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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad antimicótica, citotoxicidad y composición de aceites esenciales de plantas de la familia Labiatae]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antifungal activity, cytotoxicity and composition of essential oils from Labiatae family plants]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Aspergillus spp. and Candida spp. are important cause of infections worldwide. Considering the resistance of these pathogens to some antifungal agents, there is greater need to search for new antifungal agents. Many extracts and essential oils isolated from plants have shown to exert antifungal effects in vitro. The aim of this study was to evaluate the antifungal, cytotoxic effect, and chemical composition of essential oils of family Labiatae. Materials and methods: Antifungal activity of twenty two essential oils from Labiatae family was evaluated against C. parapsilosis ATCC 22019, C. krusei ATCC 6258, A. flavus ATCC 204304 y A. fumigatus ATCC 204305, following EUCAST and M38-A standard protocols for yeast and filamentous fungi, respectively. Additionally, cytotoxic activity was evaluated on Vero cell line by colorimetric assay MTT. Essential oils was characterized by gas chromatography coupled to mass spectrometry. Results: The most active oil with all strains was obtained of Minthostachys mollis (MIC range 250 - 375 &mu;g/mL). The essential oil from Hyptis mutabillis showed activity against A. fumigatus (GM-MIC = 396.8 &mu;g/mL). These essential oils were not cytotoxic on Vero cells. The major components of essential oils from M. mollis and H. mutabillis were cis-piperitone epoxide and 1,8-cineol, respectively. Conclusions: Essential oils of H. mutabillis and M. mollis showed antifungal activity and they were not cytotoxic on Vero cells. Salud UIS 2009; 41: 223-230.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">     <font size="4">         <br>    <center><b>Actividad antimic&oacute;tica, citotoxicidad    <br> y composici&oacute;n de aceites esenciales    <br> de plantas de la familia Labiatae</b></center></font> 		     <p align="center">Bibiana Zapata<sup>1</sup>, Camilo Dur&aacute;n<sup>2</sup>, Elena Stashenko<sup>2</sup>,     <br>Liliana Betancur-Galvis<sup>1</sup>, Ana Cecilia Mesa-Arango<sup>1</sup></p>      <p align="left">1. Grupo de Investigaci&oacute;n Dermatol&oacute;gica, GRID Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n    <br>  2. Centro de Investigaci&oacute;n en Biomol&eacute;culas, CIBIMOL. Universidad Industrial de Santander.    <br> <b>Correspondencia:</b> Ana Cecilia Mesa Arango. Bact, MSc. Grupo de Investigaci&oacute;n Dermatol&oacute;gica, Facultad de Medicina,    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n. Carrera 51D &#35; 62-29 Laboratorio 283, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia,    <br> Medell&iacute;n, Colombia. Tel&eacute;fono: &#43; 574 219 60 59 Fax: &#43; 574 219 60 51.    <br>  <b>E-mail:</b> <a href="mailto:amesa@medicina.udea.edu.co">amesa@medicina.udea.edu.co</a>    <br> <b>Recibido:</b> 10 de octubre de 2009 - <b>Aceptado:</b> 20 de diciembre de 2009</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>RESUMEN</b></font></p> 	     <p align="justify"><b>Introducci&oacute;n:</b> <i>Candida</i> spp. y <i>Aspergillus</i> spp. son causa importante de infecciones a nivel mundial. Considerando la resistencia de estos pat&oacute;genos a algunos de los antimic&oacute;ticos disponibles, es necesaria la b&uacute;squeda de nuevos agentes antimic&oacute;ticos. Diferentes aceites esenciales y extractos de plantas han mostrado actividad antimic&oacute;tica <i>in vitro</i>. <b>El objetivo</b> de este estudio fue evaluar la actividad antimic&oacute;tica, citot&oacute;xica y la composici&oacute;n qu&iacute;mica de aceites esenciales de la familia Labiatae. <b>Materiales y m&eacute;todos:</b> Se evalu&oacute; la actividad antimic&oacute;tica de 22 aceites de plantas de la familia Labiatae contra <i>C. parapsilosis</i> ATCC 