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<article-id pub-id-type="doi">10.17533/udea.iatreia.v28n3a04</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Colonización y factores de virulencia de Staphylococcus aureus resistente a meticilina en una población infantil de Montería]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Colonization and virulence factors of methicillin resistant Staphylococcus aureus in a pediatric population in Montería, Colombia]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Colonização e fatores de virulência de Staphylococcus aureus resistente a meticilina numa população infantil de Montería]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) is able to colonize the human body, most frequently the nostrils, but also the hands, perineum and throat. Such colonization has been proposed as a risk factor to acquire future infections. Objective: To determine the prevalence, and the microbiological and molecular characteristics of MRSA in healthy children. Methodology: A cross-sectional descriptive study was done of 150 children from 13 day care centers in Montería, Colombia. Nasal and throat swabs were obtained. The isolates were identified and characterized by microbiological and molecular methods. Results: The MRSA colonization rate was 9.3% (14/150). 62.5% of the isolates carried the subtype IVc of SCCmec, and 87.5% had the genes encoding for PVL and Sek, while 81.2% carried the gene bsaB. Conclusion: The percentage of colonization found is one of the highest reported among children from the Colombian Caribbean region, and the isolates have virulence factors that have been associated with an aggressive clinical course.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Introdução: Staphylococcus aureus resistente a meticilina (SARM) pode colonizar o corpo humano, com maior frequência nas fossas nasais, mas também nas mãos, o períneo e a faringe. Ademais, propôs-se do que a colonização pode ser um fator de risco para adquirir infecções futuras. Objetivo: determinar a prevalência e as características microbiológicas e moleculares do SARM numa população infantil sã. Metodologia: fez-se um estudo descritivo transversal para determinar a taxa de colonização nasal por SARM em 150 crianças pertencentes a 13 lares infantis da cidade de Montería. Os isolamentos se fizeram a partir de amostras com suabe nasais e faríngeos, identificaram-se mediante provas microbiológicas convencionais e se confirmaram e caracterizaram por métodos moleculares. Resultados: a taxa de colonização por SARM foi de 9,3 % (14/150). 62,5% dos isolamentos portavam o SCCmec subtipo IVc; 87,5% dos isolamentos apresentaram os genes que codificam para PVL e Sek, enquanto 81,2% portavam o gene bsaB. Conclusão: a porcentagem de colonização achado é um dos mais altos reportados para a população infantil da região Caribe colombiana, e os isolamentos apresentaram fatores de virulência relacionados com quadros clínicos agressivos.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>INVESTIGACI&Oacute;N ORIGINAL</b></font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">DOI <a href="http://dx.doi.org/10.17533/udea.iatreia.v28n3a04" target="_blank">10.17533/udea.iatreia.v28n3a04</a></font></p>      <p align="center"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Colonizaci&oacute;n y factores de virulencia de Staphylococcus aureus resistente a meticilina en una poblaci&oacute;n infantil de Monter&iacute;a</b></font></p>      <p align="center"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Colonization and virulence factors of methicillin   resistant Staphylococcus aureus in a pediatric population in Monter&iacute;a, Colombia</b></font></p>      <p align="center"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Coloniza&ccedil;&atilde;o e fatores de virul&ecirc;ncia de Staphylococcus   aureus resistente a meticilina numa popula&ccedil;&atilde;o infantil de Monter&iacute;a</b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Dina Marcela Ricardo-Caldera<sup>1</sup>; Francisco Alberto Buelvas-Doria<sup>1</sup>; Javier Antonio Escobar-P&eacute;rez<sup>2</sup>; Catalina Tovar-Acero<sup>1</sup></b></font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1 Grupo de Investigaci&oacute;n en Enfermedades Tropicales y Resistencia Bacteriana, Universidad del Sin&uacute;, Monter&iacute;a, Colombia. <a href="mailto: dinaricardoc@unisinu.edu.co">dinaricardoc@unisinu.edu.co</a></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2 Laboratorio de Gen&eacute;tica Molecular Bacteriana, Universidad El Bosque, Bogot&aacute;, Colombia.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido: julio 17 de 2014    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Aceptado: noviembre 11 de 2014</font></p>   <hr noshade size="1">     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESUMEN</b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Introducci&oacute;n:</b> <i>Staphylococcus aureus</i> resistente a meticilina (SARM) puede colonizar el cuerpo   humano, con mayor frecuencia en las fosas nasales, pero tambi&eacute;n en las manos, el perin&eacute;   y la faringe. Adem&aacute;s, se ha propuesto que la colonizaci&oacute;n puede ser un factor de riesgo para   adquirir infecciones futuras. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Objetivo:</b> determinar la prevalencia y las caracter&iacute;sticas microbiol&oacute;gicas y moleculares del     SARM en una poblaci&oacute;n infantil sana.