><b>Datos clínicos y epidemiológicos</b></p>       <p >El estudio se diseñó para       una muestra de 60 pacientes durante 9 meses. Los pacientes (niños y adultos)       ingresaron al estudio si llenaban los siguientes criterios:</p>       <p >1) Haber sufrido una       mordedura por <em>B. asper</em> (mapaná, equis) o por <em>B. atrox</em> (cuatronarices,       jergón, jararaca), confirmada por examen de la serpiente viva o muerta,       efectuado por el paciente, por sus familiares o por el médico (<a href="#figura1">Figuras       Nº 1A y 1B</a>).</p>       <p align="center" ><a name="figura1"></a><img src="/img/revistas/iat/v20n3/a1i02.gif"> </p>     <p >2) Consultar a los hospitales       de Quibdó (Chocó), Apartadó, Caucasia, Tarazá,       Puerto Berrío, Vegachí (Antioquia) y Leticia (Amazonas), con menos de 48       horas de evolución de la mordedura (<a href="#figura2">Figura Nº 2</a>).</p>       <p align="center" ><a name="figura2"></a><img src="/img/revistas/iat/v20n3/a2i03.jpg"> </p>     <p >3) Presentar alteraciones       de la coagulación sanguínea al ingreso, con o sin sangrado local o sistémico.</p>       <p >4) No haber recibido       antiveneno antes de ingresar al hospital.</p>       <p >Se obtuvo el consentimiento       informado de todos los pacientes o de sus familiares. En el formulario       se registraron los siguientes datos: edad, sitio de la mordedura y tiempo       transcurrido entre ésta, el ingreso y el comienzo de la seroterapia;       atención por la medicina tradicional; tamaño y especie de la serpiente;       signos de envenenamiento local y sistémico; resultados de los exámenes       hematológicos, bacteriológicos, de química clínica e imágenes diagnósticas;       pruebas de coagulación y determinación de la concentración de fibrinógeno       en el plasma 24 (normal por encima de 150 mg/dL) al ingreso y a las 6, 12,       24, 48, 72 y 96 horas después de la faboterapia;       dosis del antiveneno; reacciones tempranas adversas (RTA);<sup>7-10,22</sup>   	  tratamientos complementarios (antibióticos, cirugías, etc.);       complicaciones y evolución final. Además, se programaron para cada paciente       una o varias citas de revisión después del alta, para detectar las reacciones       tardías de hipersensibilidad (RTH o enfermedad del suero)<sup>19,22,25</sup> que aparecen 5-24 días después de aplicado el antiveneno, y para determinar       la evolución y las secuelas.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p ><b>Grado de envenenamiento y tratamiento</b></p>       <p >Se dividió a los pacientes       en 3 grupos (envenenamiento leve, moderado y grave) siguiendo criterios       ya descritos (<a href="#tabla2">Tabla Nº 2</a>).<sup>4,9 </sup>Basados en estudios previos, solo los       pacientes con envenenamiento grave tienen riesgo de muerte y de secuelas.<sup>1,2,7-9</sup></p>       <p align="center" ><a name="tabla2"></a><img src="/img/revistas/iat/v20n3/a2i04.jpg"> </p>     <p >Los pacientes que presentaron       envenenamiento leve o moderado recibieron una dosis inicial de 5 frascos       de antiveneno; quienes tenían envenenamiento grave y los mordidos por una       serpiente de más de 1 metro (independientemente del grado del envenenamiento       al ingreso, si éste fue en las primeras 6 horas), recibieron una dosis       inicial de 10 frascos del antiveneno (<a href="#tabla2">tabla Nº 2</a>), por la frecuente asociación       con envenenamiento grave.<sup>1,2,6-9</sup> No se hicieron premedicación con antihistamínicos o esteroides       ni pruebas de sensibilidad porque no tienen valor predictivo.<sup>10,19,26</sup> En       consecuencia, se vigiló estrictamente a todos los pacientes durante 24       horas por considerarlos potencialmente reactivos a la seroterapia. Las reacciones tempranas adversas (RTA) o eventos       adversos a la seroterapia, definidas por la OMS<sup >22 </sup>como las que se presentan durante las primeras       24 horas después de aplicado el antiveneno, fueron clasificadas como leves       (cutáneas, gastrointestinales, fiebre, escalofríos), moderadas (leve hipotensión,       edema angioneurótico facial) y graves (edema angioneurótico de       la vía aérea, broncoespasmo, choque, paro cardíaco).       Cuando ocurrieron, se hicieron los tratamientos convencionales.<sup>9,25</sup> Brevemente, se detuvo       la infusión de antiveneno y se administró adrenalina subcutánea (SC) o       IV según la gravedad de la reacción (0,2-0,5 mg en       adultos; 0,01 mg/kg en niños), un corticoide IV equivalente a 100-200 mg de hidrocortisona cada 6 horas por 24 horas y un antihistamínico       IV. Cuando los síntomas desaparecieron, se reanudó cuidadosamente la infusión.</p>       <p >Se consideraron como       criterios de eficacia de la dosis inicial de antiveneno el cese de las       hemorragias local y sistémica (diferentes de la hematuria) en las primeras       12 horas de tratamiento y la normalización de la coagulación sanguínea       (pruebas de coagulación o fibrinógeno) durante las primeras 24 horas de       la seroterapia.<sup>7-9</sup> Si no se lograban esos criterios, se administraba una dosis adicional de 3       frascos de antiveneno a las 12 (por sangrado persistente) o a las 24 horas       (por coagulopatía persistente).</p>       <p ><b>Test de coagulación del todo o nada en 20 minutos (20 min WB         WBCT) </b></p>       <p >Este método, sencillo       y rápido, se efectuó al ingreso y a las 6, 12, 24, 48, 72 y 96 horas después       de administrado el antiveneno: se dejó en reposo 20 minutos a temperatura       ambiente un tubo de ensayo de vidrio, limpio y seco, con 3 mL de       sangre, y luego se lo inclinó suavemente para observar si había o no formación       de coágulo total y firme.<sup>27-29</sup></p>       <p ><b>Concentraciones séricas de veneno y antiveneno</b></p>       <p >Estas concentraciones       se determinaron por medio de un inmunoensayo (ELISA), siguiendo la técnica descrita por Theakston et al. 	  <sup>30,31</sup> con pequeñas modificaciones.<sup>7,27,32</sup> Se       recolectaron las muestras de sangre (3 mL) en tubos de ensayo limpios y secos al ingreso y a las       1, 6, 12, 24, 48, 72 y 96 horas después del comienzo de la seroterapia.       Se congeló el suero obtenido a -20 ºC hasta el       momento de usarlo. Los resultados se expresaron en &micro;L de antiveneno/mL de       suero con referencia a una curva estándar preparada con concentraciones       conocidas del antiveneno F(ab&#8217;)2, desde 0,8 hasta 50 &micro;L de antiveneno/mL de       suero, utilizando como diluyente suero humano (dilución 1:1.000) proveniente       de 63 donantes sanos de la región de estudio y del mismo grupo socioeconómico.       