22019, <i>C. krusei</i> ATCC 6258, <i>A. flavus</i> ATCC 204304 y <i>A. fumigatus</i> ATCC 204305, siguiendo las t&eacute;cnicas est&aacute;ndar EUCAST y CLSI M38-A para levaduras y hongos filamentosos, respectivamente. Adicionalmente la actividad citot&oacute;xica se evalu&oacute; en la l&iacute;nea celular Vero mediante la t&eacute;cnica colorim&eacute;trica del MTT. La caracterizaci&oacute;n de los aceites esenciales se llev&oacute; a cabo por cromatograf&iacute;a de gases acoplada a masas. <b>Resultados:</b> El aceite esencial mas activo fue el de <i>Minthostachys mollis</i> frente a todas las cepas evaluadas con rangos concentraciones m&iacute;nimas inhibitorias (CMIs) entre 250 y 375 &mu;g/mL. El aceite de la planta <i>Hyptis mutabilis</i> mostr&oacute; actividad frente a <i>A. fumigatus</i> (CMI = 396,8 &mu;g/mL). Estos aceites esenciales no fueron citot&oacute;xicos sobre las c&eacute;lulas Vero. Los componentes principales de los aceites de las plantas <i>M. mollis y H. mutabillis</i> fueron ep&oacute;xido de cis-piperitona y 1,8-cineol, respectivamente. <b>Conclusiones:</b> Los aceites esenciales de las plantas <i>M. mollis y H. mutabillis</i> mostraron actividad antimic&oacute;tica y no fueron citot&oacute;xicos en c&eacute;lulas Vero. <b><i>Salud UIS</i> 2009; 41: 223-230</b></p> 	     <p align="justify"><b>Palabras Claves:</b> Labiatae, citotoxicidad, actividad antimic&oacute;tica, <i>Aspergillus</i> spp, <i>Candida</i> spp</p>      <p align="center"><font size="3"><b>Antifungal activity, cytotoxicity and composition    <br> of essential oils from Labiatae family plants</b></font></p> 	     <p align="center"><font size="3"><b>ABSTRACT</b></font></p> 	     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Introduction:</b> <i>Aspergillus</i> spp. and <i>Candida</i> spp. are important cause of infections worldwide. Considering the resistance of these pathogens to some antifungal agents, there is greater need to search for new antifungal agents. Many extracts and essential oils isolated from plants have shown to exert antifungal effects <i>in vitro</i>. <b>The aim</b> of this study was to evaluate the antifungal, cytotoxic effect, and chemical composition of essential oils of family Labiatae. <b>Materials and methods:</b> Antifungal activity of twenty two essential oils from Labiatae family was evaluated against <i>C. parapsilosis</i> ATCC 22019, <i>C. krusei</i> ATCC 6258, <i>A. flavus</i> ATCC 204304 y <i>A. fumigatus</i> ATCC 204305, following EUCAST and M38-A standard protocols for yeast and filamentous fungi, respectively. Additionally, cytotoxic activity was evaluated on Vero cell line by colorimetric assay MTT. Essential oils was characterized by gas chromatography coupled to mass spectrometry. <b>Results:</b> The most active oil with all strains was obtained of <i>Minthostachys mollis</i> (MIC range 250 - 375 &mu;g/mL). The essential oil from <i>Hyptis mutabillis</i> showed activity against <i>A. fumigatus</i> (GM-MIC = 396.8 &mu;g/mL). These essential oils were not cytotoxic on Vero cells. The major components of essential oils from <i>M. mollis</i> and <i>H. mutabillis</i> were cis-piperitone epoxide and 1,8-cineol, respectively. <b>Conclusions:</b> Essential oils of <i>H. mutabillis</i> and <i>M. mollis</i> showed antifungal activity and they were not cytotoxic on Vero cells. <b><i>Salud UIS</i> 2009; 41: 223-230</b>.</p> 	     <p align="justify"><b>Keywords:</b> Labiatae, cytotoxicity, antifungal activity, <i>Aspergillus</i> spp, <i>Candida</i> spp</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>      <p align="justify">Especies de <i>Candida</i> y <i>Aspergillus</i> han sido implicadas en una gran variedad de infecciones que comprende desde formas superficiales a invasivas<sup>1-3</sup>. Las ultimas, son causa importante de morbilidad y mortalidad en pacientes con trasplante de &oacute;rganos, malignidades hematol&oacute;gicas y enfermedades inmunosupresoras, entre otros<sup>1</sup>. Adicionalmente, especies de ambos g&eacute;neros, tienen la capacidad de formar biopel&iacute;culas en cat&eacute;teres<i>4-6</i>. Adem&aacute;s, <i>Aspergillus</i> es uno de los contaminantes de ambientes hospitalarios, por lo que constituye un riesgo para pacientes hospitalizados<sup>7</sup>.