</font></p>            <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Metodolog&iacute;a:</b> se hizo un estudio descriptivo transversal para determinar la tasa de colonizaci&oacute;n     nasal por SARM en 150 ni&ntilde;os pertenecientes a 13 hogares infantiles de la ciudad de     Monter&iacute;a. Los aislamientos se hicieron a partir de hisopados nasales y far&iacute;ngeos, se identificaron     mediante pruebas microbiol&oacute;gicas convencionales y se confirmaron y caracterizaron por     m&eacute;todos moleculares.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Resultados:</b> la tasa de colonizaci&oacute;n por SARM fue del 9,3% (14/150). El 62,5% de los aislamientos     portaban el SCC<i>mec</i> subtipo IVc; 87,5% de los aislamientos presentaron los genes que     codifican para PVL y Sek, mientras que 81,2% portaban el gen <i>bsa</i>B.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Conclusi&oacute;n:</b> el porcentaje de colonizaci&oacute;n hallado es uno de los m&aacute;s altos reportados para la     poblaci&oacute;n infantil de la regi&oacute;n Caribe colombiana, y los aislamientos presentaron factores de     virulencia relacionados con cuadros cl&iacute;nicos agresivos.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>PALABRAS CLAVE</b></font></p>         <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Factores de Virulencia, Jardines Infantiles, Preescolar, Staphylococcus Aureus Resistente a     Meticilina</i></font></p> <hr noshade size="1">     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <b>SUMMARY</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Introduction:</b> Methicillin-resistant <i>Staphylococcus   aureus</i> (MRSA) is able to colonize the human body,   most frequently the nostrils, but also the hands, perineum   and throat. Such colonization has been proposed   as a risk factor to acquire future infections.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Objective:</b> To determine the prevalence, and the microbiological   and molecular characteristics of MRSA in healthy children.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Methodology:</b> A cross-sectional descriptive study was   done of 150 children from 13 day care centers in Monter&iacute;a,   Colombia. Nasal and throat swabs were obtained.   The isolates were identified and characterized by microbiological and molecular methods.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Results:</b> The MRSA colonization rate was 9.3%   (14/150). 62.5% of the isolates carried the subtype IVc   of SCCmec, and 87.5% had the genes encoding for PVL and Sek, while 81.2% carried the gene <i>bsa</i>B.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Conclusion:</b> The percentage of colonization found is   one of the highest reported among children from the   Colombian Caribbean region, and the isolates have   virulence factors that have been associated with an   aggressive clinical course.   </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>KEY WORDS</b>   </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Child; Child Day Care Centers, Methicillin resistant   Staphylococcus aureus, Virulence Factors</i></font></p> <hr noshade size="1">     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESUMO</b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Introdu&ccedil;&atilde;o: </b><i>Staphylococcus aureus</i> resistente a meticilina   (SARM) pode colonizar o corpo humano, com   maior frequ&ecirc;ncia nas fossas nasais, mas tamb&eacute;m nas   m&atilde;os, o per&iacute;neo e a faringe. Ademais, prop&ocirc;s-se do   que a coloniza&ccedil;&atilde;o pode ser um fator de risco para adquirir infec&ccedil;&otilde;es futuras.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Objetivo:</b> determinar a preval&ecirc;ncia e as caracter&iacute;sticas   microbiol&oacute;gicas e moleculares do SARM numa popula&ccedil;&atilde;o infantil s&atilde;.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Metodologia: </b>fez-se um estudo   descritivo transversal para determinar a taxa de coloniza&ccedil;&atilde;o   nasal por SARM em 150 crian&ccedil;as pertencentes   a 13 lares infantis da cidade de Monter&iacute;a. Os isolamentos   se fizeram a partir de amostras com suabe   nasais e far&iacute;ngeos, identificaram-se mediante provas   microbiol&oacute;gicas convencionais e se confirmaram e   caracterizaram por m&eacute;todos moleculares.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Resultados:</b> a taxa de coloniza&ccedil;&atilde;o por SARM foi de   9,3 % (14/150). 62,5% dos isolamentos portavam o   SCCmec subtipo IVc; 87,5% dos isolamentos apresentaram   os genes que codificam para PVL e Sek, enquanto   81,2% portavam o gene <i>bsa</i>B.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Conclus&atilde;o:</b> a porcentagem de coloniza&ccedil;&atilde;o achado &eacute;   um dos mais altos reportados para a popula&ccedil;&atilde;o infantil   da regi&atilde;o Caribe colombiana, e os isolamentos   apresentaram fatores de virul&ecirc;ncia relacionados com   quadros cl&iacute;nicos agressivos.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>PALAVRAS CHAVE</b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Fatores de Virul&ecirc;ncia, Jardins Infantis, Pr&eacute;-escolar,   Staphylococcus Aureus Resistente a Meticilina</i></font></p>          <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>C&oacute;mo citar:</b> Ricardo Caldera DM, Buelvas Doria FA, Escobar P&eacute;rez JA, Tovar Acero C. Colonizaci&oacute;n y factores de virulencia de Staphylococcus aureus resistente a meticilina en una   poblaci&oacute;n infantil de Monter&iacute;a. Iatreia. 