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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad contra Trypanosoma cruzi, Leishmania chagasi y células de mamífero de nuevas N-bencil (2-furilmetil) cinamamidas]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Activity against Trypanosoma cruzi, Leishmania chagasi and mammalian cells of new N-benzyl (2-furylmethyl) cinnamamides]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: The chemotherapy against leishmaniasis and Chagas disease is ineffective, a condition that is aggravating the public health problem caused by these tropical diseases. Objective: To determine the activity of new N-benzyl(2-furylmethyl) cinnamamides in the free and intracellular forms of Leishmania chagasi and Trypanosoma cruzi and Vero and THP-1 cells. Materials and methods: The parasites and cells were treated with different concentrations of the compounds and the activity was determined microscopically and MTT colorimetric test in the case of parasites and mammalian cells. Antiparasitic activity of tested compounds was expressed as the concentration that inhibits or destroys 50% or 90% of parasites and cells. Results: The N-arylalkylamides 1, 2 and 5 were active against T. cruzi epimastigotes with a range of activities between IC50 3.71-38.81 &#956;M and IC90 between 50.87-59.87 &#956;M. The compound 2 was active on intracellular amastigotes of L. chagasi with IC50 77.76 &#956;M. The tested amides were not toxic to THP-1 cells; just only compound 4 resulted partially toxic on Vero cells (CC50 65.9 ± 5.71 &#956;M). Conclusions: The low toxicity and the antiparasitic activity showed by the cinnamanide compounds 1, 2 and 5 support the design of new related molecules in order to be evaluated on in vitro and in vivo systems for these parasitic diseases. Salud UIS 2009; 41: 275-279.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Leishmaniasis]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">    <font size="4">       <br>    <center><b>Actividad contra <i>Trypanosoma    <br> cruzi</i>, <i>Leishmania chagasi</i> y c&eacute;lulas    <br> de mam&iacute;fero de nuevas <i>N</i>-bencil    <br> (2-furilmetil) cinamamidas</b></center></font> 		     <p align="center">Sandra Milena Leal Pinto<sup>1</sup>, Jos&eacute; Gregorio Hern&aacute;ndez Barajas<sup>2</sup>, Leonor Yamile Vargas M&eacute;ndez<sup>3</sup>, Vladimir V.    <br> Kouznetsov<sup>2</sup>, Patricia Escobar Rivero<sup>1</sup></p>      <p align="left">1. Centro de Investigaciones en Enfermedades Tropicales CINTROP-UIS. Escuela de Medicina. Departamento de Ciencias B&aacute;sicas,    <br>  Universidad Industrial de Santander.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 2. Laboratorio de Qu&iacute;mica Org&aacute;nica y Biomolecular. Escuela de Qu&iacute;mica. Universidad Industrial de Santander.    <br> 3. Grupo de Investigaciones Ambientales. Universidad Santo Tomas.    <br> <b>Correspondencia:</b> Sandra Milena Leal Pinto, Bact. Escuela de Medicina, Departamento de Ciencias B&aacute;sicas. Centro de    <br> Investigaciones en Enfermedades Tropicales CINTROP, Sede UIS Guatiguar&aacute;, 6344000 ext. 3565 fax 6540808    <br> <b>E-mail:</b> <a href="mailto:sandramilena20@gmail.com">sandramilena20@gmail.com</a>    <br> <b>Recibido:</b> 13 de noviembre de 2009 - <b>Aceptado:</b> 20 de diciembre de 2009</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>RESUMEN</b></font></p> 	     <p align="justify"><b>Introducci&oacute;n:</b> La quimioterapia contra la leishmaniasis y la enfermedad de Chagas es inefectiva, condici&oacute;n que agrava el problema de salud p&uacute;blica que estas enfermedades tropicales