</p> 	     <p align="justify">El tratamiento de las infecciones mic&oacute;ticas es limitado tanto por la toxicidad de Anfotericina B<sup>8</sup>, la resistencia de algunas especies de <i>Aspergillus</i> y <i>Candida</i> a antimic&oacute;ticos como Anfotericina B, Itraconazol, Fluconazol y Voriconazol<sup>9-10</sup>, como por el alto costo de los tratamientos <sup>3</sup>. Lo anterior ha estimulado la b&uacute;squeda de nuevas mol&eacute;culas con potencial antif&uacute;ngico en productos obtenidos de diferentes plantas<sup>11</sup>.</p>      <p align="justify">En Colombia se han identificado aproximadamente 23 g&eacute;neros y cerca de 205 especies de plantas de la familia Labiatae<sup>12</sup>. La infusi&oacute;n de las hojas de las plantas de esta familia como <i>Hyptis capitata</i> y <i>Salvia officinalis</i> se usan en la medicina tradicional colombiana, como antis&eacute;pticas, anti-inflamatorias, antiespasm&oacute;dicas y analg&eacute;sicos<sup>13</sup>.</p>      <p align="justify">Diferentes estudios han mostrado actividad antimic&oacute;tica <i>in vitro</i> de aceites esenciales de plantas de la familia Labiatae como <i>Melissa officinalis, Hyptis ovalifolia, Mentha piperita y Ocimum basilicum</i> contra aislados cl&iacute;nicos de <i>C. albicans, Trichophyton rubrum, T. mentagrophytes y Microsporum canis</i><sup>14-17</sup>. Sin embargo, la actividad sobre especies de hongos ambientales de importancia medica como <i>Aspergillus fumigatus y A. flavus</i> y otras especies de <i>Candida</i> no <i>albicans</i>, no se conoce. Considerando lo anterior, el objetivo de este estudio fue evaluar la actividad de aceites esenciales derivados de plantas de la familia Labiatae recolectadas en diferentes regiones de Colombia, contra cepas de <i>Candida</i> y <i>Aspergillus</i> as&iacute; como la actividad citot&oacute;xica en c&eacute;lulas Vero.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>      <p align="justify"><b>Material vegetal y obtenci&oacute;n de aceites esenciales</b>    <br> Para la obtenci&oacute;n de los aceites, se recolectaron 22 plantas de la familia Labiatae en cuatro departamentos de Colombia (Santander, Choco, Pasto y el Tolima). La identificaci&oacute;n taxon&oacute;mica del material vegetal se llev&oacute; a cabo en el Instituto de Ciencias Naturales de la Universidad Nacional de Colombia (Bogot&aacute;), por el Doctor Jos&eacute; Luis Fern&aacute;ndez. Los pliegos testigo de cada planta se encuentran depositados como muestras permanentes en el Herbario Nacional de Colombia. Los aceites esenciales se extrajeron por medio de la t&eacute;cnica de hidrodestilaci&oacute;n asistida por radiaci&oacute;n con microondas (MWHD), descrita previamente<i>18</i>. Para los ensayos, se prepararon soluciones concentradas a 20 mg/mL en dimetil sulf&oacute;xido (DMSO). La caracterizaci&oacute;n de los aceites esenciales que mostraron actividad antimic&oacute;tica, se llev&oacute; a cabo por cromatograf&iacute;a de gases acoplada a espectrometr&iacute;a de masas (GC-MS)<i>18</i>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Actividad antimic&oacute;tica</b>    <br> La actividad antimic&oacute;tica se evalu&oacute; de acuerdo a la t&eacute;cnica de susceptibilidad antimic&oacute;tica propuesta por el <i>European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing</i> (EUCAST)<sup>19</sup> para las levaduras y por el <i>Clinical and Laboratory Standards Institute</i> (CLSI) M38-A<sup>20</sup> para hongos filamentosos. Se incluyeron las cepas <i>C. parapsilosis</i> ATCC 22019, <i>C. krusei</i> ATCC 6258, <i>A. flavus</i> ATCC 204304 y <i>A. fumigatus</i> ATCC 204305. Los aceites esenciales se evaluaron a concentraciones en el rango de 31,25 - 500 &mu;g/mL. Los f&aacute;rmacos Itraconazol y Anfotericina B (Sigma-Adrich, Co, MO, USA) se emplearon como controles de las t&eacute;cnicas