2015 Jul-Sep;28(3): 259-268. DOI <a href="http://dx.doi.org/10.17533/udea.iatreia.v28n3a04" target="_blank">10.17533/udea.iatreia.v28n3a04</a>.</font></p>   <hr noshade size="1">       <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Staphylococcus aureus</i> es un microorganismo que   puede encontrarse colonizando el cuerpo humano,   principalmente las fosas nasales, pero tambi&eacute;n las   manos, el perin&eacute; y la faringe. Se considera que dicha   colonizaci&oacute;n es uno de los principales factores   responsables de la diseminaci&oacute;n del germen y de la   generaci&oacute;n de infecciones estafiloc&oacute;cicas tanto comunitarias   como nosocomiales (1). Las m&aacute;s frecuentes   son las infecciones de la piel y los tejidos blandos,   pero tambi&eacute;n puede ocasionar enfermedades sist&eacute;micas   (2-4). Adem&aacute;s, <i><i>S. aureus</i></i> cuenta con un arsenal   de factores de virulencia que contribuyen a su supervivencia   y desarrollo, y que son desencadenantes de   las manifestaciones cl&iacute;nicas y responsables de la gravedad   de sus infecciones (5); entre dichos factores se   encuentran varias hemolisinas (&alpha;, &beta;, &gamma;, &delta;), la leucocidina   de Panton Valentine (PVL por la sigla en ingl&eacute;s de   <i>Panton Valentine Leukocidin</i>), las toxinas exfoliativas   A y B, el grupo de las toxinas pir&oacute;genas superant&iacute;genos   (PTSAg) que incluye la toxina del choque t&oacute;xico y   las enterotoxinas estafiloc&oacute;cicas (SE) y las modulinas solubles en fenol, descritas recientemente (6,7). Tiene   adem&aacute;s la capacidad de adquirir pl&aacute;smidos, transposones   y secuencias de inserci&oacute;n que le confieren   resistencia a m&uacute;ltiples antibi&oacute;ticos (5); todo esto en   conjunto le ha permitido a este microorganismo posicionarse   como un pat&oacute;geno de gran importancia en   salud p&uacute;blica.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La resistencia de <i><i>S. aureus</i></i> a los antibi&oacute;ticos betalact&aacute;micos   es causada principalmente por la adquisici&oacute;n   del gen <i>mec</i>A, que se encuentra en un elemento   gen&eacute;tico m&oacute;vil llamado casete estafiloc&oacute;cico cromos&oacute;mico   <i>mec</i> (SCC<i>mec</i>) (<i>Sthaphylococcal Cassette   Chromosome mec</i>). El gen <i>mec</i>A codifica para una   prote&iacute;na modificada de uni&oacute;n a penicilina conocida   como PBP2a (<i>Penicillin Binding protein 2a</i>), que se caracteriza   por su afinidad disminuida a los antibi&oacute;ticos   beta-lact&aacute;micos (8). En un principio, las cepas de <i><i>S. aureus</i></i> resistentes a meticilina (SARM) se asociaron   con infecciones intrahospitalarias, pero desde el a&ntilde;o   1990 se las ha reportado en la comunidad como causa   de infecciones en la piel y los tejidos blandos, en   ni&ntilde;os y en adultos j&oacute;venes sin factores de riesgo predisponentes   a infecciones hospitalarias; los primeros   casos se informaron en Australia (9) y Estados Unidos   (10), y desde entonces se han diseminado por todo el   mundo (11-14).</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En los &uacute;ltimos a&ntilde;os ha ido cambiando la epidemiolog&iacute;a   del SARM; en un comienzo las infecciones por   SARM adquiridas en los hospitales (SARM-AH) generalmente   ocurr&iacute;an en personas con factores de riesgo   asociados a hospitalizaci&oacute;n reciente, terapia con   antibi&oacute;ticos, cirug&iacute;as y estancias largas en la unidad   de cuidado intensivo; mientras que las infecciones   producidas por SARM adquirido en la comunidad   (SARM-AC) ocurr&iacute;an en personas sanas de comunidades   cerradas como grupos familiares, militares, reclusos,   ni&ntilde;os en guarder&iacute;as y deportistas sin factores de   riesgo hospitalarios, en condiciones de hacinamiento   y con pr&aacute;cticas de higiene inadecuadas. Actualmente   esta distinci&oacute;n no est&aacute; clara puesto que se han publicado   informes seg&uacute;n los cuales las cepas comunitarias   han migrado a los hospitales reemplazando a   las cepas tradicionalmente hospitalarias (15,16). En   la ciudad de Medell&iacute;n se reportaron cepas comunitarias   que han migrado al hospital, las cuales albergan   el SCC<i>mec</i> de subtipo IVc con tasas de prevalencia   hasta del 68,2%, y que han desplazado las cepas   tradicionalmente hospitalarias que portaban el SCC<i>mec</i>   de los tipos I, II y III (16).</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La colonizaci&oacute;n puede llegar a ser un factor de riesgo   predisponente para adquirir infecciones, desde leves,   como las de la piel y los tejidos blandos, hasta graves   como enfermedades sist&eacute;micas. Por su condici&oacute;n inmunol&oacute;gica   y h&aacute;bitos de cuidado, la poblaci&oacute;n infantil   es vulnerable a este tipo de infecciones y constituye   un escenario ideal para la diseminaci&oacute;n de clones   con perfiles de resistencia. En la regi&oacute;n de la costa   Atl&aacute;ntica colombiana existe poca informaci&oacute;n sobre   el comportamiento del SARM en la poblaci&oacute;n infantil   de la comunidad; por ello, en nuestro estudio se determinaron   la prevalencia y las caracter&iacute;sticas microbiol&oacute;gicas   y moleculares de este microorganismo en   una poblaci&oacute;n infantil sana de la ciudad de Monter&iacute;a,   para caracterizar las cepas circulantes en la ciudad y   contribuir al an&aacute;lisis de la epidemiolog&iacute;a local de este   pat&oacute;geno.