representan. <b>Objetivo:</b> Determinar la actividad de nuevas <i>N</i>-bencil (2-furilmetil) cinamamidas en las formas libres e intracelulares de <i>Leismania chagasi</i> y <i>Trypanosoma cruzi</i> y en c&eacute;lulas Vero y THP-1. <b>Materiales y m&eacute;todos:</b> Los par&aacute;sitos y las c&eacute;lulas fueron tratados con diferentes concentraciones de los compuestos y su actividad fue determinada microsc&oacute;picamente y por la prueba colorim&eacute;trica de MTT en el caso de los par&aacute;sitos y c&eacute;lulas de mam&iacute;fero, respectivamente. Los resultados de actividad fueron expresados como la concentraci&oacute;n que inhibe o destruye 50&#37; o 90&#37; de los par&aacute;sitos o c&eacute;lulas. <b>Resultados:</b> Las <i>N</i>-arilalquilamidas <b>1</b>, <b>2</b> y <b>5</b> fueron activos en epimastigotes de <i>T. cruzi</i> con actividades entre IC<sub>50</sub> 3,71-38,81 &mu;M y IC<sub>90</sub> entre 50,87-59,87 &mu;M. El compuesto <b>2</b> present&oacute; actividad en amastigotes intracelulares de <i>L. chagasi</i> con IC<sub>50</sub> 77,76 &mu;M. Las amidas preparadas no presentaron toxicidad en c&eacute;lulas THP-1 y solo el compuesto <i>4</i> fue parcialmente t&oacute;xico en c&eacute;lulas Vero (CC<sub>50</sub> 65,90 &plusmn; 5,71 &mu;M). <b>Conclusiones:</b> La baja toxicidad presentada por los compuestos <b>1</b>, <b>2</b> y <b>5</b> y la actividad antiparasitaria mostrada soportan el dise&ntilde;o de nuevas mol&eacute;culas relacionadas para ser evaluadas en sistemas <i>in vitro</i> e <i>in vivo</i> contra estas enfermedades parasitarias. <b><i>Salud UIS</i> 2009; 41: 275-279</b></p> 	     <p align="justify"><b>Palabras Claves:</b> Leishmaniasis, enfermedad de Chagas, amastigotes intracelulares, citotoxicidad,    <br> cinamamidas N-sustituidas</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="3"><b>Activity against <i>Trypanosoma cruzi</i>, <i>Leishmania chagasi</i> and    <br> mammalian cells of new <i>N</i>-benzyl (2-furylmethyl) cinnamamides</b></font></p> 	     <p align="center"><font size="3"><b>ABSTRACT</b></font></p> 	     <p align="justify"><b>Introduction:</b> The chemotherapy against leishmaniasis and Chagas disease is ineffective, a condition that is aggravating the public health problem caused by these tropical diseases. <b>Objective:</b> To determine the activity of new <i>N</i>-benzyl(2-furylmethyl) cinnamamides in the free and intracellular forms of <i>Leishmania chagasi</i> and <i>Trypanosoma cruzi</i> and Vero and THP-1 cells. <b>Materials and methods:</b> The parasites and cells were treated with different concentrations of the compounds and the activity was determined microscopically and MTT colorimetric test in the case of parasites and mammalian cells. Antiparasitic activity of tested compounds was expressed as the concentration that inhibits or destroys 50&#37; or 90&#37; of parasites and cells. <b>Results:</b> The <i>N</i>-arylalkylamides <b>1</b>, <b>2</b> and <b>5</b> were active against <i>T. cruzi</i> epimastigotes with a range of activities between IC<sub>50</sub> 3.71-38.81 &mu;M and IC<sub>90</sub> between 50.87-59.87 &mu;M. The compound <b>2</b> was active on intracellular amastigotes of <i>L. chagasi</i> with IC<sub>50</sub> 77.76 &mu;M. The tested amides were not toxic to THP-1 cells; just only compound <b>4</b> resulted partially toxic on Vero cells (CC<sub>50</sub> 65.9 &plusmn; 5.71 &mu;M). <b>Conclusions:</b> The low toxicity and the antiparasitic activity showed by the cinnamanide compounds <b>1</b>, <b>2</b> and <b>5</b> support the design of new related molecules in order to be evaluated on <i>in vitro</i> and <i>in vivo</i> systems for these parasitic diseases. <b><i>Salud UIS</i> 2009; 41: 275-279</b>.