en el rango de concentraci&oacute;n de 0,031 - 16 mg/mL. Adem&aacute;s se incluy&oacute; un control de crecimiento en cada experimento. Las concentraciones m&iacute;nimas inhibitorias (CMIs) con las levaduras se determinaron por espectrofotometr&iacute;a y correspondieron a las m&iacute;nimas concentraciones donde se observ&oacute; inhibici&oacute;n del 50&#37; del crecimiento o m&aacute;s respecto al control (100&#37;). Las CMIs de los hongos filamentosos se determinaron por lectura visual y correspondieron a la m&iacute;nima concentraci&oacute;n de cada aceite que inhibi&oacute; el 100&#37; del crecimiento.</p>      <p align="justify"><b>Actividad citot&oacute;xica</b>    <br> La citotoxicidad se evalu&oacute; en c&eacute;lulas de ri&ntilde;&oacute;n de mono verde africano (Vero ATCC CCL-81) mediante la t&eacute;cnica fotocolorim&eacute;trica del MTT (3-(4,5-Dimetiltiazol-2-yl)-2,5-difeniltetrazolium bromuro) con algunas modificaciones<sup>21</sup>. Las c&eacute;lulas se mantuvieron en medio m&iacute;nimo esencial (MEM) suplementado con suero bovino fetal (10&#37;), amino&aacute;cidos no esenciales (1&#37;), L-glutamina 1&#37;, vitaminas 1&#37;, Penicilina 100 U/mL, Estreptomicina 100 &mu;g/mL, Neomicina 100 &mu;g/mL, Hepes 1M y bicarbonato al 7&#37;.</p>      <p align="justify">Las c&eacute;lulas se cultivaron a una densidad de 1.4 x10<sup>5</sup>/mL en placas de 96 pozos y se incubaron durante 24h a 37&deg;C con 5&#37; de CO<sub>2</sub> en atmosfera h&uacute;meda. Posteriormente, se agregaron 100 &mu;L de los aceites a concentraciones finales en un rango de 25 - 200 &mu;g/mL. Las placas se incubaron por un periodo adicional de 48h a 37&deg;C y finalmente se realiz&oacute; lectura espectrofotom&eacute;trica a 570 nm para la determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n que inhibi&oacute; el crecimiento o mat&oacute; el 50&#37; de las c&eacute;lulas (CC<sub>50</sub>).</p>      <p align="justify"><b>An&aacute;lisis de datos</b>    <br> Los ensayos de la actividad antimic&oacute;tica, se realizaron por duplicado en tres momentos diferentes para cada hongo. Los valores de las CMIs se expresaron como medias geom&eacute;tricas (MG-CMI). Los ensayos de citotoxicidad se realizaron por cuadruplicado y las CC<sub>50</sub> se expresaron como CC<sub>50</sub> &plusmn; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (CC<sub>50</sub> &plusmn; DS). Las CC<sub>50</sub> se obtuvieron mediante an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal simple con el paquete estad&iacute;stico R (Development Core Team, Vienna, Austria, 2008). Se aceptaron las regresiones con un coeficiente de correlaci&oacute;n m&uacute;ltiple al cuadrado (R<sup>2</sup>) mayor de 0,7 y se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de residuales para determinar si el efecto de los aceites era dosis dependiente.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>RESULTADOS</b></font></p>      <p align="justify">En este estudio se evalu&oacute; la actividad antimic&oacute;tica y citot&oacute;xica de 24 aceites esenciales provenientes de diferentes g&eacute;neros de la familia Labiatae. En la <a href="#t01">Tabla 1</a> se presentan los nombres cient&iacute;ficos y n&uacute;meros de voucher de las 22 plantas de donde se obtuvieron los aceites, as&iacute; como las MG-CMI y los valores de CC<sub>50</sub> de los aceites</p>      <p align="justify">A la fecha no existe un consenso sobre los criterios para definir actividad antimic&oacute;tica de productos naturales. Holetz y col (2002)<sup>22</sup> sugirieron clasificar la actividad antimic&oacute;tica de productos naturales con base en el valor de la CMI de la siguiente manera: (CMI &le;100 &mu;g/mL) buena, (CMI 100-500 &mu;g/mL) moderada y CMI (500-1000 &mu;g/mL) d&eacute;bil. Con base en lo anterior, el aceite de la planta <i>M. mollis</i> mostr&oacute; actividad moderada contra <i>C. krusei</i> ATCC 6258, <i>C. parapsilosis</i> ATCC 22019, <i>A. flavus</i> ATCC 204304 y <i>A. fumigatus</i> ATCC 204305 con valores de CMI de 250, 375, 314,9 y 314,9 &mu;g/mL, respectivamente. Asimismo, el aceite de la planta <i>H. mutabilis</i> 01 fue moderadamente activo con <i>A. fumigatus</i> (CMI =396,8 &mu;g/mL. Los aceites de las plantas <i>L. betonicifolia y L. bullata</i> fueron moderadamente activos (CMIs = 500 &mu;g/mL) con <i>C. krusei</i> ATCC 6258 y <i>A. fumigatus</i> ATCC 204305 (<a href="#t01">Tabla 1</a>). Finalmente, la actividad antimic&oacute;tica de los dem&aacute;s aceites fue d&eacute;bil.