</font></p>          <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se llev&oacute; a cabo un estudio descriptivo transversal de   150 ni&ntilde;os pertenecientes a 13 hogares infantiles de   Monter&iacute;a ubicados en los barrios Rancho Grande y   Sucre, en el per&iacute;odo comprendido entre agosto del   2010 y marzo del 2011. Previa autorizaci&oacute;n del acudiente   se procedi&oacute; a la obtenci&oacute;n de dos hisopados,   uno nasal y otro far&iacute;ngeo, que se almacenaron y   transportaron en caldo tripticasa soya. Se analizaron   las variables edad y sexo empleando herramientas del   <i>software</i> Epi Info.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Identificaci&oacute;n microbiol&oacute;gica</b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las muestras se incubaron 24 horas en caldo tripticasa   soya y se sembraron en agar salado manitol; las colonias   morfol&oacute;gicamente compatibles con <i><i>S. aureus</i></i>   se analizaron por coloraci&oacute;n de Gram, se sembraron   en agar sangre de cordero al 5% (17), y se les hicieron   pruebas bioqu&iacute;micas corrientes (catalasa, coagulasa y   DNasa) (18) complementadas con pruebas en el sistema   <i>MicroScan PC29</i> (Dade Behring, CA, EE. UU.).   Como control se utiliz&oacute; la cepa de <i>S. aureus</i> ATCC   29213.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Perfiles de susceptibilidad</b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La sensibilidad a los antimicrobianos se determin&oacute;   por el sistema <i>MicroScan PC29</i> (Dade Behring, CA, EE.   UU.) y por la t&eacute;cnica de difusi&oacute;n en agar empleando los siguientes antibi&oacute;ticos: penicilina (10 &#181;g), oxacilina   (1 &#181;g), eritromicina (15 &#181;g), clindamicina (2 &#181;g),   tetraciclina (30 &#181;g), vancomicina (30 &#181;g) y cefocitina   (30 &#181;g). Como control se utiliz&oacute; la cepa de <i>S. aureus</i>   ATCC 25923. Se analizaron la presencia de resistencia   inducible a clindamicina mediante la prueba del DTest   (19), y la susceptibilidad a mupirocina (200 &#181;g)   (20,21) y tigeciclina (15 &#181;g), siguiendo las recomendaciones   del CLSI (<i>Clinical Laboratory Standards Institute</i>)   2013. Los aislamientos de <i>S. aureus</i> resistentes a   meticilina se conservaron en caldo LB (Luria Bertani)   con glicerol al 10% a -70 &#176;C.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Caracterizaci&oacute;n molecular</b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Extracci&oacute;n de <i>ADN</i>: se hizo por medio de lisis por ebullici&oacute;n:   se tomaron 1 a 5 colonias y se suspendieron en   100 &#181;L de agua destilada est&eacute;ril; la mezcla se llev&oacute; a   95 &#176;C por 10 minutos y luego se centrifug&oacute; a 5.000 rpm   por 5 minutos; 1 &#181;L del sobrenadante se utiliz&oacute; como   molde para la reacci&oacute;n de PCR y el resto se conserv&oacute;   a -20 &#176;C.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Detecci&oacute;n de los genes nuc y mecA y determinaci&oacute;n   del tipo de SCCmec</i>: para la detecci&oacute;n del gen <i>nuc</i>   se utilizaron los iniciadores descritos por Lina y colaboradores,   y para la del gen <i>mec</i>, los iniciadores utilizados   por McClure y colaboradores (22,23). Para la   determinaci&oacute;n de los tipos de SCC<i>mec</i> se dise&ntilde;aron   iniciadores dirigidos al complejo de genes <i>ccr</i> (<a href="img/revistas/iat/v28n3/v28n3a04t1.jpg" target="_blank">tabla   1</a>); en cuanto a la determinaci&oacute;n de los subtipos, se   emplearon los iniciadores y las condiciones reportados   por Escobar y colaboradores y por Milheirico y   colaboradores (24,25).</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para la detecci&oacute;n de los genes <i>nuc</i>, <i>mec</i>A y la tipificaci&oacute;n   de los SCC<i>mec</i> se utilizaron las siguientes condiciones   de PCR: desnaturalizaci&oacute;n inicial a 95 &#176;C por 2   minutos; 30 ciclos de desnaturalizaci&oacute;n a 95 &#176;C por 1   minuto; para la detecci&oacute;n de los genes <i>nuc</i> y <i>mec</i>A, se   utiliz&oacute; un anillamiento a 52 &#176;C por 1 minuto; para la   tipificaci&oacute;n de los SCC<i>mec</i> se utiliz&oacute; un anillamiento   a 55 &#176;C por 1 minuto, extensi&oacute;n a 72 &#176;C por 30 segundos   y extensi&oacute;n final a 72 &#176;C por 2 minutos.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La mezcla de reacci&oacute;n para la tipificaci&oacute;n de los SCC<i>mec</i>   conten&iacute;a 1 &#181;L de ADN molde, los iniciadores se utilizaron a una concentraci&oacute;n de 0,3 &#181;M, 200 &#181;M de   cada dNTP, buffer Taq 1X, MgCl2 1,5 mM y Taq polimerasa   1U en un volumen final de 25 &#181;L.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Detecci&oacute;n de factores de virulencia</i>: mediante la PCR   multiplex descrita por Escobar y colaboradores (26),   se hizo la detecci&oacute;n de los genes <i>lukF/S-PV, sek, sem,   seo y bsaB</i> que codifican para la PVL, las enterotoxinas   K, M y O, y la bacteriocina B, respectivamente.   Adem&aacute;s, se determin&oacute; la presencia de la isla de patogenicidad   5 (SaPI5), por la amplificaci&oacute;n del gen <i>sausa300&#95;   0808</i> (24).