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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Composición química y actividad biológica de aceites esenciales de Calycolpus moritzianus recolectado en el Norte de Santander, Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Background: Essential oils of plants of the family Myrtaceae have been evaluated for different biological activities. The aim of this research was the chemical characterization and evaluation of antifungal, antiviral and cytotoxic activity of 40 essential oils extracted from Calycolpus moritzianus, commonly called "arrayán" or "cínaro", collected in several areas of Norte de Santander, Colombia. Materials and methods: antifungal activity was determined following the protocols AFST-EUCAST for Candida krusei and C. parasilopsis, and CLSI-M38A for Aspergillus fumigatus and A. flavus. Cytotoxicity was evaluated on tumoral (HeLa and Jurkat), and non tumoral (Vero) cell lines by the MTT photo-colorimetric technique The in vitro antiviral activity against Herpes simplex virus HSV-1 was determined by the end-point titration technique (EPTT). Results and Discussion: X38 and X39 oils of plants collected in regions of Chinácota and Salazar regions showed activity against C. krusei with minimal inhibitory concentration values of 500 &mu;g/mL. None of the oils was cytotoxic in no-tumor (Vero) cells . Oils X9 and X10 of plants from regions of Salazar and Pamplonita were the most cytotoxic on HeLa cells at concentrations of 37.8 ± 2.4 and 40.6 ± 2.6 &mu;g/mL, respectively. The reduction of viral load in cell cultures only was showed by X11 oil. Antifungal and antitumor activity of these oils was correlated with the composition of the major components showing activity for Terpinen-4-ol, (-) Limonene, Linalool and a-Pinene. Salud UIS 2009; 41: 259-267.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">     <font size="4">         <br>    <center><b>Composici&oacute;n qu&iacute;mica y actividad    <br> biol&oacute;gica de aceites esenciales de    <br> <i>Calycolpus moritzianus</i> recolectado    <br> en el Norte de Santander, Colombia</b></center></font> 		     <p align="center">Xiomara Y&aacute;&ntilde;ez-Rueda<sup>1</sup>, Liliana Betancur-Galvis<sup>2</sup>, Lee Solbay Agudelo-G&oacute;mez<sup>2</sup>, Maria Bibiana Zapata<sup>2</sup>, Julieth    <br> Correa-Royero<sup>2</sup>, Ana Cecilia Mesa-Arango<sup>2</sup>, Elena Stashenko<sup>3</sup></p>      <p align="left">1 Grupo Productos Verdes (GPV). Universidad de Pamplona, Campus Villa del Rosario, Norte de Santander, Colombia.    <br>  2 Grupo de Investigaci&oacute;n Dermatol&oacute;gica, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 3 Centro de Investigaci&oacute;n en Biomol&eacute;culas, CIBIMOL. Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, Colombia.    <br> <b>Correspondencia:</b> Liliana Betancur-Galvis. Qu&iacute;mica, MSc, PhD. Grupo de Investigaci&oacute;n Dermatol&oacute;gica- Departamento de    <br> Medicina Interna, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n. Carrera 51D &#35; 62-29 Laboratorio 283 B. Tel&eacute;fono:    <br> &#43;4 219 60 64 Fax: &#43;4 219 60 66.    <br> <b>E-mail:</b> <a href="mailto:betancurli@hotmail.com">betancurli@hotmail.com</a>.    <br> <b>Recibido:</b> 12 de octubre de 2009 - <b>Aceptado:</b> 23 de diciembre de 2009</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>RESUMEN</b></font></p> 	     <p align="justify"><b>Introducci&oacute;n:</b> Actualmente, se est&aacute;n llevando a cabo estudios sobre la actividad biol&oacute;gica de AEs de plantas de la familia Myrtaceae. El objetivo de esta investigaci&oacute;n fue la caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica y la evaluaci&oacute;n de la actividad antimic&oacute;tica, antitumoral y antiviral de 40 aceites extra&iacute;dos de plantas de la especie <i>Calycolpus moritzianus</i>, com&uacute;nmente llamada &quot;array&aacute;n &oacute; c&iacute;naro&quot;, recolectadas en varias zonas del Norte de Santander, Colombia. <b>Materiales y m&eacute;todos:</b> la actividad antimic&oacute;tica se evalu&oacute; contra: <i>Candida krusei</i>, <i>C. parapsilosis</i>, <i>Aspergillus fumigatus</i> y <i>A. flavus</i>, siguiendo las t&eacute;cnicas est&aacute;ndar EUCAST y CLSI M38-A, respectivamente, para levaduras y hongos filamentosos. La citotoxicidad se evalu&oacute; en las l&iacute;neas celulares tumorales (HeLa, Jurkat) y no tumorales (Vero) mediante la t&eacute;cnica fotocolorim&eacute;trica del MTT. La actividad antiviral <i>in vitro</i>, contra el virus <i>Herpes simplex</i> tipo 1 (HSV-1), se realiz&oacute; mediante la &quot;t&eacute;cnica de titulaci&oacute;n del punto final (EPTT)&quot;. <b>Resultados y Discusi&oacute;n:</b> los aceites X38 y X39, de muestras recolectadas en los municipios de Chin&aacute;cota y Salazar, mostraron actividad contra <i>C. krusei</i> con valores de concentraciones inhibitorias m&iacute;nimas de 500 &mu;g/mL. Ninguno de los aceites fue citot&oacute;xico en c&eacute;lulas no tumorales Vero. Los aceites X9 y X10, procedentes de los municipios de Salazar y Pamplonita, fueron los m&aacute;s citot&oacute;xicos sobre c&eacute;lulas HeLa, a concentraciones de 37,8 &plusmn; 2,4 y 40,6 &plusmn; 2,6 &mu;g/mL, respectivamente. La reducci&oacute;n de la carga viral en los cultivos celulares s&oacute;lo fue lograda por el aceite X11. La actividad antimic&oacute;tica y antitumoral de los aceites fue correlacionada con la composici&oacute;n de los componentes mayoritarios, evidenci&aacute;ndose la actividad del Terpinen-4-ol, (-) Limoneno, &alpha;-Pineno y Linalol. <b><i>Salud UIS</i> 2009; 41: 259-267</b></p> 	     <p align="justify"><b>Palabras Claves:</b> Myrtaceae, <i>Calycolpus moritzianus</i>, citotoxicidad, actividad antimic&oacute;tica, actividad    <br> antiviral, Herpes simplex virus, <i>Aspergillus</i> spp, <i>Candida</i> spp</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="3"><b>Chemical composition and biological activity of    <br> essential oils Calycolpus moritzianus collected    <br> in the Norte de Santander, Colombia</b></font></p> 	     <p align="center"><font size="3"><b>ABSTRACT</b></font></p> 	     <p align="justify"><b>Background:</b> Essential oils of plants of the family Myrtaceae have been evaluated for different biological activities. The aim of this research was the chemical characterization and evaluation of antifungal, antiviral and cytotoxic activity of 40 essential oils extracted from <i>Calycolpus moritzianus</i>, commonly called &quot;array&aacute;n&quot; or &quot;c&iacute;naro&quot;, collected in several areas of Norte de Santander, Colombia. <b>Materials and methods:</b> antifungal activity was determined following the protocols AFST-EUCAST for <i>Candida krusei</i> and <i>C. parasilopsis</i>, and CLSI-M38A for <i>Aspergillus fumigatus</i> and <i>A. flavus</i>. Cytotoxicity was evaluated on tumoral (HeLa and Jurkat), and non tumoral (Vero) cell lines by the MTT photo-colorimetric technique The <i>in vitro</i> antiviral activity against <i>Herpes simplex</i> virus HSV-1 was determined by the end-point titration technique (EPTT). <b>Results and Discussion:</b> X38 and X39 oils of plants collected in regions of Chin&aacute;cota and Salazar regions showed activity against <i>C. krusei</i> with minimal inhibitory concentration values of 500 &mu;g/mL. None of the oils was cytotoxic in no-tumor (Vero) cells . Oils X9 and X10 of plants from regions of Salazar and Pamplonita were the most cytotoxic on HeLa cells at concentrations of 37.8 &plusmn; 2.4 and 40.6 &plusmn; 2.6 &mu;g/mL, respectively. The reduction of viral load in cell cultures only was showed by X11 oil. Antifungal and antitumor activity of these oils was correlated with the composition of the major components showing activity for Terpinen-4-ol, (-) Limonene, Linalool and a-Pinene. <b><i>Salud UIS</i> 2009; 41: 259-267</b>.</p> 	     <p align="justify"><b>Keywords:</b> Myrtaceae, <i>Calycolpus moritzianus</i>, antifungal, antiviral, cytotoxic, Herpes simplex virus, <i>Aspergillus</i>    <br> spp, <i>Candida</i> spp</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>      <p align="justify">Los aceites esenciales (AEs) son fuente de una amplia variedad de mol&eacute;culas bioactivas que podr&iacute;an ser utilizadas como base para el dise&ntilde;o y la formulaci&oacute;n de nuevos medicamentos<sup>1</sup>. La frecuencia de las infecciones f&uacute;ngicas ha aumentado durante los &uacute;ltimos a&ntilde;os y la mayor&iacute;a son producidas por dermatofitos y especies de <i>Malassezia</i>, <i>Cryptococcus</i>, <i>Aspergillus</i> y <i>Candida</i>. Especies de los dos &uacute;ltimos g&eacute;neros son los responsables de aproximadamente el 90&#37; de las infecciones, con una alta incidencia en la poblaci&oacute;n inmunocomprometida, siendo una de las causas m&aacute;s importante de morbilidad y mortalidad<sup>2-3</sup>. <i>C. albicans</i> es la especie m&aacute;s pat&oacute;gena y frecuente, sin embargo, en los &uacute;ltimos a&ntilde;os, otras especies han emergido: <i>C. parapsilosis</i>, <i>C. dubliniensis</i>, <i>C. krusei</i>, <i>C. glabrata</i>, <i>C. tropicalis</i>, <i>C. guilliermondi</i> y <i>C. lusitaniae</i><sup>3-4</sup>. Las infecciones causadas por especies del g&eacute;nero <i>Aspergillus</i> causan morbilidad (superior al 50 &#37;) y mortalidad en individuos inmunocomprometidos<sup>5</sup>. Las especies m&aacute;s implicadas son <i>A. fumigatus</i>, <i>A. flavus</i> y <i>A. terreus</i><sup>5-6</sup>. La cantidad de antimic&oacute;ticos &uacute;tiles para el tratamiento a&uacute;n son limitados y se registran constantemente aislamientos con resistencia a algunos de ellos<sup>3-5</sup>. El virus <i>Herpes simplex</i> tipo 1 (HSV-1), pertenece a la subfamilia alfa-Herpesvirinae y causa infecciones virales comunes en humanos, tales como infecciones herp&eacute;ticas mucocut&aacute;neas, keratitis, encefalitis y herpes neonatal<sup>7</sup>. Como consecuencia de la epidemia del VIH-SIDA (S&iacute;ndrome de Inmunodeficiencia Adquirida), los tratamientos inmunosupresores y, el incremento en las infecciones de transmisi&oacute;n sexual, las enfermedades producidas por este agente infeccioso persistente, tienden a ser m&aacute;s frecuentes y cl&iacute;nicamente m&aacute;s complejas<sup>8</sup>.</p> 	     <p align="justify">Los AEs de especies de la familia Myrtaceae se han evaluado para diferentes actividades biol&oacute;gicas, tales como <i>Eucalyptus globulus</i> cuyo aceite tiene actividad antibacterial y antimic&oacute;tica<sup>1</sup>; y el &quot;<i>tea tree oil</i> (TTO)&quot;, proveniente de la especie <i>Melaleuca alternifolia</i>, y su componente mayoritario, el Terpinen-4-ol, se les ha demostrado actividad antimicrobiana y antitumoral<sup>9-11</sup>. El AE de <i>Psidium caudatum</i>, otra especie de la familia Myrtaceae, que contiene tambi&eacute;n Terpinen-4-ol<sup>12</sup>, puede llegar a tener el mismo potencial bioactivo que el TTO. En el presente estudio se evalu&oacute; <i>in vitro</i> la actividad antimic&oacute;tica, antitumoral y antiviral, como tambi&eacute;n la caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica de cuarenta AEs foliares obtenidos de diferentes quimiotipos de la especie <i>Psidium caudatum</i>, syn. <i>Calycolpus moritzianus</i>, nombre comun &quot;array&aacute;n o c&iacute;naro&quot;, recolectadas en varias zonas del departamento del Norte de Santander–Colombia.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>      <p align="justify"><b>Material vegetal y extracci&oacute;n de los AEs</b>    <br> Se recolectaron las hojas de la especie <i>Calycolpus moritzianus</i>, en los municipios de Chin&aacute;cota, Oca&ntilde;a, Pamplonita, Toledo y Salazar, durante los per&iacute;odos clim&aacute;ticos lluviosos. La clasificaci&oacute;n taxon&oacute;mica la realiz&oacute; Luis Roberto S&aacute;nchez Monta&ntilde;o, MSc, director del Herbario Regional Catatumbo-Sarare de la Universidad de Pamplona, en Pamplona, Norte de Santander, quien deposit&oacute; ejemplares de la especie con los siguientes n&uacute;meros de colecci&oacute;n: 10484 Toledo Junio 18-2007), 10488 Salazar (Junio 21-2007), 11094 Pamplonita (Marzo 4-2008), 11149 Chin&aacute;cota (Abril 11-2008) y 10328 Oca&ntilde;a (Mayo 12-2007).</p>      <p align="justify">Para el secado de las hojas (HS), 5 Kg de hojas se colocaron por 15 d&iacute;as a la sombra en lugar aireado y seco. La extracci&oacute;n de los aceites se realiz&oacute; por dos m&eacute;todos: 1) destilaci&oacute;n por arrastre con vapor de agua (AV), y 2) hidrodestilaci&oacute;n asistida por radiaci&oacute;n de microondas (HDMO) en aparato Clevenger modificado. Cada aceite se recogi&oacute; en un equipo Dean Steark, se midi&oacute; en bureta, se separ&oacute; de la fase acuosa por decantaci&oacute;n, se sec&oacute; con sulfato de sodio anhidro (Na<sub>2</sub>SO<sub>4</sub>) y se almacen&oacute; en frasco &aacute;mbar a 4&deg;C, hasta su an&aacute;lisis por Cromatograf&iacute;a de Gases de Alta Resoluci&oacute;n (CGAR). Es de anotar que tanto las t&eacute;cnicas de hidrodestilaci&oacute;n y arrastre con vapor, son m&eacute;todos de extracci&oacute;n incapaces de remover del material vegetal mol&eacute;culas con alto peso molecular como endotoxinas.