</p> 	     <p align="justify"><b>Keywords:</b> Leishmaniasis, Chagas disease, intracellular amastigote, cytotoxicity, N-substituted cinnamamides</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>      <p align="justify">Las N-arilalquilamidas, derivadas del &aacute;cido cin&aacute;mico son compuestos org&aacute;nicos ampliamente distribuidos en la naturaleza. Son mol&eacute;culas importantes por sus diferentes propiedades fisicoqu&iacute;micas y farmacol&oacute;gicas, algunas presentando actividad antioxidante y anticonvulsiva<sup>1,2</sup>.</p> 	     <p align="justify">Recientemente se ha demostrado que algunos derivados inhiben la enzima 17-hidroxiesteroide deshidrogenasa obtenida del hongo fitopat&oacute;geno <i>Cochliobolus lunatus</i>. Esta enzima est&aacute; relacionada con desordenes reproductivos, enfermedades neuronales y neoplasias en humanos<sup>3</sup>.</p>      <p align="justify">Las propiedades fisiol&oacute;gicas en las que se han visto relacionados este tipo de compuestos, crean inter&eacute;s en su evaluaci&oacute;n contra microorganismos que afectan a los humanos. La <i>Leishmania</i> y el <i>T. cruzi</i> son protozoos intracelulares pertenecientes a la familia Tripanosomatidae y causantes de dos enfermedades tropicales transmitidas por vectores conocidas como la leishmaniasis y la enfermedad de Chagas. Estas enfermedades son end&eacute;micas en varios pa&iacute;ses de las regiones tropicales y subtropicales y responsables de cerca de 60000 muertes anuales, seg&uacute;n reportes de la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud<sup>4</sup>.</p>      <p align="justify">No hay una vacuna y las opciones de tratamientos son pocas. Para leishmaniasis el tratamiento se basa en el uso de los antimoniales pentavalentes y en caso de falla terap&eacute;utica se utilizan anfotericina B, pentamindina, miltefosine y paramomicina<sup>5,6</sup>. El tratamiento de la enfermedad de Chagas se restringe al uso de dos medicamentos: el nifurtimox y el benznidazole, activos s&oacute;lo en la fase aguda de la enfermedad<sup>7,8</sup>. Estos tratamientos presentan inconvenientes especialmente su toxicidad, y eficacia variable y dado que son aplicados en periodos prolongados muchos pacientes abandonan sus tratamientos<sup>9,10</sup>. Diferentes estrategias terap&eacute;uticas como la fototerapia, termoterapia, crioterapia, b&uacute;squeda racional de productos naturales activos, s&iacute;ntesis de nuevas mol&eacute;culas qu&iacute;micas, entre otras, se est&aacute;n teniendo en cuenta para combatir los par&aacute;sitos responsables de la leishmaniasis y la enfermedad de Chagas<sup>11,12</sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Tratando de encontrar nuevas mol&eacute;culas con actividad antiparasitaria, en este trabajo se determin&oacute; la actividad de nuevas serie de cinamamidas N-sustituidas contra las formas libres e intracelulares de <i>L. chagasi</i> y <i>T. cruzi</i> y la citotoxicidad en c&eacute;lulas de mam&iacute;fero.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>      <p align="justify"><b>S&iacute;ntesis</b>    <br> A una soluci&oacute;n de &aacute;cido <i>trans</i>-cin&aacute;mico (42,2 mmol) en tolueno anhidro (80 mL), se le adicion&oacute; el &aacute;cido b&oacute;rico (5,0 mol &#37;) y posteriormente la bencilamina (21,1 mmol); la mezcla obtenida se calent&oacute; a reflujo, utilizando una trampa de Dean-Stark, entre 5 y 9 horas dependiendo de la amina, hasta colectar un volumen de agua constante (cercano a la cantidad estequiom&eacute;trica esperada). Esta informaci&oacute;n, junto al control por cromatograf&iacute;a en capa fina (CCF) se&ntilde;al&oacute; la finalizaci&oacute;n de la reacci&oacute;n. Luego se elimin&oacute; la mayor parte del disolvente. La precipitaci&oacute;n de los productos deseados <b>1-5</b> se realiz&oacute; por adici&oacute;n de n-hexano. Su purificaci&oacute;n se efectu&oacute; mediante cromatograf&iacute;a en columna sobre al&uacute;mina, usando mezclas de acetato de etilo y &eacute;ter de petr&oacute;leo como eluyentes<sup>13</sup>.