</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Establecimiento de la relaci&oacute;n gen&eacute;tica por electroforesis   en gel de campo pulsado</i>: el protocolo de extracci&oacute;n   del ADN cromos&oacute;mico se efectu&oacute; de acuerdo   con lo descrito por Mulvey y colaboradores (27), con   algunas modificaciones. La restricci&oacute;n de los bloques   se llev&oacute; a cabo con la enzima <i>SmaI</i> por 3 horas a 25   &#176;C. La electroforesis se hizo en el sistema CHEF-DRII   con las condiciones descritas por Murchan y colaboradores   (28), los patrones electrofor&eacute;ticos registrados   se visualizaron y fotografiaron en un transluminador;   adem&aacute;s, se analizaron mediante la elaboraci&oacute;n de   una matriz empleando el <i>software Fingerprinting II</i>   versi&oacute;n 3.0, usando el coeficiente Dice y una tolerancia   del 1,5%. En la interpretaci&oacute;n del dendrograma se   tuvieron en cuenta los criterios de Tenover (29).</font></p>          <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESULTADOS</b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los 150 ni&ntilde;os hac&iacute;an parte de trece hogares infantiles   en dos barrios de Monter&iacute;a. De ellos, 31 (20,7%) estaban   colonizados por <i>S. aureus</i> y 14 de estos (45,2%) lo   estaban por SARM en las fosas nasales. Sin embargo,   el total de aislamientos de SARM fue de 16 porque dos   ni&ntilde;os estaban colonizados tanto en las fosas nasales   como en la faringe. Todos los aislamientos de SARM   amplificaron los genes <i>nuc y mecA</i>. La edad promedio   de los ni&ntilde;os portadores de SARM fue de 3,3 a&ntilde;os   (1-5 a&ntilde;os). Nueve de los 14 ni&ntilde;os colonizados (64,3%)   eran del sexo femenino. En todos los hogares infantiles   se encontraron ni&ntilde;os colonizados por <i>S. aureus</i>,   pero solo en seis se hall&oacute; colonizaci&oacute;n por cepas   SARM. Once de los 16 aislamientos de SARM (68,8%)   presentaron resistencia a tetraciclina; nueve (56,3%) a   eritromicina y dos (12,5%) a clindamicina. Los 16 mostraron   sensibilidad a los dem&aacute;s antibi&oacute;ticos ensayados,   incluyendo mupirocina y tigeciclina.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La tipificaci&oacute;n del SCC<i>mec</i> de los aislamientos SARM   mostr&oacute; que todos ellos amplificaron el fragmento de   959 pb correspondiente a los genes <i>ccrA2/ccrB2</i> (SCC<i>mec</i>   de tipo II y IV), y para diferenciarlos se utiliz&oacute; el   gen mecI, que no amplific&oacute; lo que define los aislamientos   como de tipo IV. Adicionalmente, se determinaron   los subtipos del SCC<i>mec</i> tipo IV, con el siguiente   resultado: 10 (62,5%) portaban el subtipo IVc y   6 (37,5%), el subtipo IVa.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En cuanto a la detecci&oacute;n de los factores de virulencia,   14 de los 16 aislamientos (87,5%) presentaron los   genes que codifican para PVL y Sek; 13 (81,3%) portaban   el gen que codifica para la bacteriocina B de <i>S. aureus</i>; no se hallaron las enterotoxinas sem y seo en   los 16 aislamientos analizados. Todos los aislamientos   portaban el gen <i>sausa&#95;0808</i>, que se encuentra en la   isla de patogenicidad 5 (SaPI5) (<a href="img/revistas/iat/v28n3/v28n3a04t2.jpg" target="_blank">tabla 2</a>). Sin embargo,   los aislamientos con SCC<i>mec</i> subtipo IVa albergaron   una variante del gen <i>sausa&#95;0808</i> con una inserci&oacute;n   de 54pb.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A partir del an&aacute;lisis de restricci&oacute;n del genoma con la   enzima <i>SmaI</i>, se obtuvieron cinco pulsotipos, que se   clasificaron en los grupos A, B y C. El grupo A se dividi&oacute;   en dos subgrupos, a saber: el A1 constituido por   seis aislamientos id&eacute;nticos y uno posiblemente relacionado,   que proven&iacute;an de diferentes hogares infantiles;   el subgrupo A2 lo conformaron dos aislamientos   id&eacute;nticos y pertenecientes a un mismo hogar infantil.   El grupo A tiene un porcentaje de similitud del 80,6%   con el clon USA300 (<a href="img/revistas/iat/v28n3/v28n3a04f1.jpg" target="_blank">figura 1</a>). El grupo B lo conformaron   cuatro aislamientos provenientes de tres hogares   infantiles. Solo hubo un aislamiento del grupo   C. Los dos aislamientos restantes (FF104 y FF130) se   excluyen de esta informaci&oacute;n tal como se explica en   la leyenda de la <a href="img/revistas/iat/v28n3/v28n3a04f1.jpg" target="_blank">figura 1</a>.</font></p>          <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Mundialmente, la tasa de prevalencia de portaci&oacute;n de   SARM en ni&ntilde;os sanos que asisten a hogares infantiles   var&iacute;a entre 0,14% y 29% (30-34). En un estudio en   India se hall&oacute; un porcentaje del 29% de portaci&oacute;n nasal   en ni&ntilde;os que asist&iacute;an a guarder&iacute;as, y se encontr&oacute;   que el riesgo de ser portador aumenta con la edad en   ni&ntilde;os de familias numerosas (31). En Brasil, Lamaro   y colaboradores (32) informaron en el 2009 un porcentaje   de colonizaci&oacute;n por <i>S. aureus</i> del 31,2% en la   poblaci&oacute;n infantil de 62 guarder&iacute;as, de los cuales 1,2%   correspondieron a cepas de SARM con casetes de los   tipo III, IV y V, sin hallazgos positivos para PVL; caracterizaron   variables individuales y sociodemogr&aacute;ficas   del n&uacute;cleo familiar y los factores de riesgo potenciales   para la portaci&oacute;n nasal de SARM; esta se relacion&oacute; en   mayor proporci&oacute;n con el sexo masculino, mientras   que el alto nivel de escolaridad de las madres fue un   factor protector para la colonizaci&oacute;n. En nuestro estudio   no se encontr&oacute; significancia estad&iacute;stica de las   variables edad y sexo con la portaci&oacute;n de SARM; entre   los portadores hubo predominio del sexo femenino,   lo que coincide con lo reportado por Castro y colaboradores   en Cartagena (35).