</p>      <p align="justify"><b>An&aacute;lisis cromatogr&aacute;fico de los AEs</b>    <br> Se disolvieron 30 &mu;L del AE en 1 mL de diclorometano y se a&ntilde;adieron a la muestra 5 &mu;L de <i>n</i>-tetradecano como patr&oacute;n interno. Para obtener el perfil cromatogr&aacute;fico de cada AE y los &iacute;ndices de Kov&aacute;ts (IK) relativos a los patrones de alcanos C<sub>8</sub>-C<sub>32</sub>, el an&aacute;lisis se realiz&oacute; en un CGAR HP 6890 Plus con detector FID a 250&deg;C. El flujo de aire y de hidr&oacute;geno para el detector FID fue, respectivamente, de 400 y 40 mL/min. Se utiliz&oacute; una columna capilar no polar HP-5 de 60 m x 250 &mu;m, y de espesor 0,25 &mu;m. Se inyect&oacute; 1,0 mL, modo split (70:1, flujo 68,7 mL/min). La temperatura del inyector fue de 250 &deg;C. Se utiliz&oacute; Helio (99,995&#37;, Aga-Fano) como gas de arrastre; con presi&oacute;n de150 pKa; flujo constante de 1 mL/min y velocidad lineal de 36 cm/seg. La temperatura inicial fue de 50&deg;C por 4 min, luego se aument&oacute; la temperatura 2&deg;C/min hasta 90&deg;C, permaneciendo 3 min. Se continu&oacute; la rampa aumentando 4&deg;C/min hasta 166&deg;C, 1&deg;C/min hasta 170&deg;C, luego 2&deg;C/min hasta 186&deg;C, y finalmente 4&deg;C/min hasta 216. El tiempo de corrido fue 65,5 min. Se utiliz&oacute; como gas auxiliar Nitr&oacute;geno, con un flujo de 30 mL/min. Los datos se procesaron con un HP ChemStation 3365-II.</p>      <p align="justify">Para los an&aacute;lisis por CGEM, se utiliz&oacute; un equipo Serie HP 6890, en interfase con un detector selectivo de masas HP5973-Network, conectado en l&iacute;nea con un sistema HP-MS ChemStation y la base de datos NIST-2005. La Columna capilar fue HP-5MS (30 m x 0,25 mm de di&aacute;metro interno x 0,25 &mu;m de espesor). La temperatura de la c&aacute;mara de ionizaci&oacute;n y la l&iacute;nea de transferencia fue, respectivamente, de 180 y 280 &deg;C. La energ&iacute;a de la fuente de electrones fue de 70 eV. Los espectros de masas (EM) se obtuvieron por ionizaci&oacute;n electr&oacute;nica, barrido autom&aacute;tico en el rango de masas m/z 50-550 u.m.a., a 2,4 scan/s. Cada EM es comparado con los est&aacute;ndares reportados en la base de datos y con datos reportados en la literatura<sup>12</sup>.</p>      <p align="justify">Para la identificaci&oacute;n cualitativa y cuantitativa de los componentes se utiliz&oacute; a) el criterio cromatogr&aacute;fico: IK experimentales comparados con los publicados en la literatura y bases de datos, as&iacute; como, la comparaci&oacute;n de los tiempos de retenci&oacute;n de patrones puros de algunos monoterpenos y sesquiterpenos certificados y b) el criterio espectral: interpretaci&oacute;n de EM. La composici&oacute;n porcentual de la CG-FID de cada componente se analiz&oacute; por el m&eacute;todo de normalizaci&oacute;n de &aacute;reas por c&aacute;lculo del factor de respuesta y la cuantificaci&oacute;n en ppm con relaci&oacute;n al <i>n</i>-tetradecano como patr&oacute;n interno.</p>      <p align="justify"><b>Monoterpenos y sesquiterpenos</b>    <br> Los monoterpenos (&#43;) Limoneno, (-) Limoneno, Linalol, &alpha;-Pineno, &beta;- Mirceno, Terpinen-4-ol, 1,8-Cineol (Eucaliptol) y el sesquiterpenos &beta;-Cariofileno, fueron comprados a Sigma (Chemical Company St Louis, MO, USA). Se prepararon soluciones de los monoterpenos y sesquiterpenos en DMSO a 50mg/mL y se almacenaron en refrigeraci&oacute;n a 4&deg;C hasta su uso.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Actividad antimic&oacute;tica</b>    <br> La actividad antimic&oacute;tica fue evaluada mediante la t&eacute;cnica de susceptibilidad antimic&oacute;tica, propuesta por el comit&eacute; &quot;<i>European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing</i> (EUCAST)<sup>13</sup>&quot; para las levaduras y, el &quot;<i>Clinical Laboratory Standard Institute</i> (CLSI) M38-A<sup>14</sup>&quot; para hongos filamentosos. Se incluyeron las cepas: <i>C. parapsilosis</i> ATCC 22019, <i>C. krusei</i> ATCC 6258, <i>A. flavus</i> ATCC 204304 y <i>A. fumigatus</i> ATCC 204305. Los AEs se evaluaron a concentraciones comprendidas en el rango 500 a 31,25 &mu;g/mL. Los f&aacute;rmacos itraconazol y anfotericina B (Sigma-Adrich, Co, MO, USA) se emplearon como controles de las t&eacute;cnicas en un rango de concentraciones de 16 a 0,031 mg/mL. Las concentraciones inhibitorias m&iacute;nimas (CMIs) de los AEs, monoterpenos y sesquiterpenos se determinaron por espectrofotometr&iacute;a y correspondieron a las m&iacute;nimas concentraciones donde se observ&oacute; inhibici&oacute;n del 50 &#37; del crecimiento respecto al control (100 &#37;). Las CMIs de los hongos filamentosos se determinaron por lectura visual y correspondi&oacute; a la m&iacute;nima concentraci&oacute;n del aceite que mostr&oacute; inhibici&oacute;n del 100&#37; con respecto al control (100&#37;).</p>      <p align="justify"><b>Actividad citot&oacute;xica</b>    <br> Las c&eacute;lulas utilizadas fueron: HeLa (carcinoma epitelial de c&eacute;rvix humano, HeLa cell line ATCC CRL-1958), Vero (c&eacute;lulas de ri&ntilde;&oacute;n de mono verde africano, Vero cell line ATCC CCL-81) y Jurkat (Leucemia de c&eacute;lulas T ATCC TIB-152). La citotoxicidad se evalu&oacute; mediante la t&eacute;cnica fotocolorim&eacute;trica del MTT (3-(4,5-Dimetiltiazol-2-yl)-2,5-difeniltetrazolium bromuro) descrita por Betancur-Galvis y col<sup>15</sup> con algunas modificaciones. Las c&eacute;lulas se mantuvieron en medio m&iacute;nimo esencial (MEM) suplementado con suero bovino fetal (10 &#37;), amino&aacute;cidos no esenciales (1 &#37;), L-glutamina 1 &#37;, vitaminas 1&#37;, penicilina 100 U/mL, estreptomicina 100 &mu;g/mL, neomicina 100 &mu;g/mL, Hepes 1M y bicarbonato al 7 &#37;.