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Las MG-CMIs de los f&aacute;rmacos Itraconazol y Anfotericina B con <i>C. krusei</i> (CMIs = 0,125 &mu;g/mL y 0,630 &mu;g/mL), <i>C. parapsilosis</i> (CMIs = 0,099 &mu;g/mL y 0,630 &mu;g/mL), <i>A. flavus</i> (CMIs = 0,198 &mu;g/mL y 1,260 &mu;g/mL) y <i>A. fumigatus</i> (CMIs = 0,157 &mu;g/mL y 1,260 &mu;g/mL), respectivamente, se encontraron dentro de los rangos establecidos por las t&eacute;cnicas de referencia.</p>      <p align="justify">Seg&uacute;n el Instituto Nacional de C&aacute;ncer de Estados Unidos, un extracto es citot&oacute;xico si la CC<sub>50</sub> &lt; 30 &mu;g/mL23. De acuerdo a este criterio, 20 de los aceites esenciales evaluados no fueron citot&oacute;xicos sobre c&eacute;lulas Vero (rangos de CC<sub>50</sub> entre 31,2 y 200 &mu;g/mL). Los dem&aacute;s aceites: <i>O. campechianum</i> 02, <i>M. mollis</i> 02 y <i>H. mutabilis</i> 02, fueron citot&oacute;xicos (<a href="#t01">Tabla 1</a>).</p>      <p align="center"><a name="t01"></a><img src="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a03t1.jpg"></p>      <p align="justify">En la <a href="#t02">Tabla 2</a> se muestra la composici&oacute;n los aceites esenciales en los que se encontr&oacute; la mayor actividad. En el aceite de la planta <i>M. mollis</i> se identificaron 33 componentes y los mayoritarios fueron ep&oacute;xido de cis-piperitona (29,9&#37;) y &oacute;xido de piperitenona (25,6&#37;). Los componente mayoritarios del aceite de la planta <i>H. mutabillis</i> correspondieron a 1,8-cineol (17,4&#37;) y fenchona (17,1&#37;), de 41 identificados</p>      <p align="center"><a name="t02"></a><img src="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a03t2.jpg"></p>      <p align="center"><font size="3"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>      <p align="justify">El uso medicinal de algunas de las plantas de la familia Labiatae es permitido por parte del Instituto Nacional de Medicamentos y Alimentos de Colombia (INVIMA), entre ellas <i>S. officinalis como antiflatulento</i><sup>13</sup>.</p>      <p align="justify">El aceite de la planta <i>M. mollis</i> 02 fue el m&aacute;s activo con <i>C. krusei</i> (CMI = 250 &mu;g/mL). Es posible que la actividad antimic&oacute;tica del aceite est&eacute; asociada a su componente mayoritario (ep&oacute;xido de <i>cis</i>-piperitona). En la literatura revisada, no se encontraron reportes de actividad antimic&oacute;tica de ep&oacute;xido de <i>cis</i>-piperitona. Saleh y col (2006) demostraron que los componentes mayoritarios del aceite de <i>Artemisia herba</i>, carvona y peperitona, fueron los responsables de la actividad contra <i>Penicillium citrinum y Mucor rouxii</i> <sup>24</sup>.</p>      <p align="justify">La importancia de encontrar compuestos activos contra <i>C. krusei</i> radica en que esta levadura es intr&iacute;nsecamente resistente a Fluconazol y con baja sensibilidad a otros azoles y a Anfotericina B<sup>25</sup>.</p>      <p align="justify">Diferentes estudios <i>in vitro</i> han mostrado la actividad antimic&oacute;tica de aceites esenciales de plantas de la familia Labiatae empleadas en la medicina tradicional<sup>14-17</sup>. La infusi&oacute;n de las hojas de la planta <i>M. piperita</i> (Labiatae) se empleada en la medicina tradicional colombiana como antis&eacute;ptico, antiespasm&oacute;dico y para el tratamiento del reumatismo<sup>13</sup>. Iscan y col (2002)<sup>14</sup>, encontraron actividad en el aceite de la planta <i>M. piperita</i> contra <i>C. albicans</i> (rango CMI =312 y 2500 &mu;g/mL) con una t&eacute;cnica de difusi&oacute;n en