</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En Colombia se han publicado cuatro estudios en   ni&ntilde;os entre los a&ntilde;os 2010 y 2012, dos de estos en la   ciudad de Cartagena; uno en el 2010, de Rebollo y   colaboradores (36), y el otro en el 2011, de Castro y   colaboradores (35); se encontraron tasas de portaci&oacute;n   de SARM de 4,8% y 9%, respectivamente. En Monter&iacute;a,   Lozano y colaboradores (37) hallaron en 2010   una prevalencia del 3,3%; en el 2012 Rodr&iacute;guez y colaboradores   en Medell&iacute;n (38) reportaron una tasa del   4,75%; en el presente estudio se hall&oacute; un porcentaje   de colonizaci&oacute;n del 9,3 %, que hasta el momento es el   m&aacute;s alto informado en el pa&iacute;s en esta poblaci&oacute;n; ello   puede estar relacionado con la elecci&oacute;n del sitio anat&oacute;mico   para la toma de muestra, lo que concuerda   con estudios anteriores que describen las fosas nasales   como uno de los sitios anat&oacute;micos con mayor porcentaje   de colonizaci&oacute;n por SARM (1,39). En nuestro   estudio se tomaron muestras tanto de las fosas nasales   como de la faringe, y se obtuvo el mayor porcentaje   de colonizaci&oacute;n en las primeras.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El hallazgo de SCCmec subtipo IVc en la mayor&iacute;a   de los aislamientos de este estudio coincide con los   resultados descritos por Rebollo y colaboradores en   Cartagena (36) en el 2011 y por Rodr&iacute;guez y colaboradores   en Medell&iacute;n (38) en el 2012, en los que se evidenci&oacute;   que el subtipo de SCCmec m&aacute;s prevalente en   las cepas de la comunidad sigue siendo el IVc; en el   estudio de Rebollo se aislaron cinco cepas SARM, dos   de las cuales (40%) portaban el tipo IV, mientras que   ocho de los 19 SARM obtenidos por Rodr&iacute;guez (42,1%)   portaban el SCCmec subtipo IVc; estos datos concuerdan   con los de estudios en otros pa&iacute;ses: Portugal, Taiw&aacute;n   y Estados Unidos (30,33,34).</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Escobar y colaboradores (26) dise&ntilde;aron en el 2012   una PCR basada en el hallazgo de cinco factores de   virulencia que ayudan a identificar r&aacute;pidamente los   aislamientos de SARM adquiridos en la comunidad:   los genes <i>lukS/F-PV, sek</i> y <i>bsaB</i> son marcadores gen&eacute;ticos   espec&iacute;ficos para los aislamientos de SARM-AC,   mientras que los genes sem y seo lo son para los aislamientos   de SARM-AH. En nuestro estudio 14 de los 16   aislamientos analizados presentaron los genes espec&iacute;ficos   para los SARM-AC.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Es preocupante encontrar ni&ntilde;os sanos colonizados   por cepas de SARM portadoras de genes de virulencia   como los de la PVL, que est&aacute;n asociados con infecciones   graves como la neumon&iacute;a necrosante, porque los   ni&ntilde;os son susceptibles a ser colonizados por el contacto   cercano con otros ni&ntilde;os, y a desarrollar infecciones   por ser inmunol&oacute;gicamente inmaduros; los ni&ntilde;os   colonizados por SARM pueden diseminarlo y dar   lugar a infecciones tanto comunitarias como hospitalarias,   con el agravante que estas cepas poseen factores   de virulencia que pueden aumentar la gravedad   de las infecciones. Dado lo anterior, es necesario hacer   estudios multic&eacute;ntricos de seguimiento continuo   de esta poblaci&oacute;n altamente susceptible, con el fin de   monitorizar las cepas circulantes de SARM, evaluar   los factores de riesgo para la colonizaci&oacute;n en cada   comunidad y dise&ntilde;ar e implementar estrategias que   permitan contener la diseminaci&oacute;n de estas cepas.</font></p>        <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>CONFLICTO DE INTERESES</b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los autores declaran no tener conflicto de intereses.</font></p>      <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> 1. Kluytmans J, van Belkum A, Verbrugh H. Nasal carriage   of Staphylococcus aureus: epidemiology, underlying   mechanisms, and associated risks. Clin Microbiol   Rev. 1997 Jul;10(3):505-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0121-0793201500030000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. Stryjewski ME, Chambers HF. Skin and soft-tissue infections   caused by community-acquired methicillinresistant   Staphylococcus aureus. Clin Infect Dis. 2008   Jun;46(Suppl 5):S368-77.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0121-0793201500030000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. G&oacute;mez CH, Perilla AM, Gonz&aacute;lez C, Valderrama SL,   Vanegas N, Chavarro B, et al. Neumon&iacute;a necrosante   por Staphylococcus aureus extrahospitalario resistente   a la meticilina : reporte de dos casos en Colombia.   Biom&eacute;dica. 2009 Dec;29(4):523-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0121-0793201500030000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. Vayalumkal JV, Whittingham H, Vanderkooi O,   Stewart TE, Low DE, Mulvey M, et al. Necrotizing   pneumonia and septic shock: suspecting CA-MRSA   in patients presenting to Canadian emergency departments.   