</p>      <p align="justify">Se cultivaron las c&eacute;lulas HeLa a una densidad de 1,25x10<sup>5</sup>/mL y las c&eacute;lulas Vero a una densidad de 1,4 x10<sup>5</sup> c&eacute;lulas/mL, en placas de 96 pozos; y se incubaron durante 24h a 37&deg;C con 5&#37; de CO<sub>2</sub> en atmosfera h&uacute;meda. Luego de la incubaci&oacute;n se agreg&oacute; por cuadruplicado a cada pozo, las respectivas diluciones de los aceites. A las c&eacute;lulas Jurkat a densidad de 3 x10<sup>5</sup> c&eacute;lulas/mL, se les adicion&oacute; los aceites, monoterpenos o sesquiterpenos en RPMI-1640 suplementado, a concentraciones, respectivamente, de 200 y 31,6 &mu;g/mL, inmediatamente despu&eacute;s de sembradas, teniendo en cuenta que &eacute;stas c&eacute;lulas crecen en suspensi&oacute;n. Las placas cultivadas con las c&eacute;lulas HeLa, Jurkat y Vero, se incubaron por un periodo adicional de 48h a 37&deg;C y finalmente se realiz&oacute; lectura espectrofotom&eacute;trica a 570 nm, para la determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n que inhibi&oacute; el crecimiento o mat&oacute; el 50 &#37; de las c&eacute;lulas (IC<sub>50</sub>). Finalmente los platos se incubaron durante 48h a 37&deg;C en atm&oacute;sfera h&uacute;meda y 5 &#37; de CO<sub>2</sub>. La concentraci&oacute;n final de DMSO en pozo fue de 0,05&#37;. Los controles celulares con DMSO a concentraci&oacute;n de 0,05 &#37; fueron tenidos en cuenta para todos los bioensayos.</p>      <p align="justify">Se calcul&oacute; el IS de los aceites, monoterpenos y sesquiterpenos (ejemplo, IS = IC<sub>50</sub> c&eacute;lulas Vero/IC<sub>50</sub> c&eacute;lulas HeLa) y se consider&oacute; selectiva la muestra que mostr&oacute; un IS &ge; 3 de acuerdo al criterio utilizado por Prayong y col<sup>16</sup>.</p>      <p align="justify"><b>Ensayo de Reducci&oacute;n del t&iacute;tulo viral</b>    <br> Se utiliz&oacute; un aislado del virus <i>Herpes simplex</i> tipo 1 (HSV-1) sensible al Aciclovir, donado por el grupo de Virolog&iacute;a de la Universidad de Antioquia (Cepa Viral comprada al &quot;The Center for Disease Control -Atlanta, GA, USA&quot;); &eacute;ste fue propagado en cultivo de c&eacute;lulas Vero (C&eacute;lulas de ri&ntilde;&oacute;n de mono verde africano, l&iacute;nea ATCC CCL-81). El lote viral se prepar&oacute; mediante etapas a repetici&oacute;n de congelaci&oacute;n y descongelaci&oacute;n, a partir del sobrenadante, obtenido del cultivo celular infectado de c&eacute;lulas Vero. Posteriormente se realiz&oacute; la titulaci&oacute;n viral seg&uacute;n el m&eacute;todo de &quot;Dosis Infecciosa de Cultivo Celular 50 (DICC<sub>50</sub>)&quot;, correspondiente a la concentraci&oacute;n del virus que afecta el 50 &#37; de la monocapa celular, con formaci&oacute;n del &ge;80 &#37; de la monocapa; seg&uacute;n lo descrito por Betancur-Galvis y col<sup>15</sup>. Luego de cuantificar el virus, &eacute;ste fue conservado en al&iacute;cuotas a -196&deg;C, en nitr&oacute;geno l&iacute;quido.</p>      <p align="justify">Se determin&oacute; la actividad antiviral de los AEs frente a una Dosis Infecciosa de Cultivo Celular Cincuenta (1DICC<sub>50</sub>), de HSV-1, mediante la t&eacute;cnica de titulaci&oacute;n del punto final (TTPF) &oacute; ensayo de reducci&oacute;n del t&iacute;tulo viral. Las c&eacute;lulas HeLa, cultivadas en platos de 96 pozos a una densidad de 1,6 x10<sup>4</sup> c&eacute;lulas/pozo, incubada a 37&deg;C en atm&oacute;sfera de CO<sub>2</sub> al 5&#37;, fueron mantenidas hasta constituir el 80&#37; de la monocapa celular. Luego, suspensiones virales de 1DICC<sub>50</sub> de HSV-1, con el aceite esencial en concentraciones de 500 hasta 12,5 &mu;g/mL, y los monoterpenos en concentraciones desde 100 hasta 12,5 &mu;g/mL, se incubaron, durante 30 minutos, a temperatura ambiente. La mezcla de aceite esencial/suspensi&oacute;n viral, fue adicionada a la monocapa confluente de c&eacute;lulas HeLa. Se examin&oacute; el efecto citop&aacute;tico, despu&eacute;s de 24 horas de incubaci&oacute;n en 5 &#37; de atm&oacute;sfera h&uacute;meda a 37&deg;C; y, posteriormente, los microplatos fueron fijados con formaldeh&iacute;do al 3,5 &#37; y te&ntilde;idos con cristal violeta al 0,2 &#37;. El control celular, del aceite, del monoterpeno y, el control de la suspensi&oacute;n viral, fueron incluidos en la prueba, para determinar tanto la concentraci&oacute;n de aceite, que desprende el 100 por ciento de las c&eacute;lulas en cada diluci&oacute;n (CC<sub>100</sub>), como la concentraci&oacute;n m&iacute;nima de aceite que reduce la carga viral. La actividad fue evaluada determinando el factor de reducci&oacute;n, el cual corresponde al valor obtenido de dividir el titulo viral en ausencia del aceite, sobre el t&iacute;tulo obtenido en presencia del aceite<sup>17</sup>. En otras palabras, el factor de reducci&oacute;n muestra cuantas veces el aceite redujo la carga viral al cual fue retado. Se realizaron dos r&eacute;plicas de cada experimento por cuadruplicado. Se utiliz&oacute; como controles positivos la heparina y el aciclovir. Seg&uacute;n los par&aacute;metros establecidos por Vlietinck y col<sup>17</sup>, la actividad antiviral relevante o moderada de un producto natural purificado, es aquella cuyo factor de reducci&oacute;n (RF) del t&iacute;tulo viral es, respectivamente, de 1x10<sup>3</sup> o de 1x10<sup>2</sup>. Se determin&oacute;, en este estudio, como criterio de actividad moderada y leve, un factor de reducci&oacute;n del t&iacute;tulo viral, respectivamente, de 1x10<sup>1.5</sup> y 1x10<sup>1</sup>.</p>      <p align="justify"><b>An&aacute;lisis de datos</b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Los ensayos de la actividad antimic&oacute;tica, se realizaron por duplicado en tres momentos diferentes para cada hongo. Los resultados de los valores de las CMI se expresaron como medias geom&eacute;tricas (MG-CMI). Los ensayos de citotoxicidad se realizaron por cuadruplicado y las IC<sub>50</sub> se expresaron como IC<sub>50</sub> &plusmn; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar. Las IC<sub>50</sub> se obtuvieron mediante an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal simple con el paquete estad&iacute;stico R (Development Core Team, Vienna, Austria, 2008). Se aceptaron las regresiones con un coeficiente de correlaci&oacute;n m&uacute;ltiple al cuadrado (R<sup>2</sup>) mayor de 0,7, y se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de residuales para asegurar un efecto dosis dependiente.