Se utilizaron las muestras tomadas al ingreso como controles negativos       individuales para el inmunoensayo de cuantificación       de las concentraciones de antiveneno. Se determinó la línea basal para       el inmunoensayo de las concentraciones de veneno cuantificando       las absorbancias en las 63 muestras de suero       de los donantes sanos, e interpolando los resultados en una curva de concentraciones       conocidas de veneno. Las absorbancias a 492 nm fueron       0,055 &#177; 0,025 (media &#177; DE). Usando 0,105 como punto de corte negativo (media       + 2 DE), dos de los 63 sueros de donantes sanos fueron positivos. La especificidad       fue 96,8%, y el límite más bajo para la detección de veneno fue 8,4 ng/mL.</p>       <p ><b>Análisis estadístico</b></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p >Se construyó una base       de datos con la información de los pacientes y se la analizó utilizando       el software estadístico STATISTICA 98 (<em>Statsoft Inc., Tulsa,       OK, USA</em>). Los promedios de las       concentraciones iniciales de veneno y antiveneno se compararon, para los       grupos de pacientes según el grado de envenenamiento, mediante análisis       de varianza unifactorial. Luego, se utilizó el       análisis de varianza multivariado en la comparación       de las mediciones repetidas en el tiempo. La asociación entre variables       cualitativas se estableció mediante la prueba exacta de Freeman y Halton en el  	  <em>software StatXact 6.2 (Cytel Software Corporation, Cambridge, MA, USA)</em>, y entre variables cuantitativas por la prueba t de Student.       Se consideraron significativas las diferencias cuando p era menor de 0,05.</p>       <p ><b>RESULTADOS</b></p>       <p >    <b>Aspectos clínicos y epidemiológicos</b></p>       <p >En 2003, entre marzo       y noviembre, 53 pacientes llenaron los criterios para su inclusión en el       estudio; 44 de ellos fueron mordidos por <em>B. asper</em> (22 en Chocó y 22 en       Antioquia), y nueve lo fueron por <em>B. atrox</em> en Leticia (Amazonas).       Trece pacientes (24,5%) eran menores y 40 (75,5%) mayores de 15 años, muchos       de estos adultos eran agricultores (<a href="#tabla3">Tabla Nº 3</a>). </p>       <p align="center" ><a name="tabla3"></a><img src="/img/revistas/iat/v20n3/a2i05.jpg"> </p>     <p >El accidente fue significativamente       más frecuente en hombres (37 casos = 69,8%; p = 0,004), en áreas rurales       (49 accidentes = 92,5%; p &lt; 0,001) y en las extremidades inferiores       (38 = 71,7%; p = 0,002), principalmente en los pies (47,2%). Quince de       las víctimas (28,3%) fueron mordidas en las manos.</p>       <p >Trece mordeduras (24,5%)       fueron de animales adultos (mayores de 1 m) y en seis de ellas ocurrió necrosis       local. Veintitrés pacientes (43,4%) fueron atendidos inicialmente por curanderos       en sus veredas, donde recibieron remedios tradicionales; 39 del total (73,6%)       consultaron a los hospitales en las primeras seis horas después del accidente,       seis de 53 (11,3%) en la primera hora, y nueve (17,0%) en la segunda hora;       otros nueve (17,0%) acudieron al hospital entre las 6 y 12 horas y cinco       más (9,4%) consultaron después de las 12 horas. Cincuenta y dos pacientes       (98,1%) tuvieron signos locales de envenenamiento, principalmente edema,       hemorragia activa/equimosis (56,6%), flictenas (9,4%) y necrosis (11,3%).       Los 53 pacientes presentaban sangre incoagulable al       ingreso, 24 (45,3%) tenían sangrado sistémico con o sin hematuria, especialmente gingivorragia (<a href="#tabla3">tabla       Nº 3</a>). El grado final de envenenamiento fue leve en 13 pacientes (24,5%),       moderado en 30 (56,6%) y grave en 10 (18,9%).</p>       <p ><b>Respuesta terapéutica</b></p>       <p >Cuarenta y ocho pacientes       (90,6%) recibieron una dosis inicial de 5 frascos de antiveneno y los cinco       restantes, 10 frascos. Cinco pacientes que llegaron a tener finalmente       envenenamiento grave fueron inicialmente asignados a una categoría inferior       de envenenamiento por no tener disponible el resultado de la creatinina al       ingreso o porque consultaron en las primeras 2-6 horas después de la mordedura,       cuando el cuadro clínico no estaba totalmente instalado, lo cual explica       que no hayan recibido 10 frascos como se planteó en los métodos para los       casos de envenenamiento grave. Veintitrés (95,8%) de los 24 pacientes que       tuvieron hemorragia sistémica diferente de la hematuria dejaron de sangrar       en las primeras 6 horas después de iniciada la faboterapia,       y el otro, en las 6 horas siguientes. El cese de la hemorragia local tuvo       un comportamiento similar (<a href="#tabla4">Tabla Nº 4</a>). </p>       <p align="center" ><a name="tabla4"></a><img src="/img/revistas/iat/v20n3/a2i06.jpg"> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p >La hematuria cesó en       12 horas en seis pacientes (33,3%), en 24 horas en 15 (83,3%) y en 48 horas       en 17 (94,4%). La coagulación se normalizó (20 min WBCT)       en 6 horas en 10 casos (18,9%) y en 12 horas en otros 27 (50,9%). A las       24 horas ya era normal en 51 (96,2%) pacientes (<a href="#tabla4">tabla       Nº 4</a>). Las excepciones       fueron dos casos de hipoprotrombinemia persistente       (TP de 16 y 23 segundos a las 24 horas, con control de 11,7 segundos, coágulo       incompleto y fibrinógeno normal), que se corrigieron en las siguientes       24 horas con dosis adicionales de 3 frascos de antiveneno. Además, hubo       dos recurrencias de la coagulopatía (20 min WBCT alterado, fibrinógeno 100 y 110 mg/dL, respectivamente) a las 24       horas (un caso leve) y a las 48 horas (un caso moderado) que previamente       habían normalizado la coagulación a las 12 y 24 horas, respectivamente,       recurrencia que se corrigió en ambos casos en las siguientes 12 horas,       también con la aplicación de una dosis adicional de tres frascos de antiveneno.       A las 72 horas la coagulación se había normalizado en todos los pacientes.</p>       <p >En 18 pacientes (34%)       no progresó el edema después de aplicado el antiveneno. Por consiguiente,       el cese de su progresión se consideró solo en 35 casos: en 32 de ellos       (91,4%) cesó en las primeras 24 horas y lo mismo ocurrió durante el segundo       y tercer días en los tres casos restantes.</p>       <p >Dieciséis pacientes       (30,2%) recibieron dosis adicionales de antiveneno (3 frascos). Diez de       ellos por fuera del protocolo establecido, así: dos por persistencia del       sangrado a las 6 horas y 8 por sangre incoagulable: dos de éstos a las 6 horas y seis a las 12       horas. Otros dos las recibieron por tener sangre incoagulable a       las 24 horas; dos más por recurrencia de la coagulopatía (24       y 48 horas) y dos para ajustar a las 6 horas la dosis recomendada en mordeduras       por <em>B. asper</em> mayor de 1 m y envenenamiento grave. No hubo asociación estadísticamente significativa       (p &gt; 0,05) entre la dosis inicial de antiveneno (5 ó 10 frascos) y el       tiempo requerido para que se normalizara la coagulación (6, 12 ó 24 horas).       