agar. En general, las CMI de los aceites evaluados en este estudio fueron inferiores a los valores encontrados por Iscan y col (2002)<sup>14</sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Otra planta de la familia Labiatae utilizada en la medicina tradicional colombiana como antidiarr&eacute;ico<sup>13</sup> es <i>H. capitata</i>. La actividad antimic&oacute;tica de plantas de otra especie de este g&eacute;nero, <i>H. ovalifolia</i>, se ha demostrado con hongos de importancia medica como <i>M. canis, M. gypseum, T. rubrum y T. mentagrophytes</i><sup>15</sup>. Nuestro aporte en este estudio fue demostrar la actividad del aceite de <i>H. mutabilis</i> contra el hongo ambiental <i>A. fumigatus</i>, importante por su capacidad para causar infecci&oacute;n en el hombre, principalmente en ambientes hospitalarios donde puede ocasionar infecciones nosocomiales<sup>7</sup>.</p>      <p align="justify">En la medicina tradicional de Per&uacute;, la planta <i>M. mollis</i> se emplea para el tratamiento de infecciones del tracto digestivo y como sedante<sup>26</sup>; sin embargo, la actividad antimic&oacute;tica y la citotoxicidad de los aceites esenciales de esta planta aun no se ha evaluado. El aceite de esta planta fue activo contra las cuatro cepas evaluadas, y adicionalmente su citotoxicidad fue baja sobre c&eacute;lulas Vero.</p>      <p align="justify">En este estudio no se encontr&oacute; actividad en los aceites de las plantas del genero <i>Ocimum</i>, sin embargo en un trabajo previo<sup>17</sup>, se encontr&oacute; actividad del aceite de <i>O. basilicum</i> contra otros hongos de importancia m&eacute;dica como <i>C. albicans, T. mentagrophytes, T. tonsurans, T. rubrum, M. canis y Epidermophyton floccosum</i>.</p>      <p align="justify">La diferencia en la actividad antimic&oacute;tica entre los diferentes estudios con aceites de plantas de los mismos g&eacute;neros y/ o especies podr&iacute;an estar asociados a las t&eacute;cnicas usadas en cada estudio para evaluar la susceptibilidad antimic&oacute;tica, a la diferencias estructurales que existen entre los diferentes g&eacute;neros y especies de hongos evaluados<sup>27</sup> y/o a la composici&oacute;n de los aceites esenciales.</p>      <p align="justify">Fenchona es una cetona en la que se ha demostrado actividad antimic&oacute;tica contra <i>Rhizoctonia solani</i>. Nosotros encontramos esta mol&eacute;cula como componente mayoritario del aceite esencial de la planta <i>H. mutabillis</i>. Con base en lo anterior, es posible pensar que la actividad del aceite de <i>H. mutabillis</i> contra <i>A. fumigatus</i> est&eacute; dada por fenchona.</p>      <p align="justify">Este es el primer estudio en Colombia en el que se demuestra la actividad del aceite esencial de la planta <i>H. mutabillis</i> contra <i>A. fumigatus</i> y del aceite <i>M. mollis</i> no solo contra este hongo sino contra <i>A. flavus, C. krusei y C. parapsilosis</i>. Los resultados obtenidos son importantes si se tiene presente que las especies de <i>Candida</i> y <i>Aspergillus</i> tienen capacidad de formar biopeliculas en cat&eacute;teres, convirti&eacute;ndose en una amenaza para una infecci&oacute;n nosocomial <sup>4-5</sup>.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>      <p align="justify">Los resultados de este art&iacute;culo se derivan del proyecto RC 432-2004 financiado por el Instituto colombiano para el desarrollo de la ciencia y la tecnolog&iacute;a-COLCIENCIAS, Bogot&aacute;, Colombia.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>CONFLICTOS DE INTERESES</b></font></p>      <p align="justify">Los autores no tienen conflictos de intereses que declarar.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Ana Cecilia Mesa Arango certifica que: El manuscrito representa un trabajo v&aacute;lido, y que ni este manuscrito, ni otro con un contenido sustancial similar, ha sido publicado bajo mi autor&iacute;a o est&aacute; siendo considerado para su publicaci&oacute;n en otro lugar. No tiene intereses financieros en relaci&oacute;n con este manuscrito. Todo el apoyo material y de financiaci&oacute;n para este trabajo est&aacute; claramente expresado en el manuscrito.