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>RESULTADOS</b></font></p>      <p align="justify">En el presente estudio, se recolectaron hojas de <i>Calycolpus moritzianus</i> de cinco regiones del departamento del Norte de Santander correspondientes a Toledo, Salazar, Pamplonita, Chin&aacute;cota y Oca&ntilde;a. Se obtuvieron del material vegetal recolectado, en total cuarenta AEs. La caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica se realizo a los 40 AEs, sin embargo, en la <a href="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a08t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>, se registra s&oacute;lo la composici&oacute;n de los aceites relevantes para la discusi&oacute;n de la actividad biol&oacute;gica. Mediante cromatograf&iacute;a de gases acoplado a masas (GC/MS) se identificaron 26 compuestos (datos no mostrados). En la <a href="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a08t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>, se registran los 12 componentes mayoritarios identificados por GC/MS. Los componentes est&aacute;n ordenados seg&uacute;n el tiempo de eluci&oacute;n en las columnas HP-5MS y DB-WAX, con sus &iacute;ndices de retenci&oacute;n y cantidades relativas (&#37;). La composici&oacute;n qu&iacute;mica de los AEs vari&oacute; en la concentraci&oacute;n relativa de los componentes presentes, pero cualitativamente fue muy constante. El Limoneno y el 1,8-Cineol o Eucaliptol fueron los constituyente mayoritarios, mostrando rangos de porcentajes de concentraci&oacute;n, respectivamente, de 20 – 47 &#37; y 12 – 49,7 &#37;; seguido del Guaiol (2-12 &#37;), &alpha;-Pineno (3,9-11,8 &#37;), &beta;-Cariofileno (1,1-9,9 &#37;), &alpha;-Selineno (0,5-7,3 &#37;), Terpinen-4-ol (2-6 &#37;). Los aceites con actividad citot&oacute;xica, sobre l&iacute;neas celulares tumorales, presentaron alto contenido de Limoneno (23-29,4 &#37;), Eucaliptol (12,9 – 39,8 &#37;), Guaiol (4,7-12 &#37;), &alpha;-Selineno (7 &#37;), &beta;-Cariofileno (5 &#37;), Terpinen-4-ol (5 &#37;) y &alpha;-Pineno (4 &#37;). Por otra parte, el aceite con actividad antiviral present&oacute; alto contenido de Eucaliptol (49 &#37;), Limoneno (20 &#37;) y Terpinen-4-ol (5 &#37;); y finalmente, los aceites con actividad antimic&oacute;tica mostraron un contenido elevado de Limoneno (45-47 &#37;), seguido de Eucaliptol (12-20 &#37;), &alpha;-Pineno (7-11 &#37;) y &beta;-Cariofileno (7-9 &#37;).</p>      <p align="justify">El efecto citot&oacute;xico de los AEs de <i>C. moritzianus</i> y sus componentes mayoritariosse evaluo sobre las l&iacute;neas tumorales HeLa y Jurk at, y la l&iacute;nea no tumoral inmortalizada Vero, seg&uacute;n los criterios del Instituto Nacional de C&aacute;ncer de Estados Unidos, el cual considera citot&oacute;xico un extracto vegetal con valor de IC<sub>50</sub> &lt; 30 &mu;g/mL<sup>18</sup>. En la <a href="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a08t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>, se presentan los valores de IC<sub>50</sub>, desviaci&oacute;n est&aacute;ndar, R cuadrado ajustado (R<sup>2</sup>) e &iacute;ndice de selectividad (IS) de los AEs y componentes mayoritarios sobre c&eacute;lulas HeLa, Jurkat y Vero, obtenidas por la t&eacute;cnica del MTT y por an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal, de los aceites que presentaron mayor actividad citot&oacute;xica sobre c&eacute;lulas tumorales. Las concentraciones evaluadas en c&eacute;lulas Vero fueron m&aacute;s altas que las evaluadas en c&eacute;lulas tumorales, con el fin de encontrar un producto citot&oacute;xico a concentraciones bajas en c&eacute;lulas tumorales y poco citot&oacute;xico a concentraciones altas en c&eacute;lulas no tumorales. Seg&uacute;n Prayong y col<sup>16</sup>, consideran citotoxicidad selectiva, el principio activo o componente que muestra un IS &ge; 3. Los aceites X9 y X10, provenientes de los municipios de Salazar y Pamplonita, fueron los m&aacute;s citot&oacute;xicos sobre c&eacute;lulas HeLa, a concentraciones, respectivamente, de 37,8 &plusmn; 2,4 y 40,6 &plusmn; 2,6 &mu;g/mL. Ambos aceites, mostraron un efecto de dosis dependiente, con valores de coeficiente de regresi&oacute;n lineal (R<sup>2</sup>) de 0,96. Sin embargo, el aceite con mayor &iacute;ndice de selectividad, IS de 3,1, fue el aceite X10. En c&eacute;lulas Jurkat ninguno de los aceites evaluados mostraron actividad (IS &ge;3). La mayor&iacute;a de los aceites no present&oacute; citotoxicidad sobre las c&eacute;lulas Vero. El aceite X11, inactivo, fue obtenido del mismo material vegetal que el aceite X10 pero el m&eacute;todo de extracci&oacute;n fue diferente. En el aceite X11, la extracci&oacute;n por hidrodestilaci&oacute;n asistida por radiaci&oacute;n de microondas (HDMO) aument&oacute; la concentraci&oacute;n de Eucaliptol y disminuy&oacute; la concentraci&oacute;n de Limoneno y Guaiol. Con el fin de correlacionar la actividad de los aceites, con la presencia y porcentaje de los componentes mayoritarios, se evalu&oacute; la actividad citot&oacute;xica de ocho componentes mayoritarios (<a href="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a08t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). Los componentes que mostraron mayor actividad fue el (-) Limoneno sobre c&eacute;lulas HeLa, y el Linalol sobre c&eacute;lulas Jurkat, mostrando valores de IC<sub>50</sub> e IS, respectivamente de, 22,1 &plusmn; 1,2 &mu;g/mL (IS = 6,97) y 19,8 &plusmn; 2,8 &mu;g/mL (IS &ge;10,1). Ambos monoterpenos, mostraron un efecto de dosis dependiente, con valores de coeficiente de regresi&oacute;n lineal (R<sup>2</sup>) de 0,9.</p>      <p align="justify">La evaluaci&oacute;n de la actividad antimic&oacute;tica de los aceites m&aacute;s activos, en la cepa que fue m&aacute;s susceptible a la acci&oacute;n antimic&oacute;tica del aceite, es mostrada en la <a href="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a08t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>. Los aceites evaluados no mostraron actividad antifungica contra <i>Aspergillus</i> spp. ni contra <i>C. parapsilosis</i> (datos no mostrados). Los aceites X38 y X39 inhibieron el crecimiento de la cepa <i>C. krusei</i> con valores de CMI de 500 &mu;g/mL (<a href="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a08t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). Los dos aceites mostraron alta concentraciones de Limoneno. Con el fin de correlacionar la actividad de los aceites con la presencia y porcentaje de los componentes mayoritarios, se evalu&oacute; la actividad anti- <i>C. krusei</i> de ocho componentes mayoritarios (<a href="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a08t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). El &alpha;-Pineno y el Terpinen-4-ol inhibieron el crecimiento de la cepa <i>C. krusei</i> con valores de CMI de 500 &mu;g/mL.