Tampoco la hubo entre la restauración de la coagulación en las primeras       12 ó 24 horas y la aplicación de dosis adicionales de antiveneno a las       6 ó 12 horas. Sin embargo, los dos casos de recurrencia de la coagulopatía habían       recibido la dosis inicial más baja de antiveneno (5 frascos).</p>       <p >El fibrinógeno plasmático       solo se pudo cuantificar en 23 pacientes, cuya concentración al ingreso       era de 22,7 &#177; 7,4 mg/dL (media &#177; error estándar de la media). En la <a href="#figura3">figura       Nº 3</a>    se puede ver que la concentración de fibrinógeno aumentaba significativamente       (p &lt; 0,001) desde las 6 (79,2 &#177; 15,7 mg/dL) y 12 horas (155,7 &#177; 18,6 mg/dL) hasta su normalización en la mayoría de los pacientes       en el transcurso de 12-24 horas en concordancia con la restauración del test de coagulación.</p>       <p align="center" ><a name="figura3"></a><img src="/img/revistas/iat/v20n3/a2i07.jpg"> </p>     <p ><b>Concentraciones séricas de veneno y antiveneno</b></p>       <p >Se cuantificaron en       36 pacientes: 5 leves, 23 moderados y 8 graves. Antes de administrar el       antiveneno, las concentraciones séricas de veneno eran significativamente       más altas (p = 0,02) en los casos moderados (141,8 &#177; 27,7 ng/mL)       y graves (191,5 &#177; 67,5 ng/mL)       que en los leves (15,4 &#177; 2,3 ng/mL)       (media &#177; error estándar de la media), pero no había diferencia entre las       concentraciones de veneno al ingreso de los grupos de casos moderados y       graves (p = 0,63). Al final de la infusión del antiveneno (1 hora), las       concentraciones séricas de veneno disminuían significativamente y en los       intervalos posteriores permanecían por debajo del punto de corte en la       mayoría de los 36 pacientes (<a href="#figura4">Figura Nº 4A</a>). </p>       <p align="center" ><a name="figura4"></a><img src="/img/revistas/iat/v20n3/a2i08.jpg"> </p>     <p >Sin embargo, 12 de los       36 pacientes (33,3%), 8 de ellos casos moderados y 4 graves, presentaron       recurrencia de la antigenemia (10-70 ng/mL)       entre las 6 y 96 horas después de iniciada la faboterapia,       aunque tuvo significado clínico en solo uno de ellos que presentó coagulopatía persistente,       sin sangrado, hasta las 48 horas.</p>       <p >No hubo asociación estadísticamente       significativa (p = 0,14) entre recurrencia de la antigenemia sin       significado clínico y envenenamiento moderado/grave; tampoco la hubo (p       = 0,82) con la dosis inicial de antiveneno administrada. Las concentraciones       séricas de antiveneno aumentaron significativamente al final de la infusión       de Antivipmyn Tri<sup>&#174;</sup> (1 hora), y permanecieron detectables con una curva de descenso progresivo,       durante las 96 horas en que se hizo el ensayo (<a href="#figura4">Figura       Nº 4B</a>).</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p ><b>Reacciones tempranas adversas al antiveneno (RTA)</b></p>       <p >Diez pacientes (18,9%)       presentaron eventos adversos, que en nueve fueron considerados leves (reacciones       cutáneas, febriles, gastrointestinales) (<a href="#tabla5">Tabla Nº 5</a>). </p>       <p align="center" ><a name="tabla5"></a><img src="/img/revistas/iat/v20n3/a2i09.jpg"> </p>     <p >Un paciente de 73 años       presentó una reacción moderada (hipotensión de 80/60). Todos los eventos       adversos ocurrieron durante la infusión del antiveneno o en las dos horas       siguientes. En dos de los pacientes se presentaron con la administración       de la dosis adicional del faboterápico. Todos los pacientes con RTA respondieron pronto       (1-2 horas) al tratamiento convencional.</p>       <p ><b>Reacciones tardías de hipersensibilidad al antiveneno         (RTH)</b></p>       <p >Como la mayoría de los       pacientes provenían de áreas rurales, solo cuatro regresaron a control       clínico después de haber sido dados de alta. Uno de ellos presentó una       RTH (urticaria) cinco días después de la administración del faboterápico,       la cual respondió en 24 horas con la administración de un corticoide intramuscular       (IM) y un antihistamínico oral (hidroxicina).</p>       <p ><b>Complicaciones y evolución final</b></p>       <p >Seis pacientes (11,3%)       tuvieron insuficiencia renal aguda y respondieron al tratamiento de soporte       sin requerir diálisis. En 16 pacientes (30,2%) se presentaron infecciones       de tejidos blandos, a saber: celulitis sin absceso en 10 casos y abscesos       que fueron drenados quirúrgicamente en seis, uno de ellos con artritis       séptica de la articulación metacarpofalángica del       dedo pulgar (<a href="#figura5">Figura Nº 5</a>).</p>       <p align="center" ><a name="figura5"></a><img src="/img/revistas/iat/v20n3/a2i10.jpg"> </p>     <p >Dados los escasos recursos       para estudios microbiológicos en los hospitales del estudio, solo en uno       de los pacientes se logró aislar un bacilo gramnegativo que       no fue identificado, sensible a ciprofloxacina y gentamicina.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p >No hubo muertes. Cuatro       pacientes (7,5%) quedaron con secuelas, que en dos fueron pérdidas de masa       muscular por necrosis; además de ellos una niña de cuatro años presentó síndrome compartimental y       necrosis del dedo índice, por lo que requirió fasciotomía en       el dorso de la mano y luego amputación del dedo. El cuarto de estos pacientes       tuvo subluxación metacarpofalángica del       dedo pulgar con pérdida del cartílago articular, secundarias a artritis       séptica y lesión intrarticular ocasionada por       el veneno (<a href="#figura5">Figura Nº 5</a>).</p>       <p ><b>DISCUSIÓN</b></p>       <p >Desde la reunión efectuada       en Zúrich (1979) por el Comité de Expertos de       la OMS, se han recomendado los ensayos clínicos controlados como la mejor       forma de evaluar la eficacia, dosificación y seguridad de un antiveneno,       y se ha promovido la producción mundial de antivenenos de mayor pureza       (Fab2 y Fab)       para disminuir la incidencia de RTA.<sup>22,33</sup></p>       <p >La desfibrinación se       presenta en el 60-80% de los pacientes y facilita el sangrado tanto local       como en órganos distantes del sitio de la mordedura, cuando hay daño en       la microvasculatura inducido por las hemorraginas o en presencia de trombocitopenia;       dicho sangrado puede poner en peligro la vida.<sup>1,7-9,34-38</sup> Por       tal motivo, en diversos estudios de accidentes ocasionados por <em>B. asper</em>  	  y por otras especies de víboras, llevados a cabo en América y en otros continentes,       se ha concluido que una de las metas del tratamiento con antivenenos es       detener en las primeras 6-12 horas los sangrados local y sistémico y normalizar       la coagulación sanguínea.