</p>      <p align="justify"><b>Compuestos y medicamentos de referencia</b>    <br> Se evaluaron cinco derivados de las N-arialquilcinnamamidas (<a href="#f01">Figura 1</a>). Como medicamentos de referencia se utilizaron el nifurtimox (donado por el Doctor Simon Croft, London School of Higiene and Tropical Medicine) y la anfotericina B (AmB, Sigma). Las soluciones madre de los compuestos fueron preparadas en dimetilsulfoxido (DMSO) 100 veces diluidas. Las soluciones de trabajo fueron preparadas en medio de cultivo antes de los experimentos.</p>      <p align="center"><a name="f01"></a><img src="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a09f1.jpg"></p>      <p align="justify"><b>Par&aacute;sitos y c&eacute;lulas de mam&iacute;fero</b>    <br> Los par&aacute;sitos <i>L. chagasi</i> (MHOM/BR/74/PP75) y <i>T. cruzi</i> (cepa 320I01)<sup>14,15</sup> fueron mantenidos en su forma libre de promastigotes y epimastigotes a 28&deg;C. Los promastigotes de <i>L. chagasi</i> fueron mantenidos en medio de cultivo RPMI 1640 (Gibco) suplementado con hemina (Sigma), HEPES (Gibco) y 5&#37; de suero bovino fetal inactivado con calor (SBFi, Gibco). Los epimastigotes de <i>T. cruzi</i> fueron mantenidos en medio de cultivo de LIT suplementado con 5&#37; de SBFi y hemina.</p>      <p align="justify">Las l&iacute;neas celulares de mam&iacute;fero utilizadas en este estudio fueron c&eacute;lulas Vero (ATCC, TIB202y THP-1 (ATCC, CCL-81). Ambas fueron mantenidas en medio de RPMI 1640 suplementado con 5&#37; de SBFi a 37&deg;C, 5&#37;CO<sub>2</sub> y 95&#37; atmosfera de humedad.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Actividad antiparasitaria</b>    <br> Formas libres de promastigotes de <i>L. chagasi</i> o epimastigotes de <i>T. cruzi</i> fueron tratados con 0,3-300 &mu;M de los compuestos durante 3 d&iacute;as a 28&deg;C. Par&aacute;sitos controles fueron mantenidos sin compuesto. Los par&aacute;sitos fueron observados microsc&oacute;picamente y el recuento se realiz&oacute; por conteo directo de los par&aacute;sitos vivos en c&aacute;mara de Neubauer empleando formalina 1&#37; y eosina amarilla como diluyentes.</p>      <p align="justify">Amastigotes intracelulares de <i>L. chagasi</i> fueron obtenidos infectando c&eacute;lulas THP-1 con promastigotes en fase estacionaria y amastigotes intracelulares de <i>T. cruzi</i> fueron obtenidos infectando c&eacute;lulas Vero en monocapa con tripomastigotes de <i>T. cruzi</i>. En ambos casos se utiliz&oacute; un radio de infecci&oacute;n c&eacute;lula: par&aacute;sito de 1:10 y la infecci&oacute;n fue realizada durante 24 horas a 37&deg;C, 5&#37; CO<sub>2</sub> y 95&#37; atm&oacute;sfera de humedad.</p>      <p align="justify">Los amastigotes intracelulares fueron tratados con concentraciones de 0,1-100 &mu;M de los compuestos durante 5 d&iacute;as adicionando una segunda dosis al tercer d&iacute;a. Las c&eacute;lulas fueron fijadas con metanol, coloreadas con Giemsa y observadas al microscopio luz para determinar el porcentaje de infecci&oacute;n en 300 c&eacute;lulas.