</p>      <p align="justify">En la evaluaci&oacute;n de la actividad antiviral, los aceites se retaron con 1DICC<sub>50</sub> del virus <i>Herpes simplex</i> tipo 1 (HSV-1), sobre c&eacute;lulas HeLa durante 24 h a partir de 500 &mu;g/mL. Los aceites evaluados, no mostraron actividad antiviral a las concentraciones evaluadas, seg&uacute;n los par&aacute;metros de actividad establecidos por Vlietinck y col<sup>17</sup>. Sin embargo, el aceite X11 present&oacute; una muy leve actividad antiherp&eacute;tica a partir de 250 &mu;g/mL. Los monoterpenos y sesquiterpenos tampoco mostraron actividad anti-herp&eacute;tica.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>      <p align="justify">Los AEs de importancia comercial como el eucalipto y el &quot;<i>Tea Tree Oil</i> (TTO)&quot; son obtenidos de plantas de la familia Myrtaceae. De la destilaci&oacute;n de las hojas de la mirt&aacute;cea australiana <i>M. alternifolia</i> (TTO) se obtiene un fitof&aacute;rmaco, con alto contenido de Terpinen-4-ol y 1,8-cineol o Eucaliptol, para el tratamiento de infecciones en la piel causadas por especies del g&eacute;nero <i>Candida</i> y <i>Malassezia</i>, y en las onicomicosis causadas por dermatofitos<sup>19-22</sup>. En Colombia se ha identificado la mirt&aacute;cea <i>Psidium caudatum</i>, sin&oacute;nimo <i>Calycolpus moritzianus</i>, (&quot;array&aacute;n&quot; &oacute; &quot;c&iacute;naro&quot;), la cual posee un aceite foliar con alto contenido de Terpinen-4-ol (47,72 &#37;)<sup>12</sup>, principio activo reconocido por su variada actividad biol&oacute;gica<sup>9-11</sup>. Recientes estudios de Casta&ntilde;eda y col<sup>23</sup> en diferentes zonas de Colombia y, de D&iacute;az y col<sup>24</sup> en M&eacute;rida (Venezuela) muestran la existencia de otros quimiotipos de <i>C. moritzianus</i>. En el primer caso, se concluye que el AE contiene principalmente 1,8-Cineol o Eucaliptol (20&#37;), &beta;-cariofileno (8&#37;), &gamma;-Eudesmol (7&#37;), &alpha;-Terpineol (6&#37;) y Guaiol&#43;Viridiflorol (5&#37;), y en el segundo caso, se encontr&oacute; que el componente mayoritario es &beta;-cariofileno (21&#37;). La presente investigaci&oacute;n, realiz&oacute; la caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica de AEs obtenidos de plantas de <i>Calycolpus moritzianus</i> provenientes de cinco regiones del Departamento del Norte de Santander, seleccionadas con base en la Cartograf&iacute;a de la Corporaci&oacute;n Aut&oacute;noma Regional de Norte de Santander (CORPONOR). Seg&uacute;n el an&aacute;lisis cromatogr&aacute;fico GC/MS de los aceites obtenidos, los componentes mayoritarios, con los rangos de porcentaje de composici&oacute;n, fueron: Limoneno (21-37 &#37;), Eucaliptol (12-47 &#37;), Guaiol (2,5-12 &#37;), &beta;-Cariofileno (4-9 &#37;), &alpha;-Selineno (0,6-7,3 &#37;) y Terpinen-4-ol (2-6 &#37;). Dado que la qu&iacute;mica de los AEs puede cambiar debido a la existencia de quimiotipos, individuos de una misma especie morfol&oacute;gicamente id&eacute;nticos pero diferentes en la composici&oacute;n qu&iacute;mica de sus aceites, en este estudio, se correlacion&oacute; la composici&oacute;n qu&iacute;mica del aceite con la actividad biol&oacute;gica, con el fin de darle un valor agregado a la especie <i>Calycolpus moritzianus</i> del Norte de Santander.</p>      <p align="justify">Entre los AEs de especies de la familia mirt&aacute;cea con actividad citot&oacute;xica se encuentra el aceite de <i>Melaleuca alternofolia</i>, el cual inhibe el crecimiento de c&eacute;lulas de melanoma (M14 WT) a una concentraci&oacute;n de 0,03 &#37; V/V<sup>11</sup>. El efecto citot&oacute;xico del aceite fue mucho m&aacute;s evidente en c&eacute;lulas de melanoma resistentes a adriamicina (M14 ADR), donde la inhibici&oacute;n del 50 &#37; del crecimiento se dio a las 48h, a la concentraci&oacute;n de 0,03 &#37; v/v<sup>11</sup>. La composici&oacute;n porcentual de los componentes mayoritarios del aceite correspondi&oacute; a: Terpinen- 4-ol (42,35&#37;), &gamma; -Terpineno (20,65&#37;), &alpha;-Terpineno (9,76&#37;), Terpinolene (3,71&#37;), 1,8 Cineol (3,57&#37;) y &alpha;-Terpineol (3,09&#37;). El Terpinen- 4-ol, componente principal, al igual que el aceite, produjo inhibici&oacute;n del crecimiento celular, cambios morfol&oacute;gicos, fragmentaci&oacute;n del DNA y apoptosis en c&eacute;lulas M14 ADR a una concentraci&oacute;n de 0,01 &#37; V/V<sup>11</sup>.</p>      <p align="justify">En este estudio el AE de la especie <i>Calycolpus moritzianus</i> de composici&oacute;n: Limoneno (23,09&#37;), Eucaliptol (39,86&#37;), Guaiol (4,7&#37;), &beta;-Cariofileno (5,17&#37;), Terpinen-4-ol (5,25&#37;) y &alpha;-Pineno (3,87&#37;), inhibi&oacute; el crecimiento de c&eacute;lulas HeLa, mostrando un IS de 3,1. Al evaluar la contribuci&oacute;n que ten&iacute;an los componentes mayoritarios en la actividad citot&oacute;xica mostrada por el aceite, se pudo comprobar la actividad del monoterpeno (-) Limoneno, el cual mostr&oacute; valores de IC<sub>50</sub> de 22,1 &plusmn; 1,2 y IS de 6,9 sobre c&eacute;lulas HeLa. En c&eacute;lulas Jurkat, el monoterpeno que mostr&oacute; la m&aacute;s alta citotoxicidad fue el Linalol, con valores de IC<sub>50</sub> de 19,8 &plusmn; 2,8 &mu;g/mL (IS &ge;10). La actividad citot&oacute;xica del limoneno ha sido reportada por varios autores<sup>25-27</sup>. Vigushin y col, evaluaron la actividad citot&oacute;xica, por 48h, utilizando la t&eacute;cnica del MTT, del (-) Limoneno sobre c&eacute;lulas de c&aacute;ncer de pr&oacute;stata (DU-145) y c&eacute;lulas no tumorales epiteliales de pr&oacute;stata (PZ-HPV-7), mostrando, respectivamente, valores de IC<sub>50</sub> de 2,8 mM y 9,4 mM<sup>25</sup>. Estudios cl&iacute;nicos en fase II/I, se estan llevando a cabo para demostrar el potencial antitumoral que tiene el (-) Limoneno<sup>26,28</sup>. Igualmente, para el Linalol la actividad citot&oacute;xica hacia l&iacute;neas tumorales ha sido comprobada por otros investigadores. Loizzo y col, evaluaron la actividad citot&oacute;xica del Linalol sobre las l&iacute;neas tumorales de adenocarcinoma de colon y melanoma, ACHN y C32, encontrando valores de IC<sub>50</sub>, respectivamente, de 23,16 y 23,77 &mu;g/mL<sup>27</sup>. En el presente estudio se evidenci&oacute; la actividad citot&oacute;xica de los aceites <i>C. moritzianus</i>, sin embargo la actividad fue menor que la encontrada por su componentes mayoritarios.