<sup>27,29</sup> </p>       <p >Los resultados del presente       trabajo son similares a los de tres estudios controlados hechos previamente       en Colombia con antivenenos F(ab&#8217;)2 producidos en Brasil (Instituto Butantán),       y de IgG total producidos en Costa Rica (Instituto Clodomiro Picado,       ICP) y Colombia (Instituto Nacional de Salud, INS), puesto que en todos       los pacientes se detuvieron los sangrados local y sistémico en las primeras       6-12 horas, y se normalizó la coagulación en las primeras 24 horas en el       96,2-100% de los pacientes (<a href="#tabla4">Tabla Nº 4</a>).<sup>7-9</sup> Estos criterios son       simples y están al alcance de todos los clínicos en todos los lugares,       para valorar la eficacia de un antiveneno en accidente bothrópico.       Los cuatro estudios concuerdan también en que, independientemente de la       dosis inicial de antiveneno administrada, es bajo el número de pacientes       mordidos por <em>B. asper </em>y <em>B. atrox</em> que normalizan la coagulación en 6 horas (11-30%).</p>       <p >En este estudio, 16       pacientes (30,2%) recibieron dosis adicionales de antiveneno. La administración       de una dosis adicional de este preparado a las 6 ó 12 horas no afectó el       resultado del test de coagulación en las primeras       24 horas. Así, parece innecesaria la recomendación de administrar dosis       adicionales de antiveneno a las 6 ó 12 horas, si no se ha normalizado la       coagulación sanguínea en ese tiempo, cuando se han administrado dosis iniciales       adecuadas como las aquí utilizadas. Por otra parte, en algunos individuos       pueden ser inconvenientes las dosis adicionales, por representar un exceso       de antiveneno e incrementar el riesgo de RTA, tal como sucedió en dos pacientes       de este estudio. Lo anterior permite también sugerir que las dosis adicionales       estarían recomendadas solo en las siguientes circunstancias: si a las 12       horas persiste un sangrado diferente a la hematuria, si a las 24 horas       persiste la coagulopatía, si a las 48 horas continúa       progresando el edema, o en casos de recurrencia de cualquiera de estas       tres situaciones clínicas.<sup>7-9,19</sup></p>       <p >El fenómeno de recurrencia       de los signos locales de envenenamiento (edema, hemorragia), de la coagulopatía  	  (hipofibrinogenemia),       de la trombocitopenia y de la elevación del nivel       sérico de veneno, se ha descrito en el tratamiento del envenenamiento grave       por crotálidos, utilizando cualquiera de los       3 tipos de antivenenos. Sin embargo, la recurrencia de la coagulopatía es más frecuente  	  con el uso de antivenenos de       fragmentos Fab (53%) y F(ab´)2 (5-17%).<sup>8,9,27,39-44</sup> El       otro factor que se relaciona con la recurrencia de la antigenemia y la coagulopatía es       la administración inicial de subdosis de antivenenos.<sup>8,9,45</sup> En el presente estudio, llevado  	  a cabo con un antiveneno       F(ab´)2, dos pacientes (3,8%), uno con envenenamiento leve y otro con un cuadro moderado,       cada uno de ellos tratado con una dosis inicial de cinco frascos del faboterápico,       tuvieron recurrencia de la coagulopatía (24 y       48 horas) sin sangrado adicional.</p>       <p >Hay otras explicaciones       posibles para el fenómeno de la recurrencia, que es más frecuente en las       primeras 72-96 horas de tratamiento, cuando se utilizan antivenenos de IgG y       F(ab´)2: 1) la disparidad en la cinética y dinámica       del veneno y del antiveneno; 2) el antiveneno falla en neutralizar inicialmente       todo el veneno; 3) el veneno no neutralizado en los depósitos tisulares (tercer       espacio) se puede difundir hacia el torrente circulatorio de tal manera       que finalmente la concentración sérica de antiveneno es insuficiente para       neutralizarlo; 4) la más rápida eliminación de los fragmentos F(ab´)2 o Fab no unidos a los antígenos, en comparación con la eliminación       de los componentes del veneno; 5) la separación de los complejos veneno/antiveneno       después de su unión inicial eficaz; 6) en algunos casos, un exceso de antiveneno       no parece prevenir la recurrencia de la antigenemia, porque una fracción del antiveneno no es funcional,       debido a su poca avidez por los antígenos o a que forma agregados.<sup>19,27,43,45 </sup>Tal como está descrito, la monitorización estricta       de la coagulación en los intervalos aquí recomendados es indispensable       para detectar oportunamente las recurrencias. La administración de una       dosis adicional de 3 frascos de antiveneno es suficiente en estos casos       para restaurar la coagulación en 12-24 horas.<sup>27,43,46</sup></p>       <p >Un hallazgo interesante       fue la persistencia de hipoprotrombinemia leve y coágulo incompleto en dos pacientes       mordidos por <em>B. asper</em>, con concentraciones       normales de fibrinógeno, 24 horas después de iniciado el tratamiento Esto       ha sido descrito en otros continentes (Australia), y en Brasil en mordeduras       por <em>B. jararaca</em>, especialmente con       el uso de antivenenos de baja potencia neutralizante de la fracción activadora       de la protrombina, en comparación con su alta actividad frente a otros       componentes del veneno.<sup>28,43,47,48 </sup>Adicionalmente, debe recordarse que los venenos       de <em>B. asper</em> y <em>B. atrox</em> tienen toxinas procoagulantes activadoras       de la protrombina (factor II) y del factor X, y toxinas desfibrinantes similares a la trombina,  	  que activan el fibrinógeno.<sup>34,49,50 </sup> Así, en algunos pacientes       puede observarse disparidad en la cinética de recuperación de los factores       de coagulación que estaban alterados, de modo que puede ser más rápida       la recuperación del fibrinógeno que la de la protrombina (observación personal).       Otra situación que puede presentarse es la persistencia a las 24 horas       de alteraciones de la coagulación, por activación del sistema fibrinolítico o       por la presencia de un factor antiagregante plaquetario.<sup>28</sup></p>       <p >Una dosis suficiente       de antiveneno en pacientes con accidentes bothrópicos logra       que cese el progreso del edema en 12 horas en el 80% de los casos y en       24 horas en el 95%.<sup>7-9</sup> En este estudio, la progresión del edema se detuvo en el 91,4% de los casos       en 24 horas y en el 97,1%       en 48 horas. Tal como se recomendó en los estudios previos, el progreso       del edema hasta el segundo día no se debe tomar como criterio para administrar       dosis adicionales de antiveneno, puesto que el edema es un fenómeno autofarmacológico (liberación       de sustancias endógenas) que desencadena el veneno.