</p>      <p align="justify"><b>Actividad citot&oacute;xica en c&eacute;lulas de mam&iacute;fero</b>    <br> Las c&eacute;lulas THP-1 transformadas con forbol miristato acetato (PMA, Sigma) a su fenotipo adherente y las c&eacute;lulas Vero en monocapa fueron tratadas con 5-300&mu;M de los compuestos durante 3 d&iacute;as a 37&deg;C, 5&#37;CO<sub>2</sub> y 95&#37; atmosfera de humedad. C&eacute;lulas controles fueron mantenidas sin compuesto. La citotoxicidad se determin&oacute; mediante el uso la prueba calorim&eacute;trica del MTT (3-(4,5-dimetiltiazol-2-ilo)-2,5-difeniltetrazol)). Las c&eacute;lulas fueron tratadas con la sal (5 mg/mL) por 4 horas y posteriormente los cristales reducidos de formazan disueltos en DMSO. Las placas fueron le&iacute;das en un lector de microplacas (Anthos2020) a una densidad &oacute;ptica de 580 nm<sup>16</sup>. El porcentaje de toxicidad fue determinado por la siguiente f&oacute;rmula: &#37; de citotoxicidad = 1-(n&uacute;mero de c&eacute;lulas del grupo tratado/ n&uacute;mero de c&eacute;lulas del grupo control) x 100.</p>      <p align="justify"><b>An&aacute;lisis de resultados</b>    <br> Los resultados de actividad de los compuestos en los par&aacute;sitos fueron expresados en concentraciones inhibitorias 50 y 90 (IC<sub>50</sub> y IC<sub>90</sub>) y en las c&eacute;lulas de mam&iacute;fero en concentraciones citot&oacute;xicas 50 y 90 (CC<sub>50</sub> y CC<sub>90</sub>). Ellos fueron calculados utilizando el software de regresi&oacute;n sigmoidal Msxlfit<sup>&trade;</sup> (ID Business Solution, Guildford, UK). Los resultados fueron expresados unidades de &mu;M y corresponden al promedio de dos experimentos con sus desviaciones est&aacute;ndar. El &iacute;ndice de selectividad (IS) fue calculado como el cociente de la CC<sub>50</sub> sobre la IC<sub>50</sub>.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>RESULTADOS Y DISCUSION</b></font></p>      <p align="justify"><b>Preparaci&oacute;n de las cinamamidas N-sustituidas</b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Preparaci&oacute;n de una nueva serie de <i>N</i>-bencilcinamamidas <b>1-4</b> y <i>N</i>-(2-furilmetil)cinamamida <b>5</b> se logr&oacute; mediante la condensaci&oacute;n entre diversas bencilaminas (o <i>N</i>-2-furilmetilamina) y &aacute;cido <i>trans</i>-cin&aacute;mico, empleando tolueno anhidro como disolvente y haciendo uso de las bondades catal&iacute;ticas del &aacute;cido b&oacute;rico (H<sub>3</sub>BO<sub>3</sub>) en procesos que conducen a la formaci&oacute;n de amidas a partir de &aacute;cidos carbox&iacute;licos y aminas (<a href="#f01">Figura 1</a>).</p>      <p align="justify">El proceso de condensaci&oacute;n (adici&oacute;n-eliminaci&oacute;n) realizado se facilit&oacute; a trav&eacute;s del poder catal&iacute;tico del &aacute;cido b&oacute;rico; un catalizador econ&oacute;mico y adem&aacute;s de escaso impacto ambiental. Los rendimientos alcanzados usando esta metodolog&iacute;a superaron los previstos, encontr&aacute;ndose un rendimiento promedio cercano al 81&#37;, destac&aacute;ndose el rendimiento cuantitativo para el proceso de condensaci&oacute;n de uno de los derivados (compuesto <b>1</b>). Todas las cinamamidas obtenidas son sustancias cristalinas, estables y de color blanco (<a href="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a10t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>).</p>      <p align="justify"><b>Actividad biol&oacute;gica</b>    <br> Los resultados de actividad contra par&aacute;sitos y c&eacute;lulas de mam&iacute;fero se muestran en la <a href="img/revistas/suis/v41n3/v41n3a10t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>. En los ensayos contra <i>L. chagasi</i>, la cinamida <b>3</b> mostr&oacute; ser activo contra la forma de promastigotes de <i>L. chagasi</i>, sin embargo, fue inactivo contra la forma intracelular del parasito. El compuesto <b>2</b> inhibi&oacute; amastigotes intracelulares de <i>L. chagasi</i> con actividad de IC<sub>50</sub> 77,76 &mu;M, IC<sub>90</sub> &gt;100 e IS &gt; 3,85.