CJEM. 2007 Jul;9(4):300-3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-0793201500030000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5. Jim&eacute;nez Quiceno JN, Ochoa Correa MM. Staphylococcus   aureus resistente a meticilina : bases moleculares   de la resistencia, epidemiolog&iacute;a y tipificaci&oacute;n.   Iatreia. 2009 Jun;22(2):147-58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-0793201500030000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6. Orwin PM, Leung DYM, Donahue HL, Novick RP,   Schlievert PM. Biochemical and biological properties   of Staphylococcal enterotoxin K. Infect Immun. 2001   Jan;69(1):360-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-0793201500030000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7. Peschel A, Otto M. Phenol-soluble modulins and   staphylococcal infection. Nat Rev Microbiol. 2013   Oct;11(10):667-73. Erratum in: Nat Rev Microbiol.   2013 Nov;11(11):814.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-0793201500030000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8. Ito T, Katayama Y, Asada K, Mori N, Tsutsumimoto   K, Tiensasitorn C, et al. Structural comparison of   three types of staphylococcal cassette chromosome   mec integrated in the chromosome in methicillinresistant   Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents   Chemother. 2001 May;45(5):1323-36. Erratum in: Antimicrob   Agents Chemother 2001 Dec;45(12):3677.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-0793201500030000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. Udo EE, Pearman JW, Grubb WB. Genetic analysis of   community isolates of methicillin-resistant Staphylococcus   aureus in Western Australia. J Hosp Infect.   1993 Oct;25(2):97-108.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-0793201500030000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10. Centers for Disease Control and Prevention (CDC).   Four pediatric deaths from community-acquired   methicillin-resistant Staphylococcus aureus &#8212;   Minnesota and North Dakota, 1997-1999. Morb Mortal   Wkly Rep. 1999 Aug 20;48(32):707-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-0793201500030000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11. Ito T, Iijima M, Fukushima T, Nonoyama M, Ishii M,   Baranovich T, et al. Pediatric pneumonia death caused   by community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus   aureus, Japan. Emerg Infect Dis. 2008   Aug;14(8):1312-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0121-0793201500030000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12. Dufour P, Gillet Y, Bes M, Lina G, Vandenesch F, Floret   D, et al. Community-acquired methicillin-resistant   Staphylococcus aureus infections in France: emergence   of a single clone that produces Panton-Valentine   leukocidin. Clin Infect Dis. 2002 Oct;35(7):819-24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0121-0793201500030000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13. Ribeiro A, Dias C, Silva-Carvalho MC, Berqu&oacute; L, Ferreira   FA, Santos RN, et al. First report of infection   with community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus   aureus in South America. J Clin Microbiol.   2005 Apr;43(4):1985-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0121-0793201500030000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14. Alvarez CA, Barrientes OJ, Leal AL, Contreras GA,   Barrero L, Rinc&oacute;n S, et al. Community-associated   methicillin-resistant Staphylococcus aureus, Colombia.   Emerg Infect Dis. 2006 Dec;12(12):2000-1.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0121-0793201500030000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15. Alvarez CA, Yomayusa N, Leal AL, Moreno J, Mendez-   Alvarez S, Iba&ntilde;ez M, et al. Nosocomial infections   caused by community-associated methicillin-resistant   Staphylococcus aureus in Colombia. Am J Infect   Control. 2010 May;38(4):315-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0121-0793201500030000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16. Jimenez JN, Ocampo AM, Vanegas JM, Rodr&iacute;guez EA,   Mediavilla JR, Chen L, et al. Cepas de SARM genot&iacute;picamente   diversas con SCCmec IVc desplazan las   cepas tradicionales de SARM-AH en los hospitales   de Medell&iacute;n. En: VIII Encuentro Nacional de Investigaci&oacute;n   en Enfermedades Infecciosas, Armenia 2012   May 23-26. Infectio. 2012;16(Suppl 1):S19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0121-0793201500030000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">17. Sharp SE, Searcy C. Comparison of mannitol salt   agar and blood agar plates for identification and susceptibility   testing of Staphylococcus aureus in specimens   from cystic fibrosis patients. J Clin Microbiol.   2006 Dec;44(12):4545-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0121-0793201500030000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">18. Kateete DP, Kimani CN, Katabazi FA, Okeng A, Okee   MS, Nanteza A, et al. Identification of Staphylococcus   aureus: DNase and Mannitol salt agar improve   the efficiency of the tube coagulase test. Ann Clin Microbiol   Antimicrob. 2010 Aug;9:23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-0793201500030000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">19. Montoya I, Mira M, &Aacute;lvarez I, Cofr&eacute; J, Cohen J, Donoso   G, et al. Resistencia inducible a clindamicina   en Staphylococcus aureus meticilino resistente. Rev Chil Pediatr. 