<sup>7-9,51 </sup>Por consiguiente, el cese de su progresión y su desaparición       posterior están relacionados con otros factores homeostáticos que no necesariamente       dependen de la neutralización del veneno por el antiveneno. Si el edema       sigue progresando después de 48 horas de iniciado el tratamiento, se debe       pensar en la posibilidad de infección sobreagregada y       correlacionar el cuadro clínico con los resultados de exámenes paraclínicos (observación       personal).</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p >A pesar de las innovaciones       tecnológicas introducidas en la producción de los tres tipos de antivenenos,       no se ha logrado eliminar las reacciones tempranas adversas (RTA). Se presentan       en el 5-87% de los pacientes tratados con antivenenos de IgG total       o F(ab&#8217;)2 y pueden ser anafilácticas (por IgE), anafilactoides (por activación del complemento), pirógenas       (por endotoxinas), idiosincrásicas o tóxicas       (por ejemplo, por el fenol, preservante utilizado en la producción de antivenenos       y que puede provocar hipotensión).<sup>7-9,19,26,52-62</sup> Entre los factores involucrados       en la generación de dichas reacciones adversas se encuentran: 1) a mayor       concentración de proteínas, incluyendo la albúmina, y de sus agregados,       mayor es la incidencia de RTA, situación que depende de los pasos seguidos       en la purificación de la IgG (el ácido caprílico permite       obtener un antiveneno más rico en IgG, libre       de albúmina y con menor concentración de agregados de proteínas, que el       sulfato de amonio; los antivenenos F(ab&#8217;)2 tienen menor concentración  	  de proteínas que los antivenenos de IgG total);<sup>8,19,63</sup> 2) la activación del complemento según el tipo de antiveneno:       los de IgG total lo activan por la vía clásica       por la porción Fc de su molécula, en tanto que       los digeridos con pepsina [F(ab&#8217;)2] lo activan por la vía alterna;17 la actividad anticomplementaria es mayor en los de IgG total       fraccionada con sulfato de amonio;<sup>17,64 </sup> 3) la administración por vía IV tiene       mayor riesgo de RTA; 4) la naturaleza de la población expuesta.<sup>22 </sup>Los antivenenos Fab,       que no activan el complemento, son los que menos RTA inducen (1-14%), pero       su elevado costo limita su uso en países en vía de desarrollo.<sup>41,60,65</sup></p>       <p >Antivipmyn-Tri<sup>&#174;</sup> indujo en este trabajo eventos adversos (RTA) en 10 de 53 pacientes (18,9%),       frecuencia similar a la observada en un estudio reciente (18,4-19,4%) llevado       a cabo en la Amazonía brasileña (estado Pará)       con antivenenos F(ab&#8217;)2 producidos en dos institutos de Brasil,<sup>61 </sup>pero menor que la observada en Colombia y Ecuador       (19-81,8%) con antivenenos producidos en estos dos países y en el ICP de       Costa Rica entre 1994 y 1998, compuestos de IgG fraccionada       con sulfato de amonio.<sup>7-9,38,66</sup>  	  Ninguna de estas reacciones puso en peligro la vida de los       pacientes, y desaparecieron en pocas horas con el tratamiento convencional.</p>       <p >En conclusión, Antivipmyn-Tri<sup>&#174; </sup>demostró ser un faboterápico eficaz       y seguro para el tratamiento del envenenamiento bothrópico en       Colombia. Las dosis utilizadas fueron eficaces para revertir las alteraciones       clínicas y de laboratorio más relevantes de este envenenamiento.</p>       <p ><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>       <p >Al personal de los hospitales       en que se realizó el estudio. A Colciencias,       a la Universidad de Antioquia y al Instituto Bioclón S.       A. de C. V. (capital variable) de México, por el apoyo financiero para       la investigación. A Janeth Lucía García por las       labores de secretaría durante el desarrollo del proyecto y por la digitación       del manuscrito.</p>       <p ><b>REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS</b></p>       <!-- ref --><p >1. Otero R, Tobón GS,       Gómez LF, Osorio R, Valderrama R, Hoyos D, et al. Accidente ofídico en       Antioquia y Chocó. Aspectos clínicos y epidemiológicos (marzo de 1989-febrero       de 1990). <em>Acta Med Colomb</em> 1992; 17: 229-249.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0121-0793200700030000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >2. Otero R, Gutiérrez       J, Rodríguez O, Cárdenas SJ, Rodríguez L, Caro E, et al. Aspectos actuales       de las mordeduras de serpientes en Colombia. Propuesta de intervención       para un problema grave de salud en Antioquia y Chocó. <em>Rev Epidemiol       Antioquia</em> 2001; 26: 43-48.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0121-0793200700030000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >3. Otero R, Callejas       ME, Gutiérrez J, Lotero GJ, Rodríguez O, Villa NH, et al. Necesidades reales       de antivenenos en Colombia. Características de los productos y del mercado. <em>Rev       Epidemiol Antioquia</em> 2001; 26: 49-59.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0121-0793200700030000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >4. Silva- Haad JJ.       Las serpientes del género Bothrops en la Amazonía colombiana. <em>Acta       Med Colomb</em> 1989; 14: 148-165.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0121-0793200700030000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >5. Campbell       JA, Lamar WW. The Venomous Reptiles of the Western Hemisphere. Ithaca (NY): Cornell University Press; 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0121-0793200700030000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >6. Otero R, Valderrama       R, Osorio RG, Posada LE. Programa de atención primaria del accidente ofídico.       Una propuesta para Colombia. <em>Iatreia</em> 1992; 5: 96-102.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0121-0793200700030000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >7. Otero R, Gutiérrez       JM, Núñez V, Robles A, Estrada R, Segura E, et al. A randomized double-blind clinical trial of       two antivenoms in patients bitten by Bothrops atrox in       Colombia. <em>Trans R Soc Trop Med Hyg</em> 1996; 90: 696 -700.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0121-0793200700030000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >8. Otero R, Gutiérrez       JM, Rojas G, Núñez V, Díaz A, Miranda E, et al. A randomized blind clinical trial of two antivenoms prepared       by caprylic acid or ammonium sulphate fractionation of IgG, in <em>Bothrops</em> and <em>Porthidium</em> snake bites in Colombia. Correlation between safety and biochemical characteristics of antivenoms. <em>Toxicon</em> 1999; 37:       895-908.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0121-0793200700030000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >9. Otero-Patiño R, Cardoso JLC,       Higashi HG, Núñez V, Díaz A,       Toro MF, et al. A randomized, blinded, comparative trial of one pepsin-digested       and two whole IgG antivenoms for <em>Bothrops</em> snake bites in Urabá,       Colombia. <em>Am J Trop Med Hyg </em>1998; 58: 183-189.