</p>      <p align="justify">En los ensayos contra <i>T. cruzi</i>, los compuestos <b>1</b>, <b>2</b> y <b>5</b> inhibieron epimastigotes de <i>T. cruzi</i> con rangos de actividad de IC<sub>50</sub> 3,71-38,81 &mu;M y IC<sub>90</sub> entre 50,87-59,87 &mu;M e IS &gt;3 (datos no mostrados). Ning&uacute;n compuesto fue activo en amastigotes intracelulares a la m&aacute;xima concentraci&oacute;n utilizada de100 &mu;M. Esto podr&iacute;a deberse a varios factores uno de ellos, a la incapacidad del compuesto de se internalizado por la c&eacute;lula hospedera. Un compuesto activo contra las formas intracelulares de un microorganismo tendr&iacute;a que atravesar barreras celulares como la membrana plasm&aacute;tica y la del fagosoma (en el caso de <i>Leishmania</i>) diferente a lo que sucede en las formas libres de los par&aacute;sitos donde el compuesto tendr&iacute;a un efecto directo sobre el par&aacute;sito.</p>      <p align="justify">Los compuestos evaluados no fueron t&oacute;xicos para las c&eacute;lulas THP-1 (CC<sub>50</sub> &gt;300 &mu;M). En las c&eacute;lulas Vero, el compuesto <b>4</b> fue parcialmente t&oacute;xico (CC<sub>50</sub> 65,90 &mu;M, CC<sub>90</sub>&gt;300).</p>      <p align="justify">A pesar del n&uacute;mero reducido de mol&eacute;culas evaluadas, los resultados encontrados son promisorios. Aunque la amida <b>2</b> mostr&oacute; baja actividad en amastigotes intracelulares de <i>L. chagasi</i> con valores casi 300 veces mayores que el medicamento de referencia AmB, su actividad igual que la actividad presentada por los compuestos <b>1</b>, <b>2</b> y <b>5</b> contra las formas libres de <i>T. cruzi</i>, soportan el dise&ntilde;o de nuevas mol&eacute;culas relacionadas para ser evaluadas contra estos par&aacute;sitos.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>      <p align="justify">Los autores agradecen a COLCIENCIAS por la financiaci&oacute;n de este trabajo a trav&eacute;s del grupo de excelencia CENIVAM (contrato No 432-2004) y a la Universidad Industrial de Santander. LYMM agradece a COLCIENCIAS por su beca.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>CONFLICTO DE INTERES</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Los autores declaran no tener conflicto de intereses en la realizaci&oacute;n de este trabajo</p>      <p align="center"><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p align="justify">1. Kang TS, Jo HO, Park WK, Kim JP, Konishi Y, Kong JY, et al. Synthesis and antioxidant activities of 3,5-dialkoxy-4-hydroxycinnamamides. Bioorg Med Chem Lett 2008; 18: 1663-1667.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0121-0807200900030001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">2. Kristan K, Starcevic S, Brunskole M, Rizner TL, Gobec S. Cinnamates and cinnamamides inhibit fungal 17&#946;-hydroxysteroid dehydrogenase. Mol Cell Endocrinol 2006; 248: 239–241.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0121-0807200900030001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">3. Balsamo A, Crotti P, Lapucci A, Macchia B, Macchia F. Structure-Activity relationship in cinnamamides synthesis and anticonvulsant activity evaluation of some derivatives of (E)- and (Z)-m-(Trifluoromethyl)cinnamamide. J Med Chem 1981; 24: 525-532.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0121-0807200900030001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">4. Gelb MH, Hol WGJ. Parasitology. Drugs to combat tropical protozoan parasites. Science 2009; 294: 343-344.