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Actualmente, no existe un consenso sobre los m&eacute;todos de elecci&oacute;n para la evaluaci&oacute;n de la actividad antimic&oacute;tica <i>in vitro</i> en productos naturales, ni sobre los valores de CMI para definir actividad en un producto natural. Aligiannis y col, sugirieron una clasificaci&oacute;n para material vegetal basado en los resultados de la CMI, mencionando como: fuerte inhibidor (aquellos con CMI hasta 500 &mu;g/mL), moderado inhibidor (CMI entre 0,6 y 1,5 mg/mL) y d&eacute;bil inhibidor (CMI por encima de 1,6 mg/mL)<sup>29</sup>. Partiendo de lo anterior, tenemos que los AEs X38 y X39, mostraron actividad contra <i>C. krusei</i> (500 &mu;g/mL). Con el fin de identificar cual de los componentes mayoritarios del aceite estaba contribuyendo a la actividad antimic&oacute;tica, se evaluaron ocho componentes mayoritarios. Los monoterpenos &alpha;-Pineno y Terpinen- 4-ol, fueron los &uacute;nicos componentes que mostraron actividad contra <i>C. krusei</i>. La actividad antimic&oacute;tica contra <i>Candida</i> spp. de AEs de especies de la familia Myrtaceae ha sido reportada por varios investigadores. Mondello y col, evaluaron la actividad anti-<i>Candida</i> del aceite de <i>Melaleuca alternofolia</i>; la composici&oacute;n porcentual de los componentes mayoritarios del aceite correspondi&oacute; a: Terpinen-4-ol (42,35&#37;), &gamma;-Terpineno (20,65&#37;), &alpha;-Terpineno (9,76&#37;), Terpinoleno (3,71&#37;), 1,8 Cineol (3,57&#37;) y &alpha;-Terpineol (3,09&#37;). Mondello y col, utilizando la t&eacute;cnica de susceptibilidad antimic&oacute;tica del &quot;<i>Clinical Laboratory Standard Institute</i> (CLSI) M27-A&quot; y la misma cepa de <i>C. krusei</i> ATCC 6258, encontraron que tanto el aceite de M. alternofolia como su componente mayoritario el Terpinen-4-ol, presentaron actividad contra <i>C. krusei</i> con valores de CMI, respectivamente, de 0,25 y 0,03&#37; v/v<sup>10</sup>. En el presente estudio encontramos los misma valores de CMI contra <i>C. krusei</i> para el aceite de <i>C. moritzianus</i> y para el Terpinen-4-ol, adem&aacute;s, se evidenci&oacute; la actividad anti- <i>C. krusei</i> del &alpha;-Pineno. Seg&uacute;n los resultados obtenidos, se podr&iacute;a pensar en un sinergismo, que est&aacute; potenciando la actividad anti- <i>C. krusei</i>, entre los monoterpenos 1,8-Cineol o Eucaliptol, Limoneno, &alpha;-Pineno, Terpinen-4-ol y &alpha;-Terpineol con los sesquiterpenos Guaiol, trans-&beta;-Cariofileno, y el &gamma;-Eudesmol, puesto que el Terpinen-4-ol, que no se encontr&oacute; en alta concentraci&oacute;n (5,25 &#37;), tuvo un valor de CMI similar al del aceite. Los pr&oacute;ximos estudios estar&aacute;n encaminados a evaluar el sinergismo entre los componentes mayoritarios. Encontrar actividad contra <i>C. krusei</i> es importante porque a pesar que no es la especie m&aacute;s prevalente, en los &uacute;ltimos a&ntilde;os, se ha registrado un incremento notable en esta especie resistente a Fluconazol e Itraconazol, medicamento de elecci&oacute;n para el tratamiento de infecciones por <i>Candida</i> spp, donde los valores de CMI determinados por Mondello y col, fueron, respectivamente, de 32 mg/L y 0,25 mg/L<sup>10</sup>.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>      <p align="justify">Los resultados de este art&iacute;culo se derivan de los proyectos <b>RC 226-2006 y RC 432-2004</b> financiado por el Instituto colombiano para el desarrollo de la ciencia y la tecnolog&iacute;a-COLCIENCIAS, Bogot&aacute;, Colombia.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>CONFLICTOS DE INTERES</b></font></p>      <p align="justify">Los autores no tienen conflictos de intereses que declarar.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p align="justify">1. Mesa-Arango AC, Bueno-S&aacute;nchez JG, Betancur-Galvis LA. Productos naturales con actividad antimic&oacute;tica. Rev Esp Quimioterap 2004; 17: 325-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0121-0807200900030000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">2. Garc&iacute;a-Ruiz JC, Amutio E, Pont&oacute;n J. Invasive fungal infection in immunocompromised patients. Rev Iberoam Micol 2004; 21: 55-62.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0121-0807200900030000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">3. Groll AH, Tragiannidis A. Recent advances in antifungal prevention and treatment. Semin Hematol 2009; 46: 212-229.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0121-0807200900030000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">4. Lai CC, Tan CK, Huang YT, Shao PL, Hsueh PR. Current challenges in the management of invasive fungal infections. J Infect Chemother 2008; 14: 77-85.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0121-0807200900030000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">5. Singh N, Paterson DL. <i>Aspergillus</i> infections in transplant recipients. Clin Microbiol Rev 2005; 18: 44-69.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0121-0807200900030000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">6. Latge JP. <i>Aspergillus fumigatus</i> and aspergillosis. Clin Microbiol Rev 1999; 12: 310-350.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0121-0807200900030000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">7. Whitley RJ, Roizman B. Herpes Simplex virus infections. Lancet 2001; 357:1513-1518.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0121-0807200900030000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">8. Stranska R, Schuurman R, Nienhuis E, Goedegebuure IW, Polman M, Weel JF, Wertheim-Van Dillen PM, Berkhout RJM, Van Loon AM. Survey of acyclovir-resistant herpes simplex virus in the Netherlands: prevalence and characterization. J Clin Virol 2005; 32: 7–18.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0121-0807200900030000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">9. Cox SD, Mann CM, Markham JL, Gustafson JE, Warmington JR, Wyllie SG. Determining de antimicrobial actions of Tea Tree Oil. Molecules 2001; 6: 87-91.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-0807200900030000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">10. Mondello F, De Bernardis F, Girolamo A, Cassone A, Salvatore G. In vivo activity of terpinen-4-ol, the main bioactive component of Melaleuca alternifolia Cheel (tea tree) oil against azole-susceptible and -resistant human pathogenic Candida species. BMC Infect Dis 2006; 6: 158.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0121-0807200900030000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">11. Calcabrini A, Stringaro A, Toccacieli L, Meschini S, Marra M, Colone M, Salvatore G, Mondello F, Arancia G, Molinari A. Terpinen-4-ol, the main component of Melaleuca alternifolia (tea tree) oil inhibits the in vitro growth of human melanoma cells. J Invest Dermatol 2004; 122: 349-360.