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0121-0793200700030000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >10. Ayres       JA, Barraviera B. Evaluation of the intradermal sensitivity       test in patients submitted to heterologous serotheraphy. <em>J Venom Anim       Toxins</em> 1999; 5: 142-152.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0121-0793200700030000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >11. Bon C.       The serum-therapy was discovered 100 years ago. <em>Toxicon</em> 1996; 34: 142-143.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0121-0793200700030000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >12. Gowda TV.       Interaction of snake venom phospholipases A2 with plant isolates.       In: Kini RM, ed. <em>Venom phospholipase A2 enzymes</em>, 1st ed. Chichester: John       Wiley &amp; Sons; 1997. p. 205-221.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0121-0793200700030000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >13. Melo PA, Ownby CL.       Ability of wedelolactone, heparin, and para-bromophenacyl bromide       to antagonize the myotoxic effects of two crotaline venoms       and their PLA2 myotoxins. <em>Toxicon</em> 1999; 37:       199-215.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0121-0793200700030000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >14. Lomonte B,       Lundgren J, Johansson B, Bagge U. The dynamics       of local tissue damage induced by <em>Bothrops asper</em> snake venom and myotoxin II       on the mouse cremaster muscle: an intravital and electron miocroscopic study. <em>Toxicon</em> 1994; 32:       41-55.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0121-0793200700030000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >15. Gutiérrez JM, León G,       Rojas G, Lomonte B, Rucavado A, Chaves F.       Neutralization of local tissue damage induced by <em>Bothrops asper</em> (terciopelo) snake       venom. <em>Toxicon</em> 1998; 36: 1529-1538.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0121-0793200700030000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >16. León G, Valverde Jm,       Rojas G, Lomonte B, Gutiérrez JM. Comparative       study on the ability of IgG and Fab sheep antivenoms to neutralize local hemorrhage, edema and myonecrosis induced       by <em>Bothrops asper</em> (terciopelo)       snake venom. <em>Toxicon</em> 2000; 38: 233-244.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0121-0793200700030000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >17. León G, Mongue M,       Rojas E, Lomonte B, Gutiérrez JM. Comparison between IgG and F(ab&#8217;)2       polyvalent antivenoms: neutralization of systemic       effects induced by <em>Bothrops asper</em> venom in mice, extravasation to       muscle tissue, and potential for induction of adverse reactions. <em>Toxicon</em> 2001; 39: 793-801.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0121-0793200700030000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >18. Chippaux JP, Goyffon M.       Venoms, antivenoms and immunotherapy. <em>Toxicon</em> 1998; 36: 823-846.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0121-0793200700030000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >19. Otero R. Seroterapia antivenenosa.       Ventajas del uso de antivenenos del tipo IgG, F(ab´)2 o Fab en picaduras de escorpiones y mordeduras de       serpientes. <em>Pediatría</em> 2002; 37: 8-16.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0121-0793200700030000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >20. Otero R, Núñez V, Barona J,       Díaz A, Saldarriaga M. Características bioquímicas       y capacidad neutralizante de cuatro antivenenos polivalentes frente a los       efectos farmacológicos y enzimáticos del veneno de <em>Bothrops asper</em> y <em>Porthidium       nasutum</em> de Antioquia y Chocó. <em>Iatreia</em> 2002; 15: 5 -15.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0121-0793200700030000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >21. Lowry       OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein       measurement with the folin phenol reagent. <em>J Biol Chem</em> 1951; 193: 265-275.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0121-0793200700030000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >22. WORLD       HEALTH ORGANIZATION. Progress in the Characterization of Venoms and Standardization of Antivenoms. WHO Offset Publication 1981; 58: 1- 44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0121-0793200700030000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >23. Robles       A, Gene JA. Determinación de la dosis       letal 50% por el método de Spearman-Karber. Toxicalc. San José: Publicación Offset,       Instituto Clodomiro Picado, 1ª ed. Universidad       de Costa Rica; 1990.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0121-0793200700030000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >24. Ratnoff OD, Menzie C. A         new method for the determination of fibrinogen in small samples of plasma. <em>J         Lab Clin Med</em> 1951; 37: 316-320.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0121-0793200700030000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >25. Fan HW, França FOS. Soroterapia. In: Schvartsman S, ed. <em>Plantas       Venenosas e Animais Peçonhentos</em>, 1ª ed. São Paulo: Sarvier;       1992. p. 176-181.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0121-0793200700030000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >26. Malasit P, Warrell DA, Chantavanich P, Viravan C, Mongkilsapaya J, Singhthong B,       et al. Prediction, prevention and mechanism of early (anaphylactic) antivenom reactions       in victims of snake bites.<em> Br Med J</em> 1986; 292: 17-20.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0121-0793200700030000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >27. Ho M, Warrell Da, Looareesuwan S,       Phillips RE, Chanthavanich P, Karbwang J,       et al. Clinical significance of venom antigen levels in patients envenomed       by the Malayan pit viper (<em>Calloselasma rhodostoma</em>). <em>Am J Trop       Med Hyg</em> 1986; 35: 579 -587.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0121-0793200700030000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >28. Sano-Martins       IS, Fan HW, Castro SCB, Tomy SC, França FOS,       Jorge MT, et al. Reliability of the simple 20 minute whole blood clotting       test (WBCT20) as an indicator of low plasma fibrinogen concentration in       patients envenomed by <em>Bothrops</em> snakes. <em>Toxicon</em> 1994; 32:       1045-1050.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0121-0793200700030000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >29. Warrell DA. Clinical         toxicology of snakebite in Asia. In: Meier J, White J, eds. <em>Handbook         of Clinical Toxicology of Animal</em>, <em>Venoms and Poisons</em>, 1st ed. Boca Ratón: CRC Press; 1995. p. 493-594.