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p align="justify">1. Warnock DW. Trends in the epidemiology of invasive fungal infections. Nippon Ishinkin Gakkai Zasshi 2007; 48: 1-12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0121-0807200900030000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">2. Havlickova B, Czaika VA, Friedrich M. Epidemiological trends in skin mycoses worldwide. Mycoses 2008; 51(Suppl. 4): 2–15.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0121-0807200900030000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">3. Kaur R, Kashyap B, Bhalla P. Onychomycosis--epidemiology, diagnosis and management. Indian J Med Microbiol 2008; 26(2): 108-116.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0121-0807200900030000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">4. Ramage G, Mart&iacute;nez JP, L&oacute;pez-Ribot JL. Candida biofilms on implanted biomaterials: a clinically significant problem. FEMS Yeast Res 2006; 6(7):979-86.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0121-0807200900030000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">5. Quind&oacute;s G, Villar-Vidal M, Eraso E. Activity of micafungin against Candida biofilms. Rev Iberoam Micol 2009; 26(1): 49-55.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0121-0807200900030000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">6. Seidler MJ, Salvenmoser S, M&uuml;ller FM. <i>Aspergillus fumigatus</i> forms biofilms with reduced antifungal drug susceptibility on bronchial epithelial cells. Antimicrob Agents Chemother 2008; 52: 4130-4136.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0121-0807200900030000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">7. Haiduven D. Nosocomial aspergillosis and building construction. Med Mycol 2008; 25: 1-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0121-0807200900030000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">8. De Sarro A, La Camera E, Fera MT. New and investigational triazole agents for the treatment of invasive fungal infections. J Chemother 2008; 20: 661-671.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0121-0807200900030000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">9. Chamilos G, Kontoyiannis DP. Update on antifungal drug resistance mechanisms of <i>Aspergillus fumigates</i>. Drug Resistance Updates 2005; 8: 344–350.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0121-0807200900030000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">10. Johnson E, Espinel-Ingroff A, Szekely A, Hockey H, Troke P. Activity of voriconazole, Itraconazole, Fluconazole and amphotericin B in vitro against 1763 yeasts from 472 patients in the voriconazole phase III clinical studies. Int J Antimicrob Agents 2008; 32: 511-514.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0121-0807200900030000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">11. De Lucca AJ, Cleveland TE, Wedge DE. Plant-derived antifungal proteins and peptides. Can J Microbiol 2005; 51(12):1001-1014.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0121-0807200900030000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">12. Perez G, Vega N. Lectin prospecting in colombian labiatae. A systematic-ecological approach - II. Caldasia 2006; 28(2):179-195.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0121-0807200900030000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">13. Fonnegra R, Jimenez S. Plantas medicinales aprobadas en Colombia. 2006. 2da edici&oacute;n, editorial Universidad de Antioquia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-0807200900030000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">14. Iscan GK, Kirimer N, Kurkcuoglu M, Can-Baser KH, Demirci F. Antimicrobial Screening of <i>Mentha piperita</i> Essential Oils. J Agric Food Chem 2002; 50: 3943-3946.