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0121-0807200900030001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">5. Oullette M, Drummelsmith J, Papadopoulou B. Leishmaniasis: drugs in the clinic, resistance and new developments. Drug Resist Updat 2004;7: 257-266.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0121-0807200900030001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">6. Croft SL, Seifert K, Yarley V. Current scenario of drug development for leishmaniasis. Indian J Med Res 2006; 123: 399-410.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0121-0807200900030001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">7. Urbina JA, Docampo R. Specific chemotherapy of Chagas disease: controversies and advances. TRENDS in Parasitol 2003; 19: 495-501.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0121-0807200900030001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">8. Croft SL, Barrett MP, Urbina JA. Chemotherapy of trypanosomiases and leishmaniasis. TRENDS in Parasitol 2005; 21: 508-512.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0121-0807200900030001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">9. Coura JM. Present situation and new strategies for Chagas disease chemotherapy - a proposal. Mem Inst Oswaldo Cruz 2009; 104:549-554.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0121-0807200900030001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">10. Sereno D, da Silva AC, Mathieu-Daude F, Ouaissi A. Advances and perspectives in <i>Leishmania</i> cell based drug-screening procedures. Parasitol Int 2007; 56:3-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0121-0807200900030001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">11. Escobar P, Hern&aacute;ndez IP, Rueda CM, Mart&iacute;nez F, Pa&eacute;z E. Photodynamic activity of aluminium (III) and zinc (II) phthalocyanines in <i>Leishmania</i> promastigotes. Biom&eacute;dica 2006; 26: 49-56.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0121-0807200900030001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">12. Davies CR, Kaye P, Croft SL, Sundar S. Leishmaniasis: new approaches to disease control. Clin Rev 2007; 326: 377-382.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0121-0807200900030001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">13. Barajas JG, Vargas LY, Kouznetsov VV, Stashenko EE. Efficient synthesis of new N-Benzyl- or N-(2-Furylmethyl)cinnamamides promoted by the &quot;Green&quot; catalyst boric acid, and their spectral analysis. synthesis 2008; 3: 377–382.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-0807200900030001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">14. Luna KP, Jaramillo CL, Gutierrez R, Esteban L, Angulo VM. Aislamiento de <i>T. cruzi</i> en pacientes en fase cr&oacute;nica de la enfermedad de Chagas por medio de hemocultivo y xenocultivo. Biom&eacute;dica. 2003; 23:119.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0121-0807200900030001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">15. Luna KP, Jaramillo CL, Hern&aacute;ndez G, Guti&eacute;rrez R, Vallejo GA, Angulo VM. ITS–RFLP-and RAPD-based genetic variability of <i>Trypanosoma cruzi</i> I,human and vector strains in Santander(Colombia). Parasitol Res 2009; 105: 519-528.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-0807200900030001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">16. Mosmann T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Meth 1983; 65: 55-63.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0121-0807200900030001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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