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0121-0793200700030000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >30. Theakston RDG, Lloyd-Jones MJ, Reid HA. Micro-ELISA         for detecting and assaying snake venom and venom antibody. <em>Lancet</em> 1977; 2: 639-641.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0121-0793200700030000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >31. Theakston       RDG, Fan HW, Warrell DA, Dias DA Silva WD, Ward SA, Higashi HG, et al. Use of enzyme       immunoassays to compare the effect and assess the dosage regimens of three       Brazilian <em>Bothrops</em> antivenoms. <em>Am J Trop Med Hyg</em> 1992; 47: 593-604.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0121-0793200700030000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >32. Barraviera B, Sartori A, Pereira DA Silva MF, Kaneo R, Peracolli MTS. Use of an Elisa assay       to evaluate venom, antivenom, IgG and IgM human antibody levels in serum and cerebrospinal fluid       from patients bitten by <em>Crotalus durissus terrificus</em> in Brazil. <em>J Venom       Anim Toxins</em> 1996; 2: 14-27.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0121-0793200700030000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >33. Theakston RDG, Warrell DA, Griffiths         E. Report of a WHO workshop on the standardization and control of antivenoms. <em>Toxicon</em> 2003; 41: 541- 557.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0121-0793200700030000200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >34. Kamiguti AS, Cardoso JLC.       Haemostatic changes caused by venoms of South American snakes. <em>Toxicon</em> 1989; 27: 955-963.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0121-0793200700030000200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >35. Kamiguti AS,       Hay CRM, Theakston RDG, Zuzel M.       Insights into the mechanism of haemorrhage caused by snake venom metalloproteinases. <em>Toxicon</em> 1996; 34: 627-642.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0121-0793200700030000200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >36. Escalante T,       Núñez J, Moura DA Silva AM, Rucavado A, Theakston RDG, Gutiérrez JM. Pulmonary hemorrhage induced       by jararhagin, a metalloproteinase from <em>Bothrops jararaca</em> snake venom. <em>Toxicol       Appl Pharmacol</em> 2003; 193: 17-28.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0121-0793200700030000200036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >37. Escalante       T, Rucavado A, Kamiguti AS, Theakston RDG, Gutiérrez JM. <em>Bothrops asper</em> metalloproteinase BaP1       is inhibited by alfa 2-macroglobulin and mouse       serum and does not induce systemic hemorrhage or coagulopathy. <em>Toxicon</em> 2004; 43: 213-217.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0121-0793200700030000200037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >38. Otero R, Gutiérrez       J, Mesa MB, Duque E, Rodríguez O, Arango JL, et al. Complications of <em>Bothrops</em>, <em>Porthidium</em> and <em>Bothriechis</em> snakebites in Colombia. A clinical       and epidemiological study of 39 cases attended in an university       hospital. <em>Toxicon</em> 2002; 40: 1107-1114. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0121-0793200700030000200038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >39. Warrell DA, Looareesuwan S, Theakston RDG,       Phillips RE, Chanthavanich P, Viravan C, et al. Comparative trial of three monospecific antivenoms for bites       by the Malayan Pit viper (<em>Calloselasma rhodostoma</em>) in Southern Thailand; clinical and laboratory       correlations. <em>Am J Trop Med Hyg </em>1986; 35: 1235- 1247.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0121-0793200700030000200039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >40. Chippaux JP,       Lang J, Eddinc SA, Fagot P, Rage V, Peyrieux JC, et al. Clinical safety of a polyvalent F(ab´)2 equine antivenom in       223 African snake envenomations: a field trial       in Cameroon. VAO (Venin Afrique de l´Ouest) Investigators. <em>Trans R       Soc Trop Med Hyg</em> 1998; 92: 657-662.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0121-0793200700030000200040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >41. Dart RC, Macnally J.       Efficacy, safety, and use of snake antivenoms in       the United States. <em>Ann Emerg Med</em> 2001; 37:       181-188.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0121-0793200700030000200041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >42. Seifert       SA, Boyer LV. Recurrence phenomena after immunoglobulin therapy for snake envenomations:       Part 1. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of       immunoglobulin antivenoms and related antibodies. <em>Ann Emerg Med</em> 2001; 37: 189-195.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0121-0793200700030000200042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >43. Boyer       LV, Seifert SA, Cain JS. Recurrence phenomena after immunoglobulin therapy       for snake envenomations: Part 2. Guidelines       for clinical management with crotaline Fab antivenom. <em>Ann Emerg Med</em> 2001; 37: 196-201.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0121-0793200700030000200043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >44. Ho M, Silamut K,       White NJ, Karbwang J, Looareesuwan S,       Phillips RE, et al. Pharmacokinetics of three commercial antivenoms in       patients envenomed by the Malayan pit viper, <em>Calloselasma rhodostoma</em>, in Thailand. <em>Am       J Trop Med Hyg</em> 1990; 42: 260-266.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S0121-0793200700030000200044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >45. Lalloo DG, Theakston RDG. Snake antivenoms. <em>J Toxicol Clin Toxicol</em> 2003; 41: 277-290.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0121-0793200700030000200045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >46. Otero R, Mesa MB.       Mordeduras graves por serpientes. In: Quevedo A, Martínez Y, Duque JI,       Mejía JA, eds. <em>El niño en estado crítico</em>, 1ª ed. Medellín: CIB; 2001. p. 571-578.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0121-0793200700030000200046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >47. Henderson       A, Baldwin LN, May C. Fatal brown snake (<em>Pseudonaja textilis</em>) envenomation despite the       use of antivenom. <em>Med J Aust</em> 1993; 158: 709-710.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0121-0793200700030000200047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >48. Masci PP, Mirtschin PJ, Nias TN,       Turnbull RK, Kuchel TR, Whitaker AN.       