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0121-0807200900030000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">15. Souza LKH, De Oliveira CMA, Ferri PH, De Oliveira-J&uacute;nior JG, De Souza-J&uacute;nior AH, Lisboa-Fernandes OF, Silva MDR. Antimicrobial activity of <i>Hyptis ovalifolia</i> towards dermatophytes. Mem Inst Oswaldo Cruz 2003; 98(7): 963-965.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-0807200900030000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">16. Mimica-Dukic N, Bozin B, Sokovic M, Simin N. Antimicrobial and Antioxidant Activities of <i>Melissa officinalis</i> L. (Lamiaceae) Essential Oil. J Agric Food Chem 2004; 52: 2485-2489.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0121-0807200900030000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">17. Bozin B, Mimica-Dukic N, Simin N, Anackov G. Characterization of the volatile composition of essential oils of some Lamiaceae spices and the antimicrobial and antioxidant activities of the entire oils. J Agric Food Chem 2006; 54(5): 1822-1828.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-0807200900030000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">18. Stashenko EE, Jaramillo BE, Martinez JR. Comparison of different extraction methods for the analysis of volatile secondary metabolites of <i>Lippia alba</i> (Mill.) N.E. Brown, grown in Colombia, and evaluation of its in vitro antioxidant activity. J Chromatogr A 2004; 1025: 93-103.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0121-0807200900030000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">19. Cuenca-Estrella M, Moore CB, Barchiesi F, Bille J, Chryssanthou E, Denning DW, Donnelly JP, Dromer F, Dupont B, Rex JH, Richardson MD, Sancak B, Verweij PE, Rodr&iacute;guez-Tudela JL. Multicenter evaluation of the reproducibility of the proposed antifungal susceptibility testing method for fermentative yeasts of the Antifungal Susceptibility Testing Subcommittee of the European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing (AFST-EUCAST). Clin Microbiol Infect 2003; 9: 467-474.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-0807200900030000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">20. National Committee for Clinical Laboratory Standards 2002. Reference Method for Broth Dilution Antifungal Susceptibility Testing of Filamentous Fungi; Approved Standard. Document M38-A. Wayne, USA: National Committee for Clinical Laboratory Standards.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0121-0807200900030000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">21. Betancur-Galvis LA, Morales GE, Forero JE, Roldan J. Cytotoxic and antiviral activities of Colombian medicinal plant extracts of the Euphorbia genus. Mem Inst Oswaldo Cruz 2002; 97: 541-546.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-0807200900030000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">22. Holetz FB, Pessini GL, Sanches NR, Cortez DA, Nakamura CV, Filho BP. Screening of Some Plants Used in the Brazilian Folk Medicine for the Treatment of Infectious Diseases. Mem Inst Oswaldo Cruz 2002; 97(7): 1027-1031.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0121-0807200900030000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">23. Hennebelle T, Sahpaz S, Joseph H, Bailleul F. Ethnopharmacology of Lippia alba. J Ethnopharmacol 2008; 116: 211-222.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-0807200900030000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">24. Saleh MA, Belal MH, El-Baroty G. Fungicidal Activity of <i>Artemisia herba alba Asso</i> (Asteraceae). J Environ Sci Health B 2006; 41(3): 237-244.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0121-0807200900030000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">25. Pfaller MA, Diekema DJ, Gibbs DL, Newell VA, Nagy E, Dobiasova S, Rinaldi M, Barton R, Veselov A. Global Antifungal Surveillance Group. <i>Candida krusei</i>, a multidrug-resistant opportunistic fungal pathogen: geographic and temporal trends from the ARTEMIS DISK Antifungal Surveillance Program, 2001 to 2005. 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