2009 Feb;80(1):48&#8211;53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0121-0793201500030000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">20. Hogue JS, Buttke P, Braun LE, Fairchok MP. Mupirocin   resistance related to increasing mupirocin use in   clinical isolates of methicillin-resistant Staphylococcus   aureus in a pediatric population. J Clin Microbiol.   2010 Jul;48(7):2599-600.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0121-0793201500030000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">21. Chambers HF. Methicillin resistance in staphylococci:   molecular and biochemical basis and clinical implications.   Clin Microbiol Rev. 1997 Oct;10(4):781-91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0121-0793201500030000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">22. Lina G, Pi&eacute;mont Y, Godail-Gamot F, Bes M, Peter MO,   Gauduchon V, et al. Involvement of Panton-Valentine   leukocidin-producing Staphylococcus aureus in primary   skin infections and pneumonia. Clin Infect Dis.   1999 Nov;29(5):1128-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0121-0793201500030000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">23. McClure JA, Conly JM, Lau V, Elsayed S, Louie T, Hutchins   W, et al. Novel multiplex PCR assay for detection   of the staphylococcal virulence marker Panton-Valentine   leukocidin genes and simultaneous discrimination   of methicillin-susceptible from -resistant staphylococci.   J Clin Microbiol. 2006 Mar;44(3):1141-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0121-0793201500030000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">24. Escobar P&eacute;rez JA, Castro BE, M&aacute;rquez Ortiz RA, Chavarro   B, Moreno J, Leal AL, et al. Aislamientos de Staphylococcus   aureus sensibles a meticilina relacionados   gen&eacute;ticamente con el clon USA300: &#191;Origen de   los aislamientos SARM de genotipo comunitario en   Colombia&#63; Biom&eacute;dica. 2014;34(Supl 1):S124-36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0121-0793201500030000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">25. Milheiri&ccedil;o C, Oliveira DC, de Lencastre H. Multiplex   PCR strategy for subtyping the staphylococcal cassette   chromosome mec type IV in methicillin-resistant   Staphylococcus aureus: ''SCCmec IV multiplex'' J Antimicrob   Chemother &#91;Internet&#93;. 2007 Jul (cited 2014   Feb 2); 60(1):&#91;42&#8211;8&#93;. Available from: <a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17468509" target="_blank">http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17468509</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0121-0793201500030000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">26. Escobar JA, G&oacute;mez IT, Murillo MJ, Castro BE, Chavarro   B, M&aacute;rquez RA, et al. Design of two molecular   methodologies for the rapid identification of Colombian   community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus   aureus isolates. Biomedica. 2012 Apr-   Jun;32(2):214-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0121-0793201500030000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">27. Mulvey MR, Chui L, Ismail J, Louie L, Murphy C,   Chang N, et al. Development of a Canadian standardized   protocol for subtyping methicillin-resistant   Staphylococcus aureus using pulsed-field gel electrophoresis.   J Clin Microbiol. 2001 Oct;39(10):3481-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0121-0793201500030000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">28. Murchan S, Kaufmann ME, Deplano A, de Ryck R,   Struelens M, Zinn CE, et al. Harmonization of pulsedfield   gel electrophoresis protocols for epidemiological   typing of strains of methicillin-resistant Staphylococcus   aureus: a single approach developed by consensus   in 10 European laboratories and its application   for tracing the spread of related strains. J Clin Microbiol.   2003 Apr;41(4):1574-85.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0121-0793201500030000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">29. Tenover FC, Arbeit R, Archer G, Biddle J, Byrne S,   Goering R, et al. Comparison of traditional and molecular   methods of typing isolates of Staphylococcus   aureus. J Clin Microbiol. 1994 Feb;32(2):407-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0121-0793201500030000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">30. Tavares DA, S&aacute;-Le&atilde;o R, Miragaia M, de Lencastre H.   Large screening of CA-MRSA among Staphylococcus   aureus colonizing healthy young children living in   two areas (urban and rural) of Portugal. BMC Infect   Dis. 2010 May;10:110.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0121-0793201500030000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">31. Dey S, Rosales-Klintz S, Shouche S, Pathak JP, Pathak   A. Prevalence and risk factors for nasal carriage of   Staphylococcus aureus in children attending anganwaries   (preschools) in Ujjain, India. BMC Res Notes.   2013 Jul;6:265.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0121-0793201500030000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">32. Lamaro Cardoso J, de Lencastre H, Kipnis A, Pimenta   FC, Oliveira LSC, Oliveira RM, et al. Molecular epidemiology   and risk factors for nasal carriage of staphylococcus   aureus and methicillin-resistant S. aureus   in infants attending day care centers in Brazil. 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