Brown snakes (<em>Pseudonaja genus</em>): venom yields, prothrombin activator       neutralization and implications affecting antivenom usage. <em>Anaesth       Intensive Care</em> 1998; 26: 276-281.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0121-0793200700030000200048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >49. Markland FS. Snake         venoms and the hemostatic system. <em>Toxicon</em> 1998; 36: 1749-1800.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0121-0793200700030000200049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >50. Sano-Martins IS, Santoro ML. Distúrbios hemostáticos em envenenamentos por animais peçonhentos no       Brasil. In: Cardoso JLC, França FOS,       Fan HW, Málaque CMSA, Haddad Jr V, eds. <em>Animais Peçonhentos no Brasil. Biología, Clínica e Terapêutica dos Accidentes</em>, 1ª ed. São Paulo: Sarvier; 2003. p. 289-309.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0121-0793200700030000200050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >51. Gutiérrez JM, Lomonte B.       Efectos locales en el envenenamiento ofídico en       América Latina. In: Cardoso JLC, França FOS,       Fan HW, Málaque CMSA, Haddad Jr V, editors. <em>Animais Peçonhentos no Brasil. Biología, Clínica e Terapêutica dos Accidentes</em>, 1ª ed. São Paulo: Sarvier; 2003. p. 310-323.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0121-0793200700030000200051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >52. García M, Monge M,       León G, Lizano S, Segura E, Solano G, et al. Effect of preservatives on IgG aggregation, complement-activating       effect and hypotensive activity of horse polyvalent antivenom used in snakebite envenomation. <em>Biologicals </em>2002; 30: 143-151.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000170&pid=S0121-0793200700030000200052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >53. Jurkovich GJ, Luterman A, Mccullar K, Ramenofsky ML, Curreri PW. Complications of Crotalidae antivenin therapy.    <em>J Trauma</em> 1988; 28: 1032-1037.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0121-0793200700030000200053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >54. Cupo P, Azevedo-Marques       MM, De Menezes JB, Hering SE. Reaçoes de hipersensibilidade imediatas apos uso intravenoso       de soros antivenenos: valor prognistico dos       testes de sensibilidade intradermicos. <em>Rev Inst Med Trop São Paulo</em> 1991; 33: 115-122.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000172&pid=S0121-0793200700030000200054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >55. Cardoso JLC,       Fan HW, França FOS, Jorge MT, Leite SA, Nishioka SA,       et al. Randomized comparative trial of three antivenoms in the treatment of envenoming by lance-headed       vipers (<em>Bothrops jararaca</em>) in São Paulo,       Brazil. <em>Q J Med </em>1993; 56: 315-325.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0121-0793200700030000200055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >56. Teixeira-Caiaffa W, Vlahov D, Figueiredo-Antunes CM, Ramos De Oliveira H, Diniz CR. Snake bite and antivenom complications in Belo Horizonte,       Brazil. <em>Trans R Soc       Trop Med Hyg</em> 1994; 88: 81-85.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000174&pid=S0121-0793200700030000200056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >57. Smith       DC, Reddi KR, Laing G, Theakston RDG,       Landon J. An affinity purified ovine antivenom for       the treatment of <em>Vipera berus</em> envenoming. <em>Toxicon</em> 1992; 30:       865-871.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0121-0793200700030000200057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >58. Sutherland       SK. Antivenom use in Australia. Premedication, adverse reactions       and the use of venom detection kits. <em>Med J Aust</em> 1992; 157: 734 &#8211;739.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000176&pid=S0121-0793200700030000200058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >59. Karlson-Stiber C, Persson H. Antivenom treatment       in <em>Vipera berus</em> envenoming: report of       30 cases. <em>J Intern Med</em> 1994; 235: 57-61.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0121-0793200700030000200059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >60. Kirkpatrick       CH. Allergic histories       and reactions of patients treated with digoxin immune Fab (ovine) antibody. <em>Am       J Emerg Med</em> 1991; 9 (Suppl. 1):       7-10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000178&pid=S0121-0793200700030000200060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >61. Pardal PPO,       Souza SM, Monteiro MRCC, Fan HW, Cardoso JLC, França FOS, et al.       Clinical trial of two antivenoms for the treatment       of <em>Bothrops</em> and <em>Lachesis</em> bites in the north eastern       Amazon region of Brazil. <em>Trans R Soc       Trop Med Hyg</em> 2004; 98: 28-42.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0121-0793200700030000200061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >62. Rawat S, Laing G,       Smith DC, Theakston RDG, Landon J. A       new antivenom to treat Eastern Coral snake (<em>Micrurus fulvius fulvius</em>) envenoming. <em>Toxicon</em> 1994;       32: 185-190.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000180&pid=S0121-0793200700030000200062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >63. Rojas       G, Jiménez JM, Gutiérrez JM. Caprylic acid fractionation of hyperimmune horse plasma. Description       of a simple procedure for antivenom production. <em>Toxicon</em> 1994; 32:       351-363.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0121-0793200700030000200063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >64. Morais JF,       De Freitas MCW, Yamaguchi IK, Dos Santos MC,       Dias Da Silva WD. Snake antivenoms from hyperimmunized horses:       comparison of the antivenom activity and biological properties of their whole IgG and       F(ab´)2 fragments. <em>Toxicon</em> 1994; 32: 725-734&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000182&pid=S0121-0793200700030000200064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >65. Chippaux JP. The development and use of immunotherapy in         Africa. <em>Toxicon</em> 1998; 36: 1503-1506.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S0121-0793200700030000200065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p >66. Smalligan R,       Cole J, Brito N, Laing GD,       Mertz BL, Manock S,       et al. Crotaline snake bite in the Ecuadorian       Amazon: randomized double blind comparative trial of three South American polyspecific antivenoms. <em>Br Med J</i></em> 2004; 329: 1129-1135.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000184&pid=S0121-0793200700030000200066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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