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-0807200900030000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">12. Y&aacute;&ntilde;ez X, Pinz&oacute;n ML, Solano F, S&aacute;nchez LR. Chemical composition of the Essential Oil of <i>Psidium caudatum</i> Mc Vaugh. Molecules 2002; 7: 712-716.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0121-0807200900030000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">13. Cuenca-Estrella M, Moore CB, Barchiesi F, Bille J, Chryssanthou E, Denning DW, Donnelly JP, Dromer F, Dupont B, Rex JH, Richardson MD, Sancak B, Verweij PE, Rodr&iacute;guez-Tudela JL. Multicenter evaluation of the reproducibility of the proposed antifungal susceptibility testing method for fermentative yeasts of the Antifungal Susceptibility Testing Subcommittee of the European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing (AFST-EUCAST). Clin Microbiol Infect 2003; 9: 467-474.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-0807200900030000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">14. National Committee for Clinical Laboratory Standards 2002. Reference Method for Broth Dilution Antifungal Susceptibility Testing of Filamentous Fungi; Approved Standard. Document M38-A. Wayne, USA: National Committee for Clinical Laboratory Standards.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0121-0807200900030000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">15. Betancur-Galvis LA, Morales GE, Forero JE, Roldan J. Cytotoxic and antiviral activities of Colombian medicinal plant extracts of the Euphorbia genus. Mem Inst Oswaldo Cruz 2002; 97: 541-546.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-0807200900030000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">16. Prayong P, Barusrux S, Weerapreeyakul N. Cytotoxic activity screening of some indigenous Thai plants. Fitoterapia 2008; 79: 598–601&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0121-0807200900030000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">17. Vlietinck AJ, Van Hoof L, Tott&eacute; J, Lasure A, Vanden Berghe D, Rwangabo PC, Mvukiyumwami J. Screening of hundred Rwandese medicinal plants for antimicrobial and antiviral properties. J Ethnopharm.1995; 46: 31-47.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-0807200900030000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">18. Hennebelle T, Sahpaz S, Joseph H, Bailleul F. Ethnopharmacology of <i>Lippia alba</i>. J Ethnopharmacol 2008; 116: 211-222.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0121-0807200900030000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">19. Hammer KA, Carson CF, Riley TV. In-vitro activity of essential oils, in particular <i>Melaleuca alternifolia</i> (tea tree) oil and tea tree oil products, against <i>Candida</i> sp. J Antimicrob Chemother1998; 42: 591-595.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-0807200900030000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">20. Hammer KA, Carson CF, Riley TV. In vitro activities of ketoconazole, econazole, miconazole, and <i>M. alternifolia</i> (tea tree) oil against <i>Malassezia</i> species. Antimicrob Agents Chemother 2000; 44: 467-469.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0121-0807200900030000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">21. Syed TA, Qureshi ZA, Ali SM, Ahmad S, Ahmad SA. Treatment of toenail onychomycosis with 2&#37; butenafine and 5&#37; <i>Melaleuca alternifolia</i> (tea tree) oil in cream. Trop Med Int Health 1999; 4: 284-287.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-0807200900030000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">22. V&aacute;squez J, Arganoza M, Boikov D, Vaishampayan J, Akins R. In vitro susceptibilities of <i>Candida</i> and <i>Aspergillus</i> species to <i>Melaleuca alternifolia</i> oil. Rev Iberoam Micol 2000; 17: 60-63.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0121-0807200900030000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">23. Casta&ntilde;eda ML, Mu&ntilde;oz A, Martinez JR, Stashenko EE. Estudio de la composici&oacute;n qu&iacute;mica y la actividad biol&oacute;gica de los aceites esenciales de diez plantas arom&aacute;ticas colombianas. Sci T&eacute;c 2007; 33: 165-166.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0121-0807200900030000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">24. D&iacute;az T, Mora FD, Velasco J, D&iacute;az T, Rojas LB, Usubillaga A, Carmona J. Chemical composition and in vitro antibacterial activity of the essential oil of <i>Calycolpus moritzianus</i> from M&eacute;rida, Venezuela. Nat Prod Com 2008; 3: 937-940.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0121-0807200900030000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">25. Vigushin DM, Poon GK, Boddy A, English J, Halbert GW, Pagonis C, Jarman M, Coombes RC. Phase I and pharmacokinetic study of D-limonene in patients with advanced cancer. Cancer Research Campaign Phase I/II Clinical Trials Committee. Cancer Chemother Pharmacol 1998; 42: 111-117.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0121-0807200900030000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">26. McNamee D. <i>d</i>-Limonene trial in cancer. Lancet 1993; 342: 801-805.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0121-0807200900030000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">27. Loizzo MR, Tundis R, Menichini F, Saab AM, Statti GA, Menichini F. Antiproliferative effects of essential oils and their major constituents in human renal adenocarcinoma and amelanotic melanoma cells. Cell Prolif 2008; 41: 1002-1012.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0121-0807200900030000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">28. Rabi T, Bishayee A. d -Limonene sensitizes docetaxel-induced cytotoxicity in human prostate cancer cells: Generation of reactive oxygen species and induction of apoptosis. J Carcinog 2009; 8: 9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0121-0807200900030000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">29. Aligiannis N, Kalpoutzakis E, Mitaku S, Chinou IB. Composition and antimicrobial activity of the essential oils of two <i>Origanum</i> species. J Agric Food Chem 2001; 49: 4168-4170.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0121-0807200900030000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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